CN109321540A - 一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法 - Google Patents

一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法 Download PDF

Info

Publication number
CN109321540A
CN109321540A CN201811345995.XA CN201811345995A CN109321540A CN 109321540 A CN109321540 A CN 109321540A CN 201811345995 A CN201811345995 A CN 201811345995A CN 109321540 A CN109321540 A CN 109321540A
Authority
CN
China
Prior art keywords
tobacco
enzyme activity
pbs
reductase
leaf
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201811345995.XA
Other languages
English (en)
Inventor
翟妞
王晨
周会娜
张慧
陈千思
徐国云
郑庆霞
刘萍萍
卢鹏
李晶
许亚龙
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Zhengzhou Tobacco Research Institute of CNTC
Original Assignee
Zhengzhou Tobacco Research Institute of CNTC
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zhengzhou Tobacco Research Institute of CNTC filed Critical Zhengzhou Tobacco Research Institute of CNTC
Priority to CN201811345995.XA priority Critical patent/CN109321540A/zh
Publication of CN109321540A publication Critical patent/CN109321540A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0012—Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.6, 1.7)
    • C12N9/0044—Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.6, 1.7) acting on other nitrogen compounds as donors (1.7)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0051—Oxidoreductases (1.) acting on a sulfur group of donors (1.8)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y107/00—Oxidoreductases acting on other nitrogenous compounds as donors (1.7)
    • C12Y107/99—Oxidoreductases acting on other nitrogenous compounds as donors (1.7) with other acceptors (1.7.99)
    • C12Y107/99004—Nitrate reductase (1.7.99.4)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y108/00—Oxidoreductases acting on sulfur groups as donors (1.8)
    • C12Y108/01—Oxidoreductases acting on sulfur groups as donors (1.8) with NAD+ or NADP+ as acceptor (1.8.1)
    • C12Y108/01007—Glutathione-disulfide reductase (1.8.1.7), i.e. glutathione reductase (NADPH)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

本申请属于烟草代谢物技术领域，具体涉及一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法专利申请事宜。该方法针对新鲜烟叶中还原酶的提取，具体包括：制备提取液（采用裂解液RIPA、缓冲液NEB或PBS）、烟叶预处理、溶液法提取等步骤。初步测定结果表明，经过相关提取工艺参数优化后，提取液中GSR酶活得到了较好提高，可达2.3×10‑3U/μg全蛋白，而NR酶活可达6.2×10‑ 3U/μg全蛋白，达到了减少杂质蛋白干扰、提升GSR酶和NR酶含量的目的。同时由于相关提取方法简单快速、耗时较短（仅1.5 h左右），因此使得本申请具有较好的科研价值，可为GSR和NR活性分析及其它相关蛋白分析和研究奠定技术基础。

Description

一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法
技术领域
本申请属于烟草代谢物技术领域，具体涉及一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法。
背景技术
烟草作为一种较为特殊的经济作物，其产量与品质直接关系到我国国民经济的健康发展。为了研究烟草基因功能，创制新的育种材料，对烟草代谢物进行深入研究和分析显然具有十分重要的意义。
生长发育过程中，植物细胞中多种生理生化反应都可产生活性氧(reactiveoxygen species，ROS)。过高浓度活性氧会对植物细胞发育造成不可逆的损害，因此正常生长条件下，植物细胞中ROS维持在较低的水平，并存在一定的清理机制，以维持其较低水平。然而，干旱、低温、盐胁迫、高温、强光、重金属、紫外辐射、空气中的臭氧（O3）和SO2等污染气体、机械损伤等胁迫因素都可引起ROS的大量增加，若不及时清除，就会对植物细胞产生严重伤害。烟草细胞内，谷胱甘肽还原酶(glutathione reductase，GSR) 通过抗坏血酸·谷胱甘肽循环途径(Asa·Glu循环)，催化GSSG还原为GSH，通过GSH的再生构成了烟草细胞内的清除ROS的抗氧化系统，并进而维持植物细胞内的氧化还原平衡。
另一方面，硝酸还原酶(nitrae reductase，NR)也是烟草细胞内一种重要的还原酶，NR酶是烟草氮代谢中硝酸盐还原的限速酶和调节酶，可以催化NAD(P)H将NO3-还原为NO2-的反应，其作用是将烟草从土壤中吸收的硝态氮还原为亚硝酸盐，然后在亚硝酸盐还原酶作用下继续还原成氨，最后形成蛋白质，是烟草利用氮素的重要途径。硝酸还原酶作用的产物亚硝酸盐是烟草特有亚硝胺的前体物质，而后者是烟叶内的致癌物质。
由于还原酶类代谢物与烟草品质、烟草危害的紧密关联性，因此，对于这类还原酶的深入研究，对于烟草生理生化的深入研究、以及烟草新材料鉴定、新品种培育都具有十分重要的意义。
现有技术中，植物蛋白（包括生物酶）的提取方法主要有两种：溶液法和沉淀法。其中沉淀法因其提取过程中采用了变性剂，会导致部分蛋白酶结构改变并失去活性，因此沉淀法并不适合烟草叶片全蛋白的提取。而在应用溶液法进行提取时，由于不同蛋白（生物酶）特性不同，因此具体提取所选择的提取液及提取工艺也往往缺乏可借鉴性，往往均需重新设计。而现有技术中尚未见到较好的提取还原酶类的提取方法报道。
发明内容
本申请目的在于提供一种提高烟叶提取物中还原酶酶活提取方法，从而为烟草生长代谢研究奠定一定方法学基础。
本申请所采取的技术方案详述如下。
一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法，该方法针对新鲜烟叶中还原酶的提取，所述还原酶主要指：谷胱甘肽还原酶（GSR）和硝酸还原酶（NR），具体包括如下步骤：：
（1）制备提取液，具体可采用裂解液RIPA、NEB或PBS；配方组成为：
裂解液RIPA ：Tris-Cl（pH 8.0）、50 mM，EDTA、1mM，SDS、0.1%，NaCl、150 mM，NP-40、1%，PMSF、1 mM；
缓冲液NEB： Hepes（pH 7.5）、20mM，KCl、40 mM，EDTA、1 mM，PMSF、1 mM；
pH 8.0的PBS：NaCl、137 mM，KCl、2.7 mM，Na2HPO4 9.5 mM，NaH2PO4、0.5 mM，PMSF、1mM；
pH7.2的PBS：NaCl、137 mM，KCl、2.7 mM，Na2HPO4 7.2 mM，NaH2PO4、2.8 mM，PMSF、1 mM；
pH 6.0的PBS：NaCl、137 mM，KCl、2.7 mM，Na2HPO4 1.2 mM，NaH2PO4、8.8 mM，PMSF、1mM；
（2）烟叶预处理
将栽培烟草K326（或者NC82）8-12叶期的新鲜烟叶，液氮速冻后，研磨成粉。
（3）溶液法提取
在步骤（2）研磨成粉烟叶样品中加入步骤（1）中制备的提取液（裂解液），震荡混匀后，冰上静置不少于1h；
具体用量方面，研磨成粉烟叶样品100mg，提取液（裂解液）用量为500μl-1mL；
静置完成后，5000~15000rpm离心不少于20min（离心速度具体例如为5000 rpm、9000rpm或13000rpm等），保留上清液，即为含有较高还原酶（谷胱甘肽还原酶（GSR）和/或硝酸还原酶（NR））酶活的提取液；
进一步地，利用BCA法可对上清液中蛋白浓度进行检测，可利用ELISA法对上清液中GSR和NR的活性进行检测。
现有技术中，针对所提取全蛋白中谷胱甘肽还原酶（GSR）和硝酸还原酶（NR）酶活进行分析测定时，由于所提取蛋白杂质较多，因而对于准确酶活测定造成了较大影响。本申请中，针对全蛋白提取方式做了部分优化，以期提高GSR酶活和NR酶活。
初步测定结果表明，经过相关提取工艺参数优化后，提取液中谷胱甘肽还原酶（GSR）酶活得到了较好提高，可达2.3×10-3U/μg全蛋白，而硝酸还原酶（NR）酶活可达6.2×10-3U/μg全蛋白，较好达到了减少杂质蛋白干扰、提升GSR酶和NR酶含量的目的。同时由于相关提取方法简单快速、耗时较短（仅1.5 h左右），因此使得本申请具有较好的科研价值，可为GSR和NR活性分析及其它相关蛋白分析和研究奠定技术基础。
附图说明
图1不同提取液获得的GSR活性；
图2不同pH 的PBS获得的GSR活性；
图3 不同提取液比例的GSR活性；
图4 不同烟草品种中PBS获得的GSR活性；
图5不同提取液不同离心速率获得的NR活性；
图6不同提取液比例获得的NR活性；
图7不同品种获得的NR活性；
各图中：K326、NEB、RIPA分别表示对应的裂解液，P6、P7、P8分别表示pH=6.0、7.2、8.0的PBS，数字5、13分别表示离心速度为5000、13000，1：5、1：10分别表示提取液比例。
具体实施方式
下面结合实施例对本申请做进一步的解释说明，在介绍具体实施例前，就下述实施例中涉及部分实验材料、实验方法等背景情况简要介绍说明如下。
实验材料：
栽培烟草K326和NC82 ，实验室培育至8-12叶期，采取新鲜烟叶。
实验方法：
1、BCA法检测蛋白浓度时，具体参考如下操作步骤：
（1）取上清液，稀释10倍；根据样品数量，按50体积BCA试剂A加1体积BCA试剂B（50:1）配制BCA工作液，充分混匀；
（2）设置空白孔、标准品孔和样品孔，每个样品三次重复，每空加入20μl蛋白提取液，200μL BCA工作液；
（3）把酶标板放在振荡器上振荡30sec，37℃放置30分钟，然后在562nm下酶标仪检测，以蛋白含量（μg）为横坐标，吸光值为纵坐标，绘出标准曲线；
根据所测样品的吸光值，依据标准曲线获得相应的蛋白含量（μg），除以样品稀释液总体积（20μL），乘以样品稀释倍数即为样品实际浓度（单 位：μg/μL）；
2、ELISA法检测酶活性时，参考如下步骤：
（1）室温平衡20min酶活性检测试剂；
（2）设置标准品孔和样本孔，标准品孔各加不同浓度的标准品50μL；样本孔中加入待测样本50μL，空白孔不加；
除空白孔外，标准品孔和样本孔中每孔加入辣根过氧化物酶（HRP）标记的检测抗体100μL，用封板膜封住反应孔，37℃水浴锅或恒温箱温育60min；
（3）弃去液体，吸水纸上拍干，每孔加满洗涤液（350μL），静置1min，甩去洗涤液，吸水纸上拍干，如此重复洗板5次（也可用洗板机洗板）；
每孔加入试剂盒中底物A、B各50μL，37℃避光孵育15min；
每孔加入终止液50μL，15min内，在450nm波长处测定各孔的OD值；
以所测标准品的OD值为横坐标，标准品的浓度值为纵坐标，绘制标准曲线，并得到直线回归方程，将样品的OD值代入方程，计算出样品的浓度。
实施例1
本实施例针对提高烟叶提取物中谷胱甘肽还原酶（GSR）酶活进行改进，具体步骤简要介绍如下。
（1）制备提取液，具体可采用裂解液RIPA、NEB或PBS；配方组成为：
裂解液RIPA ：Tris-Cl（pH 8.0）、50 mM，EDTA、1mM，SDS、0.1%，NaCl、150 mM，NP-40、1%，PMSF、1 mM；
缓冲液NEB： Hepes（pH 7.5）、20mM，KCl、40 mM，EDTA、1 mM，PMSF、1 mM；
pH 8.0的PBS：NaCl、137 mM，KCl、2.7 mM，Na2HPO4 9.5 mM，NaH2PO4、0.5 mM，PMSF、1mM；
pH7.2的PBS：NaCl、137 mM，KCl、2.7 mM，Na2HPO4 7.2 mM，NaH2PO4、2.8 mM，PMSF、1 mM；
pH 6.0的PBS：NaCl、137 mM，KCl、2.7 mM，Na2HPO4 1.2 mM，NaH2PO4、8.8 mM，PMSF、1mM；
（2）烟叶预处理
栽培烟草K326和NC82 ，实验室培育至8-12叶期，采集新鲜烟叶。液氮速冻后，研磨成粉。
（3）溶液法提取
在步骤（2）研磨成粉烟叶样品中加入步骤（1）中制备的提取液（裂解液），震荡混匀后，冰上静置不少于1h；
具体用量方面，研磨成粉烟叶样品100mg，提取液（裂解液）用量为500μl-1mL（具体为500μl或者1mL）；
静置完成后，5000~15000rpm离心不少于20min（离心速度具体例如为5000 rpm、9000rpm或13000rpm等），保留上清液，即为含有较高谷胱甘肽还原酶（GSR）酶活的提取液；
进一步地，利用BCA法对上清液中蛋白浓度进行检测，利用ELISA法对上清液中GSR的活性进行检测。
对不同提取液、不同pH 的PBS、不同离心速度、不同提取液比例处理后上清液中GSR活性进行检测，结果分别如图1、图2、图3、图4所示。分析可以看出：采用PBS（pH 7.2）RIPA和NEB处理时，低速离心结果相对较好，分析认为，这主要是杂质蛋白之间的相互作用有一定抵消，减弱了对于GSR酶活测定的影响，并且PBS的提取效果更好；在不同pH 的PBS处理时，pH 8.0的PBS提取时GSR活性更高；在不同提取液比例处理时，1：10比例时，GSR活性更高。而对于不同的栽培品种NC82，同样处理方法得到的GSR的活性也较高。
总体而言，就GSR酶活测定或提取而言，采用PBS （pH 8.0）、提取液比例1:10、离心速率5000rpm，处理结果最优；主要原因在于，裂解处理后，杂质蛋白之间的相互作用有一定抵消，减弱了对于GSR酶活测定，而合适pH值也使GSR的活性更好。
实施例2
本实施例以提高烟叶提取物中硝酸还原酶（NR）酶活为例，进行具体改进，具体过程与实施例1类似，仅就部分操作参数做了适当调整。
对不同提取液、不同pH 的PBS、不同离心速度、不同提取液比例处理后上清液中NR活性进行检测，结果分别如图5、图6、图7所示。分析可以看出：采用PBS（pH 8.0）处理时，高速离心参数（13000 rpm）下获得酶活效果显然较高，也即高速离心情况下可以较好去除杂质蛋白对于酶活测定影响；在不同pH 的PBS处理时，pH 8.0的PBS提取时NR活性更高；在不同提取液比例处理时，1：10比例时，NR活性更高。而对于不同的栽培品种NC82，同样处理方法得到的NR的活性也较高。
总体而言，就NR酶活测定或提取而言，采用PBS （pH 8.0）、提取液比例1:10、离心速率13000rpm，处理结果最优；主要原因在于，裂解处理后，高速离心情况下可以较好去除杂质蛋白对于酶活测定影响，而合适pH值也使NR的活性更好。

Claims (5)

1.一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法，其特征在于，该方法针对新鲜烟叶中还原酶的提取，具体包括如下步骤：
（1）制备提取液，具体采用裂解液RIPA、NEB或PBS；配方组成为：
裂解液RIPA ：pH 8.0的Tris-Cl、50 mM，EDTA、1mM，SDS、0.1%，NaCl、150 mM，NP-40、1%，PMSF、1 mM；
缓冲液NEB：pH 7.5 的Hepes、20mM，KCl、40 mM，EDTA、1 mM，PMSF、1 mM；
（2）烟叶预处理
将烟草8-12叶期的新鲜烟叶，研磨成粉备用；
（3）溶液法提取
在步骤（2）研磨成粉烟叶样品中加入步骤（1）中制备的提取液，震荡混匀后，冰上静置不少于1h；具体用量方面，研磨成粉烟叶样品100mg，提取液用量为500μl-1mL；
静置完成后，5000~15000rpm离心不少于20min，保留上清液，即为含有还原酶酶活的提取液。
2.如权利要求1所述提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法，其特征在于，所述还原酶指：谷胱甘肽还原酶和硝酸还原酶。
3.如权利要求2所述提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法，其特征在于，步骤（2）中，所述栽培烟草为K326或者NC82品种。
4.如权利要求3所述提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法，其特征在于，步骤（1）中PBS的pH=8.0、7.2或者6.0，具体组成为：
pH=8.0的PBS ：NaCl、137 mM，KCl、2.7 mM，Na2HPO4 9.5 mM，NaH2PO4、0.5 mM，PMSF、1mM；
pH=7.2的PBS：NaCl、137 mM，KCl、2.7 mM，Na2HPO4 7.2 mM，NaH2PO4、2.8 mM，PMSF、1 mM；
pH=6.0的PBS：NaCl、137 mM，KCl、2.7 mM，Na2HPO4 1.2 mM，NaH2PO4、8.8 mM，PMSF、1 mM。
5.如权利要求4所述提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法，其特征在于，用于谷胱甘肽还原酶提取时，步骤（1）中，采用ph=8.0的PBS，步骤（3）中，提取液用量为1mL，5000 rpm离心20min；用于硝酸还原酶提取时，步骤（1）中，采用ph=8.0的PBS，步骤（3）中，提取液用量为1mL，13000 rpm离心20min。
CN201811345995.XA 2018-11-13 2018-11-13 一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法 Pending CN109321540A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201811345995.XA CN109321540A (zh) 2018-11-13 2018-11-13 一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201811345995.XA CN109321540A (zh) 2018-11-13 2018-11-13 一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN109321540A true CN109321540A (zh) 2019-02-12

Family

ID=65260932

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201811345995.XA Pending CN109321540A (zh) 2018-11-13 2018-11-13 一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN109321540A (zh)

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101687906A (zh) * 2007-05-16 2010-03-31 马里兰大学，大学城 回收叶蛋白的新方法
CN101831484A (zh) * 2010-04-07 2010-09-15 东北农业大学 一种硝酸还原酶活性测定新方法
CN101870998A (zh) * 2010-07-13 2010-10-27 四川农业大学 一种植物超氧化物歧化酶、过氧化氢酶和过氧化物酶活力检测方法
US20110257369A1 (en) * 2008-10-17 2011-10-20 University Of Maryland Methods for removing nicotine and other alkaloids from soluble leaf proteins in solanaceous and other plant species
WO2012088295A1 (en) * 2010-12-21 2012-06-28 The Chinese University Of Hong Kong A cost-effictive method for expression and purification of recombinant proteins in plants
CN103145817A (zh) * 2013-02-28 2013-06-12 华南农业大学 黄花苜蓿叶绿体冷响应蛋白MfcpCOR14及其编码基因和应用
CN104928317A (zh) * 2015-06-09 2015-09-23 昆明理工大学 烟草赤霉素合成转录调控因子基因的植物表达载体及其应用
CN105543330A (zh) * 2016-01-25 2016-05-04 东北农业大学 一种硝酸还原酶测定试剂盒与应用
CN107699579A (zh) * 2017-11-03 2018-02-16 南京农业大学 一种提高植物抗病性的基因及其应用

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101687906A (zh) * 2007-05-16 2010-03-31 马里兰大学，大学城 回收叶蛋白的新方法
US20110257369A1 (en) * 2008-10-17 2011-10-20 University Of Maryland Methods for removing nicotine and other alkaloids from soluble leaf proteins in solanaceous and other plant species
CN101831484A (zh) * 2010-04-07 2010-09-15 东北农业大学 一种硝酸还原酶活性测定新方法
CN101870998A (zh) * 2010-07-13 2010-10-27 四川农业大学 一种植物超氧化物歧化酶、过氧化氢酶和过氧化物酶活力检测方法
WO2012088295A1 (en) * 2010-12-21 2012-06-28 The Chinese University Of Hong Kong A cost-effictive method for expression and purification of recombinant proteins in plants
CN103145817A (zh) * 2013-02-28 2013-06-12 华南农业大学 黄花苜蓿叶绿体冷响应蛋白MfcpCOR14及其编码基因和应用
CN104928317A (zh) * 2015-06-09 2015-09-23 昆明理工大学 烟草赤霉素合成转录调控因子基因的植物表达载体及其应用
CN105543330A (zh) * 2016-01-25 2016-05-04 东北农业大学 一种硝酸还原酶测定试剂盒与应用
CN107699579A (zh) * 2017-11-03 2018-02-16 南京农业大学 一种提高植物抗病性的基因及其应用

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
赵雁等: "不同提取系统中分析紫花苜蓿抗氧化酶活性和同工酶的比较", 《云南农业大学学报》 *
陈薇等: "植物组织中硝酸还原酶的提取、测定和纯化", 《植物生理学通讯》 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Qin et al. Drought tolerance and proteomics studies of transgenic wheat containing the maize C 4 phosphoenolpyruvate carboxylase (PEPC) gene
Su et al. Reactive oxygen species induced by cold stratification promote germination of Hedysarum scoparium seeds
Durand et al. Acute metal stress in Populus tremula× P. alba (717‐1B4 genotype): Leaf and cambial proteome changes induced by cadmium2+
US7270953B2 (en) Compositions for isolating and/or stabilising nucleic acids in biological material
Lopez Del Egido et al. A spectrophotometric assay for robust viability testing of seed batches using 2, 3, 5-triphenyl tetrazolium chloride: using Hordeum vulgare L. as a model
Carletti et al. Protein expression changes in maize roots in response to humic substances
Zhu et al. Interplay among NH 4+ uptake, rhizosphere pH and plasma membrane H+-ATPase determine the release of BNIs in sorghum roots–possible mechanisms and underlying hypothesis
Giorni et al. Growth and aflatoxin production of an Italian strain of Aspergillus flavus: influence of ecological factors and nutritional substrates
Stojkovic et al. CO2‐concentrating mechanisms in three southern hemisphere strains of E miliania huxleyi
Orozco et al. Two-carbon metabolites, polyphenols and vitamins influence yeast chronological life span in winemaking conditions
CN110100674A (zh) 外源谷氨酸在缓解水稻镉胁迫和降低水稻植株镉含量中的应用
Bila et al. Agmatine prevents oxidative-nitrative stress in blood leukocytes under streptozotocin-induced diabetes mellitus
Famiani et al. Occurrence of a number of enzymes involved in either gluconeogenesis or other processes in the pericarp of three cultivars of grape (Vitis vinifera L.) during development
Gutierrez‐Carbonell et al. Effects of Fe deficiency on the protein profile of Brassica napus phloem sap
CN109321540A (zh) 一种提高烟叶提取物中还原酶酶活的提取方法
de Melo et al. Screening and identification of tannase-producing fungi isolated from Brazilian caves
CN109321536A (zh) 一种提高烟叶提取物中氧化酶酶活的提取方法
Krishnan et al. Biochemical and anatomical investigation of Sesbania herbacea (Mill.) McVaugh nodules grown under flooded and non-flooded conditions
Meng et al. Distinct effect of pH on N uptake and assimilation in two conifer species
Wong et al. Post-germination changes in Hevea brasiliensis seeds proteome
Petjukevičs et al. The impact of different levels of sodium chloride on the quantitative changes of chlorophyll and carotenoids in chloroplasts of Elodea canadensis (Michx. 1803)
Lim et al. Rapid and nondestructive discrimination of Fusarium asiaticum and Fusarium graminearum in hulled barley (Hordeum vulgare L.) using near-infrared spectroscopy
CN109293733A (zh) 一种适用于新鲜烟草叶片全蛋白的提取方法
CN109321544A (zh) 一种提高烟叶提取物中腐胺n-甲基转移酶的提取方法
Chwastowski et al. The kinetic reduction of Cr (VI) by yeast Saccharomyces cerevisiae, Phaffia rhodozyma and their protoplasts

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20190212