CN103329703A - 提高蝴蝶兰观赏品质的栽培方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种提高蝴蝶兰观赏品质的栽培方法,其包括以下步骤:①选材;②CO2气体浓度控制,室内CO2浓度控制在700~1000μmol mol-1,气体经CO2控制仪通过塑料软管扩散至整个所述试验设施,该软管间隔均匀地设置有气体扩散孔,均匀分布于苗床蝴蝶兰叶片上方;③肥水管理:每周施加一次氮肥,控制氮肥浓度为25~35mM;④营养生长期环境控制;⑤花芽诱导期环境控制。本方法仅在现有技术基础上增加CO2浓度和N肥的供给,操作简单,但对蝴蝶兰的生长发育促进明显,可显著增加干鲜重、叶面积等生长指标,得到的蝴蝶兰产品品质高,具有低投入,高收益的优点。
Description
技术领域
本发明涉及一种促进蝴蝶兰生长发育,更具体地说是用于提高蝴蝶兰观赏品质的新方法,属于农作物栽培技术领域。
背景技术
CO2作为植物进行光合作用的重要原料,其浓度升高必将对植物的光合和生长产生影响。通过多年研究,人们已积累了大量植物响应高浓度CO2的知识经验。CO2加富可提高大多数C3植物的碳同化,其生物量可增加50%左右(Lawlorand Mitchell,1991;Wong and Osmond,1991);CAM植物的生物量平均增加35%(Drennan and Noble,2000);而C4植物对高浓度CO2的响应较差,生物量仅增加约12%(Poorter and Navas,2003)。高浓度CO2对花卉生长和发育的影响主要包括:1)高浓度CO2促进花卉生长,提高观赏品质,具体表现在株高、生物量、开花数量等的增加,株形紧凑(潘会堂等.,2003;Croonenborghs et al.,2009);2)对于彩叶植物,使其生长周期缩短,有利于叶色显现,提高了观赏品质(Mortensen,1987);3)在花期方面,因各种原因表现为提前、不变、延迟三种情况(Clint et al.,2007)。
虽然设施栽培增施CO2技术是实现温室植物高产优质的重要技术措施之一,但植物长期在高浓度CO2条件下会出现CO2适应现象,氮供应不足的植物比氮供应充足的植物更容易发生光合适应现象(Bowler和Press,1996)。同时,国内外多项研究也证明,无论是C3植物,还是C4植物,甚至固氮植物,均在高CO2浓度下出现不同程度的氮含量降低的现象。在高浓度CO2环境下如何科学施用氮肥,提高作物产量和品质,引起人们的极大关注。
蝴蝶兰(Phalaenopsis)又称蝶兰,为兰科蝴蝶兰属多年生常绿草本植物。原产于亚热带地区,主要分布在喜马拉雅山到澳洲北部,包括我国南部、台湾以及菲律宾、印尼、泰国、马来西亚、澳洲、新几内亚等地(尤崇魁,1988)。叶片大而肥厚、肉质,具蜡质光泽;花形如蝶,花色多样,花期长,是热带兰中的珍品,素有“兰中皇后”的美誉。常作盆栽或切花,具有极高的观赏价值。蝴蝶兰的开花时间和开花品质是影响其商品价值的重要因素,蝴蝶兰也与大部分植物一样,需要经过一段时间的营养生长,才能接受环境刺激而抽梗开花。蝴蝶兰是否已度过营养期与叶面积呈高度正相关,叶面积越大,抽梗率越高,开花品质也越佳(吕复兵,2006)。因此,针对蝴蝶兰这一特性,在蝴蝶兰栽培过程中施以CO2加富技术,同时结合增施氮肥,研制一种即适合工厂化规模生产,又经济有效的提高蝴蝶兰观赏品质的栽培新方法。
发明内容
本发明的目的在于为蝴蝶兰高效优质生产提供一种新的经济有效方法,该方法可以工厂化栽培,且生产工艺简单,能有效的降低成本。
为了实现上述目的,本发明采用以下技术方案:一种提高蝴蝶兰观赏品质的栽培方法,其特征在于包括以下步骤:
①选材:选择长势一致,具有4片或以上成龄叶的健康蝴蝶兰苗,种植在3.5寸透明营养钵内;
②CO2气体浓度控制:以玻璃温室或塑料温室为试验设施,每天19:00p.m.~5:00a.m.施以CO2,室内CO2浓度控制在700~1000μmol mol-1,气体经CO2控制仪通过塑料软管扩散至整个所述试验设施,该软管间隔均匀地设置有气体扩散孔,均匀分布于苗床蝴蝶兰叶片上方;
③肥水管理:每周施加一次氮肥,控制氮肥浓度为25~35mM;浇水以水苔干透浇透为原则,夏季宜早晨浇水,冬季宜中午前后浇水,须保证傍晚前叶片恢复干燥,以免发病;
④营养生长期环境控制:除上述CO2浓度和N肥的变化外,蝴蝶兰的其余生长环境要求不变,光照强度维持自然光照,温室顶层覆盖遮阳网;湿度70~80%;温度25-30℃;每月一次多菌灵杀菌,虫害以具体情况进行防治;
⑤花芽诱导期环境控制:肥水、光照强度和湿度如④中所述;白天温度为24-26℃,夜间温度为18-20℃;每月一次多菌灵杀菌,虫害以具体情况进行防治,花箭长至10cm时即可停止低温诱导,环境条件恢复④中所述。
进一步来说,步骤2用CO2控制仪进行室内CO2浓度的控制和监测,室内CO2浓度的控制在800±50μmol mol-1。
所述气体扩散小孔间隔50cm设置。
优选地,所述步骤3中的氮肥为施加浓度为15mM N的Hoagland营养液基础上增施15mM的NH4NO3。
优选地,所述步骤4中的遮阳网透光率为30%。
本方法仅在现有技术基础上增加CO2浓度和N肥的供给,操作简单,但对蝴蝶兰的生长发育促进明显,可显著增加干鲜重、叶面积等生长指标。同时,该方法对花发育也有显著的促进作用:花期提前,花朵直径增大,单株花朵数量增加,显著提高了蝴蝶兰的观赏品质。总之,上述栽培方法适合蝴蝶兰的工厂化栽培,且生产成本低、一致性好,得到的蝴蝶兰产品品质高,具有低投入,高收益的优点。
附图说明
图1A是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“荷黄”净CO2吸收速率的影响。
图1B是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“荷黄”气孔导度的影响。
图1C是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“荷黄”蒸腾速率的影响。
图1D是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“荷黄”和水分利用效率的影响。
图2A是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“996”净CO2吸收速率的影响。
图2B是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“996”气孔导度的影响。
图2C是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“996”蒸腾速率的影响。
图2D是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“996”水分利用效率的影响。
图3A是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“487”净CO2吸收速率的影响。
图3B是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“487”气孔导度的影响。
图3C是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“487”蒸腾速率的影响。
图3D是CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“487”水分利用效率的影响。
具体实施方式
为了清楚说明本方法的具体效果,以下实例均设计为以下四个处理:低氮大气CO2浓度(15mM N+CO2400μmol mol-1,LA对照组)、低氮CO2加富(15mM N+CO2800μmol mol-1,LE对照组)、高氮大气CO2浓度(30mM N+CO2400μmolmol-1,HA对照组)和高氮CO2加富(30mM N+CO2800μmol mol-1,HE实验组)。蝴蝶兰是否已度过幼年期(即营养生长期)与叶面积呈高度正相关,叶面积越大,抽梗率越高,开花品质也越佳。一般而言,蝴蝶兰幼苗出瓶生长15~17个月后,叶面积达300~500平方厘米时进入成熟期,可感应低温而抽梗开花。
蝴蝶兰的营养生长和生殖生长之间有相互抑制作用,如果一直在高温下栽培,则植株无法抽梗,必须经过一段时间的低温诱导才能进行花芽分化和开花,即花芽诱导期。蝴蝶兰在夜温低于20℃的环境下进入生殖生长,此时叶片中淀粉含量下降,蔗糖含量升高,为抽梗提供养分。
实施例1:
选取蝴蝶兰商业栽培种“荷黄”,该品种为复总状花序的黄色蜡质小花,将其随机分为4组,每组100株。2012年5月进行试验处理,各组具体培育方式按照上述步骤进行,经过4个月的处理,9月开始进行低温处理,以诱导开花。经试验各处理关于生长、发育所得结果如下:
1、净CO2吸收速率(Net CO2uptake)、气孔导度(Gs)、蒸腾速率(Tr)和水分利用效率(WUE)相关光合数据,为每个处理5株蝴蝶兰最上部完全展开叶片的平均值,重复三次,研究结果如图1所示。数据表明,使用本发明CO2加富和增施N肥处理后蝴蝶兰叶片的净CO2吸收速率比对照组(LA)增加约105%,气孔导度和蒸腾速率则分别下降约52%和39%,水分利用效率增加约208%。
2、蝴蝶兰生长相关数据取各处理3株植株的平均值,重复三次,研究结果见表1和表2。表1数据表明,使用本发明处理后植株的鲜、干重与比LA分别增加约45%和50%,根冠比降低约18%,叶面积增加约28%,比叶面积则降低约23%。
3、花部指标数据为每处理10株蝴蝶兰的平均值。表2数据表明,使用本发明处理后植株的花朵数目、大小、花梗/花序长度以及粗度分别比LA增加约26%、27%/29%、22%/42%、20%。另外,使用本发明后,试验组始花期为2012年12月29日,对照组的始花期分别为2013年1月9日(LA)、2013年1月7日(HA)和2013年1月2日(LE),CO2加富和增施N肥使蝴蝶兰开花时间比对照LA平均提前了9天。
表1CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“荷黄”生长的影响
表2CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“荷黄”开花的影响
实施例2:
选取蝴蝶兰商业栽培种“996”,该品种来自汕头农科所,996为该所的自编号。总状花序的紫红色大花,将其随机分为4组,每组100株。2012年5月进行试验处理,各组具体培育方式按照上述步骤进行,经过4个月的处理,9月开始进行低温处理,以诱导开花。经试验各处理关于生长、发育所得结果如下(各数据重复如实例1):
1、图2表明,使用本发明CO2加富和增施N肥处理后植株的净CO2吸收速率与对照(LA)相比增加约138%,气孔导度和蒸腾速率则分别下降约57%和18%,水分利用效率增加约286%。
2、表3数据表明,使用本发明处理后植株的鲜、干重与对照(LA)相比增加约55%和32%,根冠比降低约12%,叶面积增加约42%,比叶面积下降约1%。
3、由表4可知,使用本发明处理后植株的花朵数目、大小、花梗/花序长度以及粗度分别比对照(LA)增加约22%、22%/24%、25%/24%、27%。另外,使用本发明后,试验组始花期为2012年12月29日,对照组的始花期分别为2013年1月5日(LA)、2013年1月4日(HA)和2013年1月30日(LE),CO2加富和增施N肥使蝴蝶兰开花时间比对照LA平均提前了6天。
表3CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“996”生长的影响
表4CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“996”开花的影响
实施例3:
选取蝴蝶兰商业栽培种“487”,该品种来自汕头农科所,487为该所的自编号。该品种为总状花序的浅黄色大花,将其随机分为4组,每组100株。2012年5月进行试验处理,各组具体培育方式按照上述步骤进行,经过4个月的处理,9月开始进行低温处理,以诱导开花。经试验各处理关于生长、发育所得结果如下(各数据重复如实例1):
1、图3表明,使用本发明CO2加富和增施N肥处理后植株的净CO2吸收速率比对照(LA)增加约133%,气孔导度和蒸腾速率则分别下降约51%和39%,水分利用效率增加约300%。
2、由表5数据可知,使用本发明处理后植株的鲜、干与对照(LA)相比都增加约59%,根冠比降低约23%,叶面积增加约42%,比叶面积下降约22%。
3、表6表明,使用本发明处理后植株的花朵数目、大小、花梗/花序长度以及粗度分别比对照(LA)增加约27%、20%/28%、38%/29%、10%。使用本发明后,试验组始花期为2012年12月27日,对照组的始花期分别为2013年1月4日(LA)、2013年1月6日(HA)和2013年1月29日(LE),CO2加富和增施N肥使蝴蝶兰开花时间比对照LA平均提前了7天。
表5CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“487”生长的影响
表6CO2加富和增施N肥对蝴蝶兰“487”开花的影响
Claims (5)
1.一种提高蝴蝶兰观赏品质的栽培方法,其特征在于包括以下步骤:
①选材:选择长势一致,具有4片或以上成龄叶的健康蝴蝶兰苗,种植在3.5寸透明营养钵内;
②CO2气体浓度控制:以玻璃温室或塑料温室大棚为试验设施,每天19:00p.m.~5:00a.m.施以CO2,室内CO2浓度控制在700~1000μmol mol-1,气体经CO2控制仪通过塑料软管扩散至整个所述试验设施,该软管间隔均匀地设置有气体扩散孔,均匀分布于苗床蝴蝶兰叶片上方;
③肥水管理:每周施加一次氮肥,控制氮肥浓度为25~35mM;浇水以水苔干透浇透为原则,夏季宜早晨浇水,冬季宜中午前后浇水,须保证傍晚前叶片恢复干燥,以免发病;
④营养生长期环境控制:除上述CO2浓度和N肥的变化外,蝴蝶兰的其余生长环境要求不变,光照强度维持自然光照,温室顶层覆盖遮阳网;湿度70~80%;温度为25-30℃;每月一次多菌灵杀菌,虫害以具体情况进行防治;
⑤花芽诱导期环境控制:肥水、光照强度和湿度如④中所述;低温诱导期白天温度为24-26℃,夜间温度为18-20℃;每月一次多菌灵杀菌,虫害以具体情况进行防治,花箭长至10cm时即可停止低温诱导,环境条件恢复④中所述。
2.根据权利要求1所述的栽培方法,其特征在于:步骤2用CO2控制仪进行室内CO2浓度的控制和监测,室内CO2浓度控制在800±50μmol mol-1。
3.根据权利要求2所述的栽培方法,其特征在于:所述气体扩散小孔间隔50cm设置。
4.根据权利要求1所述的栽培方法,其特征在于:所述步骤3中的氮肥为施加浓度为15mM N的Hoagland营养液基础上增施15mM的NH4NO3。
5.根据权利要求1所述的栽培方法,其特征在于:所述步骤4中的遮阳网透光率为30%。
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