CN105288602A - 具有γ干扰素的抗原呈递癌症疫苗 - Google Patents

Abstract

本发明提供治疗黑色素瘤的试剂、方法和试剂盒。该试剂包括干扰素-γ（IFN-γ）应答的黑色素瘤细胞，其中所述细胞是自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞，并且其中所述细胞表达MHC？II类分子。在另一方面，所述试剂包括负载了干扰素-γ应答的、非凋亡性的、表达MHC？II类的黑色素瘤细胞的树突细胞。

Description

具有γ干扰素的抗原呈递癌症疫苗

本申请为分案申请，原申请的申请日为2012年10月22日，申请号为201280051821.7(PCT/US2012/061294)，发明名称为“具有γ干扰素的抗原呈递癌症疫苗”。

相关申请

本申请要求享有2011年10月20日提交的美国临时申请No.61/549681和2012年2月2日提交的美国临时申请No.61/594304的全部巴黎公约优先权及其权益，上述两篇临时申请通过引用并入本文，如同其全部内容在本文中阐述一样。

技术领域

本发明涉及治疗黑色素瘤、筛选适合治疗的受试者、物质组合物、方法和试剂盒。

发明背景

癌症的特征是缺乏对癌症有效的免疫应答。免疫应答的缺乏可由以下事实引起：例如许多肿瘤抗原是“自身抗原”；肿瘤细胞缺乏MHC的表达以及由此产生的肿瘤细胞缺乏肿瘤抗原的呈递；巨噬细胞与肿瘤的关联，该巨噬细胞表达降低免疫应答的细胞因子；以及调节性T细胞(Tregs)的免疫抑制活性。对肿瘤的免疫应答的缺乏还可以由以下事实引起：肿瘤细胞倾向于不表达那些刺激先天性免疫应答的分子，即刺激Toll样受体(TLRs)或核苷酸结合寡聚化结构域(NOD)样受体的分子。癌症包括实体肿瘤以及诸如白血病和骨髓发育不良综合征的血液癌症。

免疫系统包括细胞免疫、体液免疫、补体反应(complementresponse)。细胞免疫包括多种细胞和多种活动的网络，涉及树突细胞、CD8⁺T细胞(细胞毒性T细胞；细胞毒性淋巴细胞)和CD4⁺T细胞(辅助T细胞)。树突细胞(Dendriticcells，DCs)获得多肽抗原，其中这些抗原可以从DC的外部获得，也可以在DC的内部由感染生物体来生物合成。DC处理多肽，得到长度约10个氨基酸的肽，并将这些肽传输给MHCI类或MHCII类以形成复合体，并将复合体运(shuttles)到DC的表面。当携带MHCI类/肽复合体的DC与CD8⁺T细胞接触时，结果是CD8⁺T细胞的活化和增殖。对于MHCII类所起的作用，当携带MHCII类/肽复合体的DC与CD4⁺T细胞接触时，其结果是CD4⁺T细胞的活化和增殖(Munz等(2010)Curr.Opin.Immunol.22：89-93；Monaco(1995)J.LeukocyteBiol.57：543-547；Robinson等(2002)Immunology105：252-262)。尽管呈递抗原给T细胞的树突细胞能够“活化”该T细胞，活化的T细胞可能不能够具有有效的免疫应答。CD8⁺T细胞的有效的免疫应答通常需要DC通过一次或多次多个交互来在先刺激(priorstimulation)。这些交互包括CD4⁺T细胞与DC的直接接触(通过CD4⁺T细胞的CD40配体与DCs的CD40受体接触的方式)，或者TLR激动剂与树突细胞的toll样受体(TLRs)中的一个受体的直接接触。

体液免疫涉及B细胞和抗体。B细胞被转化成浆细胞，浆细胞表达并分泌抗体。初始B细胞的区别在于它们不表达标志物(marker)CD27，而抗原特异性B细胞则表达CD27(Perez-Andres等(2010)CytometryPartB78B(Suppl.1)S47-S60)。分泌的抗体随后可以与驻留在肿瘤细胞表面上的肿瘤抗原结合。结果是受感染的细胞或肿瘤细胞被抗体标记。随着抗体与受感染的细胞或肿瘤细胞的结合，结合的抗体介导(mediates)杀灭受感染的细胞或肿瘤细胞，其中杀灭细胞是由NK细胞进行的。尽管并没有以配置T细胞来识别靶抗原的方式对NK细胞进行配置来识别特定的靶抗原，但是NK细胞与抗体的恒定区域结合的能力使得NK细胞能够特异性地杀灭抗体所标记的细胞。NK细胞对抗体的识别是由与抗体的Fc部分结合的(NK细胞的)Fc受体介导的。这种类型的杀灭被称为抗体依赖性细胞毒作用(ADCC)。NK细胞也可以不依赖ADCC机理来杀灭细胞，在这种情况下这种杀灭需要在靶细胞中MHCI类的表达损失或缺乏(参见例如Caligiuri(2008)Blood112：461-469)。

可以使用“迟发型超敏反应”(delayedtypehypersensitivityresponse)技术来区分主要涉及细胞免疫的免疫应答或主要涉及体液免疫的免疫应答。迟发型超敏反应的阳性信号表明细胞应答(参见，例如Roychowdhury等(2005)AAPSJ.E834-E846)。

自噬是一个稳态过程，细胞溶质(cytosolic)成分和细胞器通过该过程被输送到溶酶体降解。自噬也与细胞内病原体的先天性免疫应答和适应性免疫应答有关，细胞溶质抗原借助于细胞内病原体而被负载到主要组织相容性复合体(majorhistocompatibilitycomplex，MHC)II类分子上，用于CD4⁺T细胞识别。

说明

本文中使用时，包括所附权利要求书中使用时，除文本另有明确说明外，诸如“一个”、“一种”(“a”和“an”)和“所述”的词语的单数形式包括其相应的复数指示物。本文中所引用的所有参考文献通过引用并入本文，并入的程度如同明确且单独地指出各个出版物、专利、公开的专利申请和序列表以及在所述公开和专利文献中的图片和照片通过引用并入本文一样。

发明概述

本发明提供制备树突细胞疫苗的方法，其包括用防止细胞分裂的试剂处理从第一受试者获得的黑色素瘤细胞，用IFN-γ或IFN-γ模拟物(mimetic)处理黑色素瘤细胞，选择自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞，并且将所选择的黑色素瘤细胞与来自相同第一受试者的自体树突细胞接触。本发明还提供包含通过上述方法所制得的树突细胞疫苗的组合物。本发明还提供的是刺激对黑色素瘤特异性抗原的免疫应答的方法，其包括向患有黑色素瘤的受试者施用/给药(administering)上述组合物。

疫苗包含来自患有黑色素瘤的给定受试者的哺乳动物树突细胞群落，并且其中受试者含有黑色素瘤细胞，其中当在体外用IFN-γ或IFN-γ模拟物处理时，受试者所包含的黑色素瘤细胞包括自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞，其中树突细胞包含黑色素瘤特异性肽抗原，其中所述黑色素瘤特异性肽抗原被树突细胞从所述黑色素瘤细胞(或者在所述黑色素瘤细胞)体外获得，其中树突细胞所包含的超过60％的黑色素瘤特异性肽来自自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞，其中树突细胞所包含的小于40％的黑色素瘤特异性肽来自非自噬性和凋亡性的黑色素瘤细胞，并且其中树突细胞和黑色素瘤细胞来自相同的受试者。本发明还提供上述树突细胞群落，其中通过粘附到表面来获得自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，超过80％的黑色素瘤特异性肽来自自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞，并且其中小于20％的黑色素瘤特异性肽来自非自噬性和凋亡性的黑色素瘤细胞。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，超过90％的黑色素瘤特异性肽来自自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞，并且其中小于10％的黑色素瘤特异性肽来自非自噬性和凋亡性的黑色素瘤细胞。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，基本上所有的黑色素瘤特异性肽均来自不能细胞分裂的黑色素瘤细胞。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，基本上所有的黑色素瘤特异性肽来自由于黑色素瘤细胞受到辐照而不能细胞分裂的黑色素瘤细胞。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，基本上所有的黑色素瘤特异性肽来自由于黑色素瘤细胞的染色体被核酸交联剂交联而不能细胞分裂的黑色素瘤细胞。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，所有的黑色素瘤特异性肽来自IFN-γ处理过或IFN-γ模拟物处理过的黑色素瘤细胞。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，所有的黑色素瘤特异性肽来自未经IFN-γ处理过或未经IFN-γ模拟物处理过的黑色素瘤细胞。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，存在来自自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞的第一数目的黑色素瘤特异性肽，并且其中存在来自非自噬性和凋亡性的黑色素瘤细胞的第二数目的黑色素瘤特异性肽，并且其中所述第一数目和第二数目二者均指的是黑色素瘤特异性抗原类的数目，黑色素瘤特异性抗原类是S-100、HMB-45、Mel-2、Melan-A、Mel-5、MAGE-1、MART-1或酪氨酸酶中的一种，并且其中所述超过60％是从第一数目获得的，并且其中所述小于40％是从第二数目获得的。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，存在来自自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞的第一数目的黑色素瘤特异性肽，并且其中存在来自非自噬性和凋亡性的黑色素瘤细胞的第二数目的黑色素瘤特异性肽，并且其中所述第一数目和第二数目二者均指的是黑色素瘤特异性抗原类的数目，黑色素瘤特异性抗原类是S-100、HMB-45、Mel-2、Melan-A、Mel-5、MAGE-1、MART-1或酪氨酸酶中的两种，并且其中所述超过60％是从第一数目获得的，并且其中所述小于40％是从第二数目获得的。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，存在来自自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞的第一数目的黑色素瘤特异性肽，并且其中存在来自非自噬性和凋亡性的黑色素瘤细胞的第二数目的黑色素瘤特异性肽，并且其中所述第一数目和第二数目二者均指的是黑色素瘤特异性抗原类的数目，黑色素瘤特异性抗原类是S-100、HMB-45、Mel-2、Melan-A、Mel-5、MAGE-1、MART-1或酪氨酸酶中的三种，并且其中所述超过60％是从第一数目获得的，并且其中所述小于40％是从第二数目获得的。其他实施方式使用上述抗原中的四种、五种、六种、七种或八种。本发明还包含完全不同的黑色素瘤特异性抗原的用途。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，基本上所有黑色素瘤特异性肽来自经IFN-γ处理的黑色素瘤细胞。

本发明公开了一种疫苗，其中在某些情况下，基本上所有黑色素瘤特异性肽来自在体外经处理而不能细胞分裂的黑色素瘤细胞。本发明还包括上述疫苗，其中给定受试者是人类受试者。

此外，本发明提供疫苗，其中给定受试者是非人的哺乳动物。

本发明公开了刺激对黑色素瘤特异性抗原的免疫应答的方法，其包括向受试者施用免疫刺激量的上述疫苗。

本发明公开了一种方法，其中受刺激的免疫应答包括CD4⁺T细胞应答、CD8⁺T细胞应答和B细胞应答中的一种或多种。

本发明公开了一种方法，其中通过ELISPOT测定、通过细胞内细胞因子染色测定、通过四聚体测定、或者通过检测抗原特异性抗体的产生来测定CD4⁺T细胞应答、CD8⁺T细胞应答或B细胞应答。

本发明公开了一种方法，其中免疫应答包括含有2年总生存率(OS)的生存时间，并且其中2年总生存率至少为60％。

此外，本发明提供了上述方法，其中所述施用包括皮下注射疫苗。

本发明公开了一种方法，其中施用包括将每周给予的疫苗注射三个月，然后每月给予的疫苗注射五个月。

本发明公开了制备树突细胞疫苗的方法。

本发明公开了制备树突细胞疫苗的方法，该树突细胞疫苗包含来自相同受试者的黑色素瘤细胞和树突细胞，其中用防止细胞分裂的试剂处理一种或多种(一个或多个)黑色素瘤细胞，其中用干扰素-γ(IFN-γ)或IFN-γ模拟物在体外处理所述一种或多种黑色素瘤细胞，其中选择自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞，其中丢弃非自噬性和凋亡性的黑色素瘤细胞，并且其中向一种或多种自体树突细胞提供所述自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞，或者其中向一种或多种自体树突细胞提供衍生自所述自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞的肽。

本发明公开包含至少一种经干扰素(IFN)-γ处理的来自第一受试者的黑色素瘤细胞和至少一种来自相同第一受试者的抗原呈递细胞(APCs)的组合物，其中黑色素瘤细胞是：自噬性的；非凋亡性的；并且表达MHCII类分子。在另一方面，本发明包括上述组合物，其中经IFN-γ处理的黑色素瘤细胞负载到APC中；以及上述组合物，其中经IFN-γ处理的黑色素瘤细胞未负载到APC中。在另一方面，本发明包含上述组合物，其中黑色素瘤细胞来自患有I期(StageI)、II期(StageII)、III期(StageIII)或IV期(StageIV)黑色素瘤的受试者。此外，本发明涉及上述组合物、相关的试剂盒和相关的方法，其中APC包含至少一种树突细胞。

在一个方面，本发明的药物组合物、试剂和相关的方法利用癌症细胞的制剂，该制剂在IFN-γ处理后为7-AAD阴性并且annexinV阴性。这种群落(population)的非限制性例子可以是，例如约99％7-AAD阴性和约99％annexinV阴性、或者至少约95％7-AAD阴性和约95％annexinV阴性、或者至少约90％7-AAD阴性和约90％annexinV阴性。

此外，本发明包含上述组合物，其中自噬是通过如下测试证明的，该测试测定微管相关蛋白轻链3(LC3)；以及上述组合物，其中使用7-氨基放线菌素D(7-AAD)试剂或annexin(膜联蛋白)试剂中至少一种来证明细胞是非凋亡性的。

在方法方面，本发明提供制造如上所述组合物的方法，其包括从第一受试者中去除至少一种黑色素瘤细胞，从第一受试者中去除至少一种APC，并且允许黑色素瘤细胞与APC接触；以及刺激对受试者或患者中黑色素瘤的免疫应答的方法，其包含向受试者施用上述组合物。

本发明涉及一种方法，其中来自患者的黑色素瘤细胞是非凋亡性的，是自噬性的，并且其中黑色素瘤细胞通过表达MHCII类分子来对加入的IFN-γ做出应答；以及上述方法，其中在负载到抗原呈递细胞上之前，辐照黑色素瘤细胞。

本发明涉及治疗黑色素瘤患者中黑色素瘤的方法，其包括确定黑色素瘤细胞对IFN-γ的促凋亡作用不敏感，并给受试者施用一种或多种如上组合物。

在另一方面，本发明提供刺激或增强对黑色素瘤患者中黑色素瘤的免疫应答的方法，其包括确定黑色素瘤细胞对IFN-γ的促凋亡作用不敏感，并给受试者施用一种或多种如上所述的组合物。还提供上述方法，其中免疫应答是体液免疫应答、细胞免疫应答和先天性免疫应答中的一种或多种。

在试剂盒方面，本发明提供用于测试对受试者中肿瘤抗原的免疫应答的试剂盒，其中通过一种或多种上述方法来治疗受试者，并且其中试剂盒包含检测体液免疫应答、细胞免疫应答和先天性免疫应答的试剂。

定义

免疫刺激量可以是，但不限于，以可测量的量增加ELISPOT测定结果的量、以可测量的量增加ICS测定结果的量、以可测量的量增加四聚体测定结果的量、以可测量的量增加抗原特异性CD4⁺T细胞的血液总数(bloodpopulation)的量、以可测量的量增加抗原特异性CD8⁺T细胞的血液总数的量、或者其中当与合适的对照相比时增加了至少10％、20％、30％、40％、50％、60％、70％、80％、90％、100％、1.5倍、2.0倍、3.0倍等。合适的对照可以是对照疫苗，其中没有用黑色素瘤细胞负载树突细胞，或者没有用衍生自黑色素瘤细胞的肽负载树突细胞。

术语“黑色素瘤特异性抗原”包括通常与黑色素瘤相关的抗原，并且其中该抗原对于黑色素瘤来说被认为是唯一的，而不是与其他癌症有关，并且此外，术语“黑色素瘤特异性抗原类”包括通常与黑色素瘤相关的抗原，并且其中该抗原也与诸如乳腺癌、大肠癌等其他类型癌症有关。

在辐照本发明的黑色素瘤细胞的上下文中，“辐照”优选地通过γ-辐照，但也包括通过x-射线、电子、中子、质子、电磁辐照、可见光、紫外光等的辐照。在一个方面，辐照起到防止黑色素瘤细胞的细胞分裂的作用。在另一方面，辐照不仅防止细胞分裂，而且使细胞蛋白质变性。作为辐照的替换，本发明可通过物理破坏的方式诸如超声、空洞形成(cavitation)、脱水、离子耗竭(iondepletion)或者通过暴露于一种或多种盐产生的毒性来防止黑色素瘤细胞的细胞分裂。

在本发明中，干扰素-γ(IFN-γ)诱导自噬。替换地，或者此外，可以使用自噬诱导剂，例如mTOR抑制剂和非mTOR(mTOR-independent)依赖型试剂。适合本发明的mTOR抑制剂包括，例如雷帕霉素(rapamycin)、他莫昔芬(tamoxifen)、torinl、西罗莫司脂化物(temsirolimus)、依维莫司(everolimus)、IKK刺激、MAPK激酶抑制剂、MEK1/2抑制剂、脱水和应激活化分子诸如饥饿所诱导的JNK1。非mTOR依赖型试剂包括由锂、卡马西平和丙戊酸诱导的低肌醇三磷酸(IP3)水平，或由暴露于L-型钙离子通道拮抗剂诸如米诺地尔(minoxidil)所引起的低细胞内钙水平。其他非mTOR依赖型试剂包括钙蛋白酶的化学抑制(钙蛋白酶抑制蛋白)、鞘脂(S1P)、和诸如过氧化氢的反应性氧(reactiveoxygen)，例如由饥饿或缺氧条件诱导的。提供了这些试剂中的一种或多种来使用，替代IFN-γ或IFN-γ模拟物。参见例如Ravikumar等(2010)Phys.Revs.90：1383-1435。

在“超过60％的黑色素瘤特异性肽”中，术语“％”(百分数)涉及肽分子的数目，而不涉及在抗原性方面不同的肽的数目。在“超过80％的黑色素瘤特异性肽”中，术语“％”涉及肽分子的数目，而不涉及在抗原性方面不同的肽的数目。在“小于40％的黑色素瘤特异性肽”中，术语“％”涉及肽分子的数目，而不涉及在抗原性方面不同的肽的数目。在“小于20％的黑色素瘤特异性肽”中，术语“％”涉及肽分子的数目，而不涉及在抗原性方面不同的肽的数目。

在“超过60％的黑色素瘤特异性肽”中，术语“肽”涉及肽分子、寡肽分子和多肽分子的数目的总和。在“超过80％的黑色素瘤特异性肽”中，术语“肽”涉及肽分子、寡肽分子和多肽分子的数目的总和。在“小于40％的黑色素瘤特异性肽”中，术语“肽”涉及肽分子、寡肽分子和多肽分子的数目的总和。在“小于20％的黑色素瘤特异性肽”中，术语“肽”涉及肽分子、寡肽分子和多肽分子等的数目的总和。

术语“偏向自噬性和非凋亡性的”指的是，当用IFN-γ体外处理时，癌细胞诸如黑色素瘤细胞是至少60％、至少70％、至少80％、至少90％、至少95％、至少98％自噬性和非凋亡性的。注意，在用于指代各种黑色素瘤细胞的术语中存在如下差异：自噬性和非凋亡性的细胞与非自噬性和凋亡性的细胞不同。

在从一种或多种癌细胞获得的肽的上下文中，“衍生自”或“从……获得”(derivedfrom)包含以下内容。癌细胞可以被分解，例如通过均化器或通过渗透破裂，从而得到粗提取物。可以使粗提取物的肽、寡肽和多肽接触到树突细胞，然后通过树突细胞处理肽。“衍生自”也包括提供具有完整癌细胞的树突细胞，其中癌细胞是活的，或者其中已经采用辐照处理癌细胞但癌细胞仍然具有代谢活性，或者其中已经采用核酸交联剂处理癌细胞但癌细胞仍然具有代谢活性。“衍生自”包括癌细胞碎片、游离癌细胞蛋白质和经辐照的癌细胞的混合物，它们被树突细胞摄取(takenup)，因此衍生自癌细胞。

应用于人、哺乳动物、哺乳动物受试者、动物、兽医受试者、安慰剂受试者、研究受试者、实验受试者、细胞、组织、器官或生物流体时，“施用”指的是，但不限于，给受试者、细胞、组织、器官或生物流体等接触外源性配体、试剂、安慰剂、小分子、药剂、治疗剂、诊断剂或组合物。“施用”可涉及例如处理方法、药代动力学方法、诊断方法、研究方法、安慰剂方法和实验方法。细胞的处理包括给细胞接触试剂、以及给流体接触试剂，其中流体与细胞接触。“施用”也包括诸如细胞的体外(invitro)和活体外(exvivo)处理，其通过试剂、诊断、结合组合物或者通过另一细胞进行。

涉及配体和受体时，“激动剂”包括刺激受体的分子、分子的组合、复合物、试剂的组合。例如，粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)的激动剂可以包括GM-CSF、GM-CSF的变异体变白或衍生物、GM-CSF的肽模拟物、模拟GM-CSF的生物功能的小分子、或者刺激GM-CSF受体的抗体。涉及配体和受体时，拮抗剂包括抑制、抵消、下调和/或脱敏受体的分子、分子的组合物或复合物。“拮抗剂”包括抑制受体的组成性活性(constitutiveactivity)的任何试剂。组成性活性是当不存在配体/受体相互作用时显露的活性。“拮抗剂”还包括抑制或防止受刺激(或受调节)的受体活性的任何试剂。举例如下，GM-CSF受体的拮抗剂包括但不限于：与配体(GM-CSF)结合并防止其结合受体的抗体，或者与受体结合并防止配体与受体结合的抗体，或者其中抗体将受体封锁在非活性构象。

除本文另有指明或上下文指定外，术语“表达”包括如下内容。表达包括mRNA的生物合成、多肽生物合成、多肽活化，例如通过翻译后修饰，或者通过改变亚细胞位置或通过募集到染色质使表达活化。换言之，“提高的表达”包括由磷酸酯引起的生物合成提高或活性提高，或者由细胞质到细胞核的迁移所引起的活性提高。

抗原呈递细胞(APCs)是用于呈递抗原给T细胞的免疫系统细胞。APCs包括树突细胞、单核细胞、巨噬细胞、边缘区Kupffer细胞、小胶质细胞、郎格汉斯细胞、T细胞和B细胞(参见，例如Rodriguez-Pinto和Moreno(2005)Eur.J.Immunol.35：1097-1105)。树突细胞产生在至少两个谱系中。第一谱系包括前体-DC1、骨髓DC1和成熟DC1。第二谱系包括CD34⁺⁺CD45RA-早期祖多能细胞(earlyprogenitormultipotentcells)、CD34⁺⁺CD45RA⁺细胞、CD34⁺⁺CD45RA⁺⁺CD4⁺IL-3Ralpha⁺⁺促-DC2细胞、CD4⁺CD11c^-浆细胞样DC2前体细胞、淋巴样人DC2浆细胞样-衍生的DC2、和成熟DC2(参见，例如Gilliet和Liu(2002)J.Exp.Med.195：695-704；Bauer等(2001)J.Immunol.166：5000-5007；Arpinati等(2000)Blood95：2484-2490；Kadowaki等(2001)J.Exp.Med.194：863-869；Liu(2002)HumanImmunology63：1067-1071；McKenna等(2005)J.Virol.79：17-27；O′Neill等(2004)Blood104：2235-2246；Rossi和Young(2005)J.Immunol.175：1373-1381；Banchereau和Palucka(2005)Nat.Rev.Immunol.5：296-306)。

“有效量”包括但不限于可改善、反转、减轻、预防或诊断医学病情(condition)或病症(disorder)的症状或迹象的量。除非另有明确指明或通过上下文指明外，“有效量”不限于足以改善病情的最小量。疾病或病症的严重程度以及处理以预防、治疗或减轻疾病或病症的能力，可以通过生物标志物或通过临床参数测定，但不限于此。

生物标志物包括多肽，多肽的位置/部位(例如囊泡(vesicular)、分子内、膜结合的)，核酸，血清、尿、脑脊液中的血球计数、代谢水平，肿瘤细胞计数，癌症干细胞计数，肿瘤水平。肿瘤水平可以通过RECIST标准(Eisenhauer等(2009)Eur.J.Cancer.45：228-247)来测定。表达标志物包括mRNA的基因表达或者基因扩增、抗原表达和多肽的表达。临床参数包括但不限于无进展生存期(PFS，progression-freesurvival)、6月PFS、无病生存期(DFS，dsease-freesrvival)、疾病进展时间(TTP，timetoprogression)、远处转移时间(TDM，timetodistantmetastasis)和总生存期(overallsurvival)。

“标记的”组合物可通过光谱学、光化学、生物化学、免疫化学、同位素或化学方法直接或间接地检测。例如有用的标记包括32P、33P、35S、14C、3H、125I、稳定同位素、表位标签、荧光染料、电子-致密试剂、底物或酶例如在酶联免疫测定中使用的酶或fluorettes(例如参见Rozinov和Nolan(1998)Chem.Biol.5：713-728)。

评估免疫应答的方法

本发明还提供用于表征免疫应答的ELISPOT测定、细胞内细胞因子染色(ICS)和四聚体测定(参见例如，Pardoll的US2007/0190029；Chattopadhyay(2008)CytometryA.200873：1001-1009；Vollers(2008)Immunology.123：305-313；Lalvani.等(1997)J.Exp.Med.186：859-865；Waldrop(1997)J.Clin.Invest.99：1739-1750；Hudgens(2004)J.Immunol.Methods288：19-34；Goulder(2001)J.Virol.75：1339-1347；Goulder(2000)J.Exp.Med.192：1819-1831；Anthony(2003)Methods29：260-269；Badovinac和Harry(2000)J.Immunol.Methods238：107-117)。通过肿瘤学临床试验中所使用的终点来评估患者体内的免疫应答，包括客观反应(RECIST标准)、总生存期、无进展生存期(PFS)、无病生存时间、远处转移时间、6月PFS、12月PFS等等。

疫苗

本发明的树突细胞疫苗可以通过皮内、结内、粘膜或皮下途径或上述的任意组合来施用。每剂可以包括约10×10³个树突细胞、20×10³个细胞、50×10³个细胞、100×10³个细胞、200×10³个细胞、500×10³个细胞、1×10⁶个细胞、2×10⁶个细胞、20×10⁶个细胞、50×10⁶个细胞、100×10⁶个细胞、200×10⁶6、500×10⁶、1×10⁹个细胞、2×10⁹个细胞、5×10⁹个细胞、10×10⁹个细胞等等。施用频率可以是例如一周一次、一周二次、两周一次、三周一次、四周一次、一个月一次、两个月一次、三个月一次、四个月一次、五个月一次、六个月一次等等。进行施用的天的总数目可以是一天、2天或3天、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、或20等等。应当理解的是，任何给定的施用可以包含同一天中两次或更多次注射。在一个方面，本发明涉及用整个肿瘤细胞负载树突细胞，其中至少10％、其中至少20％、至少30％、至少40％、至少50％、至少60％、至少70％、至少80％、至少90％、至少95％或至少99％的负载到树突细胞中的衍生自黑色素瘤细胞的蛋白质存在于整个肿瘤细胞中。在非限制性实施方式中，树突细胞疫苗在烧瓶中、小瓶中、瓶子中、注射器、导管中、套管中等等。为了施用，至少20％、至少30％、至少40％、至少50％、至少60％、至少70％、至少80％、至少90％、至少95％、至少99％的被施用的树突细胞是树突细胞。

疫苗均匀性

在一个示例性实施方式中，本发明提供包含树突细胞的疫苗，该树突细胞包含衍生自体外负载的黑色素瘤肽，其中疫苗以至少5/95、10/90、20/80、30/70、40/60、50/50、60/40、70/30、80/20、90/10、95/5、98/2、99/1等的树突细胞/黑色素瘤细胞的比例包含树突细胞(包含黑色素瘤肽的DC和不包含黑色素瘤肽的DC的总和)。本发明还提供包含树突细胞的疫苗，该树突细胞包含衍生自体外负载的黑色素瘤肽，其中疫苗以至少5/95、10/90、20/80、30/70、40/60、50/50、60/40、70/30、80/20、90/10、95/5、98/2、99/1等的[树突细胞]/[既非DC又非黑色素瘤的细胞]的比例包含树突细胞(包含黑色素瘤肽的DC和不包含黑色素瘤肽的DC的总和)。本发明示出了一种带间隔的容器，其中第一间隔包含黑色素瘤细胞，并且第二间隔包含树突细胞。两个间隔可以通过以下物质来分离：膜、过滤器、阀门、导管、耦合器来分离，其防止黑色素瘤细胞与树突细胞接触，但其中手动传输或其中去除膜或打开阀门时允许黑色素瘤细胞与树突细胞接触，使得黑色素瘤细胞、黑色素瘤细胞片段和/或黑色素瘤肽可以负载到树突细胞上。

干扰素-γ模拟物

本发明包含模拟物，例如干扰素-γ模拟物，例如模拟肽95-132(Ahmed(2007)J.Immunol.178：4576-4583；Fulcher(2008)FEBSLett.582：1569-1574)。本发明提供IFN-γ模拟物，其中总的目的是获取富含自噬性和非凋亡性黑色素瘤细胞的黑色素瘤细胞群落。IFN-模拟物包括例如具有与干扰素-γ相同激动剂活性的抗体。

使黑色素瘤细胞失活

本发明提供其中癌症细胞失活的组合物和方法，例如通过辐射失活或通过核酸交联剂的方式失活。示例性交联剂具有交联DNA但不修饰蛋白质的能力。核酸烷基化剂可以是β-丙氨酸、N-(吖啶-9-基)、2-[双(2-氯乙基)氨基]乙基酯。在一些实施方式中，核酸靶向化合物是经由UVA辐照活化的补骨脂素化合物。例如，核酸靶向化合物可以是4′-(4-氨基-2-氧杂)丁基-4，5’，8-三甲基补骨脂素(本文中也称为"S-59")。可以用150微摩尔补骨脂素S-59和3J/cm²UVA光(FX1019辐照装置，BaxterFenwal，RoundLake，IL)来失活细胞。用S-59进行的失活被称为光化学处理，并且导致细胞的完全失活。可以测试各种浓度的核酸交联剂在失活细胞方面的效力，例如在防止细胞分裂方面的效力。S-59的特征在于其交联核酸但保持蛋白质完整未被修饰的能力。细胞可以悬浮于含0、1、10、100和1000nM补骨脂素S-59的5mL生理盐水中。可以如下地辐照每个样品。可以以100nM的浓度加入S-59。以大约2J/cm²(FX1019辐照装置，BaxterFenwal，RoundLake，III.)的剂量UVA辐照样品。并然后将每个样品转移到15mL管、离心并去除上清液，然后用5mL生理盐水洗涤、离心并去除上清液，并且最终的沉淀悬浮于0.5mL的生理盐水中(Dubensky的美国专利Nos.7833775和7691393)。

富集非凋亡性的黑色素瘤细胞

可以使黑色素瘤细胞群落富含非凋亡性的黑色素瘤细胞，例如通过使用如下技术：将非凋亡性且自噬性细胞与非自噬性且凋亡性的细胞分离，其中分离是通过将自噬性且非凋亡性的细胞粘附到表面来进行的，其中其他细胞处于浮动状态。还可以通过去除凋亡的细胞来获得富含非凋亡性黑色素瘤细胞的群落，例如通过对磷脂酰丝氨酸特异的抗体的方式去除。通过经固定化的抗体的方式去除细胞的技术是已知的(Onodera(1998)Ther.Apher.2：37-42)。对磷脂酰丝氨酸特异的抗体是已知的(例如EMDMillipore，Billerca，MA)。也可以用荧光抗磷脂酰丝氨酸抗体标记黑色素瘤细胞的主体群落(bulkpopulation)，其中通过流式细胞法、亲和层析法、免疫磁性分离(参见例如Hoeppener(2012)RecentResultsCancerRes.195：43-58；Dainiak(2007)Adv.Biochem.Eng.Biotechnol.106：1-18)除去标记的凋亡黑色素瘤细胞。

细胞凋亡的抑制剂

Z-VAD(Z-VAD-fmk)是一种细胞凋亡的抑制剂，其可以从例如EnzoLifeSciences(Exeter，UK)、R&DSystems(Minneapolis，MN)、TocrisBiosciences(Bristol，UK)、BioMol(PlymouthMeeting，PA)和EMDChemicals(Gibbstown，NJ)获得。Z-VAD-fmk是一种合成肽Z-Val-Ala-Asp(OMe)-CH₂F。半胱天冬酶(caspases，胱天蛋白酶)是半胱氨酸-天冬氨酸特异性蛋白酶家族。半胱天冬酶被死亡受体连接(ligation)而活化，例如TRAIL、FAS、通过DNA损伤、应激、血清饥饿以及在某些细胞类型中干扰素。半胱天冬酶在包括核断裂、染色质浓缩和细胞质完整性损失的细胞凋亡的高度调节过程中起关键的作用。泛蛋白酶抑制剂(pan-capase)z-VAD-fmk(苄氧羰基-缬氨酰-丙氨酰-天冬氨酰-[O-甲基]-氟甲基酮)不可逆地结合半胱天冬蛋白酶的催化位点，并抑制它们在诱导细胞凋亡方面的功能。在对IFN-γ应答时抑制细胞进行细胞凋亡的能力可以是如下方式：通过此方式产生非凋亡性但自噬性细胞，而无洗涤选择步骤来去除浮动的凋亡细胞。

在本发明的一个实施方式中，在将肿瘤细胞负载到树突细胞上或其他类型的抗原呈递细胞(APC)上之前，用IFN-γ处理肿瘤细胞。在另一个实施方式中，在将肿瘤细胞负载到树突细胞上或其他类型APC上之前，未用IFN-γ处理肿瘤细胞。

本发明提供药物、试剂、试剂盒(包括诊断试剂盒)，其中药物、试剂、试剂盒包含树突细胞、抗体或抗原。本发明还提供施用含至少一种树突细胞和至少一种抗原的组合物的方法、刺激抗体形成的方法、刺激ADCC的方法、刺激补体依赖性细胞毒性的方法、以及确定患者适用性的方法和试剂盒、在临床试验中确定患者入选/排除标准的方法和试剂盒、预测对药物或试剂的应答的方法。现有技术中已描述补体依赖性细胞毒性(参见例如Goodman等(1990)J.Clin.Oncol.8：1083-1092；Cheson(2010)J.Clin.Oncol.28：3525-3530)。本发明的药物组合物、试剂和相关方法包含CD83阳性树突细胞，其中CD83是通过用IFN-γ处理的癌细胞负载而诱导的。在本发明的CD83方面，CD83被诱导了至少2％、至少3％、至少4％、6％、7％、8％、9％、10％等。在另一方面，排除如下DC试剂或DC相关方法，其中树突细胞的CD83不能通过用IFN-γ处理的癌细胞负载而可检测地诱导。

图

图1展现了在用IFN-γ处理之前(左)和IFN-γ处理72小时之后(右)培养的肿瘤细胞的图形。处理后，培养的肿瘤细胞要么是浮动的、非自噬性且凋亡的，要么是粘附的、自噬性且非凋亡的。浮动的细胞示出表达凋亡标志物磷脂酰丝氨酸。浮动的细胞示出具有相对较少的表达的MHCII类，而粘附细胞示出具有过度表达的MHCII类。

图2A-D示出了用于负载树突细胞的经IFN-γ处理的自体肿瘤细胞的特征。在15％FBS/ECS中在RPMI中使用或者不使用1000IU/mLIFN-γ处理自体黑色素瘤肿瘤细胞72小时，收获并用100Gy辐照并冻存。然后在AIMV中将细胞解冻，并采样用于流式细胞，以及用于在抗原负载DC之前制备用于免疫印迹的细胞裂解物。四个独立的自体黑色素瘤细胞系的例子示于图2A、图2B和图2C中。通过IFN-γ处理自体肿瘤细胞诱导主要组织相容性复合体(图2D)。在使用或者不使用1000IU/mLIFN-γ处理72小时后收获肿瘤细胞，然后测定MHCI类和II类。使用对照同类型抗体来认定阳性群落。深色数据点表示中值平均+/-95％置信区间。N＝65。

在一个方面，本发明排除用于负载树突细胞的非自体肿瘤细胞，并且排除使用用于负载树突细胞的非自体肿瘤细胞的方法。

图3A和3B描述用自体黑色素瘤细胞系负载的树突细胞的表型，其中使用干扰素-γ处理自体黑色素瘤细胞系或未使用干扰素-γ处理自体黑色素瘤细胞系。使用或者不使用1000IU/mLIFN-γ处理一组四个自体黑色素瘤细胞系72小时，辐照并冻存。然后在AIMV中将细胞解冻，并在收获和通过流式细胞法测定CD80、CD83、CD86和MHCII类的表达之前，与自体树突细胞组合大约24小时(图3A)。数据总结于图3B中。示出了平均值±标准偏差(SD)，n＝4。

图4A和4B示出了剂型(dose)制备所使用的树突细胞的表型。在用经IFN-γ处理的、辐射的自体肿瘤细胞负载之前(Pre-ATCLoadDC，N＝53)和负载之后(Post-ATCLoadDC，N＝65)，通过流式细胞法评估DC的样品对于CD80、CD83、CD86和MHCII类的表达。使用FACS球来设置初始流式细胞仪仪器设定，然后在整个数据的采集中保持该设定不变(图4A)。在图4B中，比较ATC负载之前和ATC负载之后的百分数表示的值和平均荧光强度(MFI)±SD。*p＝0.019且**p＝0.0009。

图5A至5C示出了经干扰素-γ处理的黑色素瘤细胞进行自噬。选择商业可购得的黑色素瘤细胞系，并在5％FBS/RMPI中用1000IU/mLIFN-γ培育72小时。在培育期结束时拍摄SK-5-Mel细胞培养基的相位差显微镜照片(图5A)，示出了具有自噬体的囊泡的放大的细胞。在用IFN-γ处理之前，通过使用GFP-LC3B构建转染来证明自噬体的确定和形成(图5B)。通过使用用于LC3B的抗体蛋白质印迹(图5C)，来确定IFN-γ处理后的自噬诱导，确认LC3的更快的迁移形式，已经表明LC3与自噬性血管形成相关。

图6A和6B展现了对干扰素-γ应答时诱导的细胞凋亡和自噬。用1000IU/mL的IFN-γ培育SK-5-Mel细胞72小时，之后收集非粘附群落和粘附的群落并通过使用7-AAD和Annexin-V流式细胞法测定细胞凋亡和自噬(图6A)。使用EnzoCyto-ID自噬检测染料，通过测定制造商所提供的染料的平均强度峰位移，通过流式细胞法来测定自噬(图6B)。图6C中示出了，与5％FBS/RPMI相比，峰位移的倍数变化(foldchange)，其中无血清作为自噬诱导的阳性对照。

图7公开了阻断半胱天冬酶活性后的自噬诱导并不影响在黑色素瘤细胞中对IFN-γ应答时的自噬诱导。在20uM的泛半胱天冬酶抑制剂z-VAD或其对照化合物z-FA存在下，用1000IU/mL的IFN-γ处理SK-5-Mel细胞72小时。收获细胞，并通过流式细胞法测定自噬，如图6C中所示。

图8示出了SK-5-Mel细胞，其用1000IU/mL的IFN-γ在10uM的自噬抑制剂3-甲基腺嘌呤(3-MA)存在下培育72小时。然后收获细胞，并通过流式细胞法测定细胞凋亡和MHCII类(HLA-DR)表达。

图9示出了来自由患者肿瘤样本(N＝36)所产生的肿瘤细胞系的IFN-γ处理过的细胞，测定其在MHCII类或细胞凋亡方面的变化。所示数据为平均荧光强度±SE的平均值。

图10示出了经IFN-γ处理的细胞，通过流式细胞法从用于负载患者特异性疫苗免疫治疗的树突细胞的样品测定其MHCII类或细胞凋亡。示出了MHCII类的倍数变化、平均荧光强度和凋亡细胞百分数(Annexin-V阳性)。

图11和图12示出了MHCII类的诱导和细胞凋亡的缺乏之间的相关性，在接受用自噬性、非凋亡性、经干扰素-γ处理的肿瘤细胞负载的树突细胞的患者中表现出更好的无进展生存期(图11)和总生存期(图12)。

图13示出了来自三次试验的生存曲线。点图(Kaplan-Meier)是步进式曲线，表明在临床试验的过程中研究受试者生存的百分数。设计各个组DC-54(实心圆)、TC-74(实心方块)、TC-24(实心三角形)以及DC-18(线)。最差的生存发生在TC-24组。第二差的生存组是TC-74。TC-24指的是在涉及24个受试者的研究中肿瘤细胞的疫苗。DC-54指的是树突细胞疫苗，其中对54个受试者进行处理，并且其中疫苗包含与经辐照的自体肿瘤细胞一起共同培养的自体树突细胞(DCs)。

进一步说明

自体树突细胞生成

通过ficoledapheresisproducts的塑料粘附法(plasticadherencemethod)(Choi等(1998)Clin.CancerRes.4：2709-2716；Luft等(1998)Exp.Hematol.26：489-500；Cornforth等(2011)CancerImmunol.Immunother.60：123-131)，在补充有各1000IU/mL的IL-4(CellGenix，Freisberg，Germany)和GM-CSF(Bertex，Seattle，WA)(DC培养基)的不含抗生素的AIM-V培养基(Invitrogen，GrandIsland，NY)中，生成树突细胞。然后在用经IFN-γ处理的、辐照的自体肿瘤细胞负载之前，将烧瓶培养6天。

IFN-γ自体肿瘤细胞系生成和药物的制备

根据Cornforth等(Cornforth等(2011)CancerImmunol.Immunother.60：123-131；Dillman等(1993)J.Immunother.EmphasisTumorImmunol.14：65-69；Dillman等(2000)CancerBiother.Radiopharm.15：161-168)，生成纯的肿瘤细胞。然后用1000U/mL的干扰素-γ(InterMune，Brisbane，CA)培育肿瘤细胞72小时，用来自铯源的100Gy辐照并冻存(Selvan等(2007)Int.J.Cancer122：1374-1383；Selvan等(2010)MelanomaRes.20：280-292)。从冻存中恢复经IFN-γ处理且辐照的肿瘤细胞，用磷酸盐缓冲盐水(PBS)洗涤，然后加入培养的树突细胞(DCs)，然后培育约24小时。通过用橡皮淀帚轻轻刮取来收获负载了抗原的DCs，并冻存。获得经IFN-γ处理或未处理的肿瘤细胞和负载的DCs的多个等分部分，用于流式细胞评价和台盼蓝拒染(trypan-blueexclusion)测定。

皮肤黑色素瘤的分期(Staging)

本发明的药物或试剂可以施用于黑色素瘤患者，其中黑色素瘤诊断为I期、II期、III期或IV期(Mohr等(2009)Ann.Oncology(Suppl.6)vi14-vi21)。例如I期指的是具有原发(初始)黑色素瘤而无区域或远处转移证据的患者。II期包括无淋巴结疾病或远处转移证据的患者，其中患者的进一步特征在于：例如损伤大于1mm且小于或等于2mm厚的覆上皮(overlyingepithelium)溃疡，或者损伤大于2mm且小于或等于4mm厚的上皮溃疡。III期黑色素瘤包括病理记录波及区域淋巴结或在途(in-transit)转移或卫星(satellite)转移的损伤，其中患者可具有例如一个、两个、三个或四个或更多个受感染的淋巴结。IV期黑色素瘤定义为存在远处转移，其中转移仅位于远处皮肤、皮下组织或淋巴结，其中转移涉及肺转移，或者其中转移涉及所有其他内脏部位。

本发明包含预防性施用的方法，也就是用于尚未或从未诊断为患有黑色素瘤的受试者。本发明包含施用的方法，其中受试者此前已被诊断为黑色素瘤并且此前已得到成功治疗以消除黑色素瘤(或者经历过自动完全痊愈)，并且其中在根除后预防性施用。

肿瘤抗原

本发明的黑色素瘤细胞表达Mage、Mart-1、Mel-5、HMB45、S100或酪氨酸酶中的一种或多种(Dillman等(2011)CancerBiotherapyRadiopharmaceuticals26：407-415)，但并不限于此。在一个方面，肿瘤抗原的检测使用未暴露于IFN-γ的细胞，而在另一方面，肿瘤抗原的检测在经IFN-γ处理的细胞上进行(参见例如Cornforth等(2011)CancerBiotherapyRadiopharmaceuticals26：345-351)。本发明包含表达一种或多种黑色素瘤抗原或者包含一种或多种分离的黑色素瘤抗原的组合物的黑色素瘤细胞，如Dubensky的US2007/0207171所公开的，其通过引用以其全文并入本文。

测定细胞凋亡

可以使用多种试剂来检测或测定细胞凋亡，例如荧光染料标记的膜联蛋白，通过用染料诸如碘化丙烷和7-氨基放线菌素D(7-AAD)染色，通过测定线粒体内膜势的损失，通过测定半胱天冬酶的活化或裂解。参见例如George等(2004)CytometryPartA.59A：237-245。细胞凋亡的早期活动是磷脂酰丝氨酸暴露于质膜的外表面，其可以通过荧光染料标记的膜联蛋白检测。可用的方法能够区分活细胞、坏死细胞、早期凋亡细胞和晚期凋亡细胞。本发明使用通过7-ADD测定为非凋亡性的黑色素瘤细胞、通过膜联蛋白V测定为非凋亡性的黑色素瘤细胞、在IFN-γ处理后经凋亡性测定为非凋亡性的黑色素瘤细胞(Dillman等(2011)CancerBiotherapyRadiopharmaceuticals26：407-415)、或者通过一种或多种生物标志物Bcl-2、半胱天冬酶-3、P53或存活素测定为非凋亡性的黑色素瘤细胞(Karam等(2007)LancetOncol.8：128-136)。本发明的药物组合物、试剂和相关方法排除经IFN-γ处理的凋亡性的黑色素瘤细胞，其中根据例如Herlyn等的美国专利No.7544465、Thorpe等的美国专利7714109来测定细胞凋亡，其通过引用并入本文。

测定自噬

自噬是用于降解许多蛋白质和某些细胞器的自然存在的过程。自噬介导蛋白质和细胞器周转、饥饿应答、细胞分化、细胞死亡等。与微管相关的蛋白轻链3(LC3)监测自噬。在一种方法中，可以通过测量LC3的转化来检测自噬，其涉及LC3-I或LC3-II的转化。LC3-II的量与自噬体的数目相关。具体来说，LC3是细胞溶质的且可溶的，而LC3-II存在于膜上。LC3-II具有更大的分子量，因为其与脂质结合(conjugated)。可以测量LC3加工，例如通过western印迹，而自噬、自噬小泡和自噬体可以通过显微镜测定。自噬可以是定量的，例如通过检测加工的LC3-II、通过早期与晚期自噬性区室(compartment)之间的比例、或者通过自噬体积。参见(Mizushima和Yoshimori(2007)Autophagy3：542-546：634-641；Tanida等(2008)MethodsMolBiol.445：77-88；Eng.等(2010)Autophagy6：634-641)。在一个方面，本发明使用自噬作为筛选工具，用于选择合适的自噬性癌细胞，其中可以根据在一个或多个具体阶段中自噬的出现来选择细胞。这些自噬阶段包括：(1)通过自噬体隔离胞质区室，(2)使用溶酶体融合自噬体，以形成自溶酶体，并且(3)通过溶酶体内的蛋白酶来降解自溶酶体内容物。在另一个方面，本发明包括主要显示第一阶段、主要显示第二阶段、主要显示第三阶段、主要显示所有三个阶段的细胞。在另外一个方面，本发明包含显示第一阶段、第二阶段、第三阶段、第一和第二、第二和第三阶段或者显示所有三个阶段的细胞。

干扰素-γ(IFN-γ)信号传导

IFN-γ(II型干扰素)信号传导依赖于一些基因的表达，诸如IFN-γ受体、STAT1、STAT2、STAT1同源二聚体、STAT1/STAT2异源二聚体、IRF-1、GAS和IRF-E。研究表示IFN-γ信号传导依赖于IFN-γ受体(IFNGR1链；IFNGR2链)。细胞表面上IFNGR的低表达能够阻断IFN-γ信号传导的某些方面(Schroder等(2004)J.Leukocyteboil.75：163-189)。在一个方面，本发明排除使用表现出IFNGR的低表面表达的癌细胞。在另一个方面，本发明筛选表达STAT1同源二聚体的那些癌细胞，使用这些细胞，并且基本上排除那些不表达STAT1同源二聚体的细胞。在另外一个方面，本发明考虑筛选那些具有STAT1磷酸化(丝氨酸-727)的细胞。本发明还考虑排除来自具有STAT1基因中功能突变缺失的患者的癌细胞(参见例如Dupuis等(2001)Science293：300-303；Schroder等(2004)J.Leukoc.Biol.75：163-189)。下面关注IRF基团家族。RF-1、IRF-2和IRF-9均参与IFN-γ信号传导。本发明涵盖了使用表达这些IRF基因族基因中的一种或多种基因的癌细胞，或者排除未表达这些基因中一种或多种的癌细胞。

IFN-γ应答基因

在一些示例性实施方式中，本发明包含生物材料、组合物、试剂和方法，其要求使用对IFN-γ应答的黑色素瘤细胞或肿瘤前期的黑色素瘤细胞。可以通过一种或多种IFN-γ应答基团的表达测定，来确认、区分和选择黑色素瘤细胞。已经确认了许多IFN-γ应答基团(参见例如Halonen等(2006)J.Neuroimmunol.175：19-30；MacMicking(2004)11：601-609；Boehm等(1997)15：749-795)。所述测定可以涉及从患者中去除一种或多种黑色素瘤细胞、在添加的IFN-γ存在和不存在情况下培养细胞、并确定对IFN-γ的应答。在该测定中，IFN-γ诱导的基因表达可以通过对以下敏感的试验来检测，上述试验对以下敏感：转录因子结合到IFN-γ诱导的基因的启动子、IFN-γ诱导的基因的mRNA的表达、表达的多肽等等。IFN-γ应答基因可以包括例如，用于免疫应答、编码转录因子、转运蛋白质的基因、细胞凋亡基因、用于细胞生长或维持的基因、用于脂质代谢的基因、介导胞吞或胞吐的基因、胞内信号传导基因、糖代谢基因、细胞粘附基因以及无确定功能(establishedfunction)的基因。

在一个方面，本发明排除使用IFN-γ处理时具有以下特点的黑色素瘤细胞：表现出MHCII类表达降低，在MHCII类的表达方面未表现出可检测到的变化，表现出MHCII类表达增加10％或更少，表现出MHCII类表达增加15％或更少，表现出MHCII类表达增加20％或更少、25％或更少、30％或更少、40％或更少、50％或更少等等。在一个方面，百分数的值指的是存在于来自给定受试者或患者的活检或部分活检中的黑色素瘤细胞群落的平均表达值。

用于筛选IFN-γ应答癌细胞的IFN-γ诱导基因的非限制性列表

ab000677，JAB/SOCS1；m63961，IFN-γ诱导蛋白(mag-1)；m35590，巨噬细胞炎性蛋白1-β；m19681，MCP-1(JE)；y07711，zyxin；M34815，IFN-γ诱导的单核因子(MIG)；m33266，干扰素诱导蛋白10(IP-10)；U44731，嘌呤核苷酸结合蛋白；U88328，细胞因子信号传导抑制因子-3(Sup.ofcytokinesignalling-3，SOCS-3)；M21065，干扰素调节因子1；M63630，GTP结合蛋白(IRG-47)；U19119，G-蛋白样LRG-47；L27990，Ro蛋白；M31419，204干扰素活化蛋白；af022371，干扰素诱导蛋白203；U28404，MIP-1α受体；U43085，糖皮质激素减弱反应基因39(Glucocorticoid-attenuatedresponse39)；x56123，Talin；m31419，204干扰素活化蛋白；U53219，GTPaseIGTP；I38444，T细胞特异蛋白；M31418，202干扰素活化蛋白；d38417，芳香烃(Arylhydrocarbon)受体；m26071，组织因子(mtf)；D13759，Cot原癌基因；M18194，纤维连接蛋白；u59463，ICH-3；M13945，pim-1原癌基因；L20450，DNA结合蛋白(参见Gil等(2001)Proc.Natl.Acad.Sci98：6680-6685)。本发明包含IFN-γ诱导基因CIITA(参见例如Chan等(2010)J.LeukocyteBiol.88：303-311；Kwon等(2007)Mol.Immunol.44：2841-2849)的用途。

本发明包含对如下IFN-γ诱导基因中一种或多种的表达的测量，作为用于确认施用药物的患者的资格或选择施用药物的患者的筛选过程。这些基因包括：(基因1)FCGR1A、(基因2)IL6R、(基因3)CXCL9、(基因4)CLCSF14、(基因5)UBD、(基因6)C/EBPalpha和(基因7)MHC2TA(CIITA)(参见Waddell等(2010)PLoSONE5：e9753)。还包括这些基因的特定簇在确认资格过程中的用途，例如基因1和2、2和3、3和4、4和5、5和6、6和7、1和3、1和4、1和5、1和6、1和7、2和4、2和5、2和6、2和7、3和5、3和6、3和7、4和6、4和7、5和7以及这些基因的组合，例如1、2、3；或3、4、5；或4、5、6；或5、6、7；或1、3、4；或1、3、5，或1、3、6，或1、3、7；或1、2、4；或1、2、5；或1、2、6；或1、2、7等等。(这些基因编号是任意的。)

干扰素-γ处理

包含暴露于IFN-γ处理的黑色素瘤细胞的试剂和相关方法说明如下。

本发明包含如下细胞，其中IFN-γ应答基因的诱导为至少20％(对照值的1.2倍)、至少30％、至少40％、至少50％、至少60％、至少70％、至少80％、至少90％、至少100％(对照值的2.0倍)、至少2.5倍、至少3.0倍、至少4.0倍等。

本发明排除的是具有以下特征的黑色素瘤细胞群，其中在IFN-γ处理后，小于90％是自噬性的、小于80％是自噬性、小于70％是自噬性、小于60％是自噬性、小于50％是自噬性、小于40％是自噬性等等。

本发明排除的是具有以下特征的黑色素瘤细胞群，其中在IFN-γ处理后，小于90％是非凋亡性的、小于80％是非凋亡性的、小于70％是非凋亡性的、小于60％是非凋亡性的、小于50％是非凋亡性的、小于40％是非凋亡性的等等。

本发明排除的是具有以下特征的黑色素瘤细胞群，其中在IFN-γ处理后，小于90％是非粘附性的、小于80％是非粘附性的、小于70％是非粘附性的、小于60％是非粘附性的、小于50％是非粘附性的、小于40％是非粘附性的等等。

测量MHCII类的表达

使用对MHCII类基因产物特异的抗体或核酸探针，可以测量MHCII类的表达。这些MHCII类产物包括HLA-DPA1、HLA-DPB1、HLA-DQA1、HLA-DQB1、HLA-DRA、HLA-DRB1以及HLA-DM和HLA-DO(参见例如Apostolopoulos.等(2008)HumanVaccines4：400-409)。

例如，本发明包含试剂、治疗方法和诊断方法，其要求黑色素瘤细胞表达STAT1和STAT2，从而具有活性STAT1信号传导通路、具有活性STAT2信号传导通路或者具有活性STAT1和STAT2信号传导通路。

本发明提供药物组合物或药物试剂、相关施用方法以及治疗方法，其导致以下生存数据：危害比(hazardratio，HR)小于1.0、HR小于0.9、HR小于0.8、HR小于0.7、HR小于0.6、HR小于0.5、HR小于0.4、HR小于0.3等。本发明结果可以为总生存数据、无进展生存数据、疾病进展时间数据等。本发明还提供至少40％、至少50％、至少60％、至少70％、至少75％、至少80％、至少85％、至少90％、至少95％等的6月PFS。此外，本发明提供至少40％、至少50％、至少60％、至少70％、至少75％、至少80％、至少85％、至少90％、至少95％等的6月总生存率/期。此外，本发明提供至少40％、至少50％、至少60％、至少70％、至少75％、至少80％、至少85％、至少90％、至少95％等的1年(或2年)PFS。此外，本发明提供至少40％、至少50％、至少60％、至少70％、至少75％、至少80％、至少85％、至少90％、至少95％等的1年(或2年)总生存率(参见例如U.S.Dept.ofHealthandHumanServices.FoodandDrugAdministration.GuidanceforIndustry.Clinicaltrialendpointsfortheapprovalofcancerdrugsandbiologies(April2005))。

IFN-γ的使用和自噬的诱导

在IFN-γ处理后诱导自噬是一种确定对系统性(systemic)IFN-γ处理的应答的方法，如通过增加主要组织相容性II类复合体测定。如果在暴露于培养基中IFN-γ后，活检的黑色素瘤肿瘤细胞的可测量的群落发生自噬而不是细胞凋亡，则这表明这些患者将有利地对系统性IFN-γ处理应答。此外，如果从活检中确定了成功细胞系，患者也会从细胞治疗产品受益，该细胞治疗产品由来自自噬性但非凋亡性粘附(adherent)群落的经IFN-γ处理的纯化的肿瘤细胞系制得。

本发明包含分离和表征从自噬性、非凋亡性细胞所分离的主要组织相容性复合体，上述细胞是从用干扰素-γ处理的肿瘤细胞系收集的。主要组织相容性复合体包含对CD4⁺T细胞特异的抗原，并且已经与抗体介导的免疫应答相关。复合体代表不会存在于非自噬性细胞中的大型抗原库(repertoire)，这是因为在自噬性细胞中诱导的溶酶体介导的抗原加工活动。

由经IFN-γ处理的细胞系所产生的非凋亡性的、自噬性肿瘤细胞可以与树突细胞整合，以增强抗原呈递，这是因为在自噬性肿瘤细胞的表面上高水平的主要组织相容性复合体。该过程会得到由两种细胞类型融合而产生的新的细胞产物。

对IFN-γ的应答时诱导自噬的过程可以以不导致细胞凋亡的方式诱导。通过用半胱天冬酶抑制剂和干扰素-γ合并处理肿瘤细胞，可以阻断细胞死亡(并最终阻断耐受性凋亡细胞的形成)的过程，而不抑制自噬的诱导或主要组织相容性II类复合体的增加。

消除凋亡细胞同时保留有活力的自噬性细胞的程序

黑色素瘤的研究表明在临床试验中凋亡细胞的存在与差生存率之间具有相关性(Cornforth等(2011)CancerImmunol.Immunother.60：123-131；Dillman等(2011)CancerBiother.Radiopharmaceuticals26：407-415)。下面研究调查了在体外IFN-γ处理黑色素瘤肿瘤细胞后自噬的诱导、细胞凋亡和MHCII类分子。

过滤

下面提供“过滤”程序。本发明提供方法以及通过这些方法所产生的细胞，其用于增强非凋亡性细胞中黑色素瘤细胞群落。在体外IFN-γ处理之前，在任意给定的黑色素瘤细胞群落中，第一百分数细胞可以偏向于是凋亡性的，并且第二百分数细胞可以偏向于是非凋亡性的。在本发明上下文中，偏向指的是体外IFN-γ处理刺激第一百分数细胞(或第一子群落细胞)的细胞凋亡，但不刺激第二百分数细胞(或第二子群落细胞)的细胞凋亡。在多个实施方式中，可以使用体外IFN-γ处理来富集用于树突细胞疫苗中的黑色素瘤细胞的免疫学刺激群落，通过迫使偏向于凋亡性的黑色素瘤细胞经历细胞凋亡。一旦偏向于凋亡性的黑色素瘤细胞的子群落经历细胞凋亡，就可以将这些细胞去除并丢弃。

本项研究的方法如下。在测定自噬、细胞凋亡和MHCII类表达之前，用1000IU/mL的IFN-γ培育自体黑色素瘤肿瘤细胞系和模型黑色素瘤肿瘤细胞系72小时。通过采用对LC3II的抗体的免疫印迹并通过采用Enzo′s自噬检测试剂盒的流式细胞法，来检测自噬。通过使用7-AAD和Annexin-V染色和对MHCII类的抗体的流式细胞法，分别测定细胞凋亡和MHCII类诱导。

本研究的结果证明IFN-γ既诱导黑色素瘤细胞系中自噬性细胞群落又诱导凋亡性的细胞群落。凋亡性的群落主要发现于非粘附群落中，而自噬性细胞保持粘附到烧瓶上。用抑制剂3-甲基腺嘌呤(3-MA)阻断自噬会抑制对IFN-γ应答时MHCII类阳性细胞的诱导(39.4％IFN-γvs.10.0％IFN-γ+3-MA)。用泛半胱天冬酶抑制剂Z-VAD抑制半胱天冬酶活性来在经IFN-γ处理的细胞中防止细胞凋亡但不干扰自噬(2.75±0.15IFN-γvs.3.04±0.27IFN-γ+Z-VAD，倍数变化)。综上所述，细胞凋亡的诱导与低水平的自噬和MHCII类诱导有关。本发明提供消除凋亡性的细胞同时保护有活力的自噬性细胞的方法或程序以及IFN-γ处理能够增强这类基于细胞的免疫治疗的有效性。

第一研究的材料和方法

自体树突细胞生成

通过如前所述的塑料粘附法(Choi等(1998)Clin.CancerRes.4：2709-2716；Luft等(1998)Exp.Hematol.26：489-500)，生成树突细胞。简言之，将自体采血术产物进行ficoll-hypaque(GEHealthcare，Buckinghamshire，UnitedKingdom)密度梯度分离。将所得到的外周血单核细胞置于无抗生素的AIM-V培养基中(Invitrogen，GrandIsland，NY)，上述培养基补充有在以15×10⁶cells/mL的细胞培养瓶(Corning-Costar，Corning，NY)中各1000IU/mL的IL-4(CellGenix，Freisberg，Germany)和GM-CSF(Beriex，Seattle，WA)(DC培养基)。培育一小时后，丢弃未粘附群落，并将新鲜DC培养基加入到烧瓶中。第二天早晨，丢弃未粘附细胞，用室温PBS将烧瓶洗涤一次，并加入新鲜DC培养基。然后将烧瓶培养6天，在这段时间进行流式细胞评估来测定该方法(负载DC之前)所产生的DC的百分数和表型。

自体肿瘤细胞系生成

将先前报道的生成和表征的纯肿瘤细胞扩展到2亿个细胞，然后在15％FBS/ECS中在RPMI(完全培养基)中用1000IU/mL的IFN-γ(InterMune，Brisbane，CA)培育72小时，用来自铯源的100Gy辐照并冻存(Choi(1998)Clin.CancerRes.4：2709-2716；Luft(1998)Exp.Hematol.26：489-500；Dillman(1993)J.Immunother.EmphasisTumorImmunol.14：65-69)，如前所述。从冻存中恢复经IFN-γ处理且辐照的肿瘤细胞，用PBS洗涤3次，然后加入体外培养的DC，并培育约24小时。通过用橡皮淀帚轻轻刮取来收获负载了抗原的DC，并以相等的量在9-11个等份中冻存。获得细胞的等分部分，用于流式细胞评价，其代表负载后的DC细胞。

流式细胞法

使用对从BDPharmingenSanDiego，CA获得的表面标志物的单克隆抗体：结合PerCp的MHCII类抗体、结合APC的CD11c抗体，CD80抗体、CD83抗体、结合PE的CD86抗体，进行树突细胞群落的表型表征。使用同型对照来测定百分阳性细胞。使用来自BDPharmingen的对结合FITC的MHCI和II类的抗体、Annexin-V-PE和7-氨基放线菌素D(7-AAD)，进行肿瘤细胞的流式细胞法。在每个批次之前，使用CaliBRITE流式细胞校准(BDPharmingen)，并且在流式细胞数据的整个收集过程中使用相同的仪器设定。

免疫印迹测定

用MammalianProteinExtractionReagent(ThermoScientific，Rockford，IL)加蛋白酶抑制剂混合物(Roche，Indianapolis，IN)以10,000细胞/uL在冰上，制备细胞质的细胞裂解物。将大约25uLs/道的细胞裂解物在12.5％Tris-甘氨酸凝胶上分离，转移到PVDF膜，并用针对如下的抗体进行探测：钙网蛋白(MBL，Woburn，MA)、Hsp-60、Hsp-70、Hsp-90(R&DSystems，Minneapolis，MN)、HMBG-1(CellSignaling，Danvers，MA)、ICAM-1(SantaCruzBiotech，SantaCruz，CA)、Mel-4、Mart-1(Signet，Emeryville，CA)、酪氨酸酶(Upstate，LakePlacid，NY)和GADPH(Calbiochem，Darmstadt，Germany)。

免疫组织化学

使用免疫细胞化学程序，测定黑色素瘤系对一组(panel)抗原的表达。在存在或不存在1000IU/mLIFN-γ的情况下，在8室培养载玻片(ThermoFisher，Rochester，NY)中培养细胞。72小时后，用磷酸盐缓冲盐水(PBS)洗涤3次，并固定在冷丙酮中。阻断内源性过氧化物酶后，用适当的对所列抗原的一抗(primaryantibodies)培育细胞。使用生物素化抗鼠(anitmouse)或兔免疫球蛋白、结合超敏感酶的链霉亲和素标记(SuperSensitiveenzyme-conjugatedstreptavidinlabeling)和辣根过氧化物酶色原体(chromogen)以及底物试剂盒(Biogenex，SanRamon，CA)，进行免疫组织化学。采用同型匹配对照抗体，研究如下抗人多克隆或单克隆抗体的活性：S-100和HMB-45(Biogenex，SanRamon，CA)、Mel-2、Mel-5、art-1(Signet，Dedham，MA)、酪氨酸酶和Mage-1(ThermoScientific，Fremont，CA)、Melan-A、HLA-I类和HLA-II类(Dako，Denmark)。

统计分析

在双尾检验的学生t检验中，两样本的方差相等。通过p值≤0.05确定显著差异。

第一研究的结果

在完全培养基中，对用IFN-γ培育72小时应答时，在自体黑色素瘤肿瘤细胞系中差异地引起细胞死亡。在经IFN-γ处理的细胞上或者未经IFN-γ处理的细胞上，进行台盼蓝拒染料测定，其表明在经IFN-γ处理的细胞中向更低活力的显著趋势(89.1±6.8％vs.84.9±9.3％，p＝0.014，N＝47)。通过流式细胞法分析四个自体黑色素瘤细胞系的样本的细胞凋亡诱导(图1A)，其表明黑色素瘤细胞对IFN-γ诱导的细胞凋亡差异地敏感，其中一些细胞显示更迟的细胞凋亡或“死亡”群落(7-AAD+/Annexin-V+)，而其他细胞显示出更早的细胞凋亡或“即将死亡”群落(7-AAD-/Annexin-V+)的信号。IFN-γ处理后所得到的凋亡性细胞的存在与无进展生存期和总生存期中显著降低有关(Comforth(2010)CancerImmunol.Immunother.Resistancetotheproapoptoticeffectsofinterferon-gammaonmelanomacellsusedinpatient-specificdendriticcellimmunotherapyisassociatedwithimprovedoverallsurvival)。对数秩检验(log-ranktest)表明IFN-γ处理黑色素瘤肿瘤细胞后较低的活力与所研究患者中总生存期明显相关。

将在存在或不存在IFN-γ的情况下发育的细胞裂解物进行各种分子的免疫印迹，这些分子可能是免疫的重要介导物(图1B)。在用IFN-γ处理的黑色素瘤细胞的设定中，热休克蛋白似乎被差异性地调控，但基本上仍存在于细胞制剂中，尤其是在hsp-70的情况下。内质网蛋白、钙网蛋白和高迁移率族蛋白1(HMGB-1)似乎在某些情况下IFN-γ处理后被正调节(图1B)。相反，普通黑色素瘤抗原(mel-4、Mart-1和酪氨酸酶)通常似乎被IFN-γ负调节，而ICAM-1被显著正调节(图1C)，ICAM-1是一种与对淋巴细胞介导的细胞毒性的敏感度有关的淋巴细胞黏附分子(Hamai(2008)CancerRes.68：9854-9864)。事实上发现，经IFN-γ处理的黑色素瘤肿瘤细胞对细胞毒性T淋巴细胞(CTL)活性更敏感。此外，一组黑色素瘤相关抗原的免疫组织化学表明，IFN-γ导致在许多考查的抗原中抗原表达的负调节(表1)。

IFN-γ的使用导致主要组织相容性复合体I类和II类的正调节(Bohn(1998)J.Immunol.161：897-908)。如图1D中所示，用IFN-γ处理自体黑色素瘤细胞导致几乎普遍的且显著的MHCI类正调节(p＝2.8×10^-8)，中值倍数诱导(medianfoldinduction)为2.91±1.13(95％C.I.)。此外，MHCII类的平均荧光强度也显著较高，但稍逊色(p＝0.039)，中值诱导为4.23±2.66(95％C.I.)。在自体黑色素瘤细胞表面上MHCII类分子的水平通常低于MHCI类分子，但在70％的情况下，对IFN-γ处理应答时对于MHCII类分子来说诱导高2倍，这是因为MHCII类表达的低初始水平。在抗原负载到树突细胞上时，肿瘤细胞上这些分子的存在可以提供将MHC复合体“易装”(“crossdressing”)到抗原呈递细胞上的机会(Dolan(2006)J.Immunol.277：6018-6024，Dolan(2006)J.Immunol.176：1447-1455)。

用IFN-γ培育一组四个代表性自体黑色素瘤细胞系，并等量负载到树突细胞上，然后通过流式细胞法测定CD80、CD83、CD86和MHCII类的表达。结果表明，在负载经IFN-γ处理的黑色素瘤细胞后，观察到表达CD83的树突细胞的阳性群落百分数的小幅但明显增加(图2)。此外，在CD86散点图(左上象限)中标出更多的未经处理的肿瘤细胞，结果是CD86阳性群落百分数明显减少，表明未经IFN-γ处理的肿瘤细胞仍然存在。此效果最可能地是由于IFN-γ诱导细胞凋亡，因为凋亡性细胞更可能被之前报告的树突细胞吞噬。

如图3中所示，负载前DC的样本表明其表达CD80(39.0±16.2％)、CD83(7.1±6.9％)、CD86(73.6±19.5％)并且是MHCII类阳性的，并且具有96.2±5.0％活力。负载的DC具有显著更高百分数的CD83(9.4±7.1％，p＝0.019)和显著更高的平均荧光强度(172.9±79.0，p＝0.0009)，表明用经辐照的、IFN-γ处理的肿瘤细胞负载DC在一些树突细胞中诱导成熟(图3B)。

第一研究讨论

在抗肿瘤免疫的上下文中，抗原负载、成熟和施用的方案以及在基于树突细胞(DC)的免疫治疗的指导是本领域技术人员已知的。这种类型的治疗包含经纯化的自体肿瘤细胞作用抗原的来源的用途，并且包含与肿瘤相关抗原的患者特异库(repertoire)(Selvan(2010)MelanomaRes.20：280-292；Dillman(2007)CancerBiother.Radiopharm.22：309-321)。一些临床试验使用未纯化的自体实体(bulk)肿瘤。这种抗原来源可能具有已污染的成纤维细胞和坏死组织(O′Rourke(2007)MelanomaRes.17：316-322)。与肿瘤干细胞有关的抗原可以存在于经纯化的细胞系中(Dillman(2006)NewEngl.J.Med.355：1179-1181)。IFN-γ处理提高MHCII类分子的表达。MHCII类分子对于对基于树突细胞的治疗的应答非常重要。存在于吞噬物质中的分子(诸如钙网蛋白、HMGB-1和热休克蛋白)可对成熟信号有贡献，该贡献可以是除细胞因子混合物贡献之外的贡献。本发明中DCs的制备表现出成熟的趋势，其可与晚期凋亡性细胞的吞噬有关(Ip(2004)J.Immunol.173：189-196)。已经知晓凋亡性细胞的使用与树突细胞的生成有关，与负载肿瘤细胞裂解物或负载坏死细胞的树突细胞相比，该树突细胞在刺激淋巴细胞IFN-γ分泌方面更有效，表明负载了凋亡性细胞的树突细胞在体内更有效。对IFN-γ的促凋亡(proapoptotic)作用的耐性与更好的临床结果有关(Cornforth(2010)CancerImmunol.Immunother.60：123-131)。成熟DC分泌的白细胞介素-12(IL-12)可以导致细胞毒性淋巴细胞(CTL；CD8⁺T细胞)稳健的活性。活体外成熟是否导致持久的肿瘤免疫的问题已经得到解决。也已经表明，通过未成熟DC诱导调节性T细胞的风险(抑制抗原特异性CTLs)发生在使用细胞因子成熟的DC时。本文调查导致成熟的信号传导活动的顺序的重新评估，以改善DC成熟方案。因此，在本研究中在不需要体外细胞因子成熟的情况下经辐照的肿瘤细胞作为抗原来源的用途可能是DC免疫治疗的更优选的方法，因为本文中的证据表明DC已经开始成熟过程。注射后，这些“正在成熟”("maturing")的DCs可以通过分泌趋化因子，来完成成熟过程，该趋化因子会吸引表达许可(licensing)、抗原特异性CD40L的CD4⁺T细胞。已经证明，诸如树突细胞在对佐剂GM-CSF应答时所产生的CCL17/TARC的血清趋化因子与更好的无进展生存率有关。在某些情况下，树突细胞活化淋巴细胞可能需要诸如CD80和CD86的辅助刺激分子的表达。作为成熟的标志物，CD83表达在成熟树突细胞上，并且可对应于能够诱导更有效免疫应答的树突细胞(Prazma(2008)Immunol.Lett.115：1-8)。这表示在药物组合物中所有细胞中的一部分。在任何药物团中，成熟DCs单独的数目可以与更好的患者应答有关或者可以与更好的患者应答无关。

第一研究的表

表1：使用患者特异性细胞基于树突细胞的治疗中黑色素瘤细胞系中对干扰素-γ应答时与普通肿瘤相关的抗原表达水平的变化。

N＝27个样本。

第二研究的材料和方法

黑色素瘤细胞系

商业可购买的黑色素瘤细胞系A375、SK-Mel-5和SK-Mel-28从AmericanTypeCultureCollection(产品目录编号：CRL-169，HTB-70，andHTB-72)购得。将A375、SK-Mel-5和SK-Mel-285％保持在RPMI-1640中的5％胎牛血清中(Invitrogen，cataloguenumber11875-085)。泛蛋白酶抑制剂z-VAD-fmk及其对照化合物z-FA-fmk从BDPharmingen(目录号：550377和550411)见得。按照每个制造商的说明书(InvivoGen，目录号psetz-gfplc3和lyec-12)进行GFP-LC3的转染，并且在OlympusBX-51显微镜上使用DP72数码相机拍摄显微图像。在测定之前，用1000U/mL的IFN-γ(InterMune，Cat#)培育肿瘤细胞系72小时。如(Hamai(2008)CancerRes.68：9854-9864；Tyring(1984)J.Natl.CancerInst.73：1067-1073)所述，通过外科肿瘤样本的酶消化，在补充了胎牛血清且富含小牛血清(OmegaScientific，SanDiego，CA)加1mM丙酮酸钠、1mM的谷氨酰胺和HEPES缓冲液的RPMI-1640组织培养介质中培养，来生成患者特异性细胞系。在OlympusCK-2显微镜上用NikonDS-L1数码显微相机拍摄相衬(phasecontrast)显微图像。

自体树突细胞生成

通过ficoledapheresisproducts的塑料粘附法(Selvan(2007)Int.J.Cancer.122：1374-1383；Cornforth(2010)CancerImmunol.60：123-131)，在补充有各1000IU/mL的IL-4(CellGenix，Cat#)和GM-CSF(Bertex，Seattle，WA)的不含抗生素的AIM-V培养基(Invitrogen，GrandIsland，NY)中，生成树突细胞。然后在用经IFN-γ处理的、辐照的自体肿瘤细胞负载之前，将烧瓶培养6天。

流式细胞法

通过使用对MHCII类的抗体、Annexin-V-PE和7-氨基放线菌素D(7-AAD)，来对IFN-γ应答时肿瘤细胞死亡和主要组织相容性II类的表达变化进行分析，并在Beckton-DickensonFACS流式细胞仪上采集。

Western印迹测定

将黑色素瘤肿瘤细胞裂解物分解在10-12.5％SDS-PAGE上，转移到硝酸纤维素，用一抗探测过夜，用二抗结合且用NovexAP显色底物(Invitrogen，Carlsbad，CA)显色以产生带(bands)。分别以制造商推荐的稀释比例1∶100和1∶10000，使用LC3-B抗体(CellSignalingTechnologies，Boston，MA)和GADPH(EMDbiosciences，Germany)的抗体。

第二研究的说明

调查的是在体外IFN-γ处理黑色素瘤肿瘤细胞后自噬的诱导、细胞凋亡和MHCII类分子。在测定自噬、细胞凋亡和MHCII类表达之前，使用1000IU/mL的IFN-γ培育自体和模型黑色素瘤肿瘤细胞系72小时。通过采用对LC3II的抗体的免疫印迹并通过采用Enzo的CytolD自噬检测试剂盒的流式细胞法，来检测自噬。通过使用7-AAD和Annexin-V染色和对MHCII类的抗体的流式细胞法，分别测定细胞凋亡和MHCII类诱导。

第二研究的结果

结果表明，IFN-γ既诱导黑色素瘤细胞系中自噬性细胞群落又诱导凋亡性的细胞群落。凋亡性的群落主要发现于非粘附群落中，而自噬性细胞保持粘附到烧瓶上。用抑制剂3-甲基腺嘌呤(3-MA)阻断自噬会抑制对IFN-γ应答时MHCII类阳性细胞的诱导(39.4％IFN-γvs.10.0％IFN-γ+3-MA)。用泛半胱天冬酶抑制剂Z-VAD抑制半胱天冬酶活性来在经IFN-γ处理的细胞中防止细胞凋亡但不干扰自噬(2.75±0.15IFN-γvs.3.04±0.27IFN-γ+Z-VAD，倍数变化)。细胞凋亡的诱导与低水平的自噬和MHCII类表达有关。接受负载了自体肿瘤细胞的树突细胞的患者具有改善的无进展生存期和总生存期(分别p0.003和p0.002)，该树突细胞是从经干扰素-γ处理纯化的肿瘤细胞系获得的非凋亡性的自噬性的细胞。在干扰素-γ处理后消除凋亡性的细胞同时保护有活力的自噬性细胞的程序，可以增强这类基于细胞的免疫治疗的有效性。

研究的汇总分析

自体、增殖、自我更新肿瘤细胞(假定肿瘤干细胞和/或早期祖细胞)对于转移性癌症的新库(depots)的建立是非常重要的，并且可以是用于疫苗的抗原的优良来源。这些研究涉及采用来自这些细胞的抗原免疫对生存的影响。

方法

从三个连续第二阶段试验汇集数据，所有试验包括患有记录的转移性黑色素瘤的患者，以使用用来自自体肿瘤细胞的细胞培养基的抗原的方案治疗患者。每周给予皮下(S.C.)注射三周时间，然后每月注射5个月的时间：用经辐照的肿瘤细胞(TC)注射74个患者；用已经使用经辐照的自体肿瘤细胞(NCI-V01-1646)共同培养过的自体树突细胞(DC)注射54个患者；在随机的II期试验中，用TC注射24个患者，并用DC注射18个患者(NCT00436930)。

结果

表2总结了每个试验中的总生存期/率(OS)。在汇总分析中，有98个TC和72个DC患者。在年龄(51，52)、男性性别比例(62％，62％)、治疗时无患病证据的比例(46％，47％)和治疗时存在M1c内脏疾病比例(13％，14％)的方面，特征类似。在用DC治疗的患者中，OS更长(中值63.1vs20.2个月，5-年OS51％vs26％，p＝0.0002Mantle-Cox对数秩检验)。随机试验中OS的差异也很显著(p＝0.007)。

用来自自体增殖、自我更新肿瘤细胞的抗原初免的患者特异DC疫苗与鼓励长期生存率相关，并且优于已诊断为转移性黑色素瘤的患者中的患者特异TC疫苗。

表2
						疫苗	#患者	#死亡	中值OS	2年OS	5年OS
TC	74	60	20.3mos	45％	28％
						DC	54	31	58.4mos	72％	50％
TC	24	16	15.9mos	31％	---
						DC	18	5	未达到	72％	---

来自三个患者特异性疫苗的试验的生存曲线示于图13中。使用自体肿瘤细胞，与自体树突细胞(DC)结合或不与其结合，进行连续I期和II期临床试验。皮下注射每周一次、注射三(3)周，每月一次、注射五(5)个月：用经辐照但未经IFN-γ预处理的肿瘤细胞注射74位患者，用已与经辐照的、经干扰素-γ预处理的自体肿瘤细胞(TC)共同培养的自体树突细胞注射54位患者。在随机的II期试验中，用未经IFN-γ预处理的肿瘤细胞(TC)注射24位患者，并用树突细胞(DC)加未经IFN-γ预处理的肿瘤细胞(TC)注射18名患者。

IFN-γ处理的表征

IFN-γ处理迫使偏向细胞凋亡的黑色素瘤细胞实际地进入细胞凋亡，并因此可以通过吸附/浮动技术去除。甚至在选择采用吸附/浮动技术之前，IFN-γ处理就已经导致更大量的自噬性、非凋亡性的细胞。如选择采用吸附/浮动技术后测得的，IFN-γ处理就已经导致更大量的自噬性、非凋亡性的细胞。IFN-γ处理就已经导致更大量的自噬性、非凋亡性的细胞，其中提高自噬导致更大的抗原呈递细胞的交叉启动(cross-priming)。

因此，尽管前面已经示出并描述和指出了应用于示例性实施方式和/或其各个方面的本发明的基本特征，但应当理解的是，在不偏离本发明和/或权利要求书的精神的情况下，本领域技术人员可以在细节和形式方面对示例性实施方式、本发明及其各个方面做出各种省略、重置和替换和改变。例如，本发明明确指出，以基本相同的方式进行、实现基本相同的功能、得到基本相同的结果的那些元素和/或方法步骤的所有组合都在本发明的范围内。此外，应当认识到，结合本发明的任何公开的形式或实施方式而示出和/或描述的各种结构和/或元素和/或方法步骤可以作为设计选择的一般主题而包括在任何其他公开或描述或暗示形式或实施方式中。因此，其并不意图限制本发明的保护范围。所有这种修改应当在本申请所附权利要求的保护范围内。

本说明书中所引用的所有出版物、专利、专利申请、文献和序列表通过此引用并入本文，如同在本文中完整陈述一样。

提供摘要是为了符合37CFR§1.72(b)的规定，使读者能够快速地了解本文公开技术的本质和要点。应该理解所提交的摘要并不能用于限制权利要求的范围。

Claims (14)

1.组合物，其包含：

至少一个来自受试者的经干扰素-γ(IFN-γ)处理的黑色素瘤细胞，所述黑色素瘤细胞与至少一个来自相同受试者的抗原呈递细胞（APC）在体外接触，其中所述至少一个黑色素瘤细胞是自噬性的且非凋亡性的。

2.如权利要求1所述的组合物，其中所述至少一个黑色素瘤细胞表达MHCII类。

3.如权利要求1所述的组合物，其中所述APC是树突细胞、巨噬细胞或B细胞。

4.如权利要求1所述的组合物，其中所述至少一个黑色素瘤细胞包含黑色素瘤特异性肽，并且作为接触步骤的结果，至少一种黑色素瘤特异性肽被至少一个APC摄取并部分或基本上被至少一个APC加工。

5.免疫有效量的权利要求1的组合物在制备用于在患有黑色素瘤的受试者中刺激对黑色素瘤特异性抗原免疫应答的药物中的用途。

6.如权利要求5所述的用途，其中所述免疫应答包括CD4⁺T细胞应答、CD8⁺T细胞应答和B细胞应答中的一种或多种。

7.如权利要求6所述的用途，其中通过ELISPOT测定、通过细胞内细胞因子染色测定、通过四聚体测定、或者通过检测抗原特异性抗体的产生来确定所述CD4⁺T细胞应答、CD8⁺T细胞应答或B细胞应答。

8.如权利要求5所述的用途，其中所述免疫应答导致2年总生存率至少60%。

9.如权利要求5所述的用途，其中免疫刺激量被配置成皮下注射所述疫苗。

10.如权利要求9所述的用途，其中每周给予疫苗注射持续三个月，然后每月给予疫苗注射持续五个月。

11.制备包含含有至少一种黑色素瘤衍生的肽的树突细胞的黑色素瘤疫苗的方法，其包括：

用防止细胞分裂的试剂处理从患有黑色素瘤的受试者获得的黑色素瘤细胞；

用IFN-γ或IFN-γ模拟物处理所述黑色素瘤细胞；

选择自噬性和非凋亡性的黑色素瘤细胞；

将所选择的黑色素瘤细胞与来自相同受试者的自体树突细胞在体外接触；并且

使自体树突细胞从所选择的黑色素瘤细胞获得至少一种黑色素瘤衍生的肽，以产生黑色素瘤疫苗，其中所述疫苗有效提供与患者特异性肿瘤细胞疫苗相比优越的长期生存率。

12.组合物，其包含通过如权利要求11所述的方法制得的黑色素瘤疫苗。

13.免疫刺激量的如权利要求1所述的组合物在制备用于治疗黑色素瘤患者中黑色素瘤的药物中的用途。

14.如权利要求1所述的组合物在制备用于治疗黑色素瘤的药物中的用途。