CN105086002B - 一种螺旋体糊精槲皮素包合物及其制备方法 - Google Patents
一种螺旋体糊精槲皮素包合物及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105086002B CN105086002B CN201510490837.3A CN201510490837A CN105086002B CN 105086002 B CN105086002 B CN 105086002B CN 201510490837 A CN201510490837 A CN 201510490837A CN 105086002 B CN105086002 B CN 105086002B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- quercetin
- dextrin
- conveyor screw
- inclusion compound
- starch
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Cosmetics (AREA)
Abstract
本发明公开了一种螺旋体糊精槲皮素包合物及其制备方法。该方法先将淀粉原料酶解；灭酶后将温度调节至30～80℃；加入由无水乙醇配制的α‑萘酚溶液，恒温搅拌10～30分钟，中和pH至6.0～6.5，干燥、粉碎制得螺旋体糊精溶液。滴加溶有质量百分比为10～20％；冷却至室温后，冷藏；离心、洗涤、干燥、粉碎后得黄色粉末状产品。本发明产品具有较好的氧化稳定性，改善了槲皮素生物利用性低等缺点，淀粉经酶解及添加诱导剂处理后，制备得到的螺旋体糊精槲皮素包合物，每克包合物中槲皮素的含量为32‑40毫克，包合率为79‑84％，并且槲皮素的生物活性也得到改，扩大了槲皮素的应用范围。
Description
技术领域
本发明涉及变性淀粉的生产方法，具体是指利用生物酶技术和添加诱导剂相结合制备螺旋体糊精槲皮素包合物的方法。
背景技术
槲皮素是在植物界中大量存在的一种黄酮类化合物，是黄酮类化合物中的重要一员，属于黄酮醇类化合物，在植物中多以糖苷的形式存在于许多植物的花、叶、果实中，如芦丁、槲皮甙、金丝桃甙等。槲皮素及其衍生物具有如抗氧化和清除氧自由基、降低血压、保护心肌缺血、避免缺血再灌注损伤、增强免疫功能及抗癌、抗菌、抗病毒、镇痛，抗心律失常、扩张血管、抗肿瘤等作用，并且其对人体无毒、无害、无致癌、无致死、无致畸等优点，国外曾试用于多种疾病的治疗，并取得了良好的效果。因此近年来，对槲皮素及其衍生物的合成和药理活性研究备受关注。但天然的槲皮素因含有五个极性较大的羟基基团，亲酯性与亲水性都较弱，存在强烈的首过效应、生物利用度极低、临床治疗方面应用局限性强，使其在工业中的应用受到了很大的限制。
螺旋体糊精是一种由D-吡喃葡萄糖单元通过α-1，4糖苷键连接而成的轻度分支或线形多糖，呈右手螺旋结构，在螺旋内部只含氢原子，是亲油性的，羟基位于螺旋外侧。在适当条件下，螺旋体糊精分子可与无机或有机的分子络合，形成螺旋状内络物。螺旋体糊精和环糊精具有一个共同的性质，即均能作为一种主体分子与各种客体分子发生包结络合作用形成包结络合物，客体分子可位于螺旋空腔内部，也可位于两个螺旋之间。但是现有技术用于研究螺旋体糊精包结络合功能所用的螺旋体糊精多为从原淀粉中分离得到，成本较高，不利于螺旋体糊精包结络合体的工业化生产和应用。
发明内容
本发明的目的在于提供一种生产成本低、生物活性高的螺旋体糊精槲皮素包合物及其制备方法，以改善槲皮素的使用特性和应用范围。
本发明采用脱支酶对淀粉进行脱支，得到大量的螺旋体糊精分子。通过普鲁兰脱支酶限制性酶解可控制螺旋体糊精的分子量和聚合度得到适于进行包结络合作用的螺旋体糊精。加入螺旋空腔诱导剂可促进螺旋体糊精单螺旋结构的形成同时又增大其空腔尺寸，进而提高螺旋体糊精的包结络合能力。目前国内关于利用脱支酶酶解作用制备螺旋体糊精并加入α-萘酚诱导剂制备螺旋体糊精包结络合载体的方法还未见报道。本发明螺旋体糊精通过疏水相互作用与槲皮素包结络合，达到改善槲皮素溶解性及生物利用性低的缺点。本发明制备的螺旋体糊精槲皮素包结络合物，槲皮素包结在螺旋体糊精的螺旋空腔内，添加诱导剂后槲皮素与螺旋体糊精的结合更加紧密。
本发明的目的通过如下技术方案实现：
一种螺旋体糊精槲皮素包合物的制备方法，包括如下步骤：
1)淀粉原料配成淀粉乳，在65～75℃下搅拌糊化；糊化完成后，将糊化液冷却，调节pH值至4.5～6.0，加入脱支酶，用量为每克干淀粉加入脱支酶10～30u，在55～65℃下搅拌反应2～5小时；调节温度至90-99℃，并保持10～30分钟，灭酶，加入用无水乙醇配制的α-萘酚溶液，恒温搅拌10～30分钟，得螺旋体糊精溶液；
2)将所得螺旋体糊精溶液的温度调节至30～80℃，滴加溶有质量百分比为10～20％的槲皮素冰醋酸溶液，恒温搅拌反应1～6小时，每克干淀粉加入槲皮素冰醋酸溶液0.25～0.5g；冷却至室温后冷藏；
3)将步骤(2)的产品离心、洗涤、干燥、粉碎后得黄色粉末状产品。
为了更好的实现本发明，优选地，所述淀粉原料为木薯淀粉、马铃薯淀粉、小麦淀粉、蜡质玉米淀粉、蜡质小麦淀粉或玉米淀粉。
优选地，所述脱支酶为普鲁兰酶。
优选地，所述α-萘酚的浓度为1.0～3.0mg/mL，用量为每克干淀粉加入α-萘酚溶液2.0～6.0mL。
优选地，所述淀粉原料配成淀粉乳是淀粉原料用NaOH溶液配成淀粉乳；所述淀粉乳的质量百分比浓度为8％～20％；所述NaOH溶液的pH值为8-9。
优选地，所述糊化的时间为20～30分钟。
优选地，所述冷藏为放入4℃冰箱中冷藏18～36小时。
优选地，所述洗涤为用去离子水洗涤多次，直至溶液中无残留冰醋酸。
一种螺旋体糊精槲皮素包合物，由上述制备方法制得；每克螺旋体糊精槲皮素包合物中槲皮素的含量为32-40毫克，包合率为79-84％。
本发明与现有技术相比，具有如下优点和有益效果：
(1)采用生物酶解及添加诱导剂的技术对淀粉原料进行改性，得到具有良好包结络合功能的螺旋体糊精，将其应用于包结络合槲皮素；经测定发现，淀粉经酶解及添加诱导剂处理后，制备得到的螺旋体糊精槲皮素包合物，每克包合物中槲皮素的含量为32-40毫克，包合率为79-84％，并且槲皮素的生物活性也得到改善，扩大了槲皮素应用范围。
(2)本发明具有生产效率高，成本低，产品质量好的特点。
附图说明
图1为未包合凝沉木薯螺旋体糊精(a)和实施例1所得木薯螺旋体糊精槲皮素包合物的红外图谱(b)。
图2为未包合凝沉木薯螺旋体糊精(a)和实施例1所得木薯螺旋体糊精槲皮素包合物的X-射线衍射图谱(b)。
具体实施方式
为更好理解本发明，下面结合实施例对本发明做进一步地说明。本发明有许多成功的实施例，下面列举六个具体的实施例，但本发明要求保护的范围并不局限于实施例表述的范围。
实施例1
第一步木薯淀粉(30g，干基)用pH为8.0的NaOH溶液配成质量百分比浓度为15％的淀粉乳，置于三口烧瓶中在70℃下搅拌糊化25分钟；完成后，将糊液冷却，调节pH至4.5，加入普鲁兰酶(OPTIMAXL-1000，杰能科生物工程有限公司)，用量为每克干淀粉加入普鲁兰酶10u，在60℃下搅拌反应4小时；调节温度至99℃并保持20分钟灭酶，加入用无水乙醇配制的α-萘酚溶液，控制α-萘酚浓度为1.5mg/mL，用量为每克干淀粉加入α-萘酚溶液4.0mL，恒温搅拌15分钟，得木薯螺旋体糊精溶液；
第二步将步骤(1)所得木薯螺旋体糊精溶液的温度调节至60℃，将溶有质量百分比为10％的槲皮素冰醋酸溶液15g滴加入上述溶液中，恒温搅拌反应4小时；冷却至室温后，放入4℃冰箱中冷藏18小时；
第三步将步骤(2)的产品离心、洗涤、干燥、粉碎后得淡黄色粉末状产品。得到的产品通过紫外分光光度法测定表明，每克产品中槲皮素的含量为39.75毫克，包合率达到84.11％。通过荧光淬灭实验对该产品的抗氧化性能进行测定，结果表明由添加α-萘酚诱导剂的螺旋体糊精槲皮素包合物产品，其氧自由基清除能力为116.2μmolTrolox/g，与未添加诱导剂的包合物(氧自由基清除能力为98.2μmolTrolox/g)相比，氧自由基清除能力明显增强。
有关槲皮素的含量，包合率，抗氧化性能的测试方法说明如下：
紫外分光光度法是测定槲皮素含量的常用方法，具体测定方法为：精密称取绝干的包合物12.5mg，加60％无水乙醇使其溶解，用60％无水乙醇定容至50mL，用分光光度计在373nm波长下测其吸光度值，取三次测量的平均值，对照槲皮素的标准曲线，计算包合物中槲皮素的含量及包合率。槲皮素含量的计算方法如下：
包合物样品中的槲皮素含量公式：X＝(C1×V1×N)/(m0×1000)；其中：X为每克样品中的槲皮素含量mg/g，C1为从标准曲线上确定的样品液中的槲皮素含量mg/mL，V1为样品总体积mL，N为定容后的稀释倍数，m0为样品质量g。
包合物样品中的槲皮素包合率公式：Y＝(m1×X×100％)/(m2×1000)；其中：Y为槲皮素包合率％，m1为得到包合物的质量g，X为每克样品中槲皮素的含量mg/g，m2为反应时加入槲皮素的质量g。
当螺旋体糊精中包结络合的槲皮素达到一定量时，通过红外光谱可测得其结构的变化，主要表现为在1715cm-1左右出现一个新的槲皮素羰基吸收峰(如图1)。螺旋体糊精包结络合有机物形成包合物后，其结晶结构通常为典型的V型，由图2可知，与未包合的凝沉螺旋体糊精的B型结晶结构不同，本发明所得包结络合产品，其结晶结构为明显的V型。
氧自由基清除能力是衡量槲皮素抗氧化性能大小的重要指标。荧光淬灭实验是测定抗氧化性能的常用实验方法。
具体方法为：在96孔荧光板各微孔中加入待测样品20μL(将Trolox用相应的缓冲液做适当的稀释)，接着加入75mmol/L磷酸盐缓冲液和70nmol/LFL各20μL，并将微孔板置于酶标仪中，在37℃下孵化15min后，用多道移液器迅速在各孔中加入12mmol/LAAPH140μL启动反应，在37℃以激发波长485nm，发射波长520nm，每2min测定一次各微孔的荧光强度，测定时间设在荧光衰减呈基线后为止，即设为2h，并计算样品ORAC值。
实施例2
第一步马铃薯淀粉(30g，干基)用pH为8.0的NaOH溶液配成质量百分比浓度为10％的淀粉乳，置于三口烧瓶中在65℃下搅拌糊化30分钟；完成后，将糊液冷却，调节pH至5.0，加入普鲁兰酶(OPTIMAXL-1000，杰能科生物工程有限公司)，用量为每克干淀粉加入普鲁兰酶15u，在55℃下搅拌反应5小时；调节温度至95℃并保持15分钟灭酶，加入用无水乙醇配制的α-萘酚溶液，控制α-萘酚浓度为1.0mg/mL，用量为每克干淀粉加入α-萘酚溶液6.0mL，恒温搅拌10分钟，制得马铃薯螺旋体糊精溶液；
第二步将步骤(1)所得马铃薯螺旋体糊精溶液的温度调节至70℃，将溶有质量百分比为10％的槲皮素冰醋酸溶液10g滴加入上述溶液中，恒温搅拌反应3小时；冷却至室温后，放入4℃冰箱中冷藏24小时；
第三步将步骤(2)的产品离心，洗涤，干燥，粉碎后得淡黄色粉末状产品。得到的产品通过紫外分光光度法测定(测定方法同施例1)表明，每克产品中槲皮素的含量为38.23毫克，包合率达到83.54％。通过荧光淬灭实验对该产品的抗氧化性能进行测定，结果表明由添加α-萘酚诱导剂的螺旋体糊精槲皮素包合物产品，其氧自由基清除能力为110.5μmolTrolox/g，与未添加诱导剂的包合物(氧自由基清除能力为97.2μmolTrolox/g)相比，氧自由基清除能力明显增强。
实施例3
第一步小麦淀粉(30g，干基)用pH为8.0的NaOH溶液配成质量百分比浓度为16％的淀粉乳，置于三口烧瓶中在68℃下搅拌糊化20分钟；完成后，将糊液冷却，调节pH至4.5，加入普鲁兰酶(OPTIMAXL-1000，杰能科生物工程有限公司)，用量为每克干淀粉加入普鲁兰酶25u，在65℃下搅拌反应3小时；调节温度至92℃并保持15分钟灭酶，加入用无水乙醇配制的α-萘酚溶液，控制α-萘酚浓度为2.0mg/mL，用量为每克干淀粉加入α-萘酚溶液3.0mL，恒温搅拌20分钟，得小麦螺旋体糊精溶液；
第二步将步骤(1)所得小麦螺旋体糊精溶液的温度调节至50℃，将溶有质量百分比为15％的槲皮素冰醋酸溶液7.5g滴加入上述溶液中，恒温搅拌反应3小时；冷却至室温后，放入4℃冰箱中冷藏18小时；
第三步将步骤(2)的产品离心，洗涤，干燥，粉碎后得淡黄色粉末状产品。得到的产品通过紫外分光光度法测定表明，每克产品中槲皮素的含量为36.38毫克，包合率达到81.67％。通过荧光淬灭实验对该产品的抗氧化性能进行测定，结果表明由添加α-萘酚诱导剂的小麦螺旋体糊精槲皮素包合物产品，其氧自由基清除能力为106.3μmolTrolox/g，与未添加诱导剂的包合物(氧自由基清除能力为93.5μmolTrolox/g)相比，氧自由基清除能力明显增强。
实施例4
第一步蜡质玉米淀粉(30g，干基)用pH为8.0的NaOH溶液配成质量百分比浓度为8％的淀粉乳，置于三口烧瓶中在73℃下搅拌糊化28分钟；完成后，将糊液冷却，调节pH至6.0，加入普鲁兰酶(OPTIMAXL-1000，杰能科生物工程有限公司)，用量为每克干淀粉加入普鲁兰酶15u，在65℃下搅拌反应2小时；调节温度至96℃并保持30分钟灭酶，加入用无水乙醇配制的α-萘酚溶液，控制α-萘酚浓度为3.0mg/mL，用量为每克干淀粉加入α-萘酚溶液2.0mL，恒温搅拌15分钟，得蜡质玉米螺旋体糊精溶液；
第二步将步骤(1)所得蜡质玉米螺旋体糊精溶液的温度调节至80℃，将溶有质量百分比为20％的槲皮素冰醋酸溶液10g滴加入上述溶液中，恒温搅拌反应6小时；冷却至室温后，放入4℃冰箱中冷藏36小时；
第三步将步骤(2)的产品离心、洗涤、干燥、粉碎后得淡黄色粉末状产品。得到的产品通过紫外分光光度法测定表明，每克产品中槲皮素的含量为32.05毫克，包合率达到79.36％。通过荧光淬灭实验对该产品的抗氧化性能进行测定，结果表明由添加α-萘酚诱导剂的蜡质玉米螺旋体糊精槲皮素包合物产品，其氧自由基清除能力为99.78μmolTrolox/g，与未添加诱导剂的包合物(氧自由基清除能力为88.12μmolTrolox/g)相比，氧自由基清除能力明显增强。
实施例5
第一步蜡质小麦淀粉(30g，干基)用pH为8.0的NaOH溶液配成质量百分比浓度为20％的淀粉乳，置于三口烧瓶中在75℃下搅拌糊化27分钟；完成后，将糊液冷却，调节pH至6.0，加入普鲁兰酶(OPTIMAXL-1000，杰能科生物工程有限公司)，用量为每克干淀粉加入普鲁兰酶30u，在60℃下搅拌反应5小时；调节温度至91℃并保持10分钟灭酶，加入用无水乙醇配制的α-萘酚溶液，控制α-萘酚浓度为2.0mg/mL，用量为每克干淀粉加入α-萘酚溶液3.0mL，恒温搅拌30分钟，得蜡质小麦螺旋体糊精溶液；
第二步将步骤(1)所得蜡质小麦螺旋体糊精溶液的温度调节至30℃，将溶有质量百分比为15％的槲皮素冰醋酸溶液9g滴加入上述溶液中，恒温搅拌反应1小时；冷却至室温后，放入4℃冰箱中冷藏24小时；
第三步将步骤(2)的产品离心，洗涤，干燥，粉碎后得淡黄色粉末状产品。得到的产品通过紫外分光光度法测定表明，每克产品中槲皮素的含量为34.63毫克，包合率达到80.89％。通过荧光淬灭实验对该产品的抗氧化性能进行测定，结果表明由添加α-萘酚诱导剂的蜡质小麦螺旋体糊精槲皮素包合物产品，其氧自由基清除能力为102.82μmolTrolox/g，与未添加诱导剂的包合物(氧自由基清除能力为90.41μmolTrolox/g)相比，氧自由基清除能力明显增强。
实施例6
第一步玉米淀粉(30g，干基)用pH为8.0的NaOH溶液配成质量百分比浓度为18％的淀粉乳，置于三口烧瓶中在66℃下搅拌糊化22分钟；完成后，将糊液冷却，调节pH至4.5，加入普鲁兰酶(OPTIMAXL-1000，杰能科生物工程有限公司)，用量为每克干淀粉加入普鲁兰酶15u，在60℃下搅拌反应5小时；调节温度至90℃并保持20分钟灭酶，加入用无水乙醇配制的α-萘酚溶液，控制α-萘酚浓度为1.5mg/mL，用量为每克干淀粉加入α-萘酚溶液4.0mL，恒温搅拌10分钟，得玉米螺旋体糊精溶液；
第二步将步骤(1)所得玉米螺旋体糊精溶液的温度调节至70℃，将溶有质量百分比为10％的槲皮素冰醋酸溶液15g滴加入上述溶液中，恒温搅拌反应1小时；冷却至室温后，放入4℃冰箱中冷藏36小时；
第三步将步骤(2)的产品离心，洗涤，干燥，粉碎后得淡黄色粉末状产品。得到的产品通过紫外分光光度法测定表明，每克产品中槲皮素的含量为36.45毫克，包合率达到81.02％。通过荧光淬灭实验对该产品的抗氧化性能进行测定，结果表明由添加α-萘酚诱导剂的玉米螺旋体糊精槲皮素包合物产品，其氧自由基清除能力为105.8μmolTrolox/g，与未添加诱导剂的包合物(氧自由基清除能力为92.5μmolTrolox/g)相比，氧自由基清除能力明显增强。
如上所述，即可较好地实现本发明。
Claims (8)
1.一种螺旋体糊精槲皮素包合物的制备方法，其特征在于包括如下步骤：
(1)淀粉原料配成淀粉乳，在65～75℃下搅拌糊化；糊化完成后，将糊化液冷却，调节pH值至4.5～6.0，加入脱支酶，用量为每克干淀粉加入脱支酶10～30u，在55～65℃下搅拌反应2～5小时；调节温度至90-99℃，并保持10～30分钟，灭酶，加入用无水乙醇配制的α-萘酚溶液，恒温搅拌10～30分钟，得螺旋体糊精溶液；所述α-萘酚的浓度为1.0～3.0mg/mL，用量为每克干淀粉加入α-萘酚溶液2.0～6.0mL；
(2)将所得螺旋体糊精溶液的温度调节至30～80℃，滴加溶有质量百分比为10～20％的槲皮素冰醋酸溶液，恒温搅拌反应1～6小时，每克干淀粉加入槲皮素冰醋酸溶液0.25～0.5g；冷却至室温后冷藏；
(3)将步骤(2)的产品离心、洗涤、干燥、粉碎后得黄色粉末状产品。
2.根据权利要求1所述螺旋体糊精槲皮素包合物的制备方法，其特征在于：所述淀粉原料为木薯淀粉、马铃薯淀粉、小麦淀粉或玉米淀粉。
3.根据权利要求1所述螺旋体糊精槲皮素包合物的制备方法，其特征在于：所述脱支酶为普鲁兰酶。
4.根据权利要求1所述螺旋体糊精槲皮素包合物的制备方法，其特征在于：所述淀粉原料配成淀粉乳是淀粉原料用NaOH溶液配成淀粉乳；所述淀粉乳的质量百分比浓度为8％～20％；所述NaOH溶液的pH值为8-9。
5.根据权利要求1所述螺旋体糊精槲皮素包合物的制备方法，其特征在于：所述糊化的时间为20～30分钟。
6.根据权利要求1所述螺旋体糊精槲皮素包合物的制备方法，其特征在于：所述冷藏为放入4℃冰箱中冷藏18～36小时。
7.根据权利要求1所述螺旋体糊精槲皮素包合物的制备方法，其特征在于：所述洗涤为用去离子水洗涤多次，直至溶液中无残留冰醋酸。
8.一种螺旋体糊精槲皮素包合物，其特征在于，其由权利要求1-7任一项所述制备方法制得；每克螺旋体糊精槲皮素包合物中槲皮素的含量为32-40毫克，包合率为79-84％。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201510490837.3A CN105086002B (zh) | 2015-08-11 | 2015-08-11 | 一种螺旋体糊精槲皮素包合物及其制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201510490837.3A CN105086002B (zh) | 2015-08-11 | 2015-08-11 | 一种螺旋体糊精槲皮素包合物及其制备方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN105086002A CN105086002A (zh) | 2015-11-25 |
| CN105086002B true CN105086002B (zh) | 2017-11-07 |
Family
ID=54567389
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201510490837.3A Active CN105086002B (zh) | 2015-08-11 | 2015-08-11 | 一种螺旋体糊精槲皮素包合物及其制备方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN105086002B (zh) |
Families Citing this family (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN105568552A (zh) * | 2016-01-14 | 2016-05-11 | 武汉轻工大学 | 一种槲皮素包合物电纺丝纳米膜、其制备方法及应用 |
| CN105777919B (zh) * | 2016-03-10 | 2018-01-16 | 华南理工大学 | 大豆卵磷脂的高效稳定态制备方法 |
| CN107574198B (zh) * | 2017-08-18 | 2021-06-08 | 华南理工大学 | 一种采用醇沉分级制备螺旋糊精包结络合载体的方法 |
| CN107455751B (zh) * | 2017-08-18 | 2021-02-19 | 华南理工大学 | 一种维生素e与大豆异黄酮稳定态的制备方法 |
| CN111617262B (zh) * | 2020-05-21 | 2021-05-25 | 华南理工大学 | 一种淀粉基结肠靶向控释晶体包合物及其制备方法 |
| CN114009267B (zh) * | 2021-11-02 | 2022-11-01 | 合肥康来生态农业有限公司 | 一种富含多酚的石榴种植方法 |
Family Cites Families (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE102004038728A1 (de) * | 2004-08-10 | 2006-03-02 | Merck Patent Gmbh | Flavonoid-Komplexe |
| CN1304591C (zh) * | 2005-01-06 | 2007-03-14 | 清华大学 | 一种提高黄酮苷元极性的方法 |
| CN101831087B (zh) * | 2010-04-27 | 2012-06-13 | 天津科技大学 | 一种新型抗性淀粉的制备方法 |
| CN102058536A (zh) * | 2011-01-14 | 2011-05-18 | 四川大学 | 槲皮素羟丙基β－环糊精包和物脂质体及其制备方法和用途 |
| JP2015519312A (ja) * | 2012-04-19 | 2015-07-09 | パーデュー・リサーチ・ファウンデーションＰｕｒｄｕｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ | 高度分岐α−Ｄ−グルカン |
| US10898477B2 (en) * | 2013-07-16 | 2021-01-26 | Bioactives Llc | Nutraceuticals having sustained release for improved bioavailability and method of production |
-
2015
- 2015-08-11 CN CN201510490837.3A patent/CN105086002B/zh active Active
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN105086002A (zh) | 2015-11-25 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN105086002B (zh) | 一种螺旋体糊精槲皮素包合物及其制备方法 | |
| Xu et al. | Purification, characterization and antiglycation activity of a novel polysaccharide from black currant | |
| Su et al. | Effects of different extraction temperatures on the physicochemical properties of bioactive polysaccharides from Grifola frondosa | |
| Yu et al. | Structure, chain conformation and antitumor activity of a novel polysaccharide from Lentinus edodes | |
| Liu et al. | Chemical characterization, antioxidant properties and anticancer activity of exopolysaccharides from Floccularia luteovirens | |
| Lv et al. | Purification, antioxidant activity and antiglycation of polysaccharides from Polygonum multiflorum Thunb | |
| Kagimura et al. | Biological activities of derivatized d-glucans: A review | |
| Sun et al. | Purification, structural analysis and hydroxyl radical-scavenging capacity of a polysaccharide from the fruiting bodies of Russula virescens | |
| Chandumpai et al. | Preparation and physico-chemical characterization of chitin and chitosan from the pens of the squid species, Loligo lessoniana and Loligo formosana | |
| Saghir et al. | Structure characterization and carboxymethylation of arabinoxylan isolated from Ispaghula (Plantago ovata) seed husk | |
| Kono et al. | NMR spectroscopic structural characterization of a water-soluble β-(1→ 3, 1→ 6)-glucan from Aureobasidium pullulans | |
| Bai et al. | Effect of thermal processing on the molecular, structural, and antioxidant characteristics of highland barley β-glucan | |
| Poli et al. | Polysaccharides from wastes of vegetable industrial processing: new opportunities for their eco-friendly re-use | |
| Simsek et al. | Progress in bioactive polysaccharide-derivatives: a review | |
| Zhang et al. | Characterization and immunomodulatory effect of an alkali-extracted galactomannan from Morchella esculenta | |
| Mi et al. | Modification of carboxymethyl inulin with heterocyclic compounds: Synthesis, characterization, antioxidant and antifungal activities | |
| Yu et al. | Structural characteristics and anti-tumor/-oxidant activity in vitro of an acidic polysaccharide from Gynostemma pentaphyllum | |
| Li et al. | Structural characterization, antiproliferative and immunoregulatory activities of a polysaccharide from Boletus Leccinum rugosiceps | |
| Kong et al. | Inclusion complex of grape seeds extracts with sulfobutyl ether β-cyclodextrin: Preparation, characterization, stability and evaluation of α-glucosidase and α-amylase inhibitory effects in vitro | |
| Qin et al. | Polysaccharides from Phellinus linteus: A systematic review of their extractions, purifications, structures and functions | |
| Du et al. | Preparation of water soluble yeast glucan by four kinds of solubilizing processes | |
| Deng et al. | Enhanced exopolysaccharide yield and antioxidant activities of Schizophyllum commune fermented products by the addition of Radix Puerariae | |
| Climova et al. | Application of extracted β-glucan from oat for β-carotene encapsulation | |
| Zhang et al. | Fabrication and characterization of starch-lipid complexes using chain-elongated waxy corn starches as substrates | |
| Ma et al. | Effects of ultrasound-assisted H2O2 on the solubilization and antioxidant activity of yeast β-glucan |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| GR01 | Patent grant | ||
| GR01 | Patent grant |