CN110339393B - 一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明提供一种基于水凝胶‑核壳微球的创伤敷料及其制备方法,属于创伤敷料技术领域。该方法采用同轴静电喷雾法,内轴为RCSPs溶液,外轴为海藻酸钠溶液,将形成的微滴收集于氯化钙溶液中进行交联,得到海藻酸钠/RCSPs的核壳微球;将明胶和聚乙烯醇溶液混合,得到均质凝胶前驱体,然后将海藻酸钠/RCSPs的核壳微球加入到均质凝胶前驱体中,搅拌均匀,再经冷冻干燥得到基于水凝胶‑核壳微球的创伤敷料。本发明还提供上述制备方法得到的基于水凝胶‑核壳微球的创伤敷料。本发明核壳微球能实现对药物的高包封率,同时核壳微球与水凝胶的联合应用有效实现了药物的缓释,可长效持久的作用于伤口,显著促进伤口愈合。
Description
技术领域
本发明属于创伤敷料技术领域,具体涉及一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料及其制备方法。
背景技术
皮肤作为人体最大的器官,在持续维持生命中发挥着重要作用。手术、创伤、烧伤、皮肤癌等均可能导致皮肤屏障的破坏,甚至形成瘢痕。伤口愈合过程涉及凝血、炎症、组织再生、组织重建四个阶段。为了加快伤口愈合,常用多功能复合创面敷料来促进这一过程。创面敷料是一种有效的修复创面的方法,其可以维持湿润的环境,防止二次损伤,以及为细胞迁移和清除感染提供理想的微环境。理想的创面敷料应具有保水能力,利于气体交换,并具有合适的机械性能和良好的生物相容性。
中国林蛙分布在我国东北地区,具有抗炎、抗衰老、抗疲劳等作用,长期以来被广泛应用于中药和食用。林蛙皮肤分泌物中含有大量的生物活性因子,对保护林蛙的身体至关重要。此外,中国林蛙皮肤具有不易感染、自愈、损伤后修复能力强等特点,具有潜在的应用价值。林蛙胶原蛋白肽(RCSPs)是从中国林蛙皮中提取的混合物,主要由多肽和蛋白质组成。既往研究表明,RCSPs对正常细胞毒性低,具有良好的生物相容性。Zhang等发现该多肽对HaCaT细胞具有抗氧化和抗凋亡作用。
发明内容
本发明的目的是为了解决现有的创造敷料中固体微球载药量低、包封率低,释放速率过快的缺陷,而提供一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料及其制备方法。
本发明首先提供一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料的制备方法,该方法包括:
步骤一:采用同轴静电喷雾法,内轴为RCSPs溶液,外轴为海藻酸钠溶液,将经过同轴静电喷雾形成的微滴收集于氯化钙溶液中进行交联,得到海藻酸钠/RCSPs的核壳微球;
步骤二:将明胶和聚乙烯醇溶液混合,得到均质凝胶前驱体,然后将步骤一的海藻酸钠/RCSPs的核壳微球加入到均质凝胶前驱体中,搅拌均匀得到核壳微球/水凝胶前驱体混合物;
步骤三:将步骤二得到的核壳微球/水凝胶前驱体混合物反复冻融至少三次并冻干,得到基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料。
优选的是,所述步骤一的RCSPs溶液中加入10-20%(w/v)甘油。
优选的是,所述步骤一的海藻酸钠溶液的浓度为1-2%(w/v)。
优选的是,所述步骤一同轴静电喷雾法中,内轴的内径为0.8mm,外轴内径为1.4mm,内轴与外轴的流速比为1:2-5,施加的电压为9-14kv,接收距离8-15cm。
优选的是,所述步骤一的交联温度为室温,交联时间为30-60min。
优选的是,所述步骤二中,明胶和聚乙烯醇的质量比为1:1。
优选的是,所述的均质凝胶前驱体的体积mL:海藻酸钠/RCSPs的核壳微球的质量g为5:(1-2)。
优选的是,所述步骤二中的均匀水凝胶前驱体是将聚乙烯醇在80-90℃溶解于水,降温至40-60℃,加入明胶形成的。
优选的是,所述步骤三具体为:将得到的核壳微球/水凝胶前驱体混合物倒入6孔板中,-20℃冷冻12-20h,室温解冻,反复冻融三次,经冻干,即得到基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料。
本发明还提供上述制备方法得到的基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料。
本发明的有益效果
本发明提供一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料及其制备方法,该敷料采用同轴静电喷雾法制备了负载RCSPs的海藻酸钠核壳结构微球,然后,将它们嵌入聚乙烯醇(PVA)和明胶混合水凝胶中,形成混合水凝胶-核壳微球系统的水凝胶。海藻酸盐是一种天然的生物大分子,由于其无毒、安全、高生物相容性、可降解性,在温和的条件下可与Ca2+等二价阳离子形成凝胶,在药物传递和生物工程中得到广泛应用。聚乙烯醇(PVA)和明胶也是两种生物相容的高分子材料,具有高降解性,主要用于组织工程。PVA不仅增加了最终水凝胶结构的孔隙度和细胞基质黏附,而且表现出与皮肤组织相似的力学性能。在水凝胶中添加明胶也能显著提高生物相容性。另外,本发明优化了微球的结构,采取核壳微球结构,采用同轴静电喷雾法制备了含RCSPs的核壳微球,药物从核壳微球中缓慢扩散,水凝胶多孔基质可以使药物的释放动力学更加可控,并降低爆发释放。
实验结果表明:本发明制得的核壳微球的直径为454±14.5μm,载核壳微球水凝胶与液体接触8小时后达到溶胀平衡,吸水率可达1105%。核壳微球包封率可达到62±0.7%,载核壳微球水凝胶在8天内持续释放RCSPs,且无明显的爆发性释放;CCK-8实验显示该敷料无明显细胞毒性;体内创面愈合实验表明,在水凝胶结构中包埋载核壳微球能明显促进创面组织再生,缩短创面愈合时间。该混合微球水凝胶敷料在促进创面愈合方面具有较高的治疗效果。
附图说明
图1分别为内轴与外轴流速为1:2、1:3.5、1:5时采用同轴静电喷雾法合成的核-壳结构的微球的形态图;
图2为纯水凝胶(H0)、实施例2制备得到的水凝胶-核壳微球的创伤敷料(H-CMS)和水凝胶-固体微球的创伤敷料(H-MS)在不同放大倍数下的扫描电镜照片;
图3为纯水凝胶(H0)、实施例2制备得到的水凝胶-核壳微球的创伤敷料(H-CMS)和水凝胶-固体微球的创伤敷料(H-MS)的压缩性能图;
图4为纯水凝胶(H0)、实施例2制备得到的水凝胶-核壳微球的创伤敷料(H-CMS)和水凝胶-固体微球的创伤敷料(H-MS)的吸水率曲线图;
图5为RCSPs的释放曲线;
图6为CCK-8的细胞增殖趋势图;
图7为NIH 3T3成纤维细胞在第1、3和7天的增殖的倒置显微镜照片;
图8为对照组、H0组、H-MS组、H-CMS组移植后第4、8、12天创面愈合照片,
图9为对照组、H0组、H-MS组、H-CMS组在第4、8、12天的创面闭合率图。
图10为对照组、H0组、H-MS组、H-CMS组不同创面组织的HE染色图。
具体实施方式
本发明首先提供一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料的制备方法,该方法包括:
步骤一:采用同轴静电喷雾法,内轴为RCSPs溶液,外轴为海藻酸钠溶液,将经过同轴静电喷雾形成的微滴收集于氯化钙溶液中进行交联,得到海藻酸钠/RCSPs的核壳微球;
步骤二:将明胶和聚乙烯醇溶液混合,得到均质凝胶前驱体,然后将步骤一的海藻酸钠/RCSPs的核壳微球加入到均质凝胶前驱体中,搅拌均匀得到核壳微球/水凝胶前驱体混合物;
步骤三:将步骤二得到的核壳微球/水凝胶前驱体混合物反复冻融至少三次并冻干,得到基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料。
按照本发明,先分别将海藻酸钠和无水氯化钙分别溶解于去离子水,所述的海藻酸钠溶液的浓度优选为1-2%(w/v),无水氯化钙溶液的浓度优选为1-3%(w/v),然后将RCSPs(林蛙胶原蛋白肽)溶解于去离子水中,RCSPs溶液的浓度优选为2-4%(w/v),加入10-20%(w/v)甘油,以在随后的冻干过程中保护RCSPs的活性,采用同轴静电喷雾法,内轴为RCSPs溶液,外轴为海藻酸钠溶液,内轴的内径为0.8mm,外轴的外径为1.4mm,内轴与外轴的流速比优选为1:2-5,更优选为1:3.5,施加的电压为9-14kv,接收距离8-15cm。将微滴收集于氯化钙溶液中,优选在室温交联30-60min,得到海藻酸钠/RCSPs的核壳微球。
按照本发明,将聚乙烯醇加入蒸馏水中,优选在80-90℃磁力搅拌至溶解,制得3-6%(w/v)聚乙烯醇溶液,将其冷却至40-60℃,将明胶加入聚乙烯醇溶液中,搅拌至均质溶液,聚乙烯醇/明胶的质量比为优选为1:1(w/w),得到含有两种聚合物溶液的均质凝胶前驱体,然后将海藻酸钠/RCSPs的核壳微球分散到凝胶前驱体中,通过磁搅拌形成完全均匀的核壳微球/水凝胶前驱体混合物。所述的均质凝胶前驱体的体积mL:海藻酸钠/RCSPs的核壳微球的质量g优选为5:(1-2)。
按照本发明,将上述核壳微球/水凝胶前驱体混合物超声去除气泡。将混合溶液倒入6孔板(每孔5ml)中,-20℃冷冻12-20h,室温解冻,反复冻融三次,得到基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料。
本发明还提供上述制备方法得到的基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料。
下面结合具体实施例对本发明做进一步详细的说明,实施例中涉及到的原料均为商购获得。
实施例1海藻酸钠/RCSPs的核壳微球的制备
先分别将海藻酸钠和无水氯化钙分别溶解于去离子水,所述的海藻酸钠溶液的浓度为1.5%(w/v),无水氯化钙溶液的浓度为3%(w/v),然后将RCSPs(购于吉林省方平科技有限公司)溶解于去离子水中,RCSPs溶液的浓度为3%(w/v),加入10%(w/v)甘油,以在随后的冻干过程中保护RCSPs的活性,采用同轴静电喷雾法,内轴为RCSPs溶液,外轴为海藻酸钠溶液,内轴的内径为0.8mm,外轴的外径为1.4mm,内轴与外轴的流速比分别为1:2、1:3.5、1:5,单位是ml/h,施加的电压为12kv,接收距离8cm。将微滴收集于氯化钙溶液中,在室温交联30min,得到海藻酸钠/RCSPs的核壳微球。同时采用以单轴静电喷雾法制备了海藻酸钠/RCSPs固体微球作为对比。
采用倒置显微镜(OLYMPUS,美国)对微球样品的形貌进行了研究,图1中的a、b、c分别为内轴与外轴流速为1:2、1:3.5、1:5时采用同轴静电喷雾法合成的核-壳结构的微球的形态图,在上述条件下,同轴针尖处可以形成稳定的泰勒锥,内外流体层之间存在明显的流体界面。溶液在高压电场中被切断,液滴喷入CaCl2浴中。钙离子诱导液滴外层的海藻酸钠发生凝胶化,内层保持液相,制备的核壳微球表面均匀光滑。通过改变两种溶液的流速比,得到了不同直径和壳层厚度的核壳微球。内外轴流速比越大,壳层越薄,反之亦然,制备得到的核壳微球直径在454±14.5μm。
将实施例1得到的海藻酸钠/RCSPs的核壳微球和海藻酸钠/RCSPs固体微球进行包封率测试,具体为:
取适量微球磨碎,用5ml蒸馏水溶解,0.45μm滤水器过滤上清液,以去除可见杂质。为了减少杂质,需要再次离心并提取上清。加入适量考马斯亮蓝溶液,用分光光度计(T6newcentury,Beijing Purkinje General Instrument Co.,Ltd.)测定其在595nm波长下的OD值。
包封率=(实测RCSPs含量/理论RCSPs含量)*100%。结果如表1所示,表1说明,增加内轴和外轴的流速比是提高RCSPs封装效率的一种好方法。但当流速比为1:2时,所得核壳微球在冻干过程中容易破碎,导致药物包封失效。因此,选取内外轴流速比为1:3.5的核壳微球作为最佳的实验样品。此外,固体微球包封RCSPs的包封率仅为46±0.8%,与溶液流速无明显关系。结果表明,核壳微球包封RCSPs的效率比固体微球有更大的潜力。在实际应用中,可以大大减少药物的浪费,提高药物的利用率。
表1
实施例2
将聚乙烯醇加入蒸馏水中,优选在80℃磁力搅拌4h至溶解,冷却至50℃,制得4%(w/v)聚乙烯醇溶液,按明胶和聚乙烯醇的质量比为1:1,将明胶加入聚乙烯醇溶液中,搅拌2h至均质溶液,得到含有两种聚合物溶液的均质凝胶前驱体,然后将1g实施例1制备得到的海藻酸钠/RCSPs的核壳微球(选取内轴与外轴流速为1:3.5的微球)分散到5ml凝胶前驱体中,通过磁搅拌形成完全均匀的核壳微球/水凝胶前驱体混合物,超声去除气泡(BILON3-120A,上海,中国),将混合溶液倒入6孔板中,-20℃冷冻20h,室温解冻,反复冻融三次,经冻干得到基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料。同时制备水凝胶-固体微球的创伤敷料作为对比。
将实施例2制备得到的基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料进行表征测试,具体为:
1、形态学表征
将纯水凝胶、实施例2制备得到的水凝胶-核壳微球的创伤敷料和水凝胶-固体微球的创伤敷料样品,先在液氮中焠断,表面覆盖金,然后在20kv扫描电镜(SEM)下进行了研究(飞利浦XL30ESEM-FEG)。利用图像处理程序“image J”软件对倒置显微镜和SEM图像进行分析。如图2所示,其中,a和d分别为不同放大倍数下纯水凝胶(H0)的照片,b和e分别为不同放大倍数下水凝胶-核壳微球的创伤敷料(H-CMS)的照片,c和f分别为不同放大倍数下水凝胶-固体微球的创伤敷料(H-MS)的照片,从图2可以对比看出,扫描电镜显示水凝胶的形态,呈现均匀网状三维结构,且载核壳微球水凝胶较纯水凝胶更为疏松多孔,作用于伤口时可吸收其多余的渗液。
2、机械性能
在24孔板中制备创伤敷料,用上述溶液混合物制备柱状水凝胶(直径20mm,高度10mm)。采用美国Instron公司的万能拉伸试验机,以1mm/min的恒定速率,对添加或不添加微球的水凝胶进行了压缩性能测试。根据应力-应变曲线计算了试样的抗压强度。如图3所示,A图为三种水凝胶的应力-应变曲线,B图为三种水凝胶的压缩性能图,从图3可以看出,三种水凝胶的应力-应变趋势无显著差异,图3B显示当达到50%形变时,纯聚乙烯醇明胶水凝胶的压缩强度为(133.3±5.09)KPa,引入固体微球后水凝胶的压缩强度为(105.5±7.47)KPa。引入核壳微球后水凝胶的压缩强度为(120.33±14.57)KPa,三者无显著差异(P>0.05)。结果证明微球的引入对水凝胶的压缩强度无明显影响。研究显示聚乙烯醇明胶水凝胶与皮肤有类似的机械性能。因此,我们制备的包埋微球的复合水凝胶可以作为一种理想的创面敷料。
3、吸水率
通过对水凝胶培养过程中质量变化的监测,研究了水凝胶的吸水特性。将含有微球和不含微球的冻干水凝胶样品分别浸泡在37℃的盐水中(n=3)。在特定时间,蒸馏水冲洗生理盐水后,立即将膨胀的水凝胶取出称重,滤纸吸收表面多余的液体,直至达到溶胀平衡。根据定义计算支架的吸水率:W=(Ms-M0)/M0,其中M0为冻干水凝胶的质量,Ms为每个特定时间膨胀水凝胶的质量。
图4为纯水凝胶(H0)、实施例2制备得到的水凝胶-核壳微球的创伤敷料(H-CMS)和水凝胶-固体微球的创伤敷料(H-MS)的吸水率曲线图,图4说明,不同组分的水凝胶的膨胀特性明显不同,尤其是在前2h内,负载核壳和固体微球的水凝胶较纯水凝胶有更高的吸水率,并在8h达到溶胀平衡,最终吸水率为1105%和1156%,而纯水凝胶是937%。含有微球的水凝胶的吸水指数较高,这可能是由于微球在水凝胶网络中的分布,增加了水凝胶的松散结构。而且水凝胶的制备采用物理交联方法,水凝胶网状结构更加疏松多孔,这对出血创面具有更好的止血效果。
4、RCSPs释放曲线
分别在生理盐水中测试了载RCSPs微球和载微球水凝胶的释放动力学。将含有等量实施例2制备得到的水凝胶-核壳微球的创伤敷料(H-CMS组)和水凝胶-固体微球的创伤敷料(H-MS组)放入5ml生理盐水中。同时为了评估RCSPs从微球中的释放,核壳微球和固体微球样品(300毫克)浸在5ml生理盐水中。所有样品在37℃70rpm的摇床培养箱中保存7天(n=3)。在特定的时间点,从每个样本中收集2ml上清液,用等量的新鲜生理盐水替换。加入适量考马斯亮蓝试剂后用分光光度计测定上清液595nm处的吸光度。
图5为RCSPs的释放曲线,图5说明,最终孵育8天后,载核壳微球水凝胶组和载固体微球水凝胶组RCSPs的累积释放量分别达到46.53%和66.17%。当第5天时,H-CMS组和H-MS组的RCSPs释放率均达到稳定水平,说明部分RCSPs仍存在于微球中。与核壳微球组和固体微球组相比,混合水凝胶/微球系统显著延迟RCSPs的爆发释放,可以归因于凝胶的三维网络结构延缓了包埋于水凝胶中的微球中的RCSPs的释放,从而大大减少了药物释放率。可以推测药物在水凝胶基质的存在下依次释放,先从微球扩散,然后通过水凝胶的多孔结构释放。这些特性有利于药物的长期缓释和对创面的持续作用,从而促进创面愈合。还可以观察到,RCSPs在核壳微球的释放速率比在固体微球中慢,固体微球组从一开始就表现出爆发性释放,第8天累积释放量达到85.43%,而核壳微球组表现出缓慢而持续的释放曲线,最终累积释放量仅为55.95%。这可能是由于核壳微球对RCSPs具有较高的包封效率。因此核壳微球比固体微球更有可能实现药物的缓释。
5、细胞附着和增殖
采用CCK-8(Dojindo,Shanghai)细胞毒性试验,分别于第1、3、7天检测水凝胶的细胞附着和增殖情况。将含有或不含微球的水凝胶样品在紫外光下照射4小时进行灭菌。为了研究样品的生物相容性和细胞毒性,将NIH3T3细胞以5×104个细胞/孔的密度接种于12孔板中。DMEM F12(Hyclone,America)加入10%胎牛血清和1%青霉素/链霉素,在5%CO2 37℃孵育。空白细胞培养板作为对照组。培养基每两天更换一次。在第1、3、7天,每组用新鲜培养基替代,并添加培养基体积的10%CCK-8。孵育2h后,用酶标仪检测溶液在450nm处的吸光度。根据DINEN ISO标准(10993/5),细胞的体外存活率应在70%以上,说明创面敷料具有生物相容性。
图6为CCK-8的细胞增殖趋势图,图7为NIH 3T3成纤维细胞在第1、3和7天的增殖的倒置显微镜照片,图6和7说明,所有实验组的细胞存活率均在70%以上,而载核壳微球水凝胶组的细胞存活率更明显。此外,所有的水凝胶支架都没有明显的细胞毒性,因为NIH 3T3细胞能够在一周内正常增殖。载核壳微球水凝胶组细胞存活率高,可能与其包封率高、药物释放持续有关。还可以观察到,包埋在核壳微球中的RCSPs可以在一周内维持以促进皮肤再生的生物活性。结果表明,载核壳微球水凝胶复合敷料对成纤维细胞的黏附和增殖无明显影响,对促进创面愈合具有重要作用。
6.体内实验
采用大鼠模型评价了混合微球/水凝胶复合体系的创面愈合特性。将28只雄性Wistar大鼠(200-250gr)随机分为4组。按体重注射7%水合氯醛麻醉。手术部位用10%聚维酮碘和70%乙醇溶液消毒。从每只大鼠的背部切除一个直径为1cm的全层伤口。第一组未经治疗,作为对照组,以观察在没有任何治疗的情况下动物的伤口自然愈合情况。第二组采用不含微球的PVA/明胶水凝胶,命名为H0组。第三组大鼠采用包埋于水凝胶内的载RCSPs固体微球(H-MS组)。第四组在水凝胶中加入本发明的核壳微球(H-CMS组)。根据以上体外实验结果,选择了性能最佳的核壳微球包封RCSPs。各组用无菌纱布和胶带固定。移植后4、8、12天取下敷料拍照,同时处死大鼠进行组织学分析。
图8为对照组、H0组、H-MS组、H-CMS组移植后第4、8、12天创面愈合照片,图9为对照组、H0组、H-MS组、H-CMS组在第4、8、12天的创面闭合率图。(*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001);图8和9说明:到第4天,实验组与对照组创面愈合情况有显著性差异。第4天H-CMS创面闭合率约为53.98%,而对照组H0、H-MS创面闭合率分别为40.28%、42.91%、47.09%。第12天H-CMS组愈合率为97.58%,对照组为83.26%,H0组为89.71%,H-MS组为92.51%。这些结果可能是由于从H-MS和H-CMS中释放的RCSPs,促进了伤口附近的细胞粘附和增殖。H-CMS组更高的伤口愈合率可能与其对RCSPs高包封率有关。由于明胶具有较高的生物相容性,促进细胞粘附,且PVA具有与皮肤相似的力学性能,与对照组相比,H0组在短时间内对创面愈合有一定的促进作用。相比之下,对照组创面面积仅略有下降,这是由于机体创面的自然愈合过程所致。
7、组织学分析
将小鼠的伤口及周围皮肤切开,4%甲醛固定,石蜡包埋。活检的部分切成5μm厚和沾)观察组织愈合,炎症,血管生成和成纤维细胞。结果如图10所示,图10为对照组、H0组、H-MS组、H-CMS组不同创面组织的HE染色图,从图10可以看出,到第4天,对照组和H0组上皮层和肌层之间的炎症细胞明显多于H-CMS组和H-MS组,组间有明显差异。第8天时与H0组和对照组比较,H-CMS组和H-MS组成纤维细胞增多,微上皮化颗粒组织出现,再生血管数量增加。第12天,H-CMS组和H-MS组的炎性细胞被肉芽组织和成纤维细胞所替代,形成了均匀的再上皮化组织,新生血管数目大大增加,而H0组的多形核细胞和中性粒细胞仍有浸润。对照组炎症细胞仍然较多,再上皮化纤维组织紊乱,组织厚度增加较少。以上结果表明,混合微球水凝凝胶由于其包埋的RCSPs的缓慢释放,促进伤口周围的成纤维细胞增殖和血管再生,在12天内持续促进伤口愈合。
综上所述,本发明采用序贯给药系统控制RCSPs的释放,以促进大鼠创面愈合。该系统是基于PVA/明胶水凝胶包埋负载RCSPs的海藻酸钠核壳微球,实现药物的缓释。体外实验表明,微球混合水凝胶支架没有明显的细胞毒性,CCK-8检测显示细胞在1周内有明显的增殖。在水凝胶中加入微球可以获得无明显爆发的释放动力学,但对水凝胶的力学性能没有显著影响。核壳微球比固体微球具有更高的包封效率。体内创面愈合实验表明,在水凝胶结构中包埋载核壳微球能明显促进创面组织再生,缩短创面愈合时间。组织学分析表明,实验结果与体内实验相似。可以预见,该混合微球水凝胶敷料在促进创面愈合方面具有较高的治疗效果。
Claims (8)
1.一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料的制备方法,其特征在于,该方法包括:
步骤一:采用同轴静电喷雾法,内轴为RCSPs溶液,外轴为海藻酸钠溶液,将经过同轴静电喷雾形成的微滴收集于氯化钙溶液中进行交联,得到海藻酸钠/RCSPs的核壳微球;所述步骤一同轴静电喷雾法中,内轴的内径为0.8mm,外轴内径为1.4mm,内轴与外轴的流速比为1:3.5,施加的电压为9-14kv,接收距离8-15cm;所述的核壳微球的直径为454±14.5μm;
步骤二:将明胶和聚乙烯醇溶液混合,得到均质凝胶前驱体,然后将步骤一的海藻酸钠/RCSPs的核壳微球加入到均质凝胶前驱体中,搅拌均匀得到核壳微球/水凝胶前驱体混合物;
步骤三:将步骤二得到的核壳微球/水凝胶前驱体混合物反复冻融至少三次并冻干,得到基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料;
所述步骤一的RCSPs溶液中加入10-20%甘油。
2.根据权利要求1所述的一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料的制备方法,其特征在于,所述步骤一的海藻酸钠溶液的浓度为1-2%。
3.根据权利要求1所述的一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料的制备方法,其特征在于,所述步骤一的交联温度为室温,交联时间为30-60min。
4.根据权利要求1所述的一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料的制备方法,其特征在于,所述步骤二中,明胶和聚乙烯醇的质量比为1:1。
5.根据权利要求1所述的一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料的制备方法,其特征在于,所述的均质凝胶前驱体的体积mL:海藻酸钠/RCSPs的核壳微球的质量g为5:(1-2)。
6.根据权利要求1所述的一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料的制备方法,其特征在于,所述步骤二中的均匀水凝胶前驱体是将聚乙烯醇在80-90℃溶解于水,降温至40-60℃,加入明胶形成的。
7.根据权利要求1所述的一种基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料的制备方法,其特征在于,所述步骤三具体为:将得到的核壳微球/水凝胶前驱体混合物倒入6孔板中,-20℃冷冻12-20h,室温解冻,反复冻融三次,经过冻干,即得到基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料。
8.权利要求1-7任何一项所述的制备方法得到的基于水凝胶-核壳微球的创伤敷料。
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