CN111019868B - 一种嗜热深海微小杆菌及其应用 - Google Patents

一种嗜热深海微小杆菌及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明提供一种嗜热深海微小杆菌,其保藏号为CGMCC No.18990,本发明所提供的深海微小杆菌P‑47‑3株用于发酵鱼浆。本发明所用的菌种P‑47‑3分离自深海热液极端环境,产芽孢,生长温度范围在10℃‑65℃,能在0‑14%盐浓度下生长繁殖,而一般的高温菌主要来自热泉等陆地环境,耐盐性差,不能在高盐的条件下生长,发酵海洋生物制品有很大的局限性,而菌种P‑47‑3具有嗜盐性不仅适合发酵海洋生物,而且代谢过程会消耗盐,进一步降低发酵产物中盐浓度,提升发酵产品的品质。

Description

一种嗜热深海微小杆菌及其应用
技术领域
本发明属于微生物筛选应用技术领域,具体涉及一种嗜热深海微小杆菌及其应用。
背景技术
鱼粉因其蛋白质含量高、含有多种必需氨基酸、容易被吸收等多种优点,目前是水产饲料中主要的蛋白质源。中国是世界水产养殖大国,2018年的水产养殖总产量超过5000万吨,占我国水产品总产量的比重达78%以上。中国是鱼粉消耗量最大的国家。中国水产养殖业每年都会消耗掉250万吨左右的鱼粉(部分用于禽畜养殖),其中120万吨为进口鱼粉,130万吨为国产鱼粉。由此可见,中国水产养殖业依赖于鱼粉资源,同时也受到国外进口鱼粉的限制。
在水产饲料生产中,常规的动物性蛋白质原料鱼粉一般采用蒸煮、压榨、烘干的生产流程得到,但由于高温常导致营养素的损失,甚至可能产生一些有毒有害的物质,如高温鱼粉中的肌胃糜烂素等。基于国内鱼粉行业新产品开发力度不足、技术落后、设备陈旧以及环保高压、海洋资源日益减退等现状,鱼粉行业的生存空间逐渐被挤压,探索鱼粉辅助品甚至是代替品成为了今后水产养殖的一大方向。
目前制备酶解和发酵鱼浆技术存在以下缺陷。(1)酶解鱼浆的制备工艺中,仅利用内源酶,酶解不彻底;外加蛋白酶等商业酶增加了成本;酶解反应后需要90℃左右高温灭酶处理,会破坏鳀鱼的功能性活性物质;酶解产物流动性差,容易堵塞管道。(2)普通发酵鱼浆的制备工艺中,发酵的菌种一般陆地来源,用于发酵海洋生物,在耐盐性方面比较差。为防止发酵过程腐败菌的生长繁殖,发酵前需要对原料进行100℃灭菌,这样会把鱼本身的内源酶全部灭活,并且高温处理会破坏鳀鱼的功能性活性物质。目前产高温蛋白酶菌种一般来自陆地热泉等环境,由于海洋高温环境取样的特殊性,分离自深海高温环境的产高温蛋白酶菌种,用于发酵鳀鱼,目前没有相关报道。
发明内容
本发明的目的是提供一种嗜热深海微小杆菌及其应用,即提供一株深海高温环境来源的,能产高温蛋白酶的深海微小杆菌;并利用该深海微小杆菌制备发酵鱼浆,既不需要普通微生物发酵鱼浆前的原料高温灭菌处理,也不需要酶解鱼浆后的高温灭酶处理,发酵过程稳定,发酵周期短,产物功效显著,适于规模化生产。
本发明首先提供一株产高温蛋白酶的深海微小杆菌P-47-3,保藏号为CGMCCNo.18990,保藏单位:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏单位地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所,保藏日期为2019年11月21日,分类命名:深海微小杆菌Exiguobacterium profundum。
本发明所提供的深海微小杆菌P-47-3株用于发酵鱼浆;
本发明另一个方面还提供一种制备发酵鱼浆的方法,是使用上述的深海微小杆菌P-47-3株来发酵鳀鱼制备的;
所述的方法,其一种具体的步骤如下:
1)制备鳀鱼鱼浆:以新鲜的鳀鱼为原料,用绞肉机绞碎成糜;
2)制备产品A:添加碳源和无机盐等辅料到鱼糜中,得到产品A;
并制备种子液:将所述的深海微小杆菌接种至液体培养基,温度为40℃,培养24小时;
并制备发酵液:将所述的种子液,按10%接种量,接种至液体培养基,温度为40℃,培养48-72小时;
3)制备产品B:将发酵液加入到产品A中得到产品B,其中发酵液与产品A的质量比为20-30:100,并调整pH,最终的料水质量比1:0.2-0.3,搅拌混合均匀后加入发酵罐;
4)制备产品C:在温度为55-57℃,对产品B进行发酵,时间为36-40个小时,得到产品C;
5)产品C经过高速离心,将骨刺等不溶物沉淀,上清液再经过70℃低温真空浓缩,4个小时,至水分含量为45%左右,得到发酵鱼浆产品;
所述的碳源和无机盐等辅料,以添加的辅料占料水总质量的百分比计,分别为:食品级红糖1-5%,食品级磷酸二氢钾1-2%,食品级硫酸镁1%。
所述的液体培养基的pH 7.0-7.2,并按照以下质量比配比:酵母提取物5份,胰蛋白胨10份,氯化钠10份,蒸馏水1 000份。
本发明具有以下几个优点:
(1)本发明所用的菌种P-47-3分离自深海热液极端环境,产芽孢,生长温度范围在10℃-65℃,能在0-14%盐浓度下生长繁殖,而一般的高温菌主要来自热泉等陆地环境,耐盐性差,不能在高盐的条件下生长,发酵海洋生物制品有很大的局限性,而菌种P-47-3具有嗜盐性不仅适合发酵海洋生物,而且代谢过程会消耗盐,进一步降低发酵产物中盐浓度,提升发酵产品的品质。
(2)采用普通菌种发酵鱼浆,加入菌种前,需要对原料进行100℃或100℃以上的高温灭菌处理,把鱼原料本身的一些腐败菌、致病菌和杂菌杀死。这样高温处理不仅增加了能耗成本,而且会使鱼本身的内源酶全部失活。而本发明中,不需要对原料进行高温处理,直接在55℃左右进行发酵,工艺简单,不仅能完全抑制腐败菌、致病菌和杂菌的生长,而且最大程度保留了内源酶,使发酵和酶解同时进行。
(3)采用生物酶生产酶解鱼浆时,酶制剂的成本比较高,酶解反应结束后,需要对产物进行90℃左右的高温灭酶处理,增加了能耗成本,会破坏鳀鱼的功能性活性物质;酶解反应产物的流动性较差,容易堵塞管道,而本发明采用的菌种P-47-3,通过发酵产生不同的酶系,将鱼蛋白降解为小分子的生物肽效率更高,产物的流动性好。
(4)本发明的发酵鱼浆,经过黄颡鱼饲养实验结果表明,在黄颡鱼日粮中添加8.5%发酵鱼浆可完全替代国产特级鱼粉促进鱼体生长,降低饲料系数,具有非常好的应用前景。
附图说明
图1:产蛋白酶高温菌的筛选流程图;
图2:P-47-3在蛋白酶筛选平板生长图;
图3:P-47-3菌落照片图;
图4:P-47-3细胞照片图;
图5:P-47-3化学极性酯成分的薄层层析图,其中DPG为Diphosphatidylg lycerol双磷脂酰甘油,PE为Phosphatidylethanolamine磷脂酰乙醇胺,PG为Phosphatidylglycerol磷脂酰甘油酯,PL为Phospholipid磷酯,L为Lipid酯;
图6:酪氨酸标准曲线图;
图7:蛋白酶作用的最适温度图;
图8:蛋白酶作用的最适pH图。
具体实施方式
下面结合实施例和附图对本发明进行详细的描述。
实施例1:深海微小杆菌P-47-3的筛选和鉴定
筛选产蛋白酶的高温菌流程如图1所示。首先对从日本冲绳热液区获得的水样采用MA2216E培养基(Difco,货号:212185)稀释涂布法分离菌株,共分离得到42株。通过温度实验,初步筛选出12株能在50℃还能继续生长的菌株。再采用蛋白酶筛选培养基,点接种平板,培养3-5天后观察,形成透明圈的为阳性,筛选到6株产蛋白酶菌株,其中P-47-3菌株的透明圈最大(如图2所示)。
其中蛋白酶筛选培养基按照以下配比:(1)称取4g商业进口脱脂奶粉(Skim milk)(Difco,货号232100),加入100mL蒸馏水,121℃灭菌20min单独灭菌。(2)蛋白胨,1g;酵母提取物,0.2g;琼脂,4g,100ml海水,121℃灭菌20min单独灭菌。(3)冷却至45-50℃混合,将(1)和(2)液混合倒平板。
对P-47-3菌株进行分类鉴定:
1)形态鉴定:菌株P-47-3在LB培养基上,40℃培养24h后,菌落直径大小为1-2mm,橙黄色,圆形,鼓起,边缘整齐(如图3所示)。兼性厌氧,产芽孢,革兰氏阳性菌,镜检结果显示,细胞形态为短杆状(0.5-1.0×2.0-3.0μm)(如图4所示),运动。
2)表型特征鉴定:参照《伯杰细菌鉴定手册》第八版和《常见细菌系统鉴定手册》,菌株P-47-3生长盐度范围为0%-14%(w/v)(最适2-5%),生长pH范围为5-8.5(最适7.0-8.0),生长温度范围为10℃-65℃。触酶阳性,氧化酶阴性。精氨酸双水解酶,赖氨酸脱羧酶和鸟氨酸脱羧酶为阳性,β-半乳糖苷酶,柠檬酸盐利用实验,产硫化氢实验,脲酶,吲哚试验,VP实验结果均为阴性。不能利用甘露醇,肌醇,山梨醇,鼠李糖,蔗糖,蜜二糖,苦杏仁甙和阿拉伯糖发酵产酸。
3)化学特征鉴定:菌株P-47-3细胞脂肪酸的主要成分包括:iso-C13:0(26.7%),anteiso-C13:0(19.5%),iso-C150(17.9%),anteiso-C13:0(2.3%),C16:0(6.1%),iso-C16:0(3.4%),iso-C17:0(14.4%)。醌的主要成分是甲基醌MK-7和MK-6。主要的极性脂包括Diphosphatidylglycerol(双磷脂酰甘油),Phosphatidylethanolamine(磷脂酰乙醇胺),Phosphatidylglycerol(磷脂酰甘油酯)和Phospholipid(磷酯)(如图5所示)。
4)16S rRNA基因分子鉴定
16S rRNA基因模板的制备:使用细菌DNA提取试剂盒(天根,货号DP302-02)。在使用试剂盒提取以前,对菌体进行溶菌酶破壁处理,具体做法如下:取细菌培养液1-5ml,1000rpm离心1min,菌体沉淀中加入180μL缓冲液(20mMTris,pH 8.0;2mM Na2-EDTA;1.2%Triton;终浓度为20mg/mL的溶菌酶,37℃处理30min以上。其余步骤按照该试剂盒说明进行,最终得到P-47-3菌体的DNA样品。
PCR扩增:PCR扩增所用引物为27F(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3')和1541R(5′-AAGGAGGTGATCCAGCCGCA-3′)。PCR反应体系60μL:2×Taq Mix30μL,引物:27F,1492R各3μL,模板3μL,无菌水补足至60μL。PCR反应条件:95℃,5min;94℃,45s;57℃,1min30 s;72℃,1min 30s,30个循环;72℃,10min。将PCR产物送至北京擎科生物科技有限公司进行双向测序,确定其序列为SEQ ID NO:1;其16S rRNA基因序列比对后,P-47-3与深海微小杆菌属(Exiguobacterium sp.)最接近。深海微小杆菌P-47-3通过16S rDNA基因序列比对分析与其最相近的种属是Exiguobacterium属的Exiguobacteriumprofundum,同源性为99.9%,因此该菌最终被命名为深海微小杆菌P-47-3。
其中深海微小杆菌P-47-3的16S rDNA的核苷酸序列为SEQ ID NO:1。
最终筛选的产高温蛋白酶的深海微小杆菌P-47-3株,保藏号为CGMCC No.18990,保藏单位:中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏单位地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所,保藏日期为2019年11月21日,分类命名:深海微小杆菌Exiguobacterium profundum。
菌种的保藏。长期保存:菌液加入到含甘油终浓度为20%的甘油管里,放入-80℃冰箱保存备用;短期保存:划线到MA 2216E培养基(Difco,货号:212185)或LB斜面上,在4℃保存。
实施例2:深海微小杆菌P-47-3产蛋白酶的性质
采用福林酚法测蛋白酶活性,其中Folin-酚试剂购自索莱宝,货号F8060。
步骤1:制作标准曲线
取14支试管分成两组,分别加入0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1mL标准蛋白质溶液(250μg/mL),用水补足到1mL,加入5mL试剂甲,混匀,于20-25℃放置10分钟,再加入0.5mL试剂乙,立即摇匀,在20-25℃保温30分钟,然后于500nm处比色。测定光密度值,取两组测定的平均值(表1),以蛋白质浓度为横座标,光密度值为纵座标,绘制标准曲线值(图6)。
表1:酪蛋白标准曲线数据表
Figure BDA0002348290010000061
步骤2:将深海微小杆菌P-47-3接种于100mL LB培养基,55℃培养24h。吸取菌液12000r/min离心5min。取1mL上清液,作为蛋白酶的粗酶液,加入1mL预先于55℃预热的2%的酪蛋白溶液,55℃水浴反应20min。然后加入2mL 0.4mol/L三氯乙酸溶液终止反应。取反应液12000r/min离心5min,取离心后的滤液上清1mL,加入5mL试剂甲混匀,待充分摇匀,40℃放置10分钟,再加0.5mL试剂乙摇匀,40℃放置10分钟。分光光度计比色波长为500nm,测其吸光度。对照组为先加入三氯乙酸溶液再加酪蛋白,其余条件相同。蛋白酶活的定义为每分钟水解酪素释放1μg酪氨酸为一个酶活单位(U)。
步骤3:深海微小杆菌P-47-3产蛋白酶的最适反应温度。从图7可看出,40℃-60℃随温度的升高,蛋白酶酶活逐渐增强,温度为65℃时,酶促反应的产物吸光度最高,超过65℃酶活迅速下降,故酶活最适温度为65℃。
步骤4:深海微小杆菌P-47-3产蛋白酶的最适反应pH。从图8可看出,当pH<8时,pH越大,吸光度值越大,pH=8时酶促反应产物吸光度最高,当pH>8后酶活迅速下降,酶活的最适pH为8。
实施例3:利用深海微小杆菌P-47-3发酵生产发酵鱼浆
步骤1:制备深海微小杆菌P-47-3的细胞液体培养物:取-80℃保存的菌种在LB固体培养基划线,在40℃培养,挑取单菌落接种于装有25mL LB培养基的100mL三角瓶中,培养温度为40℃,置摇床上以150r/min的转速培养20-24h至对数生长中期,即得到深海微小杆菌P-47-3的细胞液体培养物;
步骤2:摇瓶发酵培养:接种量为2-5%(v/v),接种于装有200mL LB培养基的500mL三角瓶中,培养温度为40℃,在摇床上以150r/min的转速下培养20-24h,得到发酵液。
步骤3:继续摇瓶发酵培养:接种量为2-5%(v/v),接种于1000mL LB液体培养基(装于2000mL三角瓶)中,培养温度为40℃,在摇床上以150r/min的转速下培养48h,得到发酵液。
步骤4:以50公斤新鲜的鳀鱼为原料,用绞肉机绞碎成糜,加入食品级红糖1.8公斤,食品级磷酸二氢钾0.12公斤,食品级硫酸镁0.6公斤,并调整pH为8.0,搅拌均匀,加入到发酵罐中。
步骤5:发酵罐中加入10升发酵液,在温度为55℃,无菌空气通入量为1.5vvm,转速为200rpm,发酵时间为36-40个小时;
步骤6:高速离心,将骨刺等不溶物沉淀,上清液再经过70℃低温真空浓缩,4个小时,至水分含量为45%左右,得到发酵鱼浆产品,检测其理化指标和新鲜度指标(表2)。
表2:发酵鱼浆的成分分析表
Figure BDA0002348290010000081
实施例4:发酵鱼浆效果验证实验
为了验证发酵鱼浆的应用效果,在公司合作的养殖基地进行试验。
在黄颡鱼日粮配方中,以30%国产特级鱼粉为对照(FM),按照FM组中鱼粉蛋白质量25%、45%、65%三个梯度,添加发酵鱼浆(HSW25、HSW45、HSW65)完全替代鱼粉,共设计4组等氮等磷试验日粮,每组设立3个重复,在池塘网箱中养殖初始体重为(18.74±0.08)g黄颡鱼,先用对照组日粮驯化两周后再进行8周养殖实验,实验结束后禁食24h,称重计数并解刨称取内脏团和肝胰脏重量。实验饲料的配方组成及营养水平见下表3。
表3:四组试验组的配方与营养水平(干物质基础)表
Figure BDA0002348290010000091
对四个实验组的黄颡鱼生长情况、成活率、增重率、饲料系数进行测量并计算,结果如表4所示。
表4:四个实验组的黄颡鱼生长情况、成活率、饲料系数结果表
Figure BDA0002348290010000092
从表4可以看出:用特定生长率表示黄颡鱼的生长速度,HSW组中HSW25、HSW45与FM组相比特定生长率较低,但没有显著差异,HSW65组的特定生长率显著下降;用饲料系数表示黄颡鱼对饲料的利用效率,各试验组中FCR均无显著性差异,但各试验日粮的利用效率仍存在一定差距。HSW25、HSW45、HSW65与FM组相比饲料系数分别增加了1.5%、5.5%、29.9%;HSW组的成活率比对照组高0.08~0.11;HSW组的肝脏指标与对照组相比,没有显著差异。试验结果表明在黄颡鱼日粮中添加8.5%发酵鱼浆可完全替代国产特级鱼粉促进鱼体生长,降低饲料系数。
序列表
<110> 浙江亿丰海洋生物制品有限公司
<120> 一种嗜热深海微小杆菌及其应用
<160> 1
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 1396
<212> DNA
<213> 深海微小杆菌(Exiguobacterium)
<400> 1
ccttcggggg gccgacggtg gaatgagcgg cggacgggtg aataacacgt aaagaacctg 60
cccataggtc tgggataacc acgtgaaatc ggggctaata ccggatgtgt catcggaccg 120
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ggtcttgcac acaccgcccg tcacaccacg agagtttgca acacccgaag taggtgaggt 1380
aaccgtaagg agccag 1396

Claims (4)

1.一株深海微小杆菌,其特征在于,所述的深海微小杆菌(Exiguobacterium profundum)的保藏编号为CGMCC No. 18990。
2.权利要求1所述的深海微小杆菌在发酵鱼浆中的应用。
3.一种制备发酵鱼浆的方法,其特征在于,所述的方法是使用权利要求1所述的深海微小杆菌来发酵鱼糜。
4.如权利要求3所述的方法,其特征在于,所述的方法的步骤如下:
1)制备鳀鱼鱼浆:以新鲜的鳀鱼为原料,用绞肉机绞碎成糜;
2)制备产品A:添加碳源和无机盐辅料到鱼糜中,得到产品A;
并制备种子液:将所述的深海微小杆菌接种至液体培养基,温度为40℃,培养24小时;
并制备发酵液:将所述的种子液,按10% 接种量,接种至液体培养基,温度为40℃,培养48-72小时;
3)制备产品 B:将发酵液加入到产品A中得到产品B,其中发酵液与产品A的质量比为20-30:100,并调整pH,最终的料水质量比1:0.2-0.3,搅拌混合均匀后加入发酵罐;
4)制备产品C在温度为55-57℃,对产品B 进行发酵,时间为36-40个小时,得到产品C;
5)制备发酵鱼浆:产品C经过高速离心,将骨刺不溶物沉淀,上清液再经过70℃低温真空浓缩,4个小时,至水分含量为45%,得到发酵鱼浆;
所述的碳源和无机盐辅料,以添加的辅料占料水总质量的百分比计分别为:食品级红糖1-5%,食品级磷酸二氢钾1-2%,食品级硫酸镁1%;
液体培养基的pH为7.0-7.2,并按照以下质量比配比:酵母提取物5份,胰蛋白胨 10份,氯化钠10份,蒸馏水1 000份。
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