CN104844492B - 一种从胶红酵母中提取海红虾青素的方法 - Google Patents
一种从胶红酵母中提取海红虾青素的方法 Download PDFInfo
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Abstract
本申请公开了一种从胶红酵母中提取海红虾青素的方法,包括步骤:胶红酵母菌体破壁,采用酶法对所述胶红酵母菌体进行破壁,破壁条件:加入酶活为10000U/g的β-葡聚糖酶和酶活为60000U/g的β-甘露聚糖酶,两种酶的比例为1:1,分别加酶量为0.005-0.05g/ml,调节pH至4.5-5.0,50℃水浴1-2h,得到胶红酵母破壁菌体;无水乙醇浸提;超声提取;去除极性杂质;获得产品。本发明中采用酶法破壁比较彻底,破壁效果明显好于化学法,有利于保持海红虾青素结构的完整性,成本方面也存在较大的优势,可以进行大规模提取,容易实现工业化生产。
Description
技术领域
本发明涉及酵母菌技术领域,具体地说,是涉及一种从胶红酵母中提取海红虾青素的方法。
背景技术
虾青素是一种类胡萝卜素,具有极强的抗氧化能力和生物着色能力,已广泛应用于食品、医药、化妆品、饲料等许多领域。在预防心脑血管疾病、保护眼睛和中枢神经系统、防紫外线辐射、抑制肿瘤、抗炎、缓解运动疲劳等方面具有较高的应用价值。
海红虾青素,是一种具有高抗氧化能力的类胡萝卜素,薄层层析时其迁移率与天然虾青素酯接近,抗氧化能力也与天然左旋虾青素接近而得名,DPPH法检测其抗氧化能力强于天然左旋虾青素20~40%左右。
目前,国际上对虾青素需求量很大。虾青素的生产来源主要是水产品加工废弃物、雨生红球藻等,产量较低,满足不了市场的需求。美国、加拿大、欧盟等国的许多生物技术公司致力于开发生产这类产品,但还远远不能满足市场需求,价格很高。目前市场上的虾青素化学合成的约占销售总量的90%。随着全球天然食品及天然饲料添加剂的兴起,人们对化学合成色素越来越警惕,从酵母中提取的天然虾青素以其特有的功能引起了越来越多的注意。本专利提供的提取方法,成本低,操作简单,更重要的是在提取过程中有利于保证海红虾青素结构的完整性。
发明内容
为解决上述技术问题,本发明提供了一种从胶红酵母中提取海红虾青素的方法,包括步骤:
胶红酵母菌体破壁:采用酶法对所述胶红酵母菌体进行破壁,破壁条件:加入酶活为10000U/g的β-葡聚糖酶和酶活为60000U/g的β-甘露聚糖酶,两种酶的比例为1:1,分别加酶量为0.005-0.05g/ml,调节pH至4.5-5.0,50℃水浴1-2h,得到胶红酵母破壁菌体;
无水乙醇浸提:收集所述胶红酵母破壁菌体,按料液比为1:3-9加入无水乙醇溶液浸提,25-30℃浸提10-25min,离心后舍弃上清液,得到海红虾青素混合液;
超声提取:对所述海红虾青素混合液进行超声提取,超声条件为:功率500W-1000W,工作5-10s,间歇5-10s,超声80-120次,时间15-30min,得到海红虾青素粗提液;
去除极性杂质:向所述海红虾青素粗提液中添加等体积的石油醚和无水乙醇,轻轻晃动,待分层后加入蒸馏水,得到石油醚相萃取液;
获得产品:将所述石油醚相萃取液用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素产品。
优选地,还包括胶红酵母菌体收集的步骤,胶红酵母发酵液3500-5500g,离心15-30min,弃上清液,用蒸馏水洗后再次离心,重复操作3-4次,得到胶红酵母菌体。
优选地,所述真空旋转蒸发仪浓缩时的浓缩温度为20-35℃、真空度为-0.05—-0.1MPa,浓缩至黏稠状停止。
优选地,所述步骤去除极性杂质中加入蒸馏水至上层澄清为止。
本发明的胶红酵母菌(英文名Rhodotorulamucilaginosa),保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,保藏日期:2014年12月01日,保藏编号:CGMCCNo.10123。
与现有技术相比,本发明所述的从胶红酵母中提取海红虾青素的方法,达到了如下效果:
(1)本发明中采用酶法破壁比较彻底,破壁效果明显好于化学法,有利于保持海红虾青素结构的完整性,成本方面也存在较大的优势,可以进行大规模提取,容易实现工业化生产。
(2)本发明在浓缩海红虾青素时在氮气环境下吹干,由于海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性和其功能性。
附图说明
此处所说明的附图用来提供对本发明的进一步理解,构成本发明的一部分,本发明的示意性实施例及其说明用于解释本发明,并不构成对本发明的不当限定。在附图中:
图1a-图1b为酶法破壁效果图;
图2为乙醇浸提超声波提取后的海红虾青素粗提液;
图3为本发明从胶红酵母中提取海红虾青素的方法流程图。
具体实施方式
如在说明书及权利要求当中使用了某些词汇来指称特定组件。本领域技术人员应可理解,硬件制造商可能会用不同名词来称呼同一个组件。本说明书及权利要求并不以名称的差异来作为区分组件的方式,而是以组件在功能上的差异来作为区分的准则。如在通篇说明书及权利要求当中所提及的“包含”为一开放式用语,故应解释成“包含但不限定于”。“大致”是指在可接收的误差范围内,本领域技术人员能够在一定误差范围内解决所述技术问题,基本达到所述技术效果。此外,“耦接”一词在此包含任何直接及间接的电性耦接手段。因此,若文中描述一第一装置耦接于一第二装置,则代表所述第一装置可直接电性耦接于所述第二装置,或通过其他装置或耦接手段间接地电性耦接至所述第二装置。说明书后续描述为实施本发明的较佳实施方式,然所述描述乃以说明本发明的一般原则为目的,并非用以限定本发明的范围。本发明的保护范围当视所附权利要求所界定者为准。
以下结合附图对本发明作进一步详细说明,但不作为对本发明的限定。
实施例1:
制备胶红酵母菌体:称取胶红酵母发酵液3500g,离心15min,弃上清液,用蒸馏水洗后再次离心,重复操作3次,得到胶红酵母菌体。
准确称取胶红酵母菌体(湿菌泥)8g,加入40ml水(底物浓度20%),加入β-葡聚糖酶(酶活10000U/g)和β-甘露聚糖酶(酶活60000U/g)各0.2g(0.005g/ml×40ml=0.2g),调节pH至4.5,调节pH值所用试剂是盐酸和氢氧化钠溶液,50℃水浴1h,之后4200rpm,离心25min,弃去上清液,收集菌体。本发明中采用酶法破壁比较彻底,破壁效果明显好于化学法,有利于保持海红虾青素结构的完整性。
胶红酵母破壁菌体中添加40ml无水乙醇,菌体与无水乙醇的质量体积比为1:3,充分混匀后,30℃浸提10min,仅到此步时,虾青素的提取率较低;因此,采用超声波进一步提取,得到海红虾青素粗提液,如图2所示。超声条件:功率600W,超声时间9s,间歇6s,超声100次,时间25min。
本实施例中对超声功率和超声时间进行了研究,过高过低的超声功率提取效果均欠佳,适当延长超声时间也不会再提高提取率,因此,选择超声功率为600W,时间25min为最佳超声条件。
按照海红虾青素乙醇提取液:石油醚体积比为1:1加入石油醚萃取,轻轻晃动几下,以免出现乳化现象,待分层后加入再加适量蒸馏水,待上层石油醚相澄清为止,使虾青素等极性小的物质被充分萃取到石油醚相中,而在乙醇相中为极性较大的一些非虾青素类物质。将石油醚相的萃取液移入旋转瓶,用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩温度20℃,真空度为-0.05MPa,浓缩至黏稠状停止。
浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素粗品。海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性。
实施例2:
制备胶红酵母菌体:称取胶红酵母发酵液4000g,离心15min,弃上清液,用蒸馏水洗后再次离心,重复操作4次,得到胶红酵母菌体(湿菌泥)。
准确称取胶红酵母菌体(湿菌泥)9g,加入30ml水(底物浓度30%),加入β-葡聚糖酶(酶活10000U/g)和β-甘露聚糖酶(酶活60000U/g)各2g(0.05g/ml×40ml=2g),调节pH至5.0,50℃水浴2h,之后4200rpm,离心25min,弃去上清液,收集胶红酵母破壁菌体,破壁情况如图1a-图1b所示。
胶红酵母破壁菌体中添加90ml无水乙醇,菌体与无水乙醇的质量体积比为1:9,充分混匀后,25℃浸提25min;
采用超声波进一步提取,得到海红虾青素粗提液。超声条件:功率为1000W,超声时间10s,间歇8s,超声120次,时间30min。
按照海红虾青素乙醇提取液:石油醚体积比为1:1加入石油醚萃取,轻轻晃动几下,以免出现乳化现象,待分层后加入再加适量蒸馏水,待上层石油醚相澄清为止,使虾青素等极性小的物质被充分萃取到石油醚相中,而在乙醇相中为极性较大的一些非虾青素类物质。将石油醚相的萃取液移入旋转瓶,用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩温度35℃,真空度为-0.1MPa,浓缩至黏稠状停止。
浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素粗品。海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性。
实施例3:
准确称取胶红酵母菌体(湿菌泥)8g,加入40ml水(底物浓度20%),加入β-葡聚糖酶(酶活10000U/g)和β-甘露聚糖酶(酶活60000U/g)各0.2g,调节pH至4.8,50℃水浴2h,之后4200rpm,离心20min,弃去上清液,收集胶红酵母破壁菌体。
胶红酵母破壁菌体中添加50ml无水乙醇,菌体与无水乙醇的质量体积比为1:5,充分混匀后,26℃浸提20min;
采用超声波进一步提取,得到海红虾青素粗提液,如图2所示。超声条件:功率为600W,超声时间8s,间歇8s,超声90次,时间20min。
按照海红虾青素乙醇提取液:石油醚体积比为1:1加入石油醚萃取,轻轻晃动几下,以免出现乳化现象,待分层后加入再加适量蒸馏水,待上层石油醚相澄清为止,使虾青素等极性小的物质被充分萃取到石油醚相中,而在乙醇相中为极性较大的一些非虾青素类物质。将石油醚相的萃取液移入旋转瓶,用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩温度23℃,真空度为-0.095MPa,浓缩至黏稠状停止。
浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素粗品。海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性。
实施例4:
准确称取胶红酵母菌体(湿菌泥)9g,加入45ml水(底物浓度25%),加入β-葡聚糖酶(酶活10000U/g)和β-甘露聚糖酶(酶活60000U/g)各0.2g,调节pH至4.7,50℃水浴2h,之后4200rpm,离心22min,弃去上清液,收集胶红酵母破壁菌体。
胶红酵母破壁菌体中添加60ml无水乙醇,菌体与无水乙醇的质量体积比为1:6,充分混匀后,27℃浸提23min;
采用超声波进一步提取,得到海红虾青素粗提液。超声条件:功率为500W,超声时间8s,间歇8s,超声90次,时间30min。
按照海红虾青素乙醇提取液:石油醚体积比为1:1加入石油醚萃取,轻轻晃动几下,以免出现乳化现象,待分层后加入再加适量蒸馏水,待上层石油醚相澄清为止,使虾青素等极性小的物质被充分萃取到石油醚相中,而在乙醇相中为极性较大的一些非虾青素类物质。将石油醚相的萃取液移入旋转瓶,用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩温度20℃,真空度为-0.1MPa,浓缩至黏稠状停止。
浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素粗品。海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性。
实施例5:
准确称取胶红酵母菌体(湿菌泥)9g,加入45ml水(底物浓度25%),加入β-葡聚糖酶(酶活10000U/g)和β-甘露聚糖酶(酶活60000U/g)各0.22g,调节pH至4.8,50℃水浴1.5h,之后4200rpm,离心20min,弃去上清液,收集胶红酵母破壁菌体。
胶红酵母破壁菌体中添加70ml无水乙醇,菌体与无水乙醇的质量体积比为1:7,充分混匀后,28℃浸提15min;
采用超声波进一步提取,得到海红虾青素粗提液。超声条件:功率为1000W,超声时间8s,间歇8s,超声90次,时间15min。
按照海红虾青素乙醇提取液:石油醚体积比为1:1加入石油醚萃取,轻轻晃动几下,以免出现乳化现象,待分层后加入再加适量蒸馏水,待上层石油醚相澄清为止,使虾青素等极性小的物质被充分萃取到石油醚相中,而在乙醇相中为极性较大的一些非虾青素类物质。将石油醚相的萃取液移入旋转瓶,用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩温度20℃,真空度为-0.1MPa,浓缩至黏稠状停止。
浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素粗品。海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性。
实施例6:
制备胶红酵母菌体:称取胶红酵母发酵液3800g,离心20min,弃上清液,用蒸馏水洗后再次离心,重复操作4次,得到胶红酵母菌体(湿菌泥)。
准确称取胶红酵母菌体(湿菌泥)8g,加入40ml水(底物浓度20%),加入β-葡聚糖酶(酶活10000U/g)0.2g和β-甘露聚糖酶(酶活60000U/g)0.22g,调节pH至5.0,50℃水浴2h,之后4200rpm,离心25min,弃去上清液,收集胶红酵母破壁菌体。
胶红酵母破壁菌体中添加70ml无水乙醇,菌体与无水乙醇的质量体积比为1:7,充分混匀后,28℃浸提23min;
采用超声波进一步提取,得到海红虾青素粗提液。超声条件:功率为900W,超声时间9s,间歇9s,超声95次,时间30min。
按照海红虾青素乙醇提取液:石油醚体积比为1:1加入石油醚萃取,轻轻晃动几下,以免出现乳化现象,待分层后加入再加适量蒸馏水,待上层石油醚相澄清为止,使虾青素等极性小的物质被充分萃取到石油醚相中,而在乙醇相中为极性较大的一些非虾青素类物质。将石油醚相的萃取液移入旋转瓶,用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩温度25℃,真空度为-0.1MPa,浓缩至黏稠状停止。
浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素粗品。海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性。
实施例7
制备胶红酵母菌体:称取胶红酵母发酵液4000g,离心15min,弃上清液,用蒸馏水洗后再次离心,重复操作4次,得到胶红酵母菌体(湿菌泥)。
准确称取胶红酵母菌体(湿菌泥)9g,加入30ml水(底物浓度30%),加入β-葡聚糖酶(酶活10000U/g)0.2g和β-甘露聚糖酶(酶活60000U/g)0.3g,调节pH至5.0,50℃水浴2h,之后4200rpm,离心25min,弃去上清液,收集胶红酵母破壁菌体,破壁情况如图1a-图1b所示。
胶红酵母破壁菌体中添加90ml无水乙醇,菌体与无水乙醇的质量体积比为1:9,充分混匀后,29℃浸提25min;
采用超声波进一步提取,得到海红虾青素粗提液。超声条件:功率为1000W,超声时间8s,间歇7s,超声115次,时间19min。
按照海红虾青素乙醇提取液:石油醚体积比为1:1加入石油醚萃取,轻轻晃动几下,以免出现乳化现象,待分层后加入再加适量蒸馏水,待上层石油醚相澄清为止,使虾青素等极性小的物质被充分萃取到石油醚相中,而在乙醇相中为极性较大的一些非虾青素类物质。将石油醚相的萃取液移入旋转瓶,用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩温度25℃,真空度为-0.1MPa,浓缩至黏稠状停止。
浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素粗品。海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性。
实施例8
制备胶红酵母菌体:称取胶红酵母发酵液4000g,离心15min,弃上清液,用蒸馏水洗后再次离心,重复操作4次,得到胶红酵母菌体(湿菌泥)。
准确称取胶红酵母菌体(湿菌泥)9g,加入30ml水(底物浓度30%),加入β-葡聚糖酶(酶活10000U/g)0.2g和β-甘露聚糖酶(酶活60000U/g)1.5g,调节pH至5.0,50℃水浴2h,之后4200rpm,离心25min,弃去上清液,收集胶红酵母破壁菌体,破壁情况如图1a-图1b所示。
胶红酵母破壁菌体中添加90ml无水乙醇,菌体与无水乙醇的质量体积比为1:9,充分混匀后,28℃浸提25min;
采用超声波进一步提取,得到海红虾青素粗提液。超声条件:功率为1000W,超声时间8s,间歇7s,超声115次,时间19min。
按照海红虾青素乙醇提取液:石油醚体积比为1:1加入石油醚萃取,轻轻晃动几下,以免出现乳化现象,待分层后加入再加适量蒸馏水,待上层石油醚相澄清为止,使虾青素等极性小的物质被充分萃取到石油醚相中,而在乙醇相中为极性较大的一些非虾青素类物质。将石油醚相的萃取液移入旋转瓶,用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩温度31℃,真空度为-0.1MPa,浓缩至黏稠状停止。
浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素粗品。海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性。
与现有技术相比,本发明所述的从胶红酵母中提取海红虾青素的方法,达到了如下效果:
(1)本发明中采用酶法破壁比较彻底,破壁效果明显好于化学法,有利于保持海红虾青素结构的完整性,成本方面也存在较大的优势,可以进行大规模提取,容易实现工业化生产。
(2)本发明在浓缩海红虾青素时在氮气环境下吹干,由于海红虾青素抗氧化能力很强,在空气中易被氧化,采用氮气吹干法可有效的保证其结构的稳定性。
上述说明示出并描述了本发明的若干优选实施例,但如前所述,应当理解本发明并非局限于本文所披露的形式,不应看作是对其他实施例的排除,而可用于各种其他组合、修改和环境,并能够在本文所述发明构想范围内,通过上述教导或相关领域的技术或知识进行改动。而本领域人员所进行的改动和变化不脱离本发明的精神和范围,则都应在本发明所附权利要求的保护范围内。
Claims (4)
1.一种从胶红酵母中提取海红虾青素的方法,其特征在于,包括步骤:
胶红酵母菌体破壁:采用酶法对所述胶红酵母菌体进行破壁,破壁条件:加入酶活为10000U/g的β-葡聚糖酶和酶活为60000U/g的β-甘露聚糖酶,两种酶的比例为1:1,分别加酶量为0.005-0.05g/ml,调节pH至4.5-5.0,50℃水浴1-2h,得到胶红酵母破壁菌体;
无水乙醇浸提:收集所述胶红酵母破壁菌体,按料液比为1:3-9加入无水乙醇溶液浸提,25-30℃浸提10-25min,离心后舍弃上清液,得到海红虾青素混合液;
超声提取:对所述海红虾青素混合液进行超声提取,超声条件为:功率500W-1000W,工作5-10s,间歇5-10s,超声80-120次,时间15-30min,得到海红虾青素粗提液;
去除极性杂质:向所述海红虾青素粗提液中添加等体积的石油醚和无水乙醇,轻轻晃动,待分层后加入蒸馏水,得到石油醚相萃取液;
获得产品:将所述石油醚相萃取液用真空旋转蒸发仪进行浓缩,浓缩液于通风橱中用氮气吹干,得到海红虾青素产品。
2.根据权利要求1所述的从胶红酵母中提取海红虾青素的方法,其特征在于,还包括胶红酵母菌体收集的步骤,胶红酵母发酵液3500-5500g,离心15-30min,弃上清液,用蒸馏水洗后再次离心,重复操作3-4次,得到胶红酵母菌体。
3.根据权利要求1所述的从胶红酵母中提取海红虾青素的方法,其特征在于,所述真空旋转蒸发仪浓缩时的浓缩温度为20-35℃、真空度为-0.05—-0.1MPa,浓缩至黏稠状停止。
4.根据权利要求1所述的从胶红酵母中提取海红虾青素的方法,其特征在于,所述步骤去除极性杂质中加入蒸馏水至上层澄清为止。
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Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106107206B (zh) * | 2016-08-10 | 2020-06-23 | 南阳理工学院 | 一种发酵型鸡饲料的制备方法 |
CN110804638A (zh) * | 2019-10-31 | 2020-02-18 | 厦门昶科生物工程有限公司 | 一种提高虾青素产量的生产方法 |
CN110680786A (zh) * | 2019-11-13 | 2020-01-14 | 北京红蓝猫生物科技有限公司 | 一种虾青素油脂质体组合物及其应用 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2006088102A1 (ja) * | 2005-02-17 | 2006-08-24 | Kaneka Corporation | 赤色酵母由来の乳化剤 |
CN101148643A (zh) * | 2006-09-22 | 2008-03-26 | 中国科学院沈阳应用生态研究所 | 一种海参用海洋胶红酵母的生产方法 |
CN101381337A (zh) * | 2007-09-03 | 2009-03-11 | 陈锦猜 | 一种虾青素的提取方法 |
CN101705193A (zh) * | 2009-11-20 | 2010-05-12 | 中国水产科学研究院黄海水产研究所 | 产虾青素海洋红酵母ys-185及其虾青素的制造方法 |
-
2015
- 2015-05-13 CN CN201510242521.2A patent/CN104844492B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2006088102A1 (ja) * | 2005-02-17 | 2006-08-24 | Kaneka Corporation | 赤色酵母由来の乳化剤 |
CN101148643A (zh) * | 2006-09-22 | 2008-03-26 | 中国科学院沈阳应用生态研究所 | 一种海参用海洋胶红酵母的生产方法 |
CN101381337A (zh) * | 2007-09-03 | 2009-03-11 | 陈锦猜 | 一种虾青素的提取方法 |
CN101705193A (zh) * | 2009-11-20 | 2010-05-12 | 中国水产科学研究院黄海水产研究所 | 产虾青素海洋红酵母ys-185及其虾青素的制造方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
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海洋红酵母的研究进展;孙建男 等;《安徽农业科学》;20150119;第43卷(第4期);第84-88页 * |
虾青素产业化现状分析;阎毅等;《现代农业科技》;20111120(第22期);第47-49页 * |
Also Published As
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