CN103122332B - 木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种lh-n25与异养硝化好氧反硝化微生物菌剂及制备方法与用途 - Google Patents
木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种lh-n25与异养硝化好氧反硝化微生物菌剂及制备方法与用途 Download PDFInfo
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Abstract
本发明是一种木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种LH-N25 CGMCC No.6972。本发明还公开了一种异养硝化好氧反硝化微生物菌剂,该微生物菌剂包括木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种LH-N25或者还包括噬氨副球菌LH-N40,菌株之间按照任意的比例进行组合。本发明还公开了该微生物菌剂制备方法。本发明的微生物菌剂不仅能解决传统反应器中总氮难脱除的问题,而且能够在同一反应器中有效脱除水体中的氨氮和总氮,同时对废水中的酚类、胺类、杂环类、氰类、多环芳烃类等有毒物质具有耐受性或降解能力,特别适用于含氮化工废水,处理工艺简单,效果稳定,耐环境毒物冲击,在各种含氮化工废水处理中有着非常广阔的应用前景。
Description
技术领域
本发明属于环境微生物领域,具体涉及微生物菌种,以及由该微生物菌种组成的异养硝化好氧反硝化脱氮的微生物菌剂,以及该菌剂的制备方法与用途。
背景技术
传统的废水生物脱氮技术主要是靠自养硝化菌和异养反硝化菌通过硝化和反硝化偶联使氨氮转变为氮气脱除。而自养细菌自身的增殖速度慢、在混合培养的活性污泥系统中无法与异养细菌竞争、难以获得较高的生物量、硝化效率低,导致自养微生物脱氮系统抗冲击能力弱、硝化作用不完全;反硝化菌为异养菌,运行中往往需要补加碳源,增加了运行成本。
鉴于传统的硝化细菌和反硝化细菌的不足,异养硝化细菌、好氧反硝化细菌的发现解决了传统生物脱氮处理启动时间长,硝化环节条件要求苛刻,硝化和反硝化不能同步进行等缺点,具有较好的发展前景。已报道的异养硝化细菌很多又同时具有好氧反硝化的功能,这为污水脱氮引入新的概念,使得同步硝化反硝化得以实现。
目前,高氨氮行业的废水一般含有很多含有毒有害物质,如焦化废水等。针对这一情况,获得耐受环境毒害、去除难降解物质的高效异养硝化好氧反硝化功能菌株,构建组合成微生物菌剂,投加到废水处理系统中或者用于特定污染水体的生物修复,使其成为反应体系中的优势种群而发挥脱氮和去除COD作用,能够增强对难降解污染物的降解能力,提高脱氮速率,并改善原有生物处理体系对目标污染物的去除效能。
公开专利文献CN101875909.B提供了一种高效的异养硝化好氧反硝化细菌及其培养方法和用途,该细菌是红球菌属Rhodococcus sp.DN2.3,保藏登记号为CCTCC M209300,能够有效脱除水体中的氨氮、亚硝酸氮、硝酸氮及其混合物,还可同时去除有机废水中的CODCr,但菌剂生产方法过于简单,菌种单一,环境耐受力差,不适用于大规模利用。
公开专利文献CN102277314.B提供一种种高效异养硝化细菌筛选方法、筛选的菌株及其菌剂的制备方法,该菌株为蜡状芽孢杆菌(Bacilluscereus),保藏编号为:CGMCCNO.4918,可以利用亚硝酸盐作为唯一的氮源进行生长繁殖。并以该菌株制备水质净化微生物制剂菌剂,可用于污水处理、水产养殖、水族箱或流动水系等水治理工程,未见其用于工业污水处理。
公开专利文献CN101899401.A提供了一种含氨废水微生物菌剂及其制备方法,该菌剂包含硝酸菌、亚硝酸菌和反硝化菌,通过定向驯化来调节或者配比,能有效处理低COD、高氨氮废水,但菌剂中包含的菌株过于笼统,且对有毒有害物质耐受性较差。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是针对现有技术的不足,提供一种新的木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种LH-N25。
本发明所要解决的另一个技术问题是提供了含有上述木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种LH-N25的异养硝化好氧反硝化微生物菌剂。
本发明所要解决的另一个技术问题是提供了上述菌剂的制备方法与用途。
本发明是木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp. xylosoxidans)LH-N25 CGMCC No. 6972。
本发明所涉及的菌株为木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp. xylosoxidans)LH-N25 CGMCC No.6972以及噬氨副球菌(Paracoccus aminovorans)LH-N40 CGMCCNo. 6971。其中:木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种LH-N25已于2012年12月19日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心CGMCC,保藏编号为CGMCC No. 6972;保藏单位地址:北京市朝阳区大屯路中国科学院微生物研究所,电话:010-64807355;噬氨副球菌LH-N40已于2012年12月19日保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心CGMCC,保藏编号为CGMCC No. 6971;保藏单位地址:北京市朝阳区大屯路中国科学院微生物研究所,电话:010-64807355。
以下对本发明的菌株的分离纯化进行说明。
一、木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种LH-N25的分离纯化
1. 土样驯化富集:取土壤样品,接种至反硝化液体培养基中,逐步驯化富集。(反硝化富集培养基组成 NaNO31g/L,NaNO2 0.5g/L,NaCl 0.3g/L,FeSO4 0.03g/L,K2HPO4 0.25g/L,MgSO4 0.03g/L,NaCO30.3g/L,CH3COONa 0.5g/L蒸馏水1L,pH 8.0)
2. 稀释液准备:取驯化污泥培养液1ml,加入盛有9ml无菌水的灭菌试管中,混匀即得10-1浓度的污泥悬液。静置30s,用1ml无菌吸管吸取10-1的污泥悬液1ml放入9ml无菌水管中,吹吸混匀,即为10-2稀释液,依次从10-2连续稀释至10-5,即得一系列的10倍稀释液。
3. 培养皿准备:取灭菌培养皿,在皿盖上加注样品号、培养基代号、接种稀释度、分离日期等。将灭菌后的反硝化培养基倒入皿中约12~15ml,使凝成平板。(反硝化固体培养基组成同反硝化液体培养基,另加入2%的琼脂)。
4. 初筛与培养:初筛接种采用涂布法,即用无菌吸管吸取不同倍数稀释液0.1ml,滴于已制好的平板上,然后用无菌刮铲涂匀。接种完毕,将皿分类重叠,倒置于30℃培养箱中培养2~4d。
5. 复筛:取出培养好的平板,选出生长好、有代表性的单菌落,用接种环挑取,接种到同样成分的反硝化液体培养基中30℃震荡培养,生长后,用接种环挑取一环培养液在反硝化固体培养基上划线纯化,30℃培养箱中培养。待有菌落长出后,挑取单菌落划线,纯化,重复2~3次,筛选得到纯菌株。
6. 将该纯菌株送到生物工程(上海)有限公司进行16s rDNA测序,经鉴定为木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp. xylosoxidans)。
二、噬氨副球菌LH-N40的分离纯化
1. 土样驯化富集:取土壤样品,接种至硝化液体培养基中,逐步驯化富集。(硝化富集培养基组成:NH4SO4 1g/L,NaNO31g/L,NaCl 0.3g/L,FeSO4 0.03g/L,K2HPO4 0.25g/L,MgSO4 0.03g/L,NaCO30.3g/L,CH3COONa 0.5g/L蒸馏水1L,pH 8.0)
2. 稀释液准备:取驯化污泥培养液1ml,加入盛有9ml无菌水的灭菌试管中,混匀即得10-1浓度的污泥悬液。静置30s,用1ml无菌吸管吸取10-1的污泥悬液1ml放入9ml无菌水管中,吹吸混匀,即为10-2稀释液,依次从10-2连续稀释至10-5,即得一系列的10倍稀释液。
3. 培养皿准备:取灭菌培养皿,在皿盖上加注样品号、培养基代号、接种稀释度、分离日期等。将灭菌后的硝化培养基倒入皿中约12~15ml,使凝成平板。(硝化固体培养基组成同硝化液体培养基,另加入2%的琼脂)。
4. 初筛与培养:初筛接种采用涂布法,即用无菌吸管吸取不同倍数稀释液0.1ml,滴于已制好的平板上,然后用无菌刮铲涂匀。接种完毕,将皿分类重叠,倒置于30℃培养箱中培养2~4d。
5. 复筛:取出培养好的平板,选出生长好、有代表性的单菌落,用接种环挑取,接种到同样成分的硝化液体培养基中30℃震荡培养,生长后,用接种环挑取一环培养液在硝化固体培养基上划线纯化,30℃培养箱中培养。待有菌落长出后,挑取单菌落划线,纯化,重复2~3次,筛选得到纯菌株。
6. 将该纯菌株送到生物工程(上海)有限公司进行16s rDNA测序,经鉴定为噬氨副球菌(Paracoccus aminovorans)。
本发明还公开了一种异养硝化好氧反硝化微生物菌剂,其特点是:该微生物菌剂包括木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp. xylosoxidans)LH-N25 CGMCC No. 6972,或者由木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp. xylosoxidans)LH-N25 CGMCC No. 6972和噬氨副球菌(Paracoccus aminovorans)LH-N40 CGMCC No. 6971组成,菌株之间按照任意的比例进行组合。本发明菌剂中,各菌株是在菌剂中起脱氮和去除COD作用的菌株,菌剂中还可以含有常规的微生物助剂,比如稳定剂和/或保护剂等助剂。
本发明微生物菌剂中,每种菌株的含量根据其所处理的废水需要进行选定,一般地,以质量分数计量,每种菌株的含量均不低于0.1%,优选不低于1%,最优选不低于5%。
本发明还公开了一种如以上方案所述的异养硝化好氧反硝化微生物菌剂的制备方法,其特点是,其步骤如下:
(1)将微生物菌剂中所述的菌株分别接种到固体培养基进行活化;
(2)活化后分别转接到相应液体培养基进行摇瓶培养,离心收集菌体,制备高浓度种子液;摇瓶培养条件为,pH:6.0~10.0,温度:10℃~35℃,转速:100~170rpm,培养时间:1~2 d;高浓度种子液中有效活菌数量≥5×109 cfu/mL;
(3)将上述高浓度种子液分别到接种到相应的一级种子罐进行放大培养1~7d,培养条件为:温度10℃~35℃ ;pH 6.0~10.0 ;DO0.5~4.0mg/L,通气量0.4~0.6m3/h,搅拌速度110~150rpm,浓缩收集菌体,制备一级种子液;再将一级种子液分别转接到相应二级种子罐进行放大培养1~14d,浓缩收集菌体,制备二级种子液;再将二级种子液分别转接到相应三级种子罐进行放大培养1~21d,浓缩收集菌体,得到三级种子液;二级种子液和三级种子液的培养条件为:pH6.0~10.0,温度10~35℃,DO 0.5~4.0mg/L,通气量0.4~0.6m3/h,搅拌速度110~150rpm;向三级种子液中添加微生物助剂,分别按照各菌株所需的比例混合即获得微生物菌剂;所述的微生物助剂是稳定剂和/或保护剂;
步骤(1)和(2)中所述的固体培养基和液体培养基组成为:牛肉膏3~5g/L,蛋白胨6~12g/L,氯化钠3~6g/L,蒸馏水1L,固体培养基中再加入1.5~2.5%琼脂;步骤(3)所述的一级种子液所用的培养基组成为:(NH4)2SO4 0.5~5g/L,葡萄糖0.5~1g/L, MgSO4 0.01~0.02g/L,K2HPO4 0.1~0.3g/L,FeSO4·7H2O 0.05~0.1 g/L,蒸馏水1L;二级种子液和三级种子液所用的培养基组成为:尿素0.5~5g/L,葡萄糖1~3g/L,K2HPO4 0.1~0.3g/L,MgSO4 0.01~0.02g/L,FeSO4·7H2O 0.05~0.1 g/L,蒸馏水1L。
以上所述的制备方法的步骤(3)中:所述的稳定剂和保护剂可以为现有技术中常制菌剂常规使用的稳定剂和保护剂,稳定剂优选自甘油、乙醇的一种或其混合物;保护剂优选自活性炭粉末、硅藻土的一种或其混合物。步骤(3)中所述的浓缩方法优选为自然沉降、离心或者过滤。
本发明所述的微生物菌剂或者本发明制备方法制得的微生物菌剂可以在处理含氮化工废水中应用。本发明的微生物菌剂可以制备成液态菌剂,或者制备成干粉状的菌剂。
与现有技术相比,本发明的有益效果如下:
1.本发明的微生物菌剂不仅能解决传统反应器中总氮难脱除的问题,而且能够在同一反应器中有效脱除水体中的氨氮和总氮;该微生物菌剂对废水中的酚类、胺类、杂环类、氰类、多环芳烃类等有毒物质具有耐受性或降解能力;该微生物菌剂有利于异养硝化好氧反硝化脱氮的微生物菌剂的规模化生产应用;可以直接应用于含氮有机化工废水的生物处理系统中;可以作为生物强化剂投加到废水处理系统或者在各种填料上挂膜后处理废水;能够有效脱除废水中的COD,效果稳定,耐环境毒物冲击;在各种含氮有机化工废水处理中有着非常广阔的应用前景。
2.本发明的微生物菌剂制备方法制得的微生物菌剂活菌数高,生产周期短、工艺简便。
具体实施方式
下面结合具体实例对本发明进行说明,以下实施方式仅用于说明本发明,而不用于限制本发明所要求保护的范围。
实施例1,木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp. xylosoxidans)LH-N25 CGMCC No. 6972。
实施例2,一种异养硝化好氧反硝化微生物菌剂,该微生物菌剂包括木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp. xylosoxidans)LH-N25 CGMCC No. 6972。菌株的含量可以为适宜。菌剂中,各菌株是在菌剂中起脱氮和去除COD作用的菌株,菌剂中可以为单独的菌株,还可以含有常规的微生物助剂,比如稳定剂和/或保护剂等助剂。所述的微生物菌剂可以应用于处理含氮化工废水。
实施例3,一种异养硝化好氧反硝化微生物菌剂,该微生物菌剂由木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp. xylosoxidans)LH-N25 CGMCC No. 6972和噬氨副球菌(Paracoccus aminovorans)LH-N40 CGMCC No. 6971组成,菌株之间按照任意的比例进行组合。本发明菌剂中,各菌株是在菌剂中起脱氮和去除COD作用的菌株,菌剂中还可以含有常规的微生物助剂,比如稳定剂和/或保护剂等助剂。所述的微生物菌剂可以应用于处理含氮化工废水。
实施例4,实施例2或3所述所述的异养硝化好氧反硝化微生物菌剂中,以质量分数计量,每种菌株的含量均不低于0.1%。
实施例5,实施例2或3所述所述的异养硝化好氧反硝化微生物菌剂中,以质量分数计量,每种菌株的含量均不低于5%。
实施例6,一种如实施例2-5中任何一项所述的异养硝化好氧反硝化微生物菌剂的制备方法,其步骤如下:
(1)将微生物菌剂中所述的菌株分别接种到固体培养基进行活化;
(2)活化后分别转接到相应液体培养基进行摇瓶培养,离心收集菌体,制备高浓度种子液;摇瓶培养条件为,pH:6.0~10.0,温度:10℃~35℃,转速:100~170rpm,培养时间:1~2 d;高浓度种子液中有效活菌数量≥5×109 cfu/mL;
(3)将上述高浓度种子液分别到接种到相应的一级种子罐进行放大培养1~7d,培养条件为:温度10℃~35℃ ;pH 6.0~10.0 ;DO0.5~4.0mg/L,通气量0.4~0.6m3/h,搅拌速度110~150rpm,浓缩收集菌体,制备一级种子液;再将一级种子液分别转接到相应二级种子罐进行放大培养1~14d,浓缩收集菌体,制备二级种子液;再将二级种子液分别转接到相应三级种子罐进行放大培养1~21d,浓缩收集菌体,得到三级种子液;二级种子液和三级种子液的培养条件为:pH6.0~10.0,温度10~35℃,DO 0.5~4.0mg/L,通气量0.4~0.6m3/h,搅拌速度110~150rpm;向三级种子液中添加微生物助剂,分别按照各菌株所需的比例混合即获得微生物菌剂;所述的微生物助剂是稳定剂和/或保护剂;
步骤(1)和(2)中所述的固体培养基和液体培养基组成为:牛肉膏3~5g/L,蛋白胨6~12g/L,氯化钠3~6g/L,蒸馏水1L,固体培养基中再加入1.5~2.5%琼脂;步骤(3)所述的一级种子液所用的培养基组成为:(NH4)2SO4 0.5~5g/L,葡萄糖0.5~1g/L, MgSO4 0.01~0.02g/L,K2HPO4 0.1~0.3g/L,FeSO4·7H2O 0.05~0.1 g/L,蒸馏水1L;二级种子液和三级种子液所用的培养基组成为:尿素0.5~5g/L,葡萄糖1~3g/L,K2HPO4 0.1~0.3g/L,MgSO4 0.01~0.02g/L,FeSO4·7H2O 0.05~0.1 g/L,蒸馏水1L。
实施例7,实施例6所述的制备方的步骤(3)中:所述的稳定剂选自甘油、乙醇的一种或其混合物;所述的保护剂选自活性炭粉末、硅藻土的一种或其混合物。
实施例8,实施例6或7所述的制备方的步骤(3)中所述的浓缩方法为自然沉降、离心或者过滤。
实施例9,本发明微生物菌剂的异养硝化好氧反硝化性能实验。
一、配制氨氮质量浓度为240mg/L左右的模拟废水,添加甲醇为碳源,COD质量浓度为1050mg/L左右。
二、按以下方法制得的纯菌株发酵液:
1. 菌株活化:将2种纯菌株接到固体培养基中,25℃恒温培养箱中活化。
2.高浓度种子液制备:用接种环取活化后菌株转接到液体培养基中,10 ~ 35℃、100~170rpm摇瓶震荡培养1~2d生长至对数期,在灭菌离心管中离心去上清液收集菌体,制备高浓度种子液,有效活菌数量≥5×109 cfu/mL。培养基组成为:牛肉膏4g/L,蛋白胨10g/L,氯化钠5g/L,pH 7.5,固体培养基添加2%琼脂。
3. 一级种子液制备:将上述高浓度种子液分别到接种到20L一级种子罐,在温度10℃~35℃ ;pH 6.0~10.0 ;DO 0.5~4.0mg/L,通气量0.4~0.6m3/h,搅拌速度110~150rpm条件下放大培养3d,过滤浓缩收集菌体,制备一级种子液。培养基组成为:(NH4)2SO4 2g/L,葡萄糖 1g/L,MgSO4 0.01g/L,K2HPO4 0.2 g/L,FeSO4·7H2O 0.05g/L。
4. 二级种子液制备:将二株菌的一级种子液分别以10%的接种量接种到300L二级种子罐放大培养10d,自然沉降浓缩收集菌体,制备二级种子液。培养条件为pH 6.0~10.0,温度10~35℃,DO 0.5~4.0mg/L,通气量0.4~0.6m3/h,搅拌速度110~150rpm。培养基组成为:尿素4g/L,葡萄糖3g/L,K2HPO4 0.2g/L,MgSO4 0.02g/L,FeSO4·7H2O0.1 g/L。
5. 三级种子液制备:分别将二株菌的二级种子液分别以10%的接种量转接到相应5m3三级种子罐放大培养12d,自然沉降浓缩收集菌体,得三级种子液。培养条件和培养基组成同二级种子液制备条件。
三.菌剂制备:通过添加微生物助剂甘油,获得微生物菌剂,其中:
菌剂1为菌剂中仅含木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种LH-N25菌种;
菌剂2为木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种LH-N25与噬氨副球菌LH-N40按照质量分数1:1配制而成。
分别将菌剂接种6L曝气反应器中,接种量10%,对照接种同体积的灭菌纯水,30℃,150rpm 振荡培养12个小时,定时取样测定氨氮、硝酸氮、亚硝酸氮浓度的变化。结果见表1,在培养的前6个小时,菌剂1、菌剂2培养液中均有微量的硝酸盐和亚硝酸盐出现,8小时以后再未检测到硝酸盐和亚硝酸盐积累,两类菌剂体系中总氮去除率均达到90.0%以上。说明菌剂实现了异养硝化好氧反硝化同步脱氮。
表1 脱氮微生物菌剂对氨氮的去除效果
实例10,微生物菌剂在丙烯腈废水中的应用实验。
一、丙烯腈废水取自某化工厂,COD 2320~3540mg/L,总氮295~480mg/L,氨氮210~385 mg/L,pH 8.5~10.0。
二、配制含丙烯腈废水的固体培养基,将木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种LH-N25与噬氨副球菌LH-N40二菌液均匀涂布在丙烯腈废水平板上,25℃恒温培养2d,考察三株菌在丙烯腈废水平板上的生长情况。结果证明,二株菌在丙烯腈废水平板上均生长良好,差异性较小,活菌数均在5×108~5×109 cfu/mL范围内。
三、参考上述实验结果,取实施例9制得菌剂分别接种于6L SBR反应器中,不接种其他活性污泥,通入丙烯腈化工废水进行处理,进水量2~3.5L,温度25~30℃、pH 7.0~10.0、DO 2.0~4.0mg/L,无需补加碱液。一个运行周期包括进水-曝气-沉淀-排水,整个运行周期为12h,进水1~2h,曝气6~10h,沉淀1~2h,排水0.5h,控制HRT(水力停留时间)20.6~36h。经过8个周期运行,出水维持COD 50~80mg/L,氨氮5~15mg/L,总氮25~35mg/L,均达到行业污水综合排放标准。
实施例11。微生物菌剂与活性污泥处理废水效果比较实验。
一、处理废水为富马酸综合废水,取自某化学公司,原水COD质量浓度:20000~22000mg/L,氨氮质量浓度:1070~1190mg/L,总氮质量浓度1240~1380 mg/L,pH6.0~7.5,处理前进行稀释。
二、试验在3个10L生物曝气池中进行,3个曝气池首先加入相同浓度脱氮活性污泥,其中2个曝气池分别补加实施例9制得的微生物菌剂,接种量为20%,另一个曝气池补加相同体积活性污泥。3曝气池加入相同体积的富马酸综合废水,试验温度25℃,pH 8.0,溶解氧2.0~3.0mg/L,处理时间36h。结果见表2,从表2中可以看出,添加菌剂对废水的处理效果明显优于活性污泥,该微生物菌剂不仅在同一反应器内对氨氮和总氮有较高的去除效率,而且可以耐受较高的COD,对COD的去除率达到90%以上。
表2 添加菌剂与不加菌剂对富马酸综合废水处理结果比较
实施例12,微生物菌剂对焦化废水的处理实验。
一、焦化废水:取自某焦化厂,该废水成分复杂,不仅含有氨、氰、硫氰根等无机污染物,还含有酚、萘、吡啶、喹啉、咔唑、三联苯、萘、蒽等杂环及多环芳香族化合物,有毒难降解物质含量高,氨氮浓度高。普通物化、生化法处除效率低,出水不达标。菌剂处理焦化废水首先经过物化预处理,处理后进水总氮350~450mg/L,氨氮250~330mg/L,吡啶80~100mg/L,COD 1800~2200mg/L左右,pH 9.0~10.0。
二、首先考察2株菌在焦化废水平板上的生长情况,方法如实施例10所述。实验结果为: 在焦化废水平板上,LH-N25活菌数为2×108~3×108 cfu/mL,LH-N40的活菌数为5×108~2×109 cfu/mL。
三、参考上述实验结果,按实施例9所述方法制备菌剂。将菌剂按照LH-N25:LH-N40=2:1,分别接种于300L A/O反应器中,进水总氮350~450mg/L,氨氮250~330mg/L。运行过程控制A池控制溶解氧0.5~1mg/L,O池溶解氧1~4mg/L,维持污泥回流比为3:1~4:1,温度:10℃~35℃,pH:6.0~10.0,运行15d,系统达到满负荷处理量,出水总氮稳定在35~50mg/L,氨氮≤15mg/L,吡啶降解完全,COD 50~90mg/L。
结果表明菌剂对焦化废水均有很好的降解效果,出水稳定达标,说明该微生物菌剂在适应焦化废水复杂的有机成分毒性后,能够有效利用废水中的有机物使COD降低,并具有很好的脱氮效果。
Claims (7)
1.一种木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp.xylosoxidans)LH-N25CGMCC No.6972。
2.一种异养硝化好氧反硝化微生物菌剂,其特征在于:该微生物菌剂包括权利要求1所述的木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp.xylosoxidans)LH-N25CGMCC No.6972,或者由权利要求1所述的木糖氧化无色杆菌木糖氧化亚种(Achromobacter xylosoxidans subsp.xylosoxidans)LH-N25CGMCC No.6972与噬氨副球菌(Paracoccus aminovorans)LH-N40CGMCC No.6971组成,菌株之间按照任意的比例进行组合。
3.根据权利要求2所述的异养硝化好氧反硝化微生物菌剂,其特征在于:该微生物菌剂中,以质量分数计量,每种菌株的含量均不低于5%。
4.一种如权利要求2或3所述的异养硝化好氧反硝化微生物菌剂的制备方法,其特征在于,其步骤如下:
(1)将微生物菌剂中所述的菌株分别接种到固体培养基进行活化;
(2)活化后分别转接到相应液体培养基进行摇瓶培养,离心收集菌体,制备高浓度种子液;摇瓶培养条件为,pH:6.0~10.0,温度:10℃~35℃,转速:100~170rpm,培养时间:1~2d;高浓度种子液中有效活菌数量≥5×109cfu/mL;
(3)将上述高浓度种子液分别到接种到相应的一级种子罐进行放大培养1~7d,培养条件为:温度10℃~35℃;pH6.0~10.0;DO0.5~4.0mg/L,通气量0.4~0.6m3/h,搅拌速度110~150rpm,浓缩收集菌体,制备一级种子液;再将一级种子液分别转接到相应二级种子罐进行放大培养1~14d,浓缩收集菌体,制备二级种子液;再将二级种子液分别转接到相应三级种子罐进行放大培养1~21d,浓缩收集菌体,得到三级种子液;二级种子液和三级种子液的培养条件为:pH6.0~10.0,温度10~35℃,DO0.5~4.0mg/L,通气量0.4~0.6m3/h,搅拌速度110~150rpm;向三级种子液中添加微生物助剂,分别按照各菌株所需的比例混合即获得微生物菌剂;所述的微生物助剂是稳定剂和/或保护剂;
步骤(1)和(2)中所述的固体培养基和液体培养基组成为:牛肉膏3~5g/L,蛋白胨6~12g/L,氯化钠3~6g/L,蒸馏水1L,固体培养基中再加入1.5~2.5%琼脂;步骤(3)所述的一级种子液所用的培养基组成为:(NH4)2SO40.5~5g/L,葡萄糖0.5~1g/L,MgSO40.01~0.02g/L,K2HPO40.1~0.3g/L,FeSO4·7H2O0.05~0.1g/L,蒸馏水1L;二级种子液和三级种子液所用的培养基组成为:尿素0.5~5g/L,葡萄糖1~3g/L,K2HPO40.1~0.3g/L,MgSO40.01~0.02g/L,FeSO4·7H2O0.05~0.1g/L,蒸馏水1L。
5.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于,在步骤(3)中:所述的稳定剂选自甘油、乙醇中的一种或两者的混合物;所述的保护剂选自活性炭粉末、硅藻土中的一种或两者的混合物。
6.根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于,步骤(3)中所述的浓缩方法为自然沉降、离心或者过滤。
7.权利要求2或3所述的微生物菌剂或者权利要求4或5或6所述的制备方法制得的微生物菌剂在处理含氮化工废水中用途。
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