CN105505831A - 一种用于污水净化的复合微生物菌剂及制备方法 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种污水净化的复合微生物菌剂及其制备方法。所述菌剂含有芽孢菌、酵母菌、放线菌、光合细菌，且各种活菌的重量比为10～30：20～40：10～20：40～60。所述制备方法为：将各种菌种分别接种到装有培养基的摇瓶中活化培养，将活化的菌种接种到发酵罐内扩大培养，然后将扩大培养的各菌液按比例混合即制备了污水净化的复合微生物生菌剂。该复合微生物菌剂具有适应性强，快速形成优势菌群，能显著降低污水中COD、氨氮、总磷等指标，且抑制有害微生物的生长，加速分解水中残存饲料、动植物残体等有机物，具有显著的净化水质作用。

Description

一种用于污水净化的复合微生物菌剂及制备方法
技术领域
本发明涉及一种污水净化的复合微生物菌剂，尤其涉及的是一种用于污水净化的复合微生物菌剂及制备方法。
背景技术
随着经济的发展，水环境污染已经成为制约经济发展和人们生活质量的主要因素之一，微生物菌剂在水环境生态恢复和水环境净化等方面有非常重要的作用。利用微生物菌剂进行污染水体的修复、净化过程中很少会产生废物和排放污染物，这无疑是我国日益污染恶化的水环境提供了一个良好的生态治理方法，其具有广阔的市场和应用前景。微生物生态菌剂对水体中主要污染元素磷、重金属和有机化合物都有较好的处理能力，且具有较高的生态价值。因此微生物菌剂广泛用于农业、工业等污水净化方面，现有的用于水处理的微生物生态制剂，虽然取得一些处理效果，但是普遍存在微生物培养时间长、持续时间短、微生物菌种单一等缺点，本发明的复合微生物菌剂能有效解决上述污水净化过程中出现的问题。
发明内容
本发明的目的在于针对现有技术的不足，提供一种污水净化的复合微生物菌剂及其制备方法，该制剂能有效的降低污水中磷、重金属污染物、有机化合物等，同时克服了现有微生物制剂中普遍存在微生物培养时间长、持续时间短、微生物菌种单一等缺点。该复合微生物菌剂发酵生产工艺简单，微生物菌群容易获得，净化水质持续时间长。
本发明的目的是通过以下技术效果实现的：一种污水净化的复合微生物菌剂，该菌剂为：由10～30重量份的芽孢菌，20～40重量份的酵母菌，10～20重量份的放线菌，40～60重量的份光合细菌混合组成的菌液。其中活菌含量≥1x108cfu/ml。
进一步地，所述芽孢菌为枯草芽孢杆菌。
进一步地，所述酵母菌为酿酒酵母菌。
进一步地，所述放线菌为链霉菌。
进一步地，所述光合细菌为沼泽红假单胞菌。
一种污水净化的复合微生物菌剂的制备方法，包括以下步骤：
分别将芽孢菌、酵母菌、放线菌、光合细菌接种至装有培养基摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积的40％)，然后将活化培养好的菌种分别接种到发酵罐中进行发酵扩大培养，将扩大培养得到的各菌液，按照芽孢菌10～30份，酵母菌20～40份，放线菌10～20份，光合细菌40～60份的重量比，混合得到所述的污水净化生态平衡剂。
进一步地，所述芽孢菌通过以下步骤制备得到：
(1)将芽孢菌接种至装有培养基的摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积40％)，所述活化培养基的配方为蛋白胨10g/L，氯化钠5g/L和牛肉膏5g/L，培养温度为35～40℃，转速180～220rmp，培养时间24～48h；
(2)将活化培养好的芽孢杆菌菌种接种至装有发酵培养基的发酵罐中(发酵培养基的体积为发酵罐容积的50～60％)，接种的菌液与培养基的体积比为1％～3％，所述培养基发配方为：葡萄糖5g/L，玉米粉10g/L，硫酸铵1g/L，磷酸二氢钾0.5g/L，硫酸镁0.2g/L，硫酸锰0.2g/L，培养温度35～40℃，发酵转速350～450rmp，发酵时间24～48h。
进一步地，所述酵母菌通过以下步骤制备得到：
(1)将酵母菌接种至装有培养基的摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积40％)，所述活化培养基的配方为酵母粉5g/L，蛋白胨10g/L，葡萄糖10g/L，培养温度为25～30℃，转速180～220rmp，培养时间24～48h；
(2)将活化培养好的乳杆菌菌种接种至装有发酵培养基的发酵罐中(发酵培养基的体积为发酵罐容积的50～60％)，接种的菌液与培养基的体积比为1％～3％，所述培养基葡萄糖15～30g/L，玉米粉5～20g/L，硫酸铵0.5～4g/L，磷酸二氢钾2～10g/L，硫酸镁0.1～0.5g/L，硫酸锰0.1～0.5g/L，尿素1～10g/L，培养温度25～30℃，发酵转速350～450rmp，发酵时间24～48h。
进一步地，所述放线菌通过以下步骤制备得到：
(1)将放线菌接种至装培养基的摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积40％)，所述活化培养基的配方为可溶性淀粉20g/L，硝酸钾1g/L，磷酸氢二钾0.5g/L，氯化钠0.5g/L，硫酸镁0.5g/L，硫酸亚铁0.01g/L，培养温度为25～30℃，转速180～220rmp，培养时间24～48h；
(2)将活化培养好的放线菌菌种接种至装有发酵培养基的发酵罐中(发酵培养基的体积为发酵罐容积的50～60％)，接种的菌液与培养基的体积比为1％～3％，所述培养基葡萄糖15～30g/L，玉米粉5～20g/L，磷酸氢二钾0.1～0.5g/L，氯化钠0.5～5g/L，硫酸钠0.1～0.5g/L，硫酸亚铁0.01～0.05g/L，碳酸钙1～5g/L，培养温度25～30℃，发酵转速350～450rmp，发酵时间24～48h。
进一步地，所述的光合细菌通过以下步骤制备得到：
(1)将光合细菌接种至装有培养基的摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积40％)，所述的活化培养基配方为氯化铵0.1g/L，碳酸氢钠0.1g/L，磷酸二氢钠0.02g/L，乙酸钠0.5g/L,，硫酸镁0.02g/L，氯化钠0.2g/L，酵母膏0.2g/L，培养温度25～30℃，光照强度3000～4000勒克斯(LX)，每12h震动摇匀。
(2)将活化培养好的光合细菌菌种接种至装有发酵培养基的发酵罐中(发酵培养基的体积为发酵罐容积的60～80％)，接种的菌液与培养基的体积比为1％～3％，所述培养基乙酸钠2g/L，蛋白胨0.05g/L，碳酸氢钠0.1g/L，硫酸镁0.02g/L，酵母膏0.02g/L，氯化钠0.2g/L，硫代硫酸钠0.4g/L，培养温度25～30℃，光照强度3000～4000勒克斯(LX)，每12h搅拌一次。
本发明的有益效果在于：本发明的菌剂由芽孢菌、酵母菌、放线菌和光合细菌按照重量比10～30：20～40：10～20：40～60组成，使得各种菌相辅相成，具有适应性强，快速形成优势菌群，能显著降低污水中COD、氨氮、总磷等指标，且抑制有害微生物的生长，加速分解水中有机物，具有显著的净化水质作用。
具体实施实例
为了进一步阐释本发明的技术手段，下面结合具体实施例来说明。
实施例1
一种污水净化的复合微生物菌剂，由以下重量份数的原料混合制备而成：
分别将芽孢菌、酵母菌、链霉菌、光合细菌的菌种接种到装有培养基的体积为摇瓶容积的40％的摇瓶中活化培养，将活化培养好的菌种接种到发酵罐中进行扩大培养，然后将扩大培养得到的菌液按照芽孢菌15份，酵母菌20份，链霉菌15份，光合细菌50份的重量比，混合得到所述的一种污水净化的复合微生物菌剂。
实施例2
一种污水净化的复合微生物菌剂，由以下重量份数的原料混合制备而成：
分别将芽孢菌、酵母菌、链霉菌、光合细菌的菌种接种到装有培养基的体积为摇瓶容积的40％的摇瓶中活化培养，将活化培养好的菌种接种到发酵罐中进行扩大培养，然后将扩大培养得到的菌液按照芽孢菌10份，酵母菌20份，链霉菌10份，光合细菌60份的重量比，混合得到所述的一种污水净化的微生物生态平衡剂。
效果实施例
采用实施例1制备得到用于污水净化的复合微生物菌剂在实验室做污水净化实验。
取9个1000ml的摇瓶，分三组，每个摇瓶中取400ml污水，实验组1添加0.2％光合菌菌剂，实验组2添加0.2％的污水净化的复合微生物菌剂，对照组不添加任何东西，纱布包好，放置在恒温振荡光照培养箱中，24h检测污水指标。
实验结果见表1，其中氨氮含量采用纳氏试剂分光光度计(HJ535-2009)测定，总磷采用钼酸铵分光光度计法(GB11893-89)测定，COD检测采用重铬酸钾-硫酸消解法(GB11914-89)。
检测指标 氨氮下降％ 总磷下降％ COD下降％
对照组 3.2 1.3 0.2
实验组1 29.9 10.3 25.1
实验组2 61.3 44.1 42.5

Claims (10)

1.一种污水净化的复合微生物菌剂，该生态平衡剂为：由10～30重量份的芽孢菌，20～40重量份的酵母菌，10～20重量份的放线菌，40～60重量的份光合细菌混合组成的菌液。所述菌液中，活菌含量≥1x108cfu/ml。
2.根据权利要求1所述的一种污水净化的复合微生物菌剂，其特征在于，所述芽孢菌为枯草芽孢杆菌。
3.根据权利要求1所述的一种污水净化的复合微生物菌剂，其特征在于，所述酵母菌为酿酒酵母菌。
4.根据权利要求1所述的一种污水净化的复合微生物菌剂，其特征在于，所述放线菌为链霉菌。
5.根据权利要求1所述一种用于污水净化的复合微生物菌剂，其特征在于，所述光合细菌为沼泽红假单胞菌。
6.一种污水净化的复合微生物菌剂的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：
分别将芽孢菌、酵母菌、放线菌、光合细菌接种至装有培养基摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积的40％)，然后将活化培养好的菌种分别接种到发酵罐中进行发酵扩大培养，将扩大培养得到的各菌液，按照芽孢菌10～30份，酵母菌20～40份，放线菌10～20份，光合细菌40～60份的重量比，混合得到所述的污水净化的复合微生物菌剂。
7.如权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述芽孢菌通过以下步骤制备得到：
(1)将芽孢菌接种至装有培养基的摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积40％)，所述活化培养基的配方为蛋白胨10g/L，氯化钠5g/L和牛肉膏5g/L，培养温度为35～40℃，转速180～220rmp，培养时间24～48h；
(2)将活化培养好的芽孢杆菌菌种接种至装有发酵培养基的发酵罐中(发酵培养基的体积为发酵罐容积的50～60％)，接种的菌液与培养基的体积比为1％～3％，所述培养基发配方为：葡萄糖5g/L，玉米粉10g/L，硫酸铵1g/L，磷酸二氢钾0.5g/L，硫酸镁0.2g/L，硫酸锰0.2g/L，培养温度35～40℃，发酵转速350～450rmp，发酵时间24～48h。
8.如权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述酵母菌通过以下步骤制备得到：
(1)将酵母菌接种至装有培养基的摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积40％)，所述活化培养基的配方为酵母粉5g/L，蛋白胨10g/L，葡萄糖10g/L，培养温度为25～30℃，转速180～220rmp，培养时间24～48h；
(2)将活化培养好的乳杆菌菌种接种至装有发酵培养基的发酵罐中(发酵培养基的体积为发酵罐容积的50～60％)，接种的菌液与培养基的体积比为1％～3％，所述培养基葡萄糖15～30g/L，玉米粉5～20g/L，硫酸铵0.5～4g/L，磷酸二氢钾2～10g/L，硫酸镁0.1～0.5g/L，硫酸锰0.1～0.5g/L，尿素1～10g/L，培养温度25～30℃，发酵转速350～450rmp，发酵时间24～48h。
9.如权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述放线菌通过以下步骤制备得到：
(1)将放线菌接种至装培养基的摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积40％)，所述活化培养基的配方为可溶性淀粉20g/L，硝酸钾1g/L，磷酸氢二钾0.5g/L，氯化钠0.5g/L，硫酸镁0.5g/L，硫酸亚铁0.01g/L，培养温度为25～30℃，转速180～220rmp，培养时间24～48h；
(2)将活化培养好的放线菌菌种接种至装有发酵培养基的发酵罐中(发酵培养基的体积为发酵罐容积的50～60％)，接种的菌液与培养基的体积比为1％～3％，所述培养基葡萄糖15～30g/L，玉米粉5～20g/L，磷酸氢二钾0.1～0.5g/L，氯化钠0.5～5g/L，硫酸钠0.1～0.5g/L，硫酸亚铁0.01～0.05g/L，碳酸钙1～5g/L，培养温度25～30℃，发酵转速350～450rmp，发酵时间24～48h。
10.根据权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述的光合细菌通过以下步骤制备得到：
(1)将光合细菌接种至装有培养基的摇瓶中活化培养(培养基的体积为摇瓶容积40％)，所述的活化培养基配方为氯化铵0.1g/L，碳酸氢钠0.1g/L，磷酸二氢钠0.02g/L，乙酸钠0.5g/L,，硫酸镁0.02g/L，氯化钠0.2g/L，酵母膏0.2g/L，培养温度25～30℃，光照强度3000～4000勒克斯(LX)，每12h震动摇匀。
(2)将活化培养好的光合细菌菌种接种至装有发酵培养基的发酵罐中(发酵培养基的体积为发酵罐容积的60～80％)，接种的菌液与培养基的体积比为1％～3％，所述培养基乙酸钠2g/L，蛋白胨0.05g/L，碳酸氢钠0.1g/L，硫酸镁0.02g/L，酵母膏0.02g/L，氯化钠0.2g/L，硫代硫酸钠0.4g/L，培养温度25～30℃，光照强度3000～4000勒克斯(LX)，每12h搅拌一次。
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