CN104655783B - 一种果蔬中苯菌酮残留量的gc-nci-ms测定方法 - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种果蔬中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS测定方法，用乙腈或含1%乙酸的乙腈溶液均质提取样品中残留的苯菌酮，提取液经乙二胺-N-丙基硅烷（PSA）和十八烷基硅烷键合相（C₁₈）基质分散净化后，气相色谱-负化学离子源-质谱（GC-NCI-MS）检测，采用不含待测农药的空白基质溶液建立校正的标准曲线，外标法定量。本方法平均回收率为89.9%～94.9%，平均相对标准偏差（RSD）为4.1%～6.2%，检出限低于1.02？μg/kg，具有操作简便、快速、灵敏度高、重复性好、定性定量准确的优点。能满足欧盟、美国、韩国、日本等国家对相应产品安全检测的技术要求，为保障我国人民食品安全及对外出口贸易健康发展提供有力的技术支撑。

Description

一种果蔬中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS测定方法

技术领域

本发明涉及一种果蔬中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS测定方法，更具体地说是采用气相色谱-负化学离子源-质谱(GC-NCI-MS)定性定量测定蔬菜和水果中残留的苯菌酮含量的方法，属于农药残留量的测定技术领域。

背景技术

苯菌酮(metrafenone，CAS220899-03-6)，化学名称为(3-溴-6-甲氧基-2-甲基苯基)-(2,3,4-三甲氧基-6-甲基苯基)甲酮，是由巴斯夫公司开发的一种新颖的二苯酮类新型杀菌剂，是植物化学保护领域中一种全新的活性成分，商品名称为Flexity，结构式为：

苯菌酮从2003年开始在英国、荷兰等多个国家获得登记，对各类白粉病有保护、治疗、铲除和抑制产孢的作用，与目前已知的商品化杀菌剂的作用机制不同。苯菌酮的作用机制是干扰菌丝发育，干扰极性生长和细胞极性的建立和维持过程，影响调节细胞骨架肌动蛋白合成的通路。低质量浓度的苯菌酮即可强烈抑制病原菌孢子萌发。

随着苯菌酮的登记、推广和使用，作为我国蔬菜、水果及其他农产品主要出口市场的欧盟、韩国和日本等均对其制定了残留限量标准。欧盟规定苯菌酮在大多数水果、蔬菜和谷类作物中的最大允许残留量(MRL)为0.05mg/kg；美国规定苯菌酮在很多水果、蔬菜和谷类作物中的最大允许残留量(MRL)为0.04～2.5mg/kg；韩国除规定苯菌酮在桃、李、杏、樱桃中MRL为0.3mg/kg，在蓝莓、葡萄干中MRL为1.0mg/kg，在玉米、黑麦、小麦、核桃等坚果、马铃薯、姜中MRL为0.05mg/kg；日本规定苯菌酮最大允许残留限量(MRL)分别为黑麦(3.0mg/kg)、茄子(3.0mg/kg)、姜(3.0mg/L)、小麦(0.2mg/kg)，其余均实行0.01mg/L的“一律标准”。

迄今为止，国外对食品中苯菌酮残留量检测方法的报道的很少，国内仅检索到2项专利涉及苯菌酮残留量的测定方法”，这2项专利均采用液相色谱串联质谱(LC-MS/MS)测定食品中苯菌酮残留量。使用LC-MS/MS测定食品农产品中农药残留具有快速、简便、灵敏度高等优点，但由于其价格较昂贵，很多检测机构、企业或科研院所未配置该仪器或配置台数较少，由于不同的化合物采用LC-MS/MS检测时，需使用不同的流动相或色谱柱，这样需要不断更换色谱柱、流动相并耗费比较长的时间对系统进行平衡，这一定程度上制约了LC-MS/MS的应用。配备负化学电离源的气相色谱质谱(GC-NCI-MS)分析食品农产品中农药残留具有很大优势，负化学离子源(NCI源)被称为质谱“软电离源”，对含电负性集团的分析物具有高选择性和高灵敏度，由于其特征性强，利用其进行残留分析时，基质干扰很少，可很准确地对目标物进行定性和定量分析。现各种检测机构和企业均购置了气相色谱-质谱仪(GC-MS)，一般也都配备了负化学离子源(NCI)，现很多类农药均含有电负性基团，有机氯和拟除虫菊酯类农药分子大都含有－F、－Cl、－Br或－COO－等强电负性基团；有机磷农药分子大都含有＝S、－OR、－P、－O－、－Cl、或－P＝O等电负性基团；而近年来开发的新型农药中大多含有－F基团，因此，使用GC-NCI-MS可方便实现多种农药的多残留分析，与GC-NCI-MS相比，能获得更好的抗干扰能力、更低的灵敏度和更好的选择性，苯菌酮属电负性化合物，但迄今为止未见蔬菜和水果中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS检测方法的报道，因此，建立气相色谱-负化学离子源-质谱(GC-NCI-MS)定性和定量分析蔬菜和水果中苯菌酮残留量的检测方法具有重要意义。

发明内容

本发明的目的是提供一种果蔬中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS测定方法。

为实现以上目的，本发明所采用的技术方案是：一种果蔬中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS测定方法，包括如下步骤：

(1)提取

称取样品于具塞离心管中，加入乙腈或含1％乙酸的乙腈溶液均质提取1min，加入氯化钠或乙酸钠中的一种和无水硫酸镁，振荡后离心。

(2)净化

移取样品提取液上清液于离心管中，加入基质分散固相萃取剂，涡旋振荡，离心，吸取一定量净化液氮气吹干后，用体积比为1/1的丙酮/正己烷混合溶剂溶解定容，过膜后，待气相色谱-负化学离子源-质谱(GC-NCI-MS)检测。

(3)标准工作溶液的配制

将不含苯菌酮的同种类基质空白样品按上述步骤(1)、(2)处理时，得样品提取净化残渣，加入适量溶剂和混合标准溶液，涡旋混匀，配制成至少3个浓度的苯菌酮系列混合标准工作液。

(4)气相色谱-负化学离子源-质谱法(GC-NCI-MS)测定

将步骤(3)中的各浓度梯度的标准工作液进行GC-NCI-MS测定，以标准工作液的色谱峰面积对其相应浓度进行回归分析，得到标准工作曲线；在相同条件下将步骤(2)中净化后的样品液注入GC-NCI-MS进行测定，测得样品液中苯菌酮的色谱峰面积，代入标准曲线，得到样品液中苯菌酮含量，然后根据样品液所代表试样的质量计算得到样品中苯菌酮残留量。若上机溶液中苯菌酮残留量超过线性范围上限，需用定容溶剂将上机溶液浓度稀释至线性范围之内。

步骤(1)中样品若为脱水蔬菜和水果，需降低称样量，并加适量水充分浸润。

步骤(1)中采用乙腈提取时加入氯化钠盐析，采用含1％乙酸的乙腈溶液提取时加入乙酸钠盐析；含水量较少的样品盐析时需加入一定量的水。

步骤(2)中基质分散固相萃取剂由无水硫酸镁、C₁₈和PSA组成，每体积提取液中无水硫酸镁、C₁₈和PSA加入量分别为150mg、50mg和25mg。

步骤(4)中气相色谱条件为：色谱柱：HP-5MS毛细管色谱柱，柱长30m，内径0.25mm，膜厚0.25μm；进样口温度250℃；载气：He，不分流模式进样，进样量：1μL；恒流模式，流速1.0mL/min；升温程序：初温60℃保持2min，以每分钟20℃的速度升至200℃，然后以每分钟2℃的速度升至220℃，再以每分钟20℃的速度升至280℃，保持10min；传输线温度：280℃。

步骤(4)中质谱条件为：离子源温度150℃；四极杆温度150℃；电离模式：负化学电离，即NCI模式，能量70eV；扫描方式：选择离子监测(SIM)模式，监测的离子为：79、81、329，溶剂延迟时间为10min。

步骤(4)中测定样液和基质标准工作溶液时，若样液中农药色谱峰保留时间与标准溶液中相应农药保留时间相一致，并且在扣除背景后的样品质谱图中，所选择的离子均出现，而且离子丰度比与标准溶液的离子丰度比相一致，则可判断样液中存在这种农药；若上述两个条件不能同时满足，则判断不含该种农药。

本发明的有益效果在于：

本发明利用分散固相萃取技术，建立了简便、快速并能有效避免样品中基质干扰的样品前处理方法，将此前处理方法结合GC-NCI-MS应用于蔬菜和水果中苯菌酮定性确证和定量检测，平均回收率为89.9％～94.9％，平均相对标准偏差(RSD)为4.1％～6.2％，检出限低于1.02μg/kg，具有操作简便、快速、准确、灵敏度高及重复性好的优点。能满足欧盟、美国、韩国、日本等国家对相应产品安全检测的技术要求，为保障我国人民食品安全及对外出口贸易健康发展提供有力的技术支撑。

附图说明

图1为添加在空白苹果基质中的100ng/mL苯菌酮标液的选择离子色谱图。

图2为不含苯菌酮的苹果空白样品的选择离子色谱图。

图3为以不含苯菌酮的苹果空白样品为基质配制的苯菌酮标准工作曲线。

具体实施方式

现以以下实施实例来说明本发明，但并不是限制本发明的范围。

实施例中使用的仪器与试剂

T18Basic均质器(IKA，Germany)；5810R离心机(Eppendorf，Germany)；MS3基本型旋涡混合器(IKA，Germany)；7890N气相色谱-5977C质谱仪(Agilent，USA)；乙二胺-N-丙基硅烷(PSA)吸附剂(40～60μm)、十八烷基硅烷键合相(C₁₈)净化剂(40～60μm)均购于美国安捷伦科技有限公司。

试剂：乙腈、丙酮、正己烷(HPLC级，Merke，Germany)；乙酸(HPLC级，CNW，Germany)；无水硫酸镁、氯化钠和乙酸钠为分析纯，均购自国药集团化学试剂有限公司。

标准物质：纯度≥98.0％，购自德国Dr.Ehrenstorfer公司。

实施例1：苹果中苯菌酮残留量的检测

(1)样品前处理

称取经充分混匀的苹果10.0g于50mL离心管中，准确加入20mL乙腈，均质提取1min，加入3g无水硫酸镁和2g氯化钠，涡旋1min后，7000r/min离心5min。离心后，取6mL乙腈提取液转移至装有900mg无水硫酸镁、300mgC₁₈和150mgPSA的离心管中，涡旋1min，5000r/min离心5min。取4mL上清液于氮吹管中，于40℃氮气吹干，加入体积比为1/1的丙酮/正己烷混合溶剂溶解残渣，涡旋混匀过膜后，移入进样瓶中待GC-NCI-MS测定。

(2)标准工作溶液的配制

准确称取25±0.1mg标准品于25mL容量瓶中，用乙腈溶解，定容得1000.0μg/mL标准储备液；移取1.0mL标准储备液置于100mL容量瓶中，用用体积比为1/1的丙酮/正己烷混合溶剂定容得到10.0μg/mL标准中间液；将10μg/mL标准溶液稀释配成5、2、1、0.5、0.2、0.1μg/mL标准溶液。将不含苯菌酮的草莓空白样品按上述前处理步骤处理，得样品提取净化残渣，在此残渣中加入900μL体积比为1/1的丙酮/正己烷混合溶剂和100μL上述混合标准溶液，涡旋混匀，配成10、20、50、100、200、500μg/L基质标准工作溶液。

(3)气相色谱-负化学离子源-质谱法(GC-NCI-MS)测定

将不同浓度梯度的标准工作液分别注入GC-NCI-MS，以外标法进行苯菌酮含量的定量分析，即以标准工作液的色谱峰面积对其相应浓度进行回归分析，得到标准曲线；在相同条件下将样品提取液注入GC-NCI-MS进行测定，测得样品液中苯菌酮的色谱峰面积，代入标准曲线，得到样品液中苯菌酮含量，然后根据样品液所代表试样的质量计算得到样品中苯菌酮残留量。若上机溶液中苯菌酮残留量超过线性范围上限，需用定容溶剂将上机溶液浓度稀释至线性范围之内。

其中色谱条件为：

色谱柱：HP-5MS毛细管色谱柱，柱长30m，内径0.25mm，膜厚0.25μm。

进样口温度：250.0℃，进样模式：不分流进样，进样量：1μL。

载气：He，恒流模式，流速1.0mL/min。

炉箱升温程序：初温60℃保持2min，以每分钟20℃的速度升至200℃，然后以每分钟2℃的速度升至220℃，再以每分钟20℃的速度升至280℃，保持10min；

传输线温度：280℃。

其中，质谱参数为：

电离模式：负化学电离，即NCI模式，能量70eV。

离子源温度：150℃。

四极杆温度150℃。

扫描方式：选择离子监测(SIM)模式，溶剂延迟时间为10min。

SIM监测的离子为：79、81、329，定量离子为81。

定性鉴定：在相同的条件下，如果样液中农药色谱峰保留时间与标准溶液中相应农药保留时间相一致，并且在扣除背景后的样品质谱图中，所选择的离子均出现，而且离子丰度比与标准溶液的离子丰度比相一致，则可判断样液中存在这种农药；若上述两个条件不能同时满足，则判断不含该种农药。

以标准工作液的色谱峰面积对其相应浓度进行回归分析，得到标准工作曲线如表1。

表1苹果空白基质中苯菌酮的标准曲线

名称	保留时间(min)	回归方程	相关系数
				苯菌酮	26.52	Y＝61.815X-611.87	0.9996

加标回收率和重复性：

在不含苯菌酮的苹果中加入10、100和5000μg/kg3个浓度水平的苯菌酮标准溶液，待农药添加30min后按上述处理步骤进行残留量测定，5000μg/kg添加浓度的样品待测液用体积比为1/1的丙酮/正己烷混合溶剂稀释50倍后再用GC-MS测定。,将测定浓度与农药理论添加浓度进行比较，得到农药添加回收率，每个添加水平平行测定6次，得其相对标准偏差，测定结果见表2。由表2可以看出，在3个加标水平上，苯菌酮的平均回收率为91.8％～93.5％，平均相对标准偏差(RSD)为4.1％～6.2％，说明本发明方法的回收率较高，重复性好。

表2苯菌酮的回收率和重复性(n＝6)

检出限：

将不同浓度的苯菌酮基质标准工作溶液注入GC-NCI-MS，以最低浓度基质标准溶液色谱峰的3倍信噪比和样品处理过程的浓缩倍数(苹果的浓缩倍数为2.0倍)计算检出限，苯菌酮的检出限为1.02μg/kg。

实施例2：茄子中苯菌酮残留量的检测

(1)样品前处理

称取经充分混匀的茄子10.0g于50mL离心管中，加入8mL水后，准确加入20mL含1％乙酸的乙腈溶液，均质提取1min，加入3g无水硫酸镁和2g乙酸钠，涡旋1min后，7000r/min离心5min。离心后，取6mL乙腈提取液转移至装有900mg无水硫酸镁、300mgC₁₈和150mgPSA的离心管中，涡旋1min，5000r/min离心5min。取4mL上清液于氮吹管中，于40℃氮气吹干，加入体积比为1/1的丙酮/正己烷混合溶剂溶解残渣，涡旋后混匀后，移入进样瓶中待GC-NCI-MS测定。

(2)标准工作溶液的配制

将10μg/mL标准中间液稀释配成5、2、1、0.5、0.2、0.1μg/mL标准溶液。将不含苯菌酮的茄子空白样品按上述前处理步骤处理，得样品提取净化残渣，在此残渣中加入900μL体积比为1/1的丙酮/正己烷混合溶剂和100μL上述混合标准溶液，涡旋混匀，配成10、20、50、100、200、500μg/L基质标准工作溶液。

(3)气相色谱-负化学离子源-质谱法(GC-NCI-MS)测定

操作步骤、色谱和质谱条件与上述苹果样品中苯菌酮的测定一致。

定性鉴定：

同上述苹果样品中苯菌酮的测定一致。

线性关系：

以标准工作液的色谱峰面积对其相应浓度进行回归分析，得到标准工作曲线为Y＝72.636X-793.83，相关系数为0.9994。

加标回收率和重复性：

在不含苯菌酮的茄子中加入10、50和6000μg/kg3个浓度水平的苯菌酮标准溶液，待农药添加30min后按上述处理步骤进行残留量测定，6000μg/kg添加浓度的样品待测液用体积比为1/1的丙酮/正己烷混合溶剂稀释50倍后再用GC-MS测定，将测定浓度与农药理论添加浓度进行比较，得到农药添加回收率，每个添加水平平行测定6次，得其相对标准偏差，测定结果见表3。由表3可以看出，在3个加标水平上，苯菌酮的平均回收率为89.9％～94.9％，平均相对标准偏差(RSD)为4.5％～5.3％，说明本发明方法的回收率高，重复性好。

表3苯菌酮的回收率和重复性(n＝6)

检出限：

将不同浓度的苯菌酮基质标准工作溶液注入GC-NCI-MS，以最低浓度基质标准溶液色谱峰的3倍信噪比和样品处理过程的浓缩倍数(茄子的浓缩倍数为2.0倍)计算检出限，苯菌酮的检出限为0.96μg/kg。

以上的实施例仅是对本发明的优选实施方式进行描述，并非对本发明的范围进行限定，在不脱离本发明设计精神的前提下，本领域普通工程技术对本发明的技术方案作出的各种变型和改进，均应落入本发明的权利要求书确定的保护范围内。

Claims (4)

1.一种果蔬中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS测定方法，其特征在于，所述方法包括以下步骤：

(1)提取

称取蔬菜和水果样品于具塞离心管中，加入乙腈或含1％乙酸的乙腈溶液均质提取1min，加入氯化钠或乙酸钠中的一种和无水硫酸镁振荡后离心；

(2)净化

移取样品提取液于离心管中，加入基质分散固相萃取剂，涡旋振荡，离心，取一定量净化液氮气吹干后，用体积比为1/1的丙酮/正己烷混合溶剂溶解定容，过膜后，待气相色谱-负化学离子源-质谱(GC-NCI-MS)检测；

(3)标准工作溶液的配制

将不含苯菌酮的同种类基质空白样品按上述步骤(1)、(2)处理，得样品提取净化残渣，加入适量溶剂和标准溶液，涡旋混匀，配制成至少3个浓度的苯菌酮系列标准工作液；

(4)测定和结果计算

GC-NCI-MS分析条件为：色谱柱：HP-5MS毛细管色谱柱，柱长30m，内径0.25mm，膜厚0.25μm；进样口温度250.0℃；载气：He，不分流模式进样，进样量：1μL；恒流模式，流速1.0mL/min；升温程序：初温60℃保持2min，以每分钟20℃的速度升至200℃，然后以每分钟2℃的速度升至220℃，再以每分钟20℃的速度升至280℃，保持10min；传输线温度：280℃；电离模式：负化学电离，即NCI模式，能量70eV；离子源温度150℃；扫描方式：选择离子监测(SIM)模式，监测的离子为：79、81、329；

将步骤(3)中的各浓度梯度的标准工作液进行GC-NCI-MS测定，以标准工作液的色谱峰面积对其相应浓度进行回归分析，得到基质标准工作曲线；在相同条件下将步骤(2)中净化后的样品液注入GC-NCI-MS进行测定，测得样品液中苯菌酮的色谱峰面积，代入基质标准工作曲线，得到样品液中苯菌酮含量，然后根据样品液所代表试样的质量计算得到样品中苯菌酮残留量；若上机溶液中苯菌酮残留量超过线性范围上限，需用定容溶剂将上机溶液浓度稀释至线性范围之内。

2.根据权利要求1所述的一种果蔬中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS测定方法，其特征在于，步骤(1)中蔬菜和水果样品若为脱水样品，需降低称样量，并加适量水充分浸润。

3.根据权利要求1所述的一种果蔬中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS测定方法，其特征在于，步骤(1)中采用乙腈提取时需加入氯化钠盐析，采用含1％乙酸的乙腈溶液提取时需加入乙酸钠盐析。

4.根据权利要求1所述的一种果蔬中苯菌酮残留量的GC-NCI-MS测定方法，其特征在于，步骤(2)中基质分散固相萃取剂由无水硫酸镁、C₁₈和PSA组成，每毫升提取液中无水硫酸镁、C₁₈和PSA加入量分别为150mg、50mg和25mg。