CN107916237A

CN107916237A - 一株发光杆菌Hb1029及其应用

Info

Publication number: CN107916237A
Application number: CN201711014877.6A
Authority: CN
Inventors: 赖多; 邵雪花; 匡石滋; 凡超; 田世尧; 庄镇瑞
Original assignee: Pomology Research Institute Guangdong Academy of Agricultural Sciences
Current assignee: Pomology Research Institute Guangdong Academy of Agricultural Sciences
Priority date: 2017-10-25
Filing date: 2017-10-25
Publication date: 2018-04-17
Anticipated expiration: 2037-10-25
Also published as: CN107916237B

Abstract

本发明公开了一株发光杆菌Hb1029及其应用，经过实验证实，本发明的发光杆菌Hb1029对香蕉枯萎病、番茄枯萎病、番石榴枝枯病、火龙果果腐病等多种植物真菌和柑橘溃疡病等植物细菌病原菌均表现出良好的抑制效果；同时发光杆菌Hb1029对甜菜夜蛾、橘小实蝇、柑橘潜叶蛾等植物害虫具有抑制生长发育或杀虫作用活性。该生防菌具有杀虫抑菌作用，具有较广的防治谱。并且经多次传代培养，该菌株杀虫抑菌效果稳定。用于水果保鲜时具有很好的保鲜效果，同时具有很好的安全性，有着重要的经济意义。

Description

一株发光杆菌Hb1029及其应用

技术领域

本发明属于生物农药技术领域，具体涉及一株新菌株及其应用，特别涉及一株发光杆菌(Photorhabdusluminescens)Hb1029及其应用。

背景技术

目前植物病虫害的防治以及水果采后保鲜主要依靠化学农药，然而化学农药的大量使用，不仅会造成农药残留超标和病虫产生抗药性，还会污染环境，引起人畜中毒等问题。生物农药由于副作用小、对环境友好、对人畜安全，是一种具有广阔前景的绿色农药，已经成为了病虫害生物防治措施中的重要选择。

研究表明，昆虫病原线虫因其无毒、无污染，对人畜安全，其体内携带有病原性的共生细菌，可侵入害虫体内后可引起昆虫死亡。昆虫病原线虫已受到国内外生物防治领域的高度重视，成为当前生防领域的研究热点之一。美国、澳大利亚、日本等数10家国外公司已经生产出昆虫病原线虫的商品制剂，广泛应用于防治小菜蛾、天牛、韭蛆等多种害虫。但昆虫病原线虫受环境条件影响大，而昆虫病原线虫体内的共生菌可产生多种具有杀虫、抑菌活性物质，且繁殖快、培养条件要求不高、成本低，因此其共生菌是一类新型的具有开发潜力和应用前景的微生物农药资源。

发光杆菌(Photorhabdusluminescens)是一种寄生于昆虫病原线虫肠道内的共生细菌，可产生杀虫蛋白、几丁质酶和抗菌肽等多种活性物质，具有良好的杀虫和抑菌活性。发光杆菌作为一种重要的生防细菌，如陆秀君,王勤英,赵光耀,等.发光杆菌Photorhabdussp.HBgyl3菌株对4种蔬菜病原菌的抑菌活性[J].河北农业大学学报,2003(4):18-20.等文献所公开的，目前已报道用于防治小菜蛾，或者用于大豆胞囊线虫、荔枝霜疫霉、甘蓝黑斑病菌等病害防治。但是，不同来源菌株的杀虫谱、抑菌对象、作用方式以及效果的稳定性有较大差异。

为了提高发光杆菌对病害的防治效果，常规的做法是将其与其他药物联用，但是这也存在一定的风险。

因此，筛选高效、广谱、效果稳定的发光杆菌是生物防治的一个研究热点。

发明内容

本发明的一个目的在于针对目前农业病虫害防治以及水果采后保鲜中大量使用化学药剂，造成农药残留、食品中毒、环境污染等问题，提供一种高效、广谱、效果稳定的新发光杆菌。

本发明的另一个目的在于提供一种含有上述新发光杆菌的微生物制剂。

本发明所采取的技术方案是：

一株发光杆菌Hb1029，于2017年05月02日保藏于广东省微生物菌种保藏中心，保藏地址为广州市先烈中路100号大院59号楼5楼，广东省微生物研究所，保藏编号为GDMCCNo.60172，经鉴定为发光杆菌(Photorhabdusluminescens)，提议的分类学名称为Photorhabdusluminescens。保藏中心于2017年05月08日鉴定存活。

上述发光杆菌可以用于制备植物病虫害防治剂或水果采后保鲜剂。

植物病害选自枯萎病、枝枯病、果腐病、溃疡病，植物虫害选自甜菜夜蛾、橘小实蝇、柑橘潜叶蛾。

水果选自荔枝、柑橘、葡萄。

植物病害选自香蕉枯萎病、番茄枯萎病、番石榴枝枯病、火龙果果腐病、柑橘溃疡病。

一种微生物制剂，该微生物制剂含有上述发光杆菌Hb1029。

进一步的，微生物制剂为发光杆菌的发酵液。

一种水果保鲜方法，包括将发光杆菌Hb1029的发酵液处理水果表面。

一种防治植物病虫害的方法，包括在植物表面喷洒或者灌根发光杆菌Hb1029的发酵液。

本发明的有益效果是：

经过实验证实，本发明的发光杆菌Hb1029对香蕉枯萎病、番茄枯萎病、番石榴枝枯病、火龙果果腐病(由新暗色柱节孢菌Neoscytalidiumdimidiatum引起)等多种植物真菌和柑橘溃疡病等植物细菌病原菌均表现出良好的抑制效果；同时发光杆菌Hb1029对甜菜夜蛾、橘小实蝇、柑橘潜叶蛾等植物害虫具有抑制生长发育或杀虫作用活性。该生防菌具有杀虫抑菌作用，具有较广的防治谱。并且经多次传代培养，该菌株杀虫抑菌效果稳定。

本发明的发光杆菌Hb1029在温室试验结果中表明：含本发明所述发光杆菌Hb1029的生防菌剂可以有效抑制了病原菌的生长，对于香蕉枯萎病和火龙果果腐病均表现出显著的防治效果，田间防效分别可达74.8％和80.1％。

本发明的微生物制剂制备过程简单，成本较低，可替代或减少对化学农药的使用，减少农药残留，降低农民农业生产成本。该菌剂为微生物源产品，无毒害，无环境污染，有利于无公害农产品的生产及农业的可持续发展。

本发明的微生物制剂，用于水果保鲜，特别是荔枝、柑橘、葡萄等易腐败水果的保鲜时，具有很好的保鲜效果，同时具有很好的安全性，有着重要的经济意义。

附图说明

图1为发光杆菌Hb1029抑制香蕉枯萎病病原菌平板拮抗试验；

图2为发光杆菌Hb1029防治香蕉枯萎病盆栽试验；

图3为发光杆菌Hb1029对甜菜夜蛾抑制生长发育作用；

图4为发光杆菌Hb1029对荔枝果实保鲜效果。

具体实施方式

发光杆菌Hb1029的分离

通过昆虫病原线虫共生细菌的专性培养基NBTA分离发光杆菌。挑选健康的大蜡螟幼虫3头，置于铺有灭菌滤纸的培养皿中，吸取500μL昆虫病原线虫(浓度为500-600头/mL)滴于大蜡螟体表，25℃培养过夜。将被昆虫病原线虫侵染的大蜡螟幼虫用75％的酒精棉进行体表消毒后，剪开前足，取体液(10-20μL)至含200μL无菌水的离心管中，混匀，接于NBTA培养基(牛肉膏5.0g、蛋白胨10.0g、氯化钠5.0g、琼脂20.0g、麝香溴百里酚兰0.025g、氯化三苯基四氮唑0.040g、水1L)平板上，涂布均匀后28℃恒温培养48h，平板上出现的蓝色单菌落即为所需Ⅰ型发光杆菌。根据菌落形态、大小、颜色等特征挑取不同的单菌落进一步利用平板划线法纯化，获得单一形态的菌株。

采用平板拮抗试验方法进行生防菌株的筛选，吸取100μL病原菌菌液(浓度为1×10⁶cfu/mL)，分别放入LB培养基(细菌)或PDA培养基(真菌)平板中涂布均匀，在平板上均匀放上若干个无菌牛津杯，每个牛津杯中分别加入在28℃培养48h的不同分离菌株的培养液、发酵上清液(过滤去除菌体)以及无菌水，每个处理重复三次。28℃恒温培养箱中培养3-5d后，观察有无抑菌圈，计算抑菌活性。抑菌活性用抑菌圈直径表示:抑菌圈直径＝透明圈直径-牛津杯直径(5mm)。

将具有抑菌活性的菌株在LB平板上连续转接培养20代，然后测定该菌株拮抗活性的稳定性。

根据对植物病原菌香蕉枯萎病、番茄枯萎病、番石榴枝枯病、火龙果果腐病、柑橘溃疡病等的抑菌活性以及传代后抑菌活性的稳定性，筛选出一株高效、广谱、效果稳定的生防菌菌株Hb1029，用25％的甘油保存于-70℃超低温冰箱。

发光杆菌Hb1029的鉴定

形态学鉴定：该菌株Hb1029属于革兰氏阴性菌，菌体为杆状，有运动性。在营养琼脂培养基上形成的菌落为圆形，呈黄白色不透明，表面光滑湿润。

生理生化特征鉴定：发光，需氧性，葡萄糖发酵型，过氧化氢酶、精氨酸双水解酶、硝酸盐还原、明胶水解、柠檬酸盐水解结果为阳性；淀粉水解、M.R.和V-P试验结果为阴性。

分子生物学鉴定：以菌株Hb1029的基因组DNA为模板，采用通用引物扩增16SrRNA，PCR产物委托TaKaRa公司测序，测序结果提交到GenBank数据库，获得登录号MF623898，利用Blast程序进行同源性分析，结果显示与登录号为AY278643.1的Photorhabdusluminescens subsp.akhurstii strain同源性达到99％以上。

结合形态学观察、生理生化特征和分子生物学鉴定，确定该菌株Hb1029属于Photorhabdusluminescens，命名为发光杆菌Photorhabdusluminescens Hb1029。

发光杆菌Hb1029菌剂的制备

将保存于甘油的发光杆菌Hb1029，接种于NBTA平板28℃活化，将活化后的发光杆菌Hb1029接种于NB(8g营养肉汤，7g酵母粉，1L H₂O)培养液，28℃，180r/min条件下培养24h，获得种子液。将种子液按2％的接种量接种于含Mn离子的NB发酵培养基(8g营养肉汤，7g酵母粉，0.1mM MnSO₄，1L H₂O)，28℃，180r/min条件下培养48h，获得发酵液，即发光杆菌Hb1029菌剂(其中活菌数大于10⁹cfu/mL)。

发光杆菌Hb1029对植物病原菌的抑制作用

通过室内平板拮抗试验、温室盆栽试验以及田间试验测定发光杆菌Hb1029对多种果树病原菌的抑制作用。

(1)平板拮抗试验

吸取100μL植物病原菌菌液(浓度为1×10⁶cfu/mL)，分别放入LB培养基(细菌)或PDA培养基(真菌)平板中涂布均匀，在平板上均匀放上若干个无菌牛津杯，每个牛津杯中分别加入在28℃培养48h的不同分离菌株的培养液、发酵上清液(过滤去除菌体)以及无菌水，每个处理重复三次。28℃恒温培养箱中培养3-5d后，观察有无抑菌圈，计算抑菌活性。抑菌活性用抑菌圈直径表示:抑菌圈直径＝透明圈直径-牛津杯直径(5mm)。

抑菌圈活性的测定结果如下表1所示，可以看出本发明发光杆菌Hb1029及其发酵上清液对常见的果树病原菌香蕉枯萎病菌、番茄枯萎病菌、火龙果果腐病菌、番石榴枝枯病菌和柑橘溃疡病菌均具有明显的抑菌效果，其中对香蕉枯萎病菌的抑菌活性最好(如图1所示)。说明本发明的发光杆菌Hb10298对多种植物真菌和细菌病原菌均表现出良好的抑制效果，具有较广的抗菌谱。

表1发光杆菌Hb1029对植物病原菌的抑菌圈直径(单位为mm)

(2)温室盆栽试验测定生防菌Hb1029菌剂对香蕉枯萎病的防治效果

取上述“实施例2”中制备的发光杆菌Hb1029菌剂，其活菌数为1×10¹⁰cfu/mL。香蕉枯萎病病原菌接种于PDA培养基，培养7d，用无菌水冲洗得到病原菌孢子悬浮液，无菌水调整孢子浓度为1×10⁶cfu/ml。盆栽试验一共设置4个处理：

处理组1：用发光杆菌Hb1029菌剂浸泡香蕉苗根部10min，栽种后浇灌20mL香蕉枯萎病病原菌和30ml无菌水；

处理组2：香蕉苗栽种后，分别浇灌30mL发光杆菌Hb1029菌剂和20mL香蕉枯萎病病原菌；

处理组3(对照组)：香蕉苗栽种后，分别浇灌20mL香蕉枯萎病病原菌和30mL无菌水；

处理组4(常规组)：香蕉苗栽种后，浇灌30mL无菌水。

每盆装移栽土壤2Kg(经灭菌处理)，将长出5至6片真叶的经过炼苗的香蕉组培苗移栽至苗盆中，每盆种1株香蕉幼苗，每个处理10个重复。处理后将番茄放置于温度为28℃，光照为16h/8h条件下培养，常规肥水管理，观察记录发病情况，调查病情等级，计算病情指数和防治效果。

病情分级：0级为无发病症状；1级为1～25％叶片变黄；3级为26～50％叶片萎蔫；5级为51～75％叶片萎蔫；7级为全株叶片萎蔫或植株死亡。

病情指数＝∑(病情等级×发病植株数)/(调查总株数×4)

防治效果(％)＝[(对照病情指数－处理病情指数)/对照病情指数]×100

图2和表2试验结果显示，仅接种香蕉枯萎病病原菌的处理组3(对照组)正常发病。接种发光杆菌Hb1029菌剂的处理组1和处理组2对香蕉枯萎病均有良好的防治效果，防效分别为82.3％和85.1％，两种处理无明显差异。

表2各处理的病情指数和防效(香蕉枯萎病)

(3)温室盆栽试验测定发光杆菌Hb1029菌剂对番茄枯萎病中的防治效果

取上述“实施例2”中制备的发光杆菌Hb1029菌剂，其活菌数为1×10⁹cfu/mL；番茄枯萎病病原菌接种于PDA培养基，培养7d，用无菌水冲洗得到病原菌孢子悬浮液，无菌水调整孢子浓度为1×10⁶cuf/mL。番茄先进行无菌育苗，待长到4叶期进行移栽。设置4个处理：

处理组1：将幼苗移栽后浇灌30mL生防菌Hb1029菌剂，2天后浇灌20mL番茄枯萎病病原菌；

处理组2(对照组)：幼苗移栽后浇灌30mL无菌水，2天后浇灌20mL番茄枯萎病病原菌；

处理组3(常规组)：幼苗移栽后浇灌30mL无菌水，2天后再浇灌20mL无菌水。

每盆移栽1株番茄幼苗，每个处理10个重复，将番茄放置于温度为28℃，光照为16h/8h条件下培养，观察记录番茄的发病情况，调查病情等级，计算病情指数和防治效果。

病情指数＝[∑(各级病株数×相应发病级别值)/调查总株数×最高发病级别值]；

防治效果(％)＝[(对照组病情指数－处理组病情指数)/对照组病情指数]×100。

从表3结果可以看出，发光杆菌Hb1029菌剂对番茄枯萎病表现出良好的防治效果，防效达86.7％。

表3各处理的病情指数和防效(番茄枯萎病)

(4)田间试验测定发光杆菌Hb1029菌剂在香蕉枯萎病防治中的应用效果

为了表明本发明发光杆菌Hb1029菌剂对香蕉枯萎病的防治效果，在温室盆栽试验的基础上，2015年初在东莞市香蕉园进行发光杆菌Hb1029菌剂的田间试验。发光杆菌Hb1029菌剂的活菌数为1×1010cfu/mL，香蕉苗为6-7片真叶的巴西蕉，设置两组处理：

处理组1：香蕉苗移栽前，用发光杆菌Hb1029菌剂浸根处理10min；

处理组2(对照组)：香蕉苗移栽前，用无菌水浸根处理10min。

每个处理50株，处理后连续观察香蕉生长状态，调查发病情况，计算田间防效。

试验结果表明，发光杆菌Hb1029菌剂可以有效降低香蕉枯萎病发病率，田间防效达到74.8％。

(5)田间试验测定发光杆菌Hb1029菌剂在火龙果果腐病防治中的应用效果

取“实施例2”制备的发光杆菌Hb1029菌剂，其活菌数为1×10¹⁰cfu/mL。2017年7月在中山市坦洲镇王卫武火龙果果园进行发光杆菌Hb1029菌剂防治火龙果果腐病的田间试验。该果园已种植火龙果3年多，试验前调查发现火龙果果腐病发现较为严重，发病率达到72％以上。设置3组处理：

处理组1：将发光杆菌Hb1029菌剂兑水稀释100倍后，喷雾处理火龙果枝茎；

处理组2：将商品化王铜杀菌剂按说明兑水稀释后，喷雾处理火龙果枝茎。

处理组3：用无菌水喷雾处理火龙果枝茎，作为对照。

每个处理2亩，处理后观察调查各处理组火龙果果腐病的病害变化情况，计算防治效果。

病情分级：0级为无发病症状；1级为病斑面积占整个枝条面积的1～25％；3级为病斑面积占整个枝条面积的26～50％；5级为病斑面积占整个枝条面积的51～75％；7级为病斑面积占整个枝条面积的75％以上。

病情指数＝[∑(各级病枝条数×相应发病级别值)/调查总枝条数×最高发病级别值]

防治效果(％)＝[1－(CK₀×PT₁/CK₁×PT₀)]×100

式中，CK₀为对照区药前病情指数，CK₁为对照区药后病情指数，PT₀为对照区药前病情指数，PT₁为对照区药后病情指数。

表4试验结果表明，发光杆菌Hb1029菌剂可以有效防治火龙果果腐病，田间防效达到80.1％，效果和商品化王铜杀菌剂(84.3％)差异不显著。

表4各处理对火龙果果腐病的田间防效

综上所述，本发明的发光杆菌Hb1029对多种果树病原菌具有良好的抑制作用和防治效果。

发光杆菌Hb1029对植物害虫的防治作用

(1)发光杆菌Hb1029菌剂在甜菜夜蛾防治中的应用效果

取“实施例2”制备的发光杆菌Hb1029菌剂，其活菌数为1×10⁹cfu/mL。生防菌Hb1029菌剂用无菌水稀释50倍，将菜苗叶在稀释菌液中浸泡30s，取出晾干后，放入垫有无菌滤纸(加几点水润湿)的培养皿中，每个培养皿接入大小一致的2龄末甜菜夜蛾15头。以无菌水浸泡的菜苗叶为对照，每个处理重复三次。处理后，置于26℃，光照为14h/10h条件下培养，观察幼虫生长情况，对各处理幼虫称重，48h和72h后分别统计死亡率。

死亡率(％)＝(死亡虫数/总虫数)×100

表5发光杆菌Hb1029菌剂对甜菜夜蛾的死亡率

试验结果表明，发光杆菌Hb1029菌剂对甜菜夜蛾具有明显的抑制生长发育作用(如图3所示)，48h抑制率为77.2％；由表5可以看出，发光杆菌Hb1029菌剂对甜菜夜蛾也有良好的毒杀作用，72h死亡率为74.8％。

(2)发光杆菌Hb1029菌剂在橘小实蝇防治中的应用效果

将发光杆菌Hb1029发酵液(菌数为1×10¹⁰cfu/mL)用橘小实蝇成虫饲料(灭活酵母：蔗糖＝3:1)稀释100倍，置于装有棉球的小培养皿喂养橘小实蝇，每个处理接入羽化后3～5天的橘小实蝇成虫20头，重复3次，以未接菌的饲料作为对照。将处理的试虫置于养虫室内适宜环境条件下连续饲养4天，观察各处理的死亡虫数，并计算死亡率。

死亡率(％)＝(死亡虫数/总虫数)×100

表6发光杆菌Hb1029菌剂对橘小实蝇的死亡率

表6试验结果表明，发光杆菌Hb1029菌剂对橘小实蝇具有良好的毒杀作用，72h死亡率为70.2％，96h死亡率达到88.7％。

(3)发光杆菌Hb1029菌剂在柑橘潜叶蛾防治中的应用效果

发光杆菌Hb1029发酵液(菌数为1×10¹⁰cfu/mL)用无菌水稀释100倍，将柑橘叶片进入稀释液中30s取出晾干，置于装有湿滤纸的培养皿中，每皿接入2～3龄柑橘潜叶蛾幼虫10头，重复3次，以无菌水浸泡的叶子作为对照。将处理的试虫置于养虫室内适宜环境条件下饲养，2天后观察各处理的死亡虫数，并计算死亡率。

死亡率(％)＝(死亡虫数/总虫数)×100

表7发光杆菌Hb1029菌剂对柑橘潜叶蛾幼虫的48h死亡率

表7试验结果表明，发光杆菌Hb1029菌剂柑橘潜叶蛾幼虫具有良好的毒杀作用，48h死亡率为71.5％。

发光杆菌Hb1029菌剂对水果采后贮藏的保鲜作用

(1)发光杆菌Hb1029菌剂在荔枝采后保鲜中的应用效果

取“实施例2”制备的发光杆菌Hb1029菌剂，其活菌数为1×10¹⁰cfu/mL，使用时用无菌水将菌剂稀释100倍。荔枝采摘后，挑选成熟度一致、完整无病斑的果实420个，分成2份，每份210个。设置2个处理：

处理组1：将荔枝果实用发光杆菌Hb1029菌剂稀释液浸泡10min；

处理组2(对照组)：将荔枝果实用无菌水浸泡10min。

处理后取出晾干，用薄膜袋分装，每30个果实一袋，每个处理各7袋(7个重复)。置于25℃贮藏，第3、5和7天分别观察调查荔枝果实的好果率，并测定果实的可溶性固形物TSS、维生素Vc、总糖和总酸等品质参数，以此反映发光杆菌Hb1029菌剂对荔枝采后果实的保鲜作用。

好果率＝好果数/抽检果数。好果是指荔枝没有腐烂和病斑，红色或粉红色，较硬，口感、风味正常的果实。

由图4和表8数据可以看出，发光杆菌Hb1029菌剂处理后，荔枝的好果率明显高于对照组，可以减缓果实的可溶性固形物TSS、维生素Vc、总糖和总酸含量的降低速度，维持较好的品质。

表8发光杆菌Hb1029菌剂对荔枝采后贮藏品质的影响

(2)发光杆菌Hb1029菌剂在柑橘采后保鲜中的应用效果

取“实施例2”制备的发光杆菌Hb1029菌剂，其活菌数为1×10¹⁰cfu/mL，使用时用无菌水将菌剂稀释100倍。挑选成熟度一致、完整无病斑的柑橘120个，分成2组，每组60个。设置2个处理：

处理组1：将柑橘用发光杆菌Hb1029菌剂稀释液浸泡5min；

处理组2(对照组)：将柑橘用无菌水浸泡5min。

处理后取出晾干，分别放入篮子用薄膜袋保湿，每篮20个，每个处理各3个重复。置于20℃贮藏。贮藏30天后测定柑橘的好果率(商品率)、硬度以及果实的可溶性固形物TSS、维生素Vc、可滴定酸等品质指标，以此反映发光杆菌Hb1029菌剂对柑橘采后贮藏的保鲜作用。

由表9结果可以看出，发光杆菌Hb1029菌剂处理30天后，柑橘的好果率明显要高于对照组，果实品质指标也比对照组好。

表9发光杆菌Hb1029菌剂对柑橘采后贮藏品质的影响

(3)发光杆菌Hb1029菌剂在葡萄采后保鲜中的应用效果

取“实施例2”制备的发光杆菌Hb1029菌剂，其活菌数为1×10¹⁰cfu/mL，使用时用无菌水将菌剂稀释100倍。挑选成熟度一致、完整无病斑的葡萄，分成2组。设置2个处理：

处理组1：将葡萄用发光杆菌Hb1029菌剂稀释液浸泡5min；

处理组2(对照组)：将葡萄用无菌水浸泡5min。

处理后取出晾干，分别装入薄膜袋，置于4℃贮藏，每个处理至少50个果，每个处理3个重复。贮藏90天后测定葡萄的好果率(商品率)、硬度以及果实的总酸、可滴定酸等品质指标，以此反映发光杆菌Hb1029菌剂对葡萄采后贮藏的保鲜作用。

由表10结果可以看出，发光杆菌Hb1029菌剂处理90天后，葡萄的好果率高于对照组，果实品质指标也比对照组好。

表10发光杆菌Hb1029菌剂对葡萄采后贮藏品质的影响

综上所述，本发明的发光杆菌Hb1029对多种水果采后贮藏具有良好的保鲜作用。

Claims

1.一株发光杆菌，保藏在广东省微生物菌种保藏中心，其保藏号为GDMCC No.60172。

2.权利要求1所述的发光杆菌在制备植物病虫害防治剂或水果采后保鲜剂中应用。

3.根据权利要求2所述的应用，其特征在于：植物病害选自枯萎病、枝枯病、果腐病、溃疡病，植物虫害选自甜菜夜蛾、橘小实蝇、柑橘潜叶蛾。

4.根据权利要求2所述的应用，其特征在于：水果选自荔枝、柑橘、葡萄。

5.根据权利要求2所述的应用，其特征在于：植物病害选自香蕉枯萎病、番茄枯萎病、番石榴枝枯病、火龙果果腐病、柑橘溃疡病。

6.一种微生物制剂，其特征在于：该微生物制剂含有权利要求1所述的发光杆菌。

7.根据权利要求5所述的微生物制剂，其特征在于：微生物制剂为发光杆菌的发酵液。

8.一种水果保鲜方法，包括将权利要求1所述发光杆菌的发酵液处理水果表面。

9.一种防治植物病虫害的方法，包括在植物表面喷洒或者灌根权利要求1所述发光杆菌的发酵液。

10.根据权利要求9所述的方法，其特征在于：植物病害选自枯萎病、枝枯病、果腐病、溃疡病，植物虫害选自甜菜夜蛾、橘小实蝇、柑橘潜叶蛾。