CN103088140A - 一种用卵黄原蛋白基因检测昆虫产卵量的方法 - Google Patents
一种用卵黄原蛋白基因检测昆虫产卵量的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103088140A CN103088140A CN2013100319347A CN201310031934A CN103088140A CN 103088140 A CN103088140 A CN 103088140A CN 2013100319347 A CN2013100319347 A CN 2013100319347A CN 201310031934 A CN201310031934 A CN 201310031934A CN 103088140 A CN103088140 A CN 103088140A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- sequence
- insect
- primer
- vitellogenin
- primer pair
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种用卵黄原蛋白基因检测昆虫产卵量的方法。本发明提供了用于检测取食不同物质的昆虫种群的卵黄原蛋白编码基因表达量的物质在检测取食不同物质的昆虫种群产卵量中的应用;所述卵黄原蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。本发明的实验证明,本发明所提供的检测方法可以用于检测昆虫产卵量,特别是不同营养源的蠋蝽的产卵量,用本发明的检测方法检测昆虫的产卵量仅需2-3天。而用传统的生物学方法需要30-60天左右。本发明的检测方法涉及的材料来源广,易购买,操作简单,省时,省力,适合于在昆虫商品检验检测中推广应用。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域,尤其涉及一种用卵黄原蛋白基因检测昆虫产卵量的方法。
背景技术
害虫生物防治在农林业可持续发展中发挥着不可替代的重要作用。天敌昆虫的大量生产更是生物防治中最基础也是最重要的环节。捕食性天敌昆虫蠋蝽(Armachinensis)可以控制来自鳞翅目、鞘翅目、半翅目、同翅目、膜翅目等多种农林害虫,尤其是它还可以控制重大外来入侵害虫马铃薯甲虫和美国白蛾,因此蠋蝽是一种应用前景很好的天敌昆虫商品。
作为商品,大量减少生产成本是人们追求利润最大化的一个途径。在天敌昆虫蠋蝽生产中就可以应用不同的食物来生产蠋蝽,例如,不同的昆虫猎物、含昆虫成分的人工饲料和不含昆虫成分的人工饲料,进而减少生产成本。但是应用不同的食物生产出来的蠋蝽的生物学特性参差不齐,有些释放后能达到很好的控制害虫的作用,有的则在释放后效果不显著。由于不同食物饲喂的蠋蝽在表型上很难区分,因此这些天敌昆虫在释放前是很难评估它们的生物学特性的。
蠋蝽成虫的产卵量是评价天敌昆虫生物学特性的一个很重要的指标。有较高产卵量的蠋蝽种群繁殖快,倍增时间短,可以在短期内迅速控制住害虫。这可以大大减少防治害虫的成本,增加利润率。相反,产卵量较低的蠋蝽由于繁殖慢,倍增时间延长,因此控制住害虫的时间会相对滞后,这就大大增加了防治成本,减少了利润。目前,对于不同食物来源或不同商家的商品蠋蝽产卵量的检测方法仍旧是在整个成虫期或人为规定的时间内测试其产卵量的多少,这种方法费时费力费钱。因此需要一种快速检测天敌昆虫商品生物学特性-产卵量的方法。
在昆虫体内,卵黄原蛋白(vitellogenin)是一种被发育着的卵母细胞吸收的卵黄蛋白,并且和产量关系紧密。
发明内容
本发明的一个目的是提供用于检测卵黄原蛋白编码基因表达量的物质的用途。
本发明提供了用于检测卵黄原蛋白编码基因表达量的物质在检测昆虫产卵量中的应用;所述卵黄原蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。
上述应用中,所述昆虫为昆虫个体或昆虫种群;
所述昆虫种群具体为取食不同物质昆虫种群;所述取食不同物质昆虫种群进一步具体为取食人工饲料的昆虫种群或取食猎物的昆虫种群;
所述卵黄原蛋白编码基因的核苷酸序列为序列表中的序列1或序列表中的序列1自5’末端第39-1007位核苷酸。
所述昆虫具体为蠋蝽。
上述人工饲料按照如下方法制备:生猪肝60g、大豆粉10g、水100ml、鸡蛋20ml、干酪素2g、蔗糖8g、VC0.2g、氯化胆碱0.4g、泛酸钙8mg、叶酸0.1mg、烟酰胺0.2mg、庆大霉素3.9mg;具体饲喂方法见实施例2;
上述猎物为柞蚕(Antheraea pernyi)蛹;具体饲喂方法见实施例2。
上述应用中,所述用于检测卵黄原蛋白编码基因表达量的物质为如下1)-3)中任意一种:
1)引物对A:所述引物对由引物1和引物2组成;所述引物1的核苷酸序列为序列表中序列3;所述引物2的核苷酸序列为序列表中序列4;
2)含有所述引物对A的RT-PCR试剂;
3)含有所述引物对A或所述RT-PCR试剂的试剂盒。
本发明的另一个目的是提供一种引物对A。
本发明提供的引物对A,由引物1和引物2组成;
所述引物1的核苷酸序列为序列表中序列3;所述引物2的核苷酸序列为序列表中序列4。
含有上述的引物对A的RT-PCR试剂也是本发明保护的范围;上述RT-PCR试剂具体由水、RT-PCR扩增缓冲液、镁离子、dNTPs、上述的引物对A、荧光染料(SYBR GreenI)和Taq酶组成;
所述引物对A中的各条引物在所述RT-PCR试剂中的终浓度具体为0.2-1μM,所述引物对A中的各条引物在所述RT-PCR试剂中的终浓度进一步具体为0.25μM。
含有上述的引物对A或上述的RT-PCR试剂的试剂盒也是本发明保护的范围。
上述试剂盒还包括内参引物对B,所述内参引物对B由引物3和引物4组成;所述引物3的核苷酸序列为序列表中的序列6;所述引物4的核苷酸序列为序列表中的序列7。
本发明的第三个目的是提供一种检测昆虫产卵量的方法。
本发明提供的方法,包括如下步骤:用上述的引物对A或上述的RT-PCR试剂或上述的试剂盒对待测的昆虫A和B进行RT-PCR扩增,
若所述昆虫A的卵黄原蛋白基因的表达量高于所述昆虫B,则所述昆虫A的产卵量高于所述昆虫B。
上述方法中,所述昆虫为昆虫个体或昆虫种群;
所述RT-PCR扩增的模板为昆虫cDNA;
所述昆虫具体为蠋蝽。
在本发明的实施例中,所述昆虫A为取食猎物的昆虫种群;所述昆虫B为取食人工饲料的昆虫种群。
本发明的第四个目的是提供一种蛋白或其编码基因。
本发明提供的蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2;
本发明提供的蛋白的编码基因的核苷酸序列为序列表中的序列1或序列表中的序列1自5’末端第39-1007位核苷酸。
本发明的实验证明,本发明所提供的检测方法可以通过检测卵黄原蛋白基因表达量来检测不同种群的昆虫产卵量,特别是不同营养源的蠋蝽的产卵量。实验证明,用本发明的检测方法检测昆虫的产卵量仅需2-3天。而用传统的生物学方法需要30-60天左右。本发明的检测方法涉及的材料来源广,易购买,操作简单,省时,省力,适合于在昆虫商品检验检测中推广应用。
附图说明
图1为蠋蝽beta-actin内参扩增曲线
图2为蠋蝽beta-actin内参融解曲线
图3为蠋蝽卵黄原蛋白基因扩增曲线
图4为蠋蝽卵黄原蛋白基因融解曲线
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实施例1、检测昆虫产卵量的卵黄原蛋白及其编码基因的发现和专用引物的设计
研究发现,卵黄原蛋白基因是一种检测昆虫产卵量的很好的分子标记,因此本发明通过检测蠋蝽的卵黄原蛋白(vitellogenin)编码基因的表达来检测蠋蝽的产卵量。
蠋蝽的卵黄原蛋白编码基因的核苷酸序列为序列表中的序列1或序列表中的序列1自5’末端第39-1007位核苷酸,该蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。
根据蠋蝽的卵黄原蛋白编码基因设计用于扩增该编码基因的引物如下:
上游引物:TAGTTCGCAAAGGAGTGGTTGA(序列3);
下游引物:AGATTCTTGCAACTGCTTTCGG(序列4)。
实施例2、卵黄原蛋白或编码基因或专用引物在检测蠋蝽产卵量中的应用
下述实验中采用的蠋蝽(Arma chinensis,记载在Taxonomic and bionomic notes onArma chinensis(Fallou)(Hemiptera:Pentatomidae:Asopinae,Zootaxa,3382:41-52,2012,公众可从中国农业科学院植物保护研究所获得)根据取食物质的不同分为两组,每组50只:
取食人工饲料组蠋蝽:饲喂人工饲料的蠋蝽(27±1°C,16:8(L:D),75±5%RH)每天每头成虫饲喂160μl人工饲料,一直到蠋蝽自然死亡;
取食猎物组蠋蝽:饲喂猎物的蠋蝽(27±1°C,16:8(L:D),75±5%RH)每对成虫饲喂一头猎物,每隔7-15天根据猎物被取食情况更换一次猎物,一直到蠋蝽自然死亡;
人工饲料为生猪肝60g、大豆粉10g、水100ml、鸡蛋20ml、干酪素2g、蔗糖8g、VC0.2g、氯化胆碱0.4g、泛酸钙8mg、叶酸0.1mg、烟酰胺0.2mg、庆大霉素3.9mg;
猎物为柞蚕(Antheraea pernyi)蛹(可商购)。
一、蠋蝽cDNA的获得
1、蠋蝽RNA抽提
步骤如下:
将各组蠋蝽样品移入加入适量液氮的研钵中,快速、用力研磨成匀浆,移至1.5ml离心管中。
加1000μlTri zol到1.5ml离心管中,静置5分钟。
加200μl氯仿,旋涡振荡10秒,静置5分钟,放入离心机中,12,000g4℃离心15分钟。
将上清液转移至新的1.5ml离心管中,加入等体积的异丙醇,振荡混匀,-20℃放置1小时,室温静置10分钟。
放入离心机中,12,000g,4℃离心10分钟。
弃上清液,将异丙醇除尽,加入1ml75%的无水乙醇,12,000g,4℃离心5分钟。
弃上清液,待沉淀干燥后加入DEPC处理水,-80℃保存,得到RNA。
2、反转录
采用Superscript III Reverse Transcriptase kit试剂盒(Invitrogen18080044)进行反转录:
a)取一灭菌的无RNA酶的eppendorf管,每个样本加入如下表1所示的组分得到mix1;
表1为反转录加入组分1
组分 | 体积 | 来源 |
Up to5μg total RNA | 5μl | |
Primer(50μM oligio(dt) | 0.5μl | Invitrogen |
Random primer | 0.5μl | Invitrogen |
10mM dNTP Mix | 1μl | Invitrogen |
DEPC-treated water | 5μl | |
Total | 12μl |
b)把mix165℃温浴5分钟,然后立即放冰上1分钟;
c)在mix1里加入如下表2所示的成分,得到mix2共20μl体系;
表2为反转录加入组分2
d)25℃处理5分钟;
e)50℃处理60分钟;
f)70℃处理15分钟,立即放置到冰上;
g)得到cDNA,且该cDNA可以在-20℃保存半年。
二、RT-PCR扩增
RT-PCR扩增体系中各组分的体积如下表3所示,采用SYBR(R)Green I NucleicA kit(Invitrogen S7567):
表3为PCR扩增体系中各组分的体积
PCR反应条件如表4所示:
表4为PCR反应条件
循环 | 循环周期 |
95℃,2分钟 | |
40次循环 | 第一步变性:95℃,10秒 |
第二步退火:60℃,30秒 | |
溶解曲线 | 60℃-95℃,每5秒增加0.5℃ |
以蠋蝽beta-actin(ACTB)作为内参基因(序列5),扩增该内参基因的引物如下:
内参上游引物:TGTCCAAGCAGGAGTACGAC(序列6);
内参下游引物:GGTTCCTCTTTGGAGTCCGATT(序列7)。
若取食猎物的蠋蝽组中的卵黄原蛋白基因平均表达量高于取食人工饲料的蠋蝽组,则取食猎物的蠋蝽组产卵量高于取食人工饲料的蠋蝽组。
结果如图1-4所示,图1为两组蠋蝽beta-actin内参扩增曲线;图2为两组蠋蝽beta-actin内参融解曲线;图3为两组蠋蝽卵黄原蛋白基因扩增曲线;图4为两组蠋蝽卵黄原蛋白基因融解曲线;可以看出,扩增曲线平滑,重复性好;溶解曲线呈单一峰,说明没有非特异性扩增,荧光定量结果准确。
蠋蝽beta-actin(ACTB)内参基因ct值如表5所示:
表5为各组蠋蝽beta-actin(ACTB)内参基因ct值
蠋蝽中卵黄原蛋白基因(VG)定量结果如表6所示:
表6为各组蠋蝽卵黄原蛋白基因定量结果
从上述结果中发现,与取食昆虫猎物的蠋蝽相比,取食人工饲料的蠋蝽的卵黄原蛋白基因的表达量明显下调;而在取食昆虫猎物的蠋蝽中可以检测到该卵黄原蛋白基因明显上调;这证明,取食昆虫猎物的蠋蝽组的产卵量比取食人工饲料的蠋蝽组的产卵量高。
通过传统的生物学方法(按照上述两组的方法饲喂,且每天收集各组蠋蝽所产的卵块,计数,一直到蠋蝽自然死亡)检测饲料组蠋蝽和猎物组蠋蝽的产卵量,取食昆虫猎物的蠋蝽和取食人工饲料的蠋蝽一生中平均产卵量分别为458及213粒;可以看出,该检测结果与用传统生物学方法检测的结果相一致,证明本发明的方法正确。
结果表明,用本发明的检测方法可以快速检测不同营养源的蠋蝽的卵黄原蛋白基因的表达量的变化,以此来判断活体种群的产卵量的差异。
因此本发明的检测卵黄原蛋白基因表达的物质可以作为分子标记用于检测取食不同营养源的蠋蝽种群的产卵量;而用于扩增卵黄原蛋白基因的引物或者RT-PCR试剂可以作为检测取食不同营养源的蠋蝽种群的产卵量试剂盒的组分;
上述RT-PCR试剂由超纯水、10×PCR扩增buffer、镁离子、dNTPs、上游引物、SYBR(SYBR Green I荧光染料)、下游引物、Taq酶组成;其中镁离子在RT-PCR试剂中的终浓度为1.25mM;dNTPs中每一种在RT-PCR试剂中的终浓度为0.25mM;上游引物和下游引物在在RT-PCR试剂中的终浓度均为0.25μM;Taq酶在RT-PCR试剂中的终浓度为0.05u/μl。
Claims (10)
1.用于检测卵黄原蛋白编码基因表达量的物质在检测昆虫产卵量中的应用;
所述卵黄原蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:所述昆虫为昆虫个体或昆虫种群;
所述卵黄原蛋白编码基因的核苷酸序列为序列表中的序列1或序列表中的序列1自5’末端第39-1007位核苷酸;
所述昆虫具体为蠋蝽。
3.根据权利要求1或2所述的应用,其特征在于:所述用于检测卵黄原蛋白编码基因表达量的物质为如下1)-3)中任意一种:
1)引物对A:所述引物对由引物1和引物2组成;所述引物1的核苷酸序列为序列表中序列3;所述引物2的核苷酸序列为序列表中序列4;
2)含有所述引物对A的RT-PCR试剂;
3)含有所述引物对A或所述RT-PCR试剂的试剂盒。
4.一种引物对A,由引物1和引物2组成;
所述引物1的核苷酸序列为序列表中序列3;所述引物2的核苷酸序列为序列表中序列4。
5.含有权利要求4所述的引物对A的RT-PCR试剂;所述RT-PCR试剂具体由水、RT-PCR扩增缓冲液、镁离子、dNTPs、权利要求4所述的引物对A、荧光染料和Taq酶组成;
所述引物对A中的各条引物在所述RT-PCR试剂中的终浓度具体为0.2-1μM,所述引物对A中的各条引物在所述RT-PCR试剂中的终浓度进一步具体为0.25μM。
6.含有权利要求4所述的引物对A或权利要求5所述的RT-PCR试剂的试剂盒。
7.根据权利要求6所述的试剂盒,其特征在于:所述试剂盒还包括内参引物对B,所述内参引物对B由引物3和引物4组成;所述引物3的核苷酸序列为序列表中的序列6;所述引物4的核苷酸序列为序列表中的序列7。
8.一种检测昆虫产卵量的方法,包括如下步骤:用权利要求4所述的引物对A或权利要求5所述的RT-PCR试剂或权利要求6或7所述的试剂盒对待测的昆虫A和B进行RT-PCR扩增;
若所述昆虫A卵黄原蛋白基因的表达量高于所述昆虫B,则所述昆虫A的产卵量高于所述昆虫B。
9.根据权利要求8所述的方法,其特征在于:所述昆虫为昆虫个体或昆虫种群;
所述RT-PCR扩增的模板为昆虫的cDNA;
所述昆虫具体为蠋蝽。
10.一种蛋白或其编码基因:
所述蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2;
所述蛋白的编码基因的核苷酸序列为序列表中的序列1或序列表中的序列1自5’末端第39-1007位核苷酸。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310031934.7A CN103088140B (zh) | 2013-01-28 | 2013-01-28 | 一种用卵黄原蛋白基因检测昆虫产卵量的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310031934.7A CN103088140B (zh) | 2013-01-28 | 2013-01-28 | 一种用卵黄原蛋白基因检测昆虫产卵量的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103088140A true CN103088140A (zh) | 2013-05-08 |
CN103088140B CN103088140B (zh) | 2014-02-05 |
Family
ID=48201267
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310031934.7A Expired - Fee Related CN103088140B (zh) | 2013-01-28 | 2013-01-28 | 一种用卵黄原蛋白基因检测昆虫产卵量的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103088140B (zh) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103602741A (zh) * | 2013-11-20 | 2014-02-26 | 中山大学 | 通过单核苷酸多态性标记预测田间褐飞虱繁殖力的方法 |
CN103866000A (zh) * | 2014-01-14 | 2014-06-18 | 中山大学 | 一种预测褐飞虱繁殖力的方法 |
CN104762380A (zh) * | 2015-03-27 | 2015-07-08 | 中国农业科学院植物保护研究所 | 卵黄原蛋白基因在检测昆虫的生境适合度中的应用 |
CN108251430A (zh) * | 2017-05-05 | 2018-07-06 | 东北林业大学 | 一种异色瓢虫卵黄原蛋白新基因克隆及其表达的方法 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101225385A (zh) * | 2007-12-24 | 2008-07-23 | 浙江大学 | 茶尺蠖卵黄蛋白原基因vtg及其应用 |
CN101302513A (zh) * | 2007-05-10 | 2008-11-12 | 中国科学院生态环境研究中心 | 鱼类卵黄蛋白原基因及其编码蛋白与应用 |
US20090151640A1 (en) * | 2007-12-12 | 2009-06-18 | National Tsing Hua University | Poultry selection method to improve the egg production rate |
CN102440202A (zh) * | 2011-09-29 | 2012-05-09 | 中国水产科学研究院黑龙江水产研究所 | 一种鲟科鱼类卵子的筛选方法 |
-
2013
- 2013-01-28 CN CN201310031934.7A patent/CN103088140B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101302513A (zh) * | 2007-05-10 | 2008-11-12 | 中国科学院生态环境研究中心 | 鱼类卵黄蛋白原基因及其编码蛋白与应用 |
US20090151640A1 (en) * | 2007-12-12 | 2009-06-18 | National Tsing Hua University | Poultry selection method to improve the egg production rate |
CN101225385A (zh) * | 2007-12-24 | 2008-07-23 | 浙江大学 | 茶尺蠖卵黄蛋白原基因vtg及其应用 |
CN102440202A (zh) * | 2011-09-29 | 2012-05-09 | 中国水产科学研究院黑龙江水产研究所 | 一种鲟科鱼类卵子的筛选方法 |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103602741A (zh) * | 2013-11-20 | 2014-02-26 | 中山大学 | 通过单核苷酸多态性标记预测田间褐飞虱繁殖力的方法 |
CN103866000A (zh) * | 2014-01-14 | 2014-06-18 | 中山大学 | 一种预测褐飞虱繁殖力的方法 |
CN103866000B (zh) * | 2014-01-14 | 2015-07-01 | 中山大学 | 一种预测褐飞虱繁殖力的方法 |
CN104762380A (zh) * | 2015-03-27 | 2015-07-08 | 中国农业科学院植物保护研究所 | 卵黄原蛋白基因在检测昆虫的生境适合度中的应用 |
CN108251430A (zh) * | 2017-05-05 | 2018-07-06 | 东北林业大学 | 一种异色瓢虫卵黄原蛋白新基因克隆及其表达的方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103088140B (zh) | 2014-02-05 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Sussarellu et al. | Rapid mitochondrial adjustments in response to short-term hypoxia and re-oxygenation in the Pacific oyster, Crassostrea gigas | |
CN103088140B (zh) | 一种用卵黄原蛋白基因检测昆虫产卵量的方法 | |
CN103060467B (zh) | 一种用气味结合蛋白15基因检测昆虫自残率的方法 | |
Guo et al. | Evaluation and validation of internal control genes for studying gene expression in the dinoflagellate Prorocentrum minimum using real-time PCR | |
CN103740815B (zh) | 一种针对镰刀菌的多重pcr检测的引物及其应用 | |
CN103937822B (zh) | 蝗虫Ⅰ型几丁质酶基因的序列及其dsRNA的应用 | |
CN108754000A (zh) | 耐药基因mcr-4/5/8荧光定量PCR检测方法 | |
Deng et al. | Fungal diversity and mycotoxin contamination in dried fish products in Zhanjiang market, China | |
Zhang et al. | Transcriptomic analysis of the liver and brain in grass carp (Ctenopharyngodon idella) under heat stress | |
CN103088142B (zh) | 一种用热激蛋白90基因检测昆虫产卵量的方法 | |
Billa et al. | Nutrigenomic analyses reveal miRNAs and mRNAs affected by feed restriction in the mammary gland of midlactation dairy cows | |
CN103088141B (zh) | 一种用热激蛋白83-1基因检测昆虫产卵量的方法 | |
CN103088143B (zh) | 一种用精液蛋白基因检测昆虫产卵量的方法 | |
Woźny et al. | Differential gene expression in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) liver and ovary after exposure to zearalenone | |
CN103060465B (zh) | 一种用精液蛋白基因检测昆虫卵孵化率的方法 | |
Fujita et al. | Rapid sex identification method of spinach (Spinacia oleracea L.) in the vegetative stage using loop-mediated isothermal amplification | |
CN102181523A (zh) | 一种鉴定山羊早期胚胎性别的方法 | |
CN103060466B (zh) | 一种用防御素基因检测昆虫自残率的方法 | |
Bove et al. | cDNA‐amplified fragment length polymorphism to study the transcriptional responses of Lactobacillus rhamnosus growing in cheese‐like medium | |
CN103602681A (zh) | 一种抑制麦蚜腺体蛋白MYS2基因表达的dsRNA及其应用 | |
CN107641658B (zh) | 用热激蛋白Hsp70基因检测昆虫寿命的方法及应用 | |
Snyman et al. | The expression, secretion and activity of the aspartic protease MpAPr1 in Metschnikowia pulcherrima IWBT Y1123 | |
Rusaini | Suppression subtractive hybridization in penaeid prawns: an approach in identifying diseases and differentially expressed genes | |
CN103667289B (zh) | 一种抑制麦蚜丝氨酸蛋白酶I基因表达的dsRNA及其应用 | |
Dumrongsri et al. | Determination of male-specific gene expression of White Lamphun cattle semen treated by monoclonal antibodies |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20140205 Termination date: 20160128 |
|
EXPY | Termination of patent right or utility model |