CN106701949A - 一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂 - Google Patents
一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂 Download PDFInfo
- Publication number
- CN106701949A CN106701949A CN201611262689.0A CN201611262689A CN106701949A CN 106701949 A CN106701949 A CN 106701949A CN 201611262689 A CN201611262689 A CN 201611262689A CN 106701949 A CN106701949 A CN 106701949A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- primer
- unidirectionally
- detected
- product
- dna
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6869—Methods for sequencing
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂，所述方法包括：(a)使用第一步单向引导延伸引物对含有目标区域DNA的接头连接产物进行第一步单向引导延伸，然后进行PCR扩增；(b)使用第二步单向引导延伸引物对步骤(a)的产物进行第二步单向引导延伸，然后进行PCR扩增；(c)对步骤(b)的产物进行变性，然后在适于已变性的步骤(b)的产物退火的温度下，用双链特异性核酸酶处理步骤(b)的产物；(d)使用第二通用引物和第三通用引物对(c)的产物进行PCR扩增并测序。本方法能使高丰度DNA含量与低丰度DNA含量接近，达到减少扩增偏倚的目的，实现通过高通量测序技术来低成本精准检测低丰度基因突变的目的。
Description
技术领域
本发明涉及基因检测技术领域，尤其涉及一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂。
背景技术
基因检测是通过血液、其他体液或细胞对受检者的DNA进行检测的技术。基因检测可以诊断疾病，也可以用于疾病风险的预测。通过基因检测进行疾病早期筛查、疾病诊断、伴随治疗时常常需要对多个低丰度基因突变位点进行准确灵敏的检测。例如，肿瘤是高度异质性的，其中致病突变可能以极低比例存在。实现肿瘤的精准基因检测需要从大量的非肿瘤DNA和非致病突变的肿瘤DNA中找到相关的低丰度基因突变。
目前常用的基因检测方法均以PCR(聚合酶链式反应)为基础。PCR扩增为指数扩增，即在扩增的指数期会使PCR产物达到2n倍(n为进入指数期的PCR循环数)。因此PCR扩增会产生扩增偏倚，即原本丰度较高的DNA分子在扩增产物中所占的比例会更大，原有的低丰度DNA分子在扩增产物中所占的比例变得更小。这样就容易出现低丰度DNA分子在PCR产物中被湮没的情况，最终使得检测灵敏度变低，甚至出现某些检测位点假阴性(即无法检测出)的情况。在高通量测序中，PCR扩增偏倚也会导致大量的冗余数据产生，大大增加了测序成本。
DSN(Duplex-Specific Nuclease)是一种来自红金蟹的双链特异性核酸酶，具有热稳定性，在60-65℃时具有最大活力。DSN能够高选择性的识别并酶切完全匹配的双链DNA，对单链DNA几乎无作用。在高通量测序平台文库构建的某个时段适当使用DSN核酸酶进行处理可以有效减少PCR扩增产生的偏倚效应。
目前现有的减少PCR扩增偏倚的技术解决方案主要是从控制PCR指数期的角度进行的。例如在文库构建过程中尽量减少PCR循环数，未达到指数期或指数期扩增越少产生的扩增偏倚程度就越小。但是减少PCR循环数将直接导致扩增产物得率低，尤其当待检测DNA材料量极少时无法产生足够的PCR产物用于检测，并且低丰度DNA突变很难达到足够的拷贝数以用于检测。另一方案是使用扩增均一度表现优越的DNA聚合酶，此方案只能很小程度上减少扩增偏倚，往往并不能解决实际问题。
发明内容
本发明提供一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂，能使高丰度DNA含量与低丰度DNA含量接近，达到减少扩增偏倚的目的，最终实现通过高通量测序技术来低成本精准检测低丰度基因突变的目的。
根据本发明的第一方面，本发明提供一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法，包括：
(a)使用用于捕获待检测位点或待检测区域的第一步单向引导延伸引物对含有目标区域DNA的接头连接产物进行预定循环数的第一步单向引导延伸，然后使用第一通用引物和第一步单向引导延伸引物进行PCR扩增，其中上述第一通用引物与上述接头连接产物上的接头序列匹配；
(b)使用用于捕获待检测位点或区域的第二步单向引导延伸引物对上述步骤(a)的产物进行预定循环数的第二步单向引导延伸，其中上述第二步单向引导延伸引物相比上述第一步单向引导延伸引物在模板上的结合位置距离上述待检测位点或区域更近，然后使用第二通用引物和第二步单向引导延伸引物进行PCR扩增，其中上述第二通用引物与上述接头序列匹配；
(c)对上述步骤(b)的产物进行变性，然后在适于已变性的上述步骤(b)的产物退火的温度下，用双链特异性核酸酶处理上述步骤(b)的产物，以减少丰度过高的DNA分子含量，增加丰度低的DNA分子的相对含量；
(d)使用第二通用引物和第三通用引物对步骤(c)的产物进行PCR扩增并测序。
进一步地，上述第一步单向引导延伸引物带有用于捕获上述步骤(a)的产物的亲和标记；优选地，上述亲和标记是位于上述第一步单向引导延伸引物5’端的生物素标记。
进一步地，上述第一通用引物与上述第二通用引物是相同的引物。
进一步地，上述第一步单向引导延伸引物与上述第二步单向引导延伸引物均位于上述待检测位点或待检测区域在上述目标区域DNA的同方向。
进一步地，上述第一步单向引导延伸引物与上述第二步单向引导延伸引物间隔距离是0-110bp，优选间隔距离是55bp。
进一步地，有多个上述待检测位点或待检测区域，相应的，使用用于捕获上述多个上述待检测位点或待检测区域的多个第一步单向引导延伸引物和/或多个第二步单向引导延伸引物。
进一步地，上述待检测位点或待检测区域包括点突变、插入、缺失和基因融合。
进一步地，上述测序包括测序以得到上述待检测位点或待检测区域的基因突变情况。
进一步地，上述方法在上述步骤(a)之前还包括：
(a’)对上述接头连接产物进行预定循环数的扩增，并以扩增产物替代上述接头连接产物进行上述步骤(a)；优选地，上述预定循环数是3-5个循环。
根据本发明的第二方面，本发明提供一种减少扩增偏倚的基因突变检测试剂，包括：
(a)用于捕获待检测位点或待检测区域的第一步单向引导延伸引物，用于对含有目标区域DNA的接头连接产物进行预定循环数的第一步单向引导延伸；和第一通用引物，用于以上述第一步单向引导延伸的产物为模板进行PCR扩增，其中上述第一通用引物与上述接头连接产物上的接头序列匹配；
(b)用于捕获待检测位点或区域的第二步单向引导延伸引物，用于对上述第一通用引物的扩增产物进行预定循环数的第二步单向引导延伸，其中上述第二步单向引导延伸引物相比上述第一步单向引导延伸引物在模板上的结合位置距离上述待检测位点或区域更近；和第二通用引物，用于以上述第二步单向引导延伸的产物为模板进行PCR扩增，其中上述第二通用引物与上述接头序列匹配；
(c)双链特异性核酸酶，用于在上述第二通用引物的扩增产物已变性且适于退火的温度下，处理上述扩增产物，以减少丰度过高的DNA分子含量，增加丰度低的DNA分子的相对含量；
(d)第三通用引物，用于对双链特异性核酸酶处理的产物进行PCR扩增并测序。
本发明的基因突变检测方法使用单向引导延伸结合DSN核酸酶处理的均一化。PCR前进行数个循环的单向引导延伸，使目标DNA的产物量呈线性增加，即每一个单向引导延伸循环会产生原模板量一倍的单向引导延伸产物。多个单向引导延伸后产生足够的待检测DNA分子，再进行指数PCR扩增，可以相应减少扩增偏倚的程度。DSN核酸酶能够选择性消除高丰度双链DNA，最终使得高丰度DNA含量与低丰度DNA含量接近，进而达到减少扩增偏倚的目的。最终实现通过高通量测序技术来低成本精准检测低丰度基因突变的目的。
附图说明
图1为本发明实施例的第一步单向引导延伸和扩增过程原理示意图；
图2为本发明实施例的第二步单向引导延伸和扩增过程原理示意图；
图3为本发明实施例的单向引导延伸及DSN核酸酶去偏倚的效果示意图；
图4为本发明实施例中纯化文库进行2％琼脂糖凝胶电泳检测的结果图，其中M表示Takara 100bp marker，A表示本发明方法文库电泳结果，B表示对照实验的文库电泳结果。
图5为本发明实施例中各位点与深度比较结果，其中A表示本发明方法的各位点的深度情况，B表示对照实验的各位点的深度情况。
具体实施方式
下面通过具体实施方式结合附图对本发明作进一步详细说明。
如图1-2所示，本发明实施例的减少扩增偏倚的基因突变检测方法，包括：
(a)使用用于捕获待检测位点或待检测区域的第一步单向引导延伸引物对含有目标区域DNA的接头连接产物进行预定循环数的第一步单向引导延伸，然后使用第一通用引物进行PCR扩增，其中第一通用引物与接头连接产物上的接头序列匹配；
(b)使用用于捕获待检测位点或区域的第二步单向引导延伸引物对步骤(a)的产物进行预定循环数的第二步单向引导延伸，其中第二步单向引导延伸引物相比第一步单向引导延伸引物在模板上的结合位置距离待检测位点或区域更近，然后使用第二通用引物进行PCR扩增，其中第二通用引物与接头序列匹配；
(c)对步骤(b)的产物进行变性，然后在适于已变性的步骤(b)的产物退火的温度下，用双链特异性核酸酶处理步骤(b)的产物，以减少丰度过高的DNA分子含量，增加丰度低的DNA分子的相对含量；
(d)使用第二通用引物和第三通用引物对步骤(c)的产物进行PCR扩增并测序。其中，第三通用引物与第一通用引物和第二通用引物在相反端，也就是结合在第一通用引物和第二通用引物所结合的一端相对的另一端的接头序列上。
待检测位点或待检测区域，即基因突变所在的位点或区域，可以是单个碱基位点，也可以是一段碱基序列；其中基因突变可以是点突变、插入、缺失和基因融合等。目标区域DNA，即待检测位点或待检测区域所在的DNA区域，与此相对的，如图1所示的非目标区域DNA，即不是待检测位点或待检测区域所在的DNA区域，这样的区域也可能被第一步单向引导延伸引物结合从而发生延伸，得到不希望的扩增产物。因此，第一步单向引导延伸的产物主要是目标区域DNA的扩增产物，由于单向引导延伸特异性较差，还有少量的非目标区域DNA的扩增产物。
第一步单向引导延伸过程中使用的作为扩增模板的接头连接产物是片段化的DNA连接接头序列(例如测序接头序列)的产物，其中接头序列中包含随机单分子标签序列，可以对每一个DNA分子进行特异性标记。
第一通用引物(图1中的通用引物)与接头序列匹配，用于在第一步单向引导延伸之后，实现PCR扩增。
第一步PCR扩增之后的产物，需要纯化，再进行第二步单向引导延伸和扩增，一种有利的方式是第一步单向引导延伸引物带有用于捕获第一步PCR扩增产物的亲和标记；优选地，位于第一步单向引导延伸引物5’端的生物素标记，可以通过生物素-亲和素的作用实现扩增产物的纯化。
步骤(a)中，预定循环数可以是10-30个循环，优选15-20个循环，相应的，使原模板增加15-20倍。
第二步单向引导延伸和扩增使用的引物距离待检测位点或待检测区域更近，对非目标区域DNA产物有筛选去除作用，大大增加了目标区域DNA扩增的特异性。
步骤(b)中，预定循环数可以是10-30个循环，优选15-20个循环，相应的，使原模板增加15-20倍。然后，再加入通用引物(第二通用引物)进行第二步PCR扩增。
在本发明实施例中，第一通用引物与第二通用引物可以是相同的引物，也可以是不同的引物，优选使用相同的引物。
在本发明实施例中，优选地，第一步单向引导延伸引物与第二步单向引导延伸引物均位于待检测位点或待检测区域在目标区域DNA的同方向，图1-2中显示为，与带有随机单分子标签序列的接头相对的另一个方向。
在本发明实施例中，优选地，第一步单向引导延伸引物与第二步单向引导延伸引物间隔距离是0-110bp，例如2bp、5bp、10bp、30bp、50bp、55bp、80bp或100bp等，优选间隔距离是55bp。
在本发明实施例中，针对多个待检测位点或待检测区域，可以使用多个第一步单向引导延伸引物，也就是以引物组的形式提供多个第一步单向引导延伸引物的混合物，相应的，也可以以引物组的形式提供多个第二步单向引导延伸引物的混合物。
在本发明实施例中，对步骤(d)的产物进行测序，即可得到待检测位点或待检测区域的基因突变情况。
在本发明优选的实施例中，针对起始材料很少的DNA样本可以对连接产物进行预定循环数的扩增，即“预文库扩增”，例如进行3-5个循环的扩增。
在步骤(c)中，对第二步单向引导延伸和扩增产物进行去偏倚。由于此步骤之前已进行了至少两步PCR扩增，导致扩增产物不均一。进行DSN核酸酶处理，减少丰度过高的DNA分子含量，相对增加丰度低的DNA分子含量，最终使所有待检测分子的测序深度相对均一化。此方法基于核酸杂交动力学和双链DNA特异的DSN核酸酶的独特特性。变性的DNA进行复性时，丰度高的DNA先复性，就会首先被DSN核酸酶消化降解。而DSN核酸酶对尚未复性的丰度低的单链DNA无消化降解作用。
图3示出了一个本发明实施例的单向引导延伸及DSN核酸酶去偏倚的效果示意图，可见相比未做单向引导延伸及DSN处理的情况，做了单向引导延伸及DSN处理的情况能够得到较好的均一度，体现在不同位点的测序深度没有过大的差异，而未做单向引导延伸及DSN处理的情况下，不同位点的测序深度有几个数量级的差异。
对应于本发明实施例的方法，本发明实施例还提供一种减少扩增偏倚的基因突变检测试剂，包括：
(a)用于捕获待检测位点或待检测区域的第一步单向引导延伸引物，用于对含有目标区域DNA的接头连接产物进行预定循环数的第一步单向引导延伸；和第一通用引物，用于以第一步单向引导延伸的产物为模板进行PCR扩增，其中第一通用引物与接头连接产物上的接头序列匹配；
(b)用于捕获待检测位点或区域的第二步单向引导延伸引物，用于对第一通用引物的扩增产物进行预定循环数的第二步单向引导延伸，其中第二步单向引导延伸引物相比第一步单向引导延伸引物在模板上的结合位置距离待检测位点或区域更近；和第二通用引物，用于以第二步单向引导延伸的产物为模板进行PCR扩增，其中第二通用引物与接头序列匹配；
(c)双链特异性核酸酶，用于在第二通用引物的扩增产物已变性且适于退火的温度下，处理扩增产物，以减少丰度过高的DNA分子含量，增加丰度低的DNA分子的相对含量；
(d)第三通用引物，用于对双链特异性核酸酶处理的产物进行PCR扩增并测序。
以下通过实施例详细说明本发明的技术方案，应当理解，实施例仅是示例性的，不能理解为对本发明保护范围的限制。实施例中使用的试剂，在没有特别说明的情况下，均为市售的常规试剂。
实施例
本实施例对样本进行文库构建并对NRAS、KRAS、PI3KA、EGFR4个基因的7个位点进行检测，具体如下：
1.含有随机单分子标签的接头设计
IDX1-S：
CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATNNNNNNNNggaattaGTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCT(SEQID NO：1)；
IDX2-S：
CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATNNNNNNNNatccggcGTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCT(SEQID NO：2)；
IDX3-S：
CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATNNNNNNNNcaggccgGTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCT(SEQID NO：3)；
ADT-AS：pGATCGGAAGAGC(SEQ ID NO：4)；ADT-AS序列5’端磷酸基团修饰。
IDX1-S、IDX2-S、IDX3-S(均为接头的第一链)分别与ADT-AS序列退火成双链，构成本发明的三个接头ADT1、ADT2、ADT3。
2.本实施例针对NRAS、KRAS、PIK3CA、EGFR这4个基因的常见7个突变点进行检测。
针对NRAS的Q61K设计第一步单向引导延伸引物：
NRAS-Q61K-STP1:TTTAATAAAAATTGAACTTCCCTCCCTCC(SEQ ID NO：5)；
第二步单向引导延伸引物：
NRAS-Q61K-STP2:TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAGACTTCCCTCCCTCCCTGCCCCCTTA(SEQ ID NO：6)。
针对KRAS的G12D设计第一步单向引导延伸引物：
KRAS-G12D-STP1:ACTGGTGGAGTATTTGATAGTGTATTAACC(SEQ ID NO：7)；
第二步单向引导延伸引物：
KRAS-G12D-STP2:TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAGTTGATAGTGTATTAACCTTATGTGTGACATG(SEQ ID NO：8)。
针对PIK3CA的E545K设计第一步单向引导延伸引物：
PIK3CA-E545K-STP1:TGACAAAGAAAGCTATATAAGATATTATTT(SEQ ID NO：9)；
第二步单向引导延伸引物：
PIK3CA-E545K-STP2:TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAGTTACAGAGTAACAGACTAGCTAGAGACAATG(SEQ ID NO：10)。
针对EGFR的E746-A750设计第一步单向引导延伸引物：
EGFR-E746-A750-STP1:CAGATCACTGGGCAGCATGTGGCAC(SEQ ID NO：11)；
第二步单向引导延伸引物：
EGFR-E746-A750-STP2:TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAGCATGTGGCACCATCTCACAATTGCCAGT(SEQ ID NO：12)。
针对EGFR的V769_D770insASV设计第一步单向引导延伸引物：
EGFR-V769_D770insASV-STP1:TCAAGATCGCATTCATGCGTCTTCACCTG(SEQ ID NO：13)；
第二步单向引导延伸引物：
EGFR-V769_D770insASV-STP2:TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAGGTCTTCACCTGGAAGGGGTCCATGTG(SEQ ID NO：14)。
针对EGFR的T790M设计第一步单向引导延伸引物：
EGFR-T790M-STP1:CCTGCTGGGCATCTGCCTCACCT(SEQ ID NO：15)；
第二步单向引导延伸引物：
EGFR-T790M-STP2:TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAGATCTGCCTCACCTCCACCGTGCAG(SEQ ID NO：16)。
针对EGFR的L858R设计第一步单向引导延伸引物：
EGFR-L858R-STP1:CTGTTTCAGGGCATGAACTACTTGGAGGA(SEQ ID NO：17)；
第二步单向引导延伸引物：
EGFR-L858R-STP2:TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAGGAACTACTTGGAGGACCGTCGCTTGGT(SEQ ID NO：18)。
所有第一步单向引导延伸引物5’端使用生物素标记修饰。
所有第一步单向引导延伸引物等量混合作为第一步单向引导延伸引物组，所有第二步单向引导延伸引物等量混合作为第二步单向引导延伸引物组。
预文库引物序列如下：
Pre-F:GCTCTTCCGATCT(SEQ ID NO：19)；
Uni-P1:CAAGCAGAAGACGGCATACGA(SEQ ID NO：20)。
最终PCR引物序列如下：
Uni-P1:CAAGCAGAAGACGGCATACGA(SEQ ID NO：21)；
Uni-P2:
AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAG(SEQ IDNO：22)。
3.对照组使用常规基因突变检测方法(直接PCR法)进行illumina测序平台文库构建：
对照组实验使用2步PCR法，针对NRAS、KRAS、PIK3CA、EGFR这4个基因的常见7个突变点进行引物设计。
针对NRAS的Q61K设计第一步PCR引物：
NRAS-Q61K-PCR1F:ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTACTTCCCTCCCTCCCTGCCCCCTTA(SEQ ID NO：23)；
NRAS-Q61K-PCR1R:GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTGCCTGTCCTCATGTATTGGTCTCTCATG(SEQ ID NO：24)。
针对KRAS的G12D设计第一步PCR引物：
KRAS-G12D-PCR1F:ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTTTGATAGTGTATTAACCTTATGTGTGACATG(SEQ ID NO：25)；
KRAS-G12D-PCR1R:GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTTTAGCTGTATCGTCAAGGCACTCTTGCCT(SEQ ID NO：26)。
针对PIK3CA的E545K设计第一步PCR引物：
PIK3CA-E545K-PCR1F:ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTTTACAGAGTAACAGACTAGCTAGAGACAATG(SEQ ID NO：27)；
PIK3CA-E545K-PCR1R:GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTACCTGTGACTCCATAGAAAATCTTTCTCCT(SEQ ID NO：28)。
针对EGFR的E746-A750设计第一步PCR引物：
EGFR-E746-A750-PCR1F:ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTCATGTGGCACCATCTCACAATTGCCAGT(SEQ ID NO：29)；
EGFR-E746-A750-PCR1R:GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTCACATCGAGGATTTCCTTGTTGGCT(SEQ ID NO：30)。
针对EGFR的V769_D770insASV设计第一步PCR引物：
EGFR-V769_D770insASV-PCR1F:ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTGTCTTCACCTGGAAGGGGTCCATGTG(SEQ ID NO：31)；
EGFR-V769_D770insASV-PCR1R:GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTAGGTGAGGCAGATGCCCAGCAGG(SEQ ID NO：32)。
针对EGFR的T790M设计第一步PCR引物：
EGFR-T790M-PCR1F:ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTATCTGCCTCACCTCCACCGTGCAG(SEQ ID NO：33)；
EGFR-T790M-PCR1R:GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCAGGAGGCAGCCGAAGGGCATGAG(SEQ ID NO：34)。
针对EGFR的L858R设计第一步PCR引物：
EGFR-L858R-PCR1F:ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTGAACTACTTGGAGGACCGTCGCTTGGT(SEQ ID NO：35)；
EGFR-L858R-PCR1R:GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTCTGCATGGTATTCTTTCTCTTCCGCAC(SEQ ID NO：36)。
以上对照实验组的第一步PCR引物等物质的量混在一起作为第一步PCR扩增引物组。
第二步PCR引物：
PCR2F:AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTAC(SEQ ID NO：37)；
PCR2R-4:CAAGCAGAAGACGGCATACGAGAtaattctGTGACTGGAGTTCAG(SEQ ID NO：38)；
PCR2R-5:CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATagaggatGTGACTGGAGTTCAG(SEQ ID NO：39)；
PCR2R-6:CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATgagattcGTGACTGGAGTTCAG(SEQ ID NO：40)。
4.用于本实施例的样本为一名健康人血液基因组DNA。使用10ml EDTA抗凝管收集10ml静脉血。使用Qiagen DNeasy Blood&Tissue Kit(250)(Qiagen 69506)进行基因组DNA抽提。
5.基因组DNA片段化
将基因组DNA取2份(A和B)各200ng。A使用Covaris S220，超声波DNA破碎仪片段化至平均300bp大小，进行本实施例实验。样本B进行对照实验。
6.片段化DNA末端修复
反应体系如下表1：
表1
| 片段化DNA溶液 | 100ng |
| T4DNA连接酶缓冲液 | 10μl |
| 10mM dNTP混合液 | 4μl |
| T4DNA聚合酶 | 5μl |
| T4DNA磷酸化酶 | 5μl |
| Klenow酶 | 1μl |
| 总体积 | 100μl |
金属浴上20℃温浴30分钟。
使用120μl Ampure XP beads进行纯化，32μl洗脱缓冲液洗脱。
7.3’端加多聚腺嘌呤尾
配制如下表2反应体系：
表2
| 末端修复的DNA溶液 | 32μl |
| Klenow酶缓冲液 | 5μl |
| dATP | 10μl |
| Klenow exo-酶 | 3μl |
| 总体积 | 50μl |
金属浴上37℃温浴30分钟。
使用60μl Ampure XP beads进行纯化，10μl洗脱缓冲液洗脱。
8.连接接头
配制如下表3反应体系：
表3
| 3’加A的DNA溶液 | 10μl |
| T4DNA连接酶缓冲液 | 25μl |
| 2μM DNA接头 | 10μl |
| T4DNA连接酶 | 5μl |
| 总体积 | 50μl |
金属浴上20℃温浴15分钟。
使用60μl Ampure XP beads进行纯化，34.8μl洗脱缓冲液洗脱。
9.预文库扩增
配制如下表4反应体系：
表4
PCR程序如下：
a)95℃3分钟；
b)3个循环程序如下：
95℃15秒
62℃30秒
72℃30秒
c)72℃5分钟
d)4℃保存。
使用60μl Ampure XP beads进行纯化，50μl洗脱缓冲液洗脱。
10.第一步单向引导延伸及扩增
配制如下表5反应体系：
表5
引导延伸程序如下：
a)95℃10分钟；
b)20个循环程序如下：
95℃30秒
62℃30秒
72℃1分钟
c)72℃7分钟
d)4℃保存。
加入1ul通用引物Uni-P1(25uM)。进行第一步扩增。
第一步扩增程序如下：
a)95℃10分钟；
b)10个循环程序如下：
95℃30秒
62℃30秒
72℃1分钟
c)72℃7分钟
d)4℃保存。
使用60μl Ampure XP beads进行纯化，22μl洗脱缓冲液洗脱。
11.磁珠筛选
使用DynabeadsTM M-270Streptavidin(Catalog nos.65305，invitrogen)磁珠对扩增产物进行筛选。
12.第二步单向引导延伸及扩增
配制如下表6反应体系：
表6
引导延伸程序如下：
e)95℃10分钟；
f)20个循环程序如下：
95℃30秒
62℃30秒
72℃1分钟
g)72℃7分钟
h)4℃保存。
加入1ul通用引物Uni-P1(25uM)。进行第二步扩增。
第二步扩增程序如下：
e)95℃10分钟；
f)10个循环程序如下：
95℃30秒
62℃30秒
72℃1分钟
g)72℃7分钟
h)4℃保存。
使用60μl Ampure XP beads进行纯化，15μl洗脱缓冲液洗脱。
13.均一化处理
配置如下表7预处理反应体系：
表7
| 4X杂交缓冲液 | 5ul |
| 第二步单向引导延伸及扩增产物 | 15ul |
| 总体积 | 20ul |
PCR仪上98℃2min；68℃5小时。
配制如下表8的2X DSN Master buffer：
表8
| 10X DSN Master buffer | 5ul |
| ddH2O | 20ul |
| 总体积 | 25ul |
每个反应取22ul 2X DSN Master buffer，PCR仪上68℃预热2小时。
将22ul 2X DSN Master buffer迅速加入到20ul预处理反应体系中，68℃10分钟。
加入2ul DSN酶后68℃25分钟。加入44ul 2X DSN stop solution，轻轻吹打混匀，置冰上。
使用140.8μl Ampure XP beads进行纯化，20μl洗脱缓冲液洗脱。
14.终文库扩增
配置如下表9反应体系：
表9
| 均一化处理溶液 | 20μl |
| HIFI Ready Mix(KAPA BIOSYSTEMS) | 25μl |
| Uni-P1/Uni-P2(各5uM) | 5μl |
| 总体积 | 50μl |
PCR程序如下：
a)98℃45秒；
b)10循环程序如下：
98℃15秒
60℃30秒
72℃30秒
c)72℃1分钟
d)4℃保存。
取其中5μl纯化产物进行2％琼脂糖凝胶电泳检测，结果如图4所示。
使用60μl Ampure XP beads进行纯化，30μl洗脱缓冲液洗脱。
15.样本B进行对照实验文库构建
第一步PCR扩增：
配制如下表10反应体系：
表10
| 基因组DNA B | 200ng |
| Amplitaq Gold360Master Mix | 25μl |
| 第一步PCR扩增引物组(各25uM) | 1μl |
| GC-增强剂 | 1μl |
| 总体积 | 50μl |
第一步扩增程序如下：
a)95℃10分钟；
b)5个循环程序如下：
95℃30秒
62℃30秒
72℃1分钟
c)72℃7分钟
d)4℃保存。
使用60μl Ampure XP beads进行纯化，22μl洗脱缓冲液洗脱。
第二步PCR扩增：
配制如下表11反应体系：
表11
第二步扩增程序如下：
a)95℃10分钟；
b)5个循环程序如下：
95℃30秒
62℃30秒
72℃1分钟
c)72℃7分钟
d)4℃保存。
取其中5μl纯化产物进行2％琼脂糖凝胶电泳检测，结果如图4所示。
使用60μl Ampure XP beads进行纯化，22μl洗脱缓冲液洗脱。
最终文库经过荧光定量PCR质控后，利用Illumina公司NextSeq500进行75bp双端测序。
16.将高通量测序下机数据经过质控过滤后，进行BWA比对，并通过单分子标签进一步分析各个检测位点的测序深度，结果见下表12：
表12
本实施例文库A与对照文库B各位点与深度比较结果如图5所示。对比图较明显看出，本实施例的实验方法文库A中各个检测位点的测序深度较为均一。对照文库各个检测位点的测序深度严重不均一。
以上内容是结合具体的实施方式对本发明所作的进一步详细说明，不能认定本发明的具体实施只局限于这些说明。对于本发明所属技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干简单推演或替换，都应当视为属于本发明的保护范围。
SEQUENCE LISTING
<110> 人和未来生物科技（长沙）有限公司
<120> 一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂
<130> 16I23776
<160> 40
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 73
<212> DNA
<213> 接头序列
<220>
<221> misc_feature
<222> (25)..(32)
<223> n is a, c, g, or t
<400> 1
caagcagaag acggcatacg agatnnnnnn nnggaattag tgactggagt tcagacgtgt 60
gctcttccga tct 73
<210> 2
<211> 73
<212> DNA
<213> 接头序列
<220>
<221> misc_feature
<222> (25)..(32)
<223> n is a, c, g, or t
<400> 2
caagcagaag acggcatacg agatnnnnnn nnatccggcg tgactggagt tcagacgtgt 60
gctcttccga tct 73
<210> 3
<211> 73
<212> DNA
<213> 接头序列
<220>
<221> misc_feature
<222> (25)..(32)
<223> n is a, c, g, or t
<400> 3
caagcagaag acggcatacg agatnnnnnn nncaggccgg tgactggagt tcagacgtgt 60
gctcttccga tct 73
<210> 4
<211> 12
<212> DNA
<213> 接头序列
<400> 4
gatcggaaga gc 12
<210> 5
<211> 29
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 5
tttaataaaa attgaacttc cctccctcc 29
<210> 6
<211> 58
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 6
tcgtcggcag cgtcagatgt gtataagaga cagacttccc tccctccctg ccccctta 58
<210> 7
<211> 30
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 7
actggtggag tatttgatag tgtattaacc 30
<210> 8
<211> 64
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 8
tcgtcggcag cgtcagatgt gtataagaga cagttgatag tgtattaacc ttatgtgtga 60
catg 64
<210> 9
<211> 30
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 9
tgacaaagaa agctatataa gatattattt 30
<210> 10
<211> 64
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 10
tcgtcggcag cgtcagatgt gtataagaga cagttacaga gtaacagact agctagagac 60
aatg 64
<210> 11
<211> 25
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 11
cagatcactg ggcagcatgt ggcac 25
<210> 12
<211> 61
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 12
tcgtcggcag cgtcagatgt gtataagaga cagcatgtgg caccatctca caattgccag 60
t 61
<210> 13
<211> 29
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 13
tcaagatcgc attcatgcgt cttcacctg 29
<210> 14
<211> 59
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 14
tcgtcggcag cgtcagatgt gtataagaga caggtcttca cctggaaggg gtccatgtg 59
<210> 15
<211> 23
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 15
cctgctgggc atctgcctca cct 23
<210> 16
<211> 57
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 16
tcgtcggcag cgtcagatgt gtataagaga cagatctgcc tcacctccac cgtgcag 57
<210> 17
<211> 29
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 17
ctgtttcagg gcatgaacta cttggagga 29
<210> 18
<211> 60
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 18
tcgtcggcag cgtcagatgt gtataagaga caggaactac ttggaggacc gtcgcttggt 60
<210> 19
<211> 13
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 19
gctcttccga tct 13
<210> 20
<211> 21
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 20
caagcagaag acggcatacg a 21
<210> 21
<211> 21
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 21
caagcagaag acggcatacg a 21
<210> 22
<211> 62
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 22
aatgatacgg cgaccaccga gatctacact cgtcggcagc gtcagatgtg tataagagac 60
ag 62
<210> 23
<211> 58
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 23
acactctttc cctacacgac gctcttccga tctacttccc tccctccctg ccccctta 58
<210> 24
<211> 62
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 24
gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctgcctgt cctcatgtat tggtctctca 60
tg 62
<210> 25
<211> 64
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 25
acactctttc cctacacgac gctcttccga tctttgatag tgtattaacc ttatgtgtga 60
catg 64
<210> 26
<211> 63
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 26
gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctttagct gtatcgtcaa ggcactcttg 60
cct 63
<210> 27
<211> 64
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 27
acactctttc cctacacgac gctcttccga tctttacaga gtaacagact agctagagac 60
aatg 64
<210> 28
<211> 64
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 28
gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctacctgt gactccatag aaaatctttc 60
tcct 64
<210> 29
<211> 61
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 29
acactctttc cctacacgac gctcttccga tctcatgtgg caccatctca caattgccag 60
t 61
<210> 30
<211> 61
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 30
gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctctcaca tcgaggattt ccttgttggc 60
t 61
<210> 31
<211> 59
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 31
acactctttc cctacacgac gctcttccga tctgtcttca cctggaaggg gtccatgtg 59
<210> 32
<211> 57
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 32
gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctaggtga ggcagatgcc cagcagg 57
<210> 33
<211> 57
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 33
acactctttc cctacacgac gctcttccga tctatctgcc tcacctccac cgtgcag 57
<210> 34
<211> 58
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 34
gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctcaggag gcagccgaag ggcatgag 58
<210> 35
<211> 60
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 35
acactctttc cctacacgac gctcttccga tctgaactac ttggaggacc gtcgcttggt 60
<210> 36
<211> 61
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 36
gtgactggag ttcagacgtg tgctcttccg atctctgcat ggtattcttt ctcttccgca 60
c 61
<210> 37
<211> 40
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 37
aatgatacgg cgaccaccga gatctacact ctttccctac 40
<210> 38
<211> 45
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 38
caagcagaag acggcatacg agataattct gtgactggag ttcag 45
<210> 39
<211> 46
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 39
caagcagaag acggcatacg agatagagga tgtgactgga gttcag 46
<210> 40
<211> 46
<212> DNA
<213> 引物序列
<400> 40
caagcagaag acggcatacg agatgagatt cgtgactgga gttcag 46
Claims (10)
1.一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法，其特征在于，所述方法包括：
(a)使用用于捕获待检测位点或待检测区域的第一步单向引导延伸引物对含有目标区域DNA的接头连接产物进行预定循环数的第一步单向引导延伸，然后使用第一通用引物和第一步单向引导延伸引物进行PCR扩增，其中所述第一通用引物与所述接头连接产物上的接头序列匹配；
(b)使用用于捕获待检测位点或区域的第二步单向引导延伸引物对所述步骤(a)的产物进行预定循环数的第二步单向引导延伸，其中所述第二步单向引导延伸引物相比所述第一步单向引导延伸引物在模板上的结合位置距离所述待检测位点或区域更近，然后使用第二通用引物和第二步单向引导延伸引物进行PCR扩增，其中所述第二通用引物与所述接头序列匹配；
(c)对所述步骤(b)的产物进行变性，然后在适于已变性的所述步骤(b)的产物退火的温度下，用双链特异性核酸酶处理所述步骤(b)的产物，以减少丰度过高的DNA分子含量，增加丰度低的DNA分子的相对含量；
(d)使用第二通用引物和第三通用引物对步骤(c)的产物进行PCR扩增并测序。
2.根据权利要求1所述的减少扩增偏倚的基因突变检测方法，其特征在于，所述第一步单向引导延伸引物带有用于捕获所述步骤(a)的产物的亲和标记；优选地，所述亲和标记是位于所述第一步单向引导延伸引物5’端的生物素标记。
3.根据权利要求1所述的减少扩增偏倚的基因突变检测方法，其特征在于，所述第一通用引物与所述第二通用引物是相同的引物。
4.根据权利要求1-3任一项所述的减少扩增偏倚的基因突变检测方法，其特征在于，所述第一步单向引导延伸引物与所述第二步单向引导延伸引物均位于所述待检测位点或待检测区域在所述目标区域DNA的同方向。
5.根据权利要求1-3任一项所述的减少扩增偏倚的基因突变检测方法，其特征在于，所述第一步单向引导延伸引物与所述第二步单向引导延伸引物间隔距离是0-110bp，优选间隔距离是55bp。
6.根据权利要求1-3任一项所述的减少扩增偏倚的基因突变检测方法，其特征在于，有多个所述待检测位点或待检测区域，相应的，使用用于捕获所述多个所述待检测位点或待检测区域的多个第一步单向引导延伸引物和/或多个第二步单向引导延伸引物。
7.根据权利要求1-3任一项所述的减少扩增偏倚的基因突变检测方法，其特征在于，所述待检测位点或待检测区域包括点突变、插入、缺失和基因融合。
8.根据权利要求1-3任一项所述的减少扩增偏倚的基因突变检测方法，其特征在于，所述测序包括测序以得到所述待检测位点或待检测区域的基因突变情况。
9.根据权利要求1-3任一项所述的减少扩增偏倚的基因突变检测方法，其特征在于，所述方法在所述步骤(a)之前还包括：
(a’)对所述接头连接产物进行预定循环数的扩增，并以扩增产物替代所述接头连接产物进行所述步骤(a)；优选地，所述预定循环数是3-5个循环。
10.一种减少扩增偏倚的基因突变检测试剂，其特征在于，所述试剂包括：
(a)用于捕获待检测位点或待检测区域的第一步单向引导延伸引物，用于对含有目标区域DNA的接头连接产物进行预定循环数的第一步单向引导延伸；和第一通用引物，用于以所述第一步单向引导延伸的产物为模板进行PCR扩增，其中所述第一通用引物与所述接头连接产物上的接头序列匹配；
(b)用于捕获待检测位点或区域的第二步单向引导延伸引物，用于对所述第一通用引物的扩增产物进行预定循环数的第二步单向引导延伸，其中所述第二步单向引导延伸引物相比所述第一步单向引导延伸引物在模板上的结合位置距离所述待检测位点或区域更近；和第二通用引物，用于以所述第二步单向引导延伸的产物为模板进行PCR扩增，其中所述第二通用引物与所述接头序列匹配；
(c)双链特异性核酸酶，用于在所述第二通用引物的扩增产物已变性且适于退火的温度下，处理所述扩增产物，以减少丰度过高的DNA分子含量，增加丰度低的DNA分子的相对含量；
(d)第三通用引物，用于对步骤(c)的产物进行PCR扩增并测序。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201611262689.0A CN106701949B (zh) | 2016-12-30 | 2016-12-30 | 一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201611262689.0A CN106701949B (zh) | 2016-12-30 | 2016-12-30 | 一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN106701949A true CN106701949A (zh) | 2017-05-24 |
| CN106701949B CN106701949B (zh) | 2019-09-17 |
Family
ID=58905704
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201611262689.0A Active CN106701949B (zh) | 2016-12-30 | 2016-12-30 | 一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN106701949B (zh) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN109321567A (zh) * | 2018-10-10 | 2019-02-12 | 菲鹏生物股份有限公司 | 测序用dna文库试剂盒以及测序用dna文库构建方法 |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101851786A (zh) * | 2009-12-11 | 2010-10-06 | 香港城市大学深圳研究院 | 一种海洋青鳉鱼特异性组织的均一化cDNA文库及制备方法 |
| WO2013003489A2 (en) * | 2011-06-27 | 2013-01-03 | University Of Florida Research Foundation, Inc | Method for genome complexity reduction and polymorphism detection |
| CN103937899A (zh) * | 2005-12-22 | 2014-07-23 | 凯津公司 | 用于基于aflp的高通量多态性检测的方法 |
| CN106192018A (zh) * | 2015-05-07 | 2016-12-07 | 深圳华大基因研究院 | 一种锚定巢式多重pcr富集dna目标区域的方法和试剂盒 |
-
2016
- 2016-12-30 CN CN201611262689.0A patent/CN106701949B/zh active Active
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103937899A (zh) * | 2005-12-22 | 2014-07-23 | 凯津公司 | 用于基于aflp的高通量多态性检测的方法 |
| CN101851786A (zh) * | 2009-12-11 | 2010-10-06 | 香港城市大学深圳研究院 | 一种海洋青鳉鱼特异性组织的均一化cDNA文库及制备方法 |
| WO2013003489A2 (en) * | 2011-06-27 | 2013-01-03 | University Of Florida Research Foundation, Inc | Method for genome complexity reduction and polymorphism detection |
| CN106192018A (zh) * | 2015-05-07 | 2016-12-07 | 深圳华大基因研究院 | 一种锚定巢式多重pcr富集dna目标区域的方法和试剂盒 |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| STUART ARCHER ET AL.: "Selective and flexible depletion of problematic sequences from RNA-seq libraries at the cDNA stage", 《BMC GENOMICS》 * |
| 邱晓沛等: "双链特异性核酸酶的生物学和医学应用", 《化学进展》 * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN109321567A (zh) * | 2018-10-10 | 2019-02-12 | 菲鹏生物股份有限公司 | 测序用dna文库试剂盒以及测序用dna文库构建方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN106701949B (zh) | 2019-09-17 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US11098357B2 (en) | Compositions and methods for identification of a duplicate sequencing read | |
| CN106795514B (zh) | 泡状接头及其在核酸文库构建及测序中的应用 | |
| US20180142290A1 (en) | Blocking oligonucleotides | |
| US20120045771A1 (en) | Method for analysis of nucleic acid populations | |
| WO2012159564A1 (zh) | 甲基化高通量检测方法 | |
| WO2016181128A1 (en) | Methods, compositions, and kits for preparing sequencing library | |
| JP7096893B2 (ja) | 単一分子のための一本鎖環状ｄｎａ鋳型の作製 | |
| WO2018184495A1 (zh) | 一步法构建扩增子文库的方法 | |
| CN111868257A (zh) | 用于单分子测序的双链dna模板的生成 | |
| JP2015516814A (ja) | 標的化されたｄｎａの濃縮および配列決定 | |
| EP3643789A1 (en) | Pcr primer pair and application thereof | |
| AU2014279672A1 (en) | Improved NGS workflow | |
| US20180291369A1 (en) | Error-proof nucleic acid library construction method and kit | |
| US20230374574A1 (en) | Compositions and methods for highly sensitive detection of target sequences in multiplex reactions | |
| EP2013366B1 (en) | Sequencing of the L10 codon of the HIV gag gene | |
| WO2015189685A2 (en) | Improved ngs workflow | |
| CN106701949B (zh) | 一种减少扩增偏倚的基因突变检测方法和试剂 | |
| JPWO2007055255A1 (ja) | 複数の識別用核酸配列を増幅する方法 | |
| CN115698319A (zh) | 用于制备核酸文库的方法和组合物 | |
| WO2024117970A1 (en) | Method for efficient multiplex detection and quantification of genetic alterations | |
| CN108699594B (zh) | 靶标序列中所需核酸区的选择性扩增 | |
| WO2021216574A1 (en) | Nucleic acid preparations from multiple samples and uses thereof | |
| CN117845339A (zh) | 一种用于检测与目标基因座相互作用的dna片段的文库构建方法 | |
| CN117165662A (zh) | 一种基因检测技术及应用 | |
| CN114015751A (zh) | 扩增基因组dna的方法、试剂盒及其获得扩增引物的方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PB01 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| GR01 | Patent grant | ||
| GR01 | Patent grant |