CN105505838A - 一种免增菌的李斯特菌培养基 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种免增菌的李斯特菌培养基,属于检验微生物培养领域,每1L培养基原料中含有蛋白胨、牛肉膏、酵母浸膏、玉米淀粉、琼脂、氯化钠、磷酸二氢钠、多粘菌素、杆菌肽、葡萄糖酸锌、γ-羟基精氨酸、无菌抗凝羊血、灭菌去离子水。本发明与现有技术相比较,具有早期阳性分离率高的特点。
Description
技术领域
本发明涉及检验微生物培养领域,具体涉及一种免增菌的单增李斯特菌培养基。
背景技术
李斯特菌(也称李氏杆菌)为革兰氏阳性短杆菌,目前国际上公认的李斯特菌共有七个菌株,其中单增李斯特菌(L.monocytohenes,LM)是唯一能引起人类疾病的。LM是一种人畜共患病的病原菌。它能引起人、畜的李氏特菌病,感染后主要表现为败血症、脑膜炎和单核细胞增多。LM为兼性厌氧、无芽胞,一般不形成荚膜,但在营养丰富的环境中可形成荚膜。LM培养最适培养温度为35--37℃,在pH弱碱性(pH9.6)、氧分压低、二氧化碳张力高的条件下该菌生长良好。
虽然LM的营养要求不高,但由于LM的兼性厌氧和苛养性质,如样本中混有杂菌,且pH中性、常规空气条件下培养时,则会发生因需氧杂菌生长过快而很快覆盖了培养基,单增李斯特菌无法生长,结果延误诊疗时间。除此之外,LM在pH中性、常规空气状态下培养时,其生长速度较慢,一般要48~72h才会有阳性菌落生长,脓液或者粪便样品则往往还要样品先转种于增菌培养液(EB)中培养24h,然后取增菌液划线接种培养48h,方能有阳性菌落生长。由于上述苛养性质,导致临床对于疑似LM要求保留样本7d,以防止漏诊。但上述时间(72h)限制了LM培养结果在临床诊断上的应用价值。
发明内容
本发明的技术任务是针对以上现有技术的不足,提供一种配制简单、检出率高、免增菌的单增李斯特菌培养基。
本发明解决其技术问题的技术方案是:一种免增菌的李斯特菌培养基,其特征为,每1L培养基原料中含有蛋白胨6~10g;牛肉膏3~6g;酵母浸膏2~5g;玉米淀粉2~3g,琼脂10~12g;氯化钠5~5.5g;磷酸二氢钠1~3g;多粘菌素0.001~0.005g;杆菌肽0.001~0.003g;葡萄糖酸锌0.01~0.02g;γ-羟基精氨酸0.05~0.1g;无菌抗凝羊血20~30g;余量为灭菌去离子水。
上述培养基的制备方法为:称取蛋白胨、牛肉膏、酵母浸膏、玉米淀粉、琼脂、氯化钠、磷酸二氢钠,混匀后去离子水溶解,210℃灭菌15min,冷却到45℃,加入灭菌多粘菌素;灭菌杆菌肽;灭菌葡萄糖酸锌;灭菌γ-羟基精氨酸;无菌抗凝羊血混匀,灭菌去离子水定容到1L后分装。
本发明与现有技术相比较,具有检出可靠、单增李斯特菌分离率高的特点。配方特点如下:
1、基础培养基:所述的牛肉膏、蛋白胨、玉米淀粉提供碳源、氮源,酵母浸膏富含蛋白质、氨基酸、多肽、核苷酸、维生素、生长因子、微量元素等营养成分,为单增李斯特菌的繁殖和生长提供均衡的营养元素;氯化钠维持均衡的渗透压;琼脂为培养基的凝固剂;磷酸二氢钠为缓冲剂;无菌抗凝羊血提供能量环境;
2、抑菌剂:多粘菌素抑制革兰氏阴性菌的生长;杆菌肽(Bacitracin),实验室研究表明杆菌肽可以抑制革兰阳性和阴性球菌、肺炎双球菌、葡萄球菌、淋球菌、脑膜炎双球菌等杂菌的生长,但该浓度下由于对李斯特菌属无抗菌抑菌作用,因此提高了LM的分离率;
3、生长因子:通过实验将同一LM菌株接种到2个MMA培养基上,其中一个MMA培养基添加0.01%灭菌光谷甘肽,于37℃、PH7.0、空气气氛下培养,48小时后观察菌株,发现添加光谷甘肽的MMA培养基有小的疑似菌落,鉴定后为LM,没有添加光谷甘肽的MMA培养基未发现LM疑似菌落,其原因可能在于光谷甘肽可以降低氧化还原电势,有利于细胞生长、分化;
4、特殊营养剂:葡萄糖酸锌为营养剂,发明人发现,在培养基中加入一定浓度的锌离子,目标菌LM的生长状态好于对照组,因此推论锌离子有助于该菌的生长;而γ-羟基精氨酸为激活剂,可以促进单增李斯特菌对矿物质的摄取。
具体实施方式
以下结合实际情况,对本发明的具体实施方式作详细说明。
实施例1,每1L培养基原料中含有:蛋白胨6g;牛肉膏6g;酵母浸膏2g;玉米淀粉3g,琼脂10g;氯化钠5g;磷酸二氢钠3g;多粘菌素0.001g;杆菌肽0.003g;光谷甘肽0.5g;无菌抗凝羊血20g;余量为灭菌去离子水。上述培养基的制备方法为:称取蛋白胨、牛肉膏、酵母浸膏、玉米淀粉、琼脂、氯化钠、磷酸二氢钠,混匀后去离子水溶解,210℃灭菌15min,冷却到45℃,加入灭菌多粘菌素;灭菌杆菌肽;灭菌光谷甘肽;无菌抗凝羊血混匀,灭菌去离子水定容到1L后分装。
实施例2,每1L培养基原料中含有:蛋白胨8g;牛肉膏4g;酵母浸膏3g;玉米淀粉2g,琼脂11g;氯化钠5.5g;磷酸二氢钠1g;多粘菌素0.003g;杆菌肽0.002g;葡萄糖酸锌0.02g;γ-羟基精氨酸0.1g;无菌抗凝羊血25g;余量为灭菌去离子水。上述培养基的制备方法为:称取蛋白胨、牛肉膏、酵母浸膏、玉米淀粉、琼脂、氯化钠、磷酸二氢钠,混匀后去离子水溶解,210℃灭菌15min,冷却到45℃,加入灭菌多粘菌素;灭菌杆菌肽;灭菌葡萄糖酸锌;灭菌γ-羟基精氨酸;无菌抗凝羊血混匀,灭菌去离子水定容到1L后分装。
实施例3,每1L培养基原料中含有:蛋白胨10g;牛肉膏3g;酵母浸膏5g;玉米淀粉2g,琼脂12g;氯化钠5g;磷酸二氢钠2g;多粘菌素0.005g;杆菌肽0.001g;光谷甘肽0.1g;葡萄糖酸锌0.01g;γ-羟基精氨酸0.05g;无菌抗凝羊血30g;余量为灭菌去离子水。上述培养基的制备方法为:称取蛋白胨、牛肉膏、酵母浸膏、玉米淀粉、琼脂、氯化钠、磷酸二氢钠,混匀后去离子水溶解,210℃灭菌15min,冷却到45℃,加入灭菌多粘菌素;灭菌杆菌肽;灭菌光谷甘肽;灭菌葡萄糖酸锌;灭菌γ-羟基精氨酸;无菌抗凝羊血混匀,灭菌去离子水定容到1L后分装。
本发明所得单增李斯特菌培养基具有检出可靠、单增李斯特菌分离率高的特点,为临床资料充分证明,有关资料如下。
1对象与方法。
1.1培养基制备:实验组共设I、II、III三个实验组,分别使用实施例1、实施例2、实施例3所得培养基,对照组为李氏菌选择性培养基(MMA),其成分(g/L):胰蛋白胨5.0;多价胨5.0;牛肉浸粉3.0;葡萄糖1.0;氯化钠5.0;磷酸氢二钠1.0;甘氨酸10.0;氯化锂0.5;苯乙醇2.5;琼脂15.0;蒸馏水定容为1L,分装倾入无菌平皿备用。
1.2菌株来源及菌悬液的制备:LM标准菌株由市疾控中心菌种保藏室提供,常规复苏增菌分纯后制成100CFU/ml的LM菌悬液。
1.3粪便样本处理:取20份粪便样本悬浮液2ml,分别加入LM菌悬液2ml,混匀。
1.4接种及培养:分别取LM菌悬液和处理后的粪便样本,各自用接种环分区划线接种于实验I组、实验II组、实验III组和对照组培养基。35℃下,大气环境保温培养,观察菌落生长特征,分别于48h和96h,挑取细小菌落进行涂片,革兰氏染色,显微镜镜检及氧化氢酶实验,行菌属鉴定及荧光定量PCR检测。其中菌属鉴定阳性判断标准依从《临床微生物学诊断与图解》。
2结果:
2.1LM菌悬液培养结果比较:培养48h及96h阳性检出情况见下表,
分组 | 总数(例) | 48h阳性检出(例) | 96h阳性检出(例) |
实验I组 | 20 | 18 | 20 |
实验II组 | 20 | 17 | 20 |
实验III组 | 20 | 19 | 20 |
对照组 | 20 | 11 | 18 |
上述结果可以看出,培养48h后,各实验组与对照组阳性检出率比较均具有明显差异(P<0.05),而96h时,各组间阳性检出率差异无统计学意义(P>0.05)。
2.2LM菌悬液处理后的粪便样本培养结果比较:培养48h及96h阳性检出情况见下表,
分组 | 总数(例) | 48h阳性检出(例) | 96h阳性检出(例) |
实验I组 | 20 | 16 | 16 |
实验II组 | 20 | 16 | 18 |
实验III组 | 20 | 18 | 19 |
对照组 | 20 | 7 | 12 |
上述结果可以看出,混有杂菌的LM样本,培养48h后,各实验组与对照组阳性检出率比较均具有极其显著的差异(P<0.01),96h时,各实验组阳性检出率高于对照组,但差异无统计学意义(P>0.05)。
3.结论:本发明的培养基无需额外增菌,也能够在48h的时间点得到高效的阳性检出率,提高大气培养环境下早期阳性分离率,从而缩短确诊时间。尤其是对于粪便等含有杂菌的样本,可以缓解杂菌对于单增李斯特菌阳性生长的不良影响,增加分离率。
Claims (1)
1.一种免增菌的李斯特菌培养基,其特征在于,每1L培养基原料中含有蛋白胨6~10g;牛肉膏3~6g;酵母浸膏2~5g;玉米淀粉2~3g,琼脂10~12g;氯化钠5~5.5g;磷酸二氢钠1~3g;多粘菌素0.001~0.005g;杆菌肽0.001~0.003g;;葡萄糖酸锌0.01~0.02g;γ-羟基精氨酸0.05~0.1g;无菌抗凝羊血20~30g;余量为灭菌去离子水。
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