CN103243163A - miR-27a的新用途 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了miR-27a作为药物靶点在制备用于治疗卵巢癌药物中的应用以及miR-27a在制备卵巢癌诊断试剂盒中的应用。本发明根据miR-27a在卵巢癌癌组织中的表达高于卵巢良性组织这一特性,将miR-27a应用于制备卵巢癌诊断试剂盒;同时,通过反义核酸或者药物干扰miR-27a表达,可抑制卵巢癌细胞的生长和侵袭,可用miR-27a作为靶点设计或开发药物,在治疗卵巢癌治疗中,具有重要用途。
Description
技术领域
本发明涉及生物医药技术领域,具体涉及一种miR-27a的新用途。
背景技术
MicroRNAs(miRNAs)是近年来发现的一类内源性非编码小分子RNAs,长度约为19-25nt,可通过直接降解靶基因mRNA 或抑制其蛋白翻译而负性调控转录后表达。研究发现miRNAs可调控约30%的人类基因,从而参与调控一系列的细胞生物学过程包括细胞分化、增殖及凋亡等。近年来,越来越多的研究表明一些miRNA可作为一些肿瘤的诊断标志物或治疗靶点包括结肠癌、乳腺癌、肺癌、胃癌等。因此,为我们针对miRNA为靶点开发诊断试剂或治疗药物提供了新的思路。
卵巢癌是致死率最高的妇科恶性肿瘤。由于起病隐匿,许多病人就诊时已处于晚期。对于晚期病人,其5年生存率只有28%~45%。卵巢癌的标准治疗方法包括外科肿瘤细胞减灭术联合铂类药物化疗。术后70%病人会对化疗药物起作用,但是大部分仍旧会复发,最终死于此疾病。因此,寻找与卵巢癌诊断、治疗有关的新靶点成为科研工作或临床实践中亟待解决的难题。目前,一系列研究发现异常的miRNAs表达在卵巢癌诊断和治疗方面发挥重要作用。MicroRNA-27a (miR-27a)位于19号染色体上,研究发现其广泛高表达于一系列肿瘤中。在乳腺癌细胞中,已经发现转染反义miR-27a后,通过对靶基因Myt-1的抑制,使细胞周期进展阻滞在G2-M,细胞有丝分裂受阻,增殖能力受到抑制。也有报道显示GT-094(NO类非甾体抗炎药)或CDODA-Me可通过下调miR-27a,进而上调ZBTB10表达,最终抑制转录因子Sp及其相关基因产物表达,引起细胞生长能力下降及凋亡增加。在胃腺癌细胞中,通过使用miR-27a ASO(反义寡核苷酸)下调miR-27a表达后,细胞的生长及克隆形成能力被显著下调。
发明内容
发明目的:针对现有技术中存在的不足,本发明的目的是提供一种miR-27a的新用途,以期为制备用于治疗卵巢癌的药物提供有效途径。
技术方案:为了实现上述发明目的,本发明采用的技术方案为:
miR-27a作为药物靶点在制备用于治疗卵巢癌药物中的应用。
miR-27a在制备卵巢癌诊断试剂盒中的应用。
有益效果:与现有技术相比,本发明具有以下优点:本发明根据miR-27a在卵巢癌癌组织中的表达高于卵巢良性组织这一特性,将miR-27a应用于制备卵巢癌诊断试剂盒;同时,通过反义核酸或者药物干扰miR-27a表达,可抑制卵巢癌细胞的生长和侵袭,可用miR-27a作为靶点设计或开发药物,在治疗卵巢癌治疗中,具有重要用途。
附图说明
图1是miR-27a在卵巢癌组织中的相对表达量结果图;
图2是SRB和Transwell实验结果图;A图为SRB细胞增殖实验,说明反义核酸干扰miR-27a表达后可抑制卵巢癌细胞的增殖;B图为Transwell迁徙实验,说明反义核酸干扰miR-27a表达后可抑制卵巢癌细胞的迁移;C图也为细胞增殖实验,说明当诱导miR-27a高表达则可促进卵巢癌细胞的增殖;D图为迁徙实验,说明当诱导miR-27a高表达后,在一定程度上可部分促进卵巢癌细胞的迁移;
图3是SRB结果图;显示药物Genistein可浓度、时间依赖性的抑制卵巢癌细胞的生长;
图4是Real time PCR结果图;显示药物Genistein可剂量依赖的抑制miR-27a的表达;
图5是Real time PCR结果图;显示药物Genistein可诱导miR-27a靶基因Sprouty2的mRNA表达增高;
图6是Western blot结果图;其中,A为Western blot结果图;显示药物Genistein可诱导miR-27a靶基因Sprouty2蛋白表达增高;B为Western blot结果灰度分析后量化的柱状图;
图7是miR-27a拮抗药物Genistein通过miR-27a途径对细胞的抑制作用结果图;
图8是miR-27a拮抗药物Genistein诱导靶基因Sprouty2表达的作用结果图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明做进一步的说明。
实施例1 miR-27a在卵巢癌组织标本中表达水平的检测
1、RNA的提取
(1)收集石蜡包埋的卵巢癌及良性卵巢组织,选取代表性蜡块,5μm厚切片5~10张,收于1.5mL Ep管。
(2)脱蜡:各Ep管加入二甲苯1.2mL,混匀,55℃下脱蜡5min;10000rpm离心5 min,去上清,视石蜡多少重复上述步骤3~5次;无水乙醇,1.2mL洗涤2次,10000 rpm离心5~8 min;室温干燥。
(3)消化:加入组织裂解液(20mmol/L Tris-HCl,pH 8.0,20mmol/L EDTA,2% sodium dodecyl sulfate)200μL,蛋白酶K溶液5μL(20 mg/mL),置于55℃水浴锅内过夜;待组织完全溶解后,95℃加热10min,灭活蛋白酶K。
(4)加1mL Trizol,混匀,室温下放置10min;加入200μL氯仿,剧烈混匀15s;4℃,13000r/min,离心15 min;吸取水相,加入等体积异丙醇,-20℃放置1~2h;4℃,13000r/min,离心15min;弃上清,加75%乙醇1.5mL洗涤沉淀,4℃,13000r/min,离心10min;弃上清,室温干燥后,加DEPC水溶解RNA,测浓度后-80℃保存,得RNA样本。
2、利用“Stem Loop”方法检测miR-27a的表达
总体积7.5μL的反应体系为:1.5μL 5×M-MLV Buffer,2.45μL DEPC处理过的灭菌水,0.75μL 10mmol/L dNTP,0.1μL 40 U/μL Rnasin,0.2μL 200Uμ/l MMLV,1.5μL Stem Loop特异引物(购于Applied Biosystems公司),1μL RNA样本。
将以上体系吹打混匀,置于PCR仪器中16℃ 30min,42℃ 30min,85℃ 5min反应结束后,所得cDNA产物-20℃保存。
总体积10μL的miR-27a反应体系为:5μL TaqMan 2×Universal PCR Master Mix(购于Applied Biosystems公司),2.5μL DEPC处理过的灭菌水,0.5μL 20×TaqMan microRNA assays,2μL Stem Loop逆转录产物(购于Applied Biosystems公司)。
反应条件:将以上体系吹打混匀,置于ABI7300 PCR仪器,反应条件是50℃ 2min;95℃ 10min;95℃ 15s;60℃ 1min,共40个循环。
通过2-△Ct统计方法比较,计算miR-27a的相对表达量。结果如图1所示,miR-27a在卵巢癌组织中的表达高于良性组织(P = 0.039)。以上结果提示miR-27a高表达与卵巢癌的发生有关。
实施例2 转染Anti-miR-27a/miR-27a minic对卵巢癌细胞生长和迁移的影响
Anti-miR-27a及miR-27a mimic均为常规化学合成。
miR-27a mimic序列为:5'-UUCACAGUGGCUAAGUUCCGC-3',5'-GGAACUUAGCCACUGUGAAUU-3';
Anti-miR-27a序列为:5'-GCGGAACUUAGCCACUGUGAA-3';
转染前一天,取生长状态良好的细胞,胰酶消化,将其接种到不含抗生素的DMEM培养基中,使次日转染时细胞融合度达70%。转染之前用PBS轻轻地冲洗细胞。
a.稀释miRNA mimics/inhibitor:5μL+100μL无血清DMEM,轻轻混匀,室温孵育5 min;
b.稀释Lipofectamine2000:lipo2000 5μL +100μL无血清DMEM,轻轻混匀,并室温孵育5 min。
c.将a与b轻轻混匀,室温孵育20min。
d.混合液加入板内,并补充无血清DMEM,使miRNA mimics/inhibitor终浓度为100nm/L。4~6h后吸去培养液,换成含10%胎牛血清的DMEM培养基继续培养。到指定时间后,弃去96孔板中的培养基,加入10%的氯醋酸(TCA)100μL /孔,在4℃固定1h。用去离子水洗涤96孔板5次,晾干。再加入sulforhodamine B 50μL /孔,室温孵育10 min以使细胞着色。再用1%的冰醋酸洗涤5次以除去未结合的SRB,晾干。加入10mM Tris碱(pH10.5)100μL /孔,在平板振荡器上振荡5 min混匀,用酶标仪在500 nm波长处读取吸光度值。
细胞存活率用下式计算:
细胞存活率% =(用药组吸光度值-空白对照)/(对照组吸光度值-空白对照)×100%。
细胞迁移实验:卵巢癌SKOV3细胞用Anti-miR-27a/miR-27a minic处理48 h后,消化重悬于无血清DMEM培养基,接种于24孔板Transwell上室内(8 μm 孔径),每小室200μL(含3×104个细胞),同时下室加入含10% FBS的培养基600μL。继续培养16h后,取出小室,PBS洗三次,用棉签轻轻擦掉膜上层未穿过的细胞,小室上的聚碳酸酯膜用甲醇固定20min,再用三蒸水冲洗,晾干后0.1%结晶紫染色20min,于200倍显微镜下计数穿膜细胞。每膜计数上下左右中5个不同视野透过细胞数,计算平均值,每组平行3个滤膜。计算细胞相对迁移能力。细胞相对迁移率=处理组迁移细胞数/对照组迁移细胞数×100%。
通过SRB实验,发现相对于转染了inhibitor negative control组,miR-27a inhibitor使细胞生长能力明显降低(图2A,P < 0.01)。同时,利用Transwell实验,观察miR-27a对细胞运动能力的影响。结果说明转染了miR-27a inhibitor后,与对照组相比,细胞迁移数目降低至73%(图2B,P < 0.01)。而miR-27a minic处理细胞则可促进细胞的增殖。上述结果表明miR-27a在卵巢癌细胞中是癌基因,且可调控细胞生长及迁移。
实施例3 药物(Gen)通过miR-27a为靶点的抗卵巢癌活性
Genistein处理细胞:SKOV3细胞给予Gen 0,10,25,50,100,200μmol/L分别处理24,48,72h。用SRB法(方法同实施例2)检测药物对细胞生长的作用。药物对细胞生长的抑制率%= [1-(用药组吸光度值-空白对照)/(对照组吸光度值-空白对照)]×100%。
实时定量PCR检测miR-27a(方法同实施例1)及靶基因Sprouty2的表达。
Sprouty2反应条件是:95℃,2min;95℃,15s,60℃,40s,共40个循环;95℃,15s,60℃,1min;95℃,15s;60℃,15s。
Sprouty2引物:上游引物5'-ATCCAGAGACAAGACATGTAC -3';下游引物5'-TTCAGATGTGTTCTAAGCC-3'。
内参GAPDH引物:上游引物5'-TGTTCGACAGTCAGCCGC-3';下游引物5'-GGTGTCTGAGCGATGTGGC-3'。
Western blot检测Sprouty2蛋白的表达。细胞经不同浓度Genistein(0,25,50,100μM),处理48h,每瓶按细胞量加入裂解液200~300μL,抽提细胞总蛋白。考马斯亮蓝法测蛋白浓度后加入5×SDS上样缓冲液,于95℃煮沸5 min,使蛋白变性,储存于-20℃备用。SDS-PAGE电泳后转膜、封闭、抗体孵育并ECL发光及显影后观察并分析结果。
结果表明(图3-6),Gen可随时间、剂量抑制人卵巢癌细胞的生长。当用25,50,100μM Genistein处理细胞48h后,与对照组相比,miR-27a表达水平分别降至83.1±1.9,71.1±4.6,72±8.1%。靶基因Sprouty2 mRNA表达水平则被显著上调,分别升高至1.7,2.7,5.7倍。Western blot实验也发现用100μM Genistein处理细胞后,Sprouty2蛋白水平也被上调,与对照组相比,增至1.81倍。
实施例4 miR-27a拮抗药物Gen通过miR-27a途径对细胞的抑制作用
为进一步明确miR-27a可作为药物开发的靶点,给予药物Gen处理细胞后,再利用miR-27a minic来恢复由Gen诱导的miR-27a下调。具体方法为将人卵巢癌细胞SKOV3接种于无菌六孔板,24h后细胞贴壁生长,分别转染miR-27a mimics,mimics negative control 24h(转染方法同实施例2)。之后细胞制成悬液接种于96孔板中,贴壁后,转染了miR-27a mimics或mimics negative control组,再分别加入Genistein 100μmol/L处理48h。SRB结果(图7)说明,外源性诱导miR-27a表达上调后,可以部分拮抗Gen的抑制细胞生长的能力。此外,对Gen致miR-27a靶基因Sprouty2高表达的作用,miR-27a minic同样可以部分拮抗(方法同实施例2,图8),该结果结合实例,明确的说明了miR-27a是某些药物的作用靶点。
SEQUENCE LISTING
<110> 江苏省中医院
<120> miR-27a的新用途
<130> 100
<160> 7
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 15
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Claims (2)
1.miR-27a作为药物靶点在制备用于治疗卵巢癌药物中的应用。
2.miR-27a在制备卵巢癌诊断试剂盒中的应用。
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