CN112300291B - 一类高比活的融合木聚糖酶突变体及其应用 - Google Patents

一类高比活的融合木聚糖酶突变体及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明以枯草芽孢杆菌Bacillus subtilis Lucky9的扩张蛋白(Expansin)与木聚糖酶(Xylanase)的融合蛋白ERX为母本,采用分子生物技术进行氨基酸突变,得到一类高比活且热稳定性高的融合木聚糖酶突变体。所述突变体包括突变体M1(具有Q226H,G232R,S241P,N251D,S398C位点突变),突变体M2(具有Q226H,G232R,S241E,N251D,S398C位点突变),突变体M7(具有Q226H,N251D,S398C位点突变)。本发明所述突变体具有催化效率高、热稳定性好的优良性质,能够完全满足工业应用需求,将其应用于木聚糖的催化反应中能够提高产物低聚木糖的生产效率。

Description

一类高比活的融合木聚糖酶突变体及其应用
技术领域
本发明属于功能基因改造技术领域,具体涉及一类高比活的木聚糖酶突变体及其应用。
背景技术
低聚木糖是由2-7个木糖分子以β-1,4糖苷键结合而形成的功能性低聚糖,其中以木二糖、木三糖和木四糖为主要功能成分。低聚木糖是目前所有功能糖中性能最稳定、功能性最强、摄入量最少的益菌因子,其甜味纯正,增值双歧杆菌的功效是其他功能性寡糖类20倍以上。同时,难以为人体消化吸收,能量值几乎为零。因此,低聚木糖在食品、医药和饲料等领域有着广阔应用前景。
木聚糖广泛存在于玉米芯、甘蔗渣、麦麸、秸秆等农业废弃物,其碳骨架中的β-1,4-木糖苷键可通过木聚糖酶水解生产低聚木糖。
中国专利文献CN108570107A公开了将来自枯草芽孢杆菌Bacillus subtilisLucky9的扩张蛋白(Expansin)与木聚糖酶(Xylanase)进行融合,得到的融合蛋白EXCL-EK2-XYN(以下简称ERX)。该融合蛋白可显著增加木聚糖酶的吸附能力,且能打开木质纤维素的天然结构。所述融合蛋白通过吸附-催化耦合技术水解玉米芯,提高低聚木糖的制备效率。吸附融合蛋白后的玉米芯可直接用于低聚木糖的生产,在生产完成后,融合蛋白仍然保留在玉米芯上,这样的反应上清仅含有目标产物低聚木糖,通过一步简单离心即可获得高纯度的目标产物。但该融合蛋白的稳定性较差,应用于水解时较易染菌,不能完全满足工业化的需求。
发明内容
本发明针以现有技术融合木聚糖酶ERX基础,对其进行了探索与研究,获得了一类高比活的且热稳定性高的融合木聚糖酶突变体。
本发明具体技术方案如下:
一种融合木聚糖酶突变体,所述突变体在SEQ ID NO:1所示的融合木聚糖酶的氨基酸序列基础上具有Q226H、N251D和S398C位点突变。
进一步的,所述突变体还可以具有G232R、S241P或S241E中的一种或几种位点突变。
优选的,具有G232R和S241P位点突变或者G232R和S241E位点突变。
本发明另一目的在于提供一种DNA分子,所述DNA分子编码本发明所述的融合木聚糖酶突变体。
本发明另一目的在于提供一种融合木聚糖酶突变体的表达载体,表达如本发明所述的木聚糖酶突变体。所述表达载体,含有编码本发明所述的融合木聚糖酶突变体的DNA分子。
所述表达载体为质粒、噬菌体、病毒或宿主细胞。
所述宿主细胞为原核细胞或真核细胞,可以为大肠杆菌、酵母、芽孢杆菌、乳酸杆菌、曲霉或木霉,优选大肠杆菌。
本发明另一目的在于提供本发明所述的融合木聚糖酶突变体,DNA分子或融合木聚糖酶突变体的表达载体在木聚糖生物降解中的应用。可用于制备木二糖、木三糖、木四糖等。
具体的,所述木聚糖包括榉木木聚糖、可溶小麦阿拉伯木聚糖、桦木木聚糖、不可溶小麦阿拉伯木聚糖。
本发明优点:
本发明针对前期开发的融合木聚糖酶(中国专利文献CN108570107A)进行理性设计,改良酶学特性。获得的突变体M1、M2和M7对于榉木木聚糖的底物活性均明显高于融合木聚糖酶,其中M2提升幅度最为显著,为80.3%。
此外,现有技术下融合木聚糖酶ERX在40~70℃范围内保温2h后,酶活损失随温度升高而加剧。本发明进一步研究发现,本发明所述的融合木聚糖酶在50℃条件下保温2h后,活力仍有94%,各温度条件下孵育的突变体剩余酶活均高于原始酶。
将本发明所述融合木聚糖酶突变体应用于水解玉米芯制备低聚木糖,结果显示在酶解24h后融合木聚糖酶ERX还原糖产量上升趋势减缓,本发明所述融合木聚糖酶突变体的酶解速率明显大于原始酶,最终获得了8.13mg/mL还原糖,而木聚糖酶ERX仅产生了4.52mg/mL还原糖。这一结果表明,本发明所述木聚糖酶突变体比原始酶具有更高的水解能力,具有催化效率高、热稳定性好的优良性质,能够完全满足工业应用需求,将其应用于木聚糖的催化反应中能够提高产物低聚木糖的生产效率。
附图说明
构成本申请的一部分的附图用来提供对本发明的进一步理解,本发明的示意性实施例及其说明用于解释本发明,并不构成对本发明的不当限定。
图1为融合木聚糖酶ERX与突变体的SDS-PAGE电泳分析。
图2为突变体的相对水解活性分析。
图3为融合木聚糖酶ERX及其突变体M2的温度稳定性分析。
图4为融合木聚糖酶ERX和突变体M2降解玉米芯的时间曲线
具体实施方式
为了使本领域的技术人员更好地理解本发明方案,下面结合附图和实施实例对本发明做进一步说明。需要指出的是,本实施例仅用于解释本发明,而非对本发明范围的限制。显然,所描述的实施例仅仅是本发明的一部分实施例,而不是全部的实施例,基于本发明的实施例,本领域技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都应当属于本发明保护的范围。
实施例1融合木聚糖酶突变体工程菌的构建
本研究首先通过比对同家族蛋白氨基酸序列,利用FireProt在线工具和序列一致性原理预测了融合木聚糖酶(中国专利文献CN108570107A)的热稳定相关氨基酸位点,得到如下突变热点Y224,W225,Q226,G232,V238,S241,N251,S398,利用Accessible SurfaceArea and Accessibility Calculation for Protein(ver.1.2)在线服务器对突变前后的氨基酸残基进行计算,按突变位点与活性中心相对距离建库(库1-Y224/Q226/N251,库2-W225,库3-G232/S241,库4-S398)。所用的单点突变引物如下:
Primer Sequence(5'to 3')
Y224X-F AAAGCTAGCACAGACnnnTGGCAAAATTGGACT SEQ ID NO:3
Y224X-R AGTCCAATTTTGCCAnnnGTCTGTGCTAGCTTT SEQ ID NO:4
W225X-F GCTAGCACAGACTACTGGnnnAATTGGACTGAT SEQ ID NO:5
W225X-R ATCAGTCCAATTnnnCCAGTAGTCTGTGCTAGC SEQ ID NO:6
Q226X-F GCACAGACTACTGGnnnAATTGGACTGATGGG SEQ ID NO:7
Q226X-R CCCATCAGTCCAATTnnnCCAGTAGTCTGTGC SEQ ID NO:8
G232X-F AATTGGACTGATGGGnnnGGTATAGTAAACGCT SEQ ID NO:9
G232X-R AGCGTTTACTATACCnnnCCCATCAGTCCAATT SEQ ID NO:10
V238X-F GGTATAGTAAACGCTnnnAATGGGTCTGGCGGG SEQ ID NO:11
V238X-R CCCGCCAGACCCATTnnnAGCGTTTACTATACC SEQ ID NO:12
S241X-F AACGCTGTTAATGGGnnnGGCGGGAATTACAGT SEQ ID NO:13
S241X-R ACTGTAATTCCCGCCnnnCCCATTAACAGCGTT SEQ ID NO:14
N251X-F AGTGTTAATTGGTCTnnnACCGGAAATTTTGTT SEQ ID NO:15
N251X-R AACAAAATTTCCGGTnnnAGACCAATTAACACT SEQ ID NO:16
S398X-F GGATATCAAAGTAGTGGAnnnTCTAACGTAACAGTGTGG SEQ ID NO:17
S398X-R CCACACTGTTACGTTAGAnnnTCCACTACTTTGATATCC SEQ ID NO:18
nnn对应不同氨基酸的密码子如下:GCA(Ala)、TGT(Cys)、GAT(Asp)、GAA(Glu)、TTT(Phe)、GGC(Gly)、CAT(His)、ATT(Ile)、AAA(Lys)、CTG(Leu)、ATG(Met)、AAT(Asn)、CCG(Pro)、CAG(Gln)、CGT(Arg)、TCA(Ser)、ACA(Thr)、GTT(Val)、TGG(Trp)、TAT(Tyr)。
以融合木聚糖酶ERX的基因序列(SEQ ID NO:2)为模版,参照Vazyme生物产品及操作手册,使用上述引物对,全质粒扩增出定点突变序列。PCR产物使用Dpn I进行酶切处理,模板消化结束后,采用热激法转化至大肠杆菌感受态细胞E.coli BL21(DE3),并涂布于含有100μg/ml硫酸卡那霉素的LB琼脂平板上,37℃倒置培养过夜。突变结果由安徽通用生物公司进行序列测定完成验证。
对上述4个突变库中共计284株突变体进行筛选后得到如下突变:N251D/Q226H,N251D/Q226T,S241E/G232R,S241P/G232E,S398C。将得到的突变进行组合,得到12种组合方式:
突变体M1(Q226H,G232R,S241P,N251D,S398C);
突变体M2(Q226H,G232R,S241E,N251D,S398C);
突变体M3(Q226T,G232R,S241P,N251D,S398C);
突变体M4(Q226T,G232R,S241E,N251D,S398C);
突变体M5(Q226H,N251D,G232R,S241E);
突变体M6(Q226H,N251D,G232E,S241P);
突变体M7(Q226H,N251D,S398C);
突变体M8(Q226T,N251D,G232R,S241E)
突变体M9(Q226T,N251D,G232E,S241P)
突变体M10(Q226T,N251D,S398C);
突变体M11(G232R,S241E,S398C);
突变体M12(G232E,S241P,S398C)。
实施例2重组木聚糖酶突变体在大肠杆菌中的发酵
分别将实施例1构建的12种组合突变体以及原始酶ERX接种至含有100μg/mL硫酸卡那霉素的50mL的LB液体培养基中,37℃,180rpm过夜培养;以2%的接种量将种子液,接种至新鲜的50mL的LB液体培养基中,37℃,180rpm培养至OD600为0.6~1.0时,取出经冰水浴冷却5min,加入诱导剂IPTG(异丙基-β-D硫代半乳糖苷)(终浓度0.1mmol/L),20℃,150rpm诱导表达20h。
取诱导表达的发酵液,12000rpm离心20min,弃去上清,然后用50mM Na2HPO4-KH2PO4(pH 7.0)缓冲重悬清洗菌体,12000rpm离心20min,弃去上清,用缓冲再次重悬,然后超声破碎。破碎液离心12000rpm,20min,取上清进行SDS-PAGE电泳检测,浓缩胶浓度为4%,分离胶浓度为12.5%,样品与上样缓冲按照3:1的比例混合,沸水浴反应5min进行上样电泳。电泳仪设定初始电压为120V,当样品移动至分离胶时提高电压至230V,直至样品移动到电泳槽底部时结束电泳。
上述ERX各突变粗酶液SDS-PAGE电泳结果如图1所示,原始酶ERX的分子量为40kDa,诱导后各突变体都在40kDa处都有明显的条带,这与原始酶ERX的分子量一致,表明原始酶ERX和突变体成功诱导表达。
实施例3酶突变体的筛选程序
将实施例1中构建的带有突变基因的菌株按实施例2方法发酵培养,获得的融合蛋白及其突变体的粗酶液以榉木木聚糖为底物测定酶活变化,测定方法如下:
酶活力单位定义:一个酶活力单位即为在60℃,pH 7.0条件下,每分钟由底物产1mmol还原糖所需的酶量定义为一个活力单位。
木聚糖酶(Endo-glucanase):准确称取1g榉木木聚糖溶于100mL的Na2HPO4-KH2PO4缓冲中(50mM,pH 7.0),搅拌混匀,准确吸取1.0mL加入试管作为酶反应底物,60℃预热5min后加入已适当稀释的蛋白酶液0.5mL,放入60℃的水浴摇床反应10min,加入3mL的DNS(3,5-二硝基水杨酸)试剂,沸水浴反应5min后迅速冷却至室温,以灭活的酶反应液为对照,测定540nm波长下的吸光度值。
比酶活X=(还原糖含量/150/15)/n
其中:X---比酶活,U/mg
150------------还原糖从毫克转换为微摩尔
15------------反应时间
n------------反应蛋白含量,mg
以组合突变为例,原始酶ERX和各突变体的相对水解活性结果如图2所示。与原始酶相比,突变体M1、M2和M7对于榉木木聚糖的底物活性均明显提高,其中M2提升幅度最为显著,提高了80.3%,M1和M7分别提高21.7%和55.3%。突变体M4酶活无明显变化,其余组合突变体酶活均有不同程度的下降。
实施例4酶突变体的温度稳定性分析
为了测定突变体和原始酶的温度稳定性,将实施例3筛选得到的突变体M2的粗酶液分别放入40℃、45℃、50℃、60℃、70℃水浴锅中孵育2h后,取样按照实施例3中水解榉木木聚糖的方式测定其剩余的酶活力。融合蛋白ERX与突变体M2分别以0h最高的酶活为100%,依次计算相对酶活,绘制不同孵育条件下酶活的变化曲线。
结果如图3所示,原始酶ERX在40~70℃范围内保温2h后,酶活损失随温度升高而加剧。在40℃保温2h时,原始酶酶活损失最少,保留80%的酶活力,而突变体M2在50℃条件下保温2h后,活力仍有94%,各温度条件下孵育的突变体M2剩余酶活均高于原始酶,表明突变后的热稳定性好于原始酶。
实施例5酶突变体应用于水解玉米芯制备低聚木糖
将实施例3筛选得到的突变体M2的粗酶液应用于水解底物玉米芯制备低聚木糖。采用经过碱预处理的玉米芯,分别吸附原始融合蛋白和突变体,吸附条件参数为:玉米芯浓度5%,pH值7.0,温度20℃,时间30min。融合蛋白-玉米芯混合物经含有0.1%Tween-20的纯水清洗后,加入40mL纯水,在50℃,200rpm下反应水解72小时。每间隔6小时取出少量上清样品,通过用DNS法测定降解产生还原糖的量。
融合蛋白ERX和突变体M2降解玉米芯产生还原糖的时间曲线如图4所示。在酶解开始24h内,原始酶M2和突变体产生的还原糖浓度相近,在24h后原始酶还原糖产量上升趋势减缓,突变体M2的酶解速率明显大于原始酶,最终获得了8.13mg/mL还原糖,而原始酶产生了4.52mg/mL还原糖。这一结果表明,突变体M2比原始酶具有更高的水解能力,这可能是由于突变体M2具有更好的温度稳定性。因此,突变后的融合酶M2不仅保留了吸附纤维素类底物的能力,还提高了对木聚糖的热稳定性,使得突变体对木聚糖的水解能力大大提高,这将有利于降低低聚木糖生产的酶用量,从而降低整体的生产成本。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
序列表
<110> 南京工业大学
<120> 一类高比活的融合木聚糖酶突变体及其应用
<160> 18
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 404
<212> PRT
<213> 枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)
<400> 1
Met Ala Ala Tyr Asp Asp Leu His Glu Gly Tyr Ala Thr Tyr Thr Gly
1 5 10 15
Ser Gly Tyr Ser Gly Gly Ala Phe Leu Leu Asp Pro Ile Pro Ser Asp
20 25 30
Met Glu Ile Thr Ala Ile Asn Pro Ala Asp Leu Asn Tyr Gly Gly Val
35 40 45
Lys Ala Ala Leu Ala Gly Ser Tyr Leu Glu Val Glu Gly Pro Lys Gly
50 55 60
Lys Thr Thr Val Tyr Val Thr Asp Leu Tyr Pro Glu Gly Ala Arg Gly
65 70 75 80
Ala Leu Asp Leu Ser Pro Asn Ala Phe Arg Lys Ile Gly Asn Met Lys
85 90 95
Asp Gly Lys Ile Asn Ile Lys Trp Arg Val Val Lys Ala Pro Ile Thr
100 105 110
Gly Asn Phe Thr Tyr Arg Ile Lys Glu Gly Ser Ser Arg Trp Trp Ala
115 120 125
Ala Ile Gln Val Arg Asn His Lys Tyr Pro Val Met Lys Met Glu Tyr
130 135 140
Glu Lys Asp Gly Lys Trp Ile Asn Met Glu Lys Met Asp Tyr Asn His
145 150 155 160
Phe Val Ser Thr Asn Leu Gly Thr Gly Ser Leu Lys Val Arg Met Thr
165 170 175
Asp Ile Arg Gly Lys Val Val Lys Asp Thr Ile Pro Lys Leu Pro Glu
180 185 190
Ser Gly Thr Ser Lys Ala Tyr Thr Val Pro Gly His Val Gln Phe Pro
195 200 205
Glu Glu Ala Ala Ala Lys Glu Ala Ala Ala Lys Ala Ser Thr Asp Tyr
210 215 220
Trp Gln Asn Trp Thr Asp Gly Gly Gly Ile Val Asn Ala Val Asn Gly
225 230 235 240
Ser Gly Gly Asn Tyr Ser Val Asn Trp Ser Asn Thr Gly Asn Phe Val
245 250 255
Val Gly Lys Gly Trp Thr Thr Gly Ser Pro Phe Arg Thr Ile Asn Tyr
260 265 270
Asn Ala Gly Val Trp Ala Pro Asn Gly Asn Gly Tyr Leu Thr Leu Tyr
275 280 285
Gly Trp Thr Arg Ser Pro Leu Ile Glu Tyr Tyr Val Val Asp Ser Trp
290 295 300
Gly Thr Tyr Arg Pro Thr Gly Thr Tyr Lys Gly Thr Val Lys Ser Asp
305 310 315 320
Gly Gly Thr Tyr Asp Ile Tyr Thr Thr Thr Arg Tyr Asn Ala Pro Ser
325 330 335
Ile Asp Gly Asp Arg Thr Thr Phe Thr Gln Tyr Trp Ser Val Arg Gln
340 345 350
Thr Lys Arg Pro Thr Gly Ser Asn Ala Thr Ile Thr Phe Ser Asn His
355 360 365
Val Asn Ala Trp Lys Ser His Gly Met Asn Leu Gly Ser Asn Trp Ala
370 375 380
Tyr Gln Val Met Ala Thr Glu Gly Tyr Gln Ser Ser Gly Ser Ser Asn
385 390 395 400
Val Thr Val Trp
<210> 2
<211> 1212
<212> DNA
<213> 枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)
<400> 2
atggcggcat atgacgacct gcatgaaggt tatgcaacgt atacagggtc aggttattca 60
ggaggagctt tcctgctgga tcccattcct tccgatatgg agattactgc aataaatccg 120
gcggatctca attacggagg agtaaaagca gcacttgccg gctcttattt ggaagttgaa 180
gggccaaaag ggaaaacaac cgtatatgtt actgatcttt atcccgaagg cgctcgggga 240
gctcttgatc tgtcacctaa tgccttccgt aaaatcggca atatgaaaga cggaaaaatc 300
aatattaaat ggcgtgttgt caaagcccca atcaccggca atttcacgta ccggatcaaa 360
gaaggcagca gcaggtggtg ggcagcaatc caagtcagaa atcacaagta tcctgttatg 420
aaaatggaat atgaaaagga tggtaagtgg atcaacatgg agaaaatgga ctataaccat 480
tttgtgagta cgaatttagg tacaggctct ctcaaagtca gaatgactga catccgcgga 540
aaagttgtga aagacaccat tccaaagctg cctgaaagcg gaacgtccaa agcctataca 600
gtaccgggcc atgttcagtt tcctgaagaa gctgcggcaa aagaagctgc ggcaaaagct 660
agcacagact actggcaaaa ttggactgat gggggcggta tagtaaacgc tgttaatggg 720
tctggcggga attacagtgt taattggtct aataccggaa attttgttgt tggtaaaggt 780
tggactacag gttcgccatt taggacgata aactataatg ccggagtttg ggcaccgaat 840
ggcaatggat atttaacttt atatggttgg acgagatcac ctctcataga atattatgta 900
gtggattcat ggggtactta tagacctact ggaacgtata aaggtactgt aaaaagtgat 960
gggggtacat atgacatata tacaactaca cgttataacg caccttccat tgatggcgat 1020
cgcactactt ttacgcagta ctggagtgtt cgtcagacga agagaccaac tggaagcaac 1080
gctacaatca ctttcagcaa tcatgtgaac gcatggaaga gccatggaat gaatctgggc 1140
agtaattggg cttaccaagt catggcgaca gaaggatatc aaagtagtgg aagttctaac 1200
gtaacagtgtgg 1212
<210> 3
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
aaagctagca cagacnnntg gcaaaattgg act 33
<210> 4
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
agtccaattt tgccannngt ctgtgctagc ttt 33
<210> 5
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
gctagcacag actactggnn naattggact gat 33
<210> 6
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
atcagtccaa ttnnnccagt agtctgtgct agc 33
<210> 7
<211> 32
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
gcacagacta ctggnnnaat tggactgatg gg 32
<210> 8
<211> 32
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
cccatcagtc caattnnncc agtagtctgt gc 32
<210> 9
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
aattggactg atgggnnngg tatagtaaac gct 33
<210> 10
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
agcgtttact ataccnnncc catcagtcca att 33
<210> 11
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
ggtatagtaa acgctnnnaa tgggtctggc ggg 33
<210> 12
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
cccgccagac ccattnnnag cgtttactat acc 33
<210> 13
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
aacgctgtta atgggnnngg cgggaattac agt 33
<210> 14
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 14
actgtaattc ccgccnnncc cattaacagc gtt 33
<210> 15
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 15
agtgttaatt ggtctnnnac cggaaatttt gtt 33
<210> 16
<211> 33
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 16
aacaaaattt ccggtnnnag accaattaac act 33
<210> 17
<211> 39
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 17
ggatatcaaa gtagtggann ntctaacgta acagtgtgg 39
<210> 18
<211> 39
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 18
ccacactgtt acgttagann ntccactact ttgatatcc 39

Claims (9)

1.一种融合木聚糖酶突变体,其特征在于所述突变体是在 SEQ ID NO:1 所示的融合木聚糖酶的氨基酸序列基础上同时进行 Q226H、N251D 、S398C、G232R 和 S241E 五个位点突变得到的突变体。
2.一种DNA 分子,其特征在于,所述 DNA 分子编码权利要求 1所述的融合木聚糖酶突变体。
3.一种融合木聚糖酶突变体的表达载体,其特征在于表达权利要求 1所述的木聚糖酶突变体。
4.如权利要求 3所述的表达载体,其特征在于含有权利要求 2所述的 DNA 分子。
5.如权利要求4所述的表达载体,其特征在于所述表达载体为质粒或病毒。
6.一种表达融合木聚糖酶突变体的宿主细胞,其特征在于包含如权利要求2所述的DNA分子。
7.如权利要求6所述的宿主细胞,其特征在于所述宿主细胞为原核细胞或真核细胞。
8.如权利要求6所述的宿主细胞,其特征在于所述宿主细胞选自大肠杆菌、酵母、芽孢杆菌、乳酸杆菌、曲霉或木霉。
9.权利要求 1所述的融合木聚糖酶突变体、权利要求 2所述的 DNA 分子、权利要求3-5任一项所述的融合木聚糖酶突变体的表达载体或权利要求6-8任一项所述的表达融合木聚糖酶突变体的宿主细胞在木聚糖生物降解中的应用。
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WO2007115391A1 (en) * 2006-04-12 2007-10-18 National Research Council Of Cananda Modification of xylanases to increase thermophilicity, thermostability and alkalophilicity
CN108570107B (zh) * 2017-03-08 2021-12-28 南京工业大学 一种扩张蛋白和木聚糖酶融合蛋白、其编码基因和应用
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