CN109077825A - 诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置及用途 - Google Patents

Abstract

本发明提供了一种诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，包括支架、设置在支架顶端的大鼠固定弹性平台、设置在大鼠固定弹性平台下端的张力刺激组件、动力组件、以及设置在张力刺激组件以及动力组件之间的动力转换组件。其中，张力刺激组件包括上下移动的刺激杆、设置在刺激杆顶端并且对大鼠胸腰椎进行刺激的弓形架以及设置在刺激杆底端的动力转换组件连接件；动力转换组件包括与动力组件连接的传动件、安装在传动件上并与动力转换组件连接件相匹配的刺激杆调节轮。

Description

诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置及用途

技术领域

本发明属于黄韧带骨化动物模型构建技术领域，具体涉及一种诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置及应用该装置构建大鼠黄韧带骨化模型的方法。

背景技术

黄韧带骨化症(Ossification of ligamentum flavum,OLF)属脊柱黄韧带异位骨化性疾病，多发于下胸椎，可引发椎管狭窄导致神经功能障碍。OLF起病隐匿，发展缓慢，临床表现主要以脊髓慢性受压引起肢体感觉、运动障碍或大小便、性功能障碍为主，保守治疗无效，手术解除神经压迫是目前唯一可阻断病情发展的有效治疗手段。

OLF在亚洲高发，在中国报道亦日益增多，目前已成为骨科常见病和多发病，但其病因和发病机制仍未明确。目前研究认为，OLF的发生可能归结于以下因素：力学因素、遗传因素、种族差异、分子生物学因素、退变因素、内分泌因素、饮食习惯等。其中力学因素被诸多研究证实在OLF的发生发展过程中起关键作用(Ahn DK，Lee S，Moon SH，etal.Ossification of the ligamentum flavum[J].Asian Spine J，2014，8(1)：89-96)。日本学者Tsukamoto于2006年通过反复牵拉大鼠尾椎实验得出：反复的张力刺激可能是脊柱韧带骨化重要的诱导因素(Tsukamoto N,Maeda T,Miura H,et al.Repetitive tensilestress to rat caudal vertebrae inducing cartilage formation in the spinalligaments:a possible role of mechanical stress in the development ofossification of the spinal ligaments.J Neurosurg Spine. 2006 Sep；5(3):234-42)。虽然该实验直接证实了张力刺激与脊柱韧带骨化的相关性，并且成功诱导了大鼠尾椎的后纵韧带骨化，然而并未出现黄韧带骨化的影像学变化。且通过牵拉脊柱制造黄韧带张力并不符合下胸椎屈曲诱导黄韧带张力的生理机制，其结论能否适用于胸椎黄韧带骨化(TOLF)尚不可知。

因此，如何通过某种装置使实验动物胸腰椎处于反复的屈曲-伸展状态，模拟人类日常生活、工作当中的脊柱屈曲-伸展生理过程，目前已成为研究OLF形成相关力学因素的重大和关键课题。

目前大白兔是建立动物模型应用较多的动物，其黄韧带的暴露相对比较容易，解剖结构的研究也非常明确，因此常采用外科手术干预的方法构建大白兔黄韧带骨化模型。如发明人所在的项目组前期将明胶海绵作为rhBMP的载体，每侧黄韧带内植入物中含rhBMP0.1mg，诱导黄韧带骨化成功，相关成果的论文分别于2000年、2001年和2002年在“第二军医大学学报”、“中国矫形外科杂志”和“中国脊柱脊髓杂志”上发表，证实了BMP 在脊柱韧带骨化过程中起重要作用(陈雄生,贾连顺,倪斌,袁文,陈华江,李玉莉.重组人骨形态发生蛋白2诱发黄韧带骨化的病理学研究.第二军医大学学报,2000；21(7):642；陈雄生,贾连顺,倪斌,孔庆毅,徐爱民,陈华江,李玉莉.重组人骨形态发生蛋白-2诱发黄韧带骨化的实验模型.中国脊柱脊髓杂志,2002；12(1):31)。

但是，一方面，该方法系通过外科干预配合化学物质诱导OLF，这与人类发生OLF的病理生理过程不相符，其研究成果在阐述OLF发病机理方面的参考价值明显不及直接通过张力刺激诱导OLF；另一方面，且目前市场上兔属的抗体不全，成骨过程中一些重要蛋白无法检测，这些均说明大白兔无法成为研究OLF发病机制最理想的模型动物。

鼠也是局部建立黄韧带骨化模型的常见动物，目前供于鼠类的抗体种类较为齐全，对于成骨机制的研究相对有利。但小鼠体型过小，采集黄韧带难度极大，且样本量过低，难以检测其中的成骨相关蛋白；相对而言，大鼠体型相对较大，采集黄韧带难度大大降低，项目组前期工作已证实：单只大鼠胸腰段黄韧带的样本量足以通过Weston Bolt或者PCR检测其OLF相关分子的蛋白或基因表达。

理想的大鼠胸腰椎OLF张力刺激诱导装置，其应具备以下条件：①装置诱导的大鼠OLF病理过程和结果必须与该疾病的发病过程相似；②OLF张力刺激模型建立过程中须严格剔除化学诱导因素；③张力刺激诱导装置应尽量避免对大鼠机体的损害，且刺激诱导频率应可灵活调控，方便探寻最佳刺激频率。而现有技术中尚无相应的刺激装置能够达到上述几点要求，更缺乏系统的模型构建方法。

发明内容

本发明是为解决上述问题而进行的，针对现有技术中存在的大鼠胸腰椎黄韧带骨化模型构建存在的技术问题，提供了一种诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置以及应用该装置构建大鼠黄韧带骨化模型的方法。

本发明设计该张力刺激装置的出发点是：通过使大鼠胸腰椎以一定频率反复屈曲、中立，产生黄韧带周期性张力刺激从而诱导OLF。该诱导方式比较贴合人群工作及生活中频繁俯身、弯腰的生理过程，更贴合人类日常生活中的行为习惯。

为了实现上述目的，本发明提供了如下技术方案：

本发明提供的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置具有如下技术特征：包括支架、设置在支架顶端的大鼠固定弹性平台、设置在大鼠固定弹性平台下端的张力刺激组件、动力组件、以及设置在张力刺激组件以及动力组件之间的动力转换组件。其中，张力刺激组件包括上下移动的刺激杆、设置在刺激杆顶端并且对大鼠胸腰椎进行刺激的弓形架以及设置在刺激杆底端的动力转换组件连接件；动力转换组件包括与动力组件连接的传动件、安装在传动件上并与动力转换组件连接件相匹配的刺激杆调节轮。

进一步，在本发明提供的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置中，大鼠固定弹性平台为固定安装在支架顶端的帆布或弹簧网。帆布或弹簧网上分别设置有前肢固定架和后肢固定架，前肢固定架和后肢固定架上对称设置有多根固定钉，实现同时对多只大鼠进行模型构建。弓形架的延伸方向与前肢固定架和后肢固定架相平行。

本发明中，帆布或弹簧网均具有一定的弹性模量，当发生最大形变时，其回弹力不会阻碍偏心轮转动，且保证平台耐用性足够，满足200万次反复形变(预计满足5年使用年限)。日常使用时，平台表面可放置一次性纸尿垫，方便清理大鼠排泄物，同时避免污染平台。

前肢固定架和后肢固定架的位置和间距可根据大鼠体型生长而灵活调节。静息状态下，大鼠固定后躯体刚好完全伸展，且两点的距离大小不会对脊柱产生水平方向的牵张力。大鼠前后肢的固定建议在麻醉状态下采用软质粗绳进行固定，且须在捆绑处用棉球保护，避免软绳与大鼠皮肤直接接触，防止实验过程中反复摩擦导致大鼠四肢皮肤溃烂。

进一步，在本发明提供的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置中，在张力刺激组件中，刺激杆为弹簧杆；动力转换组件连接件包括顶端与弹簧杆螺纹连接的C型架、通过螺栓和螺母安装在C型架内的滑轮，滑轮带有让刺激杆调节轮卡入的凹槽。

弹簧杆使用的弹簧强度应适中，正好满足弹簧杆始终贴附于刺激杆调节轮，且最大形变时弹力不会阻碍刺激杆调节轮的连续转动。

进一步，在本发明提供的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置中，弓形架两端的叶片为通过铰链连接的活叶。当弓形架降到底时，两叶向上折弯，底边贴附于平台，此时弓形架基本呈“T”形，可使大鼠胸腰椎彻底放松。

进一步，在本发明提供的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置中，弓形架的升降幅度为8～12cm，最大不能超过15cm。升降幅度过大否则容易导致大鼠胸腰椎过屈引发创伤，过小则难以对大鼠胸腰椎黄韧带产生足够大的刺激。

进一步，在本发明提供的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置中，动力组件为无级变速动力系统，包括安装在支架底端的电机、与电机连接的变速箱以及与变速箱连接的调速器。优选电机和变速箱的功率均为120W，调速器功率为5KB。

该无级变速动力系统转速可灵活调节，以满足实验人员寻找最佳诱导频率。安装时，电机安装在支架底端，变速箱和调速器不必限定在该位置，安装在支架合适位置即可，尤其是调速器，优选安装在支架上半部分上，方便操作人员操作。

进一步，在本发明提供的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置中，在动力转换组件中，传动件包括安装在支架底端的底座、安装在底座上的传动轴、连接传动轴以及电机输出轴的传动带，刺激杆调节轮为安装在传动轴上并且与滑轮相匹配的双叶轮。

双叶轮形状近似8字型，中间内凹，双叶轮在传动轴的带动下旋转，带动刺激杆实现上下位置交替。

进一步，在本发明提供的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置中，在动力转换组件中，传动件包括安装在电机输出轴上的轴承架，刺激杆调节轮为安装在轴承架上并与滑轮相匹配的偏心轮。

此属于动力转换组件的另一种形式，偏心轮在电机输出轴的带动下旋转，由于其偏心设置，旋转过程中恰好实现带动刺激杆上下移动。

本发明中的张力刺激装置在使用时，先将实验大鼠以躯体腹侧贴附大鼠固定弹性平台的方式并列排列，摆放时弓形架顶端应紧贴大鼠肋弓下缘进行摆放和固定，避免对应至肋骨，从而影响脊柱屈曲效果，且容易引起肋骨骨折、胸部脏器损伤，而后将四肢用软线绑在固定钉上；动力组件启动后，电机以一定频率旋转，带动传送带引发刺激杆调节轮旋转，由于弹簧杆上的滑轮卡在刺激杆调节轮上，使得弹簧杆随着刺激杆调节轮的旋转，以一定频率和幅度反复升降，弓形架亦随之升降；当弓形架升高时，大鼠胸腰椎随之弓起，胸腰椎屈曲引发脊柱黄韧带产生张力刺激；当弓形架降至最低时，大鼠胸腰椎处于中立休息位，黄韧带张力刺激完全解除，通过反复营造大鼠胸腰椎黄韧带的周期性张力刺激，建立大鼠OLF模型。

本发明的另一方面，提供了采用权利要求1～9所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置构建大鼠黄韧带骨化模型的方法，其特征在于，包括以下步骤：

A)将多只大鼠并列放置在所述大鼠固定弹性平台上，使得所述弓形架的顶端紧贴大鼠肋弓下缘，并固定大鼠四肢；

B)打开张力刺激装置，诱导幅度为8～12cm，使得大鼠胸腰椎弓起至最高点较中立位高度落差为8～12cm，诱导频率为90次/分，每日诱导20分钟，每周连续诱导5日，连续诱导12周后得到所述大鼠黄韧带骨化模型。

通过对不同诱导时期的大鼠胸腰椎离体标本行Micro-CT扫描，并计算不同诱导时间 OLF的阳性率。结果显示，诱导4周、8周、12周的OLF阳性率不同，分别为12.5％、25％以及100％，诱导时间越长，骨化效果越显著。

发明的作用与效果

根据本发明提供的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，由于包括支架、设置在支架顶端的大鼠固定弹性平台、设置在大鼠固定弹性平台下端的张力刺激组件、动力组件、以及设置在张力刺激组件以及动力组件之间的动力转换组件，实现了单纯通过张力刺激的方式构建大鼠OLF模型。在大鼠OLF模型建立过程中，张力刺激组件能够使大鼠胸腰椎以一定频率反复屈曲、中立，产生黄韧带周期性张力刺激，该种诱导方式比较贴合人群工作及生活中频繁俯身、弯腰的生理过程，更贴合人类日常生活中的行为习惯，因此诱导大鼠的OLF病理过程和结果更贴合疾病的发病过程和症状。

此外，相较于现有技术中常采用的生物因子填塞法和牵拉尾椎张力刺激法，采用本发明的张力刺激装置实现的大鼠黄韧带骨化模型构建方法实现了通过纯张力刺激法诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化，无需任何解剖技术及生物因子或化学试剂干预，操作便捷。通过本发明的刺激装置建立的大鼠黄韧带骨化模型已顺利经过多方验证，效果显著，同时无大鼠伤亡、致瘫，安全可靠。

因此，本发明为建立符合黄韧带骨化疾病发生发展规律、高效且创伤小的动物模型提供设备支持。同时，该装置制作工艺成本不高，利于推广和应用于黄韧带骨化模型相关领域当中。

附图说明

图1是本发明实施例一中的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置的结构示意图；

图2是本发明实施例一中的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置的俯视结构示意图；

图3是本发明实施例一中的调速器的结构示意图；

图4是本发明实施例二中的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置的结构示意图；

图5是本发明实施例三中的大鼠胸腰椎Micro-CT扫描影像。

具体实施方式

下面结合实施例和附图对本发明进行详细描述。但下列实施例不应看作对本发明范围的限制。

在本发明的描述中，需要说明的是，术语“上”、“下”、“左”、“右”等指示的方位或位置关系为基于附图所示的方位或位置关系，仅是为了便于描述本发明和简化描述，而不是指示或暗示所指的装置或元件必须具有特定的方位、以特定的方位构造和操作，因此不能理解为对本发明的限制。

实施例一

图1是本发明实施例一中的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置的结构示意图。

如图1所示，诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置100包括支架1、大鼠固定弹性平台2、张力刺激组件3、动力组件4以及动力转换组件5。大鼠固定弹性平台2设置在支架1的顶端，具有一定的弹性模量；张力刺激组件3设置在大鼠固定弹性平台2下方，对大鼠固定弹性平台2上的大鼠的胸腰椎进行刺激；动力转换组件5一侧与张力刺激组件 3连接，另一侧与动力组件4连接，动力组件4设置在支架底端支撑板上。

图2是本发明实施例一中的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置的俯视结构示意图。

如图1和图2所示，大鼠固定弹性平台2包括固定安装在支架顶端的弹性支撑布21、滑动安装在支架顶端左右侧板上的前肢固定架22和后肢固定架23、以及设置在前肢固定架22和后肢固定架23上的多根固定钉24，实现同时对多只大鼠进行模型构建。

本实施例中，弹性支撑布21为帆布或弹簧网，该帆布或弹簧网均具有一定的弹性模量，当发生最大形变时，其回弹力不会阻碍动力转换组件中刺激杆调节轮转动，且保证平台耐用性足够，满足200万次反复形变(预计满足5年使用年限)。日常使用时，平台表面可放置一次性纸尿垫，方便清理大鼠排泄物，同时避免污染平台。

支架顶端左右侧板上对称设置有滑槽，前肢固定架22和后肢固定架23的两端分别设置在滑槽内，实现前肢固定架和后肢固定架的位置和间距根据大鼠体型生长而灵活调节。静息状态下，大鼠固定后躯体刚好完全伸展，且两点的距离大小不会对脊柱产生水平方向的牵张力。大鼠前后肢的固定建议在麻醉状态下采用软质粗绳进行固定，且须在捆绑处用棉球保护，避免软绳与大鼠皮肤直接接触，防止实验过程中反复摩擦导致大鼠四肢皮肤溃烂。

图3是本发明实施例一中的张力刺激组件的结构示意图。

如图1和图3所示，张力刺激组件3包括上下移动的刺激杆31、设置在刺激杆顶端并且对大鼠胸腰椎进行刺激的弓形架32以及设置在刺激杆底端的动力转换组件连接件33。

刺激杆31为弹簧杆；弓形架32的延伸方向与前肢固定架22和后肢固定架23相平行，两端的叶片为通过铰链连接的活叶，当弓形架降到底时，两叶向上折弯，底边贴附于平台，此时弓形架基本呈“T”形，可使大鼠胸腰椎彻底放松。弓形架的升降幅度为8～12cm，最大不能超过15cm。升降幅度过大否则容易导致大鼠胸腰椎过屈引发创伤，过小则难以对大鼠胸腰椎黄韧带产生足够大的刺激。

动力转换组件连接件33包括顶端与弹簧杆螺纹连接的C型架331、通过螺栓和螺母安装在C型架内的滑轮332，滑轮带有让刺激杆调节轮卡入的凹槽。

弹簧杆使用的弹簧强度应适中，正好满足弹簧杆始终贴附于刺激杆调节轮，且最大形变时弹力不会阻碍刺激杆调节轮的连续转动。

如图1所示，动力组件4为无级变速动力系统，包括安装在支架底端的电机41、与电机连接的变速箱42以及与变速箱连接的调速器43。本实施例中，优选电机和变速箱的功率均为120W，调速器功率为5KB。

该无级变速动力系统转速可灵活调节，以满足实验人员寻找最佳诱导频率。安装时，电机41安装在支架底端，变速箱42和调速器43不必限定在该位置，安装在支架合适位置即可，尤其是调速器43，优选安装在支架上半部分上，方便操作人员操作。

图3为本发明实施例中的调速器的结构示意图。

如图3所示，调速器43包括调速按钮431以及调速开关432。调速前打开调速开关432，而后根据需要转动调速按钮431至相应频率即可。

如图1所示，动力转换组件5包括与动力组件4连接的传动件51以及刺激杆调节轮52。传动件51包括安装在支架底端的底座511、安装在底座上的传动轴512、连接传动轴 512以及电机输出轴的传动带513；刺激杆调节轮52安装在传动轴512上并且与滑轮相匹配，本实施例中，刺激杆调节轮52为双叶轮。双叶轮形状近似8字型，中间内凹，双叶轮在传动轴512的带动下旋转，带动刺激杆实现上下位置交替。

本发明中的张力刺激装置在使用时，先将实验大鼠以躯体腹侧贴附大鼠固定弹性平台的方式并列排列，摆放时弓形架顶端应紧贴大鼠肋弓下缘进行摆放和固定，避免对应至肋骨，从而影响脊柱屈曲效果，且容易引起肋骨骨折、胸部脏器损伤，而后将四肢用软线绑在固定钉上；动力组件启动后，电机以一定频率旋转，带动传送带引发双叶轮旋转，由于弹簧杆上的滑轮卡在双叶轮上，使得弹簧杆随着双叶轮的旋转，以一定频率和幅度反复升降，弓形架亦随之升降；当弓形架升高时，大鼠胸腰椎随之弓起，胸腰椎屈曲引发脊柱黄韧带产生张力刺激；当弓形架降至最低时，大鼠胸腰椎处于中立休息位，黄韧带张力刺激完全解除，通过反复营造大鼠胸腰椎黄韧带的周期性张力刺激，建立大鼠OLF模型。

实施例二

在本实施例二中，与实施例一相同的结构给予相同的符号，并省略相同的说明。

本实施例二中的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置与实施例一中的装置唯一的区别在于动力转换组件的不同，如图4所示，诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置200中动力转换组件6省略了传动件，直接在电机上安装刺激杆调节轮61，该刺激杆调节轮为轴承偏心轮。也可以认为本实施例装置中，传动件包括安装在电机输出轴上的轴承架，刺激杆调节轮为安装在轴承架上的偏心轮。

偏心轮在电机输出轴的带动下旋转，由于其偏心设置，旋转过程中恰好实现带动刺激杆以一定频率和幅度反复升降，弓形架亦随之升降。

实施例三大鼠黄韧带骨化模型构建方法

本实施例采用实施例一或二中的张力刺激装置对大鼠黄韧带骨化模型进行构建，以对本发明中的张力刺激装置进行验证，同时提供一种大鼠黄韧带骨化模型构建方法。具体如下：

一、实验材料及设计：

雄性SD大鼠42只，体重160～180g(174.7±3.6g)，SPF级饲养，开放食物及水， 12小时开灯/关灯，所有大鼠造模前适应7天饲养。

将实验大鼠随机分为实验组和空白对照组两组。实验组(张力刺激组)共24只大鼠，采用张力刺激发生装置进行诱导；空白对照组共18只，不做任何处理。两组均平均分为3个亚组，分别观察4周、8周和12周。

二、张力刺激条件设定

诱导幅度：大鼠胸腰椎弓起至最高点较中立位高度落差为10cm；诱导频率：90次/分，每日诱导20分钟，每周诱导5日(工作日)。

三、实验结果验证

通过对大鼠胸腰椎离体标本行Micro-CT扫描，得出两组不同诱导时间OLF的阳性率。

先后于实验第4周、第8周及第12周，分别选取张力刺激组及空白对照组大鼠胸腰椎离体标本行Micro-CT扫描，观察其OLF发生情况，结果如表1所示。

表1.大鼠胸腰椎离体标本Micro-CT扫描OLF阳性数及阳性率

注：*：OLF阳性数；#：OLF阳性率；

空白对照组：每亚组6只，每组18只；

张力刺激组：每亚组8只，每组24只。

大鼠胸腰椎离体标本的Micro-CT扫描影像如图5所示，图5中(a)～(d)分别为空白组、第4周张力组、第8周张力组及第12周张力组大鼠胸腰椎离体标本的Micro-CT扫描影像图，扫描层距为20μm。根据图2显示的结果，除空白对照组外，三个实验组均成功诱导OLF，诱导时间越长，骨化效果越显著。

基于上述实验，本实施例提供了一种大鼠黄韧带骨化模型的构建方法，包括以下步骤：

A)将多只大鼠并列放置在所述大鼠固定弹性平台上，使得所述弓形架的顶端紧贴大鼠肋弓下缘，并固定大鼠四肢；

B)打开张力刺激装置，诱导幅度为8～12cm，使得大鼠胸腰椎弓起至最高点较中立位高度落差为8～12cm，诱导频率为90次/分，每日诱导20分钟，每周诱导5日，连续诱导 12周后得到大鼠黄韧带骨化模型。

以上显示和描述了本发明的基本原理、主要特征和本发明的优点。本行业的技术人员应该了解，本发明不受上述实施例的限制，上述实施例和说明书中描述的只是说明本发明的原理，在不脱离本发明精神和范围的前提下本发明还会有各种变化和改进，这些变化和改进都落入要求保护的本发明范围内。本发明要求保护范围由所附的权利要求书及其等同物界定。

Claims (10)

1.一种诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，其特征在于，具有：

支架、设置在所述支架顶端的大鼠固定弹性平台、设置在所述大鼠固定弹性平台下端的张力刺激组件、动力组件、以及设置在所述张力刺激组件以及所述动力组件之间的动力转换组件，

其中，所述张力刺激组件包括上下移动的刺激杆、设置在所述刺激杆顶端并且对大鼠胸腰椎进行刺激的弓形架以及设置在所述刺激杆底端的动力转换组件连接件，

所述动力转换组件包括与所述动力组件连接的传动件、安装在所述传动件上并与所述动力转换组件连接件相匹配的刺激杆调节轮。

2.根据权利要求1所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，其特征在于：

其中，所述大鼠固定弹性平台为固定安装在所述支架顶端的帆布或弹簧网，

所述帆布或弹簧网上分别设置有前肢固定架和后肢固定架，所述前肢固定架和所述后肢固定架上对称设置有多根固定钉。

3.根据权利要求1所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，其特征在于：

其中，在所述张力刺激组件中，所述刺激杆为弹簧杆；

所述动力转换组件连接件包括顶端与所述弹簧杆螺纹连接的C型架、通过螺栓和螺母安装在所述C型架内的滑轮，所述滑轮带有让所述刺激杆调节轮卡入的凹槽。

4.根据权利要求3所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，其特征在于：

其中，所述弓形架两端的叶片为通过铰链连接的活叶。

5.根据权利要求1所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，其特征在于：

其中，所述弓形架的升降幅度为8～12cm。

6.根据权利要求3所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，其特征在于：

其中，所述动力组件为无级变速动力系统，包括安装在所述支架底端的电机、与所述电机连接的变速箱以及与所述变速箱连接的调速器。

7.根据权利要求6所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，其特征在于：

其中，所述电机和所述变速箱的功率均为120W，调速器功率为5KB。

8.根据权利要求6所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，其特征在于：

其中，在所述动力转换组件中，所述传动件包括安装在所述支架底端的底座、安装在所述底座上的传动轴、连接所述传动轴以及电机输出轴的传动带，

所述刺激杆调节轮为安装在所述传动轴上并且与所述滑轮相匹配的双叶轮。

9.根据权利要求6所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置，其特征在于：

其中，在所述动力转换组件中，所述传动件包括安装在电机输出轴上的轴承架，所述刺激杆调节轮为安装在所述轴承架上并与所述滑轮相匹配的偏心轮。

10.采用权利要求1～9所述的诱导大鼠胸腰椎黄韧带骨化的张力刺激装置构建大鼠黄韧带骨化模型的方法，其特征在于，包括以下步骤：

A)将多只大鼠并列放置在所述大鼠固定弹性平台上，使得所述弓形架的顶端紧贴大鼠肋弓下缘，并固定大鼠四肢；

B)打开张力刺激装置，诱导幅度为8～12cm，使得大鼠胸腰椎弓起至最高点较中立位高度落差为8～12cm，诱导频率为90次/分，每日诱导20分钟，每周连续诱导5日，连续诱导12周后得到所述大鼠黄韧带骨化模型。