CN105848687A - 放射性示踪剂组合物和方法 - Google Patents
放射性示踪剂组合物和方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105848687A CN105848687A CN201480069324.9A CN201480069324A CN105848687A CN 105848687 A CN105848687 A CN 105848687A CN 201480069324 A CN201480069324 A CN 201480069324A CN 105848687 A CN105848687 A CN 105848687A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- radioactive
- gly
- formula
- purification
- cmbp
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K51/00—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
- A61K51/02—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
- A61K51/04—Organic compounds
- A61K51/08—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins
- A61K51/088—Peptides, e.g. proteins, carriers being peptides, polyamino acids, proteins conjugates with carriers being peptides, polyamino acids or proteins
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K51/00—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo
- A61K51/02—Preparations containing radioactive substances for use in therapy or testing in vivo characterised by the carrier, i.e. characterised by the agent or material covalently linked or complexing the radioactive nucleus
- A61K51/04—Organic compounds
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P35/00—Antineoplastic agents
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07B—GENERAL METHODS OF ORGANIC CHEMISTRY; APPARATUS THEREFOR
- C07B59/00—Introduction of isotopes of elements into organic compounds ; Labelled organic compounds per se
- C07B59/008—Peptides; Proteins
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Public Health (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Optics & Photonics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
本发明涉及用于体内成像的放射性药物领域,具体地说涉及包含18F标记的c‑Met结合肽的放射性示踪剂组合物。本发明提供所述组合物以及相关的自动化制备方法和盒。
Description
发明领域
本发明涉及用于体内成像的放射性药物领域,具体地说涉及包含18F标记的c-Met结合肽的放射性示踪剂组合物。本发明提供所述组合物,以及相关的自动化制备方法和盒。
发明背景
肝细胞生长因子(HGF),亦称分散因子(SF),是一种参与例如伤口愈合和血管生成等各种生理过程的生长因子。HGF与其受体(c-Met)的相互作用的高亲和力相互作用涉及肿瘤生长、侵袭和转移。
已表明c-Met在许多人类上皮源癌症中参与肿瘤生长、侵袭和转移。c-Met由大多数癌表达,并且在以下癌症中检出其相对于正常组织的表达升高:肺癌、乳腺癌、结肠直肠癌、胰腺癌、头颈癌、胃癌、肝细胞癌、卵巢癌、肾癌、神经胶质瘤、黑素瘤和多种肉瘤。在结肠直肠癌(CRC)中,在发育异常隐窝病灶(疾病的最早肿瘤发生前损害)中检出c-Met过量表达。在头颈癌鳞状细胞癌中,据报道c-Met在大致80%的原发肿瘤中表达或过量表达。在前列腺癌转移至骨时,据报道c-Met在超过80%的骨转移中过量表达。
在正常条件下,c-Met在上皮细胞中表达,并被间充质来源的HGF以旁分泌方式激活。正常细胞中c-Met的活化是瞬时事件,并被严格调节。然而,在肿瘤细胞中,c-Met可为组成型活性的。在癌症中,可通过c-Met扩增/过量表达、激活c-Met突变(例如结构变化)和通过自分泌信号转导环的产生获得自主生长控制,来实现异常的c-Met刺激。另外,c-Met受体有缺陷的减量调节也会有助于细胞膜中的异常c-Met表达。虽然c-Met的过量表达是依赖HGF的(自分泌/旁分泌),但因突变引起的结构变化是不依赖HGF的(例如胞外域丧失)。
Poethko等[J. Nucl. Med.,45(5), 892-902 (2004)]公开了用放射性同位素18F对肽进行放射性标记的方法,其中使氨氧基官能化肽(aminoxy-functionalised peptide)与[18F]-氟苯甲醛缩合得到具有以下肟醚键的标记的肽:
Schottelius等[Bioconj. Chem.,19(6), 1256-1268 (2008)]进一步发展了Poethko等人的方法。Schottelius等人使用氨氧基官能化肽,其中氨氧基的胺被N-Boc (Boc =叔丁氧基羰基)保护基保护。在[18F]-氟苯甲醛存在下通过N-Boc基团在酸性pH (pH = 2)、75℃下脱保护,原位产生所需的氨氧基官能化肽。Schottelius等人使用5倍摩尔过量的Boc保护的前体,因为脱保护在此反应条件下不是定量的。
Mezo等[J. Pept. Sci., 17, 39-46 (2010)]描述了与Boc保护的氨氧基官能化肽的上述肟连接化学有关的一些问题。因此,已知Boc-氨氧基试剂可使所形成的Boc保护的氨氧基-肽酰化,产生不需要的副产品。还已知官能化肽的游离氨氧基对羰基化合物的反应性高。因此,可与存在于反应混合物或任何后续纯化步骤中的任何外来的醛或酮发生不需要的缩合。这类醛或酮可以是存在于所用溶剂中的痕量的丙酮,或甲醛(例如来自可塑剂)。Mezo等人对解决此问题以用于抗癌药物和[18F]-氟苯甲醛与肽的缀合两者产生兴趣。Mezo等人通过在10倍摩尔过量的作为“羰基俘获剂”的游离(氨氧基)乙酸(Aoa)存在下进行Boc-氨氧基肽的脱保护,解决了这个问题。然后使脱保护的氨氧基-肽和过量的Aoa冻干并保存在4℃下。临在肟连接反应之前,使冻干的混合物复溶,并通过HPLC或Sep-Pak plus C18柱体分离过量的Aoa。Mezo等人提供其中采用该技术使非放射性(即19F) 4-氟苯甲醛与氨氧基官能化促生长素抑制素肽缀合的实例。Mezo等人未提供有关18F-放射性标记的任何数据。
WO 2012/022676公开了包含下式I的18F-放射性标记的18-30聚体c-Met结合环肽(cMBP)的成像剂:
Z1-[cMBP]-Z2 (I)
其中:
cMBP为下式II:
-(A)x-Q-(A')y- (II)
其中Q为氨基酸序列(SEQ-1):
-Cysa-X1-Cysc-X2-Gly-Pro-Pro-X3-Phe-Glu-Cysd-Trp-Cysb-Tyr-X4-X5-X6-
其中X1为Asn、His或Tyr;
X2为Gly、Ser、Thr或Asn;
X3为Thr或Arg;
X4为Ala、Asp、Glu、Gly或Ser;
X5为Ser或Thr;
X6为Asp或Glu;
且Cysa-d各自为半胱氨酸残基,使得残基a和b以及c和d环化形成2个单独的二硫键;
A和A'独立地为Cys以外的任何氨基酸,前提条件是A和A’的至少一个存在且为Lys;
x和y独立地为值0-13的整数,并且经选择使得[x + y] = 1-13;
Z1与cMBP的N端连接,且为H或MIG;
Z2与cMBP的C端连接,且为OH、OBc或MIG,
其中Bc为生物相容性阳离子;
MIG各自独立地为代谢抑制基团,其是抑制或阻止cMBP肽的体内代谢的生物相容性基团;
其中cMBP在A或A'基团的Lys残基上被18F标记。
WO 2012/022676还公开了可将成像剂用作药物组合物,其中所述组合物优选包含优选选自以下的一种或多种辐射防护剂:乙醇、抗坏血酸、对氨基苯甲酸(即4-氨基苯甲酸或pABA)、龙胆酸(即2,5-二羟基苯甲酸)和所述酸与生物相容性阳离子的盐。
WO 2012/072736公开了官能化生物分子的氨氧基的备选保护基化学的应用。被保护的氨氧基具有下式:
其中:
R1和R2独立选自C1-3烷基、C1-3氟烷基或C4-6芳基。
US 2013/0209358 A1公开了可在高放射性浓度下进行辐解作用的18F-fluciclatide:
18F-fluciclatide
US 2013/0209358 A1报告了18F-fluciclatide不被乙醇稳定,且抗坏血酸对自动化放射合成不理想,但4-氨基苯甲酸(或其盐)是有效的。US 2013/0209358 A1教导了先制备18F-fluciclatide,然后加入辐射防护剂。
因此仍然需要制备和纯化18F标记的c-Met肽放射性示踪剂以得到适于体内放射性药物应用的高纯度组合物的改进方法。
本发明
本发明人已鉴定并分析了存在于18F标记的c-Met打靶肽中的放射化学杂质和所述杂质的水平如何随时间推移而变化。该研究导致认识到试图纯化期间进程中的辐解作用是RCP (放射化学纯度)问题的根本原因。
这还可以如下理解。因此,当纯化并配制用于体内应用时,本发明的放射性示踪剂以约500-700 MBq/mL (0.5-0.7 GBq/mL)的放射性浓度(RAC)存在。在所述RAC条件下放射性示踪剂可显示令人满意的稳定性或最低降解。然而,其获自粗制反应混合物,其中RAC的范围为约10-15 GBq/mL。此外,本发明人证实了在纯化期间(即在放射合成结束时),约45GBq的放射性以小于1 mL的体积浓缩在色谱柱上的紧密条带中。这导致在纯化期间进程中的RAC >45 GBq/mL。因为纯化可能耗时10-15分钟,所以进程中的辐解作用的风险高。
本发明提供用于在进行纯化的同时稳定放射性示踪剂的方法,因此还提供改进的放射性产率和组合物。本发明提供纯化包含18F标记的c-Met打靶肽的放射性示踪剂的方法。实际上既是纯化的方法也是放射稳定(即针对放射性降解稳定)的方法。因此,通过防止纯化期间的进程中的放射性降解,本发明还改进放射化学纯度,因为抑制可另外产生的杂质。所述方法还提供改进的放射化学产率,因为色谱法期间进程中的丢失被减到最小。
发明详述
第一方面,本发明提供呈适于哺乳动物给药的形式的放射性药物组合物,其包含:
(i) 放射性示踪剂,其包含用18F标记的下式I的c-Met结合肽:
Z1-[cMBP]-Z2 (I)
(ii) 辐射防护剂,其包含4-氨基苯甲酸或其与生物相容性阳离子的盐;
(iii) 生物相容性载体,其包含乙醇含量为0.1-10% v/v的乙醇水溶液;
其中:
cMBP是具有以下氨基酸序列的c-Met结合肽:
Ala-Gly-Ser-Cysa-Tyr-Cysc-Ser-Gly-Pro-Pro-Arg-Phe-Glu-Cysd-Trp-Cysb-Tyr-Glu-Thr-Glu-Gly-Thr-Gly-Gly-Gly-Lys
其中Cysa-d各自为半胱氨酸残基,使得残基a和b以及c和d环化形成2个单独的二硫键;
Z1与cMBP的N端连接,且为MIG;
Z2与cMBP的C端连接,且为MIG;
MIG各自独立地为代谢抑制基团,其是抑制或阻止cMBP肽的体内代谢的生物相容性基团;
cMBP的Lys残基被18F标记。
术语“放射性示踪剂”具有其常规含义,是指用于跟踪生理学或生物学过程而不影响所述过程的放射性药物。术语“放射性药物”具有其常规含义,是指给予哺乳动物机体体内用于成像或治疗目的的放射性标记的化合物。在色谱纯化期间,例如当加载并因此在SPE柱的顶部浓缩成小体积时,放射性示踪剂可瞬时暴露在极高的放射性浓度(“RAC”)下。因此,在其它情况下显得放射性稳定的放射性示踪剂,在试图纯化期间可显示不稳定性,随后损失放射化学纯度(“RCP”)和/或放射化学产率。
所谓术语“辐射防护剂”意指通过截留高反应性自由基(例如产生自水的辐解作用的含氧自由基),抑制降解反应(例如氧化还原过程)的化合物。本发明的辐射防护剂适宜选自对氨基苯甲酸(即4-氨基苯甲酸)及其与生物相容性阳离子的盐。所谓术语“生物相容性阳离子”意指与离子化带负电荷的基团形成盐的带正电荷的反荷离子,其中所述带正电荷的反荷离子也是无毒的,因此适于给予哺乳动物机体,尤其是人体。合适的生物相容性阳离子的实例包括:碱金属钠或钾;碱土金属钙和镁;和铵离子。优选的生物相容性阳离子为钠和钾,最优选钠。
“生物相容性载体”是放射性缀合物可悬浮或优选溶解于其中的流体,尤其是液体,使得组合物是生理上可耐受的,即可给予哺乳动物机体而无毒性或过多不适。生物相容性载体适宜为可注射载体液体,例如无菌的无热原注射用水;水性溶液,例如盐水(其可有利地平衡,使得最终的注射用制品是等渗的);包含生物相容性缓冲剂的水性缓冲溶液(例如磷酸盐缓冲液);一种或多种张力调节物质的水性溶液(例如血浆阳离子与生物相容性反荷离子的盐)、糖(例如葡萄糖或蔗糖)、糖醇(例如山梨糖醇或甘露糖醇)、二醇(例如甘油)或其它非离子的多元醇物质(例如聚乙二醇、丙二醇等)。优选生物相容性载体是无热原注射用水、等渗盐水或磷酸盐缓冲液。
所谓短语“呈适于哺乳动物给药的形式”意指是无菌无热原的、没有产生毒性作用或不利作用的化合物且在生物相容性pH (约pH 4.0-10.5)下配制的组合物。所述组合物没有可能有引起体内栓子的风险的颗粒,并且经配制使得在与生物流体(例如血液)接触时不发生沉淀。所述组合物还只含有生物相容性赋形剂,并且优选是等渗的。
所谓术语“肽”意指包含由肽键(即连接一个氨基酸的胺与另一个氨基酸的羧基的酰胺键)连接的两个或多个如下定义的氨基酸的化合物。
所谓术语“氨基酸”意指可以天然存在的或纯合成来源的,且可以是旋光纯的即单一对映异构体因此是手性的或对映异构体的混合物的L-或D-氨基酸、氨基酸类似物(例如萘丙氨酸)或氨基酸模拟物。本文使用氨基酸的常规3字母或单字母缩略语。优选本发明的氨基酸是旋光纯的。
所谓术语“代谢抑制基团”(MIG)意指抑制或阻止氨基端或羧基端处的cMBP的酶尤其肽酶(例如羧肽酶)代谢的生物相容性基团。这类基团对于体内应用是特别重要的,因为否则将预期快速代谢,以及随之发生的选择性结合亲和力的丢失,并且是本领域技术人员所熟知的,对于肽胺末端适宜选自:
N-酰化基团-NH(C=O)RG,其中酰基-(C=O)RG具有选自以下的RG:C1-6烷基、C3-10芳基或包含聚乙二醇(PEG)结构单元。优选的这类氨基端MIG基团为乙酰基、苄氧基羰基或三氟乙酰基,最优选乙酰基。
对于肽羧基端合适的代谢抑制基团包括:羧酰胺、叔丁酯、苄酯、环己酯、氨基醇或聚乙二醇(PEG)结构单元。对于cMBP的羧基端氨基酸残基合适的MIG基团是其中氨基酸残基的末端胺是被C1-4烷基(优选甲基) N-烷基化。优选的这类MIG基团是羧酰胺或PEG,最优选的这类基团是羧酰胺。
放射性示踪剂和生物相容性载体以合适的小瓶或容器供应,所述小瓶或容器包括允许保持无菌完整性和/或放射性安全、任选加上惰性顶部空间气体(例如氮气或氩气),同时允许通过注射器或套管加入和取出溶液的密封容器。优选的这类容器是隔膜密封的小瓶,其中气密盖用顶封(通常为铝的顶封)卷边。盖适宜用皮下注射器针头单次或多次刺穿(例如卷边隔膜密封盖),同时保持无菌完整性。这类容器具有额外优势,如有需要,盖可承受真空(例如更换顶部空间气体或使溶液脱气),并承受压力变化,例如压力减弱而不允许外部大气气体(例如氧气或水蒸汽)进入。
优选的多剂量容器包含单一容积小瓶,其含有多个患者剂量,因此可在制品的可行使用期内的不同时间间隔从中抽取单一患者剂量到临床级注射器以适应临床状况。预装注射器被设计成含有单人用剂量或“单位剂量”,因此优选适于临床使用的一次性或其它注射器。
放射性药物组合物可含有其它任选的赋形剂,例如:抗微生物防腐剂、pH调节剂、填充剂、增溶剂或重量摩尔渗透压浓度调节剂。所谓术语“填充剂”意指药学上可接受的增量剂,其可在生产和冻干期间促进材料处理。合适的填充剂包括无机盐例如氯化钠和水溶性糖或糖醇例如蔗糖、麦芽糖、甘露糖醇或海藻糖。
所谓术语“增溶剂”意指存在于组合物中的提高目标剂在溶剂中的溶解度的添加剂。优选的这类溶剂是水性介质,因此增溶剂优选改进在水中的溶解度。合适的这类增溶剂包括:C1-4醇;甘油;聚乙二醇(PEG);丙二醇;聚氧乙稀失水山梨醇单油酸酯;失水山梨醇单油酸酯;聚山梨酸酯;聚氧乙烯聚氧丙烯聚氧乙烯嵌段共聚物(PluronicsTM);环糊精(例如α、β或γ环糊精、羟丙基-β-环糊精或羟丙基-γ-环糊精)和卵磷脂。
所谓术语“抗微生物防腐剂”意指抑制潜在有害微生物(例如细菌、酵母或霉菌)的生长的剂。抗微生物防腐剂还可显示一些杀菌性质,这取决于所用剂量。本发明的抗微生物防腐剂的主要作用是抑制药物组合物中的任何这类微生物的生长。然而,抗微生物防腐剂还可任选用于抑制在给药前用于制备所述组合物的试剂盒的一种或多种组分中的潜在有害微生物的生长。合适的抗微生物防腐剂包括:对羟基苯甲酸酯,即对羟基苯甲酸甲酯、对羟基苯甲酸乙酯、对羟基苯甲酸丙酯或对羟基苯甲酸丁酯或其混合物;苄醇;苯酚;甲酚;溴化十六烷基三甲铵和硫柳汞。优选的抗微生物防腐剂是对羟基苯甲酸酯。
术语“pH调节剂”意指可用于确保组合物的pH在可接受的界限(约pH 4.0-10.5)内用于人或哺乳动物给药的化合物或化合物的混合物。合适的这类pH调节剂包括药学上可接受的缓冲剂,例如曲辛(tricine)、磷酸盐或TRIS [即三(羟甲基)氨基甲烷]和药学上可接受的碱例如碳酸钠、碳酸氢钠或其混合物。当以试剂盒形式使用组合物时,pH调节剂可任选以单独的小瓶或容器提供,使得试剂盒的用户可调节pH作为多步程序的一部分。
优选的特征
在第一方面的放射性药物组合物中,Z1优选为乙酰基,Z2优选为伯酰胺。
18F优选通过肟键与cMBP连接,更优选与氨氧基官能化cMBP连接。术语“氨氧基官能化”意指被氨氧基官能化或与之缀合的cMBP。术语“氨氧基”具有其常规含义,是指式-O-NH2、优选-CH2-O-NH2的取代基。第一方面的放射性示踪剂优选具有下式II:
(II)。
其中使用常规单字母氨基酸缩略语。
第一方面的组合物中的4-氨基苯甲酸浓度优选为1.5-2.5 mg/mL,更优选1.8-2.2mg/mL,最优选约2.0 mg/mL。
第一方面的组合物中的乙醇浓度优选为6.5-8.5% v/v。
第一方面的组合物中的生物相容性载体的水性组分优选为pH 6-8的缓冲溶液,更优选磷酸盐缓冲液。
在第一方面的放射性药物组合物中,优选至少90%的18F放射性含量为式(I)的放射性示踪剂,且小于10%的所述含量是[18F]-4-氟苯甲醛和[18F]-4-氟苯腈的总和。更优选,至少92%的18F放射性含量是式(I)的放射性示踪剂,且小于5%的所述含量是[18F]-4-氟苯甲醛和[18F]-4-氟苯腈的总和。氟苯腈是化合物F-Ph-CN,其中Ph为1,4-亚苯基。这些放射性杂质产生于之前未认识到的本发明的18F标记的cMBP的进程中的辐解作用,其控制得到改进的放射性药物组合物。
可按第二方面(下文)中所述制备第一方面的放射性药物组合物。
第二方面,本发明提供制备第一方面的放射性药物组合物的方法,所述方法包括:
(A) 供应单次使用盒,所述盒包含:
(i) 第一非放射性前体,其能够与[18F]-氟化物反应得到[18F]-氟苯甲醛;
(ii) 式III的第二非放射性前体,其能够与[18F]-氟苯甲醛反应得到第一方面定义的式II的放射性示踪剂:
(III)
(iii) 反相固相提取柱;
(iv) 第一方面定义的辐射防护剂的供应;
(v) 反应容器;
(vi) 合适的溶剂;
(B) 使第一前体与[18F]-氟化物反应,得到[18F]-氟苯甲醛;
(C) 使来自步骤(B)的[18F]-氟苯甲醛与第二前体反应,得到式II的放射性示踪剂;
(D) 将所述辐射防护剂加到来自步骤(C)的式II的放射性示踪剂中,得到放射性示踪剂溶液;
(E) 使用所述反相固相提取柱纯化来自步骤(D)的放射性示踪剂溶液;
(F) 任选用生物相容性载体稀释来自步骤(E)的纯化的[18F]-放射性示踪剂;
(G) 将来自步骤(F)的任选稀释的溶液除菌过滤,得到所述放射性药物组合物;
其中所述盒可取出地且可替换地安装到自动合成仪装置上,且使用所述自动合成仪装置进行至少步骤(B)-(E)。
第二方面中的放射性示踪剂和辐射防护剂的优选实施方案如第一方面(上文)中所述。
术语“反相”是指“反相色谱法纯化”,它具有其常规含义,是指其中固定相是亲脂性且流动相是亲水性(通常包括水性介质)的色谱法。本发明的色谱技术是使用SPE柱(有时称为“SPE柱体”)的固相提取(SPE)。这类SPE柱具有它们是单次使用(即一次性)的优势,因此没有与其它放射性示踪剂交叉污染的风险。第二方面的反相SPE柱体优选具有2.7-17%的碳负载,且更优选为C18 SPE柱体,最优选tC18 SPE柱体。适用于本发明的反相SPE柱体可获自Waters Limited (730-740 Centennial Court, Centennial Park, Elstree,Hertfordshire, UK)。
为了获得放射性药物组合物,第二方面的方法采用无菌生产技术进行,其中所述步骤使用自动合成仪装置进行。所谓术语“自动合成仪”意指基于Satyamurthy等[Clin.Positr. Imag.,2(5), 233-253 (1999)]所述的单元操作的原理的自动化模块。术语“单元操作”意指复杂过程被简化成一系列的简单操作或反应,其可应用于各种材料。这类自动合成仪对于本发明的方法尤其当需要放射性药物组合物时是优选的。它们可市购获自多个供应商[Satyamurthy等,如上],包括:GE Healthcare;CTI Inc;Ion Beam ApplicationsS.A. (Chemin du Cyclotron 3, B-1348 Louvain-La-Neuve, Belgium);Raytest(Germany)和Bioscan (USA)。
商品化自动合成仪还提供用于因放射性药物制备而产生的液体放射性废物的合适容器。通常不提供带有辐射屏蔽的自动合成仪,因为它们被设计成用于适当配置的放射性工作单元(radioactive work cell)。放射性工作单元提供合适的辐射屏蔽以保护操作者免遭潜在的辐射剂量,以及提供通风以除去化学和/或放射性蒸汽。自动合成仪优选包含盒。
所谓术语“盒”意指经设计以合成仪活动件的机械运动从盒的外面(即从外部)控制盒的操作的方式使得整个单位可取出地且可替换地安装在自动合成仪装置(如下定义)上的装置的单位组件。合适的盒包含各自与出入口连接的线性阵列阀,其中试剂或小瓶可通过针穿刺倒置隔膜密封的小瓶或通过气密的合成接合处(marrying joints)在所述出入口处连接。各阀具有与自动合成仪的相应移动臂对接的凹凸连接处。当将盒与自动合成仪连接时,臂的外旋转因此控制阀的开启或关闭。自动合成仪的其它活动件被设计成夹在注射器活塞端上,因此提升或压下注射器针筒。
所述盒是多用途的,通常具有试剂可连接的几个位置和适于连接试剂的注射器小瓶或色谱法柱体(例如固相提取或SPE)的几个位置。盒总是包含反应容器。所述反应容器的体积优选为1-10 cm3、最优选2-5 cm3,并且经配置使得盒的3个或更多个出入口与之连接,以允许试剂或溶剂从盒上的不同出入口转移。优选盒具有呈线性阵列的15-40个阀,最优选20-30个,尤其优选为25个。盒的阀优选是各自相同的,最优选为3通阀。盒被设计成适于放射性药物生产,并因此自是医药级的并且还理想地是耐辐解作用的材料生产。
本发明的合适的自动合成仪包含一次性或单次使用的盒,所述盒包含进行规定批次的放射性氟化放射性药物制备所必需的所有试剂、反应容器和装置。所述盒意指通过简单地更换盒,自动合成仪便具有能够制备具有最小交叉污染风险的各种不同的放射性药物的机动性。盒式方法还具有以下优势:简化设置,因此操作者误差的风险减小;GMP(药品生产惯例(Good Manufacturing Practice))服从性改进;多示踪剂能力;生产运行间的快速变化;盒和试剂的预运行自动化诊断检查;化学试剂与待进行的合成的自动化条码反覆核对;试剂可追溯性;单次使用并因此无交叉污染、窜改和耐滥用性的风险。
在第二方面的方法中,自动合成仪装置优选用于进行步骤(B)-(G)。
“第一非放射性前体”被设计成在单一步骤中与[18F]-氟化物反应得到[18F]-氟苯甲醛。合适的这类前体是本领域已知的。优选的这类前体是前体1 (下文)。
第二非放射性前体具有上文所示的式(III)。这类氨氧基官能化肽可通过以下方法制备:Poethko等[J. Nucl. Med.,45, 892-902 (2004)];Schirrmacher等[Bioconj.Chem.,18, 2085-2089 (2007)];Indrevoll等[Bioorg. Med. Chem.Lett,16, 6190-6193 (2006)];Glaser等[Bioconj. Chem.,19, 951-957 (2008)]或Dall’Angelo等[Org.Biomol. Chem.,11, 4551-4558 (2013)]。氨氧基可任选分两步骤缀合。第一,使N-保护的氨氧基羧酸或N-保护的氨氧基活性酯与肽缀合(例如通过与Lys残基的胺基缀合或通过常规固相合成)。第二,使中间体N-保护的氨氧基官能化肽脱保护得到所需产物[参见上文引述的Solbakken和Glaser论文]。N-保护的氨氧基羧酸例如Boc-氨氧基乙酸[Boc-NH-O-CH2(C=O)OH]和Eei-N-O-CH2(C=O)OH市购可获自例如Sigma-Aldrich、Novabiochem和IRIS。
术语“保护的”是指保护基的使用。所谓术语“保护基”意指抑制或阻止不需要的化学反应,但被设计成有足够的反应性使得它在不修饰分子的其余部分的充分温和的条件下可从所讨论的官能团上切割的基团。在脱保护后,获得所需产物。胺保护基为本领域技术人员所熟知,适宜选自:Boc (其中Boc为叔丁氧基羰基);Eei (其中Eei为乙氧基亚乙基);Fmoc (其中Fmoc为芴基甲氧基羰基);三氟乙酰基;烯丙氧基羰基;Dde [即1-(4,4-二甲基-2,6-二氧代亚环己基)乙基]或Npys (即3-硝基-2-吡啶亚磺酰基)。另外的保护基的使用描述于Protective Groups in Organic Synthesis, 第4版, Theorodora W. Greene和Peter G. M. Wuts, [Wiley Blackwell, (2006)]。优选的胺保护基是Boc和Eei,最优选Eei。
在第二方面的方法中,步骤(D)的放射性示踪剂溶液包含5-25% v/v乙腈含量的乙腈水溶液中的所述放射性示踪剂。步骤(D)的放射性示踪剂溶液优选包含乙醇,更优选包含乙腈和乙醇两者。乙醇具有潜在的多种作用,因为它可用作:水混溶性有机溶剂(如上定义);辐射防护剂或放射性稳定剂(radiostabiliser);“生物相容性载体” (如上定义);并用作抗微生物防腐剂(如上定义)。本发明人发现“辐射防护剂” (如上定义)和乙醇的组合最有效地针对辐解作用稳定本发明的放射性示踪剂。放射性示踪剂溶液的乙醇含量优选为0.5-5% v/v乙醇。
纯化步骤(E)除去保持与SPE柱结合的物类—例如极亲脂性物类或任何颗粒。步骤(E)还除去对SPE柱固定相显示低亲和力的亲水性杂质—并因此在加载和洗涤步骤中除去。所述亲水性杂质包括任何盐或离子物类(例如氟离子);催化剂(例如苯胺);以及来自放射性示踪剂溶液的水混溶性有机溶剂。
放射性示踪剂通常产生于18F-氟苯甲醛(或同类物)与氨氧基官能化生物打靶部分前体的缀合,缀合的氟苯甲醛部分赋予缀合物额外的亲脂性。因此,放射性示踪剂趋于保留在反相SPE柱中,而非放射性前体本身(是更亲水性的)趋于在加载步骤和洗涤步骤中除去。洗涤步骤对于除去水混溶性有机溶剂也是重要的。以这种方式,将放射性示踪剂溶液纯化以除去不需要的基于生物打把部分的非放射性杂质,所述生物打靶部分如果存在,则体内会与放射性示踪剂竞争目标生物部位。任何更亲水性的18F标记的放射性杂质会趋于以类似方式除去。因此,在制备物中化合物2的初始水平为5 mg,其在纯化的放射性示踪剂中减少至约200 μg (0.2 mg)。
第二方面的SPE柱体优选用前通过先用水混溶性有机溶剂处理,然后用调节溶液处理而进行调节。所述水混溶性有机溶剂优选为乙醇,且所述调节溶液适宜为40-60%水性/水混溶性有机溶剂混合物,更优选50%乙醇水溶液。
优选使步骤(C)的放射性示踪剂和/或步骤(D)的放射性示踪剂溶液冷却至18-37℃、优选18-30℃的温度范围。
第二方面的纯化步骤(E)优选如下进行:
(i) 使步骤(D)的放射性示踪剂溶液通过所述反相SPE柱体,其中放射性示踪剂保留在所述SPE柱体上;
(ii) 用包含15-25% v/v乙腈含量的所述辐射防护剂的乙腈水溶液的洗涤溶液将步骤(i)的SPE柱体洗涤一次或多次;
(iii) 用水或水性缓冲溶液将步骤(ii)的SPE柱体洗涤一次或多次;
(iv) 用在乙醇含量为35-80% v/v的乙醇水溶液中包含所述辐射防护剂的洗脱溶剂将步骤(ii)或(iii)的经洗涤的SPE柱体洗脱,其中洗脱液包含所述洗脱溶剂中的纯化的放射性示踪剂。
术语“15-25% v/v乙腈含量的所述辐射防护剂的乙腈水溶液”是指与乙腈和可能还有乙醇混合的水性溶液(例如水本身、盐水、水性缓冲液或其混合物) (参见下文)。乙腈具有以下优势:它是放射性示踪剂的良好溶剂,既非酸性也非碱性,是相对无反应活性的并因此与广泛种类的官能团相容,并且是与水极易混溶的,使得通过在方法步骤(iii)和(iv)中洗涤SPE柱,容易且彻底地将其除去(或至少降低至ppm水平)。发现乙腈是用于除去放射性示踪剂中的杂质(包括苯胺)的最高效的溶剂。放射性示踪剂溶液和洗涤溶液的乙腈含量优选不超过25% v/v,因为较高水平有通过从SPE柱上洗脱而丢失放射性示踪剂产物的风险。洗涤溶液的乙腈含量优选为18-22% v/v,更优选20-21% v/v。
步骤(iv)的洗脱溶剂优选包含35-70% v/v乙醇水溶液,更优选40-60% v/v乙醇水溶液,最优选48-52%乙醇水溶液,尤其优选50%乙醇水溶液。
放射性示踪剂溶液、洗涤溶液和洗脱溶剂的水性组分的pH优选为7.5-8.5。这优选使用缓冲溶液、更优选磷酸盐缓冲液来实现。
当辐射防护剂是4-氨基苯甲酸钠时,放射性示踪剂溶液中的优选浓度为5 mg/mL,而洗涤溶液和洗脱溶剂中的优选浓度为2.5 mg/mL。尤其优选的放射性示踪剂溶液包含在79 g磷酸盐缓冲盐水(pH 7.5)和16.5 g乙腈的混合物中的2%乙醇、5 mg/mL 4-氨基苯甲酸钠。尤其优选的洗涤溶液包含磷酸盐缓冲盐水(pH 7.5)中的5 mg/mL 4-氨基苯甲酸钠。
在纯化步骤之间,优选用空气而不是氮吹扫SPE柱体。因此,本发明人发现辐射防护剂4-氨基苯甲酸在空气存在下更有效地起作用,与其中排除氧的情况相反。
步骤(iv)的纯化的放射性示踪剂因此优选在35-70%乙醇水溶液中含有4-氨基苯甲酸或其与生物相容性阳离子的盐作为辐射防护剂。对于放射性药物应用,其优选用水性生物相容性载体稀释得到0.1-10% v/v的最终乙醇含量。
第二方面的方法优选进一步包括:
(H) 将步骤(G)的[18F]-放射性示踪剂放射性药物组合物分配到一个或多个注射器中。
第三方面,本发明提供第二方面定义的单次使用盒。第三方面的盒的优选实施方案如第二方面(上文)中所述。
第四方面,本发明提供第二方面定义的自动合成仪装置的使用,以实施第二方面的制备方法。第四方面的合成仪和相关盒的优选实施方案如第二方面(上文)中所述。
第五方面,本发明提供如第二和第三方面定义的盒的使用,以实施第二方面的制备方法。第五方面的合成仪和相关盒的优选实施方案如第二方面(上文)中所述。
附图描述
图1显示使用位于FASTlab中的不同位置上的6个放射性检测器在加载、洗涤和洗脱过程中化合物3通过SPE柱的辐射洗脱概况。
图2显示化合物3的自动化放射合成和自动化纯化的FastLab盒配置。
通过以下详述的非限制性实施例说明本发明。实施例1提供本发明的c-Met打靶肽(“肽1”)的合成。实施例2提供氨氧基官能化肽1 (“化合物1”)的合成,其中氨氧基官能团用保护基(Eei)保护,随后脱保护得到化合物2。实施例3提供[18F]-氟苯甲醛的放射合成。实施例4是比较实施例,它提供在不用本发明的方法的情况下18F标记的共轭化合物3的放射合成。在这种情况下,RCP在合成结束时相对低(79%)。
实施例5提供按照实施例4纯化的低RCP化合物3中的放射化学杂质的特性和时程的分析。这提供了以下证据,即在试图色谱法纯化期间进程中的辐解作用是造成低RCP的原因。实施例5提供有关在SPE纯化期间放射性通过SPE柱移动的信息,表明在SPE过程中RAC超过45 GBq/mL。这种相当高但受时间限制的RAC也表明进程中的辐解作用。
实施例7提供使用自动合成仪和盒的化合物3的自动化合成和纯化。通过配成含有2.5 mg/Na-pABA的MeCN/PBS纯化溶液,实现EOS产率显著提高,但EOS RCP仍低,并且对高RAC敏感(在25 mL制剂中,当RAC为660 MBq/mL时RCP= 89%,当RAC为844 MBq/ml时RCP =85%)。在EOS时高RAC表明在纯化过程的较晚阶段柱体上仍较高的RAC。通过提高放射性示踪剂溶液的Na-pABA含量至5 mg/mL,进一步改进RCP至89-91%。通过将HCl加入pABA洗涤溶液中以使其为pH 4,获得RCP的更进一步改进。将乙醇(2%)加入放射性示踪剂溶液和洗涤溶液中,导致RCP进一步改进至>92%。实施例7的过程除去85%的肽相关杂质和基本全部的苯胺(从纯化前存在于粗产物中的100,000 µg苯胺剩余20 µg)。对于除去化学杂质,加入pABA和乙醇不会不利地影响SPE纯化的性能。
本发明的化合物
其中:
化合物1、2和3在肽1的羧基端Lys的ε胺基处被官能化;
肟键处的备选立体化学是可能的,但未显示。
缩略语
使用常规单字母或3字母氨基酸缩略语。
Ac:乙酰基;
Acm:乙酰氨基甲基;
ACN或MeCN:乙腈;
AcOH:乙酸;
Boc:叔丁氧基羰基;
BTM:生物打靶部分;
tBu:叔丁基;
DCM:二氯甲烷;
DIPEA:N,N-二异丙基乙胺;
DMF:二甲基甲酰胺;
DMSO:二甲亚砜;
Eei:乙氧基亚乙基;
Eei-AOAc-OSu:N-(1-乙氧基亚乙基)-2-氨氧基乙酸N-羟基琥珀酰亚胺基酯;
EOS:合成结束;
FBA:4-氟苯甲醛;
Fmoc:9-芴基甲氧基羰基;
HBTU:六氟磷酸O-苯并三唑-1-基-N,N,N’,N’-四甲基脲;
HPLC:高效液相色谱法;
MW:分子量;
NHS:N-羟基-琥珀酰亚胺;
NMM:N-甲基吗啉;
NMP:1-甲基-2-吡咯烷酮;
Pbf:2,2,4,6,7-五甲基二氢苯并呋喃-5-磺酰基;
RAC:放射性浓度;
RCP:放射化学纯度;
RP-HPLC:反相高效液相色谱法;
tBu:叔丁基;
TFA:三氟乙酸;
THF:四氢呋喃;
TIS:三异丙基甲硅烷;
Trt:三苯甲基。
实施例1:肽1的合成
步骤(a):受保护的前体线性肽的合成
前体线性肽具有以下结构:
Ac-Ala-Gly-Ser-Cys-Tyr-Cys(Acm)-Ser-Gly-Pro-Pro-Arg-Phe-Glu-Cys(Acm)-Trp-Cys-Tyr-Glu-Thr-Glu-Gly-Thr-Gly-Gly-Gly-Lys-NH2
采用Fmoc化学法以0.1 mmol Rink Amide Novagel树脂开始,在Applied Biosystems433A肽合成仪上装配肽基树脂H-Ala-Gly-Ser(tBu)-Cys(Trt)-Tyr(tBu)-Cys(Acm)-Ser(tBu)-Gly-Pro-Pro-Arg(Pbf)-Phe-Glu(OtBu)-Cys(Acm)-Trp(Boc)-Cys(Trt)-Tyr(tBu)-Glu(OtBu)-Thr(ψMe,Mepro)-Glu(OtBu)-Gly-Thr(tBu)-Gly-Gly-Gly-Lys(Boc)-聚合物。在偶联步骤中应用过量的1 mmol预先激活的氨基酸(使用HBTU)。将Glu-Thr假脯氨酸(pseudoproline) (Novabiochem 05-20-1122)掺入序列中。树脂被转移到氮气鼓泡装置中,并用溶于DCM (5 mL)中的乙酸酐(1 mmol)和NMM (1 mmol)溶液处理60分钟。经过滤除去酐溶液,将树脂用DCM洗涤,并在氮气流下干燥。
同时脱去侧链保护基和将肽从树脂上切割在含有2.5% TIS、2.5% 4-硫甲酚和2.5%水的TFA (10 mL)中进行2小时30分钟。经过滤除去树脂,真空除去TFA,将乙醚加入残余物中。将形成的沉淀用乙醚洗涤,风干得到264 mg粗制肽。
粗制肽通过制备型HPLC纯化(梯度:在40分钟内20-30% B,其中A = H2O/0.1%TFA,B = ACN/0.1% TFA,流速:10 mL/分钟,柱:Phenomenex Luna 5µ C18 (2) 250 x21.20 mm,检测:UV 214 nm,产物保留时间:30分钟),得到100 mg纯肽1线性前体。纯产物通过分析型HPLC分析(梯度:在10分钟内10-40% B,其中A = H2O/0.1% TFA,B = ACN/0.1%TFA,流速:0.3 mL/分钟,柱:Phenomenex Luna 3µ C18 (2) 50 x 2 mm,检测:UV 214 nm,产物保留时间:6.54分钟)。进一步的产物表征采用电喷雾质谱法进行(MH2 2+计算值:1464.6,MH2 2+实测值:1465.1)。
步骤(b):单环Cys4-16二硫桥的形成
Cys4-16;Ac-Ala-Gly-Ser-Cys-Tyr-Cys(Acm)-Ser-Gly-Pro-Pro-Arg-Phe-Glu-Cys(Acm)-Trp-Cys-Tyr-Glu-Thr-Glu-Gly-Thr-Gly-Gly-Gly-Lys-NH2。
将步骤(a)的线性前体(100 mg)溶于5% DMSO/水(200 mL)中,使用氨调节溶液至pH 6。将反应混合物搅拌5天。然后使用TFA调节溶液至pH 2,并通过真空蒸发除去大部分溶剂。将残余物(40 mL)分批注入制备型HPLC柱中用于产物纯化。
残余物通过制备型HPLC纯化(梯度:0% B 10分钟,然后在40分钟内0-40% B,其中A= H2O/0.1% TFA,B = ACN/0.1% TFA,流速:10 mL/分钟,柱:Phenomenex Luna 5µ C18 (2)250 x 21.20 mm,检测:UV 214 nm,产物保留时间:44分钟),得到72 mg的纯肽1单环前体。纯产物(作为异构体P1-P3的混合物)通过分析型HPLC分析(梯度:在10分钟内10-40% B,其中A = H2O/0.1% TFA,B = ACN/0.1% TFA,流速:0.3 mL/分钟,柱:Phenomenex Luna 3µC18 (2) 50 x 2 mm,检测:UV 214 nm,产物保留时间:5.37分钟(P1);5.61分钟(P2);6.05分钟(P3))。进一步的产物表征采用电喷雾质谱法进行(MH2 2+计算值:1463.6,MH2 2+实测值:1464.1 (P1);1464.4 (P2);1464.3 (P3))。
步骤(c):第二Cys6-14二硫桥(肽1)的形成
在氮气层(a blanket of nitrogen)下将步骤(b)的单环前体(72 mg)溶于75% AcOH/水(72 mL中。按顺序加入1 M HCl (7.2 mL)和含0.05 M I2的AcOH (4.8 mL),并搅拌混合物45分钟。加入1 M抗坏血酸(1 mL),得到无色混合物。大部分溶剂经真空蒸发,将残余物(18 mL)用水/0.1% TFA (4 mL)稀释,并采用制备型HPLC纯化产物。残余物通过制备型HPLC纯化(梯度:0% B 10分钟,然后在40分钟内20-30% B,其中A = H2O/0.1% TFA,B = ACN/0.1% TFA,流速:10 mL/分钟,柱:Phenomenex Luna 5µ C18 (2) 250 x 21.20 mm,检测:UV214 nm,产物保留时间:43-53分钟),得到52 mg的纯肽1。纯产物通过分析型HPLC分析(梯度:在10分钟内10-40% B,其中A = H2O/0.1% TFA,B = ACN/0.1% TFA,流速:0.3 mL/分钟,柱:Phenomenex Luna 3µ C18 (2) 50 x 2 mm,检测:UV 214 nm,产物保留时间:6.54分钟)。进一步的产物表征采用电喷雾质谱法进行(MH2 2+计算值:1391.5,MH2 2+实测值:1392.5)。
实施例2:化合物2的合成、纯化和冻干
将肽1 (0.797 g)和Eei-AOAc-OSu (IRIS Biotech;127 mg)溶于DMF (12 mL)中。加入DIPEA (100 µL),将反应混合物振荡26分钟。加入第二等分部分的DIPEA (80 µL),并将反应混合物振荡2小时。然后将反应混合物用10% ACN/水/0.l%乙酸铵(40 mL)稀释,使用A =0.1% TFA/水,B = ACN,以40分钟内20-40% B的梯度洗脱,通过制备型HPLC纯化产物。在长颈瓶中合并含有纯产物的流分(这些是化合物1和化合物2的混合物),将长颈瓶用氩气吹扫。将溶液搅拌过夜,以使Eei保护基完全除去。将脱保护的产物冻干,得到550 mg (69%收率)的化合物2。
纯产物通过分析型LC-MS进行分析(梯度:在5分钟内10-40% B,其中A = H2O/0.1%TFA,B = ACN TFA,流速:0.6 mL/分钟,柱:Phenomenex Luna 3µ C18 (2) 20 x 2 mm,检测:UV 214 nm,产物保留时间:3.00分钟),MH2 2+计算值:1428.1,MH2 2+实测值:1427.9)。
实施例3:[
18
F]-氟苯甲醛(
18
F-FBA)的放射合成
使用具有银靶的GEMS PETtrace回旋加速器通过[18O](p,n) [18F]核反应,产生[18F]-氟化物。使用3.2 - 4.8 mL的总目标体积。将放射性氟化物截留在Waters QMA柱体(用碳酸盐预调节)上,将氟化物用含Kryptofix2.2.2. (5.14 mg)和碳酸氢钾(1.40 mg)在水(800 μL)和乙腈(200 μL)中的溶液洗脱。使用氮气驱动溶液从QMA柱体到反应容器中。将[18F]-氟化物在稳定的氮气流和真空下在120℃下干燥9分钟。将含三甲铵苯甲醛三氟甲磺酸盐(trimethylammonium benzaldehyde triflate)[前体1;Haka等, J. Lab. Comp.Radiopharm.,27, 823-833 (1989)] (3.7 mg)的DMSO (2.0 mL)加入干燥的[18F]-氟化物中,将混合物加热至80℃ 2分钟,产生4-[18F]-氟苯甲醛。
实施例4:化合物3 (比较实施例)的放射合成
使用实施例3的18F-FBA,用18F对实施例2的化合物2进行放射性标记,然后在没有本发明的进程中的放射稳定的情况下,使用MCX+ SPE柱纯化,得到RCP为79%的化合物3。
实施例5:低RCP化合物3中的放射化学杂质
研究随时间变化的按照实施例3制备的化合物3的RCP。RCP不随时间推移进一步下降(直到8小时),表明了:
(i) 在SPE过程结束时存在的RAC条件下化合物3是相对放射性稳定的;
(ii) 在SPE过程结束时RCP必总是低的。
实施例4的化合物3的分析,即在不使用本发明的放射稳定方法和显示低RCP(79%)的情况下,发现两种辐解产物是低RCP的主要促成因素。这些通过分析型HPLC中的保留时间和与非放射性类似物真实样品的保留时间的比较来鉴定。这两种辐解产物为[18F]4-氟苯甲醛(FBA)和[18F]4-氟苯腈(FPhCN),其一起代表存在于来自实施例4的低RCP化合物3制备物的12%的放射性。
不随时间显著增加的这些主要的放射化学杂质,表示化合物3的放射性降解产物,进而表示进程中的辐解作用。
实施例6:化合物3的纯化中的SPE洗脱概况
沿FastLab盒放置了6个放射性检测器,其中将检测器#6朝向按照实施例7配置的SPE柱的底部放置。以这种方式跟踪SPE纯化过程的加载、洗涤和洗脱步骤期间的放射性的移动。
结果见图1。显示了粗产物被截留在SPE柱体的顶部。在纯化进行时,放射性向下往柱体里移动并移向较高编号的检测器,增强其信号。这表明放射性不扩散到整个柱体中,但集中在致密带中。在纯化期间,所有活性集中在小于1 mL的体积中,得到在纯化期间(12-14分钟) 45,000 MBq/mL的RAC,即45 GBq/mL。
实施例7:化合物3的自动合成和纯化
使用带盒的FastLab自动合成仪。tC18柱体获自Waters Limited (地址如上)。按照实施例3使前体1与Fastlab上的[18F]-氟化物反应,得到[18F]-FBA。随后使[18F]-FBA在FastLab上与化合物2 (肽1的氨氧基衍生物)反应,得到粗制化合物3。
纯化
图2中给出盒配置。在盒中使用3个外部溶剂小瓶用于SPE纯化:
位置17 =无水乙醇;
位置18 =含5 mg/mL Na-pABA 2% EtOH的79 g PBS/16.5g MeCN和用以达到pH 4的HCl的洗涤溶液;
位置20 = 34 mL含有80 mg Na-pABA的PBS的制剂缓冲液。
其它盒位置:
位置21:在位置22上向tC18柱体装上管子;
位置22:tC18柱体(900 mg);
位置23:除菌过滤器。
FASTlab程序
在以下中,P17等是指盒的位置17。S2和S3是指注射器2和注射器3:
(i) 纯化过程的第一部分用来自P17的乙醇填满的满载S2调节,接着用来自P18的MeCN/PBS溶液填满的满载S2调节。
(ii) 将来自缀合步骤的乙醇水溶液中的粗制化合物3用来自P20的制剂缓冲液1:1稀释。这分两部分进行:将来自反应容器的粗产物体积内容物的一半转移到S2,之后与来自P20的相同体积的制剂缓冲液混合。然后使该混合物在tC18柱体中慢慢截留。在第一次截留后,用剩余一半的粗产物重复相同程序。
(iii) 将S2用水冲洗,之后用来自P18的MeCN洗涤溶液完全充满S2冲洗。慢慢推动MeCN洗涤溶液通过tC18柱体,并推到废物区(waste)。将此另重复5次—这种洗涤共6次(但注意有关Eei保护基合成只需要共3次洗涤)。
(iv) 通过溶剂交换除去tC18柱体中的MeCN:先用来自P20的制剂缓冲液2次完全充满S2接着用来自水袋的水1次完全充满S2。
(v) 通过在S2中将来自P17的3 mL乙醇和来自P20的3 mL制剂缓冲液混合制备洗脱液。首先使1 mL洗脱液通过tC18且通向废物区,接着使4 mL洗脱液通过tC18,并在S3中收集纯化的化合物3产物。在洗脱后,使产物通过P19从FASTlab中转移出来并进入产物小瓶中。
在此情况下,放射化学纯度(RCP)为92%。
Claims (17)
1.一种呈适于哺乳动物给药的形式的放射性药物组合物,其包含:
(i) 放射性示踪剂,其包含用18F标记的下式I的c-Met结合肽:
Z1-[cMBP]-Z2 (I)
(ii) 辐射防护剂,其包含4-氨基苯甲酸或其与生物相容性阳离子的盐;
(iii) 生物相容性载体,其包含乙醇含量为0.1-10% v/v的乙醇水溶液;
其中:
cMBP是具有以下氨基酸序列的c-Met结合肽:
Ala-Gly-Ser-Cysa-Tyr-Cysc-Ser-Gly-Pro-Pro-Arg-Phe-Glu-Cysd-Trp-Cysb-Tyr-Glu-Thr-Glu-Gly-Thr-Gly-Gly-Gly-Lys
其中Cysa-d各自为半胱氨酸残基,使得残基a和b以及c和d环化形成2个单独的二硫键;
Z1与cMBP的N端连接,且为MIG;
Z2与cMBP的C端连接,且为MIG;
MIG各自独立地为代谢抑制基团,其是抑制或阻止cMBP肽的体内代谢的生物相容性基团;
cMBP的Lys残基被18F标记。
2.权利要求1的放射性药物组合物,其中Z1为乙酰基,Z2为伯酰胺。
3.权利要求1或2的放射性药物组合物,其中所述18F通过肟键连接。
4.权利要求3的放射性药物组合物,其中所述放射性示踪剂具有下式II:
(II)。
5.权利要求4的放射性药物组合物,其中至少90%的18F放射性含量是式(I)的放射性示踪剂,且小于10%的所述含量是[18F]-4-氟苯甲醛和[18F]-4-氟苯腈的总和。
6.权利要求5的放射性药物组合物,其中至少92%的18F放射性含量是式(I)的放射性示踪剂,且小于5%的所述含量是[18F]-4-氟苯甲醛和[18F]-4-氟苯腈的总和。
7.一种权利要求4-6中任一项的放射性药物组合物的制备方法,所述方法包括:
(A) 供应单次使用盒,所述盒包含:
(i) 第一非放射性前体,其能够与[18F]-氟化物反应得到[18F]-氟苯甲醛;
(ii) 式III的第二非放射性前体,其能够与[18F]-氟苯甲醛反应得到如权利要求4中限定的式II的放射性示踪剂:
(III)
(iii) 反相固相提取柱;
(iv) 供应权利要求1中限定的辐射防护剂;
(v) 反应容器;
(vi) 合适的溶剂;
(B) 使所述第一前体与[18F]-氟化物反应,得到[18F]-氟苯甲醛;
(C) 使步骤(B)的[18F]-氟苯甲醛与所述第二前体反应,得到式II的放射性示踪剂;
(D) 将所述辐射防护剂加到步骤(C)的式II的放射性示踪剂中;
(E) 使用所述反相固相提取柱纯化步骤(D)的式II的放射性示踪剂;
(F) 任选用生物相容性载体稀释步骤(E)的纯化的[18F]-放射性示踪剂;
(G) 将步骤(F)的任选稀释的溶液除菌过滤,得到所述放射性药物组合物;
其中将所述盒可取出地且可替换地安装到自动合成仪装置上,并且使用所述自动合成仪装置进行至少步骤(B)-(E)。
8.权利要求7的方法,其中使用所述自动合成仪装置进行步骤(B)-(G)。
9.权利要求7或8的方法,其中步骤(D)的放射性示踪剂溶液包含5-25% v/v乙腈含量的乙腈水溶液中的所述放射性示踪剂。
10.权利要求9的方法,其中步骤(D)的放射性示踪剂溶液进一步包含0.5-5% v/v乙醇。
11.权利要求7-10中任一项的方法,其中所述纯化步骤(E)如下进行:
(i) 使步骤(D)的放射性示踪剂溶液通过所述反相SPE柱体,其中所述放射性示踪剂保留在所述SPE柱体上;
(ii) 用包含15-25% v/v乙腈含量的所述辐射防护剂的乙腈水溶液的洗涤溶液将步骤(i)的SPE柱体洗涤一次或多次;
(iii) 用水或水性缓冲溶液将步骤(ii)的SPE柱体洗涤一次或多次;
(iv) 用在乙醇含量为35-80% v/v的乙醇水溶液中包含所述辐射防护剂的洗脱溶剂将步骤(ii)或(iii)的经洗涤的SPE柱体洗脱,其中所述洗脱液包含所述洗脱溶剂中的纯化的放射性示踪剂。
12.权利要求7-11中任一项的方法,其中所述SPE柱体是C18 SPE柱体。
13.权利要求12的方法,其中步骤(iv)的洗脱溶剂包含40-60% v/v乙醇水溶液。
14.权利要求7-13中任一项的方法,所述方法进一步包括:
(H) 将步骤(G)的[18F]-放射性示踪剂放射性药物组合物分配到一个或多个注射器中。
15.权利要求7-13中任一项限定的单次使用盒。
16.权利要求7-13中任一项限定的自动合成仪装置的使用以实施权利要求7-14中任一项的制备方法。
17.权利要求15的盒的使用以实施权利要求7-14中任一项的制备方法。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GBGB1322456.3A GB201322456D0 (en) | 2013-12-18 | 2013-12-18 | Radiotracer compositions and methods |
GB1322456.3 | 2013-12-18 | ||
PCT/EP2014/078609 WO2015091882A1 (en) | 2013-12-18 | 2014-12-18 | Radiotracer compositions and methods |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN105848687A true CN105848687A (zh) | 2016-08-10 |
CN105848687B CN105848687B (zh) | 2020-06-09 |
Family
ID=50071052
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201480069324.9A Active CN105848687B (zh) | 2013-12-18 | 2014-12-18 | 放射性示踪剂组合物和方法 |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
US (3) | US10300156B2 (zh) |
EP (1) | EP3082879A1 (zh) |
JP (2) | JP6824738B2 (zh) |
CN (1) | CN105848687B (zh) |
GB (1) | GB201322456D0 (zh) |
WO (1) | WO2015091882A1 (zh) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108218651A (zh) * | 2018-02-27 | 2018-06-29 | 首都医科大学宣武医院 | 用于制备放射性药物的一次性辅助装置及方法 |
CN112203698A (zh) * | 2018-03-26 | 2021-01-08 | 通用电气医疗集团股份有限公司 | 制剂及制备方法 |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB201314936D0 (en) | 2013-08-21 | 2013-10-02 | Ge Healthcare Ltd | Radiolabelling method |
GB201322456D0 (en) * | 2013-12-18 | 2014-02-05 | Ge Healthcare Ltd | Radiotracer compositions and methods |
GB201805253D0 (en) * | 2018-03-29 | 2018-05-16 | Ge Healthcare Ltd Ip | Solid phase extraction |
GB201915206D0 (en) * | 2019-10-21 | 2019-12-04 | Ge Healthcare Ltd | Use of cyclodextrins as a radiostabilizer |
MX2022008571A (es) * | 2020-01-10 | 2022-11-30 | Real Isolates Llc | Metodos para la obtencion de compuestos a partir de un material vegetal o de hongos, composiciones respectivas y usos de los mismos. |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20090274623A1 (en) * | 2008-01-30 | 2009-11-05 | General Electric Company | In vivo imaging agents for met receptor tyrosine kinase |
WO2012087725A1 (en) * | 2010-12-21 | 2012-06-28 | Ge Healthcare Limited | Use of aniline iν the radiostabilization of oxime ligation |
CN103153350A (zh) * | 2010-08-18 | 2013-06-12 | 通用电气健康护理有限公司 | 肽放射性示踪剂组合物 |
WO2013174909A1 (en) * | 2012-05-24 | 2013-11-28 | Ge Healthcare Limited | Purification of [18f] - fluciclatide |
Family Cites Families (38)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5961955A (en) | 1997-06-03 | 1999-10-05 | Coulter Pharmaceutical, Inc. | Radioprotectant for peptides labeled with radioisotope |
GB0105224D0 (en) | 2001-03-02 | 2001-04-18 | Nycomed Amersham Plc | Improved peptide-chelate conjugates |
GB0116815D0 (en) | 2001-07-10 | 2001-08-29 | Nycomed Amersham Plc | Improved chelator conjugates |
TWI240632B (en) | 2001-07-30 | 2005-10-01 | Epix Medical Inc | Purified peptides for peptide-based multimeric targeted contrast agents |
JP2005527488A (ja) | 2001-12-27 | 2005-09-15 | バン アンデル リサーチ インスティチュート | Metを発現し、肝細胞増殖因子と結合する腫瘍のモノクローナル抗体画像化および治療 |
WO2004043497A1 (en) * | 2002-11-05 | 2004-05-27 | Ion Beam Applications S.A. | Stabilzation of radiopharmceuticals labeled with 18-f |
US7018614B2 (en) | 2002-11-05 | 2006-03-28 | Eastern Isotopes, Inc. | Stabilization of radiopharmaceuticals labeled with 18-F |
NO20030115D0 (no) | 2003-01-09 | 2003-01-09 | Amersham Health As | Kontrastmiddel |
EP1603935A4 (en) | 2003-03-03 | 2007-03-21 | Dyax Corp | SPECIFIC TO HGF RECEPTOR (cMET) BINDING PEPTIDES AND THEIR USE |
GB0305704D0 (en) | 2003-03-13 | 2003-04-16 | Amersham Plc | Radiofluorination methods |
GB0420344D0 (en) | 2004-09-14 | 2004-10-13 | Amersham Plc | Diagnostic compounds |
WO2007049620A1 (ja) | 2005-10-24 | 2007-05-03 | Fujifilm Ri Pharma Co., Ltd. | 肝細胞増殖因子受容体が関与する疾患の診断薬及び治療薬 |
CA2656487A1 (en) | 2006-07-07 | 2008-01-17 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Selective caspase inhibitors |
GB0615211D0 (en) | 2006-07-31 | 2006-09-06 | Ge Healthcare Uk Ltd | Asymmetric flouro-substituted polymethine dyes |
CA2662449A1 (en) | 2006-09-08 | 2008-03-13 | Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft | Compounds and methods for 18f labeled agents |
US7902332B2 (en) | 2006-11-30 | 2011-03-08 | General Electric Company | Fluorine-labeled compounds |
EP2099499A2 (en) | 2006-12-13 | 2009-09-16 | GE Healthcare AS | Synthesis of a radiofluorinated peptide using microwave activation technology |
BRPI0721424A2 (pt) | 2007-03-01 | 2014-03-25 | Bayer Schering Pharma Ag | Métodos de radiofluoração |
PL2146749T3 (pl) | 2007-05-16 | 2012-09-28 | Ge Healthcare As | Znaczone peptydy wiążące HGF przydatne do obrazowania |
GB0718967D0 (en) | 2007-09-28 | 2007-11-07 | Ge Healthcare Ltd | Peptide imaging agents |
GB0718957D0 (en) | 2007-09-28 | 2007-11-07 | Ge Healthcare Ltd | Optical imaging agents |
GB0716897D0 (en) | 2007-08-30 | 2007-10-10 | Univ Muenchen Tech | Cancer imaging and treatment |
GB0803477D0 (en) | 2008-02-26 | 2008-04-02 | Ge Healthcare As | Therapy selection method |
JP5399422B2 (ja) * | 2008-02-28 | 2014-01-29 | ジーイー・ヘルスケア・リミテッド | 市販の安価な化学薬品からのpeg−6成分の合成 |
US8435454B2 (en) * | 2009-07-09 | 2013-05-07 | Siemens Medical Solutions Usa, Inc. | Modular system for radiosynthesis with multi-run capabilities and reduced risk of radiation exposure |
JP5795311B2 (ja) | 2009-07-15 | 2015-10-14 | ネステク ソシエテ アノニム | 抗体ベースのアレイを使用する胃癌療法のための薬物選択 |
EP2287197A1 (en) | 2009-08-21 | 2011-02-23 | Pierre Fabre Medicament | Anti-cMET antibody and its use for the detection and the diagnosis of cancer |
GB0918321D0 (en) | 2009-10-20 | 2009-12-02 | Ge Healthcare As | Cyclic peptide synthesis |
CN104984372B (zh) | 2010-12-01 | 2018-11-09 | 通用电气健康护理有限公司 | 放射性缀合法 |
GB201020314D0 (en) | 2010-12-01 | 2011-01-12 | Ge Healthcare Ltd | Apoptosis pet imaging agents |
WO2012076697A1 (en) | 2010-12-09 | 2012-06-14 | Ge Healthcare Limited | Radiotracer compositions |
JP2014503547A (ja) | 2010-12-22 | 2014-02-13 | ジーイー・ヘルスケア・リミテッド | 18fを含有する有機ケイ素化合物で標識されたher2結合ペプチド |
GB201103696D0 (en) | 2011-03-04 | 2011-04-20 | Ge Healthcare Ltd | Technetium labelled peptides |
GB201121914D0 (en) | 2011-12-20 | 2012-02-01 | Ge Healthcare Ltd | Method for patient selection |
GB201202420D0 (en) | 2012-02-13 | 2012-03-28 | Ge Healthcare Ltd | Radiotracer compositions |
GB201314936D0 (en) | 2013-08-21 | 2013-10-02 | Ge Healthcare Ltd | Radiolabelling method |
GB201322451D0 (en) | 2013-12-18 | 2014-02-05 | Ge Healthcare Ltd | Purification method and compositions |
GB201322456D0 (en) * | 2013-12-18 | 2014-02-05 | Ge Healthcare Ltd | Radiotracer compositions and methods |
-
2013
- 2013-12-18 GB GBGB1322456.3A patent/GB201322456D0/en not_active Ceased
-
2014
- 2014-12-18 JP JP2016539089A patent/JP6824738B2/ja active Active
- 2014-12-18 WO PCT/EP2014/078609 patent/WO2015091882A1/en active Application Filing
- 2014-12-18 CN CN201480069324.9A patent/CN105848687B/zh active Active
- 2014-12-18 US US15/102,952 patent/US10300156B2/en active Active
- 2014-12-18 EP EP14814895.0A patent/EP3082879A1/en active Pending
-
2019
- 2019-04-04 US US16/375,223 patent/US11311636B2/en active Active
- 2019-07-04 JP JP2019124883A patent/JP2019206533A/ja not_active Withdrawn
-
2022
- 2022-03-15 US US17/695,810 patent/US20220202965A1/en active Pending
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20090274623A1 (en) * | 2008-01-30 | 2009-11-05 | General Electric Company | In vivo imaging agents for met receptor tyrosine kinase |
CN103153350A (zh) * | 2010-08-18 | 2013-06-12 | 通用电气健康护理有限公司 | 肽放射性示踪剂组合物 |
WO2012087725A1 (en) * | 2010-12-21 | 2012-06-28 | Ge Healthcare Limited | Use of aniline iν the radiostabilization of oxime ligation |
WO2013174909A1 (en) * | 2012-05-24 | 2013-11-28 | Ge Healthcare Limited | Purification of [18f] - fluciclatide |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108218651A (zh) * | 2018-02-27 | 2018-06-29 | 首都医科大学宣武医院 | 用于制备放射性药物的一次性辅助装置及方法 |
CN108218651B (zh) * | 2018-02-27 | 2023-11-03 | 首都医科大学宣武医院 | 用于制备放射性药物的一次性辅助装置及方法 |
CN112203698A (zh) * | 2018-03-26 | 2021-01-08 | 通用电气医疗集团股份有限公司 | 制剂及制备方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US11311636B2 (en) | 2022-04-26 |
EP3082879A1 (en) | 2016-10-26 |
US10300156B2 (en) | 2019-05-28 |
JP6824738B2 (ja) | 2021-02-03 |
US20190275182A1 (en) | 2019-09-12 |
WO2015091882A1 (en) | 2015-06-25 |
US20160303263A1 (en) | 2016-10-20 |
CN105848687B (zh) | 2020-06-09 |
JP2019206533A (ja) | 2019-12-05 |
JP2017502946A (ja) | 2017-01-26 |
US20220202965A1 (en) | 2022-06-30 |
GB201322456D0 (en) | 2014-02-05 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN105848687A (zh) | 放射性示踪剂组合物和方法 | |
CA2807491C (en) | F18 c-met binding cyclic peptide radiotracers and compositions thereof | |
CA2972058C (en) | Compositions and methods for imaging cancer | |
US20210330824A1 (en) | Purification method and compositions | |
CN103547291A (zh) | 锝标记的肽 | |
ES2929507T3 (es) | Método para marcar una molécula directora biológica mediante conjugación con un radioisótopo adecuado para formación de imágenes por PET o SPECT | |
CN105452202B (zh) | 放射性标记方法 | |
EP1553986B1 (en) | Conjugates of tc complexes and targeting moieties and their use in mri diagnostic |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |