CN103074372A - 提高猪的瘦肉率、肌间脂肪含量和生殖能力的转基因载体 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种提高猪的瘦肉率、肌间脂肪含量和生殖能力的转基因载体，该转基因载体含有小鼠的肌酸激酶(muscle creatine kinase，MCK)增强子、2kb猪的α-骨骼肌肌动蛋白基因的启动子、猪的PEPCK-C的cDNA和牛生长激素基因的3’端不翻译区域，且带有哺乳动物细胞中筛选用的抗性基因--嘌呤霉素基因和原核细胞中筛选用的抗性基因-博莱霉素基因。本发明的转基因载体可应用于体细胞克隆，以构建高瘦肉率、高肌间脂肪含量和高生殖能力的PEPCK-Cmus转基因猪。
Description
技术领域
本发明属于基因工程技术领域，具体涉及一种提高猪的瘦肉率、肌间脂肪含量和生殖能力的转基因载体。
背景技术
猪肉作为中国人民的主要肉类食品，保证全国人民有充足的、优质的猪肉供应是关系到人民日常生活的重要事件。而随着人口的增长和人民生活水平的提高，除了对猪肉的需求量增加以外，对猪肉的质量和口感的要求也提高了。上海浦东国际机场就曾发现从日本走私运入价值一百万余元、八百多公斤的顶级和牛肉(又称雪花牛肉)，由此可见中国对高档肉类产品的消费需求。因此，有必要建立和改良中国自己的猪的品种，改善猪肉口感和质量，以满足人民群众的生活需求。
前面提到的顶级和牛肉的特点是肉色艳丽，脂肪有如大理石花纹般分布在肌肉内，可比秋季降霜时的美丽，而且由于肌肉中富含脂肪，入口柔融欲化，风味鲜美。因此，可通过降低猪全身的脂肪含量来提高瘦肉率，同时，增加肌肉中的脂肪含量来改善猪肉的口感和品质。
在肌肉中过表达PEPCK-C的(PEPCK-Cmus)转基因小鼠有着令人吃惊和兴奋的表型。首先，PEPCK-Cmus转基因小鼠的运动能力远远高于对照小鼠，可以以20米/分钟的速度跑上5公里(对照小鼠在同样的速度下只能跑0.2公里)。其次，PEPCK-Cmus转基因小鼠的寿命远远长于对照小鼠，而且在30-35月时还能够产下正常的小鼠后代(大多数小鼠在12-18月时就失去生殖能力了)。PEPCK-Cmus转基因小鼠的高运动能力可能与骨骼肌里的甘油三酯的增加有关。尽管PEPCK-Cmus转基因小鼠全身的脂肪含量下降，不到对照小鼠脂肪含量的一半，但是PEPCK-Cmus转基因小鼠比对照小鼠却有更多的脂肪分布于骨骼肌中(Hakimi，P.et al.“Overexpression of the cytosolic form of phosphoenolpyruvatecarboxykinase(GTP)in skeletal muscle repatterns energy metabolism in the mouse.”J Biol Chem，2007.282(45)：32844-32855)。PEPCK-Cmus转基因小鼠中低脂肪含量和高肌间脂肪含量的特点和顶级和牛肉的特性是类似的。基于PEPCK-Cmus转基因小鼠的神奇表型，我们预期在猪的骨骼肌中过表达PEPCK-C可降低猪的脂肪含量，并在肉质和口感上得到大幅度的提高，这样的猪肉有着巨大的经济价值。大规模的生产PEPCK-Cmus转基因猪有望填补国内在高品质猪肉的空白，丰富人民群众的菜篮子，对提高人民群众的生活质量有重要的意义。而且PEPCK-C转基因可提高小鼠的生殖能力，因此，PEPCK-Cmus转基因猪很可能在繁殖能力上有所提高，在优良品种的繁殖上有着广泛的应用前景。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于提供一种能提高猪的瘦肉率、肌间脂肪含量和生殖能力的转基因载体。
为解决上述技术问题，本发明采用的技术方案如下：
转基因载体含有小鼠的肌酸激酶(muscle creatine kinase，MCK)增强子、2kb猪的α-骨骼肌肌动蛋白(α-skeletal actin)基因的启动子、猪的PEPCK-C的cDNA和牛生长激素基因(bGH)的3’端不翻译区域，且带有哺乳动物细胞中筛选用的抗性基因--嘌呤霉素(Puromycin)基因和原核细胞中筛选用的抗性基因-博莱霉素(Zeocin)基因(见图2)。
2kb的α-骨骼肌肌动蛋白(α-skeletal actin)的启动子可保证下游的基因在骨骼肌中特异表达，而且MCK增强子也具有肌肉组织特异性的增强子活性，可特异地促进下游基因的高表达。在此转基因载体中表达的是猪自身的PEPCK-C基因，所以从食品安全的角度讲，对消费者的健康没有任何影响。此外，本发明在嘌呤霉素和博莱霉素抗性基因的两端还加入LoxP序列，这样，在PEPCK-C基因整合到基因组DNA后，如有需要，本发明可通过表达Cre蛋白，诱导LoxP序列的重组，以除去抗性基因，进一步保障转基因动物的食品安全性。
本发明构建的在肌肉组织特异表达猪PEPCK-C的转基因载体pZT52的全序列如SEQ ID No：1所示，其中，第29-1897碱基为猪PEPCK-C编码区，第2278-2491碱基为bGH 3’端不翻译区，第2267-2300碱基为LoxP，第3056-3727碱基为嘌呤霉素抗性基因，第3785-4156碱基为博莱霉素(Zeocin)抗性基因，第4166-4199碱基为LoxP，第5673-6023碱基为MCK增强子，第6119-8052碱基为猪α-骨骼肌肌动蛋白基因的启动子。
本发明的转基因载体可应用于体细胞克隆，以构建高瘦肉率、高肌间脂肪含量和高生殖能力的PEPCK-Cmus转基因猪。
附图说明
图1是本发明的技术流程图。
图2是本发明构建的pZT52转基因载体的示意图。
具体实施方式
根据下述实施例，可以更好地理解本发明。然而，本领域的技术人员容易理解，实施例所描述的内容仅用于说明本发明，而不应当也不会限制权利要求书中所详细描述的本发明。
实施例1：插入LoxP-Puro-Zeo-LoxP片段，构建pZT1。
将pCDNA3.1(myc-His)a载体(Invitrogen)用PvuII酶切，酶切体系为2μg质粒DNA，3μl 10×buffer，2μl PvuII酶，加入ddH2O补足体积至30μl，37℃温浴3小时。然后将酶切体系在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出3.3kb大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤为，将紫外光下切下目的DNA条带装入1.5ml离心管中，称重后加入3倍体积的溶胶液，55℃保温10分钟，使琼脂糖凝胶完全融化；融化的凝胶待温度降至室温后，将混合液转入附柱中，10,000g离心1分钟，倒掉流出液；加入650μl漂洗缓冲液，10,000g离心1分钟，倒掉流出液；吸附柱再次离心，10,000g离心，1分钟，倒掉流出液；将吸附柱转移到一个新的1.5ml离心管中，加入50μl ddH2O，放置1分钟，10,000g离心1分钟收集纯化产物。
从pSNAP载体用EcoRV酶切出LoxP-Puro-Zeo-LoxP片段，酶切体系为3μg质粒DNA，3μl 10×buffer，2μl EcoRV酶，加入ddH2O补足体积至30μl，37℃温浴3小时。然后将酶切体系在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出1.7kb大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤同上。
将pCDNA3.1(myc-His)a(PvuII)和LoxP-Puro-Zeo-LoxP(EcoRV)连接，连接反应中加入2μl载体，6μl插入片段，1μl 10×buffer，1μl T4DNA连接酶，16℃温浴16小时。
将连接产物转化到E.coli的感受态细胞中。取一管50μl的Trans5α感受态细胞置于冰上，待其融化后，向其中加入4μl上述连接产物，轻弹混匀，后于冰上孵育30分钟；42℃热击30秒，后冰上静置10分钟；加入500μl无抗性的LB液体培养基，37℃震荡培养1小时；4,000rpm离心5分钟，吸走，保留100μl左右的培养基，用移液器将细菌沉淀吹打均匀后涂布在含氨苄和博莱双抗性的LB培养基平板上。然后将平板置于37℃温箱培养16小时。
克隆生长出来后，挑单克隆菌落至3ml含氨苄青霉素的LB培养液中，37℃震荡培养12小时，提取质粒DNA，用EcoRI酶切鉴定，阳性克隆中可得到2.9kb和2.0kb的两条DNA条带。再通过测序进一步确定阳性克隆的正确性，得到的克隆即为pZT1。
实施例2：插入猪α-骨骼肌肌动蛋白基因的启动子DNA片段，构建pZT20。
将pZT1用PvuI和NdeI双酶切，酶切体系为2μg质粒DNA，3μl 10×buffer，1.5μl PvuI酶，1.5μl NdeI酶，加入ddH2O补足体积至30μl，37℃温浴3小时。然后将酶切体系在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出4.0kb大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤同上。
通过全基因合成(Invitrogen)得到2kb长度的猪α-骨骼肌肌动蛋白基因的启动子DNA片段，用PvuI和NdeI双酶切，酶切体系为3μg质粒DNA，3μl 10×buffer，1.5μl PvuI酶，1.5μl NdeI酶，加入ddH2O补足体积至30μl，37℃温浴3小时。然后将酶切体系在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出2kb大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤同上。
将pZT1(PvuI/NdeI)和猪α-骨骼肌肌动蛋白基因的启动子DNA(PvuI/NdeI)连接，连接反应同上。
将连接产物转化到E.coli的感受态细胞中。具体步骤同上，除了只用博莱霉素进行抗性筛选。
克隆生长出来后，挑单克隆菌落至3ml含博莱霉素的LB培养液中，37℃震荡培养12小时，提取质粒DNA，用EcoRI酶切鉴定，阳性克隆中可得到3.8kb和2.0kb的两条DNA条带。再通过测序进一步确定阳性克隆的正确性，得到的克隆即为pZT20。
实施例3：插入猪PEPCK-C编码区域DNA片段，构建pZT43。
将pZT20用NdeI和KpnI双酶切，酶切体系为2μg质粒DNA，3μl 10×buffer，1.5μl KpnI酶，1.5μl NdeI酶，加入ddH2O补足体积至30μl，37℃温浴3小时。然后将酶切体系在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出5.5kb大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤同上。
通过全基因合成(Invitrogen)得到猪PEPCK-C编码区域DNA片段，用NdeI和KpnI双酶切，酶切体系为3μg质粒DNA，3μl 10×buffer，1.5μl PvuI酶，1.5μl NdeI酶，加入ddH2O补足体积至30μl，37℃温浴3小时。然后将酶切体系在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出2.1kb大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤同上。
将pZT20(KpnI/NdeI)和猪PEPCK-C编码区域DNA片段(KpnI/NdeI)连接，连接反应同上。
将连接产物转化到E.coli的感受态细胞中。具体步骤同上，除了只用博莱霉素进行抗性筛选。
克隆生长出来后，挑单克隆菌落至3ml含博莱霉素的LB培养液中，37℃震荡培养12小时，提取质粒DNA，用EcoRI酶切鉴定，阳性克隆中可得到3.3kb、2.1kb和2.0kb的三条DNA条带。再通过测序进一步确定阳性克隆的正确性，得到的克隆即为pZT43。
实施例4：插入MCK增强子DNA片段，构建pZT52。
将pZT43用PvuI酶切，酶切体系为2μg质粒DNA，3μl 10×buffer，1.5μlKpnI酶，1.5μl NdeI酶，加入ddH2O补足体积至30μl，37℃温浴3小时。然后将酶切体系在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出7.5kb大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤同上。
pZT43载体的去磷酸化，35μl pZT43(PvuI)，4μl 10×buffer，1μl牛小肠碱性去磷酸化酶(CIP)，37℃温浴1小时。然后将反应体系在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出7.5kb大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤同上。
通过PCR扩增得到MCK增强子DNA片段，PCR条件如下：1μl(约10ng)模板DNA pST181，引物1(gataCGATCGACGGGCCAGATATACGCGTTAGAA)和引物2(ccggCGATCGGGCGGGCCATTTACCGTAAGTTAT)的终浓度均为0.5μM，dNTPs的终浓度为0.2mM，5μl 10×buffer，1μl HiFi Taq酶，加入ddH2O补足体积至50μl。PCR循环为，95℃，2分钟；接着是95℃，30秒，55℃，30秒，72℃，30秒，35个循环；72℃，5分钟；4℃，保温。然后将PCR产物在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出500bp大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤同上。
用PvuI酶切MCK增强子DNA片段，酶切体系为3μg DNA，4μl 10×buffer，3μl PvuI酶，加入ddH2O补足体积至40μl，37℃温浴3小时。然后将酶切体系在1％的琼脂糖凝胶中通过电泳分离，切出500bp大小的DNA条带，用胶回收纯化试剂盒纯化DNA。具体步骤同上。
将pZT43(PvuI/CIP)和MCK增强子DNA片段(PvuI)连接，连接反应同上。
将连接产物转化到E.coli的感受态细胞中。具体步骤同上，除了只用博莱霉素进行抗性筛选。
克隆生长出来后，挑单克隆菌落至3ml含博莱霉素的LB培养液中，37℃震荡培养12小时，提取质粒DNA，用PvuI酶切鉴定，阳性克隆中可得到7.5kb和0.5kb的两条DNA条带。再通过测序进一步确定阳性克隆的正确性，得到的克隆即为pZT52。
Claims (1)
1.一种提高猪的瘦肉率、肌间脂肪含量和生殖能力的转基因载体，其特征在于，该转基因载体含有小鼠的肌酸激酶增强子、2kb猪的α-骨骼肌肌动蛋白基因的启动子、猪的PEPCK-C的cDNA和牛生长激素基因的3’端不翻译区域，且带有哺乳动物细胞中筛选用的抗性基因--嘌呤霉素基因和原核细胞中筛选用的抗性基因-博莱霉素基因。
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|---|---|---|---|---|
| CN108823210A (zh) * | 2018-07-18 | 2018-11-16 | 华中农业大学 | 猪肌肉组织特异性高效表达的启动子及应用 |
| CN111690687A (zh) * | 2020-07-28 | 2020-09-22 | 华南农业大学 | 促进骨骼肌发育的方法和应用 |
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2011
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