CN112354384B - 一种水溶性和脂溶性功能因子共包埋的g/o/w乳状液及其制备方法 - Google Patents

一种水溶性和脂溶性功能因子共包埋的g/o/w乳状液及其制备方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种水溶性和脂溶性功能因子共包埋的G/O/W乳状液及其制备方法,属于乳液技术领域。本发明将脂溶性功能因子溶解于油相中,水溶性功能因子、NaCl与热变性乳清分离蛋白分散于水溶液中作为内相,然后使用高速剪切和高压在位挤出装置制备W/O乳状液;再将乳清分离蛋白和果胶溶液混合作为外水相,使用T‑型通道模块和高压在位挤出装置实现半自动化、预混模式膜乳化,得到水溶性和脂溶性功能因子共包埋的G/O/W乳状液。本发明乳状液制备方法操作简便,易于工业化推广,所得G/O/W乳状液在25℃下储藏25天后仍保持稳定,对抗坏血酸和α‑生育酚的包埋率最高分别为79%和98%。

Description

一种水溶性和脂溶性功能因子共包埋的G/O/W乳状液及其制 备方法
技术领域
本发明涉及一种水溶性和脂溶性功能因子共包埋的G/O/W乳状液及其制备方法,属于乳液技术领域。
背景技术
将多种功能因子同时强化于同一产品中已成为功能性食品开发的一种趋势。抗坏血酸,通常称为维生素C,是人体必需的一种水溶性维生素,具有清除自由基、预防癌症发生等多种生理活性。α-生育酚是维生素E中活性最高的一种衍生物,是人体内最丰富的亲脂性自由基清除剂,可作为膳食补充剂用于预防和治疗多种慢性疾病。然而,抗坏血酸和α-生育酚均对光、热、氧、pH等环境因素敏感,在加工、储藏过程中极易发生氧化、降解。此外,α-生育酚在水中溶解度很低,难以直接添加于水相产品中。这些因素限制了它们在食品、医药和化妆品工业中的应用。目前,基于蛋白质和多糖的可食用载体已被广泛用于对单一功能因子的包埋和保护,然而能够高效共包埋水溶性和脂溶性功能因子的方法并不多。
水包油包水(Water-in-oil-in-water,W/O/W)型乳状液是指含有内水相的油滴悬浮分散在外水相中的一种三相体系,可同时作为水溶性和脂溶性功能因子的理想载体,应用于食品工业中。目前,通常使用高能乳化设备(高速分散器、高压均质机等),采用“二步法”制备W/O/W多重乳状液,其是先将亲油性乳化剂溶解于油相中利用高速分散器制备W/O型乳状液,然后将制得的W1/O乳状液与含有亲水性乳化剂的水相混合后使用高压均质机进行乳化,最终制得W/OW乳状液。该方法第二步中使用的高压均质设备通常会造成W1/O乳状液内水相破裂,导致已经被包埋于内水相中的活性成分释放,最终降低水溶性功能因子在W/O/W乳状液中的包埋率。此外,W/O/W多重乳状液在储藏过程中易发生内水相的聚合、油滴聚结、内水相迁移扩散至外水相等多种失稳现象,难以对负载的功能因子提供长效保护。因此,选择合适的配方和制备工艺制备具有高稳定性的W/O/W乳状液是实现对水溶性和脂溶性功能因子共包埋和保护的关键。
发明内容
技术问题:
为了解决上述问题,本发明分别从双重乳状液的配方和制备工艺两方面着手,以聚甘油聚蓖麻油酸酯(PGPR)作为亲脂性乳化剂制备W/O(油包水)乳状液,通过在内水相凝胶化获得G/O(油包水凝胶)以提高乳状液的稳定性,再以乳清分离蛋白(WPI)和果胶作为乳化剂,选择T-通道和挤出模块等低能乳化装置,采用二步乳化方法制备得到物理稳定性高、粒径分布均一的G/O/W乳状液(水包油包水凝胶),并对抗坏血酸和α-生育酚等脂溶性成分进行共包埋和保护。本发明在于抗坏血酸即既作为水溶性营养活性成分,又作为内部凝胶化的诱导剂,制备高稳定性的G/O/W乳状液,同时实现对抗坏血酸的高效包埋和保护。
技术方案:
本发明的第一个目的是提供具有一种高稳定性的G/O/W乳状液,其包含凝胶状的内水相、外水相以及油相;所述内水相包括NaCl、酸性水溶性功能因子、热变性WPI,外水相包括WPI和果胶,油相包括油脂和PGPR。
在本发明的一种实施方式中,所述热变性WPI是将WPI在70~90℃下热处理30~60min所得。
在本发明的一种实施方式中,所述内水相中热变性WPI的浓度为5%~6%(w/w),NaCl的浓度为0~500mM,酸性水溶性功能因子的浓度为0.1~5.0%(w/w),内水相的pH值为3.4~4.3或6.8~8.0。
在本发明的一种实施方式中,所述酸性水溶性功能因子包括抗坏血酸、烟酸、咖啡酸、阿魏酸、泛酸。
在本发明的一种实施方式中,所述外水相中WPI浓度为1.25~4.00%(w/w),果胶浓度均为1.25%(w/w),外水相的pH值为3.4~4.3或6.8~8.0。
在本发明的一种实施方式中,所述油相中PGPR的浓度为2~8%(w/w)。
在本发明的一种实施方式中,所述油相中还包括脂溶性成分;所述脂溶性成分包括:α-生育酚、视黄醇、不饱和脂肪酸、辅酶Q10,类胡萝卜素、植物精油等。
在本发明的一种实施方式中,所述油相中脂溶性成分的浓度为低于其在油相中的溶解度的任意浓度。
本发明的第二个目的是提供一种具有高稳定性的G/O/W乳状液的制备方法,所述方法包含以下步骤:
步骤(1):在搅拌条件下,将内水相逐滴分散到油相中进行预混合,混匀后,高速剪切、挤出,制备G/O乳状液;
步骤(2):向步骤1所得的G/O乳状液中加入外水相混合,乳化即得G/O/W乳状液。
在本发明的一种实施方式中,所述步骤(1)中内水相和油相的质量比为2:8~4:6。
在本发明的一种实施方式中,所述步骤(1)中预混搅拌速度为600~1200rpm,时间为3~10min。
在本发明的一种实施方式中,所述步骤(1)中剪切条件为:在8000~20000rpm条件下剪切1~2min。
在本发明的一种实施方式中,所述步骤(1)中使用装配有多孔聚碳酸酯滤膜的高压在位挤出装置进行挤出;膜的直径为47mm,平均孔径为0.22~15μm,挤出次数为1~5次。
在本发明的一种实施方式中,所述步骤(2)中G/O乳状液和外水相的质量比为2:8~4:6。
在本发明的一种实施方式中,所述步骤(2)中乳化的方法为:高速剪切和高压在位挤出装置(装配烧结滤板,滤板直径为47mm,平均孔径为0.22~20μm,厚度为2mm),具体步骤为:室温条件下,先将混合物料于8000~20000rpm条件下剪切1~2min,然后在压力不高于1MPa条件下,通过高压在位挤出装置循环1~5次,得到G/O/W乳状液。
在本发明的一种实施方式中,所述步骤(2)中乳化的方法为T-型通道模块和高压在位挤出装置(装配烧结滤板,滤板的直径为47mm,平均孔径为0.22~20μm,厚度为2mm),具体步骤为:在压力为不高于1MPa条件下,混合物料首先通过T-型通道模块,然后通过高压在位挤出装置1~5次,得到G/O/W乳状液。
在本发明的一种实施方式中,所述步骤(2)中乳化的方法为T-型通道模块和高压在位挤出装置(装配醋酸纤维素膜,膜的直径为47mm,平均孔径为0.22~3μm),具体步骤为:首先,混合物料在压力小于1MPa条件下通过T-型通道模块,然后通过高压在位挤出装置1~5次,得到G/O/W乳状液。
在本发明的一种实施方式中,所述步骤(1)和(2)中的物料在乳状液制备间歇过程中均放置于冰水浴中。
在本发明的一种实施方式中,所述方法具体包含以下步骤:
步骤(1):将聚甘油聚蓖麻油酸酯和α-生育酚分散于葵花籽油,将抗坏血酸加入到热变性乳清分离蛋白溶液中制得内水相,将油相和内水相按质量比为(1.5~4):1混合,通过高速剪切和高压在位挤出装置,其中膜为平均孔径800nm的多孔聚碳酸酯滤膜,制备W/O乳状液;
步骤(2):将乳清分离蛋白溶液和果胶溶液混合制得外水相,将步骤1制得的W/O乳状液与外水相按质量比3:7~7:3混合,使用高速剪切或T-型通道模块混匀后通过高压在位挤出装置,制得抗坏血酸和α-生育酚共包埋的W/O/W乳状液,将乳状液于4℃保存0.5h获得G/O/W。
所述步骤(2)中T-型通道设备工作压力为1MPa;高压在位挤出装置中装配烧结滤板(直径47mm、平均孔径约3μm、厚度约2mm)或醋酸纤维素膜(直径47mm、平均孔径约1.2μm),工作压力1MPa,循环次数5次。
本发明的第三个目的是提供水溶性和脂溶性功能因子共包埋G/O/W乳状液应用于构建功能因子输送体系中。
本发明的第四个目的是提供一种含有上述共包埋G/O/W乳状液的组合物。
有益效果:
(1)采用本发明方法制备的G/O/W乳状液在4℃和25℃下储藏25天后仍保持稳定。
(2)采用本发明方法制备的G/O/W乳状液能够同时包埋水溶性功能因子(抗坏血酸)和脂溶性功能因子(α-生育酚),水溶性功能因子(抗坏血酸)的回收率可达98%,脂溶性功能因子(α-生育酚)的包埋率为98%。
(3)采用本发明方法制备G/O/W乳状液具有良好的热稳定性,在70℃加热30min后水溶性功能因子和脂溶性功能因子的保留率仍为100%;并能够显著提高水溶性功能因子和脂溶性功能因子的储藏稳定性,在25℃下储藏15天后,水溶性功能因子保留率为76%,脂溶性功能因子的保留率为87%。
附图说明
图1为由实施例1中三种乳化方法制备的W/O型乳状液的体积粒径分布。
图2为W/O和G/O型乳状液于在室温储藏后相分离情况:A-C使用一次剪切法制备;D和E使用二次剪切和高压在位挤出装置制备。
图3为第二步乳化使用高速剪切和高压在位挤出装置(A)、T-型通道模块和含滤板的高压在位挤出装置(B)和T-型通道模块和含醋酸纤维素膜的高压在位挤出装置(C)制备的W/O/W乳状液的激光共聚焦图片。W/O/W乳状液第一步乳化方法为二次剪切和高压在位挤出装置,乳状液内水相为WPI水凝胶,外水相为浓度为4%的WPI溶液。
图4A为含4.00%(w/w)WPI外水相稳定的W/O/W型乳状液4℃储藏不同时间以及储藏5天摇匀后乳状液图片;4B为乳状液中不同分层的显微图像;4C为WPI-果胶复合物稳定的W/O/W乳状液4℃储藏不同时间后的图片。W/O/W乳状液第一步乳化方法为二次剪切和高压在位挤出装置,第二步乳化方法为T-型通道模块和含醋酸纤维素膜的高压在位挤出装置。
图5为不同内相双重乳状液的弹性模量(G’)和损耗模量(G”)随角频率变化情况;其中(A)内水相为5%(w/w)抗坏血酸和100mM NaCl,(B)内部凝胶相为5%(w/w)抗坏血酸、100mM NaCl和6%(w/w)热变性WPI。W/O/W乳状液第一步乳化方法为二次剪切和高压在位挤出装置,第二步乳化方法为T-型通道模块和含醋酸纤维素膜的高压在位挤出装置。
图6为不同内相双重乳状液在4℃和25℃储藏25天后的显微镜图片;其中(A)和(B)的内水相为5%(w/w)抗坏血酸和100mM NaCl,(C)和(D)的内部凝胶相为5%(w/w)抗坏血酸、100mM NaCl和6%(w/w)热变性WPI。
图7为内水相含有3%(A)、5%(B)、6%(C)的G/O/W乳状液在室温下储藏3天后的图片。G/O/W乳状液第一步乳化方法为二次剪切和高压在位挤出装置,第二步乳化方法为T-型通道模块和含醋酸纤维素膜的高压在位挤出装置。
图8为内水相为含5.00%(w/w)抗坏血酸水凝胶的G/O/W型乳状液在25℃下α-生育酚和抗坏血酸保留率随储藏时间变化情况。
具体实施方式
以下对本发明的优选实施例进行说明,应当理解实施例是为了更好地解释本发明,不用于限制本发明。
粒径的检测方法:使用NanoBrook Omni粒径分析仪测定W/O型乳状液的粒径分布。
结构观察:利用倒置荧光显微镜观察乳状液微观结构的液滴大小。
包埋率的检测方法:采用离心联合高效液相色谱或紫外分光光度法测定抗坏血酸和α-生育酚的包埋率和载量。计算公式分别为:
Figure BDA0002794565670000051
Figure BDA0002794565670000052
其中,C为内水相中初始抗坏血酸含量,C回收为整体W/O/W型乳状液中测得的抗坏血酸含量,N油为W/O/W型乳状液油相中初始α-生育酚含量,N回收为二次离心后外水相中测得的α-生育酚含量。
乳状液的流变学分析:采用流变仪测定乳状液的粘弹性,选择小幅振荡频率扫描模式,剪切应力设定为1Pa,频率扫描范围为0.1~100rad/s,结果以弹性模量(G’)和损耗模量(G”)表示。
稳定性的检测方法:将制备的包埋抗坏血酸和α-生育酚的乳状液置于4℃和25℃下储藏15天或置于70℃下30min。在不同时间取样分别利用高效液相色谱和紫外分光光度计进行含量测定,稳定性用储藏后活性成分含量与初始时刻百分比表示(保留率)。
实施例1:W/O和G/O型乳状液的制备
在冰水浴条件下,将水相加入到正在搅拌下的含有6%(w/w)PGPR的葵花籽油中获得混合物料,水相与油相的质量比为2:8,使用如下方法制备W/O和G/O乳状液:
①混合物料于13000rpm条件下剪切3min;
②混合物料于13000rpm条件下剪切2min,然后在18000rpm条件下剪切1min;
③在方法②基础上通过高压在位挤出装置挤出5次,其中膜为平均孔径800nm的多孔聚碳酸酯滤膜。检测W/O乳状液的粒径分布。
如图1所示,通过方法③二次剪切和高压在位挤出装置挤出,可以明显减少乳状液的粒径,同时使得粒径分布更加均一。
使用方法①制备乳状液,区别在于内相的组成分别替换为如下3种组分,其他不变:
(A)浓度为100mM的NaCl溶液;
(B)将10%(w/w)WPI在85℃下水浴加热30min变性,冷却至室温,稀释至6%(w/w)的热变性WPI溶液;
(C)6%(w/w)热变性WPI和500mM NaCl,在室温下1.5h后完全固化成胶。
使用方法③制备乳状液,区别在于内相的组成替换为如下2种组分,其他不变:
(D)0.1%(w/w)抗坏血酸、6%(w/w)热变性WPI和500mM NaCl;
(E)5%(w/w)抗坏血酸、6%(w/w)热变性WPI和100mM NaCl,在0.5h后固化成胶。
如图2所示,在室温条件下储藏21天后,内水相为NaCl溶液和热变性WPI溶液的W/O型乳状液均出现相分离,而内相为高盐诱导的WPI水凝胶的G/O型乳状液在储藏后保持稳定;当此G/O型乳状液的内部凝胶相中含有0.1%抗坏血酸时,储藏15天后也是稳定的。
为了增加抗坏血酸的载量,在不影响热变性WPI成胶的条件下,将NaCl浓度降为100mM,制得的G/O型乳状液在储藏15天后保持稳定。
上述结果表明,相比W/O乳状液,制得的G/O乳状液具有较好的稳定性,其中,抗坏血酸既作为热变性WPI成胶的诱导剂,又作为营养活性成分被包埋。
实施例2:W/O/W乳状液的制备
参照实施例1制备W/O乳状液,其中内水相为100mM的NaCl溶液;外水相:(a)含有4%(w/w)WPI和100mM NaCl的混合溶液;(b)将WPI和果胶溶液等比例混合,使得二者总质量浓度为2.5%(w/w),调节pH值至3.4。
将W/O乳状液与外水相按照质量比3:7混合,使用不同方法进行制备W/O/W乳状液:
④室温、10000rpm高速剪切1min,并<1MPa高压在位挤出装置(烧结滤板直径47mm、平均孔径~3μm、厚度~2mm)循环2次;
⑤设置压力不高于1MPa,通过T-型通道模块和5次高压在位挤出装置(烧结滤板直径47mm、平均孔径~3μm、厚度~2mm);
⑥设置压力不高于1MPa,通过T-型通道模块和高压在位挤出装置(醋酸纤维素膜直径47mm、平均孔径~1.2μm)2次。
当外水相含有4.00%(w/w)WPI时,图3是使用不同第二步乳化方法的激光共聚焦图,内部水相被油滴包裹并分散于外水相中,制备了具有典型多室结构的W/O/W型乳状液。
相比方法④和⑤,使用特定的滤膜的方法⑥制得的W/O/W乳状液的粒径更小、分布更均一,且抗坏血酸的回收率达到97.64(±1.99)%。
当外水相含有4.00%(w/w)WPI时,如图4A和B所示,使用方法⑥制备的W/O/W乳状液在储藏1天后出现轻微分层;5天后分层明显,“奶油”层保持W/O/W结构,而“下清”层则更小的O/W型乳状液,但摇匀后分层消失,且短时间不会出现分层现象。如图4C所示,当外水相为WPI-果胶复合物时,制得的W/O/W乳状液在静置2天后没有分层,表明该复合物稳定的W/O/W乳状液具有更高的稳定性。
实施例3:G/O/W乳状液的流变特性和稳定性
参照实施例1方法③制备内相含有5%(w/w)抗坏血酸、6%(w/w)热变性WPI和100mM NaCl的G/O型乳状液,并以5%(w/w)抗坏血酸和100mM NaCl为内水相的W/O乳状液作为对照,以pH值为3.4并添加100mM NaCl的WPI溶液作为外水相,
然后参考施例2方法⑥分别制备G/O/W和W/O/W型乳状液。利用流变仪表征乳状液的流变性质,然后将G/O/W和W/O/W型乳状液在4℃和25℃储藏25天,利用显微镜观察乳状液的微观结构。
如图5所示,在较低频率范围内(<2rad/s)两种乳状液的G”均大于G’,表明乳状液仍然保持粘性主导的流体状态;当频率高于2rad/s时,两种乳状液的G’均大于G”,但G’和G”数值相差不大。考虑到两种乳液在整个测试频率范围内(0.6~62.8rad/s)G’和G”均随频率升高而增大,但G’和G”的数值均较小,表明内相凝胶化的G/O/W型乳状液仍然表现出类似流体的粘性行为。
如图6所示,在4℃和25℃储藏25天后,以5%(w/w)抗坏血酸和100mM NaCl为内水相的W/O/W型乳状液发生絮凝和聚结,W/O/W多室结构崩塌,形成不规则聚集体;而以5%(w/w)抗坏血酸、6%(w/w)热变性WPI和100mM NaCl为内部凝胶相的G/O/W型乳状液保持原来典型的多室结构,是稳定的。
实施例4:探究内水相中热变性WPI用量对G/O/W型乳状液性能的影响
参照实施例1方法③制备内水相含有3%、5%、6%、7%、8%或者9%(w/w)热变性WPI和100mM NaCl的G/O型乳状液,以pH值为3.4并添加100mM NaCl的WPI溶液作为外水相,然后参考施例2方法⑥制备G/O/W型乳状液。
当内水相中热变性WPI的浓度较高,为7%、8%或者9%时,在制备G/O乳状液过程中即发生了成胶,导致体系变得粘稠,无法进行后续操作;当浓度较低,为3%时,如图7(A)所示,制得的乳状液稳定性较差,室温下储藏3天已发生显著沉降;当内水相5%(B)、6%(C),相应的G/O/W乳状液在室温下储藏3天后的图片分别如图7(B)、图7(C)所示,制得的双重乳液稳定性得到明显提升,3天后基本不发生变化。
实施例5:G/O/W乳状液中抗坏血酸和α-生育酚的稳定性
参照实施例2方法③制备内水相含有5%(w/w)抗坏血酸、6%(w/w)热变性WPI和100mM NaCl的G/O型乳状液,参考实施例3方法⑥制备外水相为WPI和果胶的G/O/W型乳状液,油相为含有6%(w/w)PGPR的葵花籽油和5%(w/w)α-生育酚,对α-生育酚进行共包埋。
如表1所示,G/O/W乳状液对α-生育酚的包埋率约为99%,且外水相组成没有显著影响α-生育酚的包埋率。这些结果说明,以抗坏血酸为内部凝胶诱导剂的G/O/W乳状液可以获得对α-生育酚的同时报埋。
表1G/O/W型乳状液中α-生育酚包埋率
Figure BDA0002794565670000081
注:同列不同字母代表存在显著性差异(P<0.05)。
将G/O/W型乳状液在70℃加热30min后,发现抗坏血酸和α-生育酚的含量没有显著变化,即保留率为100%,说明G/O/W型乳状液对热是稳定的。
将G/O/W型乳状液在25℃储藏15天。如图8所示,在25℃下储藏7天后外水相为WPI和WPI-果胶的乳状液中抗坏血酸的保留率均为92%,15天后抗坏血酸的保留率分别为76%和80%。在25℃下储藏7天后两种乳状液中α-生育酚的保留率均高于97%,15天后WPI-果胶稳定的乳状液中α-生育酚的保留率为87%,显著高于WPI稳定的乳状液中α-生育酚的保留率(76%)。对未经包埋的抗坏血酸溶液(pH 3.4)和含有α-生育酚的葵花籽油进行储藏,结果发现,在25℃储藏7天后,抗坏血酸的保留率分别为66.73(±2.47)%,α-生育酚的保留率分别为47.22(±2.54)%。这些结果表明,利用G/O/W乳状液可显著提高抗坏血酸和α-生育酚的储藏稳定性。

Claims (9)

1.一种制备G/O/W乳状液的方法,其特征在于,所述方法包含以下步骤:
步骤(1):在搅拌条件下,将内水相逐滴分散到油相中进行预混合,混匀后,通过二次剪切和经高压在位挤出装置挤出,制备G/O乳状液;其中,所述内水相中抗坏血酸的质量浓度为0.1~5%、热变性WPI的质量浓度为5~6%、NaCl的摩尔浓度为100~500mM;所述内水相的pH值为3.4~4.3或6.8~8.0;所述油相包括油脂和PGPR;其中,所述热变性WPI是将WPI在70~90℃下热处理30~60min所得;
步骤(2):向步骤(1)所得的G/O乳状液中加入外水相混合,乳化,即得G/O/W乳状液;其中所述外水相包括WPI和果胶;所述外水相中WPI的质量浓度为1.25~4.00%,果胶的质量浓度为1.25%,外水相的pH值为3.4~4.3或6.8~8.0。
2.根据权利要求1所述的制备G/O/W乳状液的方法,其特征在于,步骤(1)中通过高压在位挤出装置挤出1~5次,其中高压在位挤出装置装配有平均孔径为0.22~15μm的多孔聚碳酸酯滤膜。
3.根据权利要求1或2所述的制备G/O/W乳状液的方法,其特征在于,步骤(2)中乳化方法:设置压力不高于1MPa,通过T-型通道模块,然后通过高压在位挤出装置循环1~5次;所述高压在位挤出装置装配有直径为47mm、平均孔径为0.22~3μm的醋酸纤维素膜。
4.根据权利要求1所述的制备G/O/W乳状液的方法,其特征在于,所述油相和所述内水相的质量比为(1.5~4):1。
5.根据权利要求1所述的制备G/O/W乳状液的方法,其特征在于,G/O乳状液与外水相的质量比为3:7~7:3。
6.由权利要求1-5任一项所述的方法制备的G/O/W乳状液,其特征在于,其包含凝胶状的内水相、油相、以及外水相;
所述内水相中抗坏血酸的质量浓度为0.1~5%、热变性WPI的质量浓度为5~6%、NaCl的摩尔浓度为100~500mM;所述内水相的pH值为3.4~4.3或6.8~8.0;
所述油相包括油脂和PGPR;
所述外水相包括WPI和果胶;所述外水相中WPI的质量浓度为1.25~4.00%,果胶的质量浓度为1.25%,外水相的pH值为3.4~4.3或6.8~8.0。
7.根据权利要求6所述的G/O/W乳状液,其特征在于,所述油相中PGPR的质量浓度为2~8%。
8.根据权利要求6或7所述的G/O/W乳状液,其特征在于,所述油相中还包括脂溶性功能因子;所述脂溶性功能因子包括:α-生育酚、视黄醇、不饱和脂肪酸、辅酶Q10,类胡萝卜素、植物精油。
9.权利要求8所述G/O/W乳状液在构建水溶性和脂溶性功能因子共包埋输送体系中的应用。
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