CN103655476B - 一种CSN8shRNA纳米脂质体的制备方法及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种CSN8shRNA纳米脂质体(nano-liposome)的制备方法及其在治疗炎症性肠病的应用,通过向磷酸卵磷脂和胆固醇混合物中加入CSN8shRNA质粒缓冲液后进行超声水浴、过滤、分离、富集等工艺即可制得,制备方法步骤简单;制得的CSN8shRNA纳米脂质体能进入肠道黏膜,有效抑制肠道细胞CSN8的表达,缓解肠炎症状,治疗效果显著。
Description
技术领域
本发明属于医药领域,具体涉及一种CSN8shRNA纳米脂质体(nano-liposome)的制备方法及其用于疾病治疗方面的应用。
背景技术
脂质体最早约在40年前发展起来,是一种人工膜。当两性分子如磷脂和鞘脂分散于水相时,分子的疏水尾部倾向于聚集在一起,避开水相,而亲水头部暴露在水相,形成直径25~1000nm不等的具有双分子层结构的的封闭囊泡,即脂质体。
细胞主要通过内吞的方式摄取周围的大分子物质。一些药物和大分子物质通常不能穿过细胞的脂质双分子层。脂质体的疏水双分子层有利于包裹水溶性物质如用于治疗的蛋白等,并将大分子物质封装于其亲水的内核中,既可以通过网格包被蛋白小窝上的受体介导的细胞内吞作用,也可以通过细胞膜的直接融合作用将目的物质运输入胞内。因此脂质体广泛应用于生化、医药、食品和化妆品等行业。目前,脂质体作为给药载体的途径通常有静脉注射、肌内和皮下注射和口服给药等。
当物质颗粒小于100nm时,物质本身的固有特性发生质的变化,呈现出奇特的物理化学性能,即纳米效应,包括表面效应、小尺寸效应、量子尺寸效应和宏观粒子效应等。纳米粒子载体的表面效应可提高装载率、溶出速率和吸收速率,且可延长被载物质在血液中的滞留时间以提高其生物利用度。多数纳米粒可直接穿过粘膜上皮细胞孔隙和血脑屏障。
基于上述纳米脂质体的特性以及脂质体作为载体系统的经验,理想的运用于转运基因的脂质体,大小应达到纳米尺度,粒径平均为100nm或者更小,可直接穿过粘膜上皮细胞孔隙,对于质粒DNA具有高包封率,保护DNA不被血浆核酸酶降解,介导细胞特异性内吞。
CSN8是泛素化调节蛋白COP9复合物的第八个亚基,发挥细胞信号调节蛋白的功能,影响细胞增殖和凋亡。我们的研究表明CSN8在炎症性肠病发生发展过程中起重要作用,抑制CSN8蛋白的表达可显著缓解炎症性肠病症状。而反义寡核酸技术是基因治疗的常用方法,根据核酸杂交原理设计特定靶序列的反义核酸,在蛋白水平抑制特定基因表达。由于体内无处不在的核酸酶作用,进入胞内的核酸容易被降解。纳米脂质体与核酸结合后,可避免核酸被过多降解,并提高其被细胞捕获的可能性,因此近年来脂质体作为基因的有效载体应用越来越受到重视。本发明中制备了包裹CSN8shRNA质粒的纳米脂质体,并用小鼠DSS炎症性肠病模型评价该脂质体对炎症性肠病的疗效,发现包裹CSN8shRNA质粒的纳米脂质体能进入肠道黏膜,有效抑制肠道细胞CSN8的表达,缓解肠炎症状,可能作为一种新的治疗炎症性肠病的药物。
发明内容
本发明的目的是提供一种CSN8shRNA纳米脂质体的制备方法及其该纳米脂质体在治疗炎症性肠病的应用。
为实现上述发明目的,本发明采用了如下技术方案:
一种CSN8shRNA纳米脂质体的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤(1):将磷酸卵磷脂(phosphatidylcholine)和胆固醇(cholesterol)溶于10倍体积的氯仿中,旋转蒸发,直至形成具有均匀薄膜的第一混合物;
步骤(2):向所述第一混合物中加入1/2第一混合物体积的氯仿,形成第二混合物,再加入所述1/3第二混合物体积的CSN8shRNA质粒缓冲液室温搅拌4~8小时形成第三混合物;
步骤(3):将所述第三混合物在4~37℃条件下,30~50W功率水浴超声处理5~30分钟,减压蒸发除去有机溶剂,再补充与步骤(2)中所加氯仿同等体积的缓冲液,再进行4~37℃条件下,30~50W功率水浴超声处理5~30分钟即得脂质体混悬液;
步骤(4):将步骤(3)制得的脂质体混悬液通过0.1μm的微孔滤膜,20000~36000g超速离心20~60min,上层即为所需的CSN8shRNA纳米脂质体,所述CSN8shRNA纳米脂质体的直径小于等于100nm。
优选的,所述缓冲液为PBS、HEPES或生理盐水。
优选的,所述步骤(4)中将步骤(3)制得的脂质体混悬液通过0.1μm的微孔滤膜后,再通过0.02μm的超滤膜进行过滤,取被截留液体,即可富集到所需的CSN8shRNA纳米脂质体。
优选的,所述CSN8shRNA质粒是根据RNAi技术设计合成的针对CSN8的编码基因的siRNA(Small interfering RNA)编码序列与表达载体连接而成的。
所述CSN8shRNA质粒制备的步骤如下:
首先,设计针对人CSN8编码基因的siRNA(Small interfering RNA)目标序列,优选的目标序列为“GCACTTAGAGATGCAACAA”,同时设计针对小鼠CSN8编码基因的siRNA(Small interfering RNA)目标序列,优选的目标序列为“GCCCTTAGAGATGCAACAA”;按照pSilencerTM hygro Kit(Ambion PartNumber AM5760,AM5766)操作说明,合成针对上述目标序列的siRNA茎环模板序列(Hairpin siRNA Template Insert),并分别连接合成序列至表达载体pSilencer3.1-H1hygro。
优选的,所述CSN8shRNA质粒缓冲液中CSN8shRNA质粒的浓度为1μg/ml~1000μg/ml。
优选的,步骤(1)中磷酸卵磷脂和胆固醇的体积比为(1:1)~(10:1)。
利用如上所述制备方法制得的CSN8shRNA纳米脂质体的应用,其特征在于,该CSN8shRNA纳米脂质体可用于炎症性肠病治疗。
所述炎症性肠病为溃疡性结肠炎或克罗恩病。
发明优点:
本发明所述制备方法的制备工艺简单,制得的CSN8shRNA纳米脂质体稳定易进入肠道黏膜,有效抑制肠道细胞CSN8的表达,缓解肠炎症状,而且治疗方法易操作,可通过口服,治疗效果明显。
附图说明
图1为人CSN8shRNA纳米脂质体干扰人直肠癌细胞株SW480中CSN8蛋白表达Western Blotting检测结果;
图2为DSS诱导的C57BL/6小鼠肠炎模型DAI评分结果;
图3为小鼠CSN8shRNA纳米脂质体灌胃DSS诱导的C57BL/6小鼠后小鼠CSN8蛋白表达量Western Blotting检测结果;
图4为灌胃小鼠CSN8shRNA纳米脂质体的炎症性肠病C57BL/6小鼠DAI评分结果;
图5为小鼠CSN8shRNA纳米脂质体灌胃DSS诱导的C57BL/6小鼠小肠上皮TNF-α、IL-6和IL-1蛋白表达量ELISA检测结果;
图6为灌胃对照纳米脂质体的DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠的小肠病理切片结果;
图7为灌胃小鼠CSN8shRNA纳米脂质体的DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠的小肠病理切片结果。
具体实施方式
以下实施例对本发明的技术方案作进一步的说明。
实施例1:
一、制备方法
实验组:CSN8shRNA纳米脂质体的制备
步骤(1):将磷酸卵磷脂(phosphatidylcholine)和胆固醇(cholesterol)溶于10倍体积的氯仿中,旋转蒸发,直至形成具有均匀薄膜的第一混合物;磷酸卵磷脂和胆固醇的体积比例可为2:1。
步骤(2):向所述第一混合物中加入1/2第一混合物体积的氯仿,形成第二混合物,再加入所述1/3第二混合物体积的CSN8shRNA质粒的缓冲液室温搅拌4~8小时形成第三混合物;所述CSN8shRNA质粒缓冲液中CSN8shRNA质粒的浓度为500μg/ml。
CSN8shRNA质粒制备步骤如下:设计针对人CSN8编码基因的siRNA(Smallinterfering RNA)目标序列,优选的目标序列为“GCACTTAGAGATGCAACAA”,同时设计针对小鼠CSN8编码基因的siRNA(Small interfering RNA)目标序列,优选的目标序列为“GCCCTTAGAGATGCAACAA”;按照pSilencerTM hygroKit(Ambion Part Number AM5760,AM5766)操作说明,合成针对上述目标序列的siRNA茎环模板序列(Hairpin siRNA Template Insert),并分别连接合成序列至表达载体pSilencer3.1-H1hygro。
步骤(3):将所述第三混合物在4~37℃条件下,30~50W功率水浴超声处理5~30分钟,减压蒸发除去有机溶剂,再补充与步骤(2)中所加氯仿同等体积的缓冲液,再进行4~37℃条件下,30~50W功率水浴超声处理5~30分钟即得脂质体混悬液;
步骤(4):将步骤(3)制得的脂质体混悬液通过0.1μm的微孔滤膜,20000~36000g超离20~60min,上层即为所需的CSN8shRNA纳米脂质体,所述CSN8shRNA纳米脂质体的直径小于等于100nm。
对照组:对照组质粒采用pSilencerTM hygro Kit(Ambion Part Number AM5760,AM5766)试剂盒中自带的阴性对照质粒pSilencer3.1-H1hygro Negative Control。除加入的质粒不同外,含有对照质粒的纳米脂质体制备步骤同CSN8shRNA纳米脂质体制备方法步骤1~4。
二、应用及疗效评估:
一)人CSN8shRNA纳米脂质体对人结肠癌细胞株SW480中CSN8蛋白表达干扰评估
用上述制得的人CSN8shRNA纳米脂质体处理人结肠癌细胞株SW480,检测SW480细胞中CSN8蛋白表达量,同时比对对照组的实验结果。
在37℃,5%CO2条件下,用10%FBS的RPMI1640培养基培养SW480细胞,取对数生长期的SW480细胞以3×105个/孔接种于6孔板,待细胞丰度达到85%时,实验组用2ml含人CSN8shRNA纳米脂质体的RPMI1640培养基处理SW480细胞,对照组用2ml含对照质粒的RPMI1640培养基处理SW480细胞。对照组和实验组均做3个复孔。6小时后,换成10%FBS的RPMI1640培养基培养上述被纳米脂质体处理的SW480细胞。
36小时后,用Western Blotting法分别检测SW480细胞CSN8蛋白表达量。如图1所示:结果显示,与对照组(Nano-liposome+vector)相比,实验组(Nano-liposome+CSN8shRNA)CSN8蛋白表达量明显被下调。β-actin表达量为内参。
为了评估CSN8shRNA纳米脂质体对炎症性肠病的疗效,我们建立了DSS诱导的小鼠炎症性肠病模型,采用上述制得的小鼠CSN8shRNA纳米脂质体以灌胃方式给药,治疗炎症性肠病模型小鼠,治疗过程和结果如下:
二)、DSS诱导小鼠炎症性肠病模型的建立
1)实验材料
动物:C57BL/6小鼠,♀,体重20-25g,SPF级,40只。
动物分组:A,正常对照组n=10;B,3.5%DSS实验组n=30,n指小鼠的数量。
2)DSS诱导炎症性肠病模型的方法
给予实验组雌性C57BL/6小鼠含有3.5%DSS的饮用水,同时给予对照组等量蒸馏水作为饮用水,7天后改成正常饮用水。每天观察小鼠大便情况,并称量小鼠体重。
3)炎症性肠病模型建立结果
(1)疾病活动度指数(The Disease Activity Index,DAI)评分
根据体重减失率分数和大便隐血程度判断疾病活动指数。参考文献(Okayasu I,Hatakeyyama S,Yamada M,Ohkusa T,Inagaki Y,Nakaya R.A novelmethod in the induction of reliable experimental acute chronic ulcerative colitis inmice.Gastroenterology1900;98:694-702)对小鼠进行DAI评分。
体重减失率计算方法:注射实验前称量小鼠体重,注射后每天称量小鼠体重按照公式100%×(实验前体重-称量后体重)÷实验前体重。
大便隐血程度由尿粪隐血试剂盒测定。
各组小鼠DAI评分曲线见图2,饮用含3.5%DSS的小鼠与对照组(饮用蒸馏水)相比,DAI评分在实验进行的7天之内明显升高。
(2)小肠病理切片观察
在正常对照组和实验组分别选择3只小鼠处死,分离小肠,参考文献(Ekstrom CM.Oxazolone-induced colitis in rats:effects of budesonide,cyclosporinA,and5-aminosal cylic acid.Scand J Gastroenterol1998;33:174-179),对小鼠小肠进行病理组织学评分。
组别 | n | 病理评分 |
A正常对照组 | 3 | 0.50±0.89 |
B实验组 | 3 | 12.10±1.05 |
表1小鼠炎症性肠病模型病理评分结果
根据疾病活动度指数(The Disease Activity Index,DAI)评分(表1),该小鼠炎症性肠病模型已经成功建立,可用于后续实验。
三)、小鼠CSN8shRNA纳米脂质体及对照纳米脂质体混悬液灌胃DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠
选择上述DSS诱导的炎症性肠病小鼠20只,随机分成2组,即实验组(n=10)和对照组(n=10),空腹12小时,用5ml生理盐水冲洗肠道后,用小鼠CSN8shRNA纳米脂质体灌胃,每天灌胃一次,连续灌胃7天。
实验组:灌胃包封小鼠CSN8shRNA质粒的纳米脂质体(<100nm),灌胃量5ml/kg,n=10。
对照组:灌胃包封对照质粒的纳米脂质体(<100nm),灌胃量5ml/kg,n=10。
四)、小鼠CSN8shRNA纳米脂质体干扰DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠肠上皮细胞CSN8蛋白表达量测定
纳米脂质体混悬液连续灌胃DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠7天后,分别取实验组和对照组小鼠各5只,处死,分离小肠上皮,称重,取相同质量的上皮组织,Western Blotting检测CSN8蛋白表达量(图3)。
小鼠CSN8shRNA纳米脂质体灌胃DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠后,Western Blotting分别检测小鼠肠上皮组织CSN8蛋白表达量。如图3所示:结果显示,与对照组(Nano-liposome+vector)相比,实验组(Nano-liposome+CSN8shRNA)CSN8蛋白表达量明显被下调。β-actin表达量为内参。
五)、小鼠CSN8shRNA纳米脂质体灌胃的炎症性肠病C57BL/6小鼠DAI评分及病理评分
每日记录上述脂质体灌胃的两组小鼠的体重和大便隐血情况,做DAI评分。连续7日的DAI评分曲线如图4。与对照组相比,实验组,即灌胃了小鼠CSN8shRNA纳米脂质体的小鼠在连续灌胃的7天内DAI评分明显降低。对照组DAI评分也有所降低,推测这是因为停止饮用含DSS的水后,小鼠自身肠炎症状有所缓减。
将上述连续7天灌胃了脂质体的实验组和对照组的C57BL/6小鼠,全部处死,分离小肠,按照病理组织学评分标准评分。实验组和对照组的病理计分结果见表2。实验组,即灌胃了CSN8shRNA纳米脂质体的小鼠与对照组相比病理评分明显降低。由此可见,CSN8shRNA纳米脂质体能有效缓解肠炎症状。
组别 | n | 病理评分 |
实验组 | 10 | 2.50±0.79 |
对照组 | 10 | 13.10±1.05 |
表2灌胃脂质体的小鼠病理评分结果
六)、小鼠CSN8shRNA纳米脂质体对炎症性肠病相关因子IL-1、IL-6和TNF-α等表达影响测定
纳米脂质体混悬液灌胃DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠后7天分别取实验组和对照组小鼠各5只,处死,分离小肠上皮,称重,取相同质量的上皮组织,用含0.1%Triton X-100及蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂的Hanks缓冲液分别处理上述组织样品,ELISA检测样品中TNF-α、IL-6和IL-1蛋白表达量,如图5所示。
结果显示,实验组(Nano-liposome+CSN8shRNA)的TNF-α、IL-6和IL-1蛋白表达量均低于对照组(Nano-liposome+vector),并呈显著性差异。
实验组(Nano-liposome+CSN8shRNA)的TNF-α、IL-6和IL-1蛋白表达量均低于对照组(Nano-liposome+vector),并呈显著性差异。
七)、纳米脂质体灌胃DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠后病理切片观察
纳米脂质体混悬液灌胃DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠7天后分别取实验组和对照组全部存活小鼠处死,分离小肠,冰冻切片,苏木精-伊红(HE)染色,显微镜观察肠道组织结构。
对照组小鼠小肠病理切片如图6所示,结果显示隐窝结构被破坏,基膜变薄,整个绒毛膜上皮层变薄。
实验组小鼠小肠病理切片如图7所示,结果显示隐窝结构恢复正常,基膜变厚,整个绒毛膜上皮层变厚。小鼠CSN8shRNA纳米脂质体灌胃对DSS诱导的炎症性肠病C57BL/6小鼠肠炎症状有减轻作用。
需要指出的是,以上所述者仅为用以解释本发明之较佳实施例,并非企图据以对本发明作任何形式上之限制,是以,凡有在相同之发明精神下所作有关本发明之任何修饰或变更,皆仍应包括在本发明意图保护之范畴。
Claims (6)
1.一种CSN8shRNA纳米脂质体的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤(1):将磷酸卵磷脂和胆固醇溶于10倍体积的氯仿中,旋转蒸发,直至形成具有均匀薄膜的第一混合物;
步骤(2):向所述第一混合物中加入1/2第一混合物体积的氯仿,形成第二混合物,再加入所述1/3第二混合物体积的CSN8shRNA质粒缓冲液室温搅拌4~8小时形成第三混合物;
步骤(3):将所述第三混合物在4~37℃条件下,30~50W功率水浴超声处理5~30分钟,减压蒸发除去有机溶剂,再补充与步骤(2)中所加氯仿同等体积的缓冲液,再进行4~37℃条件下,30~50W功率水浴超声处理5~30分钟即得脂质体混悬液;
步骤(4):将步骤(3)制得的脂质体混悬液通过0.1μm的微孔滤膜,20000~36000g超速离心20~60min,上层即为所需的CSN8shRNA纳米脂质体,所述CSN8shRNA纳米脂质体的直径小于等于100nm。
2.根据权利要求1所述的CSN8shRNA纳米脂质体的制备方法,其特征在于,所述缓冲液为PBS、HEPES或生理盐水。
3.根据权利要求1所述的CSN8shRNA纳米脂质体的制备方法,其特征在于,所述步骤(4)中将步骤(3)制得的脂质体混悬液通过0.1μm的微孔滤膜后,再通过0.02μm的超滤膜进行过滤,取被截留液体,即可富集到所需的CSN8shRNA纳米脂质体。
4.根据权利要求1所述的CSN8shRNA纳米脂质体的制备方法,其特征在于,所述CSN8shRNA质粒是根据RNAi技术设计合成的针对CSN8的编码基因的siRNA(Small interfering RNA)编码序列与表达载体连接而成的。
5.根据权利要求1所述的CSN8shRNA纳米脂质体的制备方法,其特征在于,所述CSN8shRNA质粒缓冲液中CSN8shRNA质粒的浓度为1μg/ml~1000μg/ml。
6.根据权利要求1所述的CSN8shRNA纳米脂质体的制备方法,其特征在于,步骤(1)中磷酸卵磷脂和胆固醇的体积比为(1:1)~(10:1)。
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Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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CN101536982A (zh) * | 2009-04-27 | 2009-09-23 | 中国人民解放军第二军医大学 | Trastuzumab修饰的包裹毒素蛋白的PEG化免疫脂质体及其制备与应用 |
Non-Patent Citations (1)
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GR01 | Patent grant | ||
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