附图简述
通过参照附图阅读对某些示例性实施方案的描述,本发明的上述和/或其他方面将更加显而易见,其中:
图1是示出了根据本发明一个实施方案的三羰基锝-99m标记之环RGD衍生物在/从肿瘤模型小鼠体内的摄取率和排泄率之测量结果的图;
图2是示出了根据本发明另一个实施方案的三羰基锝-99m标记之环RGD衍生物在/从肿瘤模型小鼠体内的摄取率和排泄率之测量结果的图;
图3是示出了根据本发明又一个实施方案的三羰基锝-99m标记之环RGD衍生物在/从肿瘤模型小鼠体内的摄取率和排泄率之测量结果的图;
图4是肿瘤模型小鼠体内的根据本发明的一个实施方案的三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物的SPECT图像。
图5是肿瘤模型小鼠体内的根据本发明的另一个实施方案的三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物的SPECT图像。
图6是肿瘤模型小鼠体内的根据本发明的又一个实施方案的三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物的SPECT图像。
图7是示出了根据本发明的一个实施方案的三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物在肿瘤模型小鼠体内时间依赖方式的器官摄取水平和摄取比值,以及每个时间的肿瘤与肝、肿瘤与肾、肿瘤与正常细胞的摄取率。
图8是在小鼠施用环RGD衍生物(cRGDyV,18mg/kg)后肿瘤模型小鼠体内的根据本发明的一个实施方案的三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物的SPECT图像。
图9示出了根据本发明的一个实施方案的三羰基铼-188标记的环RGD衍生物对模型小鼠肿瘤大小和体重的影响。
图10是表明根据本发明的一个实施方案的三羰基铼-188标记的环RGD衍生物对模型小鼠肿瘤大小和体重之影响的SPECT图像和在目标器官区域之摄取率的图。
图11在施用根据本发明的一个实施方案的三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物后使用CD-31血液染色和Q-点-二聚体RGD衍生物得到的共聚焦显微镜图像,表明了三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物对肿瘤大小和肿瘤中摄取率的影响。
发明详述
接下来将详细说明本发明。
本发明提供了化学式1所示三羰基锝-99m或铼标记的环RGD衍生物或其可药用盐:
[化学式1]
其中,M是99mTc、188Re或185/187Re,
R1 是N,N(CH2CH2O)nCH2CH2CONH或N(CH2CONH)nCH2CH2CONH,
A1和A2各自是选自天冬氨酸、赖氨酸、谷氨酸、酪氨酸、半胱氨酸、苏氨酸和丝氨酸的氨基酸,
R2是NH或NH(Z)nCH2CH2CONH,
Z是-CH2CH2O-或-CH2CONH-,
N是0至8的整数,
R3是H或OH,
R4是-(CH2)m-或-(CH2)m-COO-,
M是1至8的整数,并且
Y与R1直接相连或与X中的R2相连。
根据本发明的三羰基锝-99m或铼标记的环RGD衍生物可优选选自如下所示的一组化合物:
[化学式1A]
[化学式1B]
[化学式1C]
其中,M、R1、R2、R3、R4、A1和A2如化学式1中的定义。
根据本发明的一个优选实施方案的化学式1所示三羰基锝-99m或铼标记的环状衍生物如下。
根据本发明的一个优选实施方案的化学式1所示三羰基锝-99m或铼-188标记的环状衍生物如下。
1)环{(三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸};
2)环{(三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸};
3)环{(三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸};
4)环{(三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-NH2(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸};
5)环{(三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-NH2(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸};
6)环{(三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-NH2(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸};
7)环{(三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-甘氨酸-CONH(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸};
8)环{(三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-甘氨酸-CONH(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸};
9)环{(三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-甘氨酸-CONH(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸};
10)(三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2;
11)(三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2;
12)(三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2;
13){三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2,n=0至8);
14){三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2,(n=0至8);
15){三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2,(n=0至8);
16){三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-{(聚乙二醇)n-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]}2,(n=0至8);
17){三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-{(聚乙二醇)n-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]}2,(n=0至8);
18){三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-{(聚乙二醇)n-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]}2,(n=0至8);
19)(三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-{天冬氨酸-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2}4;
20)(三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-{天冬氨酸-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2}4;
21)(三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-{天冬氨酸-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2}4;
22){三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-{天冬氨酸-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2}4,(n=0至8);
23){三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-{天冬氨酸-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2}4,(n=0至8);
24){三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-{天冬氨酸-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2}4,(n=0至8);
25){三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-{天冬氨酸-(聚乙二醇)n-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2}4,(n=0至8);
26){三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-{天冬氨酸-(聚乙二醇)n-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2}4,(n=0至8);以及
27){三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)n-天冬氨酸}-{天冬氨酸-(聚乙二醇)n-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2}4,(n=0至8)。
根据本发明的化学式1的环RGD衍生物可包含1至4个RGD环。
可以以可药用盐的形式使用根据本发明的化学式1所示环RGD衍生物。所述可药用盐可有利地是由药学上或生物学上可接受的多种有机酸或无机酸形成的酸加成盐。合适的有机酸可包括例如羧酸、膦酸(phosphonicacid)、磺酸、乙酸、丙酸、辛酸、癸酸、乙醇酸、乳酸、富马酸、琥珀酸、己二酸、苹果酸、酒石酸、柠檬酸、谷氨酸、天冬氨酸、马来酸、苯甲酸、水杨酸、邻苯二甲酸、苯乙酸、苯磺酸、2-萘磺酸、硫酸甲酯、硫酸乙酯或硫酸十二酯,且合适的无机酸可包括例如盐酸、硫酸或磷酸。
根据本发明的化学式1所示环RGD衍生物可不仅包含可药用盐,而且可包含可用已知方法制备的任何盐、水合物和溶剂合物。
此外,本发明提供了用于制备化学式1的环RGD衍生物的方法。
具体地,可通过反应式1和2所示方法制备根据本发明的环RGD衍生物。
制备方法1
根据本发明,如反应式1所示,通过包括以下步骤的方法制备标记有放射性同位素(即,三羰基锝-99m或三羰基铼-188)的环RGD衍生物:用式2前体化合物与具有锝-99m或铼-188的三羰基部分反应以制备标记有三羰基锝-99或三羰基铼-188的环RGD衍生物。
[反应式1]
其中,M是99mTc或188Re,R1、X和Y如化学式1中的定义。
具体地,可按以下制备标记有三羰基锝-99m或三羰基铼-188的环RGD衍生物:将三羰基锝-99m或三羰基铼-188化合物(99mTc(CO)3(H2O)3 +或188Re(CO)3(H2O)3 +)在0.5~5mL蒸馏水溶剂中稀释,将其放到具有与化学式2前体的容器中,通过在70~80℃下加热(对于锝-99m标记,加热30分钟,或者对于铼-188标记,加热60分钟)使内容物反应。
对于根据本发明的制备方法1,三羰基锝-99m或三羰基铼-188化合物可通过已知的方法或优选地通过以下文献的方法合成:
参考文献:
Alberto,R.,Schibli,R.,Egli,A.,Schubiger,A.P.,Abram,U.,Kaden,T.A.,J.Am.Chem.Soc.1998,120:7987-7988;Alberto,R.,Schibli,R.,Schubiger,A.P.,Abram,U.,Pietzsch,H-P.,Johannsen,B.,J.Am.Chem.Soc.1999,121:6076-6077;Schibli,R.,Netter,M.,Scapozza,L.,Birringer,M.,Schelling,P.,Dumas,C.,Schoch,J.,Schubiger,P.A.,J.Organomet.Chem.2003,668:67-74;Schibli,R.,Schwarzbach,R.,Alberto,R.,Ortner,K.,Schmalle,H.,Dumas,C.,Egli,A.,Schubiger,P.A.Bioconjuate Chem.2002,13:750-756。
可额外地将所制备的标记有三羰基锝-99m或三羰基铼-188的环RGD衍生物在室温冷却并且通过tC18 Sep-Pak盒(
cartridge)或高效液相色谱(HPLC)分离/纯化。
制备方法2
在本发明的一个实施方案中,可通过包括以下步骤的方法制备引入了非放射性同位素(即,三羰基185/187Re)的环RGD衍生物:将(NEt4)2Re(CO)3Br3放入化学式2的前体中,使内容物反应以形成化学式1a的引入了三羰基185/187Re的环RGD衍生物,如以下反应式所示:
[反应式2]
其中,R1、X和Y如化学式1中的定义,并且化学式1a包含在化学式1中。
具体地,可按以下制备化学式1a的引入了三羰基185/187Re的环RGD衍生物:将试剂(NEt4)2Re(CO)3Br3在0.5~5mL蒸馏水溶剂中稀释,将所得物放到装有化学式2前体的反应容器中,通过在70~80℃下加热55~65分钟使内容物反应。
化学式1a的引入了三羰基185/187Re的环RGD衍生物是反应式1的标记有三羰基锝-99m或三羰基铼-188的环RGD衍生物的标准化合物,并且与标记有三羰基铼-188的环RGD衍生物相同,因此在HPLC中具有与标记有三羰基锝-99m的环RGD衍生物相同的保留时间(有约1~2分钟的差异)。
可额外地将引入有所制备185/187Re的环RGD衍生物在室温下冷却,并用tC18 Sep-Pak盒或高效液相色谱(HPLC)分离/纯化。
此外,本发明提供了用于诊断或治疗(放射治疗)血管发生相关疾病的药物组合物,其包含式1的三羰基锝-99m或铼-188标记的环RDG衍生物或其可药用盐作为活性组分。
此外,本发明提供了用于诊断血管发生相关疾病的方法,其包括向对象施用诊断有效量的式1三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物或其可药用盐的步骤。
此外,本发明提供了用于治疗血管发生相关疾病的方法,其包括向对象施用治疗有效量的式1三羰基铼-188标记的环RGD衍生物或其可药用盐的步骤。
根据本发明的式1环RGD衍生物是这样的化合物,其中三羰基锝-99m、三羰基铼-188或三羰基铼反应物与由胺和两个羟基羰基甲基组成的标记口袋相连,以形成具有三个羰基、胺以及两个羟基的以锝-99m为中心的八面体结构。
式1的环RGD衍生物可构成单体、二聚体、四聚体的环RGD,其中二聚的环RGD二聚体(当构建时)与整合素αvβ3(肿瘤血管发生的生物标志物)具有较高的亲和力,并且通过向天冬氨酸引入多个聚乙二醇链(环RGD与标记基团之间的接头),从而形成了环RGD二聚体可同时与两个整合素αvβ3结合的二价结构,可以获得较高分辨率的肿瘤图像并且基于此可获得较好的治疗效果。基于在肿瘤移植小鼠中观察到的体内分布,证实由于血管内皮细胞中包含三羰基锝-99m或三羰基铼-188环RGD衍生物的口袋基团(pocket group)的负电荷(-),具有环RGD二聚体的化合物迅速从肝和大肠排泄。因此,获得了较高的肿瘤与正常器官比值。
此外,通过构建环RGD四聚体,以及通过向天冬氨酸引入多个聚乙二醇链(环RGD与标记基团之间的接头),根据本发明的式1环RGD衍生物可与整合素αvβ3(用于肿瘤诱导血管发生的生物标志物)具有较高的亲和力,形成了在其中环RGD四聚体可同时与多个αvβ3整合素结合的结构。结果,可以得到较高摄取的肿瘤图像,并且基于此可获得较好的治疗效果。
此外,构成环RGD四聚体的环RGD衍生物也对αvβ3整合素具有高亲和力,并且迅速从肝和大肠排泄,这是因为血管内皮细胞中的包含三羰基锝-99m或三羰基铼-188标记之环RGD衍生物的口袋基团的负电荷(-)。
因此,根据本发明的式1环RGD衍生物在肿瘤诱导血管发生中对整合素αvβ3(所谓的玻连蛋白受体)具有亚纳摩尔水平的高水平亲和力,因此从初始摄入了三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物的肿瘤移植动物中获得了高摄取的肿瘤图像,并且相比于常规已知的放射性同位素标记的环RGD衍生物,肝和大肠的摄入率显著降低,据此提供了特异性针对具有活化的αvβ3整合素的阳性整合素αvβ3癌细胞的更好的成像和专一作用。此外,与仅注射盐水溶液的肿瘤动物模型相比,当向尾静脉注射后,铼-188标记的衍生物(与锝-99m标记中使用相同前体的治疗性放射性核素)表现出了有效的肿瘤生长抑制和抗血管发生作用。因此,根据本发明的式1的环RGD衍生物可有利地用作为诊断或治疗(放射治疗)血管发生相关疾病定制的药物。
可按以下进行诊断:向对象静脉内注射三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物或其可药用盐,并通过SPECT检查血管发生相关疾病的存在,并且当获取癌症血管发生图像时,通过使用三羰基铼-188标记的RGD衍生物(其使用相同的前体)来进行定制治疗(放射治疗)。
在一个实施方案中,血管发生相关疾病可优选地包括过量表达整合素α
vβ
3的疾病,例如血栓形成(
brombosis)、心肌缺血、实体肿瘤或转移肿瘤。
以取决于患者的年龄、体重、性别、剂型、健康状况、疾病之严重程度的多种量通过静脉内注射施用根据本发明的式1环RGD衍生物或其可药用盐用于临床应用。例如对于重70kg的成年患者,对于诊断目的,一般可施用1~20mCi/剂量、优选3~7mCi/剂量或根据医生或药剂师的决定而施用,施用可以以预定时间间隔分开,例如,每天一次或每天多次。对于治疗目的,可施用1~1000mCi/剂、优选1~500mCi/剂或根据医生或药剂师的决定而施用,施用可以以预定时间间隔分开,例如,每天一次或每天多次。
此外,本发明提供了用于标记三羰基锝-99m或铼-188的化学式2所示环RGD衍生物前体。
[化学式2]
其中R1、X和Y参照上文中化学式1中的定义。
优选地,用于标记三羰基锝-99m或铼-188的环RGD衍生物前体可选自化学式2A至2C所示化合物。
[化学式2A]
[化学式2B]
[化学式2C]
其中,M、R1、R2、R3、R4、A1和A2参照化学式1中的定义。
以下将参照实施例对用于标记三羰基锝-99m或铼-188之环RGD衍生物前体的制备进行说明,但是本发明并不仅限于具体的实施例。
在下文中,将参考实施例对本发明的实施方案进行详细说明。但是,本发明并不仅限于任何具体的实施例。
<制备实施例1>制备用于三羰基锝-99m或铼-188标记的环RGD衍生物前体的原料(3)
参照以下合成式3化合物,其用作根据本发明三羰基锝-99m或铼-188标记的环RGD衍生物前体的原料:
Haubner,R.,Wester,H-J.,Reuning,U.,Senekowitsch-Schmidtke,R.,Diefenbach,B.,Kessler,H.,Stocklin G.,Schwaiger,M.,J.Nucl.Med.,1999,40:1061-1071。
<制备实施例2>制备1-氨基-3,6,9,12-四氧杂十五烷-15-酸苄酯(7)
(步骤1)
在氩气气氛下将1-(N-(叔丁氧羰基)-氨基)-3,6,9,12-四氧杂十五烷酸(224mg,0.61mmol,5)溶解在乙腈(5mL)中,添加碳酸铯(CsCO3,596mg,1.83mmol)和苄基氯(211μL,1.83mmol),将反应混合物在80℃下搅拌30分钟然后冷却至室温。在真空下除去溶剂,通过柱色谱得到纯的化合物(6)。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ7.38-7.30(m,5H),5.14(s,2H),3.77(t,J=6.4Hz,2H),3.64-3.59(m,12H),3.53(t,J=5.0Hz,2H),3.30(m,2H),2.65(t,J=6.4Hz,2H),1.44(s,9H)。
(步骤2)
将在步骤1中制备的式6化合物(260mg,0.57mmol)溶解在二氯甲烷(10mL)中,在0℃下添加三氟乙酸(TFA,1mL)。在室温下搅拌1小时后,添加饱和NaHCO3(25mL)。在用二氯甲烷萃取(100mL×3)后,在真空下除去有机层得到1-氨基-3,6,9,12-四氧杂十五烷-15-酸苄酯(7)。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ7.53(s,5H),5.14(s,2H),3.78(t,J=6.2Hz,2H),3.65-3.62(m,12H),3.58(t,J=4.8Hz,2H),2.93(brs,2H),2.66(t,J=6.2Hz,2H),2.51(brs,2H)。
<制备实施例3>制备三羰基锝-99m或三羰基铼-188部分(99mTc(CO)3(H2O)3 +或188Re(CO)3(H2O)3 +)
利用以下文献中公开的方法制备用于标记的三羰基锝-99m或三羰基铼-188部分:
Alberto,R.,Schibli,R.,Egli,A.,Schubiger,A.P.,Abram,U.,Kaden,T.A.,J.Am.Chem.Soc.1998,120:7987-7988;Alberto,R.,Schibli,R.,Schubiger,A.P.,Abram,U.,Pietzsch,H-P.,Johannsen,B.,J.Am.Chem.Soc.1999,121:6076-6077;Schibli,R.,Netter,M.,Scapozza,L.,Birringer,M.,Schelling,P.,Dumas,C.,Schoch,J.,Schubiger,P.A.,J.Organomet.Chem.2003,668:67-74;Schibli,R.,Schwarzbach,R.,Alberto,R.,Ortner,K.,Schmalle,H.,Dumas,C.,Egli,A.,Schubiger,P.A.Bioconjuate Chem.2002,13:750-756。
<实施例1-5>制备根据本发明三羰基锝-99m或铼-188标记的环RGD衍生物的前体
<实施例1>制备环{(三羰基-N-α-双-羟基羰基甲基-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸}(2a)
(步骤1)
将制备实施例1中制备的式3化合物(240mg,0.26mmol)和溴乙酸叔丁酯(115mL,0.77mmol)溶解在乙腈(CH3CN,5mL)和N,N′-二异丙基乙胺(DIEA,130μL,0.77mmol)中,将反应混合物在50℃下搅拌12小时。在真空下除去溶剂,通过使用有机溶剂(甲醇和二氯甲烷(10∶90=MeOH∶CH2Cl2)溶液)的柱色谱分离式4化合物。
MALDI-TOF MS(M+Na+)=1163.4
(步骤2)
将步骤1中制备的式4化合物溶解在TFA∶Et3SiH∶H2O(95∶2.5∶2.5,10mL)中。将反应混合物在室温搅拌12小时后,将溶液在真空下完全蒸发,然后过滤通过添加乙醚而得到的固体。将所得白色固体用乙醚充分洗涤,干燥。结果,制备了式2a化合物。
MALDI-TOF MS(M+Na+)=720.8
<实施例2>制备环{(三羰基-N-α-双-羟基羰基甲基-甘氨酸-CONH(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸}(2b)
(步骤1)
利用实施例1中步骤1的方法制备式9化合物,只是区别在于用式8的甘氨酸甲酯盐酸盐代替式3化合物。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ3.71(s,3H),3.64(s,2H),3.53(s,4H),1.44(s,18H)。
(步骤2)
将步骤1中制备的式9化合物(550mg,1.73mmol)溶解在甲醇(MeOH,10mL)中,添加1M氢氧化锂(1M LiOH,3.4mL,3.4mmol)。在50℃下搅拌1小时后,加入1N盐酸(1N HCl,3.8mL,2.2mmol)中和。在真空下除去溶剂,得到式10化合物。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ3.48(s,2H),3.47(s,4H),1.48(s,18H)。
(步骤3)
在氩气下将在步骤2中制备的式10化合物(60mg,0.19mmol)与N-羟基苯并三唑(51mg,0.38mmol)和O-苯并三唑-N,N,N′,N′-四甲基-脲-六氟磷酸盐(144mg,0.38mmol)一起溶解在N,N′-二甲基甲酰胺(5mL)中。搅拌30分钟后,加入在制备实施例2中制备的式7化合物(47mg,0.13mmol)和N,N’-二异丙基乙胺(133mL,0.762mmol),在室温搅拌16小时。在真空下除去N,N′-二甲基甲酰胺,通过柱色谱分离得到目标化合物(11)。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ8.09(brs),7.34(brs,5H),5.13(s,2H),3.76-3.36(m,22H),2.65-2.64(m,2H),1.45(s,18H)。
(步骤4)
在氮气气氛下加入10%钯炭(10% Pd/C,34mg,0.032mmol),将溶解在甲醇(5mL)中的步骤3的式11化合物(70mg,0.11mmol)加入到反应混合物中。将反应容器内部换成氢气,在氢气下于室温下搅拌16小时。通过硅藻土滤器将钯滤掉,通过在真空下除去甲醇得到目标化合物(12)。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ9.02(brs),8.20(brs),3.75-3.70(m,2H),3.63-3.56(m,14H),3.52-3.47(m,2H),3.38-3.36(m,2H),2.57(t,J=6.0Hz),1.44(s,18H)。
(步骤5)
利用与实施例2中步骤5相同的方法制备目标化合物(13),只是区别在于用步骤4中式12化合物和制备实施例1中式3化合物作为反应原料。
ESI MS(M+H+)=1444.7
(步骤6)
利用与实施例1中步骤1相同的方法制备目标化合物(2b),只是区别在于利用步骤5中式13化合物作为原料。
ESI MS(M+H+)=1024.5。
<实施例3>制备(三羰基-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2(2c)
(步骤1)
利用与实施例1中步骤1相同的方法制备目标化合物(15),只是区别在于用O,O′-二苄基天冬氨酸盐酸盐作为原料。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ7.36-7.26(m,10H),5.14-5.06(m,4H),3.99(dd,J=9.2,5.2Hz,1H),3.61-3.50(m 4H),2.94(dd,J=16.8,9.6Hz,1H),2.82(dd,J=16.4,5.6Hz,1H),1.42(s,18H)。
(步骤2)
利用与实施例2中步骤2相同的方法制备目标化合物(16),只是区别在于用步骤1中的式15化合物作为原料。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ9.60(brs,2H),3.90(t,J=6.6Hz,1H),3.55-3.40(m,4H),2.98(dd,J=16.4,5.2Hz,1H),2.66(dd,J=16.8,7.6Hz,1H),1.46(s,18H)。
(步骤3)
利用与实施例2中步骤5相同的方法制备目标化合物(17),只是区别在于用步骤2中的式16化合物作为原料。
MALDI-TOF MS(M+Na+)=2171.06
(步骤4)
利用与实施例1中步骤2相同的方法制备目标化合物(2c),只是区别在于用步骤3中的式17化合物作为原料。
ESI MS(M+H+)=1420.5
<实施例4>制备{三羰基-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸}-{(聚乙二醇)4-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D苯丙氨酸)]}2 (2d)
(步骤1)
使用与实施例2中步骤5相同的方法制备式18化合物,只是区别在于用式16化合物代替式3化合物作为原料。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ8.46(brt,1H),7.38-7.30(m,10H),6.84(brs,1H),5.13(s,4H),3.87(t,J =6.4Hz,1H),3.77(t,J=6.4Hz,4H),3.63-3.61(m,24H),3.57-3.53(m 4H),3.51-3.42(m 6H),3.31-3.27(m,2H),2.81(dd,J=10.8,6.4Hz,1H),2.65(t,J=6.6Hz,4H),2.38(dd,J=14.8,6.4Hz,1H),1.44(s,18H)。
(步骤2)
使用与实施例2中步骤6相同的方法制备式19化合物,只是区别在于用步骤1中的式18化合物作为原料。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ8.57(brt,1H),7.82(brs,1H),5.13(s,4H),3.92(t,J=6.6Hz,1H),3.77-3.70(m,4H),3.64-3.55(m,31H),3.47-3.30(m 2H),3.34-3.29(m 3H),2.81(dd,J=22,7.2Hz,1H),2.59(t,J=12Hz,4H),2.46(dd,J=20.4,5.2Hz,1H),1.45(s,18H)。
(步骤3)
使用与实施例2中步骤5相同的方法制备式20化合物,只是区别在于用步骤2中的式19化合物和制备实施例1中的式3化合物作为原料。
MALDI-TOF MS(M+Na+)=2665.87
(步骤4)
使用与实施例1中步骤2相同的方法制备目标化合物(2d),只是区别在于用步骤3中式20化合物作为原料。
MALDI-TOF MS(M+Na+)=1914.65
<实施例5>制备{三羰基-N-α-双-羟基羰基甲基-(聚乙二醇)4-天冬氨酸}-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2 (2e)
(步骤1)
使用与实施例1中步骤1相同的方法制备式21化合物,只是区别在于用制备实施例2中的式7化合物作为原料。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ7.37-7.34(m,5H),5.14(s,4H),3.77(t,J=6.4Hz,2H),3.63-3.58(m,14H),3.49(s 4H),2.94(t,J=5.8Hz 2H),2.65(t,J=6.6Hz 2H),1.45(s,18H)。
(步骤2)
使用与实施例2中步骤6相同的方法制备式22化合物,只是区别在于用在步骤1中制备的式21化合物作为原料。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ7.97(brs,1H),3.74(t,J=5.8Hz,2H),3.64-3.60(m,14H),3.50(s,4H),2.95(t,J=5.0Hz,2H),2.57(t,J=5.6Hz,2H),1.44(s,18H)。
(步骤3)
使用与实施例2中步骤5相同的方法制备式23化合物,只是区别在于用在步骤2中制备的式22化合物和O,O′-二苄基天冬氨酸盐酸盐作为原料。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ7.36-7.27(m,10H),5.13(d,J=1.6Hz,2H),5.06(d,J=0.8Hz,2H),4.94-4.90(m,1H),3.67(t,J=5.8Hz,2H),3.64-3.55(m,14H),3.47(s,4H),3.06(dd,J=22,4.8Hz,1H),2.94-2.87(m,3H),2.49(td,J=6.8,2.0Hz,2H),1.44(s,18H)。
(步骤4)
使用与实施例2中步骤6相同的方法制备式24化合物,只是区别在于用步骤3中式23化合物作为原料。
1H NMR(400MHz,CDCl3)δ 9.49(brs,1H),7.61(brd,J=4.4Hz,1H),4.69(brs,1H),3.68-3.41(m,20H),2.99-2.94(m,3H),2.78(dd,J=24,7.2Hz,1H),2.52(brs,1H),1.45(s,18H)。
(步骤5)
使用与实施例2中步骤5相同的方法制备式25化合物,只是区别在于用在步骤4中制备的式24化合物和在制备实施例1中制备的式3化合物作为原料。
MALDI-TOF MS(M+Na+)=2418.70
(步骤6)
使用与实施例1中步骤2相同的方法制备式(2e)化合物,只是区别在于用步骤5中的式25化合物作为原料。
MALDI-TOF MS(M+H+)=1667.8
<实施例6>制备环{(三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸}
将在实施例1中制备的式2a前体化合物(2.6mg,0.002mmol)和双-(N-四乙基)-三溴三羰基铼((NEt4)2ReBr3(CO)3,1.6mg,0.0025mmol)溶解在水∶甲醇(v/v=1/1,1mL)中。搅拌1小时20分钟后,利用氮气除去溶剂。用HPLC纯化溶解在水中的目标化合物,用MALDI-TOF质谱分析目标化合物。
(MALDI-TOF MS(M+H+)=990.85)。
对于HPLC,流动相为含有0.1%三氟乙酸的乙腈(20%)/蒸馏水(80%),并且流动相在30分钟时升高至90∶10,并且HPLC柱为C18柱(YMC,5μm,10×250mm)。流动相以每分钟2mL流动。在21.8分钟时作为UV-检测器(214nm,UV)的检测结果检测到实施例6的目标化合物。
<实施例7>制备环{(三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-甘氨酸-CONH(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸}
使用与实施例6相同的方法合成目标化合物,只是区别在于用实施例2中制备的式2b前体化合物代替实施例1中制备式2a前体化合物,用MALDI-TOF质谱分析目标化合物。(MALDI-TOF MS(M+H+)=1293.4)。
使用与以上实施例6中所说明的相同的HPLC分离条件进行分离,在21.6分钟时通过UV-检测器(214nm)检测出实施例7的目标化合物。
<实施例8>制备(三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2
使用与实施例6相同的方法合成目标化合物,只是区别在于用实施例3中制备的式2c前体化合物代替实施例1中制备式2a前体化合物,并且用ESI质谱分析目标化合物。(ESI MS(M+H+)=1688.5)。
使用与以上实施例6所说明的相同的HPLC分离条件进行分离,在19.2分钟时用UV-检测器(214nm)检测出实施例8的目标化合物。
<实施例9>制备(三羰基-[185/187Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-甘氨酸-CONH(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2
使用与实施例6相同的方法合成目标化合物,只是区别在于用实施例5中制备的式2e前体化合物代替实施例1中制备式2a前体化合物,用ESI质谱分析目标化合物。(ESI MS(M+H+)=2007.7)。
使用与以上实施例6所说明的相同的HPLC分离条件进行分离,在20.8分钟时用UV-检测器(214nm)检测实施例9的目标化合物。
<实施例10>制备环{(三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸}
将铵基硼烷(Ammoniumboran)(NH2-BH3复合物,5mg)添加到10mL具橡胶帽的小瓶中。在引入10分钟的CO气体后,添加磷酸(H3PO4,6μL)和188ReO4 -(10mCi,1mL)。在60℃下搅拌15分钟(同时插有20mL的空注射器以使内部压力尽可能小)后反应完成。冷却至室温后,添加100mM PBS(200μL)和饱和碳酸氢钠(50μL)中和,从而合成铼三羰基化合物[188Re(H2O)3(CO)3 +],通过放射性-TLC(Radio-TLC)确证反应化合物的合成。
添加[188Re(H2O)3(CO)3 +]和实施例10中制备的式2a前体化合物(0.5mg),在75℃下加热60分钟,然后在冰水中冷却。在通过tC18 Sep-Pak盒纯化后,将所收集的溶液通过HPLC纯化。
对于HPLC,使用与实施例6相同的条件,在21.8分钟时用γ-射线检测器(NaI)检测出实施例10的目标化合物。这与实施例6化合物在检测器(UV 214nm)中的保留时间一致。达到了50~60%(经衰变修正)的放射化学收率,放射化学纯度超过97%。
<实施例11>制备环{(三羰基-[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-甘氨酸-CONH(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸}
使用与实施例11中所使用的相同方法制备目标化合物,只是用实施例2中式2b前体化合物代替实施例1中式2a前体化合物。
对于HPLC,使用与实施例6相同的条件,在21.6分钟时用γ-射线检测器(NaI)检测出实施例11的目标化合物。这与实施例7中化合物在检测器(UV 214nm)中的保留时间一致。达到了50~60%(经衰变修正)的放射化学收率,放射化学纯度超过97%。
<实施例12>制备(三羰基[188Re]铼-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2
使用与实施例12所使用的相同方法制备目标化合物,只是用实施例3中式2c前体化合物代替实施例1中式2a前体化合物。
对于HPLC,使用与实施例6相同的条件,在19.2分钟时用γ-射线检测器(NaI)检测出实施例12的目标化合物。这与实施例8中化合物在检测器(UV 214nm)中的保留时间一致。达到了50~60%(经衰变修正)的放射化学收率,放射化学+纯度超过97%。
<实施例13>制备环{(三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸}
将碳酸钠(Na2CO3,4mg)、硼氢化钠(NaBH4,5.5mg)和脱水L-酒石酸钠(5mg)添加到10mL具橡胶帽的小瓶中,引入CO气体10分钟。通过注射器从发生器中添加TcO4 -(10mCi,1mL),向橡胶帽中插入20mL的空注射器以使内部压力尽可能小。将小瓶在75℃下加热25分钟。在冰水中冷却后,加入100mM磷酸盐缓冲盐水(PBS,200μL)和1N HCl(180L)中和。通过放射性-TLC确证三羰基锝-99m化合物[99mTc(H2O)3(CO)3 +]的合成。添加[99mTc(H2O)3(CO)3 +]和在实施例1中制备的式2a前体化合物(0.5mg),在75℃下加热60分钟,然后在冰水中冷却。在通过tC18 Sep-Pak盒纯化后,将所收集的溶液通过HPLC纯化。
对于HPLC,流动相为含有0.1%三氟乙酸的乙腈(20%)/蒸馏水(80%),并且流动相在30分钟时升高至90∶10,并且使用的HPLC柱为半制备型C18柱(YMC,5μm,10×250mm)。流动相以每分钟2mL流动。在20.6分钟时作为UV-检测器(214nm,UV)的检测结果而检测出实施例6的目标化合物。因此,注意到与实施例13的目标化合物在检测器(UV 214nm)上检测到的保留时间(21.8分钟)有一分钟的差异。达到了60~70%(经衰变修正)的放射化学收率,放射化学纯度超过97%。<实施例14>制备环{(三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-甘氨酸-CONH(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸}
使用与实施例13所使用的相同方法制备目标化合物,只是用实施例2中式2b前体化合物代替实施例1中式2a前体化合物。
对于HPLC,使用与实施例6相同的条件,在21.4分钟时用γ-射线检测器(NaI)检测出实施例14的目标化合物。因此,注意到与实施例18的目标化合物在检测器(UV 214nm)上检测到的保留时间(21.6分钟)有0.2分钟的差异。达到了60~70%(经衰变修正)的放射化学收率,放射化学纯度超过97%。
<实施例15>制备(三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-天冬氨酸)-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2
使用与实施例13所使用的相同方法制备目标化合物,只是用实施例3中式2c前体化合物代替实施例1中式2a前体化合物。
对于HPLC,使用与实施例6相同的条件,在18.4分钟时用γ-射线检测器(NaI)检测出实施例15的目标化合物。因此,注意到与实施例8的目标化合物在检测器(UV 214nm)上检测到的保留时间(19.2分钟)有0.8分钟的差异。达到了60~70%(经衰变修正)的放射化学收率,放射化学纯度超过97%。
<实施例16>制备(三羰基-[99mTc]锝-N-α-双-羟基羰基甲基-甘氨酸-CONH(CH2CH2O)4CH2CH2CONH-赖氨酸)-[环(赖氨酸-精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸-D-苯丙氨酸)]2
使用与实施例13所使用的相同方法制备目标化合物,只是用实施例5中式2e前体化合物代替实施例1中式2a前体化合物。
对于HPLC,使用与实施例6相同的条件,用γ-射线检测器(NaI)在19.9分钟检测出实施例16的目标化合物。因此,注意到与实施例9的目标化合物在检测器(UV 214nm)上检测到的保留时间(20.8分钟)有0.9分钟的差异。达到了50~70%(经衰变修正)的放射化学收率,放射化学纯度超过97%。
在实施例13至16的化合物中,将实施例6至8化合物的非放射性同位素185/187Re换成放射性同位素99mTc,因此,通过质谱验证的实施例6、7、8的各自化合物与实施例13、14、16的化合物之间的HPLC保留时间(tR)有约1分钟的差异。因此,由于大部分前体都以高收率地被标记,证实了实施例13至16的化合物仅有锝-99m的改变(锝和铼在周期表中属于同一金属离子家族,并且与相同的前体具有相同的反应性)。
<实验实施例1>测量三羰基锝-99m或铼-188标记的环RGD衍生物的生物活性
<1-1>测量亲和力(IC 50 )
进行以下实验以研究根据本发明的三羰基锝或铼标记的环RGD衍生物与整合素αvβ3(关键的血管发生生物标志物)的结合亲和力。
将已知过量表达整合素αvβ3的人脐静脉内皮细胞(HUVEC)在含有FBS、氢化可的松、人碱性成纤维细胞生长因子(hFGF-B)、血管内皮生长因子(VEGF)、R3-IGF-1、抗坏血酸、人表皮生长因子(hEGF)、GA-1000和肝素的内皮细胞基础培养基-2(EBM-2)中于37℃、5%CO2下孵育。将1×106个HUVEC接种到eppendorf管中,加入2μCi三羰基锝-99m或铼-188标记的环RGD衍生物,同时,向每个管中加入用作竞争性反应之对照物质的0、0.01、0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、1、3、5nM环RGD(cRGDyV),然后在5%CO2下于37℃下诱导结合反应1小时。孵育后,将HUVEC用100mM PBS洗涤三次,利用γ计数器测量通过竞争反应特异性结合三羰基锝或铼标记的环RGD衍生物的放射性。利用所测量的辐射能和单位浓度竞争反应对照物质的值构建非线性回归曲线,并基于该曲线计算IC50。对于IC50的计算,使用sigma plot软件。
随后测量下表中所列出的与整合素αvβ3的结合亲和力(IC50)。
[表1]
|
IC50(nM) |
实施例10 |
1.4 |
实施例12 |
0.5 |
实施例13 |
1.6 |
实施例14 |
1.2 |
实施例15 |
0.4 |
实施例16 |
0.5 |
参看表1,实施例13和10的化合物(各自是引入了一个环RGD的衍生物)分别表现出1.6nM和1.4nM的IC50,因此表明这样的事实:当使用相同前体而仅改变放射性同位素时,与整合素αvβ3的结合亲和力不变。实施例14还证实这样的事实:与实施例13和10相比,引入PEG接头不产生太大影响。实施例15和12的化合物(各自是引入两个环RGD的衍生物)分别表现出0.4nM和0.5nM的亚纳摩尔结合值,因此显示了优秀的亲和力。同样,向相同前体无论是否引入锝-99m和铼-188,与整合素αvβ3的结合亲和力都不变,引入PEG接头的实施例16与实施例12和15之间在结合亲和力上没有显著影响。
因此,证实随着所引入的环RGD数目的增加,根据本发明的环RGD衍生物表现出更高的与整合素的结合亲和力。
<1-2>对三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物在/从肿瘤模型小鼠体内肿瘤和正常器官中摄取和排泄的评价
使用先天性缺失甲状腺的小鼠(7周龄,BALB/c-nu Sic品系,下文中称为“裸鼠”),通过三种类型的根据本发明的三羰基锝-99m标记的环RGD衍生物(实施例13至15)的实验研究在肿瘤和正常器官中的摄取率和排泄率。
为了在裸鼠中形成肿瘤,皮下注射人成胶质细胞瘤U87-MG细胞(1×106/100μL于PBS中),在约2周的生长期后形成了0.4~0.5cc大小的肿瘤的模型被用于实验。
将实施例13~15中制备的化合物溶解在盐水中,以100μL(20μCi)注射到每只模型的尾静脉中。体内分布的时间过程设定为10、30、60、120、240分钟,每个时间使用4~5个模型。在每个时间处死小鼠,并取出血液、肿瘤和各器官(包括肝、肺、脾、肾、小肠、大肠、甲状腺、肌肉、脑),对各器官进行称重(g),利用γ计数器测量药物的放射性。以%ID/g(百分注射剂量/克)为单位计算各器官的放射性,如图1~3所示。%ID/g通过下式计算:
[数学公式1]
%ID/g=(药物摄入/药物的注射量×100)/每个器官的重量(g)
测量值列在如下表2~4中。
[表2]