CN103901088B - 采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器 - Google Patents
采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103901088B CN103901088B CN201410157515.2A CN201410157515A CN103901088B CN 103901088 B CN103901088 B CN 103901088B CN 201410157515 A CN201410157515 A CN 201410157515A CN 103901088 B CN103901088 B CN 103901088B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- oxidase
- solution
- enzyme
- biosensor
- spinning
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
本发明属于采用静电纺丝法制备纤维膜生物传感器。本发明将丙烯腈‑丙烯酸共聚物配制成N,N‑二甲基甲酰胺溶液作为外层的纺丝溶液,将酶配置成酶溶液作为内层纺丝溶液,一起加以高压电在电极上电纺成纤维膜,制得生物传感器。本发明克服了现有固定酶等生物活性分子的吸附、交联、共价键合、包埋等存在准确度、灵敏度、操作稳定性、使用寿命、选择性等差的缺陷。本发明生物传感器稳定性好、灵敏度高、重现性好,而所需的酶量少。由于制作方法也非常简单,所以投入市场的可能性较大。用同一固定材料可制备不同功能的生物传感器,适合多种酶底物的检测,可广泛用于医学、食品、环境等领域,具有较高的经济效益。
Description
技术领域
本发明属于以高分子聚合物为外层,包裹内层酶活性分子通过电纺纳米纤维膜制备生物传感器的方法,特别涉及采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器。
背景技术
生物传感器的基本原理是基于生物活性物质具有优异的分子识别功能,对测定物质具有较高的选择性和灵敏度;生物活性物质构成分子识别部分,被识别的信息再经过信息转换部分以可检测的信号输出。生物传感器核心主要由分子识别和信息转换两部分组成,其中分子识别部分是指固定化的酶、微生物、抗体、细胞或组织等,它是生物传感器的核心。因此生物活性分子的固定化是生物传感器制备的关键步骤。
在本发明之前,现有的固定酶等生物活性分子的方法主要有吸附、交联、共价键合、包埋等,但这些方法在准确度、灵敏度、操作稳定性、使用寿命、选择性等都方面存在着不足和局限。
发明内容
本发明的目的就是克服上述缺陷,提供采用静电纺丝法制备纤维膜生物传感器。
本发明的技术方案是:
采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器,其主要技术特征在于将丙烯腈-丙烯酸共聚物配制成N,N-二甲基甲酰胺溶液作为外层的纺丝溶液,将酶配置成酶溶液作为内层纺丝溶液,一起加以高压电在电极上电纺成纤维膜,制得生物传感器。
所述丙烯腈-丙烯酸共聚物溶液的质量分数为6~15%,其粘均分子量为30000~100000,丙烯酸链段的含量为1%~5%。
所述酶为血红蛋白酶、多酚氧化酶、葡萄糖氧化酶、黄嘌呤氧化酶、酪氨酸酶、半乳糖氧化酶、脲酸酶、过氧化物酶、胆碱氧化酶、乙酰胆碱脂酶、谷氨酸氧化酶、胆固醇氧化酶、丙酮酸氧化酶、抗坏血酸氧化酶、肌氨酸氧化酶、乙醇脱氢酶、乙醇氧化酶、乳酸脱氢酶、乳酸氧化酶、超氧化物歧化酶、脲酶、赖氨酸氧化酶、亚硫酸盐氧化酶、漆酶、脂肪酶、异柠檬酸脱氢酶中的任何一种。
所述同轴纺丝时,外层为可纺聚合物。
采用本发明方法制备出的生物传感器稳定性好、灵敏度高、重现性好,而所需的酶量少。由于制作方法也非常简单,所以投入市场的可能性较大。用同一固定材料可制备不同功能的生物传感器,适合多种酶底物的检测,可广泛用于医学、食品、环境等领域,具有较高的经济效益。
附图说明
图1为静电纺丝法制备的纳米纤维膜的扫描电镜图,其中A为同轴静电纺丝法制备的Hb/P(AN-co-AA)纤维膜扫描电镜图,B为A图的局部放大图。(因为同轴静电纺丝法制备的不同酶的含有生物活性的纳米纤维形貌基本一致,直径也相仿,故而只挑选Hb/P(AN-co-AA)纤维膜的扫描电镜作为代表。)
图2为静电纺丝法制备的Hb/P(AN-co-AA)纤维膜电极在磷酸缓冲溶液中对H2O2溶液反应的时间电流曲线图。
图3为Hb/P(AN-co-AA)纤维膜电极对H2O2浓度变化的直线部分校正曲线拟合图。
图4为Hb/P(AN-co-AA)纤维膜电极的表观米氏常数的线性范围的直线拟合图。
图5为静电纺丝法制备的PPO/P(AN-co-AA)纤维膜电极在磷酸缓冲溶液中对儿茶酚溶液反应的时间电流曲线图。
图6为PPO/P(AN-co-AA)纤维膜电极对儿茶酚浓度变化的直线部分校正曲线拟合图。
图7为PPO/P(AN-co-AA)纤维膜电极的表观米氏常数的线性范围的直线拟合图。
图8为静电纺丝法制备的GOD/P(AN-co-AA)纤维膜电极在磷酸缓冲溶液中对葡萄糖溶液反应的时间电流曲线图。
图9为GOD/P(AN-co-AA)纤维膜电极对葡萄糖溶液浓度变化的直线部分校正曲线拟合图。
图10为GOD/P(AN-co-AA)纤维膜电极的表观米氏常数的线性范围的直线拟合图。
具体实施方式
本发明的基本思路是:
用静电纺丝法制得的纤维比传统纺丝法制得的纤维细得多,直径一般在几十纳米至几微米之间,且纳米纤维膜具有很好的力学性能、高的比表面积、高孔隙率、高吸附性。
丙烯腈-丙烯酸聚合物有非常好的成纤能力,且因为引入羧基具有很好的生物相容性;将酶活性分子作为内层一起电纺成膜,制备生物传感器,制备简单、增大了酶的固定量和酶的固定稳定性、防止了酶的失活。
因此,本发明从此入手。
下面具体说明本发明的实施方案。
本发明采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器,其主要步骤如下:
步骤1:采用自由基聚合法合成丙烯腈-丙烯酸共聚物,其粘均分子量为30000~100000,共聚物中丙烯酸链段的含量为1%~5%。
步骤2:将丙烯腈-丙烯酸共聚物配制成浓度为6~15%的N,N-二甲基甲酰胺溶液,再配置检测所需的血红蛋白、多酚氧化酶、葡萄糖氧化酶溶液。
步骤3:将聚合物溶液作为外层,再将酶溶液作为内层纺丝溶液,一起加以15KV高压电、15cm的纺丝距离、20~50%的湿度、室温下在电极上电纺成纤维膜,即可制得生物传感器。该方法制备的生物传感器制备操作简单、克服了简单吸附中稳定性差的缺点和共价键合中酶易失活的不足,需要的酶量小、固定量高。
所述丙烯腈-丙烯酸共聚物作为外层聚合物必须具有可纺性,而内层溶液并不要求可纺性,因此才能将内层分子一起固定在纳米纤维中,而本发明方案中的丙烯腈-丙烯酸聚合物拥有非常好的成纤能能力,对纺丝要求非常宽松。
实施例1:
制备血红蛋白酶传感器
将丙烯腈-丙烯酸共聚物配制成浓度为6%的N,N-二甲基甲酰胺溶液,再用磷酸缓冲溶液配置8mg/ml的血红蛋白酶溶液,聚合物溶液作为外层、酶溶液作为内层,再15KV电压、15cm的纺丝距离、40%的湿度、室温下进行静电纺丝,外层推注速度设为0.3mm/min,内层推注速度设为0.1mm/min,纺丝时间设为40s,用常规的玻碳电极(直径为0.3mm)为接收器,即可制备纳米纤维膜生物传感器。以该电极为工作电极、铂丝电极为辅助电极、饱和甘汞电极为参比电极,以-0.3V恒定电位,pH为7.0的磷酸缓中溶液中测定该生物传感器对H2O2溶液的响应。
该生物传感器对H2O2的响应时间为10秒;测量H2O2的线性范围为5~70mM;检测限为0.13mM;灵敏度为0.092mA·M-1·cm-2;米氏常数KM app为25.61mM;线性相关度为0.996;传感器具有较高的操作稳定性,在1mM H2O2溶液中连续测量50次后,响应电流基本保持不变,相对标准偏差(RSD)仅为3.0%。对应于说明附图1-4,图1为该静电纺丝法制备的纳米纤维膜的扫描电镜图,其中A为同轴静电纺丝法制备的Hb/P(AN-co-AA)纤维膜扫描电镜图,B为A图的局部放大图,可以看出该方法制得的纳米纤维膜均一度高,直径在200-300nm之间;图2可以看出该方法制备的传感器有较短的响应时间,说明底物可以快速与酶发生催化反应;图3可以看出低浓度时催化反应为一级反应,该方法制备的传感器催化底物的反应有非常好的线性关系,且测定浓度先行范围宽,根据斜率可求出灵敏度;图4为该方法制得的传感器米氏常数测定曲线。
实施例2:
制备多酚氧化酶传感器
先将丙烯腈-丙烯酸共聚物配制成浓度为6%的N,N-二甲基甲酰胺溶液,再用磷酸缓冲溶液配置8mg/ml的多酚氧化酶溶液,聚合物溶液作为外层、酶溶液作为内层,再15KV电压、15cm的纺丝距离、40%的湿度、室温下进行静电纺丝,外层推注速度设为0.3mm/min,内层推注速度设为0.1m/min,纺丝时间设为40s,用常规的玻碳电极(直径为0.3mm)为接收器,即可制备纳米纤维膜生物传感器。以该电极为工作电极、铂丝电极为辅助电极、饱和甘汞电极为参比电极,以-0.2V恒定电位,pH为6.0的磷酸缓冲溶液中测定该生物传感器对儿茶酚溶液的响应。
该生物传感器对儿茶酚的响应时间为10秒;测量儿茶酚的线性范围为0.5nM~500nM;检测限为0.364nM;灵敏度为161.78mA·M-1·cm-2;米氏常数KM app为0.0175mM;线性相关度为0.9997;电极制作的重现性好(五支电极同时制备的相对标准偏差为4.9%)。对应于说明附图5-7,图5可以看出该方法制备的传感器有较短的响应时间,说明底物可以快速与酶发生催化反应;图6可以看出低浓度时催化反应为一级反应,该方法制备的传感器催化底物的反应有非常好的线性关系,且测定浓度先行范围宽,根据斜率可求出灵敏度;图7为该方法制得的传感器米氏常数测定曲线。
实施例3:
制备葡萄糖氧化酶传感器
先将丙烯腈-丙烯酸共聚物配制成浓度为6%的N,N-二甲基甲酰胺溶液,再用磷酸缓冲溶液配置8mg/ml的葡萄糖氧化酶溶液,聚合物溶液作为外层、酶溶液作为内层,再15KV电压、15cm的纺丝距离、40%的湿度、室温下进行静电纺丝,外层推注速度设为0.3mm/min,内层推注速度设为0.1mm/min,纺丝时间设为40s,用常规的铂电极(直径为0.2mm)为接收器,即可制备纳米纤维膜生物传感器。以该电极为工作电极、铂丝电极为辅助电极、饱和甘汞电极为参比电极,以0.6V恒定电位,pH为7.0的磷酸缓冲溶液中测定该生物传感器对葡萄糖溶液的响应。
该生物传感器对葡萄糖的响应时间为12秒;测量葡萄糖的线性范围为20mM~80mM;检测限为16.07mM;灵敏度为0.0529mA·M-1·cm-2;米氏常数KM app为30.13mM;线性相关度为0.997。对应于说明附图8-10,图8可以看出该方法制备的传感器有较短的响应时间,说明底物可以快速与酶发生催化反应;图9可以看出低浓度时催化反应为一级反应,该方法制备的传感器催化底物的反应有非常好的线性关系,且测定浓度先行范围宽,根据斜率可求出灵敏度;图10为该方法制得的传感器米氏常数测定曲线。
采用同样的方法还可分别制备成黄嘌呤氧化酶、酪氨酸酶、半乳糖氧化酶、脲酸酶、过氧化物酶、胆碱氧化酶、乙酰胆碱脂酶、谷氨酸氧化酶、胆固醇氧化酶、丙酮酸氧化酶、抗坏血酸氧化酶、肌氨酸氧化酶、乙醇脱氢酶、乙醇氧化酶、乳酸脱氢酶、乳酸氧化酶、超氧化物歧化酶、脲酶、赖氨酸氧化酶、亚硫酸盐氧化酶、漆酶、脂肪酶、异柠檬酸脱氢酶中的任何一种。
本发明所采用的电极为本领域公知的基底电极。
Claims (2)
1.采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器,其特征在于将丙烯腈-丙烯酸共聚物配制成N,N-二甲基甲酰胺溶液作为外层的纺丝溶液,将酶配置成酶溶液作为内层纺丝溶液,一起加以高压电在电极上电纺成纤维膜,制得生物传感器;所述丙烯腈-丙烯酸共聚物溶液的质量分数为6~15%,其粘均分子量为30000~100000,丙烯酸链段的含量为1%~5%。
2.根据权利要求1所述的采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器,其特征在于所述酶为血红蛋白酶、多酚氧化酶、葡萄糖氧化酶、黄嘌呤氧化酶、酪氨酸酶、半乳糖氧化酶、脲酸酶、过氧化物酶、胆碱氧化酶、乙酰胆碱脂酶、谷氨酸氧化酶、胆固醇氧化酶、丙酮酸氧化酶、抗坏血酸氧化酶、肌氨酸氧化酶、乙醇脱氢酶、乙醇氧化酶、乳酸脱氢酶、乳酸氧化酶、超氧化物歧化酶、脲酶、赖氨酸氧化酶、亚硫酸盐氧化酶、漆酶、脂肪酶、异柠檬酸脱氢酶中的任何一种。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410157515.2A CN103901088B (zh) | 2014-04-17 | 2014-04-17 | 采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201410157515.2A CN103901088B (zh) | 2014-04-17 | 2014-04-17 | 采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103901088A CN103901088A (zh) | 2014-07-02 |
CN103901088B true CN103901088B (zh) | 2016-08-31 |
Family
ID=50992549
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201410157515.2A Active CN103901088B (zh) | 2014-04-17 | 2014-04-17 | 采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103901088B (zh) |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104849333B (zh) * | 2015-05-26 | 2017-05-24 | 扬州大学 | 基于丙烯腈共聚物基纳米碳纤维复合材料的生物传感器的制备方法 |
CN107817284B (zh) * | 2017-10-24 | 2019-08-02 | 中国地质大学(北京) | 用于消毒副产物检测的电纺丝固定化仿酶电极的制备方法 |
CN114149718B (zh) * | 2020-09-08 | 2023-03-24 | 三诺生物传感股份有限公司 | 生物传感器的成膜组合物及其制备方法 |
CN118166484B (zh) * | 2024-05-15 | 2024-10-15 | 齐鲁工业大学(山东省科学院) | 一种丹皮酚脂质体负载纳米纤维膜及其制备方法和应用 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61145448A (ja) * | 1984-12-19 | 1986-07-03 | Fuji Electric Co Ltd | 固定化酵素膜 |
CN1850983A (zh) * | 2006-02-20 | 2006-10-25 | 扬州大学 | 一种多孔膜固定酶制备生物传感器的方法 |
CN101290301A (zh) * | 2008-05-23 | 2008-10-22 | 浙江大学 | 基于静电纺纤维膜的安培酶电极及其制备方法 |
-
2014
- 2014-04-17 CN CN201410157515.2A patent/CN103901088B/zh active Active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61145448A (ja) * | 1984-12-19 | 1986-07-03 | Fuji Electric Co Ltd | 固定化酵素膜 |
CN1850983A (zh) * | 2006-02-20 | 2006-10-25 | 扬州大学 | 一种多孔膜固定酶制备生物传感器的方法 |
CN101290301A (zh) * | 2008-05-23 | 2008-10-22 | 浙江大学 | 基于静电纺纤维膜的安培酶电极及其制备方法 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
A highly stable biosensor for phenols prepared by immobilizing polyphenol oxidase into polyaniline–polyacrylonitrile composite matrix;Huaiguo Xue et al.;《Talanta》;20021231;第57卷;全文 * |
Electrospun poly(vinyl alcohol)/glucose oxidase biocomposite membranes for biosensor applications;Guanglei Ren et al.;《Reactive & Functional Polymers》;20061231;第66卷;全文 * |
丙烯腈/丙烯酸共聚物纳米纤维膜的制备及脂肪酶的固定化;蒋珺;《中国优秀硕士学位论文全文数据库 工程科技Ⅰ辑》;20070815(第2期);正文第2.3.1、2.7、3.3.1节 * |
聚乙烯醇静电纺丝法固定葡萄糖氧化酶;许鑫华等;《天津大学学报》;20061231;第39卷(第7期);第1.1、1.3、1.5节及图1 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103901088A (zh) | 2014-07-02 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Liu et al. | Laser-induced graphene (LIG)-driven medical sensors for health monitoring and diseases diagnosis | |
Zhang et al. | A gold nanoparticles deposited polymer microneedle enzymatic biosensor for glucose sensing | |
CN103901088B (zh) | 采用静电纺丝法制备纳米纤维膜生物传感器 | |
Ren et al. | Electrospun poly (vinyl alcohol)/glucose oxidase biocomposite membranes for biosensor applications | |
Wooten et al. | On the direct electron transfer, sensing, and enzyme activity in the glucose oxidase/carbon nanotubes system | |
Lin et al. | Glucose biosensors based on carbon nanotube nanoelectrode ensembles | |
Dardano et al. | Microneedles-based electrochemical sensors: New tools for advanced biosensing | |
Zhang et al. | Carbon nanotube-modified carbon fiber microelectrodes for in vivo voltammetric measurement of ascorbic acid in rat brain | |
Tian et al. | A microelectrode biosensor for real time monitoring of L-glutamate release | |
Doong et al. | Array-based titanium dioxide biosensors for ratiometric determination of glucose, glutamate and urea | |
Zhang et al. | Brain neurochemical monitoring | |
US8083926B2 (en) | Nanopore structured electrochemical biosensors | |
Scampicchio et al. | Nylon nanofibrous membrane for mediated glucose biosensing | |
Guo et al. | A novel amperometric hydrogen peroxide biosensor based on electrospun Hb–collagen composite | |
Gupta et al. | True picomolar neurotransmitter sensor based on open-ended carbon nanotubes | |
Shen et al. | Electrochemical nanoprobes for the chemical detection of neurotransmitters | |
Cao et al. | Amperometric sensing of dopamine using a single-walled carbon nanotube covalently attached to a conical glass micropore electrode | |
Kafi et al. | Effects of nanopatterned RGD peptide layer on electrochemical detection of neural cell chip | |
Baker et al. | Development of a microelectrochemical biosensor for the real-time detection of choline | |
US8641876B2 (en) | Nanopore array structured devices for biosensing and energy storage | |
Kaur et al. | When nano meets stem: the impact of nanotechnology in stem cell biology | |
Chen et al. | In vivo electrochemical biosensors for reactive oxygen species detection: a mini-review | |
Wu et al. | Modular assembly of enzyme loaded nanoparticles in 3D hollow fiber electrode for electrochemical sensing | |
Yan et al. | Enzyme-containing hydrogel micropatterns serving a dual purpose of cell sequestration and metabolite detection | |
CN101349667A (zh) | 一种生理活性物质的电化学检测装置及其专用电化学传感器和制备方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
TR01 | Transfer of patent right | ||
TR01 | Transfer of patent right |
Effective date of registration: 20191230 Address after: 225000 Hongyuan Road, industrial concentration zone, Shaobo Town, Jiangdu District, Yangzhou City, Jiangsu Province Patentee after: Yangzhou Zhi Chuang Enterprise Operation Management Service Co., Ltd. Address before: 225009 No. 88, South University Road, Jiangsu, Yangzhou Patentee before: yangzhou university |