CN107066788B - 一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法 - Google Patents

一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法 Download PDF

Info

Publication number
CN107066788B
CN107066788B CN201611115099.5A CN201611115099A CN107066788B CN 107066788 B CN107066788 B CN 107066788B CN 201611115099 A CN201611115099 A CN 201611115099A CN 107066788 B CN107066788 B CN 107066788B
Authority
CN
China
Prior art keywords
component
chromatographic
target
target object
model
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201611115099.5A
Other languages
English (en)
Other versions
CN107066788A (zh
Inventor
王绍艳
魏伯峰
李守江
张伟
石爽
曹健
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
University of Science and Technology Liaoning USTL
Original Assignee
University of Science and Technology Liaoning USTL
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by University of Science and Technology Liaoning USTL filed Critical University of Science and Technology Liaoning USTL
Priority to CN201611115099.5A priority Critical patent/CN107066788B/zh
Publication of CN107066788A publication Critical patent/CN107066788A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN107066788B publication Critical patent/CN107066788B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • GPHYSICS
    • G16INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR SPECIFIC APPLICATION FIELDS
    • G16CCOMPUTATIONAL CHEMISTRY; CHEMOINFORMATICS; COMPUTATIONAL MATERIALS SCIENCE
    • G16C99/00Subject matter not provided for in other groups of this subclass

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
  • Computing Systems (AREA)
  • Theoretical Computer Science (AREA)
  • Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)

Abstract

本发明公开一种用制备色谱分离复杂混合物中目标物的优化方法,首先确定在制备色谱所用固定相和流动相体系中目标物的干扰组分,并赋予干扰组分的浓度,再通过测定吸附等温线建立被分离组分的色谱模型,进行计算优化,不仅快速找到优化点,还可以省去烦琐的实验。本发明仅对目标物和干扰组分用单组分吸附等温线的理想色谱模型建模,解决众多参数无法测定问题;本发明采用差分格式迭代求解色谱模型,求解方法简单、准确、稳定性好;本发明的建模方式能很好地指导复杂混合物色谱分离实践,在由色谱模型获取的优化条件下分离,当考虑目标物和未知干扰组分两种组分的情况下,实际得到的目标物HPLC纯度接近或高于90%。

Description

一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法
技术领域
本发明涉及色谱技术领域,尤其涉及一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法。
背景技术
制备色谱法(通常指色谱单柱)是分离复杂混合物中目标组分的重要手段,为提高目标组分的纯度、收率、产率、生产效率及减小溶剂消耗,对色谱分离条件进行优化是必要的。通过测定吸附等温线建立被分离组分的色谱模型,进行计算优化,不仅能够快速找到优化点,还可以省去烦琐的实验。
吸附等温线反映了色谱柱中固定相对流动相中溶质i的吸附能力,表示为单位质量的固定相上吸附溶质的量qi(x,t)与流动相中溶质浓度Ci(x,t)的关系,即qi(x,t)=f(C1(x,t),C2(x,t),...,Ci(x,t),...),吸附等温线有多种表示形式,如:Langmuir、biLangmuir、Freundlich和Tóth【林炳昌.模拟移动床色谱技术.化学工业出版社,北京:2008】,这里所涉及到的各组分的初始浓度必须已知,才可能有明确的吸附等温线。迄今为止,所有两组分及多组分色谱模型都是针对相关组分浓度已知的混合物的分离。用色谱法从复杂混合物中,如:天然产物,提纯目标组分时,经常遇到干扰组分浓度未知的情况,所以无法获得吸附等温线,也就无法获得被分离组分的色谱模型,此时的优化过程建立在大量的实验基础上。
发明内容
本发明的目的是针对现有制备色谱进行复杂混合物分离时操作参数优化方法技术的不足,提供一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法。
本发明的具体技术方案如下:
一种用制备色谱分离复杂混合物中目标物的优化方法,包括以下步骤:
1、配制复杂混合物的进样液,复杂混合物含有3种以上组分,并测定其中目标物的浓度;
2、确定在制备色谱所用固定相和流动相体系中目标物的干扰组分,并赋予干扰组分的浓度;
3、用进样液采集2-5条目标物及其干扰组分的实际制备色谱的流出曲线数据;
4、选择单一组分的吸附等温线描述目标物的吸附行为;选择单一组分的吸附等温线描述干扰组分的吸附行为;
5、选择色谱模型分别描述目标物和干扰组分的色谱行为;再用差分法求解目标物和干扰组分的色谱模型,进而分别得到单柱目标物和干扰组分的计算流出曲线;
6、根据实际流出曲线用逆法确定:目标物的吸附等温线参数和色谱模型的计算参数;干扰组分的吸附等温线参数和色谱模型的计算参数;
7、用色谱模型优化制备色谱分离目标物和干扰组分的操作条件;
8、在由色谱模型优化出来的分离条件下进行实际分离。
上述方法中,当所述干扰组分结构未知,并且其浓度无法测定时,假定干扰组分浓度。
上述方法中,所述色谱模型为理想色谱模型。
上述方法中,所述理想色谱模型的差分求解方法如下:
Figure BDA0001173153680000021
qi=f(Ci) (2)
式(1)为理想色谱模型,式(2)为吸附等温线,其中i代表组分i,i=1为目标物,i=2为干扰组分;ci,qi分别为组分在流动相与固定相的浓度;u为流动相的流速;F为相比,F=(1-ε)/ε,ε为孔隙率;t代表时间,x代表位置;
进而,将式(1)写成
Figure BDA0001173153680000022
式中,
Figure BDA0001173153680000023
再将式(3)中
Figure BDA0001173153680000024
项向后差分,
Figure BDA0001173153680000025
项向前差分,建立显式差分格式:
Figure BDA0001173153680000026
式中,τ为时间步长,h为空间步长,j表示当前的塔板,j=1,2,...,L/h,n代表时间,n=kτ,k=1,2,3...,显式差分格式稳定性条件:
Figure BDA0001173153680000031
或者将式(3)中
Figure BDA0001173153680000032
项和
Figure BDA0001173153680000033
项都向后差分,建立隐式差分格式:
Figure BDA0001173153680000034
上述的两种差分格式边界条件:
Figure BDA0001173153680000035
Ci,F为进料液中组分i的浓度,tp为进料时间;
通过对上述显式差分格式或者隐式差分格式迭代求解,获得组分i流出曲线Ci(L,t)-t,L为色谱柱长。
上述方法中,所述的根据实际流出曲线用逆法确定吸附等温线参数、模型计算参数h和τ时,需要经过设定初值并经模型求解至计算流出曲线与实际流出曲线吻合后确定最终取值;
所述的使计算流出曲线与实际流出曲线吻合的方法为,利用色谱模型计算色谱流出曲线,并和实际测定的流出曲线进行比较,按下式计算两者误差平方和:
Figure BDA0001173153680000036
式中,
Figure BDA0001173153680000037
是实验测定值,
Figure BDA0001173153680000038
是模型计算值;利用最优化方法选取最优参数值,使目标函数Fun最小,即为计算流出曲线与实际流出曲线吻合;
上述方法中,所述色谱模型优化制备色谱分离目标物和干扰组分的操作条件是按单因素法或单纯形或正交设计或均匀设计或响应面设计或遗传算法进行的。
上述方法中,按制备色谱的流动相的配比配制复杂混合物的进样液。
上述方法中,所述的采集目标物及其干扰组分的实际制备色谱的流出曲线数据为采集线性条件下目标物及其干扰组分的实际制备色谱的流出曲线数据,以及采集过载条件下目标物及其干扰组分的实际制备色谱的流出曲线数据。
上述方法中,干扰组分结构未知的情况下,假定进样液仅含目标组分1和干扰组分2,计算结果以目标物的提纯指标为约束条件和优化目标函数,以流动相流速、原料进样浓度、原料进样时间、截取目标物流出液时间段为优化参数。
具体地说,混合液是复杂混合物的溶液,至少为3组分,假定混合液仅含目标组分1和干扰组分2,用制备色谱分离时,干扰组分2流出曲线与目标组分1流出曲线相邻,干扰组分2是所有杂质中严重干扰目标组分1分离的杂质;计算结果以目标物的提纯指标为约束条件和优化目标函数,如:计算结果需满足目标物的纯度约束条件:≥95%,以生产效率或者收率为目标函数;再如:计算结果需满足目标物的收率,以生产效率或者纯度或者生产效率和纯度为目标函数;
优化问题描述:
Max:P=f(C1,F,tp,u,T)
其中,C1,F为进料液目标组分浓度,tp为进样时间,T为截取目标物流出液的时间段,T=Tend-Tstart,Tstart为截取目标物馏分开始时间,Tend为截取目标物馏分结束时间,u为流动相线速度(
Figure BDA0001173153680000041
Q为流动相流量,r为制备柱半径,F为制备柱相比);
目标物纯度Pu1计算公式:
Figure BDA0001173153680000042
式中,C1(L,t)及C2(L,t)为柱长等于L时目标物和干扰组分的流出曲线;
目标物收率Y1的计算公式:
Figure BDA0001173153680000043
色谱分离的生产率的计算公式:
Figure BDA0001173153680000044
式中,VF为进料液的体积,Vc为柱体积。
本发明的有益效果是:
1、简化建模过程
本发明在复杂混合物色谱分离的体系中,仅对目标物和干扰组分用理想色谱模型建模,色谱分离过程的吸附、脱附、传质、扩散、竞争均通过逆法求解得到的单组份吸附等温线的参数和理想色谱模型算法的参数来体现,用最简单的但却是最主要的形式处理最为复杂的而且是无法解决的建模问题。而在现有的复杂色谱体系中,即使所有组分已知,传质系数、扩散系数、竞争关系也无法准确确定,也就无法准确建模。
2、模型求解方法简单准确
本发明采用差分格式迭代求解,方程求解误差小,在线性及非线性体系下具有良好的稳定性,目标物的计算色谱流出曲线与实验流出曲线吻合良好,而且假定浓度的干扰组分的计算色谱流出曲线与实验流出曲线吻合也较好。
3、用模型指导复杂混合物色谱分离实践
本发明对于所用的复杂混合物色谱分离的体系,确定复杂混合物进样液中与目标物相邻的干扰组分后,干扰组分结构未知、浓度无法测定时,或者根据进样液中目标物浓度、干扰组分检测信号和目标物检测信号赋予干扰组分的浓度,或者根据进样液中目标物浓度、进样液在制备色谱的干扰组分流出曲线色谱峰面积和目标物流出曲线色谱峰面积赋予干扰组分的浓度,该杂质浓度为假定浓度,由此通过逆法获得假定的吸附等温线并建立假定的理想色谱模型,可以粗略预测干扰组分的色谱行为。对于未知杂质,虽然没有相应的标准物质,由实验测得的未知杂质流出曲线无法用浓度和时间表示,只能用响应信号和时间表示,但是该流出曲线能反映出与各组分的分离情况,当赋予未知杂质假定浓度后,其色谱峰峰底宽度和峰高位置依然准确,仍然能反映出与其它组分的分离程度,可以建模粗略描述其色谱行为。按目标组分1和干扰组分2考虑,当要求的分离后目标物纯度高于95%时,在模型获取的优化条件下分离,实际得到的纯度接近或高于90%(本专利中纯度均指HPLC纯度)。
具体的,利用本发明的方法分离丹参中丹参酮IIA时,按目标组分1和干扰组分2考虑,模型预测分离结果是:丹参酮IIA的纯度为95.15%,收率89.19%,生产率2.35g/(h·L);实际分离结果是:丹参酮IIA的纯度为93.15%,收率82.42%,生产率2.23g/(h·L),与模型预测分离结果吻合。按全组分考虑,通过这种优化法将丹参酮IIA的纯度由38.89%提高至93.15%,丹参酮IIA的收率82.42%,生产率2.23g/(h·L)。
利用本发明的方法分离喜树果中喜果苷时,按目标组分1和干扰组分2考虑,模型预测分离结果是:喜果苷纯度为95.28%,收率90.34%,生产率0.221g/h/L;实际分离结果是:喜果苷纯度为94.58%,收率91.7%,生产率0.224g/h/L,与模型预测分离结果吻合。按全组分考虑,通过这种优化法将喜果苷的纯度由25.78%提高至73.89%,喜果苷的收率91.7%,生产率0.224g/(h·L)。
利用本发明的方法分离甜叶菊中莱鲍迪A苷时,按目标组分1和干扰组分2考虑,模型预测分离结果是:莱鲍迪A苷的收率为99.09%,纯度97.86%;实际分离结果是:莱鲍迪A苷的收率为97.31%,纯度95.98%,与模型预测分离结果吻合。按全组分考虑,通过这种优化法将莱鲍迪A苷的纯度由8.73%提高至67.72%,莱鲍迪A苷的收率95.98%。
4、实验点少
选择吸附等温线后,需要2-5条实际流出曲线即可用逆法建模。如:在Langmuir吸附等温线
Figure BDA0001173153680000061
情况下,1条为线性条件下的流出曲线,在进样量少的情况下得到,用于测吸附系数Gi;1~2条流出曲线为非线性条件下的流出曲线,在进样量过载的情况下得到,用于测定系数bi。增加实验点,可以提高模型的准确度,实验点少于5个,即可建模。
5、本发明能够通过模型模拟获得色谱分离复杂混合物的优化操作条件,这是一种省时、省力、省原料和流动相的制备色谱寻优方法。
附图说明
图1是实施例1中色谱分离丹参中丹参酮IIA的流出曲线图谱;
其中,(a)进样液HPLC图谱,(b1)制备柱的第一条实际流出曲线和模拟流出曲线,(b2)制备柱的第二条实际流出曲线和模拟流出曲线,(c)经色谱模型优化的分离条件下的实际流出曲线和模拟流出曲线,(d)经色谱模型优化分离后干扰组分馏分的HPLC谱图,(e)经色谱模型优化分离后目标物馏分的HPLC谱图;虚线为模型计算得到的模拟流出曲线,实线为测得的实际流出曲线;1为目标物,2为干扰组分;
图2是实施例2中色谱分离喜树果提取物中喜果苷的流出曲线图谱;
说明如图1;
图3是实施例3中色谱分离甜叶菊提取物中莱鲍迪A苷的流出曲线图谱;
其中,(b3)制备柱的第三条实际流出曲线,其他说明如图1。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例中的附图,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述。
实施例1
一种用制备色谱从丹参萃取液中分离丹参酮IIA的优化方法。
所用制备色谱体系:制备色谱柱:D×L=10mm×100mm;固定相:C18,20μm;流动相:乙醇-水,配比65∶35;色谱分离温度:室温;HPLC检测条件:4.6mm×150mm分析柱(C18,5μm,Agilent,U.S.A.),流动相甲醇与水的配比为85/15(v/v),流速1.0ml/min,测定波长270nm,测定温度30℃。
优化方法包括以下步骤:
(1)按制备色谱的流动相乙醇与水的配比配制丹参的进样液,用HPLC测定丹参进样液中丹参酮IIA的浓度,HPLC谱图(见图1(a))中显示丹参酮IIA(峰1)的纯度38.89%;
(2)通过制备色谱的流出曲线,确定进样液在该制备色谱体系中目标物1的干扰组分2,用HPLC测得的进样液中干扰组分2检测信号与目标物丹参酮IIA检测信号的比值K再与目标物浓度C1,F乘积,赋予干扰组分的浓度,该干扰组分浓度为假定浓度,C2,F=KC1,F,这里,K=0.15,C2,F=0.032mg/ml;
(3)测定线性条件下和过载条件下的制备色谱的2条实际流出曲线,分别为图1(b1),图1(b2);
第1条实际流出曲线的色谱条件:
进样液:丹参酮IIA的浓度C1,F=0.22mg/ml
流速Q:1ml/min
进样时间:5s
在线获得实际流出曲线;
第2条实际流出曲线的色谱条件:
进样液:丹参酮IIA的浓度C1,F=0.22mg/ml
流速Q:3ml/min
进样时间:2min
离线HPLC检测;
(4)选择Langmuir吸附等温线
Figure BDA0001173153680000071
分别描述目标组分1和前干扰组分2的吸附行为;
(5)用理想色谱模型方程(1)分别描述目标组分1和前干扰组分2的色谱行为;再用显示差分法将理想色谱模型表示为:
Figure BDA0001173153680000081
式中,i=1、2,τ为时间步长,h为空间步长,j表示当前的塔板,n代表时间,n=kτ,k=1,2,3...,
Figure BDA0001173153680000082
边界条件:
Figure BDA0001173153680000083
Figure BDA0001173153680000084
Ci,F为进料液中组分i的浓度,tp为进料时间;用VB软件编程对理想色谱模型的差分格式迭代求解,获得组分i流出曲线Ci(L,t)-t;
(6)根据实际流出曲线用逆法确定:目标物1的吸附等温线参数G1、b1和色谱模型的计算参数τ、h;干扰组分的吸附等温线参数G2、b2
根据在线性条件下获得的第1条实际流出曲线(图1(b1))和公式tRi=t0(1+FGi),式中,tRi为保留时间,t0为死时间,F为相比,获得吸附系数Gi,丹参酮IIA的吸附参数G1=10.75,其前干扰组分G2=7.89;
根据在进样量过载的非线性条件下获得的第2条实际流出曲线(图1(b2)),测定吸附系数bi,并确定h/τ;具体的,首先为参数赋初值,利用色谱模型计算色谱流出曲线,并和实际测定的曲线进行比较,按下式计算两者误差平方和:
Figure BDA0001173153680000085
式中,
Figure BDA0001173153680000086
是实验测定值,
Figure BDA0001173153680000087
是模型计算值;利用最优化方法选取最优参数值,使目标函数Fun最小。由此求得丹参酮IIA的b1=-0.08,前干扰组分b2=-0.30,h11=h22=0.49,理想色谱模型模拟计算的流出曲线(虚线)与实验测定的流出曲线(实线)吻合较好;
(7)用色谱模型优化制备色谱分离目标物和干扰组分的操作条件:
假定丹参进样液仅含丹参酮IIA和前干扰组分,计算结果需满足丹参酮IIA的纯度约束条件:≥95%;
优化问题描述:
Max目标物生产率:P=f(C1,F,tp,u,Tstart)
决策变量和固定参数:
0.12mg/ml≤C1,F≤0.24mg/ml
2min≤tp≤6min
5.17cm/min≤u≤8.17cm/min
10min≤Tstart≤15min
按单因素法或单纯形或正交设计或均匀设计或响应面设计或遗传算法进行色谱模型优化制备色谱分离丹参酮IIA和前干扰组分的操作条件。这里采用遗传算法(GA)进行优化,GA参数为:种群规模:20,染色体长度:45bits,交叉概率:0.9,变异概率:0.1,进化代数:50;
结合GA,由模型优化的色谱分离条件为:C1,F=0.24mg/ml,C2,F=0.034mg/ml,tp=3.86min,u=7.39cm/min,Tstart=10.48min,该条件下的预测分离结果是:得到丹参酮IIA的纯度为95.15%,收率89.19%,生产率2.35g/(h·L);
(8)在由色谱模型优化出来的分离条件进行实际分离:
测定在色谱模型优化的分离条件下的实际流出曲线,为图1(c),0-10.48min杂质馏分和10.48-15min目标物馏分的HPLC色谱图见图1(d)和图1(e),图中表明丹参酮IIA和前干扰组分得到较好分离。实际得到丹参酮IIA的纯度为93.15%,收率82.42%,生产率2.23g/(h·L),优化点的模型模拟结果与实验结果比较吻合。
实施例2
一种用制备色谱从喜树果萃取液中分离喜果苷的优化方法。
所用制备色谱体系:制备色谱柱:D×L=20mm×500mm;固定相:C18,20μm;流动相:乙醇-水,配比60∶40;色谱分离温度:室温。HPLC检测条件:4.6mm×250mm分析柱(C18,5μm,Agilent,U.S.A.),流动相甲醇与水的配比为45/55(v/v),流速1.0ml/min,测定波长256nm,测定温度25℃。
优化方法包括以下步骤:
(1)按制备色谱的流动相乙醇与水的配比配制喜树果的进样液,用HPLC测定喜树果进样液中喜果苷的浓度,HPLC谱图(图2(a))中显示喜果苷组分纯度16.90%;
(2)通过制备色谱的流出曲线,确定进样液在该制备色谱体系中目标物1的干扰组分2,根据进样液在制备色谱的干扰组分流出曲线色谱峰面积和目标物流出曲线色谱峰面积赋予干扰组分的浓度,该干扰组分浓度为假定浓度,C2F=C1,F
(3)测定线性条件下的制备色谱的实际流出曲线,为图2(b1),测定过载条件下制备色谱的实际流出曲线,为图2(b2);
第1条实际流出曲线的色谱条件:
流速Q:11.4mL/min
进样液:喜果苷的浓度为0.27mg/ml
进样时间:3s
在线获得实际流出曲线;
第2条实际流出曲线的色谱条件:
流速Q:11.4mL/min
进样液:喜果苷的浓度为0.27mg/ml
进样时间:1min
离线HPLC检测;
(4)同实施例1步骤(4);
(5)同实施例1步骤(5);
(6)按实施例1步骤(6),根据在线性条件下获得的第1条实际流出曲线(图2(b1))和公式tRi=t0(1+FGi),测定吸附系数Gi,可得喜果苷的吸附参数G1=1.36,其前干扰组分G2=0.4;根据在进样量过载的非线性条件下获得的喜果苷的第二条实际流出曲线(图2(b2)),测定喜果苷的b1=0.1,并设定前干扰组分b2=0,τ1=τ2=0.05,h1=h2=0.02。理想色谱模型模拟计算的流出曲线(虚线)与实验测定的流出曲线(实线)吻合较好;
(7)按实施例1步骤(7)用色谱模型优化制备色谱分离喜果苷和干扰组分的操作条件:
假定喜果进样液仅含喜果苷和前干扰组分,计算结果需满足喜果苷的纯度约束条件:≥95%;
优化问题描述:
Max目标物生产率:P=f(C1,F,tp,u,Tstart)
决策变量和固定参数:
0.09mg/ml≤C1,F≤0.3mg/ml
2min≤tp≤10min
4cm/min≤u≤8cm/min
10min≤Tstart≤20min
由模型优化的色谱分离条件为:C1,F=C2,F=0.3mg/ml,tp=4.563min,u=5.66cm/min,Tstart=15.02min,该条件下的预测分离结果是:得到喜果苷的纯度为95.28%,收率90.349%,生产率0.221g/(h·L);
(8)在由模型优化出来的色谱分离条件进行实际分离:
测定在模型优化的色谱分离条件下的实际流出曲线,为图2(c),13-14.5min的杂质馏分和15-20.5min的目标物馏分的HPLC图谱见图2(d)和图2(e),表明喜果苷和前干扰组分得到较好分离。按目标组分1和干扰组分2考虑,实际得到喜果苷的纯度为纯度为94.58%,收率91.7%,生产率0.224g/(h·L),优化点的模型模拟结果与实验结果较好吻合;按全组分考虑,实际目标物纯度为73.89%,收率91.7%,生产率0.224g/(h·L)。
实施例3
一种用制备色谱从甜叶菊萃取液中分离莱鲍迪苷A(RA)的优化方法。
所用制备色谱体系:制备色谱柱:D×L=50mm×100mm;固定相:C18,40~60μm;流动相:乙醇-水,配比1∶1;色谱分离温度:室温。HPLC检测条件:分析柱:4.6mm×250mm(C18,5μm,Agilent,U.S.A.),流动相:色谱乙腈与pH=2.6的磷酸二氢钠缓冲液配比为32/68(v/v),流速1.0ml/min,测定波长213nm,测定温度30℃。
优化方法包括以下步骤:
(1)按制备色谱的流动相乙醇与水的配比配制甜叶菊的进样液,用HPLC测定甜叶菊进样液中RA的浓度C1,F,HPLC谱图3(a)显示RA纯度8.73%;
(2)通过制备色谱的流出曲线,确定进样液在该制备色谱体系中与目标物1相邻的干扰组分即未知杂质2,用步骤(1)HPLC测得的进样液中干扰组分检测信号与目标物检测信号的比值K再与目标物浓度C1,F的乘积,赋予干扰组分的浓度,该干扰组分浓度为假定浓度,C2,F=KC1,F,这里,K=2;
(3)分别测定1条线性条件下制备色谱实际流出曲线(见图3(b1))和2条过载条件下的制备色谱实际流出曲线,分别见图3(b2)和图3(b3);
第1条实际流出曲线的色谱条件:
进样液中RA的浓度C1,F=25mg/ml
流速Q:15ml/min
进样时间:0.5min
离线HPLC检测;
第2条实际流出曲线的色谱条件:
进样液中RA的浓度C1,F=20mg/ml
流速Q:20ml/min
进样时间:3min
离线HPLC检测;
第3条实际流出曲线的色谱条件:
进样液中RA的浓度C1,F=25mg/ml
流速Q:30ml/min
进样时间:2min
离线HPLC检测;
(4)同实施例1步骤(4);
(5)同实施例1步骤(5);
(6)按实施例1步骤(6),根据线性条件下获得的第1条实际流出曲线(图3(b1))和公式tRi=t0(1+FGi),可得RA的吸附参数G1=4.56,其前干扰组分G2=2.31;根据在进样量过载的非线性条件下获得的第2条(图3(b2))和第3条实际流出曲线和(图3(b3)),测定RA的b1=0.02,h1=0.02,τ1=0.25;前干扰组分b2=0.002,h2=0.1,τ2=0.25。理想色谱模型模拟计算的流出曲线(虚线)与实验测定的流出曲线(实线)吻合较好;
(7)用色谱模型优化制备色谱分离目标物和干扰组分的操作条件:
假定甜叶菊进样液仅含RA和前干扰组分,计算结果需满足RA的收率约束条件:≥99%;
优化问题描述:
Max目标物纯度和生产率:P=f(C1,F,tp,u,Tstart)=Pc×puθ,式中θ为偏重指数因子,这里θ=20。
决策变量和固定参数:
5mg/ml≤C1,F≤25mg/ml
1min≤Tp≤5min
12.5ml/min≤Q≤40ml/min
5min≤Tstart≤35min
结合GA,由模型优化的分离条件为:C1,F=13.8mg/ml,tp=2.16min,Q=14.9ml/min,Tstart=24.77min,该条件下的预测分离结果是:得到RA的收率为99.09%,纯度为97.86%;
(8)在色谱模型优化的分离条件进行实际分离:
测定在色谱模型优化的分离条件下的实际流出曲线,为图3(c),1-25min杂质馏分和26-36min目标物馏分的HPLC色谱图分别见图3(d)和图3(e),由此表明RA和前干扰组分得到较好分离。按目标组分1(RA)和干扰组分2考虑,实际得到RA的收率为97.31%,纯度95.98%,优化点的模型模拟结果与实验结果吻合;按全组分考虑,实际RA纯度为67.72%,收率95.98%。

Claims (5)

1.一种用制备色谱分离复杂混合物中目标物的优化方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)配制复杂混合物的进样液,复杂混合物含有3种以上组分,并测定其中目标物的浓度;
(2)确定在制备色谱所用固定相和流动相体系中目标物的干扰组分,并赋予干扰组分的浓度;当所述干扰组分结构未知,并且其浓度无法测定时,假定干扰组分浓度;
(3)用进样液采集2-5条目标物及其干扰组分的实际制备色谱的流出曲线数据;
(4)选择单一组分的吸附等温线描述目标物的吸附行为;选择单一组分的吸附等温线描述干扰组分的吸附行为;
(5)选择理想色谱模型分别描述目标物和干扰组分的色谱行为;再用差分法求解目标物和干扰组分的色谱模型,进而分别得到目标物和干扰组分的单柱计算流出曲线;
(6)根据实际流出曲线用逆法确定:目标物的吸附等温线参数和色谱模型的计算参数;干扰组分的吸附等温线参数和色谱模型的计算参数;
(7)用理想色谱模型优化制备色谱分离目标物和干扰组分的操作条件;
(8)在由理想色谱模型优化出来的分离条件下进行实际分离;
所述理想色谱模型的差分求解方法如下:
Figure FDA0002669460910000011
qi=f(Ci) (2)
式(1)为理想色谱模型,式(2)为吸附等温线,其中i代表组分i,i=1为目标物,i=2为干扰组分;ci,qi分别为组分在流动相与固定相的浓度;u为流动相的流速;F为相比,F=(1-ε)/ε,ε为孔隙率;t代表时间,x代表位置;
进而,将式(1)写成:
Figure FDA0002669460910000012
式中,
Figure FDA0002669460910000021
再将式(3)中
Figure FDA0002669460910000022
项向后差分,
Figure FDA0002669460910000023
项向前差分,建立显式差分格式:
Figure FDA0002669460910000024
式中,τ为时间步长,h为空间步长,j表示当前的塔板,j=1,2,…,L/h,n代表时间,n=kτ,k=1,2,3...,显式差分格式稳定性条件:
Figure FDA0002669460910000025
或者将式(3)中
Figure FDA0002669460910000026
项和
Figure FDA0002669460910000027
项都向后差分,建立隐式差分格式:
Figure FDA0002669460910000028
上述的两种差分格式边界条件:
Figure FDA0002669460910000029
Ci,F为进料液中组分i的浓度,tp为进料时间;
通过对上述显式差分格式或者隐式差分格式迭代求解,获得组分i流出曲线Ci(L,t)-t,L为色谱柱长;
所述的采集目标物及其干扰组分的实际制备色谱的流出曲线数据为采集线性条件下目标物及其干扰组分的实际制备色谱的流出曲线数据,以及采集过载条件下目标物及其干扰组分的实际制备色谱的流出曲线数据。
2.根据权利要求1所述的一种用制备色谱分离复杂混合物中目标物的优化方法,其特征在于,逆法确定吸附等温线参数、模型计算参数时,需要经过设定初值并经模型求解至计算流出曲线与实际流出曲线吻合后确定最终取值。
3.根据权利要求1所述的一种用制备色谱分离复杂混合物中目标物的优化方法,其特征在于,所述色谱模型优化制备色谱分离目标物和干扰组分的操作条件是按单因素法或单纯形或正交设计或均匀设计或响应面设计或遗传算法进行的。
4.根据权利要求1所述的一种用制备色谱分离复杂混合物中目标物的优化方法,其特征在于,所述复杂混合物的进样液按制备色谱的流动相的配比配制。
5.根据权利要求3所述的一种用制备色谱分离复杂混合物中目标物的优化方法,其特征在于,干扰组分结构未知的情况下,假定进样液仅含目标组分1和干扰组分2;计算结果以目标物的提纯指标为约束条件和优化目标函数,以流动相流速、原料进样浓度、原料进样时间、截取目标物流出液时间段为优化参数。
CN201611115099.5A 2016-12-07 2016-12-07 一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法 Active CN107066788B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201611115099.5A CN107066788B (zh) 2016-12-07 2016-12-07 一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201611115099.5A CN107066788B (zh) 2016-12-07 2016-12-07 一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN107066788A CN107066788A (zh) 2017-08-18
CN107066788B true CN107066788B (zh) 2020-11-24

Family

ID=59619039

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201611115099.5A Active CN107066788B (zh) 2016-12-07 2016-12-07 一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN107066788B (zh)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108840793B (zh) * 2018-05-28 2021-06-15 辽宁科技大学 一种应用模拟移动床色谱制备γ-崖柏素的方法

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1712955A (zh) * 2004-06-25 2005-12-28 中国科学院大连化学物理研究所 一种精确测定色谱峰形参数和重叠峰面积的方法
CN102156785A (zh) * 2011-04-18 2011-08-17 浙江工业职业技术学院 一种动态布料仿真方法
CN104390946A (zh) * 2014-11-13 2015-03-04 中国农业大学 测定果汁中赭曲霉毒素a含量的方法
CN105669790A (zh) * 2016-03-08 2016-06-15 中南林业科技大学 一种联苄类化合物及其提取方法
CN105891365A (zh) * 2016-04-21 2016-08-24 南京大学 一种以效应为导向的目标/非目标雄激素干扰物鉴别方法

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6635173B2 (en) * 2000-12-28 2003-10-21 Cohesive Technologies, Inc. Multi column chromatography system
US7549379B2 (en) * 2006-07-19 2009-06-23 Amsted Rail Company, Inc Railway freight car side bearing
US8298789B2 (en) * 2007-08-09 2012-10-30 Usv Limited Orthogonal process for purification of recombinant human parathyroid hormone (rhPTH) (1-34)

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1712955A (zh) * 2004-06-25 2005-12-28 中国科学院大连化学物理研究所 一种精确测定色谱峰形参数和重叠峰面积的方法
CN102156785A (zh) * 2011-04-18 2011-08-17 浙江工业职业技术学院 一种动态布料仿真方法
CN104390946A (zh) * 2014-11-13 2015-03-04 中国农业大学 测定果汁中赭曲霉毒素a含量的方法
CN105669790A (zh) * 2016-03-08 2016-06-15 中南林业科技大学 一种联苄类化合物及其提取方法
CN105891365A (zh) * 2016-04-21 2016-08-24 南京大学 一种以效应为导向的目标/非目标雄激素干扰物鉴别方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
利用非线性色谱模型优化制备分离条件;周丹等;《计算机与应用化学》;20090228;第26卷(第2期);正文第2-3节 *
基于隐式差分法的色谱分离过程操作模型研究;叶忠建等;《计算机与应用化学》;20120728;第29卷(第7期);摘要,第3.2节 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN107066788A (zh) 2017-08-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Pedeferri et al. Experimental analysis of a chiral separation through simulated moving bed chromatography
Watt et al. Approaches to higher-throughput pharmacokinetics (HTPK) in drug discovery
Benner et al. Prediction of lab and manufacturing scale chromatography performance using mini-columns and mechanistic modeling
Li et al. Two‐dimensional liquid chromatography and its application in traditional Chinese medicine analysis and metabonomic investigation
Lindholm Development and validation of HPLC methods for analytical and preparative purposes
JP2003530572A (ja) 高速液体クロマトグラフィー・パラメータのモデル化、予測、及び最適化のための方法
Ahmadi et al. A systematic study on the accuracy of chemical quantitative analysis using soft modeling methods
CN107066788B (zh) 一种用制备色谱分离复杂物中目标物的优化方法
CN106596815A (zh) 用模拟移动床色谱分离复杂混合物中目标物的优化方法
Arafah et al. Separation of nadolol stereoisomers using Chiralpak IA chiral stationary phase
Ribeiro et al. Separation of nadolol stereoisomers by chiral liquid chromatography at analytical and preparative scales
Wang et al. A rapid and practical prediction method for the Arizona solvent system family used in high speed countercurrent chromatography
Ribeiro et al. Preparative separation of ketoprofen enantiomers: Choice of mobile phase composition and measurement of competitive adsorption isotherms
Arase et al. Intelligent peak deconvolution through in-depth study of the data matrix from liquid chromatography coupled with a photo-diode array detector applied to pharmaceutical analysis
Mohseni et al. Second-order advantage obtained from standard addition first-order instrumental data and multivariate curve resolution-alternating least squares. Calculation of the feasible bands of results
Shan et al. Analysis of the isolation of a target component using multicomponent isocratic preparative elution chromatography
Mitra Ray et al. Modelling, simulation, and experimental study of a simulated moving bed reactor for the synthesis of biodiesel
Dsouza et al. Multiple heart-cutting two-dimensional liquid chromatography: recent developments and applications
Amanullah et al. Experimental implementation of automatic ‘cycle to cycle’control of a chiral simulated moving bed separation
Ramis-Ramos et al. Solvent selection in liquid chromatography
CN106596761B (zh) 用模拟移动床色谱分离复杂物中目标物的三角形优化方法
Rutan et al. Closed form approximations to predict retention times and peak widths in gradient elution under conditions of sample volume overload and sample solvent mismatch
Issaq Statistical and graphical methods of isocratic solvent selection for optimal separation in liquid chromatography
Ding et al. Chromatographic zinc isotope separation by phenol formaldehyde benzo crown resin
Zhang et al. Chemometrics in instrumental analysis of complex systems—in honor and memory of Yi‐Zeng Liang

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
CB03 Change of inventor or designer information

Inventor after: Wang Shaoyan

Inventor after: Wei Bofeng

Inventor after: Li Shoujiang

Inventor after: Zhang Wei

Inventor after: Shi Shuang

Inventor after: Cao Jian

Inventor before: Wang Shaoyan

Inventor before: Zhang Wei

Inventor before: Li Shoujiang

Inventor before: Wei Bofeng

Inventor before: Shi Shuang

Inventor before: Cao Jian

CB03 Change of inventor or designer information
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant