CN106834417A - 汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法 - Google Patents

汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法 Download PDF

Info

Publication number
CN106834417A
CN106834417A CN201710082297.4A CN201710082297A CN106834417A CN 106834417 A CN106834417 A CN 106834417A CN 201710082297 A CN201710082297 A CN 201710082297A CN 106834417 A CN106834417 A CN 106834417A
Authority
CN
China
Prior art keywords
fiber crops
chinese
extract
culture dish
bacterium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201710082297.4A
Other languages
English (en)
Inventor
王庆淼
刘健
于伟东
保琦蓓
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Youngor Clothing Holdings Ltd
Zhejiang Textile and Fashion College
Original Assignee
Youngor Clothing Holdings Ltd
Zhejiang Textile and Fashion College
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Youngor Clothing Holdings Ltd, Zhejiang Textile and Fashion College filed Critical Youngor Clothing Holdings Ltd
Priority to CN201710082297.4A priority Critical patent/CN106834417A/zh
Publication of CN106834417A publication Critical patent/CN106834417A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/18—Testing for antimicrobial activity of a material

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法，包括试样液的准备、接种菌液的准备、营养琼脂培养基的准备、抗菌测试四个步骤，本发明方法通过有机溶剂溶解待测的汉麻韧皮纤维提取物，获得不含固体物质的试样液，同时将接种菌液的浓度控制在1×105‑5×105 CFU/mL，可使测定过程中细菌繁殖密度达到要求，抑菌圈边界清晰，确保测定结果的准确性和测定过程的可操作性。本发明方法可快速、简便地测定汉麻韧皮纤维提取物的抗菌能力，此方法也可适用于其他麻类纤维提取物抗菌能力的快速测定。

Description

汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法
技术领域
本发明属于微生物试验领域，尤其涉及一种汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法。
背景技术
汉麻是一种绿色安全的低毒大麻，人们通过对大麻的基因改良，降低了其毒性成分(四氢大麻酚T HC含量低于0.3％)，目前作为一种工业大麻(Cannabis Sativa L.)使用，是一种极具经济价值的麻类植物。我国是汉麻的主产国，种植区域遍及全国多个地区，产量占世界大麻产量的1/3左右，居世界第一位。
丰富的资源储备为我国汉麻产业的发展提供了强有力的支撑。近年来，汉麻因其优良的抗菌性和其他特性，在当代纺织业中被广泛使用。现有研究普遍认为，汉麻韧皮纤维具有优良抗菌性能的主要因素为其胶质中所含的酚类物质，包括四氢大麻酚、四氢大麻二酚、大麻酚、大麻二酚等。文献报道这些抗菌有效物质可通过乙醇浸提等工艺提取获得，并通过石油醚、乙酸乙酯和正丁醇等溶剂进行分离得到各相的浸膏。通过抗菌实验，可进一步检测汉麻韧皮纤维提取物的抗菌能力的大小，并定性鉴别其抗菌性能的优劣。抗菌实验是用于检测和评价抗菌物质抗菌效果的一种实验方法，也可用来筛选新的抗菌物质和用于检测细菌的耐药性。
现有针对植物提取物的抗菌实验方法主要包括牛津杯法、K-B纸片扩散法、平板打孔法、试管二倍梯度稀释法。K-B纸片扩散法测试过程中纸片的含药量的准确性和均匀度不易控制，易导致测试结果偏差。试管二倍稀释法是一种精确定量的方法，但操作复杂繁琐，不适用于仅需定性分析的物质的快速测定。平板打孔法操作虽简单，但打孔准确度要求较高，孔内的琼脂块还须挑出，操作不慎易造成孔壁不整齐，影响实验结果。有文献报道，不同的抗菌实验方法对抗菌效果的评价有明显的影响，而牛津杯法对于琼脂扩散定性抗菌实验效果优于其他几种方法。牛津杯法又称晕圈试验法，是用于抗菌剂筛选的抗菌效力快速定性方法。原理是：在琼脂培养基上接种实验菌，再紧贴试样，在一定条件下培养后，观察菌类繁殖情况和试样周围无菌区的晕圈大小，与对照样的试验情况比较。此法一次能处理大量的试样，操作简便，可达到快速检测的目的。但采用此法作为汉麻韧皮纤维提取物的实验方法存在如下问题：首先，此法虽然规定在一定时间内培养实验菌液，但是菌液浓度没有明确规定，对于不同物质实验所适用的菌液浓度应不同；其次，实验过程中待测物须充分溶解至一定的质量浓度，方能有效开展实验，而汉麻韧皮纤维提取物水溶性差，在测试过程中需要选择适当的溶剂以达到充分溶解的目的；最后，所选择的溶剂不能影响实验结果，因此选择适当的溶剂成分和质量浓度配比对于实验结果的准确性至关重要。汉麻韧皮纤维抗菌性类物质的鉴定和明晰，可以对大麻纤维产品的进一步开发利用具有重要的指导意义，从而在工业上具有良好的应用前景和潜力，这也正是本发明得以完成的动力所在。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是，针对现有技术的不足，提供一种汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法，通过此方法可快速、简便地测定汉麻韧皮纤维提取物的抗菌能力，该方法也可适用于其他麻类纤维提取物抗菌能力的快速测定。
本发明解决上述技术问题所采用的技术方案为：汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法，包括以下步骤：
(1)试样液的准备：将汉麻韧皮纤维提取物溶解于有机溶剂中，得到汉麻韧皮纤维提取物浓度为80-120mg/mL的试样液；
(2)接种菌液的准备：首先活化接种菌，再用接种环将活化后的接种菌加至灭菌后的生理盐水中碾磨、混匀，调节获得麦氏单位达到0.5的菌液，再将菌液加入到含有100mL无菌的营养琼脂的锥形瓶中混匀，最后使用灭菌后的生理盐水将锥形瓶内的混合液稀释，得到浓度为1×105-5×105CFU/mL的接种菌液，待用；
(3)营养琼脂培养基的准备：将无菌的营养琼脂培养基在45℃温度下融化后，取10-15mL移至培养皿中，待常温冷却凝固后，取5-8mL所述的接种菌液加至所述的培养皿中，轻轻摇晃，使接种菌液均匀分布在培养皿的平板表面，常温冷却，待用；
(4)抗菌测试：在步骤(3)中常温冷却后的培养皿内放入牛津杯，再在牛津杯内加入200μL所述的试样液，随后将培养皿放入培养箱中培养24-28h，培养结束后取出培养皿，测量培养皿中的抑菌圈宽度，判断汉麻韧皮纤维提取物的抗菌能力。
汉麻韧皮纤维提取物可通过现有技术进行提取获得，例如可根据CN104018343A公开的中国发明专利申请中公布的制备方法进行制备提取。
作为优选，步骤(1)中所述的有机溶剂为细胞培养级二甲基亚砜和吐温80混合而成的混合溶液，该混合溶液中，细胞培养级二甲基亚砜的体积浓度为15-25％，吐温80的体积浓度为8-12％。选择细胞培养级二甲基亚砜的体积浓度为15-25％、吐温80的体积浓度为8-12％的混合溶液作为有机溶剂，可迅速且充分溶解汉麻韧皮纤维提取物获得不含任何固体物质的试样液。同时，该混合溶液作为有机溶剂时，对于金黄色葡萄球菌、绿脓杆菌、白色念珠菌均无抑制和干扰作用，可作为汉麻韧皮纤维提取物抗菌测试试样的溶剂。
作为优选，步骤(2)中所述的接种菌为金黄色葡萄球菌、绿脓杆菌或白色念珠菌。
作为优选，步骤(2)中活化接种菌所用的活化培养基、活化温度和活化时间为：接种菌为金黄色葡萄球菌或绿脓杆菌时，活化培养基为营养琼脂培养基，活化温度为35-37℃，活化时间为24-48h；接种菌为白色念珠菌时，活化培养基为马铃薯葡萄糖琼脂培养基，活化温度为26-28℃，活化时间为48-120h。
作为优选，步骤(4)中所述的培养皿在培养箱中的培养温度为：接种菌为金黄色葡萄球菌或绿脓杆菌时，培养温度为37±1℃；接种菌为白色念珠菌时，培养温度为28±1℃。
与现有技术相比，本发明的优点在于：本发明方法通过有机溶剂溶解待测的汉麻韧皮纤维提取物，获得不含固体物质的试样液，同时将接种菌液的浓度控制在1×105-5×105CFU/mL，可使测定过程中细菌繁殖密度达到要求，抑菌圈边界清晰，确保测定结果的准确性和测定过程的可操作性。本发明方法可快速、简便地测定汉麻韧皮纤维提取物的抗菌能力，此方法也可适用于其他麻类纤维提取物抗菌能力的快速测定。
附图说明
图1为实施例1中汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏对金黄色葡萄球菌的抑菌圈的形貌；
图2为实施例1中汉麻原麻乙酸乙酯浸膏对金黄色葡萄球菌的抑菌圈的形貌；
图3为实施例2中汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏对绿脓杆菌的抑菌圈的形貌；
图4为实施例2中汉麻原麻乙酸乙酯浸膏对绿脓杆菌的抑菌圈的形貌；
图5为实施例3中汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏对白色念珠菌的抑菌圈的形貌；
图6为实施例3中汉麻原麻乙酸乙酯浸膏对白色念珠菌的抑菌圈的形貌。
具体实施方式
以下结合附图实施例对本发明作进一步详细描述。
实施例1：采用本发明测定方法快速测定汉麻韧皮纤维提取物对金黄色葡萄球菌的抗菌能力，该汉麻韧皮纤维提取物为具体采用CN104018343A公开的中国发明专利申请中公布的制备方法制备的汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏和汉麻原麻乙酸乙酯浸膏两种。以汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏为例，其对金黄色葡萄球菌的抗菌能力的测定方法包括以下步骤：
(1)试样液的准备：称取100mg汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏，将其溶解于1mL的细胞培养级二甲基亚砜和吐温80混合而成的混合溶液中得到汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏浓度为100mg/mL的试样液，其中，该混合溶液中，细胞培养级二甲基亚砜的体积浓度为20％，吐温80的体积浓度为10％；
(2)接种菌液的准备：选取革兰氏阳性菌—金黄色葡萄球菌CMCC(B)26003在36℃的温度下活化24h，再用接种环将活化后的接种菌加至10mL的灭菌后的生理盐水中碾磨、混匀，调节获得麦氏单位达到0.5的菌液(即菌液浓度为1×108CFU/mL)，再将菌液加入到含有100mL无菌的营养琼脂的锥形瓶中混匀，最后使用灭菌后的生理盐水将锥形瓶内的混合液稀释，得到浓度为1×105CFU/mL的接种菌液，待用；
(3)营养琼脂培养基的准备：将无菌的营养琼脂培养基在45℃温度下融化后，取10mL移至培养皿中，待常温冷却凝固后，取5mL所述的接种菌液加至所述的培养皿中，轻轻摇晃，使带有菌体的培养基均匀分布在培养皿的平板表面，常温冷却，待用；
(4)抗菌测试：在步骤(3)中常温冷却后的培养皿内放入直径为8.00mm的牛津杯，再在牛津杯内加入200μL所述的试样液，随后将培养皿放入培养箱中，在37±1℃温度下培养24h，培养结束后取出培养皿，此时抑菌圈的形貌见图1，用游标卡尺测量培养皿中的抑菌圈宽度，判断汉麻韧皮纤维提取物对金黄色葡萄球菌的抗菌能力。
对于汉麻原麻乙酸乙酯浸膏，同样采用上述步骤(1)-步骤(4)测定其对金黄色葡萄球菌的抗菌能力，培养结束后抑菌圈的形貌见图2。
作为对比，直接以步骤(1)中的混合溶液作为空白对照液，对该空白对照液参照上述步骤(2)、(3)、(4)进行接种菌液的准备、营养琼脂培养基的准备和抗菌测试，判断该空白对照液对金黄色葡萄球菌的抗菌能力。
实施例1中，测定的两种汉麻韧皮纤维提取物和空白对照液对金黄色葡萄球菌的抑菌圈宽度见表1。从表1可以看出，细胞培养级二甲基亚砜和吐温80混合而成的混合溶液作为有机溶剂，不抑制、不干扰抗菌能力测定过程，对于测定结果没有影响。
表1
注：“-”代表无抑菌圈，与阴性对照比较，＊＊P<0.001。
实施例2：采用本发明测定方法快速测定汉麻韧皮纤维提取物对绿脓杆菌的抗菌能力，该汉麻韧皮纤维提取物为具体采用CN104018343A公开的中国发明专利申请中公布的制备方法制备的汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏和汉麻原麻乙酸乙酯浸膏两种。以汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏为例，其对绿脓杆菌的抗菌能力的测定方法包括以下步骤：
(1)试样液的准备：称取80mg汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏，将其溶解于1mL的细胞培养级二甲基亚砜和吐温80混合而成的混合溶液中得到汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏浓度为80mg/mL的试样液，其中，该混合溶液中，细胞培养级二甲基亚砜的体积浓度为18％，吐温80的体积浓度为12％；
(2)接种菌液的准备：选取革兰氏阴性菌—绿脓杆菌ATCC 27853在37℃的温度下活化48h，再用接种环将活化后的接种菌加至10mL的灭菌后的生理盐水中碾磨、混匀，调节获得麦氏单位达到0.5的菌液(即菌液浓度为1×108CFU/mL)，再将菌液加入到含有100mL无菌的营养琼脂的锥形瓶中混匀，最后使用灭菌后的生理盐水将锥形瓶内的混合液稀释，得到浓度为5×105CFU/mL的接种菌液，待用；
(3)营养琼脂培养基的准备：将无菌的营养琼脂培养基在45℃温度下融化后，取15mL移至培养皿中，待常温冷却凝固后，取8mL所述的接种菌液加至所述的培养皿中，轻轻摇晃，使带有菌体的培养基均匀分布在培养皿的平板表面，常温冷却，待用；
(4)抗菌测试：在步骤(3)中常温冷却后的培养皿内放入直径为8.00mm的牛津杯，再在牛津杯内加入200μL所述的试样液，随后将培养皿放入培养箱中，在37±1℃温度下培养28h，培养结束后取出培养皿，此时抑菌圈的形貌见图3，用游标卡尺测量培养皿中的抑菌圈宽度，判断汉麻韧皮纤维提取物对绿脓杆菌的抗菌能力。
对于汉麻原麻乙酸乙酯浸膏，同样采用上述步骤(1)-步骤(4)测定其对绿脓杆菌的抗菌能力，培养结束后抑菌圈的形貌见图4。
作为对比，直接以步骤(1)中的混合溶液作为空白对照液，对该空白对照液参照上述步骤(2)、(3)、(4)进行接种菌液的准备、营养琼脂培养基的准备和抗菌测试，判断该空白对照液对绿脓杆菌的抗菌能力。
实施例2中，测定的两种汉麻韧皮纤维提取物和空白对照液对绿脓杆菌的抑菌圈宽度见表2。从表2可以看出，细胞培养级二甲基亚砜和吐温80混合而成的混合溶液作为有机溶剂，不抑制、不干扰抗菌能力测定过程，对于测定结果没有影响。
表2
注：“-”代表无抑菌圈，与阴性对照比较，＊＊P<0.001。
实施例3：采用本发明测定方法快速测定汉麻韧皮纤维提取物对白色念珠菌的抗菌能力，该汉麻韧皮纤维提取物为具体采用CN104018343A公开的中国发明专利申请中公布的制备方法制备的汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏和汉麻原麻乙酸乙酯浸膏两种。以汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏为例，其对白色念珠菌的抗菌能力的测定方法包括以下步骤：
(1)试样液的准备：称取120mg汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏，将其溶解于1mL的细胞培养级二甲基亚砜和吐温80混合而成的混合溶液中得到汉麻精干麻乙酸乙酯浸膏浓度为120mg/mL的试样液，其中，该混合溶液中，细胞培养级二甲基亚砜的体积浓度为25％，吐温80的体积浓度为10％；
(2)接种菌液的准备：选取真菌—白色念珠菌CMCC(F)98001在26℃的温度下活化48h，再用接种环将活化后的接种菌加至10mL的灭菌后的生理盐水中碾磨、混匀，调节获得麦氏单位达到0.5的菌液(即菌液浓度为1×108CFU/mL)，再将菌液加入到含有100mL无菌的营养琼脂的锥形瓶中混匀，最后使用灭菌后的生理盐水将锥形瓶内的混合液稀释，得到浓度为3×105CFU/mL的接种菌液，待用；
(3)营养琼脂培养基的准备：将无菌的营养琼脂培养基在45℃温度下融化后，取12mL移至培养皿中，待常温冷却凝固后，取6mL所述的接种菌液加至所述的培养皿中，轻轻摇晃，使带有菌体的培养基均匀分布在培养皿的平板表面，常温冷却，待用；
(4)抗菌测试：在步骤(3)中常温冷却后的培养皿内放入直径为8.00mm的牛津杯，再在牛津杯内加入200μL所述的试样液，随后将培养皿放入培养箱中，在28±1℃温度下培养26h，培养结束后取出培养皿，此时抑菌圈的形貌见图5，用游标卡尺测量培养皿中的抑菌圈宽度，判断汉麻韧皮纤维提取物对白色念珠菌的抗菌能力。
对于汉麻原麻乙酸乙酯浸膏，同样采用上述步骤(1)-步骤(4)测定其对白色念珠菌的抗菌能力，培养结束后抑菌圈的形貌见图6。
作为对比，直接以步骤(1)中的混合溶液作为空白对照液，对该空白对照液参照上述步骤(2)、(3)、(4)进行接种菌液的准备、营养琼脂培养基的准备和抗菌测试，判断该空白对照液对白色念珠菌的抗菌能力。
实施例3中，测定的两种汉麻韧皮纤维提取物和空白对照液对白色念珠菌的抑菌圈宽度见表3。从表3可以看出，细胞培养级二甲基亚砜和吐温80混合而成的混合溶液作为有机溶剂，不抑制、不干扰抗菌能力测定过程，对于测定结果没有影响。
表3
注：“-”代表无抑菌圈，与阴性对照比较，＊＊P<0.001。
以上实施例中，抑菌圈的宽度可采用如下公式计算：
式中：D为抑菌圈宽度，单位为mm；T为抑菌圈外沿总宽度，单位为mm；C为牛津杯直径，单位为mm。

Claims (5)

1.汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法，其特征在于包括以下步骤：
（1）试样液的准备：将汉麻韧皮纤维提取物溶解于有机溶剂中，得到汉麻韧皮纤维提取物浓度为80-120 mg/mL的试样液；
（2）接种菌液的准备：首先活化接种菌，再用接种环将活化后的接种菌加至灭菌后的生理盐水中碾磨、混匀，调节获得麦氏单位达到0.5的菌液，再将菌液加入到含有100 mL无菌的营养琼脂的锥形瓶中混匀，最后使用灭菌后的生理盐水将锥形瓶内的混合液稀释，得到浓度为1×105-5×105 CFU/mL的接种菌液，待用；
（3）营养琼脂培养基的准备：将无菌的营养琼脂培养基在45 ℃温度下融化后，取10-15mL移至培养皿中，待常温冷却凝固后，取5-8 mL所述的接种菌液加至所述的培养皿中，轻轻摇晃，使接种菌液均匀分布在培养皿的平板表面，常温冷却，待用；
（4）抗菌测试：在步骤（3）中常温冷却后的培养皿内放入牛津杯，再在牛津杯内加入200μL所述的试样液，随后将培养皿放入培养箱中培养24-28 h，培养结束后取出培养皿，测量培养皿中的抑菌圈宽度，判断汉麻韧皮纤维提取物的抗菌能力。
2.根据权利要求1所述的汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法，其特征在于步骤（1）中所述的有机溶剂为细胞培养级二甲基亚砜和吐温80混合而成的混合溶液，该混合溶液中，细胞培养级二甲基亚砜的体积浓度为15-25 %，吐温80的体积浓度为8-12 %。
3.根据权利要求1所述的汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法，其特征在于步骤（2）中所述的接种菌为金黄色葡萄球菌、绿脓杆菌或白色念珠菌。
4.根据权利要求3所述的汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法，其特征在于步骤（2）中活化接种菌所用的活化培养基、活化温度和活化时间为：接种菌为金黄色葡萄球菌或绿脓杆菌时，活化培养基为营养琼脂培养基，活化温度为35-37 ℃，活化时间为24-48h；接种菌为白色念珠菌时，活化培养基为马铃薯葡萄糖琼脂培养基，活化温度为26-28 ℃，活化时间为48-120 h。
5.根据权利要求3所述的汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法，其特征在于步骤（4）中所述的培养皿在培养箱中的培养温度为：接种菌为金黄色葡萄球菌或绿脓杆菌时，培养温度为37±1 ℃；接种菌为白色念珠菌时，培养温度为28±1 ℃。
CN201710082297.4A 2017-02-16 2017-02-16 汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法 Pending CN106834417A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710082297.4A CN106834417A (zh) 2017-02-16 2017-02-16 汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710082297.4A CN106834417A (zh) 2017-02-16 2017-02-16 汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN106834417A true CN106834417A (zh) 2017-06-13

Family

ID=59128167

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201710082297.4A Pending CN106834417A (zh) 2017-02-16 2017-02-16 汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN106834417A (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109161578A (zh) * 2018-08-20 2019-01-08 广西巴马常春藤生命科技发展有限公司 一种汉麻杆芯纤维膜的环保功能检测方法
CN114318576A (zh) * 2021-12-14 2022-04-12 无锡沛莱斯纺织有限公司 生物基聚酯纤维及其制备方法、抗菌性能测试方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103327960A (zh) * 2010-08-09 2013-09-25 蒙特雷尖端科技研究所 富含生物活性化合物的鳄梨提取物的抗微生物、抗菌及抑制芽孢萌发活性
CN103913564A (zh) * 2014-04-11 2014-07-09 苏秀芳 一种测试细叶黄皮提取物抑菌活性的方法
CN105886443A (zh) * 2016-06-18 2016-08-24 山西凯盛肥业集团有限公司 一种地衣芽孢杆菌菌种筛选方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103327960A (zh) * 2010-08-09 2013-09-25 蒙特雷尖端科技研究所 富含生物活性化合物的鳄梨提取物的抗微生物、抗菌及抑制芽孢萌发活性
CN103913564A (zh) * 2014-04-11 2014-07-09 苏秀芳 一种测试细叶黄皮提取物抑菌活性的方法
CN105886443A (zh) * 2016-06-18 2016-08-24 山西凯盛肥业集团有限公司 一种地衣芽孢杆菌菌种筛选方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
徐梦宇等: "杂交枸树根黄酮类物质的提取及其抑菌活性研究", 《食品科技》 *
赵定华: "山核桃内果皮黄酮提取、抗氧化及抑菌活性研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库工程科技Ⅰ辑（电子期刊）》 *
钟静芬主编: "《表面活性剂在药学中的应用》", 29 February 1996, 人民卫生出版社 *
陈本超等: "汉麻果胶不同提取物的体外抗菌活性研究", 《中成药》 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109161578A (zh) * 2018-08-20 2019-01-08 广西巴马常春藤生命科技发展有限公司 一种汉麻杆芯纤维膜的环保功能检测方法
CN114318576A (zh) * 2021-12-14 2022-04-12 无锡沛莱斯纺织有限公司 生物基聚酯纤维及其制备方法、抗菌性能测试方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103013822B (zh) 一种水产弧菌快速药敏检测试剂盒
CN106834417A (zh) 汉麻韧皮纤维提取物抗菌能力的快速测定方法
CN105726522A (zh) 厚朴酚在杀灭鱼类寄生原虫中的应用及其制剂
Sharma et al. Should solubility and zone of inhibition be the only criteria for selection of solvent in antimicrobial assay
Marielle et al. Assessment of bacterial membrane fluidity by flow cytometry
Battu et al. Isolation of secondary metabolites from Pseudomonas fluorescens and its characterization
CN104277982A (zh) 一种三环系倍半萜类化合物及其制备方法和用途
CN104370984A (zh) 高效低毒匹马霉素衍生物及其制备方法和应用
Goswami et al. Synthetic amphiphiles as therapeutic antibacterials: lessons on bactericidal efficacy and cytotoxicity and potential application as an adjuvant in antimicrobial chemotherapy
CN106770104A (zh) 一种链霉素检测方法及检测卡
CN105017203A (zh) 一种来源于海洋真菌的Azaphilones类衍生化合物及其制备方法和应用
CN113005048A (zh) 一种产黑链霉菌cys22、其代谢产物及应用
CN106706626A (zh) 一种岩生忍冬成分鉴定及抗菌活性评价方法
CN101936890B (zh) 一种快速确定鸭疫里默氏杆菌培养物中细菌数量的方法
CN105176884A (zh) 鸭疫里默氏杆菌与大肠杆菌混合培养及重新分离的方法
CN103060186B (zh) 一种水产迟钝爱德华氏菌快速药敏检测试剂盒
CN109400444A (zh) 抑制植物病源真菌的倍半萜类化合物及其制备方法
CN107102069A (zh) 一种快速测定饲料添加剂中6种大豆异黄酮的方法
CN104651238B (zh) 一株尾孢属内生真菌菌株及其应用
CN111670899B (zh) 一种喜树碱类化合物纳米载药系统及其制备方法
CN109463402A (zh) 一种香樟精油细菌群体感应抑制剂的制备方法及应用
CN106518889B (zh) 二羟基青蒿素、其制备方法及其应用
CN106222109B (zh) 一种用于殊异支原体分离培养的培养基及其制备方法
CN105287651B (zh) 饲喂型微生态制剂的制备方法及该饲喂型微生态制剂的应用
CN114762502B (zh) 一种杀螨剂悬浮剂及其制备

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20170613