CN103497942A - 一种嗜热毁丝霉的发酵物及其制备方法和应用 - Google Patents
一种嗜热毁丝霉的发酵物及其制备方法和应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103497942A CN103497942A CN201310445941.1A CN201310445941A CN103497942A CN 103497942 A CN103497942 A CN 103497942A CN 201310445941 A CN201310445941 A CN 201310445941A CN 103497942 A CN103497942 A CN 103497942A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- concentration
- fermention medium
- fermented product
- application
- tween
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2434—Glucanases acting on beta-1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2437—Cellulases (3.2.1.4; 3.2.1.74; 3.2.1.91; 3.2.1.150)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2434—Glucanases acting on beta-1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2445—Beta-glucosidase (3.2.1.21)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01004—Cellulase (3.2.1.4), i.e. endo-1,4-beta-glucanase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01021—Beta-glucosidase (3.2.1.21)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01091—Cellulose 1,4-beta-cellobiosidase (3.2.1.91)
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
本发明公开了一种嗜热毁丝霉的发酵物及其制备方法和应用。本发明提供了一种制备发酵物的方法,包括如下步骤:将嗜热毁丝霉ACCC No.30572接种至发酵培养基,40-55℃、100-300r/min振荡培养5-9天;发酵培养基按照如下方法制备:将碳源、氮源、硫酸铵、磷酸二氢钾、碳酸钙、硫酸镁、甘油、吐温-80和水混合,得到发酵培养基;碳源的浓度为25-60g/L,氮源的浓度为10-40g/L,硫酸铵的浓度为1-10g/L,磷酸二氢钾的浓度为1-10g/L,碳酸钙的浓度为1-4g/L,硫酸镁的浓度为0.5-4g/L,甘油的浓度为1-4g/L,吐温-80的浓度为0.5-3g/L。本发明的提供的发酵物具有纤维素酶的活性,具有良好的温度稳定性和pH稳定性,在高温条件下具有较高的酶活,在较宽的pH范围内具有较高的酶活。
Description
技术领域
本发明涉及一种嗜热毁丝霉的发酵物及其制备方法和应用。
背景技术
纤维素酶(cellulase)是一种能够将纤维素降解为葡萄糖的复合酶系,包括:(1)内切葡聚糖酶(endo-β-1,4-D-glucanase,EG,EC3.2.1.4),也称CMC酶;(2)外切葡聚糖酶(exo-β-1,4-glucanase,EC3.2.1.91)或纤维二糖水解酶(cello-biohydrolases,CBH);(3)葡萄糖苷酶(β-1,4-D-glucosidase,BG,EC3.2.1.21),也叫水杨甙酶。以上三种酶中,每一类都有多个同工酶。内切酶将长链纤维素从内部切断,外切酶自纤维素链的还原端或非还原端切下二糖或寡糖,葡萄糖苷酶将纤维二糖或寡糖水解为葡萄糖。随着纤维素酶在工业上的广泛应用(如食品、饲料、酿造、造纸,特别是在纺织工业和生物能源上的应用),纤维素酶已经成为最近十几年酶工程研究的一个热点。
到目前为止,已发现了多种能够产生纤维素酶的微生物,涵盖了厌氧与好氧、原核与真核微生物。在产生纤维素酶的微生物中,不同菌株所产纤维素酶具有不同的作用方式与底物特异性。根据其酶学性质与应用环境,纤维素酶又被分为酸性纤维素酶、中性纤维素酶与碱性纤维素酶。酸性纤维素酶主要用于生物能源、纺织水洗等。中性纤维素酶主要用于纺织水洗工业。碱性纤维素酶则可用于洗涤剂中。
工业生产上常用的产纤维素酶微生物是常温、中温丝状真菌,它们能够产生完整的纤维素酶系,可以将结晶纤维素完全降解为葡萄糖,如木霉(Trichoderma sp.)、青霉(Penicillium sp.)、腐质霉(Humicola sp.)等。上述菌株产生的纤维素酶大多需要在50℃以下发挥较好的效能,而在较高的温度下容易失活。高温纤维素酶在生物能源领域具有较好的应用前景。
发明内容
本发明的目的是提供一种嗜热毁丝霉的发酵物及其制备方法和应用。
本发明提供了一种制备发酵物的方法,包括如下步骤:将嗜热毁丝霉(Myceliophthora thermophila)ACCC No.30572接种至发酵培养基,40-55℃、100-300r/min振荡培养5-9天;
所述发酵培养基按照如下方法制备:将碳源、氮源、硫酸铵、磷酸二氢钾、碳酸钙、硫酸镁、甘油、吐温-80和水混合,得到发酵培养基;所述碳源在所述发酵培养基中的浓度为25-60g/L(如25g-33g、33g-40g、40g-50g、50g、60g、25g、33g、40g、50g或60g),所述氮源在所述发酵培养基中的浓度为10-40g/L,所述硫酸铵在所述发酵培养基中的浓度为1-10g/L,所述磷酸二氢钾在所述发酵培养基中的浓度为1-10g/L,所述碳酸钙在所述发酵培养基中的浓度为1-4g/L,所述硫酸镁在所述发酵培养基中的浓度为0.5-4g/L,所述甘油在所述发酵培养基中的浓度为1-4g/L,所述吐温-80在所述发酵培养基中的浓度为0.5-3g/L。
所述发酵培养基的pH可为4-6,具体可为5。
所述碳源可为微晶纤维素、玉米芯或稻草粉。
所述氮源可为玉米浆、玉米浆干粉、大豆胨、蛋白胨、酵母粉或胰蛋白胨。
所述碳源在所述发酵培养基中的浓度具体可为50g/L,所述氮源在所述发酵培养基中的浓度具体可为27g/L,所述硫酸铵在所述发酵培养基中的浓度具体可为5g/L,所述磷酸二氢钾在所述发酵培养基中的浓度具体可为6g/L,所述碳酸钙在所述发酵培养基中的浓度具体可为2.5g/L,所述硫酸镁在所述发酵培养基中的浓度具体可为1g/L,所述甘油在所述发酵培养基中的浓度具体可为2.5g/L,所述吐温-80在所述发酵培养基中的浓度具体可为2g/L。
所述振荡培养具体可三角瓶中进行,所述发酵培养基在单个三角瓶中的装液量可为40-70ml(如40ml、50ml、60ml或70ml)。
所述振荡培养的条件具体可为:45℃、180r/min振荡培养5天。
所述方法还可包括如下步骤:完成所述振荡培养后,5000g离心20min,收集上清液。
所述接种的实现方法具体如下:将嗜热毁丝霉接种到PDA斜面上,45℃培养5d后挖块(具体大小可为0.5×1厘米)并进行所述接种。
以上任一所述方法制备得到的发酵物也属于本发明的保护范围。
本发明还保护所述发酵物在制备纤维素酶中的应用。
本发明还保护所述发酵物作为纤维素酶的应用。应用所述发酵物时,反应的温度可为40-60℃,优选为60℃。应用所述发酵物时,反应的pH为3-6,优选为5。
本发明的提供了一种发酵物,该发酵物具有纤维素酶的活性,具有良好的温度稳定性和pH稳定性,在高温条件下具有较高的酶活,在较宽的pH范围内具有较高的酶活。
附图说明
图1为实施例2的步骤一的结果。
图2为实施例2的步骤二的结果。
图3为实施例2的步骤三的结果。
图4为实施例2的步骤四的结果。
图5为实施例3的步骤一的结果。
图6为实施例3的步骤二的结果。
图7为实施例3的步骤三的结果。
图8为实施例3的步骤四的结果。
具体实施方式
以下的实施例便于更好地理解本发明,但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量试验,均设置三次重复实验,结果取平均值。
实施例中所用的嗜热毁丝霉(Myceliophthora thermophila)获自中国农业微生物菌种保藏管理中心(英文全称为“Agricultural Culture Collection of China”,英文缩写为“ACCC”,网址为“http://www.accc.org.cn/”),ATCC编号为30572,所以又称嗜热毁丝霉(Myceliophthora thermophila)ACCC No.30572。
微晶纤维素:河北省鹿泉市焊条粉剂厂。玉米芯:阳谷金友农副产品深加工厂。稻草粉:毫州市保华药业有限公司。玉米浆:河北康欣制药有限公司。玉米浆干粉:山东郓城康源生物科技有限公司。大豆胨:北京双旋微生物培养基制品厂。蛋白胨:北京双旋微生物培养基制品厂。酵母粉:北京双旋微生物培养基制品厂。胰蛋白胨:北京双旋微生物培养基制品厂。新华1号滤纸:杭州沃华滤纸有限公司。
酶活力单位的定义:每小时水解滤纸产生1mg还原糖的酶量为一个酶活力单位(1U)。
实施例1、嗜热毁丝霉在生产纤维素酶中的应用
一、种子培养
将嗜热毁丝霉接种到PDA斜面上,45℃培养5d。
二、发酵
采用250ml三角瓶,每个三角瓶中装有50ml发酵培养基。
将种子斜面挖块(大小约为0.5×1厘米)接入发酵培养基,45℃、180r/min振荡(半径13mm)培养5天,然后5000g离心20min,收集上清液。
发酵培养基(pH=5):取微晶纤维素50g、玉米浆27g、硫酸铵5g、磷酸二氢钾6g、碳酸钙2.5g、硫酸镁1g、甘油2.5g和吐温-802g,溶于水并用水定容至1L。
三、酶活力的测定
酶活力的测定(反应温度为50℃,反应pH为4.8):以50mg滤纸(新华1号)为底物,加入1ml pH4.8、0.05M磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液,在50℃水浴中预热3min;然后加入步骤二得到的上清液的稀释液(用pH4.8、0.05M磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液进行稀释)0.5ml,50℃水浴60min;然后加入3ml DNS溶液以终止反应,混匀,沸水浴10min显色;冷却后,加入10ml水,摇匀,采用721分光光度计检测540nm处的吸光值,对照标准曲线方程(用葡萄糖作为标准品制作标曲线,标准曲线方程为y=(1.898x+0.139)×2×N,x为吸光值,N为稀释倍数,y为酶活力、单位为U/ml)得到上清液的酶活力。
步骤二得到的上清液作为纤维素酶的酶活力为9.7U/mL。
实施例2、嗜热毁丝霉的发酵条件的优化
一、不同碳源对产纤维素酶的影响
1、种子培养
将嗜热毁丝霉接种到PDA斜面上,45℃培养5d。
2、发酵
采用250ml三角瓶,每个三角瓶中装有50ml发酵培养基。
将种子斜面挖块(大小约为0.5×1厘米)接入发酵培养基,45℃、180r/min振荡(半径13mm)培养5天,然后5000g离心20min,收集上清液。
发酵培养基(pH=5):取碳源(微晶纤维素、玉米芯或稻草粉)50g、玉米浆27g、硫酸铵5g、磷酸二氢钾6g、碳酸钙2.5g、硫酸镁1g、甘油2.5g和吐温-802g,溶于水并用水定容至1L。
3、酶活力的测定
将步骤2得到的上清液按照实施例1的步骤三中的方法检测酶活力。
步骤2得到的上清液的结果见图1(纵坐标的单位为U/mL)。以微晶纤维素作为碳源时具有最高酶活。
二、不同氮源对产纤维素酶的影响
1、种子培养
将嗜热毁丝霉接种到PDA斜面上,45℃培养5d。
2、发酵
采用250ml三角瓶,每个三角瓶中装有50ml发酵培养基。
将种子斜面挖块(大小约为0.5×1厘米)接入发酵培养基,45℃、180r/min振荡(半径13mm)培养5天,然后5000g离心20min,收集上清液。
发酵培养基(pH=5):取微晶纤维素50g、氮源(玉米浆、玉米浆干粉、大豆胨、蛋白胨、酵母粉或胰蛋白胨)27g、硫酸铵5g、磷酸二氢钾6g、碳酸钙2.5g、硫酸镁1g、甘油2.5g和吐温-802g,溶于水并用水定容至1L。
3、酶活力的测定
将步骤2得到的上清液按照实施例1的步骤三中的方法检测酶活力。
步骤2得到的上清液的结果见图2(纵坐标的单位为U/mL)。以玉米浆干粉作为氮源时具有最高酶活。
三、微晶纤维素浓度对产酶的影响
1、种子培养
将嗜热毁丝霉接种到PDA斜面上,45℃培养5d。
2、发酵
采用250ml三角瓶,每个三角瓶中装有50ml发酵培养基。
将种子斜面挖块(大小约为0.5×1厘米)接入发酵培养基,45℃、180r/min振荡(半径13mm)培养5天,然后5000g离心20min,收集上清液。
发酵培养基(pH=5):取微晶纤维素(25g、33g、40g、50g或60g)、玉米浆27g、硫酸铵5g、磷酸二氢钾6g、碳酸钙2.5g、硫酸镁1g、甘油2.5g和吐温-802g,溶于水并用水定容至1L。
3、酶活力的测定
将步骤2得到的上清液按照实施例1的步骤三中的方法检测酶活力。
步骤2得到的上清液的结果见图3(纵坐标的单位为U/mL)。微晶纤维素浓度为50g/L时具有最高酶活。
四、通气量对产酶的影响
1、种子培养
将嗜热毁丝霉接种到PDA斜面上,45℃培养5d。
2、发酵
采用250ml三角瓶,每个三角瓶中装有40ml、50ml、60ml或70ml发酵培养基。
将种子斜面挖块(大小约为0.5×1厘米)接入发酵培养基,45℃、180r/min振荡(半径13mm)培养5天,然后5000g离心20min,收集上清液。
3、酶活力的测定
将步骤2得到的上清液用pH4.8、0.05M磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液稀释至1.5倍体积,得到稀释液,然后按照实施例1的步骤三中的方法检测酶活力。
稀释液的结果见图4(纵坐标的单位为U/mL)。发酵培养基的装液量为40ml时具有最高酶活。
实施例3、纤维素酶的酶学性质
一、最适反应温度
取实施例1的步骤二得到上清液,参照实施例1的步骤三的酶活力测定方法检测酶活力,差异仅在于分别采用如下反应温度:30℃、40℃、50℃、60℃和70℃。
上清液的结果见图5(纵坐标的单位为U/mL)。在60℃时具有最高酶活。
二、最适反应pH
取实施例1的步骤二得到上清液,参照实施例1的步骤三的酶活力测定方法检测酶活力,差异仅在于分别采用如下缓冲液替换“pH4.8、0.05M磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液缓冲液”:pH为3.0、4.0、5.0或6.0的0.05M磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液。
上清液的结果见图6(纵坐标的单位为U/ml)。在pH5.0时具有最高酶活。
三、热稳定性
将实施例1的步骤二得到上清液分别于40℃、50℃、60℃或70℃放置一定时间(1h或2h),然后按照实施例1的步骤三的酶活力测定方法检测,以未放置的上清液(0h)的酶活作为100%,计算在不同温度孵育不同时间后的上清液的相对酶活。
结果见图7(纵坐标的单位为%)。在50-60℃热稳定性较强。
四、pH稳定性
将实施例1的步骤二得到上清液分别用3.0、4.0、5.0、6.0、7.0或8.0的0.05M磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液稀释至2倍体积,室温放置10小时,得到各个稀释液。将用水稀释相同倍数的稀释液作为对照。
取各个稀释液,按照实施例1的步骤三的酶活力测定方法检测,以对照的酶活力作为100%,计算在不同pH条件下孵育后的相对酶活。
结果见图8(纵坐标的单位为%)。除采用pH4.0的缓冲液孵育后酶活力稍有下降,其余pH条件时的酶活力均有所上升,表明由嗜热毁丝霉产生的纤维素酶有极强的pH稳定性。
Claims (10)
1.一种制备发酵物的方法,包括如下步骤:将嗜热毁丝霉(Myceliophthorathermophila)ACCC No.30572接种至发酵培养基,40-55℃、100-300r/min振荡培养5-9天;
所述发酵培养基按照如下方法制备:将碳源、氮源、硫酸铵、磷酸二氢钾、碳酸钙、硫酸镁、甘油、吐温-80和水混合,得到发酵培养基;所述碳源在所述发酵培养基中的浓度为25-60g/L,所述氮源在所述发酵培养基中的浓度为10-40g/L,所述硫酸铵在所述发酵培养基中的浓度为1-10g/L,所述磷酸二氢钾在所述发酵培养基中的浓度为1-10g/L,所述碳酸钙在所述发酵培养基中的浓度为1-4g/L,所述硫酸镁在所述发酵培养基中的浓度为0.5-4g/L,所述甘油在所述发酵培养基中的浓度为1-4g/L,所述吐温-80在所述发酵培养基中的浓度为0.5-3g/L。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于:所述碳源在所述发酵培养基中的浓度为50g/L,所述氮源在所述发酵培养基中的浓度为27g/L,所述硫酸铵在所述发酵培养基中的浓度为5g/L,所述磷酸二氢钾在所述发酵培养基中的浓度为6g/L,所述碳酸钙在所述发酵培养基中的浓度为2.5g/L,所述硫酸镁在所述发酵培养基中的浓度为1g/L,所述甘油在所述发酵培养基中的浓度为2.5g/L,所述吐温-80在所述发酵培养基中的浓度为2g/L。
3.如权利要求1或2所述的方法,其特征在于:所述振荡培养是在三角瓶中进行的,所述发酵培养基在单个三角瓶中的装液量为40-70ml。
4.如权利要求1至3中任一所述的方法,其特征在于:所述振荡培养的条件为:45℃、180r/min振荡培养5天。
5.如权利要求1至4中任一所述的方法,其特征在于:所述方法还包括如下步骤:完成所述振荡培养后,5000g离心20min,收集上清液。
6.权利要求1至5中任一所述方法制备得到的发酵物。
7.权利要求6所述发酵物在制备纤维素酶中的应用。
8.权利要求6所述发酵物作为纤维素酶的应用。
9.如权利要求8所述的应用,其特征在于:应用所述发酵物时,反应的温度为40-60℃,优选为60℃。
10.如权利要求8所述的应用,其特征在于:应用所述发酵物时,反应的pH为3-6,优选为5。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310445941.1A CN103497942B (zh) | 2013-09-25 | 2013-09-25 | 一种嗜热毁丝霉的发酵物及其制备方法和应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310445941.1A CN103497942B (zh) | 2013-09-25 | 2013-09-25 | 一种嗜热毁丝霉的发酵物及其制备方法和应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103497942A true CN103497942A (zh) | 2014-01-08 |
CN103497942B CN103497942B (zh) | 2016-03-23 |
Family
ID=49863204
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310445941.1A Active CN103497942B (zh) | 2013-09-25 | 2013-09-25 | 一种嗜热毁丝霉的发酵物及其制备方法和应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103497942B (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105441413A (zh) * | 2015-05-05 | 2016-03-30 | 山东农业大学 | 一种新型耐热双功能糖苷水解酶MtCel2及其编码序列和应用 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP2042601A1 (en) * | 2000-08-04 | 2009-04-01 | Genencor International, Inc. | Novel variant EGIII-like cellulase compositions |
CN102994481A (zh) * | 2012-12-05 | 2013-03-27 | 天津工业生物技术研究所 | 一种高效降解木质纤维素的复合酶系的制备方法及其应用 |
-
2013
- 2013-09-25 CN CN201310445941.1A patent/CN103497942B/zh active Active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP2042601A1 (en) * | 2000-08-04 | 2009-04-01 | Genencor International, Inc. | Novel variant EGIII-like cellulase compositions |
CN102994481A (zh) * | 2012-12-05 | 2013-03-27 | 天津工业生物技术研究所 | 一种高效降解木质纤维素的复合酶系的制备方法及其应用 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
RAM KRISHNA SADHUKHAN ET AL.: "Thermostable amylolytic enzymes from a cellulolytic fungus Myceliophthora thermophila D14 (ATCC 48104)", 《APPL MICROBIOL BIOTECHNOL》 * |
SRIBIR SEN ET AL.: "UTILIZATION OF CELLULOSIC WASTES BY THERMOPHILIC FUNGI", 《ADV BIOTECHNOL》 * |
王宝林等: "一株嗜热毁丝霉菌株产纤维素酶条件优化", 《酿酒科技》 * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105441413A (zh) * | 2015-05-05 | 2016-03-30 | 山东农业大学 | 一种新型耐热双功能糖苷水解酶MtCel2及其编码序列和应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103497942B (zh) | 2016-03-23 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Gautam et al. | Optimization for the production of cellulase enzyme from municipal solid waste residue by two novel cellulolytic fungi | |
Hsu et al. | Pretreatment and hydrolysis of cellulosic agricultural wastes with a cellulase-producing Streptomyces for bioethanol production | |
Shukla et al. | Process development for the production of bioethanol from waste algal biomass of Gracilaria verrucosa | |
Intasit et al. | Synergistic production of highly active enzymatic cocktails from lignocellulosic palm wastes by sequential solid state-submerged fermentation and co-cultivation of different filamentous fungi | |
RU2361918C1 (ru) | Штамм мицелиального гриба penicillium verruculosum - продуцент комплекса целлюлаз, ксиланазы и ксилоглюканазы и способ получения ферментного препарата комплекса целлюлаз, ксиланазы и ксилоглюканазы для гидролиза целлюлозы и гемицеллюлозы | |
CN104694410A (zh) | 秸秆腐熟剂的制备方法 | |
CN104312928B (zh) | 一株产纤维素酶菌株及其应用 | |
CN102660519B (zh) | 一种利用发酵废液制备生物酶的方法 | |
CN103602592B (zh) | 一株纤维素降解真菌及其菌剂的制备和应用 | |
CN104692868A (zh) | 生物有机肥在改良土壤中的应用 | |
CN104692844A (zh) | 生物有机肥料的制备方法 | |
Mukherjee et al. | Production of extra cellular exoglucanase by Rhizopus oryzae from submerged fermentation of agro wastes | |
CN101671645B (zh) | 一种制备β-甘露聚糖酶的方法及其专用菌株 | |
Javed et al. | An innovative approach for hyperproduction of cellulolytic and hemicellulolytic enzymes by consortium of Aspergillus niger MSK-7 and Trichoderma viride MSK-10 | |
CN104630084A (zh) | 一株产耐高温α-淀粉酶的枯草芽孢杆菌 | |
CN103409382A (zh) | 一种增强黄孢原毛平革菌固态发酵中木质素降解的技术 | |
Santos Gomes et al. | Optimization of enzymatic saccharification of industrial wastes using a thermostable and halotolerant endoglucanase through Box-Behnken experimental design | |
CN104263658A (zh) | 一种里氏木霉菌株及其应用 | |
CN101955887B (zh) | 产生生淀粉酶的青霉菌及其制备的生淀粉酶制剂 | |
Liu et al. | Effect of different carbon sources on cellulase production by marine strain Microbulbifer hydrolyticus IRE-31-192 | |
CN102994481A (zh) | 一种高效降解木质纤维素的复合酶系的制备方法及其应用 | |
CN103555693A (zh) | 提高热纤梭菌纤维素酶活的培养方法 | |
CN103497942B (zh) | 一种嗜热毁丝霉的发酵物及其制备方法和应用 | |
CN103484381B (zh) | 一株嗜热烟曲霉及其在生产纤维素酶中的应用 | |
CN103614299B (zh) | 一种卷枝毛霉、制备降粘酶的方法及其应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
TR01 | Transfer of patent right | ||
TR01 | Transfer of patent right |
Effective date of registration: 20181122 Address after: 234000, 6 floor, building 2, science and technology center, Su Ma garden, Suzhou, Anhui. Patentee after: Anhui Xinxi alliance Biological Technology Co., Ltd. Address before: No. 3, No. 1, Beichen West Road, Beichen, Beijing Patentee before: Institute of Microbiology, Chinese Academy of Sciences |