CN111662952A - 口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法 - Google Patents

口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN111662952A
CN111662952A CN202010670985.4A CN202010670985A CN111662952A CN 111662952 A CN111662952 A CN 111662952A CN 202010670985 A CN202010670985 A CN 202010670985A CN 111662952 A CN111662952 A CN 111662952A
Authority
CN
China
Prior art keywords
sample
mask
bacteria
hemolytic streptococcus
bacterial suspension
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202010670985.4A
Other languages
English (en)
Inventor
石嵩
刘艳华
张惠媛
高欣
吕雨莎
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Beijing Customs Technology Center
Original Assignee
Beijing Customs Technology Center
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Beijing Customs Technology Center filed Critical Beijing Customs Technology Center
Priority to CN202010670985.4A priority Critical patent/CN111662952A/zh
Publication of CN111662952A publication Critical patent/CN111662952A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • C12Q1/14Streptococcus; Staphylococcus
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/04Preserving or maintaining viable microorganisms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/24Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia
    • G01N2333/245Escherichia (G)
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/305Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Micrococcaceae (F)
    • G01N2333/31Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Micrococcaceae (F) from Staphylococcus (G)
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/315Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Streptococcus (G), e.g. Enterococci
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/32Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Bacillus (G)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了一种口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法,首次采用口罩作为基质,添加目标菌和/或干扰菌制备阳性样品和阴性样品,与通常为冻干粉性质的微生物领域能力验证模拟样品不同的是,本发明可以提供一种可以复现检测流程的实物样品,为在一次性使用卫生用品微生物学能力验证的先例。该样品可用于实验室检测能力的评价,检测过程的质量控制、人员考核、方法验证等,填补了国内外空白。同时本发明的样品,均匀性、稳定性符合能力验证要求,避免口罩中溶血性链球菌检测样品中活的致病菌在运输、储存和测试等过程中可能发生变化的问题。另外本发明提供的制备方法,工艺简单,制备符合要求的样品成功率高。

Description

口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法
技术领域
本发明涉及微生物学检验质量控制技术领域,尤其涉及口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法。
背景技术
口罩属于一次性使用卫生用品,一次性使用卫生用品是指使用一次后即丢弃的、与人体直接或间接接触的、并为达到人体生理卫生或卫生保健(抗菌或抑菌)目的而使用的各种日常生活用品,以其易携带,使用简单而备受消费者青睐,已成为百姓日常生活中不可或缺的一部分。一次性使用卫生用品直接接触皮肤或黏膜,其质量好坏直接影响使用者的身体健康。
定性检测一次性使用卫生用品中微生物的能力,不仅可以直接反映出被微生物污染的程度,也是评价在生产过程中所用的原料、工具设备、工艺流程和操作者的卫生状况的必要手段,是对一次性使用卫生用品进行卫生学评价的综合依据。
由于一次性使用卫生用品微生物学检验领域的特殊性,国内外尚未有组织/机构制备以口罩为基质的乙型溶血性链球菌定性检测的实物样品,也没有相关的文献报道。
溶血性链球菌(β-hemolytic streptococcus)在自然界中分布较广,存在于水、空气、尘埃、粪便及健康人和动物的口腔、鼻腔、咽喉中,可通过直接接触、空气飞沫传播或通过皮肤、粘膜伤口感染,被污染的食品如奶、肉、蛋及其制品也会对人类进行感染。溶血性链球菌常可引起皮肤、皮下组织的化脓性炎症、呼吸道感染、流行性咽炎的爆发性流行以及新生儿败血症、细菌性心内膜炎、猩红热和风湿热、肾小球肾炎等变态反应。因此,急需一种口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品。
发明内容
本发明针对上述技术问题,提供了口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法,为一次性使用卫生用品的微生物学能力验证提供重要保证。
为了实现上述目的,本发明提供如下技术方案:
本发明首先提供了口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品,所述样品包括阴性样品和阳性样品,其中,阳性样品含有基质、目标菌和干扰菌,阴性样品含有基质和干扰菌;基质为口罩,目标菌为乙型溶血性链球菌(β-hemolytic streptococcus),干扰菌为英诺克李斯特氏菌(Listeria monocytogenes)、粪肠球菌(Enterococcus faecalis)、大肠埃希氏菌(Escherichia coli)、头状葡萄球菌(Staphylococcus capitis)、蕈状芽孢杆菌(Bacillus mycoides)中的一种或多种。
上述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品中,样品中的菌浓度为103-106cfu/mL。
上述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品中,所述阳性样品的目标菌与干扰菌按体积比1:2-3的比例混合成混合菌,添加至基质中。
上述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品中,所述样品为冻干样品,冻干保护剂含有体积分数为8-10%的海藻糖、体积分数为3-5%的谷氨酸钠、体积分数为0.5-3%的明胶以及体积分数为2-5%的牛血清白蛋白。
上述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品中,每个菌种与冻干保护剂的体积比均为1:9~3:7。
上述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品中,所述基质的处理方法为:取一次性口罩,剔除挂耳皮筋及金属鼻托部分,裁剪成小块,用热熔封口机重新封口制成可吸水的再制口罩,再制口罩灭菌后备用。
本发明还提供了上述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备方法,包括以下步骤:
S1、菌株复苏传代
将每种菌株进行复苏,并对复苏的菌株进行鉴定;
S2、菌株扩增
复苏后单一的活菌株在36℃±1℃温度下培养36h,用无菌生理盐水洗脱,并逐级稀释至浓度为103-106cfu/mL,按照1:9~3:7的比例与冻干保护剂混合,制成相应单一菌种的冻干菌悬液;
S3、菌悬液配制
阳性样品按目标菌的目标浓度102-105cfu/mL与干扰菌的每种菌目标浓度102-105CFU/mL配制菌悬液,按目标菌和干扰菌体积比1:2-3比例混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
阴性样品的干扰菌按每种菌目标浓度103-106CFU/mL等体积混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
S4、基质处理
取一次性口罩,剔除挂耳皮筋及金属鼻托部分,裁剪成小块,用热熔封口机重新封口制成可吸水的再制口罩,再制口罩灭菌后备用;
S5、冻干
将混合菌悬液滴加在每份口罩基质中,待口罩将液体完全吸收后将其装入样品瓶中冻干,得到冻干样品。
上述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备方法,步骤S1中将每种菌株分别接种至哥伦比亚血琼脂培养基,目标菌36℃±1℃温度下厌氧培养36h,干扰菌36℃±1℃温度下有氧培养36h。
上述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备方法,步骤S2的冻干保护剂含有体积分数为8-10%的海藻糖、体积分数为3-5%的谷氨酸钠、体积分数为0.5-3%的明胶以及体积分数为2-5%的牛血清白蛋白。
上述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备方法,步骤S5中冻干时间为40-50h。
与现有技术相比,本发明的有益效果为:
本发明的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品,首次采用口罩作为基质,添加目标菌和/或干扰菌制备阳性样品和阴性样品,与通常为冻干粉性质的微生物领域能力验证模拟样品不同的是,本发明可以提供一种可以复现检测流程的实物样品,为在一次性使用卫生用品微生物学能力验证的先例。该样品可用于实验室检测能力的评价,检测过程的质量控制、人员考核、方法验证等,填补了国内外空白。同时本发明的样品,均匀性、稳定性符合能力验证要求,避免口罩中溶血性链球菌检测样品中活的致病菌在运输、储存和测试等过程中可能发生变化的问题。另外本发明提供的制备方法,工艺简单,制备符合CNAS—GL03《能力验证样品均匀性和稳定性评价指南》要求的样品成功率高。
具体实施方式
本发明提供了口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品,所述样品包括阴性样品和阳性样品,其中,阳性样品含有基质、目标菌和干扰菌,阴性样品含有基质和干扰菌;目标菌就是考核样品的主要检测菌,干扰菌为目标菌生化相似或形态相似的细菌。能够准确分离并区分目标菌和背景菌为主要考核目标。
其中,基质为口罩,目标菌为乙型溶血性链球菌,干扰菌为英诺克李斯特氏菌、粪肠球菌、大肠埃希氏菌、头状葡萄球菌、蕈状芽孢杆菌中的一种或多种。本发明采用的乙型溶血性链球菌(CMCC 32210)购于CMCC(中国医学细菌保藏管理中心),英诺克李斯特氏菌(ATCC 33090)、粪肠球菌(ATCC 29212)、大肠埃希氏菌(ATCC 25922)、头状葡萄球菌(ATCC35661)、蕈状芽孢杆菌(ATCC 10206)均购于ATCC(美国模式培养物集存库)及CMCC(中国医学细菌保藏中心),保证了菌株的溯源性,以上菌株只作为本发明实施方式的示范性举例,均可换成等效菌株。
为了使本领域的技术人员更好地理解本发明的技术方案,下面将结合实施例对本发明作进一步的详细介绍。
实施例1口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备
包括以下步骤:
S1、菌株复苏传代
将每种菌株分别接种至哥伦比亚血琼脂培养基,目标菌36℃±1℃温度下厌氧培养36h,干扰菌36℃±1℃温度下有氧培养36h,并对复苏的菌株进行鉴定;
S2、菌株扩增
复苏后单一的活菌株在36℃±1℃温度下培养36h,此时目标菌乙型溶血性链球菌培养至稳定期,其他干扰菌培养至对数生长期末,稳定期与对数生长末期的细菌其生化特性较对数生长期的细菌更为典型,对冷冻干燥过程中机械性损伤抵抗能力较强,再用无菌生理盐水洗脱,并逐级稀释至菌含量为103cfu/mL,按照1:9的比例与冻干保护剂混合,制成相应单一菌种的冻干菌悬液;冻干保护剂含有体积分数为8%的海藻糖、体积分数为3%的谷氨酸钠、体积分数为0.5%的明胶以及体积分数为2%的牛血清白蛋白,用无菌水配置灭菌后使用,如用0.22μm孔径的无菌针式过滤器,过滤除菌2次后使用;
S3、菌悬液配制阳性样品按目标菌的目标浓度102cfu/mL与干扰菌的每种菌目标浓度102cfu/mL配制菌悬液,按目标菌和干扰菌体积比1:2比例混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
阴性样品的干扰菌按每种菌目标浓度103cfu/mL等体积混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
S4、基质处理
取一次性口罩,剔除挂耳皮筋及金属鼻托部分,裁剪成小块,用热熔封口机重新封口制成可吸水的再制口罩,再制口罩灭菌后备用;
S5、冻干
将混合菌悬液滴加在每份口罩基质中,待口罩将液体完全吸收后将其装入样品瓶(西林瓶)中开盖放入冻干机中,冻干40h,当样品冷冻干燥结束后,直接进行箱内加塞,关闭机器,样品瓶中样品为真空状态,关机后对胶塞外压制一次性可撕铝盖,得到冻干样品。冷冻干燥机参数按如下设置:冷冻速度1℃/min;早期冷冻点-1℃15min;冷冻温度-45℃;共熔点-31℃;加热温度15℃180min。启动冷冻干燥机,机器直接进入程序化的冷冻干燥过程,整个冻干过程40h。
S6、包装和储存
冻干样品放置在4℃的温度下保存。
实施例2口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备
包括以下步骤:
S1、菌株复苏传代
将每种菌株分别接种至哥伦比亚血琼脂培养基,目标菌36℃±1℃温度下厌氧培养36h,干扰菌36℃±1℃温度下有氧培养36h,并对复苏的菌株进行鉴定;
S2、菌株扩增
复苏后单一的活菌株在36℃±1℃下培养36h,用无菌生理盐水洗脱,并逐级稀释至浓度为105cfu/mL,按照2:8的比例与冻干保护剂混合,制成相应单一菌种的冻干菌悬液;冻干保护剂含有体积分数为9%的海藻糖、体积分数为4%的谷氨酸钠、体积分数为1%的明胶以及体积分数为3%的牛血清白蛋白,用无菌水配置灭菌后使用;
S3、菌悬液配制
阳性样品按目标菌的目标浓度104cfu/mL与干扰菌的每种菌目标浓度104cfu/mL配制菌悬液,按目标菌和干扰菌体积比1:2比例混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
阴性样品的干扰菌按每种菌目标浓度104cfu/mL等体积混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
S4、基质处理
取一次性口罩,剔除挂耳皮筋及金属鼻托部分,裁剪成小块,用热熔封口机重新封口制成可吸水的再制口罩,再制口罩灭菌后备用;
S5、冻干
将混合菌悬液滴加在每份口罩基质中,待口罩将液体完全吸收后将其装入样品瓶(西林瓶)中开盖放入冻干机中,冷冻干燥机参数通实施例1,冻干45h,当样品冷冻干燥结束后,直接进行箱内加塞,关闭机器,样品瓶中样品为真空状态,关机后对胶塞外压制一次性可撕铝盖,得到冻干样品。
S6、包装和储存
冻干样品放置在4℃的温度下保存。
实施例3口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备
包括以下步骤:
S1、菌株复苏传代
将每种菌株分别接种至哥伦比亚血琼脂培养基,目标菌36℃±1℃温度下厌氧培养36h,干扰菌36℃±1℃温度下有氧培养36h,并对复苏的菌株进行鉴定;
S2、菌株扩增
复苏后单一的活菌株在36℃±1℃温度下培养36h,用无菌生理盐水洗脱,并逐级稀释至浓度为106cfu/mL,按照3:7的比例与冻干保护剂混合,制成相应单一菌种的冻干菌悬液;冻干保护剂含有体积分数为10%的海藻糖、体积分数为5%的谷氨酸钠、体积分数为3%的明胶以及体积分数为5%的牛血清白蛋白,用无菌水配置灭菌后使用;
S3、菌悬液配制
阳性样品按目标菌的目标浓度105cfu/mL与干扰菌的每种菌目标浓度105cfu/mL配制菌悬液,按目标菌和干扰菌体积比1:3比例混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
阴性样品的干扰菌按每种菌目标浓度106cfu/mL等体积混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
S4、基质处理
取一次性口罩,剔除挂耳皮筋及金属鼻托部分,裁剪成小块,用热熔封口机重新封口制成可吸水的再制口罩,再制口罩灭菌后备用;
S5、冻干
将混合菌悬液滴加在每份口罩基质中,待口罩将液体完全吸收后将其装入样品瓶(西林瓶)中开盖放入冻干机中,冷冻干燥机参数通实施例1,冻干50h,当样品冷冻干燥结束后,直接进行箱内加塞,关闭机器,样品瓶中样品为真空状态,得到冻干样品。
S6、包装和储存
冻干样品放置在4℃的温度下保存。
实施例4口罩中溶血性链球菌均匀性和稳定性验证
对样品中目标菌的均匀性和稳定性检查是验证样品制备过程有效性的主要方法。检查样品均匀性和稳定性按照CNAS—GL03《能力验证样品均匀性和稳定性评价指南》进行。
所得样品均匀性和稳定性检测方法及结果如下:
分别随机选取实施例1的10个样品,涂布接种于使用哥伦比亚CAN血琼脂平板,厌氧培养,对目标菌进行计数,在重复条件测试2×10份样品的乙型溶血性链球菌。结果数据用方差分析法进行统计处理,统计步骤及结果如表1。
表1样品中乙型溶血性链球菌检测结果
Figure BDA0002582282090000081
表2样品中乙型溶血性链球菌方差分析统计结果
Figure BDA0002582282090000082
结论:F临界值F0.05(9,10)=3.02。计算得出的F值为1.38,样品F值<临界值,这表明在0.05显著水平时,该样品中目标菌的分布是均匀的。实施例2和3的所得样品的均匀性结果与实施例1近似。
稳定性采用两种类型的试验:一种是在贮存温度(4℃)下的稳定性试验,另一种是在高的温度(模拟样品的运输条件)下的稳定性试验,选用三个温度点,分别为25℃、36℃和42℃。随机取实施例2的样品,定期检测样品,针对不同温度点不同的保存时间测试3个样本,稳定性测试中样品的检测值与指定值均为一致时,则说明该能力验证样品的稳定性符合要求,同时确定在不同温度条件下符合该能力验证样品要求的最长保存时间。稳定性试验结果见下表3。
表3稳定性试验结果
Figure BDA0002582282090000091
结论:4℃低温储存120天和42℃高温储存20天,样品检测结果全部符合要求,稳定性好。
以上实施例仅用以说明本发明的技术方案,而非对其限制;尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明,本领域的普通技术人员应当理解:其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分技术特征进行等同替换,但这些修改或者替换,并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的精神和范围。

Claims (10)

1.口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品,其特征在于,包括阴性样品和阳性样品,其中,阳性样品含有基质、目标菌和干扰菌,阴性样品含有基质和干扰菌;基质为口罩,目标菌为乙型溶血性链球菌,干扰菌为英诺克李斯特氏菌、粪肠球菌、大肠埃希氏菌、头状葡萄球菌、蕈状芽孢杆菌中的一种或多种。
2.如权利要求1所述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品,其特征在于,样品中的菌浓度为103-106cfu/mL。
3.如权利要求1所述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品,其特征在于,所述阳性样品的目标菌与干扰菌按体积比1:2-3的比例混合成混合菌,添加至基质中。
4.如权利要求1所述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品,其特征在于,所述样品为冻干样品,冻干保护剂含有体积分数为8-10%的海藻糖、体积分数为3-5%的谷氨酸钠、体积分数为0.5-3%的明胶以及体积分数为2-5%的牛血清白蛋白。
5.如权利要求4所述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品,其特征在于,每个菌种与冻干保护剂的体积比均为1:9~3:7。
6.如权利要求1所述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品,其特征在于,所述基质的处理方法为:取一次性口罩,剔除挂耳皮筋及金属鼻托部分,裁剪成小块,用热熔封口机重新封口制成可吸水的再制口罩,再制口罩灭菌后备用。
7.如权利要求1所述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
S1、菌株复苏传代
将每种菌株进行复苏,并对复苏的菌株进行鉴定;
S2、菌株扩增
复苏后单一的活菌株在36℃±1℃温度下培养36h,用无菌生理盐水洗脱,并逐级稀释至菌浓度为103-106cfu/mL,按照1:9~3:7的比例与冻干保护剂混合,制成相应单一菌种的冻干菌悬液;
S3、菌悬液配制
阳性样品按目标菌的目标浓度102-105cfu/mL与干扰菌的每种菌目标浓度102-105cfu/mL配制菌悬液,按目标菌和干扰菌体积比1:2-3比例混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
阴性样品的干扰菌按每种菌目标浓度103-106cfu/mL等体积混合,制成混合菌悬液,置于磁力搅拌器上不断搅拌;
S4、基质处理
取一次性口罩,剔除挂耳皮筋及金属鼻托部分,裁剪成小块,用热熔封口机重新封口制成可吸水的再制口罩,再制口罩灭菌后备用;
S5、冻干
将混合菌悬液滴加在每份口罩基质中,待口罩将液体完全吸收后将其装入样品瓶中冻干,得到冻干样品。
8.如权利要求1所述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备方法,其特征在于,步骤S1中将每种菌株分别接种至哥伦比亚血琼脂培养基,目标菌36℃±1℃温度下厌氧培养36h,干扰菌36℃±1℃温度下有氧培养36h。
9.如权利要求1所述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备方法,其特征在于,步骤S2的冻干保护剂含有体积分数为8-10%的海藻糖、体积分数为3-5%的谷氨酸钠、体积分数为0.5-3%的明胶以及体积分数为2-5%的牛血清白蛋白。
10.如权利要求1所述的口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品的制备方法,其特征在于,步骤S5中冻干时间为40-50h。
CN202010670985.4A 2020-07-13 2020-07-13 口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法 Pending CN111662952A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010670985.4A CN111662952A (zh) 2020-07-13 2020-07-13 口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010670985.4A CN111662952A (zh) 2020-07-13 2020-07-13 口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN111662952A true CN111662952A (zh) 2020-09-15

Family

ID=72392695

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010670985.4A Pending CN111662952A (zh) 2020-07-13 2020-07-13 口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN111662952A (zh)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4532206A (en) * 1982-07-19 1985-07-30 Vitek Systems, Inc. β-Streptococcus selective medium
CN101423863A (zh) * 2008-11-27 2009-05-06 新疆出入境检验检疫局检验检疫技术中心 一种化妆品中链球菌的检验方法
CN107190048A (zh) * 2017-05-24 2017-09-22 中检科(北京)实验室能力评价有限公司 药品中金黄色葡萄球菌能力验证样品及其制备方法
EP3321370A1 (de) * 2016-11-11 2018-05-16 Justus-Liebig-Universität Gießen Erfindung betreffend die steigerung der beta-hämolyse von cdc-toxin produzierenden mikroorganismen

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4532206A (en) * 1982-07-19 1985-07-30 Vitek Systems, Inc. β-Streptococcus selective medium
CN101423863A (zh) * 2008-11-27 2009-05-06 新疆出入境检验检疫局检验检疫技术中心 一种化妆品中链球菌的检验方法
EP3321370A1 (de) * 2016-11-11 2018-05-16 Justus-Liebig-Universität Gießen Erfindung betreffend die steigerung der beta-hämolyse von cdc-toxin produzierenden mikroorganismen
CN107190048A (zh) * 2017-05-24 2017-09-22 中检科(北京)实验室能力评价有限公司 药品中金黄色葡萄球菌能力验证样品及其制备方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
孙晓霞等: "单核细胞增生李斯特氏菌能力验证样品的制备与验证", 《食品安全质量检测学报》 *
李贺扬等: "化妆品中致病菌检测能力验证样品制备技术研究", 《华南预防医学》 *
黎源倩: "《卫生检验学》", 30 June 2017, 中国协和医科大学出版社 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ries et al. Transtracheal aspiration in pulmonary infection
Schukken et al. Randomized clinical trial to evaluate the efficacy of a 5-day ceftiofur hydrochloride intramammary treatment on nonsevere gram-negative clinical mastitis
Mubarack et al. Antimicrobial drug susceptibility of Staphylococcus aureus from subclinical bovine mastitis in Coimbatore, Tamilnadu, South India
Saed et al. Antimicrobial profile of multidrug-resistant Streptococcus spp. isolated from dairy cows with clinical mastitis
Jacobson et al. Nasal carriage of toxigenic Staphylococcus aureus and prevalence of serum antibody to toxic-shock-syndrome toxin 1 in Utah
Abbas et al. Resistance of Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae isolated from different Sources to β-lactam Antibiotics
CN104511015B (zh) 一种疫苗组合物及其制备方法与应用
CN111662951A (zh) 棉签中大肠菌群定性检测能力验证样品及其制备方法
CN111690712A (zh) 口罩中金黄色葡萄球菌定性检测能力验证样品及其制备方法
Abro et al. 04. Antibiogram of the Micrococcus luteus, Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus intermediusisolated from the bovine frozen semen
CN111662952A (zh) 口罩中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法
Wang et al. Isolation, identification and characterization of Morganella morganii from Naja naja atra in Beijing, China
CN110819570A (zh) 一种血琼脂平板及其制备方法
CN111705105A (zh) 棉签中溶血性链球菌定性检测能力验证样品及其制备方法
CN111662949A (zh) 口罩中铜绿假单胞菌定性检测能力验证样品及其制备方法
CN111705104A (zh) 口罩中大肠菌群定性检测能力验证样品及其制备方法
CN111690711A (zh) 棉签中铜绿假单胞菌定性检测能力验证样品及其制备方法
CN114717150A (zh) 一种植物乳杆菌crs33及其应用
EDWIN et al. The bacterial profile of neonatal septicaemia in a rural hospital in south India
CN111705106A (zh) 棉签中金黄色葡萄球菌定性检测能力验证样品及其制备方法
Colebrook et al. The growth and death of wound bacteria in serum, exudate and slough
Blair Laboratory diagnosis of staphylococcal infections
Saleem et al. Antimicrobial Resistance Patterns among Bacterial Pathogens Isolated from Clinical Specimens in Sheikh Zaid Hospital, Lahore
Dong et al. Comparison of Different Media for the Quantitative Detection of Staphylococcus Aureus
Shah et al. Susceptibility pattern of pathogenic bacteria “Pseudomonas aeruginosa” to various antibiotics isolated from post-surgical wound of diabetic patient at Hayatabad Medical Complex (HMC) Peshawar: susceptibility pattern of pathogenic bacteria “Pseudomonas aeruginosa”

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20200915

RJ01 Rejection of invention patent application after publication