CN110771769A - 一种辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料 - Google Patents

一种辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料 Download PDF

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罗学刚
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Tianjin University of Science and Technology
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Abstract

本发明涉及一种辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料,按重量百分数计,所述壳聚糖复合固体饮料包括以下组分:壳寡糖5~30%;水苏糖2~18%;燕麦β‑葡聚糖5~20%;白芸豆提取物16~38%;亚麻籽油微囊粉10~20%。该壳寡糖复合固体饮料具有辅助降低血脂及稳定血糖的作用,同时,该固体饮料可以改善肠道菌群、提高肠道免疫力以辅助二型糖尿病。

Description

一种辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料
技术领域
本发明涉及保健品技术领域,尤其是涉及一种辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料。
背景技术
二型糖尿病(Type 2diabetes,T2DM)是一种以高血糖为特征 (往往还合并高血脂症状)的代谢紊乱症之一,常伴随如神经性病变、肾病、心脑血管疾病等多种慢性并发症发生。可以导致多器官、多系统的损伤致残,致死率高。它是公共卫生的主要威胁,据国际糖尿病联合会估计,2015年全球有4.15亿糖尿病患者,到2035年这一数字预计将增加到5.92亿,而我国糖尿病患者远超于其他国家,并且人数还在持续增加。因此,我国在糖尿病的防治方面面临着巨大的挑战。
传统的抗糖尿病策略主要是药物治疗结合饮食及运动调节。目前,二甲双胍、格列本脲、阿卡波糖等为临床上常见的口服抗糖尿病药物。然而,这些可用的抗糖尿病药物尚存在一些器官损伤或胃肠道功能障碍等不良反应。因此,寻找天然的,特别是食品源的降血糖活性物质,开新的降血糖功能食品依然是大健康研究领域的重要热点之一。
发明内容
为了克服现有技术存在的上述技术问题,本发明提供一种辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料,该固体饮料以壳寡糖、水苏糖、燕麦β-葡聚糖、白芸豆提取物等为主要原料,具有辅助降低血脂及稳定血糖的作用;同时,该固体饮料可以改善肠道菌群、提高肠道免疫力以辅助二型糖尿病。
一种辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料,所述壳聚糖复合固体饮料包括壳寡糖、水苏糖、燕麦β-葡聚糖、白芸豆提取物和亚麻籽油微囊粉。
壳寡糖是由壳聚糖降解而得到,是碱性氨基低聚糖,是动物性纤维素制备的益生元,具有很多生物活性,比如低细胞毒性、水溶性好、易于被肠道吸收、抗氧化、抗炎、辅助治疗二型糖尿病、抗菌、降胆固醇、调节免疫和抗肿瘤等。
燕麦β-葡聚糖和水苏糖都是功能性的糖类,具有很多生理功能,比如促进肠道内有益菌的增殖继而提高其所占比例、抑制肠道内有害菌的生长、阻止外源性病原菌在肠道的定植、增加机体肠道免疫力,通过改善肠道微生态而发挥其功能性活性。白芸豆提取物中的α-淀粉酶抑制剂属于天然糖蛋白,既安全绿色又没有任何毒性,可以通过降低淀粉类的消化率,进入肠道后为肠道微生物提供优质碳源,来辅助降低2型糖尿病病人的血糖。
进一步的,按重量百分数计,所述壳聚糖复合固体饮料中各组分的含量如下:壳寡糖5~30%;水苏糖2~18%;燕麦β-葡聚糖5~20%;白芸豆提取物16~38%;亚麻籽油微囊粉10~20%。
进一步的,其特征在于,按重量百分数计,壳寡糖28%;水苏糖 18%;燕麦β-葡聚糖18%;白芸豆提取物16%;亚麻籽油微囊粉20%。
相对现有技术,本发明的有益效果在于:
(1)壳寡糖复合固体饮料具有辅助降低T2DM小鼠血脂及稳定血糖的作用。
(2)壳聚糖复合固体饮料可以影响肠道菌群的组成和多样性,并且促进有益菌的生长与定植,降低条件致病菌的相对丰度,从而促进肠道健康,并可辅助治疗二型糖尿病等疾病。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1不同剂量壳寡糖复合固体饮料对小鼠血糖影响变化;
图2小鼠肝脏和肾组织H&E染色;
图3壳糖平调节葡萄糖代谢中关键基因mRNA水平和蛋白水平。
图4(A)稀释曲线(B)Shannon-Wiener曲线分析。
图5七组样本在门水平上的相对丰度。
图6七组样本在科水平上的相对丰度。
图7各实验组的LEFse分析比较。
图8七组样本OTU水平上的维恩图。
图9小鼠肠道样本PCoA分析
其中:
图2中(A)肝脏组织H&E染色(20×);(B)肾脏组织H&E染色(20×);
图3中(A)PEPCK mRNA水平,(B)HMGCR mRNA水平, (C)G6pase mRNA水平,(D)SREBP-2mRNA水平,(E)CYP7A1 mRNA水平,(F)LDLR mRNA水平,(G)PEPCK、HMGCR蛋白水平。注:经t检验,#表示与NFD组比较差异显著(p<0.05), ##表示与NFD组比较差异极显著(p<0.01);*表示与T2DM组比较差异显著(p<0.05),**表示与T2DM组比较差异极显著(p<0.01),n=8。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步的分析,显然,所描述的仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有作出创造性劳动的前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
为了方便,本发明下述实施例和实验例中将“壳寡糖复合固体饮料”简称为“壳糖平”。
实施例
壳糖平的组分 实施例1 实施例2 实施例3 实施例4
壳寡糖 5% 30% 28% 26%
水苏糖 17% 2% 18% 15%
燕麦β-葡聚糖 20% 20% 18% 5%
白芸豆提取物 38% 38% 16% 36%
亚麻籽油微囊粉 20% 10% 20% 18%
实验例
为了进一步说明效果,以实施例3为例进行实验,具体实验情况如下:
1、实验材料和仪器
实验用的壳糖平以实施例3为准;4周龄(体重18~22g)健康雄性清洁级昆明小鼠【生产许可证:SCXK(军)2007-004,合格证号: 00549571】及高脂饲料和基础饲料购自中国人民解放军军事医学科学院实验动物中心;阿卡波糖片(Acar)杭州中美华东制药有限公司;总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)、低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)、谷草转氨酶(AST)、谷丙转转氨酶(ALT)试剂盒南京建成生物工程研究所;AxyPrepDNA Gel Ext raction Kit试剂盒购自AXYGEN公司;KOD Polymerase购自Illumi na公司。
2、实验方法
2.1实验分组和二型糖尿病小鼠模型的建立
健康雄性SPF昆明小鼠70只(4周龄,20±2g)。按照体重随机分组分为7组,每组10只,分组和饲喂剂量为:正常对照组(NF D+PBS)、模型组(T2DM+PBS)、阳性对照阿卡波糖(50mg/kg) 组(T2DM+Acar)、壳寡糖(80mg/kg)组(T2DM+COS)、壳糖平低剂量(40mg/kg)组(T2DM+LKTP)、壳糖平中剂量(80mg/ kg)组(T2DM+MKTP)、壳糖平高剂量(120mg/kg)组(T2DM+ HKTP)。实验小鼠以基础饲料适应性喂养一周后,T2DM、T2DM+ Acar、T2DM+COS、T2DM+LKTP、T2DM+MKTP和T2DM+HKTP 组小鼠禁食不禁水12h,采用65mg/kg链脲佐菌素(STZ)连续3d进行腹腔注射,造模期间饲喂高脂饲料。注射药物5d后,小鼠尾静脉取血,测定小鼠的血糖;据报告:空腹血糖水平≥7.0mmol/L,餐后2h血糖水平≥11.1mmol/L为造模成功,从第4周开始分别灌胃4周。
2.2壳糖平对二型糖尿病小鼠糖脂代谢紊乱的调节作用的实验方法
2.2.1小鼠血液样品及器官的处理与保存
实验结束后,小鼠禁食12h,采取摘眼球法活体取血,取血完毕后采用断颈法处死小鼠。将血液放室温平衡10min,3000rpm离心10min,取上清,-20℃保存,对小鼠进行解剖,摘取小鼠的肝脏和心脏,用无菌生理盐水冲洗后吸干水分后快速称重,计算肝脏和心脏指数。参考现有文献的方法,其计算公式为:脏器指数(%)=脏器重量/体重×100;同时将摘取的小鼠肝脏、心脏、升结肠、横结肠、肾脏组织分装于对应的离心管中,其中脏器组织的一部分迅速至于液氮罐中冷却,保存于超低温(-80℃)冰箱中。取脏器组织块少量置于含福尔马林溶液的离心管中,常温保存备用。
2.2.2小鼠血糖和血清各指标的检测
第3周开始直到结束期间每周测定一次空腹血糖。采用尾静脉取血,测定其空腹血糖值。将2.2.1保存的血清参照试剂盒说明书进行 TC、TG、HDL-C和LDL-C、AST、ALT含量的测定。根据公式计算动脉动脉粥样硬化指数:AI=(TC-HDL-C)/HDL-C。
2.2.3肝脏组织和肾脏组织HE染色
将2.2.2中固定在福尔马林溶液中的肝肾组织块取出进行脱水处理,用石蜡进行包埋并切片,用苏木精等进行染色,在正置显微镜观察并获取照片。
2.2.4肝脏mRNA提取和检测
将2.2.2保存的小鼠肝脏称取30mg,提取总RNA并逆转录成 cDNA,使用表1设计的引物以SYBR Green PCR试剂检测各目的基因的mRNA水平。以β-肌动蛋白为参照并通过
Figure BDA0002322392540000072
方法计算结果
表1实时定量检测所设计引物序列
Figure BDA0002322392540000071
2.2.5蛋白质印迹分析
用蛋白质裂解缓冲液在冰上裂解肝脏组织30min。使用SDS-P AGE凝胶电泳分离蛋白质,然后通过电印迹法转移到NC膜,将膜与相应的一抗4℃过夜孵育,再用相应的二抗抗体作用膜。通过红外成像系统使目的蛋白成像可视。
2.2.6数据分析
数据采用软件SPSS 17.0进行统计学分析。实验结果表示为平均值±标准偏差(M±SD)。P<0.05时,表示与比较组存在显著差异, P<0.01表示与比较组差异极显著。
2.3壳糖平对二型糖尿病小鼠肠道菌群结构的影响的实验方法
2.3.1小鼠的处理与组织保存
实验结束后,小鼠禁食12h,采用断颈法处死小鼠。进行解剖摘取小鼠横结肠部分装于离心管中,迅速置于液氮罐中冷却,保存于超低温冰箱(-80℃)中备用。
2.3.2小鼠结肠内容物菌群DNA提取和16S测序
将保存在超低温冰箱中的结肠内容物取出解冻。利用DNA提取试剂盒提取盲肠内容物微生物总DNA。用带有barcode的特异引物扩增16S rDNA的V3+V4区。引物序列为::341F:CCTACGGGNG GCWGCAG;806R:GGACTACHVGGGTATCTAAT。然后进行PCR 扩增产物,运用切胶回收试剂盒回收目的片段,并进行定量。将纯化的扩增产物进行等量混合,连接测序接头,构建测序文库,运用His eq2500 PE250上机测序。
2.3.3数据分析
用高通量Illumina Hiseq 2500测序得到原始数据,将不可信和低质量的数据过滤掉,继而得到有效可信的序列。随后将有效序列进行拼接、OTU聚类和物种分类学分析。在OTU基础上聚类分析结果,在各个分类水平上进行群落结构的统计分析。另一方面,基于PCAO 距离,采用主坐标分析对样本进行加权和聚类,获得各样本的菌群差异信息,上述统计分析采SPSS17.0软件进行,P<0.05为有统计学意义差异。
3、实验结果
3.1壳糖平对二型糖尿病小鼠糖脂代谢紊乱的调节作用的实验结果
3.1.1壳糖平对T2DM小鼠体重的影响
由表2可以看出,与对照组相比,其余各组小鼠体重显著降低(p <0.05或p<0.01),说明糖尿病小鼠“三多一少”中体重减少明显,符合糖尿病发病特征。与T2DM模型组比,壳糖平治疗组以剂量依赖方式显著减缓小鼠体重降低(p<0.05或p<0.01)。该结果表明壳糖平能够减缓T2DM小鼠体重减轻的症状。
表2各组小鼠实验前后体重变化(M±SD,n=10)
Figure BDA0002322392540000091
注:经t检验,a表示与NFD组比较差异显著(p<0.05),aa表示与NFD组比较差异显著(p<0.01); b表示与T2DM组比较差异显著(p<0.05),bb表示与T2DM组比较差异显著(p<0.01)。
3.1.2壳糖平对T2DM小鼠脏器指数的影响
由表3可以看出,与对照组(NFD)小鼠相比,其余各组小鼠肝脏指数和心脏指数指数显著增大(p<0.05或p<0.01),脏器指数能够反应脏器的健康状况,二型糖尿病加高脂饮食会使得小鼠器脏发生脂质堆积及发生病变,继而使得脏器指数增大。与模型组(T2DM)相比,壳糖平以剂量依赖方式显著降低T2DM小鼠肝脏和心脏指数(p <0.05或p<0.01)。该结果表明壳糖平治疗能够显著逆转T2DM小鼠脏器脂质堆积和病变。
表3壳糖平对T2DM小鼠脏器指数的影响(M±SD,n=10)
注:经t检验,a表示与NFD组比较差异显著(p<0.05),aa表示与NFD组比较差异极显著(p<0.01); b表示与T2DM组比较差异显著(p<0.05),bb表示与T2DM组比较差异极显著(p<0.01)。
3.1.3壳糖平对T2DM小鼠血糖及血脂指标的影响
由图1可以看出,与对照组(NFD)小鼠相比,其余各组小鼠血糖显著升高(p<0.05或p<0.01),说明二型糖尿病(T2DM)模型小鼠成功建立。与模型组(T2DM)相比,壳糖平治疗组以剂量依赖方式显著降低T2DM小鼠血糖(p<0.05或p<0.01),并且随实验时间延长稳步下降。该结果表明壳糖平可有效降低T2DM小鼠血糖。
由表4可知,与对照组相比,二型糖尿病(T2DM)模型组小鼠的TG、TC、LDL-C显著上升,而HDL-C下降(p<0.05或p<0.01),表明小鼠血清脂质水平发生改变,二型糖尿病小鼠模型造模成功。与 T2DM模型组相比,壳糖平治疗显著降低血清中TG、TC、LDL-C水平,而提高HDL-C水平((p<0.05或p<0.01);说明壳糖平治疗具有调节T2DM小鼠脂质代谢紊乱的作用。
并且,与模型组相比,壳糖平治疗显著降低AI值(p<0.05或p <0.01),表明壳糖平治疗能够减少动脉粥样硬化相关疾病的发生概率。
表4壳糖平对T2DM小鼠血清TC、TG、HDL-C和LDL-C的含量的影响(M±SD,n=10)
Figure BDA0002322392540000111
注:经t检验,a表示与NFD组比较差异显著(p<0.05),a表示与NFD组比较差异极显著(p<0.01);b 表示与T2DM组比较差异显著(p<0.05),bb表示与T2DM组比较差异极显著(p<0.01);c表示与T2DM+Acar 组比较差异显著(p<0.05),cc表示与T2DM+Acar组比较差异极显著(p<0.01)。
3.1.4壳糖平对T2DM小鼠血清AST、ALT的含量的影响
由表5可知,与对照组(NFD)小鼠相比,其余各组小鼠血清A ST、ALT水平指数显著增大(p<0.05或p<0.01);T2DM小鼠糖代谢障碍,导致脂肪在肝脏中蓄积,引起脂肪肝,造成肝损伤;与模型组(T2DM)相比,壳糖平治疗组以剂量依赖方式显著降低血清AST、 ALT水平(p<0.05或p<0.01);说明壳糖平治疗能够显著恢复T2D M小鼠肝损伤。
表5壳糖平对T2DM小鼠血清AST、ALT的含量的影响(M±SD,n=10)
Figure BDA0002322392540000112
Figure BDA0002322392540000121
注:经t检验,a表示与NFD组比较差异显著(p<0.05),aa表示与NFD组比较差异极显著(p<0.01); b表示与T2DM组比较差异显著(p<0.05),bb表示与T2DM组比较差异极显著(p<0.01)。
3.1.5壳糖平对T2DM小鼠肝和肾组织的影响
小鼠肝和肾组织H&E染色结果如图2(A)所示,NFD组小鼠肝细胞形态、大小正常、核膜核仁清楚、核圆居中、肝小叶结构正常,肝板之间分界明显,肝窦清晰可见;T2DM模型组小鼠肝组织结构出现病理变化,如肝窦受压变窄甚至消失、肝细胞大小不一,核膜核仁模糊、肝索排列无序,肝纤维化和脂肪变性严重。同样的,如图2(B) 所示,与NFD组小鼠肾切片相比较,模型组(T2DM)小鼠肾小球体积增大,细胞数增多,肾小球毛细血管扩张,出现空泡变性。而给予壳糖平各组肝脏和肾脏脂肪变性症状及纤维化得到一定程度的恢复。该结果说明壳糖平具有良好保护肝脏和肾脏、缓解糖尿病的作用。 3.1.6壳糖平对T2DM小鼠肝组织mRNA水平和蛋白水平的脂质代谢影响
如图3所示:为了探讨壳糖平对T2DM诱导的异常葡萄糖代谢的潜在机制,从mRNA和蛋白水平评估小鼠肝脏组织中PEPCK、G6 Pase、HMGCR、SREBP-2、CYP7A1、LDLR基因的变化情况。其中 PEPCK和G6Pase是肝糖异生关键酶,可以调节糖异生;HMGCR 是胆固醇合成的限速酶,而CYP7A1是一种参与胆固醇合成的的酶, LDLR和SREBP-2基因是脂类物质代谢的关键转录因子。
与正常组(NFD)相比,模型组(T2DM)小鼠PEPCK、G6Pas e、HMGCR、SREBP-2基因显著上调,CYP7A1和LDLR显著下调,说明T2DM组小鼠葡萄糖代谢紊乱同时伴随着胆固醇代谢异常,因此PEPCK、G6Pase、HMGCR、SREBP-2基因表达被异常激活,而L DLR和CYP7A1基因表达被抑制。
与T2DM组相比,壳糖平治疗可降低PEPCK、G6Pase、HMGC R、SREBP-2基因表达,而上调LDLR和CYP7A1基因表达(p<0.05 或p<0.01)。该结果表明壳糖平可以改善葡萄糖代谢紊乱和胆固醇代谢异常,维持机体内糖脂代谢平衡。
3.2壳糖平对二型糖尿病小鼠肠道菌群结构的影响的实验结果
3.2.1测序数据得质控与统计
运用Hiseq 2500二代高通量测序仪获得小鼠肠道样本16S测序原始数据后,经序列质控优化及统计后得到每个实验组的有效序列为130301~244496,其长度范围在315~478bp。为了研究各组小鼠肠道微生物菌群占比和组成多样性信息,用Uparse软件对样品进行有效序列聚类,将一致性达97%序列聚类成OTUs(Operational Taxonomic Units),本研究中各实验组OTU范围为1367~1835,肠道菌群的物种覆盖率大于0.99,表明本研究测序覆盖率和深度可满足样品16S测序分析需求。由图4(A)可知,7组小鼠结肠样品的稀释曲线在10 0000趋向于平坦,说明本研究样品测序数据可靠测序深度满足要求;如图4(B)Shannon-Wiener曲线趋向平坦,说明测序数据物种丰富度高且分布均匀,其中NFD组样品群落多样性最高,其它依次是C OS组、MKTP组、T2DM组、LKTP组、HKTP组、Acar组,并且 (表6)NFD组ACE指数(2720.99)、chao1指数(2745.55)、S hannon香农指数(7.31)值都是最高的,说明高脂联合STZ诱导的T 2DM小鼠肠道菌群发生了显著变化,使得其肠道菌群的多样性降低,而灌服COS、LKTP和MKTP提高了Shannon香农指数,说明灌服壳寡糖及壳糖平可有效恢复T2DM小鼠肠道菌群多样性。
表6各组样品有OTUs数量和菌群多样性
Figure BDA0002322392540000141
3.2.2在门水平上的菌群丰度及差异
采用Hiseq高通量测序平台检测微生物组成和多样性,将检测到的微生物由门到种进行各个水平上的分类,发现建模组T2DM小鼠粪便菌群与各受试物组的粪便菌群存显著差异。如图5,7组小鼠在门(phylum)的水平上的菌群组成主要由厚壁菌门(Firmicutes)、拟杆菌门(Bacteroidetes)、变行菌门(Proteobaterria)、酸杆菌门(A ctinobateria)、蓝菌门(Cyanobacteria)、Saccharibacteria、疣微菌(V errucomicrobia)、梭杆菌门(Fusobacteria)、脱铁杆菌门(Deferrib acteres)、浮霉菌门(Planctomycetes)等10个菌门组成。可以明显看出,厚壁菌门(Firmicutes)和拟杆菌门(Bacteroidetes)为主要优势菌,这与Larsen等研究报道一致;与NFD组相比(占比为38.33%),在T2DM组中厚壁菌门(Firmicutes)显著升高(占比54.57%,p<0. 05);而Acar组、COS组、LKTP组、MKTP组、HKTP组与T2D M模型组相比均可显著降低厚壁菌门丰度(p<0.05),其中Acar组占比28.61%、COS组占比30.40%、LKTP组占比20.00%、MKTP 组占比20.76%、HKTP组占比23.89%;与NFD组相比(占比为56. 31%),拟杆菌门(Bacteroidetes)丰度在T2DM组中显著降低(占比40.12%);与T2DM模型组相比,其他给药组拟杆菌门丰度均显著升高(p<0.05),其中MKTP组占比最高(75.88%)、其次是LK TP组占比74.27%、HKTP组占比67.64%、COS组占比65.90%、Ac ar组占比64.48%。研究表明,厚壁菌门(Firmicutes)和拟杆菌门(Bacteroidetes)协同作用于宿主能量吸收或代谢;而糖尿病患者肠道与正常人肠道对比拟杆菌门(Bacteroidetes)显著性降低,厚壁菌门(F irmicutes)显著性降低。
该结果表明:高脂联合STZ诱导的二型糖尿病小鼠厚壁菌门(F irmicutes)和拟杆菌门(Bacteroidetes)发生变化,而灌服壳糖平对二型糖尿病小鼠肠道菌群失调具有一定改善调节作用,其中壳糖平中剂量组作用效果最显著。
3.2.3在科平上的菌群组成及差异分析
如图6,7组样本在科分类水平上的主要组成菌为:拟杆菌目(B acteroidales_S24-7_group)、毛螺科菌(Lachnospiraceae)、理研菌科(Rikenellaceae)、普雷沃氏菌(Prevotellaceae)、瘤胃菌科(Ru minococcaceae)、拟杆菌科(Bacteroidaceae)、脱疏弧菌科(Desul fovibrionaceae)、肠杆菌科(Enterobacteriaceae)、乳酸杆菌科(Lactobacillaceae)、紫单胞菌科(Porphyromonadaceae)等10个菌科;其中拟杆菌目(Bacteroidales_S24-7_group)、毛螺科菌(Lachnospi raceae)为两种丰度最大的优势菌,占比超过了57%。与正常对照组 (NFD)相比,T2DM模型组拟杆菌目(Bacteroidales_S24-7_group) 和普雷沃氏菌(Prevotellaceae)显著下降(p<0.05),而毛螺科菌(Lachnospiraceae)和脱硫弧菌科(Desulfovibrionaceae)显著升高(p <0.05)。与模型组(T2DM)相比,Acar组、COS组、LKTP组、M KTP组、HKTP组拟杆菌目(Bacteroidales_S24-7_group)、普雷沃氏菌(Prevotellaceae)显著升高(p<0.05),而毛螺科菌(Lachnospiraceae)和脱硫弧菌科(Desulfovibrionaceae)显著降低(p<0.05),其中HKTP组Bacteroidales_S24-7_group升高最明显,而Lachnospir aceae降低最明显。与阳性药组(Acar)相比(图7),通过LEFse 分析组间菌群差异,壳糖平中高剂量组拟杆菌群占主导,且所占比例较高;相关研究表明,毛螺科菌(Lachnospiraceae)与肠道炎症程度正相关;人类二型糖尿病和T2DM模型小鼠的发病可能与Lachnospi raceae相关。据报告显示,Desulfovibrionaceae是一种硫酸盐还原菌,能够产生毒素并破坏粘膜屏障与炎症密切相关;Prevotellaceae是一种与肠道的通透性相关的黏蛋白降解菌,在抵御病原菌方面发挥重要作用;肠道中的Bacteroidales_S24-7_group是丁酸盐产生菌,丁酸盐是肠道上皮的能量提供源,并有助于肠道对营养物质的消化吸收,从而提高机体的肠道免疫力。
本研究结果表明,给予灌服壳糖平可以改善T2DM小鼠肠道炎症程度,促进肠道有益菌的生长而抑制致病菌的增值,从而使得肠道免疫力增强,同时使得宿主整体内环境协调稳定。并且灌服壳糖平与阳性药(Acar)相比,壳糖平的作用更温和,对肠道有益菌的定植更高效。
3.2.4不同分组之间OTU物种差异和PCA分析
如图8,根据OTU丰度信息开展韦恩图分析,7组样本含有的特有的OTU个数分别为326(NFD组)、223(T2DM组)、237(Ac ar组)、118(COS组)、197(LKTP组)、142(MKTP组)、18 1(HKTP组)。其中有556个OTU是7组共有。组间PCoA分析结果说明,小鼠肠道样品越相似,其反映在PCoA图中的距离越近,对于不同环境中的样品可能会出现单独聚类分布的情况,如图9表明,表现在PCoA坐标上的距离,Acar组距离其他各组都比较远,说明A car组的小鼠肠道菌群组成及结构与其他组差异显著;T2DM组、CO S组和NFD组菌落组成最相近,差异不显著,LKTP组、MKTP组和 HKTP组菌落组成较为相似,差异不显著。
以上内容是结合具体的优选实施方式对本发明所作的进一步详细说明,不能认定本发明的具体实施只局限于这些说明。对于本发明所属技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明构思的前提下,还可以做出若干简单推演或替换,都应当视为属于本发明的保护范围。

Claims (3)

1.一种辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料,其特征在于,所述壳聚糖复合固体饮料包括壳寡糖、水苏糖、燕麦β-葡聚糖、白芸豆提取物和亚麻籽油微囊粉。
2.根据权利要求1所述的辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料,其特征在于,按重量百分数计,所述壳聚糖复合固体饮料中各组分的含量如下:壳寡糖5~30%;水苏糖2~18%;燕麦β-葡聚糖5~20%;白芸豆提取物16~38%;亚麻籽油微囊粉10~20%。
3.根据权利要求2所述的辅助治疗二型糖尿病的壳寡糖复合固体饮料,其特征在于,按重量百分数计,壳寡糖28%;水苏糖18%;燕麦β-葡聚糖18%;白芸豆提取物16%;亚麻籽油微囊粉20%。
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