CN111304328A - 人exosc2基因的用途及相关产品 - Google Patents

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Abstract

本发明属于生物医药研究领域，具体涉及人EXOSC2基因作为靶标在制备结直肠癌治疗药物中的用途。本发明经过广泛而深入的研究发现，采用RNAi方法下调人EXOSC2基因的表达后可有效地抑制结直肠癌细胞的增殖、促进细胞凋亡，可以有效地控制结直肠癌的生长进程。本发明提供的siRNA或者包含该siRNA序列的核酸构建体、慢病毒能够特异性抑制结直肠癌细胞的增殖速率、促进结直肠癌细胞凋亡、抑制结直肠癌细胞克隆、抑制结直肠癌细胞侵袭转移，从而治疗结直肠癌，为结直肠癌治疗开辟新的方向。

Description

人EXOSC2基因的用途及相关产品
技术领域
本发明属于生物医药研究领域，具体涉及人EXOSC2基因的用途及相关产品。
背景技术
RNA外切体复合物(RNA exosome complex)简称外切酶，是由至少5种外切酶组成的复合物。
RNA外切体复合物2(EXOSC2)也称为核糖体RNA加工蛋白4(RRP4)，位于染色体Xp11.23，EXOSC2的错义突变会导致一种独特的综合征，包括色素性视网膜炎，听力下降和轻度智力障碍。致病性G198D突变会阻止EXOSC2与其他RNA外切体成分的结合，从而导致组成蛋白和复合物的不稳定性及自噬通路中关键基因表达和/或活性的改变。
EXOSC2是RNA外切体复合物的非催化组分，具有3’→5’核酸外切酶活性，参与细胞中RNA加工和降解过程。tRNA的上调可增强其同源密码子富集的转录本的稳定性和核糖体占有率。在细胞核内,RNA外切体复合物参与RNA(如rRNA,snRNA和snoRNA)的成熟过程；清除RNA加工中的副产品和非编码转录本，如反义RNA链，启动子上游转录本以及转录过程中生成的缺陷RNA，从而抑制或防止它们转运至细胞核。此外，tRNAGluUUC可能通过促进EXOSC2、GRIPAP1(构成由tRNA驱动的相关通路)的表达来促进肿瘤转移。
目前还未有EXOSC2基因用于结直肠癌治疗的相关报道。
发明内容
为了克服现有技术中所存在的问题，本发明的目的在于提供人EXOSC2基因的用途及相关产品。
为了实现上述目的以及其他相关目的，本发明采用如下技术方案：
本发明的第一方面，提供人EXOSC2基因作为靶标在制备结直肠癌治疗药物中的用途。
所述人EXOSC2基因作为靶标在制备结直肠癌治疗药物具体是指：将EXOSC2基因作为作用对象，对药物或制剂进行筛选，以找到可以抑制人EXOSC2基因表达的药物作为结直肠癌治疗备选药物。如本发明所述的EXOSC2基因小分子干扰RNA(siRNA)即是以人EXOSC2基因为作用对象筛选获得的，可用作具有抑制结直肠癌细胞增殖作用的药物。除此之外，诸如抗体药物，小分子药物等也可将EXOSC2基因作为作用对象。
所述结直肠癌治疗药物为能够特异性抑制EXOSC2基因的转录或翻译，或能够特异性抑制EXOSC2蛋白的表达或活性的分子，从而降低结直肠癌细胞中EXOSC2基因的表达水平，达到抑制结直肠癌细胞的增殖、生长、分化和/或存活的目的。
所述通过EXOSC2基因制备获得的结直肠癌治疗药物包括但不限于：核酸分子、碳水化合物、脂类、小分子化学药、抗体药、多肽、蛋白或干扰慢病毒。
所述核酸包括但不限于：反义寡核苷酸、双链RNA(dsRNA)、核酶、核糖核酸内切酶III制备的小干扰RNA或者短发夹RNA(shRNA)。
所述结直肠癌治疗药物的施用量为足够降低人EXOSC2基因的转录或翻译，或者足够降低人EXOSC2蛋白的表达或活性的剂量。以使人EXOSC2基因的表达至少被降低50％、80％、90％、95％或99％。
采用前述结直肠癌治疗药物治疗结直肠癌的方法，主要是通过降低人EXOSC2基因的表达水平抑制结直肠癌细胞的增殖来达到治疗的目的。具体的，治疗时，将能有效降低人EXOSC2基因表达水平的物质给药于患者。
在一种实施方式中，所述EXOSC2基因的靶标序列如SEQ ID NO：1所示。具体为：5’-GAAGCTCATTGCATCTGTT-3’。
本发明的第二方面，提供EXOSC2抑制剂在制备至少具备以下功效之一的产品中的用途：
治疗结直肠癌；
抑制结直肠癌细胞的增殖速率；
促进结直肠癌细胞凋亡；
抑制结直肠癌细胞克隆；
抑制结直肠癌细胞侵袭转移。
所述产品必然包括EXOSC2抑制剂，并以EXOSC2抑制剂作为前述功效的有效成分。
所述产品中，发挥前述功用的有效成分可仅为EXOSC2抑制剂，亦可包含其他可起到前述功用的分子。
亦即，EXOSC2抑制剂为所述产品的唯一有效成分或有效成分之一。
所述产品可以为单成分物质，亦可为多成分物质。
所述产品的形式无特殊限制，可以为固体、液体、凝胶、半流质、气雾等各种物质形式。
所述产品主要针对的对象为哺乳动物。所述哺乳动物优选为啮齿目动物、偶蹄目动物、奇蹄目动物、兔形目动物、灵长目动物等。所述灵长目动物优选为猴、猿或人。
所述产品包括但不限于药物、保健品、食品等。
所述EXOSC2抑制剂可以为核酸分子、抗体、小分子化合物。
如本发明实施例列举的，所述EXOSC2抑制剂可以为降低结直肠癌细胞中EXOSC2基因表达的核酸分子。具体的，可以是双链RNA或shRNA。
本发明的第三方面，提供了一种治疗结直肠癌的方法，为向对象施用EXOSC2抑制剂。
所述的对象可以为哺乳动物或哺乳动物的结直肠癌细胞。所述哺乳动物优选为啮齿目动物、偶蹄目动物、奇蹄目动物、兔形目动物、灵长目动物等。所述灵长目动物优选为猴、猿或人。所述结直肠癌细胞可以为离体结直肠癌细胞。
所述对象可以是罹患结直肠癌的患者或者期待治疗的结直肠癌的个体。或者所述对象为结直肠癌患者或者期待治疗结直肠癌的个体的离体结直肠癌细胞。
所述EXOSC2抑制剂可以在接受结直肠癌治疗前、中、后向对象施用。
本发明第四方面公开了一种降低结直肠癌细胞中EXOSC2基因表达的核酸分子，所述核酸分子包含双链RNA或shRNA。
其中，所述双链RNA中含有能够与EXOSC2基因杂交的核苷酸序列；
所述shRNA中含有能够与EXOSC2基因杂交的核苷酸序列。
进一步的，所述双链RNA包含第一链和第二链，所述第一链和所述第二链互补共同形成RNA二聚体，并且所述第一链的序列与EXOSC2基因中的靶序列基本相同。
所述EXOSC2基因中的靶序列即为核酸分子用于特异性沉默EXOSC2基因表达时，被所述核酸分子识别并沉默的mRNA片段所对应的EXOSC2基因中的片段。
进一步的，所述双链RNA的靶序列如SEQ ID NO：1所示。具体为：5’-GAAGCTCATTGCATCTGTT-3’。更进一步的，所述双链RNA第一链的序列如SEQ ID NO：2所示。具体为5’-GAAGCUCAUUGCAUCUGUU-3’。
进一步的，所述双链RNA为小干扰RNA(siRNA)。
SEQ ID NO：2为以SEQ ID NO:1所示的序列为RNA干扰靶序列设计的、针对人EXOSC2基因的小干扰RNA的一条链，另一条链即第二链的序列与第一链序列互补，该siRNA可以起到特异性沉默结直肠癌细胞中内源EXOSC2基因表达的作用。
所述shRNA包括正义链片段和反义链片段，以及连接所述正义链片段和反义链片段的茎环结构，所述正义链片段和所述反义链片段的序列互补，并且所述正义链片段的序列与EXOSC2基因中的靶序列基本相同。
进一步的，所述shRNA的靶序列如SEQ ID NO：1所示。
所述shRNA经酶切加工后可成为小干扰RNA(siRNA)进而起到特异性沉默结直肠癌细胞中内源EXOSC2基因表达的作用。
进一步的，所述shRNA的茎环结构的序列可选自以下任一：UUCAAGAGA、AUG、CCC、UUCG、CCACC、CTCGAG、AAGCUU和CCACACC。
更进一步的，所述shRNA的序列如SEQ ID NO：3所示。具体为5’-GAGAAGCUCAUUGCAUCUGUUCUCGAG AACAGAUGCAAUGAGCUUCUC-3’。
进一步的，所述EXOSC2基因来源于人。
本发明第五方面，公开了一种EXOSC2基因干扰核酸构建体，含有编码前述核酸分子中的shRNA的基因片段，能表达所述shRNA。
所述的EXOSC2基因干扰核酸构建体可以是将编码前述人EXOSC2基因shRNA的基因片段克隆入已知载体获得。
进一步的，所述EXOSC2基因干扰核酸构建体为EXOSC2基因干扰慢病毒载体。
本发明公开的EXOSC2基因干扰慢病毒载体是将编码前述EXOSC2基因shRNA的DNA片段克隆入已知载体获得，所述已知载体多为慢病毒载体，所述EXOSC2基因干扰慢病毒载体经过病毒包装成为有感染力的病毒颗粒后，感染结直肠癌细胞，进而转录出本发明所述shRNA，通过酶切加工等步骤，最终获得所述siRNA，用于特异性沉默EXOSC2基因的表达。
进一步的，所述EXOSC2基因干扰慢病毒载体还含有启动子序列和/或编码结直肠癌细胞中可被检测的标记物的核苷酸序列；较优的，所述可被检测的标记物如绿色荧光蛋白(GFP)。
进一步的，所述慢病毒载体可以选自：pLKO.1-puro、pLKO.1-CMV-tGFP、pLKO.1-puro-CMV-tGFP、pLKO.1-CMV-Neo、pLKO.1-Neo、pLKO.1-Neo-CMV-tGFP、pLKO.1-puro-CMV-TagCFP、pLKO.1-puro-CMV-TagYFP、pLKO.1-puro-CMV-TagRFP、pLKO.1-puro-CMV-TagFP635、pLKO.1-puro-UbC-TurboGFP、pLKO.1-puro-UbC-TagFP635、pLKO-puro-IPTG-1xLacO、pLKO-puro-IPTG-3xLacO、pLP1、pLP2、pLP/VSV-G、pENTR/U6、pLenti6/BLOCK-iT-DEST、pLenti6-GW/U6-laminshrna、pcDNA1.2/V5-GW/lacZ、pLenti6.2/N-Lumio/V5-DEST、pGCSIL-GFP或pLenti6.2/N-Lumio/V5-GW/lacZ中的任一。
本发明实施例具体列举了以pGCSIL-GFP为载体构建的人EXOSC2基因干扰慢病毒载体，命名为pGCSIL-GFP-EXOSC2-siRNA。
本发明的EXOSC2基因siRNA可用于抑制结直肠癌细胞的增殖，进一步地可以用作治疗结直肠癌的药物或制剂。EXOSC2基因干扰慢病毒载体则可用于制备所述EXOSC2基因siRNA。当用作治疗结直肠癌的药物或制剂时，是将安全有效量的所述核酸分子施用于哺乳动物。具体剂量还应考虑给药途径、病人健康状况等因素，这些都是熟练医师技能范围之内的。
本发明第六方面，公开了一种EXOSC2基因干扰慢病毒，由前述EXOSC2基因干扰核酸构建体在慢病毒包装质粒、细胞系的辅助下，经过病毒包装而成。该慢病毒可感染结直肠癌细胞并产生针对EXOSC2基因的小分子干扰RNA，从而抑制结直肠癌细胞的增殖。该EXOSC2基因干扰慢病毒可用于制备预防或治疗结直肠癌的药物。
本发明的第七方面，提供前述核酸分子，或前述EXOSC2基因干扰核酸构建体，或前述EXOSC2基因干扰慢病毒的用途，为：用于制备预防或治疗结直肠癌的药物，或用于制备降低结直肠癌细胞中EXOSC2基因表达的试剂盒。
所述预防或治疗结直肠癌的药物的应用为结直肠癌的治疗提供了一种方法，具体为一种预防或治疗对象体内结直肠癌的方法，包括将有效剂量的所述的药物施用于对象中。
进一步的，所述药物用于预防或治疗对象体内结直肠癌时，需要将有效剂量的所述的药物施用于对象中。采用该方法，所述结直肠癌的生长、增殖、复发和/或转移被抑制。进一步的，所述结直肠癌的生长、增殖、复发和/或转移的至少10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、95％或99％的部分被抑制。
所述方法的对象可以为人。
本发明的第八方面，提供一种用于预防或治疗结直肠癌的组合物，其有效物质含有：
前述的核酸分子；和/或，前述EXOSC2基因干扰核酸构建体；和/或，前述EXOSC2基因干扰慢病毒，以及药学上可接受的载体、稀释剂或赋形剂。
所述组合物可以为药物组合物。
当所述组合物用于预防或治疗对象体内结直肠癌时，需要将有效剂量的所述的组合物施用于对象中。采用该方法，所述结直肠癌的生长、增殖、复发和/或转移被抑制。进一步的，所述结直肠癌的生长、增殖、复发和/或转移的至少10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、95％或99％的部分被抑制。
所述组合物的形式无特殊限制，可以为固体、液体、凝胶、半流质、气雾等各种物质形式。
所述组合物主要针对的对象为哺乳动物。所述哺乳动物优选为啮齿目动物、偶蹄目动物、奇蹄目动物、兔形目动物、灵长目动物等。所述灵长目动物优选为猴、猿或人。
综上所述，本发明设计了针对人EXOSC2基因的RNAi靶点序列，构建相应的EXOSC2RNAi载体，其中RNAi载体pGCSIL-GFP-EXOSC2-siRNA能够显著下调EXOSC2基因在mRNA水平和蛋白水平的表达。使用慢病毒(lentivirus，简写为Lv)作为基因操作工具携带RNAi载体pGCSIL-GFP-EXOSC2-siRNA能够靶向地将针对EXOSC2基因的RNAi序列高效导入人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞，降低EXOSC2基因的表达水平，显著抑制上述肿瘤细胞的增殖能力。因此慢病毒介导的EXOSC2基因沉默是恶性肿瘤潜在的临床非手术治疗方式。
与现有技术相比，本发明具有如下有益效果：
本发明经过广泛而深入的研究发现，采用RNAi方法下调人EXOSC2基因的表达后可有效地抑制结直肠癌细胞的增殖、促进细胞凋亡，可以有效地控制结直肠癌的生长进程。本发明提供的siRNA或者包含该siRNA序列的核酸构建体、慢病毒能够特异性抑制结直肠癌细胞的增殖速率、促进结直肠癌细胞凋亡、抑制结直肠癌细胞克隆、抑制结直肠癌细胞侵袭转移，从而治疗结直肠癌，为结直肠癌治疗开辟新的方向。
附图说明
图1-1：RT-PCR法检测shEXOSC2慢病毒显著抑制人结直肠癌HCT116细胞中EXOSC2基因在mRNA水平的表达量，柱状结果以平均值±标准差显示。
图1-2：RT-PCR法检测shEXOSC2慢病毒显著抑制人结直肠癌RKO细胞中EXOSC2基因在mRNA水平的表达量，柱状结果以平均值±标准差显示。
图2-1：MTT实验检测EXOSC2基因对人结直肠癌HCT116细胞的增殖能力的影响。
图2-2：MTT实验检测EXOSC2基因对人结直肠癌RKO细胞的增殖能力的影响。
图3-1：细胞克隆形成法检测EXOSC2基因对人结直肠癌HCT116细胞增殖能力的影响，shRNA慢病毒感染人结直肠癌HCT116细胞，培养14天后，观察克隆数，图为数码相机记录图，右侧柱状结果以细胞克隆数量平均值±标准差显示。
图3-2：细胞克隆形成法检测EXOSC2基因对人结直肠癌HCT116细胞增殖能力的影响，shRNA慢病毒感染人结直肠癌HCT116细胞，培养14天后，观察克隆数，图为柱状结果，以细胞克隆数量平均值±标准差显示。
图3-3：细胞克隆形成法检测EXOSC2基因对人结直肠癌RKO细胞增殖能力的影响，shRNA慢病毒感染人结直肠癌RKO细胞，培养14天后，观察克隆数，图为数码相机记录图，右侧柱状结果以细胞克隆数量平均值±标准差显示。
图3-4：细胞克隆形成法检测EXOSC2基因对人结直肠癌RKO细胞增殖能力的影响，shRNA慢病毒感染人结直肠癌RKO细胞，培养14天后，观察克隆数，图为柱状结果，以细胞克隆数量平均值±标准差显示。
图4-1：Annexin V-APC流式细胞凋亡检测shEXOSC2对HCT116细胞凋亡的影响，为流式细胞凋亡示意图。
图4-2：Annexin V-APC流式细胞凋亡检测shEXOSC2对HCT116细胞凋亡的影响，柱状结果以细胞百分比平均值±标准差显示。
图4-3：Annexin V-APC流式细胞凋亡检测shEXOSC2对RKO细胞凋亡的影响，为流式细胞凋亡示意图。
图4-4：Annexin V-APC流式细胞凋亡检测shEXOSC2对RKO细胞凋亡的影响，柱状结果以细胞百分比平均值±标准差显示。
图5-1：划痕愈合实验检测shEXOSC2基因对HCT116细胞转移水平的影响。图为通过Celigo扫板获得迁移0h和48h后的图片。
图5-2：划痕愈合实验检测shEXOSC2基因对HCT116细胞迁移率的影响。
图5-3：划痕愈合实验检测shEXOSC2基因对RKO细胞转移水平的影响。图为通过Celigo扫板获得迁移0h和48h后的图片。
图5-4：划痕愈合实验检测shEXOSC2基因对RKO细胞迁移率的影响。
附图中，
柱形图代表三次实验的平均值，误差线表示标准偏差(SD)。
**,shCtrl与目的基因shRNA慢病毒处理组相比，P<0.01。
*,shCtrl与目的基因shRNA慢病毒处理组相比，0.01≤P<0.05。
具体实施方式
发明人发现，采用RNAi方法下调人EXOSC2基因的表达后可有效地抑制肿瘤细胞的增殖、促进细胞凋亡、降低肿瘤细胞的迁移能力等，可以有效地控制肿瘤的生长进程，这一研究成果表明EXOSC2基因是原癌基因，可作为肿瘤治疗的靶点。发明人进一步合成和测试了多种针对EXOSC2基因的siRNA，筛选出了可有效抑制EXOSC2的表达进而抑制人结肠癌HCT116细胞、RKO细胞的增殖和生长的siRNA，在此基础上完成了本发明。
EXOSC2抑制剂
指对于EXOSC2具有抑制效果的分子。对于EXOSC2具有抑制效果包括但不限于：抑制EXOSC2的表达或活性。
抑制EXOSC2活性是指使EXOSC2活力下降。优选地，相比抑制前，EXOSC2活力下降至少10％，较佳的降低至少30％，再佳的降低至少50％，更佳的降低至少70％，最佳的降低至少90％。
抑制EXOSC2表达具体的可以是抑制EXOSC2基因的转录或翻译，具体的，可以是指：使EXOSC2的基因不转录，或降低EXOSC2的基因的转录活性，或者使EXOSC2的基因不翻译，或降低EXOSC2的基因的翻译水平。
本领域技术人员可以使用常规方法对EXOSC2的基因表达进行调节，如基因敲除、同源重组，干扰RNA等。
EXOSC2的基因表达的抑制可以通过PCR及Western Blot检测表达量验证。
优选地，与野生型相比，EXOSC2基因表达降低至少10％，较佳的降低至少30％，再佳的降低至少50％，更佳的降低至少70％，又佳的降低至少90％，最佳地EXOSC2基因完全没有表达。
小分子化合物
本发明中指由几个或几十个原子组成，分子质量在1000以下的化合物。
制备预防或治疗结直肠癌的药物
可以利用降低结直肠癌细胞中EXOSC2基因表达的核酸分子；和/或，EXOSC2基因干扰核酸构建体；和/或，EXOSC2基因干扰慢病毒，作为有效成分，制备预防或治疗结直肠癌的药物。通常，所述药物中除了有效成分外，根据不同剂型的需要，还会包括一种或多种药学上可接受的载体或辅料。
“药学上可接受的”是指当分子本体和组合物适当地给予动物或人时，它们不会产生不利的、过敏的或其它不良反应。
“药学上可接受的载体或辅料”应当与所述有效成分相容，即能与其共混而不会在通常情况下大幅度降低药物的效果。可作为药学上可接受的载体或辅料的一些物质的具体例子是糖类，如乳糖、葡萄糖和蔗糖；淀粉，如玉米淀粉和土豆淀粉；纤维素及其衍生物，如甲基纤维素钠、乙基纤维素和甲基纤维素；西黄蓍胶粉末；麦芽；明胶；滑石；固体润滑剂，如硬脂酸和硬脂酸镁；硫酸钙；植物油，如花生油、棉籽油、芝麻油、橄榄油、玉米油和可可油；多元醇，如丙二醇、甘油、山梨糖醇、甘露糖醇和聚乙二醇；海藻酸；乳化剂，如Tween；润湿剂，如月桂基硫酸钠；着色剂；调味剂；压片剂、稳定剂；抗氧化剂；防腐剂；无热原水；等渗盐溶液；和磷酸盐缓冲液等。这些物质根据需要用于帮助配方的稳定性或有助于提高活性或它的生物有效性或在口服的情况下产生可接受的口感或气味。
本发明中，除非特别说明，药物剂型并无特别限定，可以被制成针剂、口服液、片剂、胶囊、滴丸、喷剂等剂型，可通过常规方法进行制备。药物剂型的选择应与给药方式相匹配。
在进一步描述本发明具体实施方式之前，应理解，本发明的保护范围不局限于下述特定的具体实施方案；还应当理解，本发明实施例中使用的术语是为了描述特定的具体实施方案，而不是为了限制本发明的保护范围。下列实施例中未注明具体条件的试验方法，通常按照常规条件，或者按照各制造商所建议的条件。
当实施例给出数值范围时，应理解，除非本发明另有说明，每个数值范围的两个端点以及两个端点之间任何一个数值均可选用。除非另外定义，本发明中使用的所有技术和科学术语与本技术领域技术人员通常理解的意义相同。除实施例中使用的具体方法、设备、材料外，根据本技术领域的技术人员对现有技术的掌握及本发明的记载，还可以使用与本发明实施例中所述的方法、设备、材料相似或等同的现有技术的任何方法、设备和材料来实现本发明。
除非另外说明，本发明中所公开的实验方法、检测方法、制备方法均采用本技术领域常规的分子生物学、生物化学、染色质结构和分析、分析化学、细胞培养、重组DNA技术及相关领域的常规技术。
实施例1针对人EXOSC2基因RNAi慢病毒的制备
1.筛选针对人EXOSC2基因的有效的siRNA靶点
从Genbank调取EXOSC2(NM_014285)基因信息；设计针对EXOSC2基因的有效的siRNA靶点。表1-1列出了筛选出的针对EXOSC2基因的有效siRNA靶点序列。
表1-1靶向于人EXOSC2基因的siRNA靶点序列
SEQ ID NO TargetSeq(5’-3’)
1 GAAGCTCATTGCATCTGTT
2.慢病毒载体的制备
针对siRNA靶点(以SEQ ID NO：1为例)合成两端含Age I和EcoR I酶切位点粘端的双链DNAOligo序列(表1-2)；以Age I和EcoR I限制性内切酶作用于pGCSIL-GFP载体(上海吉凯基因化学技术有限公司提供)，使其线性化，琼脂糖凝胶电泳鉴定酶切片段。
表1-2两端含Age I和EcoR I酶切位点粘端的双链DNA Oligo
Figure BDA0002390139710000101
通过T4 DNA连接酶将双酶切线性化(酶切体系如表1-4所示，37℃，反应1h)的载体DNA和纯化好的双链DNA Oligo连接，在适当的缓冲体系(连接体系如表1-5所示)中于16℃连接过夜，回收连接产物。将连接产物转化氯化钙制备的新鲜的大肠杆菌感受态细胞(转化操作参考：分子克隆实验指南第二版55-56页)。在连接转化产物长出菌克隆表面沾一下，溶于10μl LB培养基，混匀取1μl作为模板；在以慢病毒载体中RNAi序列的上下游，设计通用PCR引物，上游引物序列：5’-CCTATTTCCCATGATTCCTTCATA-3’(SEQ ID NO：6)；下游引物序列：5’-GTAATACGGTTATCCACGCG-3’(SEQ ID NO：7)，进行PCR鉴定实验(PCR反应体系如表1-6，反应条件如表1-7)。对PCR鉴定阳性的克隆进行测序和比对分析，比对正确的克隆即为构建成功的针对SEQ ID NO：1的表达RNAi的载体，命名为pGCSIL-GFP-EXOSC2-siRNA。
构建pGCSIL-GFP-Scr-siRNA阴性对照质粒，阴性对照siRNA靶序列为5’-TTCTCCGAACGTGTCACGT-3’(SEQ ID NO：8)。构建pGCSIL-GFP-Scr-siRNA阴性对照质粒时，针对Scr siRNA靶点合成两端含Age I和EcoR I酶切位点粘端的双链DNA Oligo序列(表1-3)，其余构建方法、鉴定方法及条件均同pGCSIL-GFP-EXOSC2-siRNA。
表1-3两端含Age I和EcoR I酶切位点粘端的双链DNA Oligo
Figure BDA0002390139710000102
表1-4 pGCSIL-GFP质粒酶切反应体系
试剂 体积(μl)
pGCSIL-GFP质粒(1μg/μl) 2.0
10×buffer 5.0
100×BSA 0.5
Age I(10U/μl) 1.0
EcoR I(10U/μl) 1.0
dd H<sub>2</sub>O 40.5
Total 50.0
表1-5载体DNA和双链DNA Oligo连接反应体系
试剂 阳性对照(μl) 自连对照(μl) 连接组(μl)
线性化的载体DNA(100ng/μl) 1.0 1.0 1.0
退火的双链DNA Oligo(100ng/μl) 1.0 - 1.0
10×T4噬菌体DNA连接酶缓冲液 1.0 1.0 1.0
T4噬菌体DNA连接酶 1.0 1.0 1.0
dd H<sub>2</sub>O 16.0 17.0 16.0
Total 20.0 20.0 20.0
表1-6-1 PCR反应体系
试剂 体积(μl)
10×buffer 2.0
dNTPs(2.5mM) 0.8
上游引物 0.4
下游引物 0.4
Taq聚合酶 0.2
模板 1.0
ddH<sub>2</sub>O 15.2
Total 20.0
表1-7 PCR反应体系程序设定
Figure BDA0002390139710000111
3.包装EXOSC2-siRNA慢病毒
以Qiagen公司的质粒抽提试剂盒提取RNAi质粒pGCSIL-GFP-EXOSC2-siRNA的DNA，配制成100ng/μl储存液。
转染前24h，用胰蛋白酶消化对数生长期的人胚肾细胞293T细胞，以含10％胎牛血清的DMEM完全培养基调整细胞密度为1.5×105细胞/ml，接种于6孔板，37℃，5％CO2培养箱内培养。待细胞密度达70％-80％时即可用于转染。转染前2h，吸出原有培养基，加入1.5ml新鲜的完全培养基。按照Sigma-aldrich公司的MISSION Lentiviral Packaging Mix试剂盒的说明，向一灭菌离心管中加入Packing Mix(PVM)20μl，PEI 12μl，无血清DMEM培养基400μl，取20μl上述抽提的质粒DNA，加至上述PVM/PEI/DMEM混合液。
将上述转染混和物在室温下孵育15min，转移至人胚肾细胞293T细胞的培养基中，37℃，5％CO2培养箱内培养16h。弃去含有转染混和物的培养介质，PBS溶液洗涤，加入完全培养基2ml，继续培养48h。收集细胞上清液，Centricon Plus-20离心超滤装置(Millipore)纯化和浓缩慢病毒，步骤如下：(1)4℃，4000g离心10min，除去细胞碎片；(2)0.45μm滤器过滤上清液于40ml超速离心管中；(3)4000g离心，10-15min，至需要的病毒浓缩体积；(4)离心结束后，将过滤杯和下面的滤过液收集杯分开，将过滤杯倒扣在样品收集杯上，离心2min离心力不超过1000g；(5)把离心杯从样品收集杯上移开，样品收集杯中的即为病毒浓缩液。将病毒浓缩液分装后于-80摄氏度保存。病毒浓缩液中含有的siRNA的第一链的序列如SEQ IDNO:2所示。对照慢病毒的包装过程同EXOSC2-siRNA慢病毒，仅以pGCSIL-GFP-Scr-siRNA载体代替pGCSIL-GFP-EXOSC2-siRNA载体。
实施例2实时荧光定量RT-PCR法检测基因的沉默效率
处于对数生长期的人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞进行胰酶消化，制成细胞悬液(细胞数约为5×104/ml)接种于6孔板中，培养至细胞融合度达到约30％。根据侵染复数值(MOI，HCT116:10，RKO：10)，加入适宜量的实施例1制备的慢病毒，培养24h后更换培养基，待侵染时间达到5天后，收集细胞。根据Invitrogen公司的Trizol操作说明书，抽提总RNA。根据Promega公司的M-MLV操作说明书，将RNA逆转录获得cDNA(逆转录反应体系见表2-1，42℃反应1h，然后在70℃水浴锅中水浴10min使逆转录酶失活)。
采用TP800型Real time PCR仪(TAKARA)进行实时定量检测。EXOSC2基因的引物如下：上游引物5’-TGATACCAGCATCCTGTAC-3’(SEQ ID NO：11)和下游引物5’-GTGTTTCCATCACAATCTC-3’(SEQ ID NO：12)。以管家基因GAPDH为内参，引物序列如下：上游引物5’-TGACTTCAACAGCGACACCCA-3’(SEQ ID NO：13)和下游引物5’-CACCCTGTTGCTGTAGCCAAA-3’(SEQ ID NO：14)。按表2-2中的比例配置反应体系。
表2-1逆转录反应体系
试剂 体积(μl)
5×RT buffer 4.0
10mM dNTPs 2.0
RNasin 0.4
M-MLV-RTase 1.0
RNase-Free 2.6
Total 10.0
表2-2 Real-time PCR反应体系
试剂 体积(μl)
SYBR premix ex taq: 6.0
引物MIX(5μM)： 0.3
cDNA 0.6
ddH<sub>2</sub>O 5.1
Total 12.0
设定程序为两步法Real-time PCR：预变性95℃，30s；之后每一步变性95℃，5s；退火延伸60℃，30s；共进行40个循环。每次在延伸阶段读取吸光值。PCR结束后，95℃变性15s，然后冷却至60℃，使DNA双链充分结合。从60℃开始到95℃，每一步增加0.5℃，保持4s,同时读取吸光值，制作熔解曲线。采用2-ΔΔCt分析法计算侵染了EXOSC2 mRNA的表达丰度。侵染对照病毒的细胞作为对照。实验结果如图1-1和图1-2所示，表明人结直肠癌HCT116细胞中EXOSC2 mRNA的表达水平下调了62.9％，表明人结直肠癌RKO细胞中EXOSC2 mRNA的表达水平下调了83.2％。
实施例3检测侵染了EXOSC2-siRNA慢病毒的肿瘤细胞的增殖能力(MTT实验)
处于对数生长期的人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞进行胰酶消化，制成细胞悬液(细胞数约为5×104/ml)接种于6孔板中，培养至细胞融合度达到约30％。根据侵染复数(MOI，HCT116:10，RKO：10)，加入适宜量的病毒，培养24h后更换培养基，收集处于对数生长期的各实验组细胞胰酶消化后，完全培养基重悬成细胞悬液，并计数。根据细胞生长快慢决定铺板细胞密度(2500cell/well)，每组3-5重复，统一铺好后，待细胞完全沉淀下来后，在显微镜下观察各实验组的细胞密度，如果密度不均匀，则固定一组，微调其他组细胞的量再次铺板(如：发现Con组细胞较多，降低细胞量再次铺板)，放入细胞培养箱中培养。从铺板后第二天开始，培养终止前4h加入20μL 5mg/mL的MTT于孔中，无需换液。4h后完全吸去培养液，注意不要吸掉孔板底部的甲瓒颗粒，加100μLDMSO溶解甲瓒颗粒。振荡器振荡2-5min，酶标仪490/570nm检测OD值。数据统计分析。
实验结果如图2-1和图2-2所示，检测侵染了EXOSC2-siRNA慢病毒的人结直肠癌HCT116细胞的细胞活力下降比例为45.64％；结直肠癌RKO细胞的细胞活力下降比例：40.28％。
实施例4侵染EXOSC2-siRNA慢病毒的肿瘤细胞克隆形成能力的检测
将人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞胰酶消化后接种于12孔板中，细胞密度为10-15％。第二天换为新鲜的培养基，内含5ug/ml polybrene。将EXOSC2-siRNA慢病毒按照侵染复数(MOI，HCT116:10，RKO：10)加入到培养板中，感染12-24h后换新鲜的培养基。感染72h后，荧光显微镜下观察荧光，感染效率达到80％。
将处于对数生长期的感染病毒后的细胞胰酶消化后，完全培养基重悬成细胞悬液；细胞计数后接种于6孔板中(600个细胞/孔)，将接种好的细胞于培养箱中继续培养到10天，中途隔3day进行换液并观察细胞状态；实验终止前荧光显微镜下对细胞克隆进行拍照；实验终止时用多聚甲醛固定细胞，PBS洗涤细胞后，Giemsa染色，拍照。
结果如图3-1、图3-2、图3-3和图3-4所示，与对照干扰(NC组)相比，RNA干扰降低EXOSC2基因的表达(KD组)后，人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞形成的克隆斑数目显著减少、克隆斑的体积明显减小；表明EXOSC2基因沉默导致人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞形成克隆的能力下降。平板克隆形成实验检测降低EXOSC2基因的表达后，人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞的克隆形成能力下降。
实施例5侵染EXOSC2-siRNA慢病毒的肿瘤细胞凋亡水平检测(FACS细胞凋亡检测)
人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞胰酶消化后接种于12孔板中，细胞密度为10-15％。第二天换为新鲜的培养基，内含5ug/ml polybrene。将EXOSC2-siRNA慢病毒按照侵染复数MOI，HCT116:10，RKO：10加入到培养板中，感染12-24h后换新鲜的培养基。感染72h后，荧光显微镜下观察荧光，感染效率达到90％。
将处于对数生长期的细胞胰酶消化后，完全培养基重悬成细胞悬液；与上清细胞收集于同一5mL离心管中，每组设三个复孔(为保证上机细胞数足够，细胞数目≥5×105/处理)。1300rmp离心5min，弃上清，4℃预冷的PBS洗涤细胞沉淀。1×binding buffer(eBioscience,88-8007)洗涤细胞沉淀一次，1300rmp、3min离心，收集细胞。200μL 1×binding buffer重悬细胞沉淀。加入10μL Annexin V-APC(eBioscience,88-8007)染色，室温避光10-15min。根据细胞量，补加400-800μL 1×binding buffer，上流式细胞仪进行检测。对结果进行分析。如图4-1、图4-2、图4-3和图4-4所示，Annexin V单染法检测降低EXOSC2基因的表达后，人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞的细胞凋亡比例的变化。发现下调基因表达后人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞的凋亡比例增加。与对照干扰(NC组)，RNA干扰降低EXOSC2基因的表达(KD组)后，凋亡肿瘤细胞数显著增多；表明EXOSC2基因沉默导致人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞凋亡。
实施例6侵染慢病毒的肿瘤细胞转移水平检测(划痕愈合实验)
按照实验设计的组别，在孔中加入约3×104个感染后的人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞，以次日细胞达到90％以上汇合度为准。第二天换低浓度血清培养基，使用划痕仪对准96孔板的下端中央部位，向上轻推形成划痕。使用无血清培养基轻轻漂洗2-3遍，加入低浓度血清培养基(如0.5％FBS)，拍照。37℃、5％CO2培养箱培养，根据预实验选择合适的时间点拍照(一般可选择0h、8h、16h、24h等)。荧光显微镜拍照(以96孔中心阴影区域为参照，划痕在图片的正中。根据划痕后的图片，计算各组细胞迁移率。
结果如图5-1、图5-2、图5-3和图5-4所示，与对照干扰(NC组)相比，RNA干扰降低EXOSC2基因的表达(KD组)后，发现下调EXOSC2基因表达后人结直肠癌HCT116细胞、结直肠癌RKO细胞的转移能力降低。
以上所述，仅为本发明的较佳实施例，并非对本发明任何形式上和实质上的限制，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员，在不脱离本发明方法的前提下，还将可以做出若干改进和补充，这些改进和补充也应视为本发明的保护范围。凡熟悉本专业的技术人员，在不脱离本发明的精神和范围的情况下，当可利用以上所揭示的技术内容而做出的些许更动、修饰与演变的等同变化，均为本发明的等效实施例；同时，凡依据本发明的实质技术对上述实施例所作的任何等同变化的更动、修饰与演变，均仍属于本发明的技术方案的范围内。
序列表
<110> 唐蔚
<120> 人EXOSC2基因的用途及相关产品
<160> 14
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
gaagctcatt gcatctgtt 19
<210> 2
<211> 19
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
gaagcucauu gcaucuguu 19
<210> 3
<211> 48
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
gagaagcuca uugcaucugu ucucgagaac agaugcaaug agcuucuc 48
<210> 4
<211> 58
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
ccgggagaag ctcattgcat ctgttctcga gaacagatgc aatgagcttc tctttttg 58
<210> 5
<211> 58
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
aattcaaaaa gagaagctca ttgcatctgt tctcgagaac agatgcaatg agcttctc 58
<210> 6
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
cctatttccc atgattcctt cata 24
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
gtaatacggt tatccacgcg 20
<210> 8
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
ttctccgaac gtgtcacgt 19
<210> 9
<211> 54
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
ccggttctcc gaacgtgtca cgtctcgaga cgtgacacgt tcggagaatt tttg 54
<210> 10
<211> 54
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
aattcaaaaa ttctccgaac gtgtcacgtc tcgagacgtg acacgttcgg agaa 54
<210> 11
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 11
tgataccagc atcctgtac 19
<210> 12
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 12
gtgtttccat cacaatctc 19
<210> 13
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
tgacttcaac agcgacaccc a 21
<210> 14
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 14
caccctgttg ctgtagccaa a 21

Claims (10)

1.人EXOSC2基因作为靶标在制备结直肠癌治疗药物中的用途。
2.EXOSC2抑制剂在制备至少具备以下功效之一的产品中的用途：
治疗结直肠癌；
抑制结直肠癌细胞的增殖能力；
促进结直肠癌细胞凋亡；
抑制结直肠癌细胞克隆；
抑制结直肠癌细胞侵袭转移。
3.如权利要求2所述的用途，其特征在于，还包括以下特征中的一项或多项：
1)所述EXOSC2抑制剂是指对EXOSC2具有抑制效果的分子；
2)所述EXOSC2抑制剂为产品的唯一有效成分或有效成分之一；
3)所述EXOSC2抑制剂选自双链RNA、shRNA、抗体或小分子化合物。
4.如权利要求3所述的用途，其特征在于，还包括以下特征中的一项或多项：
1)所述shRNA或双链RNA靶序列如SEQ ID NO：1所示；
2)所述双链RNA包含第一链和第二链，所述第一链和所述第二链互补共同形成RNA二聚体，所述第一链的序列如SEQ ID NO：2所示；
3)所述shRNA的核苷酸序列如SEQ ID NO：3所示。
5.一种降低结直肠癌细胞中EXOSC2基因表达的核酸分子，所述核酸分子包含：
a.双链RNA，所述双链RNA中含有能够与EXOSC2基因杂交的核苷酸序列；或者
b.shRNA，所述shRNA中含有能够与EXOSC2基因杂交的核苷酸序列；
其中，所述双链RNA包含第一链和第二链，所述第一链和所述第二链互补共同形成RNA二聚体，并且所述第一链的序列与EXOSC2基因中的靶序列基本相同；所述shRNA包括正义链片段和反义链片段，以及连接所述正义链片段和反义链片段的茎环结构，所述正义链片段和所述反义链片段的序列互补，并且所述正义链片段的序列与EXOSC2基因中的靶序列基本相同。
6.如权利要求5所述的降低结直肠癌细胞中EXOSC2基因表达的核酸分子，其特征在于，还包括以下特征中的一项或多项：
1)所述shRNA或双链RNA靶序列如SEQ ID NO：1所示；
2)所述双链RNA为siRNA，所述siRNA的第一链的序列如SEQ ID NO：2所示；
3)所述shRNA的核苷酸序列如SEQ ID NO：3所示。
7.一种EXOSC2基因干扰核酸构建体，含有编码权利要求5-6任一权利要求所述核酸分子中的shRNA的基因片段，能表达所述shRNA。
8.一种EXOSC2基因干扰慢病毒，由权利要求7所述干扰核酸构建体在慢病毒包装质粒、细胞系的辅助下，经过病毒包装而成。
9.如权利要求5-6任一权利要求所述的核酸分子，或权利要求7所述EXOSC2基因干扰核酸构建体，或权利要求8所述的EXOSC2基因干扰慢病毒的用途，为：用于制备预防或治疗结直肠癌的药物，或用于制备降低结直肠癌细胞中EXOSC2基因表达的试剂盒。
10.一种用于预防或治疗结直肠癌的组合物，其有效物质含有：
权利要求5-6任一权利要求所述的核酸分子；和/或，权利要求7所述EXOSC2基因干扰核酸构建体；和/或，权利要求8所述的EXOSC2基因干扰慢病毒，以及药学上可接受的载体、稀释剂或赋形剂。
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Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
赵春妍 等: "转染pcDNA-FLAG-EXOSC2质粒对宫颈癌HeLa 细胞增殖与凋亡的影响", 山东医药, vol. 57, no. 23 *

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