CN104059905A - 室温扩增dna的方法 - Google Patents
室温扩增dna的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN104059905A CN104059905A CN201310086850.3A CN201310086850A CN104059905A CN 104059905 A CN104059905 A CN 104059905A CN 201310086850 A CN201310086850 A CN 201310086850A CN 104059905 A CN104059905 A CN 104059905A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- dna
- amplification
- people
- template
- room temperature
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种室温扩增DNA的方法,包括:(1)提取模板DNA;(2)将模板DNA与扩增试剂混合形成扩增混合液后,进行室温DNA扩增10~60分钟,得到所需的扩增DNA。本发明实现了在常温下DNA的扩增,在资源有限的情况下,使扩增DNA成为可能,并缩短反应时间,得到特异性扩增产物;简化了DNA引物配对以及DNA聚合酶复合物延伸的过程。
Description
技术领域
本发明涉及一种扩增DNA的方法,特别是涉及一种室温扩增DNA的方法。
背景技术
目前DNA扩增的方法有常规PCR、等温PCR等,这些技术都能在短时间内,迅速使目标DNA得到100万倍甚至更高倍数的放大。自1983年面世以来,常规PCR依赖三温度(解链、退火、延伸)循环,对PCR仪器的稳定性有着非常高的要求。两温循环虽然能缩短反应时间,但是DNA聚合酶活性并不处于最优的温度,所以只能扩增较短的片段,而且耗时没有大幅度降低。等温PCR依赖于高于常温的一个稳定温度(例如60℃),还是需要一个精确的温度控制的仪器。
室温PCR则依赖重组酶和具有链置换的聚合酶扩增比较短的序列,需要ATP再生系统,从而使反应体系更加复杂,容易引发副反应,干扰检测效果。
发明内容
本发明要解决的技术问题是提供一种室温扩增DNA的方法。该方法通过在常温下,利用原核生物重组酶和真核生物DNA复合物彼此在室温下不同的反应特点,两个系统协同,能实现DNA在室温下快速复制。
为解决上述技术问题,本发明的室温扩增DNA的方法,包括步骤:
(1)以核酸抽提试剂盒或以氯仿苯酚法,提取模板DNA;
(2)将模板DNA与扩增试剂混合形成扩增混合液后,进行室温DNA扩增10~60分钟,得到所需的扩增DNA;
其中,扩增试剂的组分包括:
1)10~30mM pH7.2~7.8Tris-HAc
2)20~80mM醋酸钾(KAc)
3)2~5mM醋酸镁【Mg(Ac)2】
4)1~4mM巯基乙醇
5)质量百分比为1%~3.5%的聚乙二醇(PEG)20000
6)50~100μM dNTPs
7)100~500nM引物(包括:一对上游引物和下游引物)
8)0.5~1mM ATP
9)50~100nM RFC(真核DNA扩增环状复合物)
10)100~200nM PCNA(Proliferating Cell Nuclear Antigen,增殖细胞核抗原)
11)50~100nM polδ复合酶或人polη聚合酶
12)1~2μM RPA(真核DNA复制蛋白A)。
所述步骤(2)中,扩增试剂的组分,还包括:13)0.5~2.5μM T4噬菌体紫外敏感酶1;14)0.5~2.5μM T4噬菌体紫外敏感酶2;
其中,T4噬菌体紫外敏感酶1和T4噬菌体紫外敏感酶2,可根据公开的文献【Farid A.Kadyrov,John W.Drake.Properties of Bacteriophage T4 Proteins Deficient inReplication Repair.The Journal of Biological Chemistry,2003,278:25247–25255】制备得到。
步骤(2)的扩增混合液中,模板DNA的浓度为2×10-8ng/μL~10ng/μL;室温的温度范围为25~42℃。
步骤(2)中,涉及的所有扩增试剂的组分浓度值是在扩增混合液中的终浓度值。
另外,步骤(2)的扩增试剂的组分中,真核DNA扩增环状复合物RFC包括:酵母RFC和人RFC,其中,酵母RFC和人RFC可根据公开的文献【Olga Chilkova,et al.The eukaryoticleading and lagging strand DNA polymerases are loaded onto primer-ends via separatemechanisms but have comparable processivity in the presence of PCNA.Nucleic Acids Res,2007,35(19):6588-6597】和【Zhenxin Hu,et al.The Human Lagging Strand DNA PolymeraseδHoloenzyme Is Distributive.The Journal of Biological Chemistry,2012,287:38442-38448】制备得到;
增殖细胞核抗原(PCNA)包括:酵母PCNA和人PCNA;其中,人PCNA可根据公开的文献【Zhenxin Hu,et al.The Human Lagging Strand DNA PolymeraseδHoloenzyme Is Distributive.The Journal of Biological Chemistry,2012,287:38442-38448】制备得到;酵母PCNA可根据公开的文献【Olga Chilkova,et al.The eukaryotic leading and lagging strand DNApolymerases are loaded onto primer-ends via separate mechanisms but have comparableprocessivity in the presence of PCNA.Nucleic Acids Res,2007,35(19):6588-6597】制备得到;
polδ复合酶包括:酵母polδ复合酶和人polδ复合酶;其中,人polδ复合酶可根据公开的文献【Zhenxin Hu,et al.The Human Lagging Strand DNA PolymeraseδHoloenzyme IsDistributive.The Journal of Biological Chemistry,2012,287:38442-38448】制备得到;酵母polδ复合酶可根据公开的文献【Olga Chilkova,et al.The eukaryotic leading and laggingstrand DNA polymerases are loaded onto primer-ends via separate mechanisms but havecomparable processivity in the presence of PCNA.Nucleic Acids Res,2007,35(19):6588-6597】制备得到;
人polη聚合酶可根据公开的文献【Hoffman PD,et al.Biochemical evolution of DNApolymerase eta:properties of plant,human,and yeast proteins.Biochemistry,2008,47(16):4583-4596】制备得到;
真核DNA复制蛋白A(RPA)包括:酵母DNA复制蛋白A和人DNA复制蛋白A(人体和酵母的RPA都是重组的,在大肠杆菌中表达);其中,酵母DNA复制蛋白A可根据公开的文献【OlgaChilkova,et al.The eukaryotic leading and lagging strand DNA polymerases are loadedonto primer-ends via separate mechanisms but have comparable processivity in thepresence of PCNA.Nucleic Acids Res,2007,35(19):6588-6597】制备得到,人DNA复制蛋白A可根据公开的文献【Zhenxin Hu,et al.The Human Lagging Strand DNA PolymeraseδHoloenzyme Is Distributive.The Journal of Biological Chemistry,2012,287:38442-38448】制备得到。
本发明中,酵母RFC和人RFC,酵母PCNA和人PCNA,酵母RPA和人RPA,人polδ,和T4噬菌体紫外敏感酶1、2是由大肠杆菌体系表达纯化。
另外,所述步骤(2)中,得到所需的扩增DNA包括:人Rad18B基因。
本发明的有益效果如下:
(1)实现了在常温下DNA的扩增,在资源有限(没有PCR仪器或者没有熟练操作人员)的情况下,使扩增DNA成为可能;
(2)由于有DNA链复制环极大改进了DNA复制的速度和效率,克服了常温DNA扩增依赖ATP再生系统,反应体系不稳定,容易引发副反应等弊端,从而缩短反应时间,得到特异性扩增产物;
(3)不需要特别的能量体系,简化了DNA引物配对以及DNA聚合酶复合物延伸的过程。
附图说明
下面结合附图与具体实施方式对本发明作进一步详细的说明:
图1是常规PCR与本发明的室温扩增DNA的电泳图;其中,1为分子量标准,
2为模板0.2ng/μL(10000000拷贝数/μL),3为模板0.02ng/μL(1000000拷贝数/μL),4为模板0.002ng/μL(100000拷贝数/μL),5为模板0.00002ng/μL(1000拷贝数/μL),6为模板0.0002ng/μL(10000拷贝数/μL),7为模板0.000002ng/μL(100拷贝数/μL),8为模板0.0000002ng/μL(10拷贝数/μL),9为模板0.00000002ng/μL(1拷贝数/μL),10为模板0.000000002ng/μL(0.1拷贝数/μL),11为模板0(阴性对照),且2-11为常规PCR扩增,12为本发明的室温DNA扩增、模板0.000002ng/μL(100拷贝数/μL);
图2是本发明的室温DNA扩增的聚丙烯酰胺电泳图,其中,1为阳性标准,2为30℃、模板0.2ng/μL(10000000拷贝数/μL),3为20℃、模板0.2ng/μL(10000000拷贝数/μL),4为37℃、模板0.2ng/μL(10000000拷贝数/μL),5为37℃、模板0.02ng/μL(1000000拷贝数/μL),6为37℃、0.002ng/μL(100000拷贝数/μL)模板,7为37℃、模板0.0002ng/μL(10000拷贝数/μL),8为37℃、模板0.00002ng/μL(1000拷贝数/μL),9为37℃、模板0.000002ng/μL(100拷贝数/μL),10为37℃、模板0.0000002ng/μL(10拷贝数/μL),11为37℃、模板0.00000002ng/μL(1拷贝数/μL),12为37℃、模板0(阴性对照);
图3是实施例3中的室温DNA扩增的聚丙烯酰胺电泳图,其中,1是模板拷贝数为1拷贝数/μL,2是模板拷贝数为10拷贝数/μL,3是模板拷贝数为100/μL,4是模板拷贝数为1000/μL,5为分子量标准,6为阴性对照,7是模板拷贝数为10000/μL,8是模板拷贝数为100000/μL,9是模板拷贝数为1000000/μL;
图4是实施例4的室温DNA扩增的聚丙烯酰胺电泳图,其中,1是模板拷贝数为1拷贝数/μL,2是模板拷贝数为10拷贝数/μL,3是模板拷贝数为100/μL,4是模板拷贝数为1000/μL,5是模板拷贝数为10000/μL,6是模板拷贝数为100000/μL,7为分子量标准。
具体实施方式
以下实施例中涉及的质粒、PCR试剂、化学试剂等,如未特别说明,可采用商业产品,具体操作按照说明书进行。其他未注明的实验操作按照常规分子操作方法进行。
以下实施例中涉及的模板DNA浓度和扩增试剂的组分浓度都为在DNA扩增反应总体系(反应扩增总混合物)中的终浓度值。
以下实施例中涉及的扩增试剂中的蛋白,均可按照如下公开的文献制备:
酵母RFC和人RFC可根据公开的文献【Olga Chilkova,et al.The eukaryotic leading andlagging strand DNA polymerases are loaded onto primer-ends via separate mechanismsbut have comparable processivity in the presence of PCNA.Nucleic Acids Res,2007,35(19):6588-6597】和【Zhenxin Hu,et al.The Human Lagging Strand DNA PolymeraseδHoloenzyme Is Distributive.The Journal of Biological Chemistry,2012,287:38442-38448】制备得到;
人PCNA可根据公开的文献【Zhenxin Hu,et al.The Human Lagging Strand DNA PolymeraseδHoloenzyme Is Distributive.The Journal of Biological Chemistry,2012,287:38442-38448】制备得到;酵母PCNA可根据公开的文献【Olga Chilkova,et al.The eukaryotic leading andlagging strand DNA polymerases are loaded onto primer-ends via separate mechanismsbut have comparable processivity in the presence of PCNA.Nucleic Acids Res,2007,35(19):6588-6597】制备得到;
人polδ复合酶可根据公开的文献【Zhenxin Hu,et al.The Human Lagging Strand DNAPolymeraseδHoloenzyme Is Distributive.The Journal of Biological Chemistry,2012,287:38442-38448】制备得到;酵母polδ复合酶可根据公开的文献【Olga Chilkova,et al.Theeukaryotic leading and lagging strand DNA polymerases are loaded onto primer-endsvia separate mechanisms but have comparable processivity in the presence of PCNA.Nucleic Acids Res,2007,35(19):6588-6597】制备得到;
人polη聚合酶可根据公开的文献【Hoffman PD,et al.Biochemical evolution of DNApolymerase eta:properties of plant,human,and yeast proteins.Biochemistry,2008,47(16):4583-4596】制备得到;
酵母DNA复制蛋白A(RPA)可根据公开的文献【Olga Chilkova,et al.The eukaryoticleading and lagging strand DNA polymerases are loaded onto primer-ends via separatemechanisms but have comparable processivity in the presence of PCNA.Nucleic Acids Res,2007,35(19):6588-6597】制备得到;人DNA复制蛋白A(RPA)可根据公开的文献【ZhenxinHu,et al.The Human Lagging Strand DNA PolymeraseδHoloenzyme Is Distributive.The Journalof Biological Chemistry,2012,287:38442-38448】制备得到。
T4噬菌体紫外敏感酶1和T4噬菌体紫外敏感酶2,可根据公开的文献【Farid A.Kadyrov,John W.Drake.Properties of Bacteriophage T4Proteins Deficient inReplication Repair.The Journal of Biological Chemistry,2003,278:25247–25255】制备得到。
实施例1常规PCR与本发明的对比实验
一、模板DNA的制备
采用商业化的核酸抽提试剂盒(Qiagen公司),按照其说明书进行提取pUC18-Rad18B质粒的DNA。其中,该pUC18质粒上含有人体Rad18B基因。
其中,pUC18-Rad18B质粒的构建如下:
以人cDNA为模板(购自上海天裕生物科技有限公司),并以AAA TCT AGA TAT GAA TCA TTCCAG CTT TG(SEQ ID NO.1所示)和AAA GGT ACC TGT CGA CCC CGG CCC GTA G(SEQ ID NO.2所示)为上下游引物,经PCR扩增,得到人Rad18B基因扩增片段,然后,对该人Rad18B基因扩增片段以XbaI和KpnI双酶切,获得人Rad18B基因的DNA片段,然后,将该DNA片段插入pUC18质粒(购自上海天裕生物科技有限公司)中,用T4连接酶连接,转化成功后,经测序验证,获得pUC18-Rad18B质粒。
二、扩增人Rad18B基因
常规PCR与本发明室温DNA扩增中的条件如下:
1、人Rad18B基因的引物序列
正向引物(上游引物):5'-CATTCCAGCTTTGTTCAACAATGGCCGAAACTC-3'(SEQ IDNO.3所示)
反向引物(下游引物):5'-ATG TTT CAT CCA AAT GTG TAT GCT GAT GGT AGC-3'(SEQID NO.4所示)
2、反应体系
常规PCR的反应总体积为10μL,采用商业化的PCR反应试剂盒(购于上海天裕生物科技有限公司)进行制备,具体为:试剂盒中的2×的预混液中,加入正向和反向引物后,加入不同浓度的模板后,以超纯水补足到10μL。其中,DNA模板分别为0.2ng/μL、0.02ng/μL、0.002ng/μL、0.0002ng/μL、0.00002ng/μL、0.000002ng/μL、0.0000002ng/μL、0.00000002ng/μL(PCR反应总体系中的终浓度);引物浓度为:250nM的上述正向引物、250nM的上述反向引物。
本实施例的室温扩增DNA的方法如下:
室温30℃下的DNA扩增的反应总体积为10μL,其中,DNA模板为0.000002ng/μL,DNA扩增中的扩增试剂是由以下的组分构成:
1)20mM pH7.5Tris-HAc
2)50mM KAc
3)3mM Mg(Ac)2
4)2mM巯基乙醇
5)质量百分比为2%的聚乙二醇(PEG)20000
6)50μM dNTPs(上海天裕生物科技有限公司)
7)250nM的SEQ ID NO.3所示的正向引物、250nM的SEQ ID NO.4所示的反向引物
8)1mM ATP
9)100nM酵母RFC
10)200nM酵母PCNA
11)100nM酵母polδ复合酶
12)2μM酵母RPA。
3、反应条件
常规PCR反应条件为:将模板DNA、引物与PCR反应试剂盒中的反应试剂混合后,在PCR仪(杭州博日PCR扩增仪)上,以95℃300秒,然后95℃60秒,55℃90秒,72℃30秒,扩增循环数为30,总耗时1小时45分钟。
本发明的室温DNA扩增的反应条件为:将模板DNA与上述扩增试剂混合,在室温(30℃)下,进行DNA扩增30分钟。
4、扩增人Rad18B基因的产物电泳检测
人Rad18B基因的扩增产物以1.5%琼脂糖电泳检测,上样量是4μL,结果如图1所示,其中,人Rad18B基因的扩增产物长度为226bp。
由图1可知,常规PCR扩增中,在目标产物前沿,有非常明显的引物二聚体,而且随着模板浓度越低,引物二聚体越明显。同时,在模板浓度低于10000拷贝数/μL时,常规PCR无法有效扩增。图1中,本发明的室温DNA扩增产物只有226bp的产物,没有可以检测的引物二聚体。
因此,本发明与常规PCR相比,具有以下优点:检测所需模板浓度低,不易于形成引物二聚体,耗时更短,可以依赖仪器。
实施例2人体基因Rad18B的室温扩增
一、模板DNA的制备
采用商业化的核酸抽提试剂盒(Qiagen公司),按照其说明书进行提取pUC18-Rad18B质粒的DNA,获得模板DNA。
其中,模板DNA在30℃孵育下,按10倍比例依次稀释,获得稀释的模板DNA。
二、室温DNA扩增
将模板DNA(包括稀释的模板DNA)与扩增试剂混合,在30℃下,进行DNA扩增30分钟(DNA扩增的反应总体积为10μL),获得人Rad18B基因的DNA扩增产物;其中,扩增试剂是由以下的组分构成:
1)20mM pH7.5Tris-HAc
2)50mM KAc
3)3mM Mg(Ac)2
4)2mM巯基乙醇
5)质量百分比为2%的聚乙二醇(PEG)20000
6)50μM dNTPs(上海天裕生物科技有限公司)
7)250nM的SEQ ID NO.3所示的正向引物、250nM的SEQ ID NO.4所示的反向引物
8)1mM ATP
9)100nM酵母RFC
10)200nM酵母PCNA
11)100nM酵母polδ复合酶
12)2μM酵母RPA
13)1μMT4噬菌体紫外敏感酶1
14)1μMT4噬菌体紫外敏感酶2。
将DNA扩增产物经聚丙烯酰胺凝胶【10%(10g/100mL)非变性】电泳,结果如图2所示。该图中,扩增产物只有226bp的产物,没有可以检测的引物二聚体,而且在模板浓度为1拷贝数/μL时,仍然能检测出。
实施例3人体基因Rad18B的室温扩增
按照实施例2的方法进行操作,其中,将扩增试剂修改成由如下的组分所构成:
1)30mM pH7.8Tris-HAc
2)80mM KAc
3)5mM Mg(Ac)2
4)4mM巯基乙醇
5)质量百分比为3.5%的聚乙二醇20000
6)80μM dNTPs
7)500nM的SEQ ID NO.3所示的正向引物、500nM的SEQ ID NO.4所示的反向引物
8)0.8mM ATP
11)80nM人polη聚合酶
12)1.5μM人RPA
13)1μMT4噬菌体紫外敏感酶1
14)1μMT4噬菌体紫外敏感酶2。
本实施例中的DNA扩增产物,经聚丙烯酰胺凝胶(10%非变性)电泳,结果如图3所示,扩增产物只有226bp的产物,没有可以检测的引物二聚体,而且在模板浓度为1拷贝数/μL时,仍然能检测出。
实施例4人体基因Rad18B的室温扩增
按照实施例2的方法进行操作,其中,将扩增试剂修改成由如下的组分所构成:
1)10mM pH7.2Tris-HAc
2)20mM KAc
3)2mM Mg(Ac)2
4)1mM巯基乙醇
5)质量百分比为1%的聚乙二醇20000
6)100μM dNTPs
7)100nM的SEQ ID NO.3所示的正向引物、100nM的SEQ ID NO.4所示的反向引物
8)0.5mM ATP
9)50nM人RFC
10)100nM人PCNA
11)50nM酵母polδ复合酶
12)1μM人RPA
13)1μMT4噬菌体紫外敏感酶1
14)1μMT4噬菌体紫外敏感酶2。
本实施例中的DNA扩增产物,经聚丙烯酰胺凝胶(10%非变性)电泳,结果如图4所示,扩增产物只有226bp的产物,没有可以检测的引物二聚体,而且在模板浓度为1拷贝数/μL时,仍然能检测出。
实施例5人体基因Rad18B的室温扩增
按照实施例1的室温扩增DNA的方法,其他条件保持不变,反应温度改为25℃,反应60分钟后,电泳检测反应产物,依然能检测出226bp的扩增产物。
实施例6人体基因Rad18B的室温扩增
按照实施例1的室温扩增DNA的方法,其他条件保持不变,反应温度改为42℃,反应10分钟后,电泳检测反应产物,依然能检测出226bp的扩增产物。
实施例7人体基因Rad18B的室温扩增
按照实施例1的室温扩增DNA的方法,其他条件保持不变,反应温度改为25℃,反应30分钟后,电泳检测反应产物,检测出226bp的扩增产物。
Claims (8)
1.一种室温扩增DNA的方法,其特征在于,包括步骤:
(1)提取模板DNA;
(2)将模板DNA与扩增试剂混合形成扩增混合液后,进行室温DNA扩增10~60分钟,得到所需的扩增DNA;
其中,扩增试剂的组分包括:
1)10~30mM pH7.2~7.8Tris-HAc
2)20~80mM醋酸钾
3)2~5mM醋酸镁
4)1~4mM巯基乙醇
5)质量百分比为1%~3.5%的聚乙二醇20000
6)50~100μM dNTPs
7)100~500nM引物
8)0.5~1mM ATP
9)50~100nM真核DNA扩增环状复合物RFC
10)100~200nM增殖细胞核抗原PCNA
11)50~100nM polδ复合酶或人polη聚合酶
12)1~2μM真核DNA复制蛋白A。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(2)中,扩增试剂的组分,还包括:
13)0.5~2.5μM T4噬菌体紫外敏感酶1;
14)0.5~2.5μM T4噬菌体紫外敏感酶2。
3.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(2)的扩增混合液中,模板DNA的浓度为2×10-8ng/μL~10ng/μL。
4.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(2)中,室温的温度范围为25~42℃。
5.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(2)中,扩增试剂的组分浓度值是在扩增混合液中的终浓度值。
6.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(2)中,引物包括:一对上游引物和下游引物。
7.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(2)中,真核DNA扩增环状复合物RFC包括:酵母RFC和人RFC;
增殖细胞核抗原PCNA包括:酵母PCNA和人PCNA;
polδ复合酶包括:酵母polδ复合酶和人polδ复合酶;
真核DNA复制蛋白A包括:酵母DNA复制蛋白A和人DNA复制蛋白A。
8.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤(2)中,得到所需的扩增DNA包括:人Rad18B基因。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310086850.3A CN104059905B (zh) | 2013-03-18 | 2013-03-18 | 室温扩增dna的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310086850.3A CN104059905B (zh) | 2013-03-18 | 2013-03-18 | 室温扩增dna的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN104059905A true CN104059905A (zh) | 2014-09-24 |
CN104059905B CN104059905B (zh) | 2020-04-21 |
Family
ID=51547838
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310086850.3A Active CN104059905B (zh) | 2013-03-18 | 2013-03-18 | 室温扩增dna的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN104059905B (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108350087A (zh) * | 2015-11-27 | 2018-07-31 | 国立大学法人九州大学 | Dna聚合酶变体 |
CN108841998A (zh) * | 2018-07-03 | 2018-11-20 | 苏州点晶生物科技有限公司 | 检测猫疱疹病毒i型核酸的引物探针组、快速检测试剂盒及方法 |
WO2020177398A1 (zh) * | 2019-03-01 | 2020-09-10 | 苏州点晶生物科技有限公司 | 肺炎支原体快速检测引物组、试剂盒 |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0629706A3 (en) * | 1992-08-24 | 1997-12-17 | Akzo Nobel N.V. | Improved method for nucleic acid amplification |
US20050112631A1 (en) * | 2002-02-21 | 2005-05-26 | Olaf Piepenburg | Recombinase polymerase amplification |
CN101213295A (zh) * | 2005-07-04 | 2008-07-02 | 赛利斯达雷克西克-赛恩斯株式会社 | 变异型pcna |
CN101886122A (zh) * | 2010-05-10 | 2010-11-17 | 珠海市银科医学工程有限公司 | 环介导恒温扩增检测肺炎衣原体的方法及检测试剂盒 |
CN102517390A (zh) * | 2011-12-23 | 2012-06-27 | 厦门大学 | 基于实时荧光pcr的染色体非整倍体检测试剂盒 |
-
2013
- 2013-03-18 CN CN201310086850.3A patent/CN104059905B/zh active Active
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0629706A3 (en) * | 1992-08-24 | 1997-12-17 | Akzo Nobel N.V. | Improved method for nucleic acid amplification |
KR100274519B1 (ko) * | 1992-08-24 | 2000-12-15 | 에프.지.엠. 헤르만스 ; 이.에이치. 리링크 | 개선된 핵산 증폭 방법 |
US20050112631A1 (en) * | 2002-02-21 | 2005-05-26 | Olaf Piepenburg | Recombinase polymerase amplification |
CN101213295A (zh) * | 2005-07-04 | 2008-07-02 | 赛利斯达雷克西克-赛恩斯株式会社 | 变异型pcna |
CN101886122A (zh) * | 2010-05-10 | 2010-11-17 | 珠海市银科医学工程有限公司 | 环介导恒温扩增检测肺炎衣原体的方法及检测试剂盒 |
CN102517390A (zh) * | 2011-12-23 | 2012-06-27 | 厦门大学 | 基于实时荧光pcr的染色体非整倍体检测试剂盒 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
FARID A. KADYROV AND JOHN W.DRAKE: "Properties of Bacteriophage T4 Proteins Deficient in Replication Repair", 《THE JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY》 * |
王梁华、焦炳华主编: "《生物化学与分子生物学》", 30 September 2012 * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108350087A (zh) * | 2015-11-27 | 2018-07-31 | 国立大学法人九州大学 | Dna聚合酶变体 |
CN108841998A (zh) * | 2018-07-03 | 2018-11-20 | 苏州点晶生物科技有限公司 | 检测猫疱疹病毒i型核酸的引物探针组、快速检测试剂盒及方法 |
WO2020177398A1 (zh) * | 2019-03-01 | 2020-09-10 | 苏州点晶生物科技有限公司 | 肺炎支原体快速检测引物组、试剂盒 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN104059905B (zh) | 2020-04-21 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US10544452B2 (en) | Method and use of nucleic acid isothermal amplification via a polymerase spiral reaction | |
Zhao et al. | Isothermal amplification of nucleic acids | |
Zhuang et al. | A rolling circle amplification-based DNA machine for miRNA screening coupling catalytic hairpin assembly with DNAzyme formation | |
US10280451B2 (en) | Detection of genome editing | |
CN113201583B (zh) | 恒温条件下合成核酸的方法及试剂盒和应用 | |
EP3337615B1 (en) | Extreme reverse transcription pcr | |
CN105452480B (zh) | 经由剪刀状结构的dna扩增(dasl) | |
DK1833995T3 (en) | Determination of RNA targets using helicases | |
KR20080047355A (ko) | 표적 핵산 서열 분석 방법 및 키트 | |
Jung et al. | A primerless molecular diagnostic: phosphorothioated-terminal hairpin formation and self-priming extension (PS-THSP) | |
CN104630386A (zh) | 一种用于检测乙型肝炎病毒cccDNA的定性和绝对定量试剂盒 | |
CN104059905A (zh) | 室温扩增dna的方法 | |
US20180327819A1 (en) | Biosensor comprising tandem reactions of structure switching, nucleolytic digestion and amplification of a nucleic acid assembly | |
EP2151506B1 (en) | Method of amplifying target nucleic acid sequence by multiple displacement amplification including thermal cycling | |
Widom et al. | Versatile transcription control based on reversible dCas9 binding | |
Shi et al. | Rapid and colorimetric detection of nucleic acids based on entropy-driven circuit and DNAzyme-mediated autocatalytic reactions | |
Sakhabutdinova et al. | Inhibition of nonspecific polymerase activity using poly (aspartic) acid as a model anionic polyelectrolyte | |
CN104388419A (zh) | 一种高效扩增核酸分子的方法 | |
CN108823288B (zh) | 一种检测模块及方法 | |
EP3802872A1 (en) | Cleavable co-operative primers and method of amplifying nucleic acid sequences using same | |
CN106701738B (zh) | 一种等温解开双链dna及制备单链dna的方法 | |
CN114317689B (zh) | 非诊断目的的恒温条件下合成核酸的方法及试剂盒和应用 | |
Sarfallah et al. | In vitro reconstitution of human mitochondrial transcription | |
Lomidze et al. | Isothermal amplification of long DNA segments by quadruplex priming amplification | |
Luo et al. | Ultrasensitive sensing of T4 PNK phosphatase activity through establishing a novel transcription-based signal amplification platform |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |