CN103243102A - 一种肺表面活性物质相关蛋白a适配子及其筛选方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种肺表面活性物质相关蛋白A适配子,其基因序列为:SEQ ID No:1,或SEQ ID No:2,或SEQ ID No:3。本发明以SP-A蛋白为靶分子,利用指数富集配基系统进化法技术从随机ssDNA文库筛选SP-A特异结合的寡核苷酸适配子,并对所筛选出的适配子结构进行了初步分析,为进一步筛选以寡核苷酸适配子为基础的肺疾病治疗药物奠定基础。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,尤其是一种肺表面活性物质相关蛋白A适配子及其筛选方法。
背景技术
肺表面活性物质相关蛋白A(Surfactant Protein A,SP-A)是一种多功能糖蛋白,在调节肺表面活性物质(PS)代谢、基因表达、肺内免疫及炎症反应方面具有十分重要作用。SP-A主要在肺泡Ⅱ型上皮细胞中合成,在肺外表达量很少,在肺内则为高浓度表达,表现为肺特异性。其表达水平的高低与临床某些肺部疾病直接相关,是某些肺部疾病的特异性诊断和判断预后的指标。很多肺部疾病在早期依据临床表现、X线征象以及一些创伤性检查,难以做到早期诊断并评价肺泡一毛细血管屏障损伤程度。近年来很多实验表明,血清SP-A是反映肺功能障碍和血气屏障损伤敏感而可靠的指标。当疾病导致肺部损伤后,肺内SP-A可通过损伤的肺泡-毛细血管膜屏障进入血液循环而成为肺损伤的血清标志物。血清中SP-A的量和肺损伤程度密切相关,肺部损伤越重血清中SP-A浓度就越高,检测患者血循环中SP-A水平可以判断肺损伤程度,预测疾病转归情况。但是目前检测SP-A的方法都较为繁琐。
指数式富集的配体系统进化(Systematic evolution of ligands by exponential enrichment,SELEX)技术是一种新的组合化学技术,应用大容量的随机寡核苷酸,并结合PCR体外扩增技术,以指数级富集与靶分子特异结合的寡核苷酸,经几轮或数轮的筛选过程,获得高亲和力、高特异性的核酸配基。在实验诊断和临床治疗的分子识别领域,它提供了一个比抗体更快速、灵敏的技术手段。目前,该技术已成功应用于许多靶物质的筛选,包括蛋白、小分子、金属离子,甚至病毒、细菌、细胞等一些复杂靶标,部分核酸适配子已进入临床试验阶段。
通过检索,尚未发现与本发明专利申请相关的专利公开文献。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,提供一种与SP-A结合率高、特异性强的肺表面活性物质相关蛋白A适配子及其筛选方法。
本发明实现目的的技术方案是:
一种肺表面活性物质相关蛋白A适配子,其基因序列为:
SEQ ID No:1,或SEQ ID No:2,或SEQ ID No:3。
而且,其二级结构为:
或,
或,
如上所述的肺表面活性物质相关蛋白A适配子的筛选方法,步骤如下:
⑴SELEX筛选:SP-A蛋白包被于96孔酶联板上,包被液为pH9.6,0.05mol/L NaHCO3100uL,于4℃过夜,同时设空白对照孔;SP-A蛋白包被孔和空白对照孔均以质量分数3%的BSA200uL37℃封闭2h;取1000pmol随机ssDNA与100uL结合缓冲液与经3%BSA封闭的空白对照孔37℃结合45min,反筛去除与BSA结合的ssDNA,转移到SP-A蛋白包被孔与SP-A蛋白37℃结合45min;然后用200uL冲洗缓冲液洗去未结合的ssDNA;再加200uL洗脱缓冲液于80℃作用10min,洗脱下与SP-A蛋白结合的ssDNA,取200uL酚:氯仿抽提,乙醇沉淀,将ssDNA溶解于20×TE缓冲液中;
⑵PCR优化:
PCR反应体系为:
PCR反应条件:A.94℃,3min;B.94℃,45s,55℃,30s;72℃,40s;共12个循环;C.72℃,7min;
⑶适配子亲和力及特异性检测:将带有SP-A适配子序列的克隆质粒进行PCR扩增,切胶回收,纯化PCR产物,将5ug SP-A蛋白包被于96孔板上,37℃孵育2h,取10ug纯化物与400uL结合缓冲液混合,加入到蛋白孔中结合30min,然后用洗脱缓冲液洗去未结合ssDNA,再加入50uL洗脱缓冲液,80℃孵育10min,洗脱下与蛋白结合的ssDNA,测定其含量,分析各适配子的亲和力;根据适配子亲和力测定结果,筛选出亲和力高的几个适配子按上述过程将各适配子分别与SP-A及BSA进行结合反应,通过适配子对两种蛋白亲和力的不同判断其特异性;
⑷克隆与测序及适配子结构分析:经9轮筛选得到的ssDNA,经PCR扩增成dsDNA,回收纯化后连PuC18载体,经蓝白斑筛选,挑选亲和力及特异性高的3个克隆进行序列测定,使用DNAMAN软件分析,即得肺表面活性物质相关蛋白A适配子。
而且,所述步骤⑴中结合缓冲液为SHCMK液:20mmol/L Hepes pH7.35,5mmol/L KCl,120mmol/L NaCl,1mmol/L MgCl2,1mmol/L CaCl2。
而且,所述步骤⑴中冲洗缓冲液为SHCMK液与质量分数为0.05%的Tween20的混合液,VSHCMK:VTween20为20:1。
而且,所述步骤⑴中洗脱缓冲液为:20mmol/L Tris-Hcl,4mol/L异硫氰酸胍,1mmol/LDTT,pH8.3。
而且,所述步骤⑴中酚:氯仿的体积比为1:1。
而且,所述步骤⑶中克隆质粒的制备方法为:将第9轮筛选SP-A适配子进行扩增,产物纯化后与PuC18载体分别进行双酶切,再将两者的双酶切产物在16℃条件下过夜连接,将连接产物转入大肠杆菌中,即得。
本发明的优点和有益效果为:
1、本发明本发明以SP-A蛋白为靶分子,利用指数富集配基系统进化法技术从随机ssDNA文库筛选SP-A特异结合的寡核苷酸适配子,并对所筛选出的适配子结构进行了初步分析,为进一步筛选以寡核苷酸适配子为基础的肺疾病治疗药物奠定基础。
2、本发明筛选方法筛选出的SP-A适配子可在体外合成,稳定性好,易存储,易修饰,在实验诊断和临床治疗的分子识别领域,它提供了一个比抗体更快速、灵敏的技术手段。
附图说明
图1为本发明第9轮筛选产物的PCR扩增结果图;其中,M:DNA Maker;1:PCR扩增产物;
图2为本发明不同加入量SP-A蛋白与适配子的结合率图;
图3为本发明不同循环次数的PCR扩增的琼脂糖凝胶电泳图;其中,M:DNA Maker;1-8;5、8、12、16、20、24、28、32个循环时的PCR产物;
图4为本发明不同温度梯度的PCR扩增琼脂糖凝胶电泳图;其中,M:DNA Maker;1-5:退火温度为45℃、50℃、55℃、60℃、65℃时的PCR扩增产物。
具体实施方式
下面通过具体实施例对本发明作进一步详述,以下实施例只是描述性的,不是限定性的,不能以此限定本发明的保护范围。
本发明中所使用的方法如无特殊说明,均为常规方法;所使用的试剂如无特殊说明,均为市售产品。
随机ssDNA文库序列(SEQ ID No:4):5’-CGG GAA TTC TAT GGC GGA TGG GAG CAG CGA(N19)GCC GCA AGA AAA AGT TTG AGA GCA AGC TTC CG-3’,两端为固定序列,中间19个碱基为随机序列。上游引物(SEQ ID No:5):5’-CGG GAA TTC TAT GGC GGA TGG GAG CAG CGA-3’;下游引物(SEQ ID No:6):5’-CGG AAG CTT GCT CTC AAA CTT TTT CTT GCG GC-3’,
一种肺表面活性物质相关蛋白A适配子,其基因序列为:
AP-1为:5’-CGG GAA TTC TAT GGC GGA TGG GAG CAG CGA GGA CAG GTT CAA TGG AAC GCC GCA AGA AAA AGT TTG AGA GCA AGC TTC CG-3’(SEQ ID No:1);
或,AP-2为:5’-CGG GAA TTC TAT GGC GGA TGG GAG CAG CGA TGT ACG CCT ACT GTG TGT GCC GCA AGA AAA AGT TTG AGA GCA AGC TTC CG-3’(SEQ ID No:2);
或,AP-3为:5’-CGG GAA TTC TAT GGC GGA TGG GAG CAG CGA TAC AGT CCA AAG TGC TCT GCC GCA AGA AAA AGT TTG AGA GCA AGC TTC CG-3’(SEQ ID No:3)。
上述适配子具体的二级结构如下所示:
AP-1为:
AP-2为:
AP-3为:
一种肺表面活性物质相关蛋白A适配子的筛选方法,步骤如下:
⑴SELEX筛选:SP-A蛋白包被于96孔酶联板上,包被液为pH9.6,0.05mol/L NaHCO3100uL,于4℃过夜,同时设空白对照孔。SP-A蛋白包被孔和空白对照孔均以质量分数3%的BSA 200uL 37℃封闭2h。取1000pmol随机ssDNA与100uL结合缓冲液(结合缓冲液为SHCMK液:20mmol/L Hepes pH 7.35,5mmol/L KCl,120mmol/L NaCl,1mmol/L MgCl2,1mmol/L CaCl2)与经3%BSA封闭的空白对照孔37℃结合45min,去除与BSA结合的ssDNA,转移到SP-A蛋白包被孔与SP-A蛋白37℃结合45min;然后用冲洗缓冲液(SHCMK液+质量分数为0.05%的Tween20,VSHCMK:VTween20=20:1)洗6次,洗去未结合的ssDNA;再加200uL洗脱缓冲液(20mmol/L Tris-Hcl,4mol/L 异硫氰酸胍,1mmol/L DTT,pH8.3)于80℃作用10min,洗脱下与SP-A蛋白结合的ssDNA,经酚:氯仿(V酚:V氯仿=1:1)抽提,乙醇沉淀,将ssDNA溶解于20×TE缓冲液中。
⑵PCR优化:SELEX筛选过程中制备下一轮文库时涉及到对称PCR及不对称PCR扩增,为了保证文库的特异性及足够量,必须进行PCR优化。在本发明中,主要对其最佳退火温度及循环次数进行优化。PCR反应条件:A.94℃,3min;B.94℃,45s,X℃,30s;72℃,40s;共Y个循环;C.72℃,7min。X为退火温度梯度,分别为45℃、50℃、55℃、60℃、65℃。Y为PCR循环次数,分别为5、8、12、16、20、24、28、32。
PCR反应体系见表1:
表1PCR反应体系
PCR产物经2%琼脂糖凝胶电泳鉴定,取10uL PCR产物与2uL6×上样缓冲液混匀加入凝胶孔中,接通电泳仪,电压设定为5V/cm,电泳45min.小心取出凝胶,于EB中浸泡15min,照胶,分析结果,根据结果确定最佳条件。
以第9轮筛选产物为模板进行PCR扩增,产物经2%琼脂糖凝胶电泳,结果如图1所示,扩增产物单一,满足克隆要求,切下目的条带,回收纯化.得到克隆用的目的DNA片段。
⑶适配子亲和力及特异性检测:将克隆质粒(第9轮筛选产物(即SP-A适配子)进行扩增,产物纯化后与PuC18载体分别进行双酶切(PCR纯化产物酶切体系见表2,pUC18载体酶切体系见表3),再将两者的双酶切产物在16℃条件下过夜连接(载体与纯化产物连接体系见表4),将连接产物转入大肠杆菌中)进行PCR扩增(PCR反应条件:A.94℃,3min;B.94℃,45s,55℃,30s;72℃,40s;共24个循环;C.72℃,7min;),切胶回收,纯化PCR产物。将5ug SP-A蛋白包被于96孔板上,37℃孵育2h。取10ug纯化物与400uL结合缓冲液混合,加入到蛋白孔中结合30min。然后用洗脱缓冲液洗去未结合ssDNA,再加入50uL洗脱缓冲液,80℃孵育10min,洗脱下与蛋白结合的ssDNA,测定其含量,分析各适配子的亲和力。根据适配子亲和力测定结果,筛选出亲和力高的几个适配子按上述过程将各适配子分别与SP-A及BSA进行结合反应,通过适配子对两种蛋白亲和力的不同判断其特异性。
表2PCR纯化产物酶切体系
表3pUC18载体酶切体系
表4载体与纯化产物连接体系
⑷克隆与测序及适配子结构分析:经9轮筛选得到的ssDNA,经PCR扩增成dsDNA,回收纯化后连PuC18载体,经蓝白斑筛选,挑选亲和力及特异性高的3个克隆进行序列测定,使DNAMAN软件分析。
3.结果与讨论
SP-A蛋白特异结合寡核苷酸适配子的SELEX筛选:
每一轮筛选用的ssDNA与SP-A蛋白的用量直接关系到筛选是否成功。最初几轮筛选时,为了获得与SP-A蛋白特异性结合的ssDNA,ssDNA与SP-A蛋白用量要大。后续的筛选是为了把已经筛选出的特异性更高、亲和力更强的筛选出来,ssDNA与SP-A蛋白用量减少,但ssDNA/SP-A要提高,使亲和力更强ssDNA竞争到SP-A蛋白上的结合靶点,筛去亲和力相对较弱的ssDNA,以获得特异性更高、亲和力更强的适配子。各轮筛选所加的SP-A蛋白, ssDNA量具体见表5。
表5各轮筛选的ssDNA及SP-A蛋白用量
SELEX筛选共进行了9轮,为了获得与SP-A蛋白特异性结合的适配子,第一轮筛选投入较大量的ssDNA文库及SP-A蛋白,其后几轮降低用量以增加筛选压力;我们将每轮筛选的产物纯化后,测定其洗脱下的ssDNA浓度,即为结合到SP-A蛋白上的ssDNA的含量,与投入量相比,得到适配子与SP-A蛋白的结合率,结果如图2所示。第一轮适配子的结合率为1.3%,随着筛选轮次的增加,结合率逐渐升高,第5轮明显提高到21.17%,第9轮时达到峰值33%,其中8、9轮适配子结合率没有明显变化,说明达到峰值平台期,筛选次数不必再增加。从而筛选出与SP-A蛋白具有较高亲和力及特异性的适配子。
PCR扩增条件优化:
随机ssDNA文库的PCR扩增条件与常规PCR扩增条件有所不同,循环次数的选择将直接影响目的DNA的纯度和产量。当退火温度设定为55℃时,分别进行5、8、12、16、20、24、28、32个循环的PCR扩增,产物经2%琼脂糖凝胶电泳,结果发现经12个循环扩增可以得到相对特异的目的片段,但从16个循环起非特异性扩增产物增加(图3)。实验还发现,降低模板ssDNA的用量,经过20个循环扩增仍然可得到较高纯度的目的dsNDA片段。因此每一轮的筛选过程都必须控制从ssDNA扩增为dsDNA的PCR循环数。
根据上述优化结果,将循环次数设为12个循环时,退火温度分别为45℃、50℃、55℃、60℃、65℃时扩增结果如图4所示。结果发现在45—65℃之间的5个退火温度对PCR产物影 响不大,均能得到较好的PCR产物。随着退火温度的增高,PCR产物并没有明显减少,非特异性产物也没有增加。因此,我们选择55℃为最佳退火温度.在后续实验过程中,根据实验实际结果必要时再调整PCR反应条件参数。
克隆与测序及适配子结构分析:
将筛选出的3个高亲和力,高特异性适配子(AP-1,AP-2,AP-3)进行测序分析,其序列长度与预期值一致,均为81bp随机序列长度为19bp。其中AP-2缺少一个碱基随机序列,见表6。
表6适配子随机序列
根据DNA自由能最低能量值的法则,用DNAMAN软件模拟适配子的理论二级结构,结果如下式:
AP-1
AP-2
AP-3
如式所示,适配子的二级结构主要以茎环结构为主。AP-1,AP-2,AP-3适配子的最低自由能量值分别为-19.00kcal/mol,0.00kcal/mol,-22.90kcal/mol。自由能是热力学常数,它指进行一个反应所需要的能量,形成碱基对时必须释放能量才能使其结构稳定存在。所以,结构的稳定性是由形成时所释放能量的大小决定的。结构形成时放出的能量越多,要拆开它时就需要给予更多的能量,其稳定性越高。AP-3适配子二级结构的自由能最低为-22.90kcal/mol,确定了其能高特异性结合SP-A蛋白。
Claims (8)
1.一种肺表面活性物质相关蛋白A适配子,其特征在于:其基因序列为:
SEQ ID No:1,或SEQ ID No:2,或SEQ ID No:3。
3.一种如权利要求1或2所述的肺表面活性物质相关蛋白A适配子的筛选方法,其特征在于:步骤如下:
⑴SELEX筛选:SP-A蛋白包被于96孔酶联板上,包被液为pH9.6,0.05mol/L NaHCO3100uL,于4℃过夜,同时设空白对照孔;SP-A蛋白包被孔和空白对照孔均以质量分数3%的BSA200uL37℃封闭2h;取1000pmol随机ssDNA与100uL结合缓冲液与经3%BSA封闭的空白对照孔37℃结合45min,反筛去除与BSA结合的ssDNA,转移到SP-A蛋白包被孔与SP-A蛋白37℃结合45min;然后用200uL冲洗缓冲液洗去未结合的ssDNA;再加200uL洗脱缓冲液于80℃作用10min,洗脱下与SP-A蛋白结合的ssDNA,取200uL酚:氯仿抽提,乙醇沉淀,将ssDNA溶解于20×TE缓冲液中;
⑵PCR优化:
PCR反应体系为:
PCR反应条件:A.94℃,3min;B.94℃,45s,55℃,30s;72℃,40s;共12个循环;C.72℃,7min;
⑶适配子亲和力及特异性检测:将带有SP-A适配子序列的克隆质粒进行PCR扩增,切胶回收,纯化PCR产物,将5ug SP-A蛋白包被于96孔板上,37℃孵育2h,取10ug纯化物与400uL结合缓冲液混合,加入到蛋白孔中结合30min,然后用洗脱缓冲液洗去未结合ssDNA,再加入50uL洗脱缓冲液,80℃孵育10min,洗脱下与蛋白结合的ssDNA,测定其含量,分析各适配子的亲和力;根据适配子亲和力测定结果,筛选出亲和力高的几个适配子按上述过程将各适配子分别与SP-A及BSA进行结合反应,通过适配子对两种蛋白亲和力的不同判断其特异性;
⑷克隆与测序及适配子结构分析:经9轮筛选得到的ssDNA,经PCR扩增成dsDNA,回收纯化后连PuC18载体,经蓝白斑筛选,挑选亲和力及特异性高的3个克隆进行序列测定,使用DNAMAN软件分析,即得肺表面活性物质相关蛋白A适配子。
4.根据权利要求3所述的筛选方法,其特征在于:所述步骤⑴中结合缓冲液为SHCMK液:20mmol/L Hepes pH7.35,5mmol/L KCl,120mmol/L NaCl,1mmol/L MgCl2,1mmol/LCaCl2。
5.根据权利要求3所述的筛选方法,其特征在于:所述步骤⑴中冲洗缓冲液为SHCMK液与质量分数为0.05%的Tween20的混合液,VSHCMK:VTween20为20:1。
6.根据权利要求3所述的筛选方法,其特征在于:所述步骤⑴中洗脱缓冲液为:20mmol/LTris-Hcl,4mol/L异硫氰酸胍,1mmol/L DTT,pH8.3。
7.根据权利要求3所述的筛选方法,其特征在于:所述步骤⑴中酚:氯仿的体积比为1:1。
8.根据权利要求3所述的筛选方法,其特征在于:所述步骤⑶中克隆质粒的制备方法为:将第9轮筛选SP-A适配子进行扩增,产物纯化后与PuC18载体分别进行双酶切,再将两者的双酶切产物在16℃条件下过夜连接,将连接产物转入大肠杆菌中,即得。
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