CN106947722B - 微生物菌剂及其制备方法和在污水处理中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种微生物菌剂及其制备方法和在污水处理中的应用,涉及环境工程的技术领域。本发明提供的微生物菌剂中的细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌通过相互协调和相互配合,形成了一个能够高效处理生活污水的微生物系统,按照本发明提供的方法制得的微生物菌剂,具有降解油脂、淀粉和纤维素的能力,还能有效减少粪便中H2S的释放,且对污水中COD、BOD5、SS、TP、NH3‑N、TN都有较高的去除率。
Description
技术领域
本发明涉及环境工程技术领域,尤其是涉及一种微生物菌剂及其制备方法和在污水处理中的应用。
背景技术
随着我国社会的发展以及人口数量的增加,排放的生活污水量剧增。生活污水主要包括粪便水和洗涤水,含有大量的有机物、悬浮固体、营养物质及病原体等,尤其是生活污水相对于其他种类的污水而言,含有较多的粪便、纤维、蛋白、油脂、糖类、淀粉等物质。生活污水如果不经处理直接排放,将会对自然环境或人体产生极大的影响。
目前已有多种处理生活污水的工艺或者方法,但目前采用的方法很少会针对生活污水组分的特点进行处理,不能有针对性的处理生活污水中粪便、纤维、蛋白、油脂、糖类、淀粉等物质。因此,就需要提供一种高效性、针对性处理生活污水的产品或者方法。
发明内容
本发明的第一个目的在于提供一种微生物菌剂,本发明的第二个目的在于提供微生物菌剂的制备方法,本发明的第三个目的在于提供微生物菌剂的应用,以缓解现有技术存在的对生活污水处理的针对性差、效率低的技术问题。
本发明提供了一种微生物菌剂,所述微生物菌剂包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌。
进一步的,
所述细长真杆菌为Eubacterium dolichum,ATCC编号29143;
所述凝结芽孢杆菌为Bacillus coagulans,ATCC编号15949;
所述短乳杆菌为Lactobacillus brevis,ATCC编号8287;
所述漠海威芽孢杆菌为Bacillus mojavensis,ATCC编号51517;
所述毛霉菌为Mucor plumbeus,ATCC编号42423;
所述植物乳杆菌为Lactobacillus plantarum,ATCC编号14917;
所述纤维弧菌为Cellvibrio gilvus,ATCC编号13127。
进一步的,所述微生物菌剂中,所述细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌的CFU配比为(5-4):(3-2):(2-1):(2-1):(2-1):(2-1):(5-4)。
进一步的,所述微生物菌剂中,所述细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌的CFU配比为5:3:1:2:2:1:5。
进一步的,所述微生物菌剂为液态,所述微生物菌剂中微生物的总CFU浓度为5×107~7×107CFU/mL。
另外,本发明还提供了所述的微生物菌剂的制备方法,所述制备方法包括:分别将所述细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌进行富营养低温驯化,然后将驯化后的微生物混合均匀,得到所述微生物菌剂。
进一步的,所述富营养低温驯化包括:
第一驯化阶段,将微生物接种于第一驯化培养基,130rpm/min,28℃,培养24h,所述第一驯化培养基的配方为:葡萄糖0.15g/L,可溶性淀粉0.16g/L,CH3COONa 0.233g/L,NH4Cl 0.0255g/L,蛋白胨0.158g/L,牛肉膏0.04g/L,(NH4)2SO4 0.0284g/L,KH2PO4 0.07g/L,NaCO3 0.06g/L,pH 7~7.5;
第二驯化阶段,将经过第一驯化阶段培养的微生物,按照10-15%的接种量接种于第二驯化培养基中,100rpm/min,20℃,培养24h,所述第二驯化培养基的配方为:葡萄糖0.17g/L,可溶性淀粉0.16g/L,CH3COONa 0.2g/L,NH4Cl 0.045g/L,蛋白胨0.158g/L,牛肉膏0.05g/L,(NH4)2SO4 0.0308g/L,KH2PO4 0.07g/L,NaCO3 0.06g/L,pH 7~7.5;
第三驯化阶段,将经过第二驯化阶段培养的微生物,按照10-15%的接种量重新接种于新鲜的第二驯化培养基中,100rpm/min,16℃,培养24h。
另外,本发明还提供了所述的微生物菌剂在污水处理中的应用。
进一步的,所述应用包括向每升待处理污水中加入总量为5×107~7×107CFU的微生物菌剂。
进一步的,所述污水为生活污水。
本发明提供的微生物菌剂中的细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌通过相互协调和相互配合,形成了一个能够高效处理生活污水的微生物系统,按照本发明提供的方法制得的微生物菌剂,具有降解油脂、淀粉和纤维素的能力,还能有效减少粪便中H2S的释放,且对污水中COD、BOD5、SS、TP、NH3-N、TN都有较高的去除率。
附图说明
为了更清楚地说明本发明具体实施方式或现有技术中的技术方案,下面将对具体实施方式或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图是本发明的一些实施方式,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为本发明提供的微生物菌剂去除粪便中H2S的数据图。
具体实施方式
下面将结合实施例对本发明的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
本发明提供了一种微生物菌剂,包括:细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌。
其中,微生物菌剂中,细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌的CFU配比为(5-4):(3-2):(2-1):(2-1):(2-1):(2-1):(5-4),例如可以为但不限于4:2:1:2:2:1:4,4.5:2.5:1:1.5:1.5:1:4.5,5:3:1:2:2:1:5,5:2:1:1:1:4,4:3:1:2:2:1:4,5:3:2:2:2:2:5,4:2:1:1:1:1:4,优选5:3:1:2:2:1:5。
其中,微生物菌剂中,细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌的总CFU浓度为5×107~7×107CFU/mL,例如可以为但不限于5×107、5.5×107、6×107、6.5×107或者7×107CFU/mL,优选6×107CFU/mL。
另外,本发明还提供了微生物菌剂的制备方法,包括分别将细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌进行富营养低温驯化,然后将驯化后的微生物混合均匀,即得到了微生物菌剂。
其中,富营养低温驯化包括:
第一驯化阶段,将微生物接种于第一驯化培养基,130rpm/min,28℃,培养24h,所述第一驯化培养基的配方为:葡萄糖0.15g/L,可溶性淀粉0.16g/L,CH3COONa 0.233g/L,NH4Cl 0.0255g/L,蛋白胨0.158g/L,牛肉膏0.04g/L,(NH4)2SO4 0.0284g/L,KH2PO4 0.07g/L,NaCO3 0.06g/L;
第二驯化阶段,将经过第一驯化阶段培养的微生物,按照10-15%的接种量接种于第二驯化培养基中,100rpm/min,20℃,培养24h,所述第二驯化培养基的配方为:葡萄糖0.17g/L,可溶性淀粉0.16g/L,CH3COONa 0.2g/L,NH4Cl 0.045g/L,蛋白胨0.158g/L,牛肉膏0.05g/L,(NH4)2SO4 0.0308g/L,KH2PO4 0.07g/L,NaCO3 0.06g/L;
第三驯化阶段,将经过第二驯化阶段培养的微生物,按照10-15%的接种量重新接种于新鲜的第二驯化培养基中,100rpm/min,16℃,培养24h。
第一驯化培养基和第二驯化培养基模拟了污水的富营养环境,且第二驯化营养剂较第一驯化营养剂的营养物质更多,再结合温度的逐步降低,使得经过富营养低温驯化后的菌株,能够适应温度较低的富营养环境。
需要强调的是,在富营养低温驯化过程中,各个菌株是单独进行驯化的,经驯化后的菌株再按照所需浓度和比例进行混合,即得到微生物菌剂。
另外,本发明还提供了微生物菌剂在污水处理,尤其是生活污水处理中的应用;在应用过程中,向每升待处理污水中加入的微生物菌剂量为5×107~7×107CFU,可实现较好的污水处理效果,例如可以为但不限于5×107、5.5×107、6×107、6.5×107或者7×107CFU,优选6×107CFU;以6×107CFU为例,其含义为每1L需要处理的生活污水中,投入的微生物菌剂中微生物的总CFU为6×107。
如未特别指出,以下实施例中涉及的试剂为常规市售试剂,涉及的方法为常规分子生物学方法。
实施例1
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌,其CFU配比为5:3:1:2:2:1:5,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
实施例2
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌,其CFU配比为5:3:2:2:2:2:5,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
实施例3
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌,其CFU配比为4:2:1:1:1:1:4,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
实施例4
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌,其CFU配比为5:2:1:1:1:4,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
实施例5
本实施例提供了一种微生物菌剂的制备方法,包括:分别将细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌进行富营养低温驯化,然后将驯化后的微生物混合均匀,即得到了微生物菌剂。
其中,富营养低温驯化包括:
第一驯化阶段,将微生物接种于第一驯化培养基,130rpm/min,28℃,培养24h,所述第一驯化培养基的配方为:葡萄糖0.15g/L,可溶性淀粉0.16g/L,CH3COONa 0.233g/L,NH4Cl 0.0255g/L,蛋白胨0.158g/L,牛肉膏0.04g/L,(NH4)2SO4 0.0284g/L,KH2PO4 0.07g/L,NaCO3 0.06g/L,pH 7~7.5;
第二驯化阶段,将经过第一驯化阶段培养的微生物,按照10-15%的接种量接种于第二驯化培养基中,100rpm/min,20℃,培养24h,所述第二驯化培养基的配方为:葡萄糖0.17g/L,可溶性淀粉0.16g/L,CH3COONa 0.2g/L,NH4Cl 0.045g/L,蛋白胨0.158g/L,牛肉膏0.05g/L,(NH4)2SO4 0.0308g/L,KH2PO4 0.07g/L,NaCO3 0.06g/L,pH 7~7.5;
第三驯化阶段,将经过第二驯化阶段培养的微生物,按照10-15%的接种量重新接种于新鲜的第二驯化培养基中,100rpm/min,16℃,培养24h。
经过第三驯化阶段后,将菌液离心,菌体用新鲜的第二驯化培养基重悬,并按照所需浓度和配比,混合配置为微生物菌剂。
按照实施例5的方法以及实施例1的配方,制备得到微生物菌剂,并对微生物菌剂降解油脂、淀粉、纤维素以及粪便的能力进行如下检测,具体方法及结果如下。
油脂降解实验
制备油脂培养基固定平板,将菌种划线接种后置于16℃恒温培养箱中培养24h,取出后观察平板长菌处,发现出现了红色斑点,证明本发明提供的微生物菌剂具有降解脂肪的能力。
油脂培养基配方:牛肉膏5g/L,蛋白胨10g/L,NaCl 5g/L,花生油10mL/L,0.6%中性红水溶液,pH 7~7.5。
淀粉降解实验
制备淀粉培养基平板,用接种环取少量微生物菌剂接种于培养基表面,将接种后的培养皿置于16℃恒温培养箱培养24h,滴加少量卢戈氏碘液于平板上,轻轻旋转,使卢戈氏碘液均匀铺满整个平板。观察菌落,菌落周围出现了无色透明圈,证明本发明提供的微生物菌剂具有降解淀粉的能力。
淀粉培养基配方:牛肉膏5g/L,蛋白胨10g/L,NaCl 5g/L,可溶性淀粉2g/L,琼脂15g/L,pH 7~7.5。
纤维素降解实验
将纤维素降解培养基分装于锥形瓶中,按1%的量接种微生物菌剂,在培养基中浸泡一条滤纸,纸条长度约5-7cm,部分滤纸漏于培养基液面外,16℃培养3天。观察滤纸情况,发现滤纸条被分解为一团纤维,证明本发明提供的微生物菌剂具有降解纤维素的能力。
纤维素降解培养基:葡萄糖0.17g/L,可溶性淀粉0.16g/L,CH3COONa 0.2g/L,NH4Cl0.045g/L,蛋白胨0.158g/L,牛肉膏0.05g/L,(NH4)2SO4 0.0308g/L,KH2PO4 0.07g/L,NaCO30.06g/L,琼脂15g/L,pH 7~7.5。
去除粪便中的H2S
取200g新鲜猪粪加至2.5L的塑料桶中,将液体菌剂按照0.3g/L的量接种至猪粪中,桶中放入50mL无菌小烧杯,内装有20mL锌胺络盐吸收液用于吸收H2S,用保鲜膜密封桶后盖上桶盖,置于30℃恒温室中发酵培养。对照组加入等量灭活的菌液。每隔一天,用锌胺络盐吸收比色法测定H2S的释放量,H2S的释放量如图1所示。
通过以上油脂降解实验、淀粉降解实验、纤维素降解实验以及去除粪便中的H2S实验,可以看出,本发明提供的微生物菌剂具有降解油脂、淀粉和纤维素的能力,并且能够有效减少粪便中H2S的释放量,针对生活污水中含有较多油脂、淀粉、纤维素、粪便等生活垃圾的特点,能够有效的处理生活污水,减少生活污水的臭味。
对比例1
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌,其CFU配比为3:1:2:2:1:5,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例2
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌,其CFU配比为5:1:2:2:1:5,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例3
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌,其CFU配比为5:3:2:2:1:5,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例4
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌,其CFU配比为5:3:1:2:1:5,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例5
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌,其CFU配比为5:3:1:2:1:5,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例6
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌以及纤维弧菌,其CFU配比为5:3:1:2:2:5,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例7
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌以及植物乳杆菌,其CFU配比为5:3:1:2:2:1,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例8
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
细长真杆菌,其CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例9
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
凝结芽孢杆菌,其CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例10
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
短乳杆菌,其CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例11
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
漠海威芽孢杆菌,其CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例12
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
毛霉菌,其CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例13
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
植物乳杆菌,其CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例14
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
纤维弧菌,其CFU浓度为6×107CFU/mL。
对比例15
本实施例提供了一种微生物菌剂,包括:
纳豆芽孢杆菌、乳酸芽孢杆菌以及凝结芽孢杆菌,其CFU配比为2:1:1,总CFU浓度为6×107CFU/mL。
发明人结合对比例1至15,对本发明提供的微生物菌剂的污水处理效果进行了评价。分别将实施例1至4、对比例1至15的配方,按照实施例5的制备方法制备得到微生物菌剂,并按照6×107CFU/L的使用量,投入到相同体积的生活污水中,对实施例1至4、对比例1至15所对应的微生物菌剂的污水处理效果进行了评价,具体操作和结果如下。
从北京市某生活污水处理厂采集生活污水,作为待处理的生活污水,并对其中COD、NH3-N、BOD5、SS、TP、TN的含量进行了测定,进水水质表1所示。
表1进水水质
分别将实施例1至4、对比例1至15的配方,按照实施例5的制备方法制备得到微生物菌剂,并按照6×107CFU/L的使用量,投入到生活污水中,温度16℃,处理24h后,处理后的生活污水进行检测,具体结果如表2至14所示。
表2实施例1、对比例1至7的微生物菌剂去除COD的能力
表3实施例1、对比例1至7的微生物菌剂去除BOD5的能力
表4实施例1、对比例1至7的微生物菌剂去除SS的能力
表5实施例1、对比例1至7的微生物菌剂去除TP的能力
表6实施例1、对比例1至7的微生物菌剂去除NH3-N的能力
表7实施例1、对比例1至7的微生物菌剂去除TN的能力
表8实施例1、对比例8至14的微生物菌剂去除COD的能力
表9实施例1、对比例8至14的微生物菌剂去除BOD5的能力
表10实施例1、对比例8至14的微生物菌剂去除SS的能力
表11实施例1、对比例8至14的微生物菌剂去除TP的能力
表12实施例1、对比例8至14的微生物菌剂去除NH3-N的能力
表13实施例1、对比例8至14的微生物菌剂去除TN的能力
表14实施例1至4和对比例15的微生物菌剂处理污水的能力
由表2至7的数据可以看出,本发明提供的微生物菌剂中,细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌起到相互促进、相互协调的作用,构成了一个高效处理污水的微生物系统,其中的每一种菌株都是本发明提供的微生物菌剂中不可或缺的一部分。
另外,由表2至7的数据也可以看出,本发明提供的微生物菌剂对进水中COD、BOD5、SS、TP、NH3-N、TN的去除率分别达到了89%、92%、88%、91%、87%和89%,证明了本发明提供的微生物菌剂能够有效地处理污水。
此外,由表8至13的数据也可以看出,分别应用细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌或者纤维弧菌,进行污水处理时,其污水处理的效果非常差。
此外,由表14的数据也可以看出,本发明提供的微生物菌剂(实施例1至4)较其他菌株组成微生物菌剂(对比例15)相比,有更好的污水处理能力。
最后应说明的是:以上各实施例仅用以说明本发明的技术方案,而非对其限制;尽管参照前述各实施例对本发明进行了详细的说明,本领域的普通技术人员应当理解:其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分或者全部技术特征进行等同替换;而这些修改或者替换,并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的范围。
Claims (7)
1.一种用于污水处理的微生物菌剂,其特征在于,所述微生物菌剂由以下菌构成:
细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌;
所述细长真杆菌为Eubacterium dolichum,ATCC编号29143;
所述凝结芽孢杆菌为Bacillus coagulans,ATCC编号15949;
所述短乳杆菌为Lactobacillus brevis,ATCC编号8287;
所述漠海威芽孢杆菌为Bacillus mojavensis,ATCC编号51517;
所述毛霉菌为Mucor plumbeus,ATCC编号42423;
所述植物乳杆菌为Lactobacillus plantarum,ATCC编号14917;
所述纤维弧菌为Cellvibrio gilvus,ATCC编号13127;
所述细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌的CFU配比为(5-4):(3-2):(2-1):(2-1):(2-1):(2-1):(5-4);
所述微生物菌剂为液态,所述微生物菌剂中微生物的总CFU浓度为5×107~7×107CFU/mL。
2.根据权利要求1所述的微生物菌剂,其特征在于,所述微生物菌剂中,所述细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌的CFU配比为5:3:1:2:2:1:5。
3.权利要求1或2所述的微生物菌剂的制备方法,其特征在于,所述制备方法包括:分别将所述细长真杆菌、凝结芽孢杆菌、短乳杆菌、漠海威芽孢杆菌、毛霉菌、植物乳杆菌以及纤维弧菌进行富营养低温驯化,然后将驯化后的微生物混合均匀,得到所述微生物菌剂。
4.根据权利要求3所述的制备方法,其特征在于,所述富营养低温驯化包括:
第一驯化阶段,将微生物接种于第一驯化培养基,130rpm/min,28℃,培养24h,所述第一驯化培养基的配方为:葡萄糖0.15g/L,可溶性淀粉0.16g/L,CH3COONa 0.233g/L,NH4Cl0.0255g/L,蛋白胨0.158g/L,牛肉膏0.04g/L,(NH4)2SO4 0.0284g/L,KH2PO4 0.07g/L,Na2CO3 0.06g/L,pH7~7.5;
第二驯化阶段,将经过第一驯化阶段培养的微生物,按照10-15%的接种量接种于第二驯化培养基中,100rpm/min,20℃,培养24h,所述第二驯化培养基的配方为:葡萄糖0.17g/L,可溶性淀粉0.16g/L,CH3COONa 0.2g/L,NH4Cl 0.045g/L,蛋白胨0.158g/L,牛肉膏0.05g/L,(NH4)2SO4 0.0308g/L,KH2PO4 0.07g/L,Na2CO3 0.06g/L,pH 7~7.5;
第三驯化阶段,将经过第二驯化阶段培养的微生物,按照10-15%的接种量重新接种于新鲜的第二驯化培养基中,100rpm/min,16℃,培养24h。
5.权利要求1或2所述的微生物菌剂在污水处理中的应用。
6.根据权利要求5所述的应用,其特征在于,所述应用包括向每升待处理污水中加入总量为5×107~7×107CFU的微生物菌剂。
7.根据权利要求5所述的应用,其特征在于,所述污水为生活污水。
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