CN103995123B - 检测布氏杆菌抗体的一种elisa试剂盒的制备方法与应用 - Google Patents

检测布氏杆菌抗体的一种elisa试剂盒的制备方法与应用 Download PDF

Info

Publication number
CN103995123B
CN103995123B CN201410266781.9A CN201410266781A CN103995123B CN 103995123 B CN103995123 B CN 103995123B CN 201410266781 A CN201410266781 A CN 201410266781A CN 103995123 B CN103995123 B CN 103995123B
Authority
CN
China
Prior art keywords
elisa
bru
plate
plate hole
monoclonal antibody
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201410266781.9A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103995123A (zh
Inventor
秦爱建
王志明
丁家波
邵红霞
钱琨
冯忠武
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Yangzhou University
Original Assignee
Yangzhou University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Yangzhou University filed Critical Yangzhou University
Priority to CN201410266781.9A priority Critical patent/CN103995123B/zh
Publication of CN103995123A publication Critical patent/CN103995123A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103995123B publication Critical patent/CN103995123B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56911Bacteria
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54373Apparatus specially adapted for solid-phase testing involving physiochemical end-point determination, e.g. wave-guides, FETS, gratings
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/23Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Brucella (G)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

一种竞争ELISA试剂盒检测牛布氏杆菌病的方法,属于生物技术检测领域,将超声裂解处理的牛种布鲁氏菌A99包被ELISA酶标板;再将抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru‑5C10和稀释的待检血清样品加入酶标板的板孔中;并同时分别将抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru‑5C10分别和已知的阴、阳性血清加入酶标板的板孔中,水浴后用PBST洗涤,再向各板孔中分别加入抗小鼠IgG酶标抗体,孵育洗涤后,进行显色反应,测得各板孔的OD450值,计算各板孔的抑制率。本发明利用建立的cELISA方法对小肠结肠炎耶尔森菌O9和大肠杆菌O157高免阳性血清进行检测,PI值均低于30%,可以有效地排除假阳性结果的发生。

Description

检测布氏杆菌抗体的一种ELISA试剂盒的制备方法与应用
技术领域
本发明属于生物技术检测领域,具体涉及对牛、羊的布鲁氏菌病的一种检测技术领域。
背景技术
布鲁氏菌病(布病)是由布鲁氏菌引起的一种重要的人兽共患病,反刍动物特别是牛和羊容易感染。根据抗原型和宿主类型将布鲁氏菌分为6类,患病母畜一般症状是流产,雄性则引起不育等生殖障碍。近几年在世界范围内布病呈现出反弹的趋势,在中国,牛种布鲁氏菌(B. abortus)和羊种布鲁氏菌(B.melitensis)造成的危害尤为广泛和严重,该病给畜牧业和公共卫生事业造成巨大经济损失,加强对布病的防控具有重要的现实意义。
对布病进行准确诊断是防止该病蔓延的首要措施,常见的布病血清学诊断方法主要有凝集试验、补体结合试验(CFT)、酶联免疫吸附试验(ELISA)和荧光偏振试验(FPA)。由于牛种布鲁氏菌和某些杆菌(最主要的是小肠结肠炎耶尔森菌O9、大肠杆菌O157)在脂多糖链(LPS)上存在共同的抗原位点,一般认为这些抗原位点属于脂多糖上可溶的蛋白类物质,因此血清学检测中往往因为交叉反应的存在而造成假阳性结果。相对而言,凝集试验的特异性和敏感性均较低,在一些发达国家已停止使用。CFT虽然特异性和敏感性均比较高,但由于操作繁琐,不适合常规检验,更不适合高通量检测,往往只用于确诊或作为其它诊断方法的仲裁。利用单克隆抗体(Mab)建立的检测动物血清中抗体的竞争ELISA(cELISA)方法已然成为目前检测布病的可靠方法之一。
目前为止,已制备针对位于脂多糖O链上(O-LPS)的A抗原、M抗原、C抗原和C/Y抗原的单克隆抗体;另一方面,学者们发现某些特定的外膜蛋白也存在免疫原性,如OMP31等利用这些单克隆抗体建立的cELISA方法早已应用于对布病的血清学检测,但由于不同单抗灵敏度和特异性等因素的限定,以及交叉反应的干扰,在实际检测当中往往会出现漏检、错检的结果。事实上,经本发明人研究发现,利用补体结合实验(CFT)和已建立的cELISA方法在检测临床样品时存在一定的不吻合率,特别是对一些介于阴性和阳性之间的疑似样品的判定。
发明内容
本发明目的是提出一种能够提高检测准确性的竞争ELISA试剂盒检测牛布氏杆菌病的方法。
本发明的技术方案包括以下步骤:
1)将超声裂解处理的牛种布鲁氏菌A99包被ELISA酶标板;
2)将抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10和稀释的待检血清样品加入酶标板的板孔中;并同时分别将抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10分别和已知的阴、阳性血清加入酶标板的板孔中,37℃水浴1小时后,用PBST洗涤,再向各板孔中分别加入抗小鼠IgG酶标抗体,孵育洗涤后,进行显色反应;
3)测得各板孔的OD450值;
4)由公式100×(1-OD阴性对照/OD待检样品)%分别计算各板孔的抑制率;
其中,OD阴性对照为加入了抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10和已知的阴性血清的D450值;OD待检样品为加入了抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10和稀释的待检血清样品的板孔的OD450值;
5)判定待检血清样品:抑制率≥30%,则判定待检血清样品为阳性。
本发明采用单克隆抗体Bru-5C10建立的cELISA通过软件的ROC分析给出的最佳临界值PI=25%,此时特异性为96.3%,敏感度为99.1%;为了提高检测过程中的特异性,本发明选择PI=30%作为临界值,此时特异性为98.8%, 敏感度为96.2%。
本发明利用建立的cELISA方法对小肠结肠炎耶尔森菌O9和大肠杆菌O157高免阳性血清进行检测,PI值均低于30%,说明本发明可以有效地排除假阳性结果的发生。
为了建立更准确的检测布病的cELISA方法,本发明利用灭活的牛种布鲁氏菌2308免疫小鼠,通过细胞融合技术获得1株对牛种布鲁氏菌有良好反应性的单克隆抗体,命名为单克隆抗体bru-5C10。本发明的单克隆抗体bru-5C10为杂交瘤细胞株 bru-5C10分泌获得。
本发明的单克隆抗体bru-5C10,于2014年5月7日保藏于北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国普通微生物菌种保藏管理中心,保藏号CGMCC No.9219,
生物材料:Bru-5C10,分类命名:杂交瘤细胞株。
另外,将超声裂解处理的牛种布鲁氏菌A99按1.75µg/孔溶于pH=9.6的碳酸盐缓冲液中,100µl/孔加入酶标版中,4℃孵育12h,弃去酶标板中的液体后,用PBST配制的5%脱脂乳,100µl/孔加入酶标版中,封闭后于37℃放置,3h后弃去封闭液,再用PBST洗涤2次,即得包被牛种布鲁氏菌A99的ELISA酶标板。该酶标板包被抗原的获得采用超声裂解法,相对于热酚法降低了繁琐度并保证了有效性;其中包被过程中,各条件的选择都采用控制单一变量原则经实验分析得出,保证了最佳反应性。
所述超声裂解处理的牛种布鲁氏菌A99的方法是:用生理盐水洗下在胰蛋白胨大豆琼脂培养基(简称:TSA,由酪蛋白、大豆粉木瓜、氯化钠、琼脂等组成)上生长的牛种布鲁氏菌S2308,置于80℃水浴灭活2h后调节菌液浊度,使其浊度约为1×1010CFU/ml;然后以频率为30HZ的超声裂解破碎菌体3~4次,15min/次。
本研究所建立的检测牛布氏杆菌病的cELISA方法,通过对320份临床牛血清样品的检测并与商品化布病cELISA试剂盒(Svanova公司)比较,结果显示两者的符合率为95.6%,且经第三方实验(补体结合实验)验证不吻合样品,本研究所建立的方法有更高的符合率。其意义在于本方法对布氏杆菌病的血清学检测特异性更强,敏感性更好。
附图说明
图1为单抗Bru-5C10的免疫印迹试验图。
具体实施方式
一、通过细胞融合技术获得对牛种布鲁氏菌有良好反应性的单克隆抗体bru-5C10:
取经过常规免疫后小鼠的脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞按照标准程序进行细胞融合。收集杂交瘤细胞上清,用间接酶联免疫吸附实验法(iELISA)筛选与牛种布鲁氏菌A99粗提的LPS具有强反应,而与小肠结肠炎耶尔森菌O9粗提的LPS无反应的阳性杂交瘤细胞株。按照有限稀释法进行2次亚克隆获得单克隆抗体bru-5C10。
二、单克隆抗体bru-5C10的保存证明信息:
保藏号CGMCC No.9219,保藏地址为:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国普通微生物菌种保藏管理中心,保藏日:2014年5月7日。生物材料:Bru-5C10,分类命名:杂交瘤细胞株。
三、制作牛种布鲁氏菌A99包被ELISA酶标板:
用生理盐水洗下在胰蛋白胨大豆琼脂培养基(简称:TSA。胰蛋白胨大豆琼脂培养基由酪蛋白、大豆粉木瓜、氯化钠、琼脂等组成)上生长的牛种布鲁氏菌S2308,置于80℃水浴灭活2h,调节菌液浊度,使其浊度约为1×1010CFU/ml;然后再利用超声裂解破碎菌体:超声频率为30HZ,15min/次,进行3~4次。
将超声裂解处理过的牛种布鲁氏菌A99按1.75µg/孔溶于pH=9.6的碳酸盐缓冲液中,100µl/孔加入酶标版中,4℃孵育12h。弃去酶标板中的液体后,用PBST配制的5%脱脂乳,100µl/孔加入酶标版中,封闭后于37℃放置,3h后弃去封闭液,再用PBST洗涤2次,即得包被牛种布鲁氏菌A99的ELISA酶标板。
四、检测试验:
以PBST为缓冲液,将待检样本稀释20倍,待用。
以PBST为缓冲液,分别将牛的阴性血清和阳性血清稀释20倍,待用。
向包被牛种布鲁氏菌A99的ELISA酶标板的各孔分别加入50µl稀释后的待检样品和50µl用PBST按照1:4000进行稀释的单克隆抗体Bru-5C10。
同时取标准阴性血清和阳性血清作为阴阳对照组,向包被牛种布鲁氏菌A99的ELISA酶标板的A1-A2孔中分别加入50µl稀释后的阴性血清和50µl工作浓度的单克隆抗体bru-5C10,向包被牛种布鲁氏菌A99的ELISA酶标板的A3-A4孔中分别加入50µl稀释后的阳性血清和50µl工作浓度的单克隆抗体bru-5C10。
分别将各孔中的体系充分混匀后,将酶标板在37℃孵育30min后,再分别以PBST洗涤4次。再向每孔加入100µl HRP标记的羊抗鼠IgG,37℃孵育30min后,以PBST洗涤5次。然后加入底物显色液室温作用10min,以2M硫酸终止。
分别读取各孔的OD450值。
OD阴性对照为加入了抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10和已知的阴性血清的板孔的OD450值;OD待检样品为加入了抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10和稀释的待检血清样品的板孔的OD450值。
并根据公式100×(1-OD阴性对照/OD待检样品)%分别计算抑制率(PI)。
计算结果:已知的阳性血清相应的抑制率(PI)≥30%,已知的阴性血清相应的抑制率(PI)<30%。
以此为标准,将待检样本各孔的抑制率(PI)进行加合后求平均值,如平均值为≥30%,则待检样本为阳性;如平均值为<30%,则待检样本为阴性。
五、cELISA 的重复性:经重复性实验结果证明,本发明所建立的cELISA批内重复性的平均变异系数为2.2%;批间重复性的平均变异系数为5.9%,表明该cELISA方法具有良好的可重复性。
六、试剂盒中的单克隆抗体与小肠结肠炎耶尔森菌O9、大肠杆菌O157没有交叉反应。
如图1的单抗Bru-5C10的免疫印迹试验图所示,其中:
1显示了牛种布鲁氏菌S2308超声裂解后的上清液与单抗Bru-5C10反应结果;
2显示了牛种布鲁氏菌A99超声裂解后上清液与单抗Bru-5C10反应结果;
3显示了小肠结肠炎耶尔森菌O9超声裂解后上清液与单抗Bru-5C10反应结果;
4显示了大肠杆菌O157超声裂解后上清液与单抗Bru-5C10反应结果。

Claims (3)

1.一种ELISA试剂盒在检测布氏杆菌抗体中的应用,其特征在于包括以下步骤:
1)将超声裂解处理的牛种布鲁氏菌A99包被ELISA酶标板;
2)将抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10和稀释的待检血清样品加入酶标板的板孔中;并同时将抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10分别和已知的阴、阳性血清加入酶标板的板孔中,37℃水浴后,用PBST洗涤,向各板孔中分别加入抗小鼠IgG酶标抗体,孵育洗涤后,进行显色反应;
3)测得各板孔的OD450值;
4)由公式100×(1-OD阴性对照/OD待检样品)%分别计算各板孔的抑制率;
其中,OD阴性对照为加入了抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10和已知的阴性血清的板孔的OD450值;OD待检样品为加入了抗布鲁氏菌特异单克隆抗体bru-5C10和稀释的待检血清样品的板孔的OD450值;
5)判定待检血清样品:抑制率≥30%,则判定待检血清样品为阳性;
所述单克隆抗体bru-5C10为由保藏号为CGMCC No.9219的杂交瘤细胞株分泌。
2.根据权利要求1所述一种ELISA试剂盒在检测布氏杆菌抗体中的应用,其特征在于将超声裂解处理的牛种布鲁氏菌A99按1.75µg/孔溶于pH为9.6的碳酸盐缓冲液中,100µl/孔加入酶标板中,4℃孵育12h,弃去酶标板中的液体后,用PBST配制的5%脱脂乳,100µl/孔加入酶标板中,封闭后于37℃放置,3h后弃去封闭液,再用PBST洗涤2次,即得包被牛种布鲁氏菌A99的ELISA酶标板。
3.根据权利要求1或2所述一种ELISA试剂盒在检测布氏杆菌抗体中的应用,其特征在于所述超声裂解处理的牛种布鲁氏菌A99的方法是:用生理盐水洗下在胰蛋白胨大豆琼脂培养基上生长的牛种布鲁氏菌S2308,置于80℃水浴灭活2h后调节菌液浊度,使其浊度约为1×1010CFU/ml;然后以频率为30HZ的超声裂解破碎菌体3~4次,15min/次。
CN201410266781.9A 2014-06-16 2014-06-16 检测布氏杆菌抗体的一种elisa试剂盒的制备方法与应用 Active CN103995123B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201410266781.9A CN103995123B (zh) 2014-06-16 2014-06-16 检测布氏杆菌抗体的一种elisa试剂盒的制备方法与应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201410266781.9A CN103995123B (zh) 2014-06-16 2014-06-16 检测布氏杆菌抗体的一种elisa试剂盒的制备方法与应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103995123A CN103995123A (zh) 2014-08-20
CN103995123B true CN103995123B (zh) 2016-08-17

Family

ID=51309344

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201410266781.9A Active CN103995123B (zh) 2014-06-16 2014-06-16 检测布氏杆菌抗体的一种elisa试剂盒的制备方法与应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103995123B (zh)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106198973A (zh) * 2016-09-07 2016-12-07 扬州大学 一种简便快速检测布氏杆菌抗体的直接阻断elisa方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101799470A (zh) * 2009-03-26 2010-08-11 张晓艳 布鲁氏菌病间接酶联免疫吸附试验抗体检测试剂盒
CN102621304A (zh) * 2011-01-30 2012-08-01 吉林农业大学 鹿布氏杆菌病间接酶联免疫吸附检测法
CN103278635A (zh) * 2013-05-31 2013-09-04 中国兽医药品监察所 动物布鲁氏菌病竞争elisa 抗体检测试剂盒
CN103344770A (zh) * 2013-07-15 2013-10-09 山东省农业科学院奶牛研究中心 牛布鲁氏菌间接elisa检测试剂盒

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101799470A (zh) * 2009-03-26 2010-08-11 张晓艳 布鲁氏菌病间接酶联免疫吸附试验抗体检测试剂盒
CN102621304A (zh) * 2011-01-30 2012-08-01 吉林农业大学 鹿布氏杆菌病间接酶联免疫吸附检测法
CN103278635A (zh) * 2013-05-31 2013-09-04 中国兽医药品监察所 动物布鲁氏菌病竞争elisa 抗体检测试剂盒
CN103344770A (zh) * 2013-07-15 2013-10-09 山东省农业科学院奶牛研究中心 牛布鲁氏菌间接elisa检测试剂盒

Also Published As

Publication number Publication date
CN103995123A (zh) 2014-08-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Koletzko et al. Evaluation of a novel monoclonal enzyme immunoassay for detection of Helicobacter pylori antigen in stool from children
Kazemi et al. Diagnostic values of Helicobacter pylori diagnostic tests: stool antigen test, urea breath test, rapid urease test, serology and histology
Mezo et al. Field evaluation of the MM3-SERO ELISA for detection of anti-Fasciola IgG antibodies in milk samples from individual cows and bulk milk tanks
Ueda et al. Diagnostic accuracy of the E-plate serum antibody test kit in detecting Helicobacter pylori infection among Japanese children
Matope et al. Evaluation of sensitivity and specificity of RBT, c-ELISA and fluorescence polarisation assay for diagnosis of brucellosis in cattle using latent class analysis
Agasthya et al. Seroprevalence study of human brucellosis by conventional tests and indigenous indirect enzyme‐linked immunosorbent assay
Marks et al. Mapping the epidemiology of yaws in the Solomon Islands: a cluster randomized survey
Muma et al. Evaluation of three serological tests for brucellosis in naturally infected cattle using latent class analysis
Sergeant et al. Evaluation of national surveillance methods for detection of Irish dairy herds infected with Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis
Reller et al. Leptospirosis as frequent cause of acute febrile illness in southern Sri Lanka
Bartels et al. Evaluation of three enzyme-linked immunosorbent assays for detection of antibodies to Neospora caninum in bulk milk
CN104020297B (zh) 用于结核分枝杆菌感染检测及临床治疗效果监测的试剂盒及其用途
Kelly et al. Gastric and intestinal barrier impairment in tropical enteropathy and HIV: limited impact of micronutrient supplementation during a randomised controlled trial
Joardar et al. Seroprevalence of bluetongue in north eastern Indian state-Assam
Sharma et al. Seroprevalence of human brucellosis in and around Jammu, India, using different serological tests
CN106771208A (zh) 布鲁氏菌抗体检测试纸条
Pedrassani et al. Improvement of an enzyme immunosorbent assay for detecting antibodies against Dioctophyma renale
Shady et al. Comparison of serum IgG antibody test with gastric biopsy for the detection of Helicobacter pylori infection among Egyptian children
Olsen et al. Determination of an optimal ELISA cut-off for the diagnosis of Toxoplasma gondii infection in pigs using Bayesian latent class modelling of data from multiple diagnostic tests
CN101592660A (zh) 布鲁氏菌病间接酶联免疫吸附试验奶液抗体检测试剂盒
CN103995123B (zh) 检测布氏杆菌抗体的一种elisa试剂盒的制备方法与应用
Bassiony et al. Sero-prevalence and risk factors associated with Toxoplasma gondii infection among pregnant women in Alexandria, Egypt
CN106596958A (zh) 布鲁氏菌病cf‑elisa抗体检测试剂盒
CN101846685A (zh) 栉孔扇贝血细胞的酶联免疫检测试剂盒及其制备方法
Kumar et al. Improvement in the diagnosis of Brucella abortus infections in naturally infected water buffaloes (Bubalus bubalis) using an ELISA with a Protein-G-based indicator system

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant