一种三碘甲状腺原氨酸的均相检测试剂盒、方法及应用
技术领域
本发明属于化学发光检测技术领域,具体涉及一种三碘甲状腺原氨酸的均相检测试剂盒、方法及应用。
背景技术
甲状腺疾病是一组较常见的内分泌疾病,包括缺碘性甲状腺肿、其他原因引起的甲状腺肿、甲亢、甲状腺瘤、甲状腺炎、甲状腺功能减退等。甲状腺病的发生率比较高。
甲状腺机能减退症系甲状腺激素TSH合成与分泌不足,或甲状腺激素生理效应不好、生物效应不足而致的全身性疾病。临床上可分为呆小病、幼年甲低、成人甲低。若功能减退始于胎儿或新生儿期,称为克汀病;始于性发育前儿童称幼年型甲减;始于成人称成年型甲减。
甲状腺炎是以炎症为主要表现的甲状腺疾病,包括感染性和非感染性。不少见。临床权威上所说的急性、亚急性及已经慢性甲状腺炎,只表明青年疾病过程的长短,它们之间无内在联系,也不互相转变,每种具有发表不同的病因、有着临床特点、病理过程及固有的结局。
三碘甲状腺原氨酸(T3)是从甲状腺分泌出来的激素,与甲状腺素共同在甲状腺球蛋白分子中合成。血液中的T3绝大部分与甲状腺素结合球蛋白(thyroxine-bindingglobulin,TBG)结合,约0.4%的游离T3作用于靶细胞,维持正常的生理功能。测定血清中游离三碘原氨酸(T3)的水平可用于甲状腺疾病的辅助诊断及相关病人治疗效果的监测。
光激化学发光法对血清中游离三碘原氨酸(T3)的水平的检测具有很好的效果。因反应在均相中进行,既加快了反应速度,又避免了反复分离与清洗步骤,能有效降低检测背景值,减少反应时间,并可实现自动化操作。但是检测过程中存在生物素的干扰,造成检测的误差。
目前还没有一种方法能够很好地解决三碘甲状腺原氨酸均相检测过程中的生物素干扰的问题。
发明内容
本发明针对现有技术的不足提供一种三碘甲状腺原氨酸的均相检测试剂盒、方法及其应用,所述试剂盒中含有抗干扰剂,在检测三碘甲状腺原氨酸时能够很好地解决生物素干扰的问题。
为此,本发明第一方面提供了一种抗干扰剂在制备用于从疑似患有甲状腺疾病的患者的血液、血清或血浆样品中检测三碘甲状腺原氨酸的浓度的装置或试剂盒中的用途;
其中,所示抗干扰剂包括载体和活性分子;所述载体为多孔介质;所述活性分子填充于所述载体之中,并能够与生物素分子特异性结合。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂能够识别游离生物素分子和生物素标记物。
在本发明的另一些实施方式中,所述抗干扰剂能够选择性吸附游离生物素分子。
在本发明的一些实施方式中,所述游离生物素分子能够扩散到所述载体中,并与其中的所述活性分子特异性结合。
在本发明的另一些实施方式中,所述抗干扰剂能够限制比所述活性分子尺寸更大的生物大分子进入其载体之中。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂能够在液相反应体系中均匀分布。
在本发明的一些实施方式中,所述多孔介质选自多孔金属材料、多孔非金属材料和多孔高分子材料中的一种或多种。
在本发明的另一些实施方式中,所述载体为介孔微球,优选为有序介孔微球。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述介孔微球的孔径为2-50nm,优选为4-30nm,更优选为5-15nm。
在本发明的另一些优选的实施方式中,所述介孔微球为笼状中空介孔微球。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述介孔微球选自Al2O3介孔材料、WO3介孔材料、TiO2介孔材料、ZrO2介孔材料、硅基介孔材料和/或介孔碳材料中的至少一种,优选选自硅基介孔材料。
在本发明的一些实施方式中,所述活性分子选自亲和素和/或链霉亲和素。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述活性分子通过物理吸附方式或通过直接或间接化学交联的方式填充于所述载体中。
本发明第二方面提供了一种三碘甲状腺原氨酸均相检测试剂盒,其包括:
抗干扰剂,其包括载体和活性分子;所述载体为多孔介质;所述活性分子填充于所述载体之中,并能够与生物素分子特异性结合;
受体,其与生物活性物质偶联,且能够与活性氧反应产生可检测的化学发光信号;所述生物活性物质能够与三碘甲状腺原氨酸特异性结合。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂能够识别游离生物素分子和生物素标记物。
在本发明的另一些实施方式中,所述抗干扰剂能够选择性吸附游离生物素分子。
在本发明的一些实施方式中,所述游离生物素分子能够扩散到所述载体中,并与其中的所述活性分子特异性结合。
在本发明的另一些实施方式中,所述抗干扰剂能够限制比所述活性分子尺寸更大的生物大分子进入其载体之中。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂能够在液相反应体系中均匀分布。
在本发明的一些实施方式中,所述多孔介质选自多孔金属材料、多孔非金属材料和多孔高分子材料中的一种或多种。
在本发明的另一些实施方式中,所述载体为介孔微球,优选为有序介孔微球。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述介孔微球的孔径为2-50nm,优选为4-30nm,更优选为5-15nm。
在本发明的另一些优选的实施方式中,所述介孔微球为笼状中空介孔微球。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述介孔微球选自Al2O3介孔材料、WO3介孔材料、TiO2介孔材料、ZrO2介孔材料、硅基介孔材料和/或介孔碳材料中的至少一种,优选选自硅基介孔材料。
在本发明的一些实施方式中,所述活性分子选自亲和素和/或链霉亲和素。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述活性分子通过物理吸附方式或通过直接或间接化学交联的方式填充于所述载体中。
在本发明的一些实施方式中,所述受体的表面直接地或间接地与生物活性物质连接,所述生物活性物质能够与三碘甲状腺原氨酸特异性结合。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述生物活性物质为抗原和/或抗体;所述抗原是指具有免疫原性的物质;所述抗体是指机体产生的能识别特定外来物的免疫球蛋白。
在本发明的一些实施方式中,所述受体包含化学发光化合物和金属螯合物,其为非粒子形式,且在含水介质中可溶。
在本发明的另一些实施方式中,所述受体包含发光组合物和基质,所述发光组合物填充于基质中和/或包被于基质表面。
在本发明的一些实施方式中,所述发光组合物能够与活性氧反应产生可检测的化学发光信号,其包含化学发光化合物和金属螯合物。
在本发明的另一些实施方式中,所述化学发光化合物选自烯烃化合物,优选选自二甲基噻吩、双丁二酮化合物、二氧杂环己烯、烯醇醚、烯胺、9-亚烷基苍耳烷、9-亚烷基-N-9,10二氢化吖啶、芳基乙醚烯、芳基咪唑和光泽精以及它们的衍生物,更优选选自二甲基噻吩及其衍生物。
在本发明的一些实施方式中,所述金属螯合物的金属是稀土金属或VIII族金属,优选选自铕、铽、镝、钐、锇和钌,更优选选自铕。
在本发明的另一些实施方式中,所述金属螯合物包含选自下列的螯合剂:NHA、BHHT、BHHCT、DPP、TTA、NPPTA、NTA、TOPO、TPPO、BFTA、2,2-二甲基-4-全氟丁酰-3-丁酮(fod)、2,2’-联吡啶(bpy)、联吡啶基羧酸、氮杂冠醚、氮杂穴状配体和三辛基氧化膦以及它们的衍生物。
在本发明的一些实施方式中,所述发光化合物是二甲基噻吩的衍生物,所述金属螯合物是铕螯合物。
在本发明的另一些实施方式中,所述基质选自高分子微球,优选为乳胶微球,更优选为聚苯乙烯乳胶微球。
在本发明的一些实施方式中,所述试剂盒包含生物素标记物,所述生物素标记物包括与生物素结合的能够与三碘甲状腺原氨酸特异性结合的抗体。
在本发明的一些实施方式中,所述试剂盒还包括供体,其能够在激发状态下生成活性氧。
在本发明的另一些实施方式中,所述供体表面直接或间接地与生物素特异性结合物结合;优选地,所述生物素特异性结合物为链霉亲和素。
在本发明的一些实施方式中,所述供体为光活化的或化学活化的敏化剂,其为非粒子形式,且在含水介质中可溶。
在本发明的另一些实施方式中,所述供体为填充有光敏剂的高分子微粒,其在光激发下能够产生活性氧。
在本发明的一些实施方式中,所述光敏剂选自亚甲基蓝、玫瑰红、卟碄和酞菁中的一种。
在本发明的另一些实施方式中,所述活性氧为单线态氧。
本发明第三方面提供了一种利用如本发明第二方面所述试剂盒均相检测三碘甲状腺原氨酸的方法,其包括以下步骤:在抗干扰剂存在的情况下,通过检测待测样品中的受体与活性氧反应产生的发光信号强度来分析判断待测样品中是否包含三碘甲状腺原氨酸和/或三碘甲状腺原氨酸的浓度。
在本发明的一些具体的实施方式中,所述方法包括以下步骤:
S1,将待测样本与包含受体的试剂a、包含生物素标记物的试剂b、包含抗干扰剂的试剂c、包含供体的试剂d混合,得到待测样品;
S2,利用能量或活性化合物与步骤S1中得到的待测样品进行接触,激发供体产生活性氧;
S3,通过检测待测样品中的受体与活性氧反应产生的发光信号强度来分析判断待测样品中是否包含三碘甲状腺原氨酸和/或三碘甲状腺原氨酸的浓度。
在本发明的一些优选的具体实施方式中,步骤S1中,先将待测样本与包含受体的试剂a、包含生物素标记物的试剂b、包含抗干扰剂的试剂c混合后,再将其与包含供体的试剂d混合,从而得到待测样品。
在本发明的一些实施方式中,步骤S2中,以600~700nm的红色激发光照射步骤S1中得到的待测样品激发其发生化学发光。
在本发明的一些实施方式中,步骤S3中,记录所述发光信号值的检测波长为520~620nm。
在本发明的一些实施方式中,所述活性氧为单线态氧。
本发明第四方面提供了一种利用如本发明第二方面所述的试剂盒或第三方面所述的方法均相检测三碘甲状腺原氨酸的装置。
在本发明的一些实施方式中,所述装置包括以下部分:
免疫反应模块,其用于实施在抗干扰剂存在的情况下三碘甲状腺原氨酸参与的免疫反应;
化学发光检测模块,其用于检测受体与活性氧反应产生的化学发光信号。
本发明的有益效果为:本发明所述试剂盒中含有抗干扰剂,该抗干扰剂通过将活性分子如SA或avidin蛋白质分子等作为“客体分子”,以恰当方式填充于多孔介质的孔内,形成“介孔组装主客体”体系,能够有效区分游离生物素分子与生物素标记物,从而使得在检测三碘甲状腺原氨酸时能够消除游离生物素的干扰,避免了均相检测中的假阳性和/或假阴性结果。另外,本发明所述试剂盒还具有实用性和通用性,可以在不同的技术平台上应用,对试剂的性能影响小。
具体实施方式
为使本发明容易理解,下面将详细说明本发明。但在详细描述本发明前,应当理解本发明不限于描述的具体实施方式。还应当理解,本文中使用的术语仅为了描述具体实施方式,而并不表示限制性的。
在提供了数值范围的情况下,应当理解所述范围的上限和下限和所述规定范围中的任何其他规定或居间数值之间的每个居间数值均涵盖在本发明内。这些较小范围的上限和下限可以独立包括在较小的范围中,并且也涵盖在本发明内,服从规定范围中任何明确排除的限度。在规定的范围包含一个或两个限度的情况下,排除那些包括的限度之任一或两者的范围也包含在本发明中。
除非另有定义,本文中使用的所有术语与本发明所属领域的普通技术人员的通常理解具有相同的意义。虽然与本文中描述的方法和材料类似或等同的任何方法和材料也可以在本发明的实施或测试中使用,但是现在描述了优选的方法和材料。
I.术语
本发明所述用语“三碘甲状腺原氨酸”,缩写T3,是从甲状腺分泌出来的激素,与甲状腺素共同在甲状腺球蛋白分子中合成。虽表现与甲状腺素相同的生理活性,但其作用比甲状腺素强。
本发明所述用语“载体”是指能载带活性分子共同参与化学或物理过程的物质。本发明对载体的化学成分没有特别的限制,可以是有机材质的、也可以无机材质的,如高分子聚合物、金属、玻璃、矿物盐、硅藻、磷脂囊泡、硅颗粒、微晶染料等等。
本发明所使用的术语“多孔介质”是指由固体物质组成的骨架和由骨架分隔成大量密集成群的微小空隙所构成的物质。
本发明所使用的术语“活性分子”是指具有与生物素分子特异性结合能力的分子。示例性的活性分子为亲和素和链霉亲和素。
本发明所述用语“待测样本”是指检测待测的含有或疑似含有三碘甲状腺原氨酸的一种混合物。待测样本可以在使用前根据需要利用稀释液进行稀释。例如,为了避免HOOK效应,可以在上机检测前使用稀释液对待测样本进行稀释后再在检测仪器上进行检测。
本发明所述用语“待测样品”是指上机检测分析前的含有待测样本、供体试剂、受体试剂以及包含抗干扰剂的试剂等多组分的待测混合液体。
本发明所述用语“抗体”以最广含义使用,包括任何同种型的抗体,保留对抗原的特异性结合的抗体片段,包括但不限于Fab、Fv、scFv、和Fd片段、嵌合抗体、人源化抗体、单链抗体、双特异性抗体、和包含抗体的抗原结合部分和非抗体蛋白的融合蛋白。
本发明所述用语“结合”指由于例如共价、静电、疏水、离子和/或氢键等相互作用,包括但不限于如盐桥和水桥等相互作用引起的两个分子间的直接联合。
本发明所述用语“特异性结合”,是指两种物质之间的相互辨别和选择性结合反应,从立体结构角度上说就是相应的反应物之间构象的对应性。
本发明所述用语“活性氧”是指机体内或者自然环境中由氧组成,含氧并且性质活泼的物质的总称,主要为一种激发态的氧分子,包括氧的一电子还原产物超氧阴离子(O2·-)、二电子还原产物过氧化氢(H2O2)、三电子还原产物羟基自由基(·OH)以及一氧化氮和单线态氧(1O2)等。
本发明中,所述用语“受体”是指能够与活性氧反应可以产生可检测信号的物质。当供体被能量或者活性化合物诱导激活并释放高能态的活性氧时,该高能态的活性氧可以被近距离的受体俘获,从而传递能量以激活所述受体。在本发明的一些具体实施例中,所述受体是这样的物质,其经历与活性氧(例如单线态氧)的化学反应以形成不稳定的亚稳态中间体,所述亚稳态中间体可以分解,同时或随后发光。这些物质的典型例子包括但不限于:烯醇醚、烯胺、9-烷叉黄原胶、9-烷叉-N-烷基吖啶满、芳乙烯醚、双环氧乙烯、二甲基噻吩、芳香性咪唑或光泽精。在本发明的另一些具体实施例中,所述受体是能够与活性氧(例如单线态氧)反应以形成可以分解成酮类或羧酸衍生物的氢过氧化物或二氧环丁烷的烯烃类;可以通过光的作用分解的稳定二氧环丁烷;可以与活性氧(例如单线态氧)反应以形成二酮类的乙炔类;可以形成偶氮化合物或偶氮羰基化合物的腙类或酰肼类,诸如鲁米诺;和可以形成内过氧化物类的芳族化合物。可以根据本公开和要求保护的发明利用的受体的具体的、非限制性实例记载于美国专利号US5340716(该专利文献在此全文引为参考)。在本发明另一些具体实施例中,所述受体包含烯烃化合物和金属螯合物,其是非粒子化的并且在含水介质中可溶,这种受体的情况可参见专利PCT/US2010/025433(该专利文献在此全文引为参考)。
本发明中,所述“化学发光化合物”即一种被称作为标记物的化合物,可进行化学反应以便引起发光,比如通过被转化为在电子激发态下形成的另一种化合物。激发态可以是单线态或是三重激发态。激发态可弛豫到基态直接发光,或者是通过将激发能量传递到发射能量受体,从而自身恢复到基态。在此过程中,能量受体微球将被跃迁为激发态而发光。
在本发明中,所述活性氧可以由“供体”提供。本发明所述用语“供体”是指通过能量或者活性化合物的激活后能够产生与受体反应的诸如单线态氧的活性中间体的敏化剂。供体可以是光活化的(如染料和芳香化合物)或者化学活化的(如酶、金属盐等)。在本发明一些具体实施例中,所述供体是光敏剂,所述光敏剂可以是本领域已知的光敏剂,优选相对光稳定且不与单线态氧有效反应的化合物,其非限定性的例子包括例如美国专利US5709994(该专利文献在此全文引为参考)公开的亚甲基蓝、玫瑰红、卟啉、酞菁和叶绿素等化合物,以及这些化合物的具有1-50个原子取代基的衍生物,所述取代基用于使得这些化合物更具有亲脂性或更具有亲水性、和/或作为连接至特异性结合配对物的连接基团。本领域技术人员已知的其他光敏剂的例子也可以在本发明中使用,例如美国专利US6406913中记载的内容,该专利文献并入本文以供参考。在本发明另一些具体实施例中,所述供体是化学活化的其他敏化剂,其非限定性的例子是某些化合物,它们催化过氧化氢转化为单线态氧和水。其他一些供体的例子包括:1,4-二羧基乙基-1,4-萘内过氧化物、9,10-二苯基蒽-9,10-内过氧化物等,加热这些化合物或者这些化合物直接吸收光会释放活性氧(例如单线态氧)。
光敏剂一般通过照射含有上述反应物的介质来活化化学发光化合物。介质必须用具有一定的波长、且能量足以将光敏剂转化至激发态、进而使得它能够将分子氧活化为单线态氧的光照射。能够激发分子氧的光敏剂的激发态一般位于三重态,其比处于基态的光敏剂的能量高大约20Kcal/mol、通常至少23Kcal/mol。虽然可以使用较短的波长,如230-950nm,但是优选地,使用波长大约是450-950nm的光来照射介质。可以以任何传统方式,诸如照相、肉眼直观、光度计等,来测定产生的光,以便确定其与介质中分析物含量相关的量。光敏剂优选是相对非极性的,以确保可溶解到亲脂性成员中。
可以选择光敏剂和/或化学发光化合物溶解在、或非共价地结合到颗粒的表面。在这种情况下,这些化合物优选是疏水性的,以降低它们从颗粒解离下来的能力,从而使两种化合物都能和相同的颗粒结合。
II.具体实施方案
下面将更详细地说明本发明。
本发明所述试剂盒中含有一种抗干扰剂,该抗干扰剂通过将能够与生物素分子特异性结合的活性分子作为“客体分子”,以恰当方式填充于载体之中,形成“介孔组装主客体”体系,从而使得在检测三碘甲状腺原氨酸时有效避免了因游离生物素造成的假阳性或假阴性结果。
为此,本发明第一方面涉及抗干扰剂在制备用于从疑似患有甲状腺疾病的患者的血液、血清或血浆样品中检测三碘甲状腺原氨酸的浓度的装置或试剂盒中的用途;
其中,所示抗干扰剂包括载体和活性分子;所述载体为多孔介质;所述活性分子填充于所述载体之中,并能够与生物素分子特异性结合。其中,“活性分子填充于载体之中”是指活性分子位于载体中的空隙中,可以与骨架接触,也可以与骨架不接触。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂能够识别游离生物素分子和生物素标记物。在本发明中,“识别”可以是指抗干扰剂中的活性分子与游离生物素分子和/或生物素标记物通过分子间作用力的协同作用达到相互结合。
在本发明的另一些实施方式中,所述抗干扰剂能够选择性吸附游离生物素分子。
在本发明的一些实施方式中,所述游离生物素分子能够扩散到所述载体中,并与其中的所述活性分子特异性结合。在本发明中,所述“扩散”可以是指由于分子的无规则运动而导致的游离生物素分子分散到载体中。
在本发明的另一些实施方式中,所述抗干扰剂能够限制比所述活性分子尺寸更大的生物大分子进入其载体之中。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂能够在液相反应体系中均匀分布。
在本发明的一些实施方式中,所述载体满足以下条件中的至少一个:a)载体的内孔有足够大的表面积(远超载体表面积),并且空隙仅能让活性分子进入,但限制活性分子更大的蛋白质,比如抗体或大的抗原等;b)能将活性分子如SA或Avdin通过化学或物理吸附方法填充于载体中,例如空隙内部;c)载体能稳定地均匀分布在溶液(如水溶液)中,而不发生沉淀。
在本发明的一些具体实施方式中,所述载体的内表面积大于其外表面积;优选地,所述载体的内表面积为其外表面积的5倍以上,优选为10倍以上,更优选为20倍以上。在本发明的一些优选实施方式中,所述载体的内表面积为其外表面积的倍数包括但不限于:5倍、6倍、8倍、10倍、12倍、16倍、18倍、20倍、22倍、24倍、26倍、28倍或30倍。
在本发明的另一些具体实施方式中,所述载体的粒径为15-300nm,例如15nm、20nm、25nm、30nm、40nm、50nm、100nm、250nm、300nm等,优选为30-250nm,更优选为50-200nm。载体粒径过大,会造成载体沉降过快,不利于形成稳定的均匀溶液。
在本发明的一些具体实施方式中,所述载体的比表面积为200m2/g以上,例如200m2/g、400m2/g、600m2/g、800m2/g、1000m2/g、1200m2/g、1500m2/g等,优选为400m2/g以上,更优选为600m2/g以上,最优选为1000m2/g以上。
在本发明的另一些具体实施方式中,所述载体的最小孔隙率大于40%,优选大于50%,更优选大于60%。
在本发明的一些实施方式中,所述多孔介质选自多孔金属材料、多孔非金属材料和多孔高分子材料中的一种或多种。
在本发明的另一些实施方式中,所述载体为介孔微球,优选为有序介孔微球。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述介孔微球的孔径为2-50nm,例如2nm、5nm、10、15nm、20nm、25nm、30nm、35nm、40nm、50nm等,优选为4-30nm,更优选为5-15nm。
在本发明的另一些优选的实施方式中,所述介孔微球为笼状中空介孔微球。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述介孔微球选自Al2O3介孔材料、WO3介孔材料、TiO2介孔材料、ZrO2介孔材料、硅基介孔材料和/或介孔碳材料中的至少一种,优选选自硅基介孔材料。
硅基介孔材料是一类由SiO2(CH2)2四面体结构单元所构成的周期性介孔物质。介孔二氧化硅材料从微观上可以分为两类:一类是以二氧化硅干凝胶和气凝胶类为代表的无序介孔固体。无序介孔二氧化硅宏观上可以是粉体,块体,片状或者薄膜。另一类是以MCM41为代表的有序介孔二氧化硅。有序介孔二氧化硅的结构特点是孔径大小均匀,按六方有序排列,介孔孔径可以在2-10nm之间可调。由于其孔壁较薄,硅基单元交流度不高,水热稳定性不好。其比表面积可达1000m2/g。还有SBA系列,HMM系列,TUD系列,FSM系列,KIT系列,CMK系列,FDU系列,starbon等。其中SBA-15研究也较多,材料的水热稳定性比MCM系列要好。孔径在5-30nm可调。HMM是球形的介孔材料,其孔径是4-15nm,外径20-80nm可调。
在本发明的一些实施方式中,所述活性分子选自亲和素和/或链霉亲和素。亲和素是一种糖蛋白,可由蛋清中提取,其分子量约60kD,每个分子由4个亚基组成,可以和4个生物素分子亲密结合。所述亲和素包括但不限于:卵白亲和素、链亲和素、卵黄亲和素及类亲和素。链霉亲和素(SA)是与亲和素(A)有类似生物学特性的一种蛋白质,其是由Streptomyces avidin菌在培养过程中分泌的一种蛋白质产物,SA也可以通过基因工程手段生产。SA的分子量为65000,由4条序列相同的肽链构成,每条SA肽链可以结合1个生物素分子。因此与亲和素一样,每个SA分子也具有4个可与生物素分子结合位点,其结合常数与亲和素相同为1015mol/L。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述活性分子通过物理吸附方式填充于所述载体中。物理吸附也称范德华吸附,它是由吸附质和吸附剂分子间作用力所引起,此力也称作范德华力。
在本发明的另一些优选的实施方式中,所述活性分子通过在含有缓冲液的体系中与载体接触而填充于所述载体之中。
在本发明的一些具体实施方式中,所述含有缓冲液的体系的pH值为7至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,进一步优选7.3-7.6。
在本发明的一些实施方式中,所述活性分子通过直接或间接化学交联的方式填充于所述载体之中。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述载体内表面修饰有化学基团,所述活性分子通过与所述化学基团的共价偶联而填充于所述载体之中;其中,所述化学基团选自羧基、醛基、氨基、巯基和羟基中的一种或多种。
在本发明的另一些优选的实施方式中,所述载体内表面连接有生物素分子,所述活性分子通过与生物素分子的特异结合作用而填充于所述载体之中。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂还包括缓冲溶液,优选PBS缓冲溶液。
在本发明的另一些实施方式中,所述载体以及填充在所述载体中的活性分子在抗干扰剂中的总浓度为5-50ug/mL,例如5ug/mL、10ug/mL、15ug/mL、20ug/mL、25ug/mL、30ug/mL、35ug/mL、40ug/mL、45ug/mL、50ug/mL等,优选8-30ug/mL,更优选10-20ug/mL。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂的制备方法包括:步骤S1,使载体与活性分子进行接触;优选地,所述接触在第一缓冲液体系中进行。在上述方法的一些实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值为7.0至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,再优选7.3至7.7,进一步优选7.35至7.50,最优选7.40。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括7.0、7.1、7.2、7.3、7.4、7.5、7.6、7.7、7.8、7.9、8.0、9.0等。
在上述方法的一些实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值为7.0至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,再优选7.3至7.7,进一步优选7.35至7.50,最优选7.40。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括7.0、7.1、7.2、7.3、7.4、7.5、7.6、7.7、7.8、7.9、8.0、9.0等。
在上述方法的另外一些实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值为3.0至7.0,优选3.5至6.8,更优选4.0至6.5,再优选5.0至6.4,进一步优选5.5至6.3,最优选6.0。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、5.6、5.7、5.8、5.9、6.0、6.1、6.1、6.2、6.3、6.4、6.5、6.6等。
根据一些具体实施方式,所述方法还包括步骤S0:用第二缓冲液体系将载体进行清洗,步骤S0在步骤S1之前进行。在上述方法的一些实施方式中,所述第二缓冲液体系的pH值为7.0至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,再优选7.3至7.7,进一步优选7.35至7.50,最优选7.40。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括7.0、7.1、7.2、7.3、7.4、7.5、7.6、7.7、7.8、7.9、8.0、9.0等。在上述方法的另外一些实施方式中,所述第二缓冲液体系的pH值为3.0至7.0,优选3.5至6.8,更优选4.0至6.5,再优选5.0至6.4,进一步优选5.5至6.3,最优选6.0。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、5.6、5.7、5.8、5.9、6.0、6.1、6.1、6.2、6.3、6.4、6.5、6.6等。
根据一些具体实施方式,所述方法还包括步骤S2:除去未填充到载体中的活性分子,步骤S2在步骤S1之后进行。优选地,通过向步骤S1处理后的载体中加入第三缓冲液体系,然后进行固液分离,以除去未填充到载体中的活性分子。
在上述方法的一些实施方式中,所述第三缓冲液体系的pH值为7.0至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,再优选7.3至7.7,进一步优选7.35至7.50,最优选7.40。在该实施方式中,所述第三缓冲液体系的pH值的示例包括7.0、7.1、7.2、7.3、7.4、7.5、7.6、7.7、7.8、7.9、8.0、9.0等。在上述方法的另外一些实施方式中,所述第三缓冲液体系的pH值为3.0至7.0,优选3.5至6.8,更优选4.0至6.5,再优选5.0至6.4,进一步优选5.5至6.3,最优选6.0。在该实施方式中,所述第三缓冲液体系的pH值的示例包括3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、5.6、5.7、5.8、5.9、6.0、6.1、6.1、6.2、6.3、6.4、6.5、6.6等。
在上述方法的一些实施方式中,所述第一缓冲液体系包含选自磷酸盐缓冲剂、哌嗪-1,4-二乙磺酸缓冲剂、3-吗啉丙磺酸缓冲剂、4-羟乙基哌嗪乙磺酸缓冲剂、3-(羟乙基哌嗪)-2-羟基丙磺酸缓冲剂中的一种或多种。在上述方法的一些实施方式中,所述第二缓冲液体系包含选自磷酸盐缓冲剂、哌嗪-1,4-二乙磺酸缓冲剂、3-吗啉丙磺酸缓冲剂、4-羟乙基哌嗪乙磺酸缓冲剂和3-(羟乙基哌嗪)-2-羟基丙磺酸缓冲剂中的一种或多种。在上述方法的一些实施方式中,所述第三缓冲液体系包含选自磷酸盐缓冲剂、哌嗪-1,4-二乙磺酸缓冲剂、3-吗啉丙磺酸缓冲剂、4-羟乙基哌嗪乙磺酸缓冲剂和3-(羟乙基哌嗪)-2-羟基丙磺酸缓冲剂中的一种或多种。
在上述方法的一些实施方式中,所述第三缓冲液体系还包含表面活性剂。根据一些实施例,所述表面活性剂包含选自吐温-20、Tween-80、Triton X-405、TritonX-100、BRIJ35和Pluronic L64中的一种或多种。根据一些实施例,所述表面活性剂包含吐温-20。
在上述方法的一些实施方式中,步骤S1中,所述接触的温度为0-50℃,优选20-40℃,例如25-30℃(即室温);和/或,接触的时间为6-24小时,优选为8-12小时,例如8小时、9小时、10小时、11小时、12小时等。在上述方法的一些另一些实施方式中,所述接触的温度为0-50℃,优选20-40℃,例如25-30℃(即室温);和/或,接触的时间为1-10小时,优选为2-6小时、例如2小时、3小时、4小时、5小时、6小时等。
在上述方法的一些实施方式中,还包括步骤S3,加入第四缓冲体系。优选地,所述第四缓冲体系包含选自磷酸盐缓冲剂、哌嗪-1,4-二乙磺酸缓冲剂、3-吗啉丙磺酸缓冲剂、4-羟乙基哌嗪乙磺酸缓冲剂和3-(羟乙基哌嗪)-2-羟基丙磺酸缓冲剂中的一种或多种。
本发明第二方面涉及的三碘甲状腺原氨酸均相检测试剂盒,其包括:
抗干扰剂,其包括载体和活性分子;所述载体为多孔介质;所述活性分子填充于所述载体之中,并能够与生物素分子特异性结合;
受体,其与生物活性物质偶联,且能够与活性氧反应产生可检测的化学发光信号;所述生物活性物质能够与三碘甲状腺原氨酸特异性结合。其中,“活性分子填充于载体之中”是指活性分子位于载体中的空隙中,可以与骨架接触,也可以与骨架不接触。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂能够识别游离生物素分子和生物素标记物。在本发明中,“识别”可以是指抗干扰剂中的活性分子与游离生物素分子和/或生物素标记物通过分子间作用力的协同作用达到相互结合。
在本发明的另一些实施方式中,所述抗干扰剂能够选择性吸附游离生物素分子。
在本发明的一些实施方式中,所述游离生物素分子能够扩散到所述载体中,并与其中的所述活性分子特异性结合。在本发明中,所述“扩散”可以是指由于分子的无规则运动而导致的游离生物素分子分散到载体中。
在本发明的另一些实施方式中,所述抗干扰剂能够限制比所述活性分子尺寸更大的生物大分子进入其载体之中。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂能够在液相反应体系中均匀分布。
在本发明的一些实施方式中,所述载体满足以下条件中的至少一个:a)载体的内孔有足够大的表面积(远超载体表面积),并且空隙仅能让活性分子进入,但限制活性分子更大的蛋白质,比如抗体或大的抗原等;b)能将活性分子如SA或Avdin通过化学或物理吸附方法填充于载体中,例如空隙内部;c)载体能稳定地均匀分布在溶液(如水溶液)中,而不发生沉淀。
在本发明的一些具体实施方式中,所述载体的内表面积大于其外表面积;优选地,所述载体的内表面积为其外表面积的5倍以上,优选为10倍以上,更优选为20倍以上。在本发明的一些优选实施方式中,所述载体的内表面积为其外表面积的倍数包括但不限于:5倍、6倍、8倍、10倍、12倍、16倍、18倍、20倍、22倍、24倍、26倍、28倍或30倍。
在本发明的另一些具体实施方式中,所述载体的粒径为15-300nm,例如15nm、20nm、25nm、30nm、40nm、50nm、100nm、250nm、300nm等,优选为30-250nm,更优选为50-200nm。载体粒径过大,会造成载体沉降过快,不利于形成稳定的均匀溶液。
在本发明的一些具体实施方式中,所述载体的比表面积为200m2/g以上,例如200m2/g、400m2/g、600m2/g、800m2/g、1000m2/g、1200m2/g、1500m2/g等,优选为400m2/g以上,更优选为600m2/g以上,最优选为1000m2/g以上。
在本发明的另一些具体实施方式中,所述载体的最小孔隙率大于40%,优选大于50%,更优选大于60%。
在本发明的一些实施方式中,所述多孔介质选自多孔金属材料、多孔非金属材料和多孔高分子材料中的一种或多种。
在本发明的另一些实施方式中,所述载体为介孔微球,优选为有序介孔微球。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述介孔微球的孔径为2-50nm,例如2nm、5nm、10、15nm、20nm、25nm、30nm、35nm、40nm、50nm等,优选为4-30nm,更优选为5-15nm。
在本发明的另一些优选的实施方式中,所述介孔微球为笼状中空介孔微球。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述介孔微球选自Al2O3介孔材料、WO3介孔材料、TiO2介孔材料、ZrO2介孔材料、硅基介孔材料和/或介孔碳材料中的至少一种,优选选自硅基介孔材料。
硅基介孔材料是一类由SiO2(CH2)2四面体结构单元所构成的周期性介孔物质。介孔二氧化硅材料从微观上可以分为两类:一类是以二氧化硅干凝胶和气凝胶类为代表的无序介孔固体。无序介孔二氧化硅宏观上可以是粉体,块体,片状或者薄膜。另一类是以MCM41为代表的有序介孔二氧化硅。有序介孔二氧化硅的结构特点是孔径大小均匀,按六方有序排列,介孔孔径可以在2-10nm之间可调。由于其孔壁较薄,硅基单元交流度不高,水热稳定性不好。其比表面积可达1000m2/g。还有SBA系列,HMM系列,TUD系列,FSM系列,KIT系列,CMK系列,FDU系列,starbon等。其中SBA-15研究也较多,材料的水热稳定性比MCM系列要好。孔径在5-30nm可调。HMM是球形的介孔材料,其孔径是4-15nm,外径20-80nm可调。
在本发明的一些实施方式中,所述活性分子选自亲和素和/或链霉亲和素。亲和素是一种糖蛋白,可由蛋清中提取,其分子量约60kD,每个分子由4个亚基组成,可以和4个生物素分子亲密结合。所述亲和素包括但不限于:卵白亲和素、链亲和素、卵黄亲和素及类亲和素。链霉亲和素(SA)是与亲和素(A)有类似生物学特性的一种蛋白质,其是由Streptomyces avidin菌在培养过程中分泌的一种蛋白质产物,SA也可以通过基因工程手段生产。SA的分子量为65000,由4条序列相同的肽链构成,每条SA肽链可以结合1个生物素分子。因此与亲和素一样,每个SA分子也具有4个可与生物素分子结合位点,其结合常数与亲和素相同为1015mol/L。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述活性分子通过物理吸附方式填充于所述载体中。物理吸附也称范德华吸附,它是由吸附质和吸附剂分子间作用力所引起,此力也称作范德华力。
在本发明的另一些优选的实施方式中,所述活性分子通过在含有缓冲液的体系中与载体接触而填充于所述载体之中。
在本发明的一些具体实施方式中,所述含有缓冲液的体系的pH值为7至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,进一步优选7.3-7.6。
在本发明的一些实施方式中,所述活性分子通过直接或间接化学交联的方式填充于所述载体之中。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述载体内表面修饰有化学基团,所述活性分子通过与所述化学基团的共价偶联而填充于所述载体之中;其中,所述化学基团选自羧基、醛基、氨基、巯基和羟基中的一种或多种。
在本发明的另一些优选的实施方式中,所述载体内表面连接有生物素分子,所述活性分子通过与生物素分子的特异结合作用而填充于所述载体之中。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂还包括缓冲溶液,优选PBS缓冲溶液。
在本发明的另一些实施方式中,所述载体以及填充在所述载体中的活性分子在抗干扰剂中的总浓度为5-50ug/mL,例如5ug/mL、10ug/mL、15ug/mL、20ug/mL、25ug/mL、30ug/mL、35ug/mL、40ug/mL、45ug/mL、50ug/mL等,优选8-30ug/mL,更优选10-20ug/mL。
在本发明的一些实施方式中,所述抗干扰剂的制备方法包括:步骤S1,使载体与活性分子进行接触;优选地,所述接触在第一缓冲液体系中进行。在上述方法的一些实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值为7.0至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,再优选7.3至7.7,进一步优选7.35至7.50,最优选7.40。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括7.0、7.1、7.2、7.3、7.4、7.5、7.6、7.7、7.8、7.9、8.0、9.0等。
在上述方法的一些实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值为7.0至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,再优选7.3至7.7,进一步优选7.35至7.50,最优选7.40。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括7.0、7.1、7.2、7.3、7.4、7.5、7.6、7.7、7.8、7.9、8.0、9.0等。
在上述方法的另外一些实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值为3.0至7.0,优选3.5至6.8,更优选4.0至6.5,再优选5.0至6.4,进一步优选5.5至6.3,最优选6.0。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、5.6、5.7、5.8、5.9、6.0、6.1、6.1、6.2、6.3、6.4、6.5、6.6等。
根据一些具体实施方式,所述方法还包括步骤S0:用第二缓冲液体系将载体进行清洗,步骤S0在步骤S1之前进行。在上述方法的一些实施方式中,所述第二缓冲液体系的pH值为7.0至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,再优选7.3至7.7,进一步优选7.35至7.50,最优选7.40。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括7.0、7.1、7.2、7.3、7.4、7.5、7.6、7.7、7.8、7.9、8.0、9.0等。在上述方法的另外一些实施方式中,所述第二缓冲液体系的pH值为3.0至7.0,优选3.5至6.8,更优选4.0至6.5,再优选5.0至6.4,进一步优选5.5至6.3,最优选6.0。在该实施方式中,所述第一缓冲液体系的pH值的示例包括3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、5.6、5.7、5.8、5.9、6.0、6.1、6.1、6.2、6.3、6.4、6.5、6.6等。
根据一些具体实施方式,所述方法还包括步骤S2:除去未填充到载体中的活性分子,步骤S2在步骤S1之后进行。优选地,通过向步骤S1处理后的载体中加入第三缓冲液体系,然后进行固液分离,以除去未填充到载体中的活性分子。
在上述方法的一些实施方式中,所述第三缓冲液体系的pH值为7.0至9,优选7.1至8.0,更优选7.2至7.8,再优选7.3至7.7,进一步优选7.35至7.50,最优选7.40。在该实施方式中,所述第三缓冲液体系的pH值的示例包括7.0、7.1、7.2、7.3、7.4、7.5、7.6、7.7、7.8、7.9、8.0、9.0等。在上述方法的另外一些实施方式中,所述第三缓冲液体系的pH值为3.0至7.0,优选3.5至6.8,更优选4.0至6.5,再优选5.0至6.4,进一步优选5.5至6.3,最优选6.0。在该实施方式中,所述第三缓冲液体系的pH值的示例包括3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、5.6、5.7、5.8、5.9、6.0、6.1、6.1、6.2、6.3、6.4、6.5、6.6等。
在上述方法的一些实施方式中,所述第一缓冲液体系包含选自磷酸盐缓冲剂、哌嗪-1,4-二乙磺酸缓冲剂、3-吗啉丙磺酸缓冲剂、4-羟乙基哌嗪乙磺酸缓冲剂、3-(羟乙基哌嗪)-2-羟基丙磺酸缓冲剂中的一种或多种。在上述方法的一些实施方式中,所述第二缓冲液体系包含选自磷酸盐缓冲剂、哌嗪-1,4-二乙磺酸缓冲剂、3-吗啉丙磺酸缓冲剂、4-羟乙基哌嗪乙磺酸缓冲剂和3-(羟乙基哌嗪)-2-羟基丙磺酸缓冲剂中的一种或多种。在上述方法的一些实施方式中,所述第三缓冲液体系包含选自磷酸盐缓冲剂、哌嗪-1,4-二乙磺酸缓冲剂、3-吗啉丙磺酸缓冲剂、4-羟乙基哌嗪乙磺酸缓冲剂和3-(羟乙基哌嗪)-2-羟基丙磺酸缓冲剂中的一种或多种。
在上述方法的一些实施方式中,所述第三缓冲液体系还包含表面活性剂。根据一些实施例,所述表面活性剂包含选自吐温-20、Tween-80、Triton X-405、TritonX-100、BRIJ35和Pluronic L64中的一种或多种。根据一些实施例,所述表面活性剂包含吐温-20。
在上述方法的一些实施方式中,步骤S1中,所述接触的温度为0-50℃,优选20-40℃,例如25-30℃(即室温);和/或,接触的时间为6-24小时,优选为8-12小时,例如8小时、9小时、10小时、11小时、12小时等。在上述方法的一些另一些实施方式中,所述接触的温度为0-50℃,优选20-40℃,例如25-30℃(即室温);和/或,接触的时间为1-10小时,优选为2-6小时、例如2小时、3小时、4小时、5小时、6小时等。
在上述方法的一些实施方式中,还包括步骤S3,加入第四缓冲体系。优选地,所述第四缓冲体系包含选自磷酸盐缓冲剂、哌嗪-1,4-二乙磺酸缓冲剂、3-吗啉丙磺酸缓冲剂、4-羟乙基哌嗪乙磺酸缓冲剂和3-(羟乙基哌嗪)-2-羟基丙磺酸缓冲剂中的一种或多种。
在本发明的一些实施方式中,所述受体的表面直接地或间接地与生物活性物质连接,所述生物活性物质能够与三碘甲状腺原氨酸特异性结合。
在本发明的一些优选实施方式中,所述生物活性物质为抗原和/或抗体;所述抗原是指具有免疫原性的物质;所述抗体是指机体产生的能识别特定外来物的免疫球蛋白。
在本发明的一些实施方式中,所述受体包含化学发光化合物和金属螯合物,其为非粒子形式,且在含水介质中可溶。
在本发明的另一些实施方式中,所述受体包含发光组合物和基质,所述发光组合物填充于基质中和/或包被于基质表面。
在本发明的一些实施方式中,所述发光组合物能够与活性氧反应产生可检测的化学发光信号,其包含化学发光化合物和金属螯合物。
在本发明的另一些实施方式中,所述化学发光化合物选自烯烃化合物,优选选自二甲基噻吩、双丁二酮化合物、二氧杂环己烯、烯醇醚、烯胺、9-亚烷基苍耳烷、9-亚烷基-N-9,10二氢化吖啶、芳基乙醚烯、芳基咪唑和光泽精以及它们的衍生物,更优选选自二甲基噻吩及其衍生物。
在本发明的一些实施方式中,所述金属螯合物的金属是稀土金属或VIII族金属,优选选自铕、铽、镝、钐、锇和钌,更优选选自铕。
在本发明的另一些实施方式中,所述金属螯合物包含选自下列的螯合剂:4’-(10-甲基-9-蒽基)-2,2’:6’2”-联三吡啶-6,6”-二甲胺]四乙酸(MTTA)、2-(1’,1’,2’,2’,3’,3’-七氟-4’,6’-己二酮-6’-基)-萘(NHA)、4,4’-二(2”,3”,3”-七氟-4”,6”-己二酮-6”-基)-邻-三联苯(BHHT)、4,4’-二(1”,1”,1”,2”,2”,3”,3”-七氟-4”,6”-己二酮-6”-基)-氯代磺基-邻-三联苯(BHHCT)、4,7-联苯-1,10-菲咯啉(DPP)、1,1,1-三氟丙酮(TTA)、3-萘酰-1,1,1-三氟丙酮(NPPTA)、萘基三氟丁二酮(NTA)、三辛基氧化膦(TOPO)、三苯基氧化膦(TPPO)、3-苯甲酰-1,1,1-三氟丙酮(BFTA)、2,2-二甲基-4-全氟丁酰-3-丁酮(fod)、2,2’-联吡啶(bpy)、联吡啶基羧酸、氮杂冠醚、氮杂穴状配体和三辛基氧化膦以及它们的衍生物。
在本发明的一些实施方式中,所述发光化合物是二甲基噻吩的衍生物,所述金属螯合物是铕螯合物。
在本发明的另一些实施方式中,所述基质选自高分子微球,优选为乳胶微球,更优选为聚苯乙烯乳胶微球。
在本发明的一些实施方式中,所述试剂盒包含生物素标记物,所述生物素标记物包括与生物素结合的能够与三碘甲状腺原氨酸特异性结合的抗体。在本发明的一些实施方式中,所述试剂盒还包括供体,其能够在激发状态下生成活性氧。
在本发明的另一些实施方式中,所述供体表面直接或间接地与生物素特异性结合物结合;优选地,所述生物素特异性结合物为链霉亲和素。
在本发明的一些实施方式中,所述供体为光活化的或化学活化的敏化剂,其为非粒子形式,且在含水介质中可溶。
在本发明的另一些实施方式中,所述供体为填充有光敏剂的高分子微粒,其在光激发下能够产生活性氧。
在本发明的一些优选的实施方式中,所述光敏剂选自亚甲基蓝、玫瑰红、卟碄和酞菁中的一种。
在本发明的一些实施方式中,所述活性氧为单线态氧。
本发明第三方面所涉及的利用如本发明第二方面所述试剂盒均相检测三碘甲状腺原氨酸的方法,其包括以下步骤:在抗干扰剂存在的情况下,通过检测待测样品中的受体与活性氧反应产生的发光信号强度来分析判断待测样品中是否包含三碘甲状腺原氨酸和/或三碘甲状腺原氨酸的浓度。
在本发明的一些具体的实施方式中,所述方法包括以下步骤:
S1,将待测样本与包含受体的试剂a、包含生物素标记物的试剂b、包含抗干扰剂的试剂c、包含供体的试剂d混合,得到待测样品;
S2,利用能量或活性化合物与步骤S1中得到的待测样品进行接触,激发供体产生活性氧;
S3,通过检测待测样品中的受体与活性氧反应产生的发光信号强度来分析判断待测样品中是否包含三碘甲状腺原氨酸和/或三碘甲状腺原氨酸的浓度。
在本发明的一些优选的具体实施方式中,步骤S1中,先将待测样本与包含受体的试剂a、包含生物素标记物的试剂b、包含抗干扰剂的试剂c混合后,再将其与包含供体的试剂d混合,从而得到待测样品。在本发明的一些实施方式中,步骤S2中,以600~700nm的红色激发光照射步骤S1中得到的待测样品激发其发生化学发光。
在本发明的一些实施方式中,步骤S3中,记录所述发光信号值的检测波长为520~620nm。
在本发明的一些实施方式中,所述活性氧为单线态氧。
本发明第四方面涉及利用如本发明第二方面所述的试剂盒或第三方面所述的方法均相检测三碘甲状腺原氨酸的装置。
在本发明的一些实施方式中,所述装置包括以下部分:
免疫反应模块,其用于实施在抗干扰剂存在的情况下三碘甲状腺原氨酸参与的免疫反应;
化学发光检测模块,其用于检测受体与活性氧反应产生的化学发光信号。
Ⅲ.实施例
为使本发明更加容易理解,下面将结合实施例来进一步详细说明本发明,这些实施例仅起说明性作用,并不局限于本发明的应用范围。本发明中所使用的原料或组分若无特殊说明均可以通过商业途径或常规方法制得。
试剂和仪器:
SA(Sigma Aldrich公司),羧基官能团化的硅基微球(粒径15-200nm,孔径2-15nm,Sigma Aldrich公司),磷酸盐缓冲液(0.02M PBS,pH 7.4),1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺盐酸盐EDAC(Thermo fisher),Tween-20,0.1M MES缓冲液(pH 6.0),生物素(D-biotin),去激素血清,二碘甲状腺氨酸包被的受体溶液(试剂一),生物素标记的抗三碘甲状腺原氨酸抗体溶液(试剂二),光激化学发光分析系统通用液(感光珠溶液/链霉亲和素标记的供体溶液)。LiCA HT(博阳生物科技(上海)有限公司),日立高速冷冻离心机。
物理吸附方式制备本发明的抗干扰剂
实施例1
第一步,2mL离心管中,取10mg羧基官能团化的硅基微球(粒径15nm,孔径2nm),加入0.02M PBS(pH 7.4)的缓冲液,4℃离心10000rpm,15min清洗一次。
第二步,加入200uL PBS缓冲液超声分散均匀,再加入150uL 10mg/mL SA的水溶液,补充PBS缓冲液至微球反应浓度20mg/mL,室温搅拌过夜。
第三步,用含有0.5%Tween-20的0.02M PBS(pH 7.4)缓冲溶液将SA微球离心,4℃离心10000rpm,15min,清洗三次,去除未吸附的SA,最后用0.02MPBS(pH 7.4)缓冲液定容至10mg/mL。
实施例2-7
制备方法同实施例1,区别在于各实施例采用了不同粒径和/或孔径的羧基官能团化的硅基微球(参见表1)。
共价偶联方式制备本发明的抗干扰剂
实施例8(共价偶联方式)
第一步,2mL离心管中,取10mg羧基官能团化的硅基微球,用0.1M MES(pH 6.0)的缓冲溶液,4℃离心10000rpm,15min清洗一次。
第二步,加入200uL 0.1M MES(pH 6.0)缓冲液超声分散均匀,再加入150uL 10mg/mL SA的水溶液,接着加入100uL 10mg/mLEDAC(0.1M MES)溶液,室温搅拌4h。
第三步,用含有0.5%Tween-20的0.02M PBS(pH 7.4)缓冲溶液将SA微球离心清洗三次,去除未吸附的SA,最后用PBS缓冲液定容至10mg/mL。
实施例9:本发明所述三碘甲状腺原氨酸的均相检测方法的效果评价一
实验步骤:
1.添加T3浓溶液于去激素血清中,配制成浓度为1nmol/L、2nmol/L的T3溶液。
2.配制感光珠溶液40ug/mL,采用实施例1-7中制备的抗干扰剂配制不同浓度的溶液(用PBS稀释),见表1。
3.添加生物素于上述T3溶液中,配制成生物素浓度分别为0,128ng/ml的样本溶液。
4.加入25ul样本溶液,再依次加入试剂一和试剂二各25uL(按反应模式手工加入25ul样本溶液及25uL试剂一和25uL试剂二),再按照如下表1加入25uL步骤2制备的抗干扰剂溶液,其中条件1、2不加入抗干扰剂。
5.放入LICA HT中,进行第一阶段温育:37℃温育17min。
6.手工加入175ul通用液。
7.进行第二阶段温育:37℃温育15min,温育后得到相应的待测样品。
8.用能量激发上述待测样品并对产生的发光信号读数。读数结果参见表2和3。
表1
数据分析:
当T3浓度为1nM、生物素浓度为128ng/mL时,发光信号下跌89%,生物素干扰较严重。加入孔径2nm的微球(表1中的序号3)时,发光信号几乎无明显变化,当采用粒径50nm,孔径5nm,10nm(表1中的序号4和5)时,发光信号出现一定的提升,下跌幅度50%-70%。
当粒径和孔径不变时,提高抗干扰剂的浓度至10ug/mL(表1中的序号5和6对比),发光信号进一步提升,下跌幅度25%左右。当孔径10nm,浓度10ug/ml,增大微球粒径至100nm(表1中的序号6和7)时,下跌幅度偏差10%以内,生物素干扰现象消失。当浓度提高至20ug/ml(表1中的序号7和8)时,信号下跌偏差10%以内。当浓度20ug/mL不变,增大粒径和孔径时,信号出现一定程度下跌,下跌幅度20%-40%。
实验结论:
当本发明所述方法添加的抗干扰剂为,填充SA(链霉亲和素)的微球粒径100nm,孔径10nm,浓度10-20ug/mL时,所述方法的抗生物素干扰能力最强。当所添加的抗干扰剂的孔径较小,2nm时,所述方法无抗生物素干扰能力。当所添加的抗干扰剂的粒径大于100nm,孔径10nm,继续增大粒径和孔径时,所述方法的抗生物素干扰能力会下降。
实施例10:本发明所述三碘甲状腺原氨酸的均相检测方法的效果评价二
实验步骤:
1.添加T3浓溶液于去激素血清中,配制成浓度为1nmol/L、2nmol/L的T3溶液。
2.配制感光珠溶液40ug/mL,采用实施例5和8中制备的抗干扰剂配制不同浓度的溶液(用PBS稀释),见表4(用PBS稀释)10ug/mL、20ug/mL。
3.添加生物素于上述T3溶液中,配制成生物素浓度分别为0、128ng/ml的样本溶液。
4.加入25ul样本溶液,再依次加入试剂一和试剂二各25uL(按反应模式手工加入25ul样本溶液及25uL试剂一和25uL试剂二),再按照如下表格加入25uL步骤2中制备的抗干扰剂溶液,条件1和2不加入抗干扰剂。
5.放入LICA HT中,进行第一阶段温育:37℃温育17min。
6.手工加入175ul通用液。
7.进行第二阶段温育:37℃温育15min,温育后得到相应的待测样品。
8.利用能量激发上述待测样品和并对产生的发光信号读数。读数结果参见表5和6。
表4
数据分析:
从表4中的序号3和5对比,物理吸附方式制备的抗干扰剂的抗生物素干扰能力强,发光信号下跌10%左右,共价偶联方式制备的抗干扰剂的发光信号下跌50%左右。表4中的序号4和6对比,物理吸附方式制备的抗干扰剂的抗生物素干扰能力也优于共价偶联的方式制备的抗干扰剂。
实验结论:
对于相同粒径,孔径,浓度,比表面积,添加物理吸附方式制备的抗干扰剂的三碘甲状腺原氨酸的均相检测方法的抗生物素干扰能力优于添加共价偶联的方式制备的抗干扰剂的三碘甲状腺原氨酸的均相检测方法。
应当注意的是,以上所述的实施例仅用于解释本发明,并不构成对本发明的任何限制。通过参照典型实施例对本发明进行了描述,但应当理解为其中所用的词语为描述性和解释性词汇,而不是限定性词汇。可以按规定在本发明权利要求的范围内对本发明作出修改,以及在不背离本发明的范围和精神内对本发明进行修订。尽管其中描述的本发明涉及特定的方法、材料和实施例,但是并不意味着本发明限于其中公开的特定例,相反,本发明可扩展至其他所有具有相同功能的方法和应用。