CN102949435A - 柿叶总黄酮抑制胰岛β细胞凋亡的应用及其提取方法 - Google Patents
柿叶总黄酮抑制胰岛β细胞凋亡的应用及其提取方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102949435A CN102949435A CN2012104727092A CN201210472709A CN102949435A CN 102949435 A CN102949435 A CN 102949435A CN 2012104727092 A CN2012104727092 A CN 2012104727092A CN 201210472709 A CN201210472709 A CN 201210472709A CN 102949435 A CN102949435 A CN 102949435A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- health product
- medicine
- application
- folium kaki
- cell
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
Abstract
本发明公开了柿叶总黄酮在制备抗糖尿病药物中的应用,柿叶总黄酮具有抑制胰岛β细胞凋亡,降低氧化应激胰岛β细胞自由基的产生,抑制氧化应激诱导的胰岛细胞凋亡,提高胰岛素分泌量,增强抗氧化酶活性的功能,用于治疗或预防糖尿病。本发明还涉及柿叶总黄酮的提取方法,包括步骤:1)用乙醇作为溶剂进行提取;2)得到的醇提液调节pH值,用石油醚和乙酸乙酯萃取后,用大孔吸附树脂处理;3)收集的洗脱液用冷冻干燥法处理得到柿叶总黄酮。
Description
技术领域
本发明涉及来源于植物材料的药用有效成分的提取方法及用途,具体涉及一种柿叶总黄酮的提取方法及其抑制胰岛β细胞凋亡的应用。
背景技术
糖尿病是一种由胰岛素分泌缺陷和(或)胰岛素抵抗而引起的,以慢性高血糖为特征的代谢紊乱疾病。随着生活水平的提高,糖尿病发生率急剧上升,目前发病率为2%。糖尿病患者的胰岛β细胞凋亡增加会导致胰岛素分泌不足和β细胞数量减少。采取有效措施抑制胰岛β细胞的凋亡,将可能最大限度的减少β细胞功能和数量的降低。糖尿病氧化应激与胰岛β细胞的凋亡和功能有着密切的关系。高糖环境下,由于线粒体呼吸链中过多生成的氧自由基,可激活多元醇途径、蛋白激酶C途径和晚期糖基化终末产物途径,后者反过来还能够促进自由基的生成,从而形成恶性循环,这是导致糖尿病各种并发症发生和发展的中心环节。胰岛β细胞内表达的抗氧化物酶如谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化氢酶(CAT),相对于其他组织都要低,这也使胰岛β细胞更容易受到氧化应激的攻击。抗氧化治疗可以减轻氧化应激,阻止或延缓糖尿病的发生发展。
柿叶是柿树科(Ebenaceae)柿属(Diospyros L.)植物柿树的新鲜或干燥叶。柿树是我国南北各地普遍栽培的一种果树,分布十分广泛,以山东、广西、山西分布较多,其他省份如安徽、河南、江苏、浙江、福建、广东、江西、湖南、湖北、陕西、甘肃等地也有一定规模的栽培。柿叶入药最早见于明《滇南本草第一卷》“柿花”项下,曰:“经霜叶敷臃疮。”《本草再新》中记载柿叶“味苦,性寒,无毒,专入肺经,治咳嗽吐血,止渴生津。”《分类草药性》亦记载柿叶可“治咳嗽气喘消肺气胀。”《广西中药材标准1990版》收载中药柿叶,其性味“苦、酸、涩、凉”,功能与主治为“清肺止咳,凉血止血,活血化癖,降血压。用于咳喘,肺气胀,各种内出血,高血压,脑动脉硬化症,冠心病。”现代药理分析表明,柿叶中含有丰富的类胡萝卜素、黄酮甙、芦丁、维生素C、胆碱等对有效药理成分。然而,我国目前柿叶基本上都被当作废物扔掉。
现代研究表明,柿叶中的主要有效成分是黄酮,黄酮类在柿叶中的总含量为121.3mg/100g。目前已发现的黄酮化合物有槲皮素(quercetin)、异槲皮素(isoquercitrin)、山萘酚(kaempferol)、山萘酚3-Ο-β-D-葡萄糖苷(kaempferol3-O-β-D-glucopyranoside)、山萘酚3-O-α-L-鼠李糖苷(kaempferol3-O-α-L-rhamnopyranoside)、山萘酚3-O-β-D-木糖苷(kaempferol3-O-β-D-xylopyramoside)、山萘酚3-O-α-L-阿拉伯糖苷(kaempferol3-O-α-L-arabinoside)、槲皮素3-O-[2″-O-(3,4,5-三羟基苯甲酰)]-葡萄糖苷(quercetin3-O-(2″-O-(galloyl)-β-D-glucopyranoside)、芦丁、金丝桃苷(槲皮素-3-半乳糖苷)、紫云英苷(astragalin)、杨梅树皮苷等。以上统称为柿叶总黄酮(persimmon leaftotal flavonoids,PLTF)。柿叶总黄酮具有显著的抗氧化活性,有望成为非常有潜力的新型天然抗氧化剂。
发明内容
本发明解决的问题在于提供柿叶总黄酮抑制胰岛β细胞凋亡的应用及其提取方法,从而有助于在糖尿病的防治过程中发挥作用。
本发明是通过以下技术方案来实现:
柿叶总黄酮在制备抗糖尿病药物和/或保健品中的应用。
所述的抗糖尿病药物和/或保健品为促进胰岛细胞增殖和提高胰岛素分泌量的药物和/或保健品。
所述的抗糖尿病药物和/或保健品为增加Bcl-2mRNA表达和/或抑制p65蛋白表达的药物和/或保健品。
所述的抗糖尿病药物和/或保健品为抑制胰岛β细胞凋亡的药物和/或保健品。
所述的抗糖尿病药物和/或保健品为减少iNOS、Caspase3、Bax mRNA表达的药物和/或保健品。
所述的抗糖尿病药物和/或保健品为增强胰岛细胞抗氧化活性的药物和/或保健品。
所述的抗糖尿病药物和/或保健品为降低胰岛细胞自由基的产生的药物和/或保健品。
所述的抗糖尿病药物和/或保健品为增强抗氧化酶活性的药物和/或保健品。
一种柿叶总黄酮的制备方法,包括以下步骤:
1)将粉碎后干燥的柿叶,按1g:10~25ml的比例加入体积浓度为50~80%的乙醇,在微波超声下,加热回流提取10~30min,滤渣重复提取至少两次,合并提取液得到醇提液;
2)将醇提液用调节pH值至5.5后,依次用石油醚和乙酸乙酯萃取,然后有机相用大孔树脂吸附,水洗至流出液无色,再用质量浓度为体积浓度为50~80%的乙醇洗脱,收集洗脱液;
3)将洗脱液减压浓缩后冷冻干燥,得到柿叶总黄酮。
所述的微波超声的频率为2000~3000MHz,功率为400~600W。
具体的所述的柿叶总黄酮提取物,经以下步骤提取得到:
1)称取粉碎的干燥柿叶,按1g:20ml的用量比加入体积浓度为75%的乙醇,在2000~3000MHz,400~600W微波条件下,加热回流提取20min,滤渣重复提取至少2次,合并各次提取液得到醇提液;
2)将醇提液用1%HCl调节PH值至5.5,依次用石油醚和乙酸乙酯萃取后,有机相用AB-8大孔树脂吸附,水洗至流出液无色,再用体积浓度为75%乙醇洗脱,收集洗脱液;
3)将洗脱液60℃减压浓缩,-60℃冷冻干燥,得到柿叶总黄酮。
与现有技术相比,本发明具有以下有益的技术效果:
糖尿病氧化应激与胰岛β细胞的凋亡和功能有着密切的关系,糖尿病患者的胰岛β细胞凋亡增加会导致胰岛素分泌不足和β细胞数量减少。而本发明公开了柿叶总黄酮(PLTF)能够促进胰岛细胞增殖和提高胰岛素分泌量,所以可以应用于制备抗糖尿病药物和/或保健品。
而且柿叶总黄酮能够降低氧化应激胰岛β细胞自由基的产生,抑制氧化应激诱导的β胰岛细胞凋亡,提高胰岛素分泌量,增强抗氧化酶活性,减少iNOS、Caspase3、Bax mRNA表达,增加Bcl-2mRNA的表达和抑制p65蛋白的表达,减轻凋亡,从而降低糖尿病的发生率。
进一步的本发明将粉碎后的柿叶,用乙醇作为溶剂进行提取,得到的醇提液调节PH值5.5,用石油醚和乙酸乙酯萃取后,用大孔吸附树脂处理,收集的洗脱液用冷冻干燥法处理得到柿叶总黄酮,提取方法步骤简单,易操作。
附图说明
图1为柿叶总黄酮对细胞生存率的影响;
图2为柿叶总黄酮抑制H2O2导致的胰岛细胞凋亡;
图3为柿叶总黄酮对H2O2损伤Min6细胞分泌胰岛素功能的影响;
图4为柿叶总黄酮对H2O2诱导胰岛细胞产生活性氧的清除作用;
图5-1为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤抗氧化指标SOD的影响;
图5-2为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤抗氧化指标CAT的影响;
图5-3为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤抗氧化指标GSH的影响;
图5-4为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤抗氧化指标MDA的影响;
图5-5为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤抗氧化指标NO的影响。
图6-1为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤Bcl-2mRNA表达水平的影响;
图6-2为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤Bax mRNA表达水平的影响;
图6-3为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤Bcl-2/Bax的影响;
图6-4为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤iNOS mRNA表达水平的影响;
图6-5为柿叶总黄酮对H2O2所致胰岛Min6细胞损伤Caspase-3mRNA表达水平的影响;
图7柿叶总黄酮引起Min6细胞NF-κB p65蛋白表达的变化(图从左到右依次为control;150μM H2O2;7.5μM PLTF+150μM H2O2;7.5μM PLTF+150μM H2O2;5μM PLTF+150μM H2O2;2.5μM PLTF+150μM H2O2;1.25μMPLTF+150μM H2O2;0.625PLTF+150μM H2O2)
具体实施方式
下面结合具体的实施例对本发明做进一步的详细说明,所述是对本发明的解释而不是限定。
1、柿叶总黄酮的提取
实施例1
提取柿叶总黄酮,包括以下步骤:
(1)称取粉碎的干燥柿叶,按1g:20ml的用量比加入体积浓度为75%的乙醇,在2000~2500MHz,400~500W微波条件下,加热回流提取20min,滤渣重复提取至少2次,合并各次提取液得到醇提液;
(2)将醇提液用1%HCl调节PH值至5.5,依次用石油醚和乙酸乙酯萃取后,有机相用AB-8大孔树脂吸附,水洗至流出液无色,再用体积浓度为75%乙醇洗脱,收集洗脱液;
(3)将洗脱液60℃减压浓缩,-60℃冷冻干燥,得到柿叶总黄酮。
实施例2
提取柿叶总黄酮,包括以下步骤:
(1)称取粉碎的干燥柿叶,按1g:20ml的用量比加入体积浓度为75%的乙醇,在2500~3000MHz,500~600W微波条件下,加热回流提取20min,滤渣重复提取至少2次,合并各次提取液得到醇提液;
(2)将醇提液用1%HCl调节PH值至5.0,依次用石油醚和乙酸乙酯萃取后,有机相用AB-8大孔树脂吸附,水洗至流出液无色,再用体积浓度为75%乙醇洗脱,收集洗脱液;
(3)将洗脱液60℃减压浓缩,-60℃冷冻干燥,得到柿叶总黄酮。
2、胰岛细胞的培养及氧化应激模型的建立
选用的实验细胞为Min6小鼠胰岛β细胞株,是肉瘤病毒40通过T细胞转染非肥胖糖尿病小鼠(NOD鼠)得到的胰岛细胞瘤株。
选用第26-30代Min6细胞为研究对象,培养于含10%FBS和10μl/Lβ-巯基乙醇的高糖DMEM培养液中,在37℃含5%CO2的饱和湿度培养箱中培养,在细胞密度80%汇合时以96孔板每孔密度5×104cells/ml细胞接种,培养24h后,用150μM H2O2损伤6h,检测各项指标。
3、MTT试验测定细胞存活率
Min6细胞以每孔接种5×104/ml均匀种在96孔板上,于5%CO2,37℃培养箱中培养。第2天进行分组加PLTF(柿叶总黄酮)后每孔加入200μl含有10%5mg/ml MTT的无血清DMEM溶液(0.5%浓度的MTT),孵箱避光培养4h。4h后终止培养,吸去孔内培养液,之后每孔加入100μl二甲基亚砜(DMSO),振荡5min使结晶物充分溶解。酶标仪设置测定波长设定为570nm,测各定各组细胞的OD值。
如图1所示,在加入150μM的H2O26h后,与空白对照组相比,损伤组胰岛细胞的活力有极其显著的下降(P<0.01),而预先用PLTF孵育24h的Min6细胞在H2O2损伤下的存活率降低程度变小(P<0.01),且成浓度依赖性。表明PLTF对H2O2引起的胰岛细胞损伤有保护作用。
4、胰岛细胞凋亡率检测
Min6细胞以5×104/ml的密度种于96孔板,贴壁24h后,换含不同浓度H2O2的培养液0.1ml,使H2O2终浓度为0、50、100、150μM干预1、2、4、6h,测MTT。Min6细胞经不同浓度H2O2作用6小时后,胰酶消化后用PBS洗细胞3次后进行Annexin-V-FITC-PI染色,参照试剂盒说明书进行染色,细胞经处理后于流式细胞仪检测,CellQuestTM软件分析结果如图2所示。
150μM H2O2用于Min6细胞6h后,早期凋亡细胞比例(43.6%)与正常细胞凋亡比例(23.6%)相比显著增加(P<0.05)。分别用7.5、5、2.5、1.25、0.625、0.3125μM PLTF预孵育24h,然后加入150μM H2O2继续孵育6h,早期凋亡细胞比例分别为16.5%、21%、22.4%、25%、27.5%和28.6%,与H2O2处理的凋亡细胞比例(43.6%)相比显著减少(P<0.05)。结果表明PLTF能抵抗H2O2引起的Min6细胞凋亡。
5、测定胰岛素含量
细胞诱导结束后除去培养基,用PBS冲洗后加入含0.5%BSA无糖KRB缓冲液,37℃孵育2h,每孔取出100μl上清后,按照Linco胰岛素放免试剂盒说明操作。细胞数量差异用考马斯亮蓝蛋白定量进行校正。收集细胞,4℃预冷的PBS洗涤细胞2次,加入预冷细胞裂解液裂解细胞,冰上孵育60min,4℃离心收集上清液即为蛋白样本,各取25μl待测样本,加入1.5ml考马斯亮蓝染液,再次混匀后室温静置15min,酶标仪测定吸光度和蛋白浓度。
检测结果如图3所示,150μM H2O2作用6h能显著降低胰岛素分泌水平,当分别以不同浓度PLTF(0.3125、0.625、1.25、2.5、5、7.5μM)处理Min6细胞24h后,胰岛素分泌增加,与对照组(control)相比较,差异具有统计学意义(P<0.01),且呈剂量依赖性增加趋势。
6、胞内ROS水平测试
采用荧光(二氯荧光素)探针法,离心收集细胞后用PBS清洗3次,每孔加入终浓度为20μM的DCFH-DA,37℃水浴避光温育15min,激发波长设定为499nm,测定521nm处的荧光强度,用荧光强度表征胞内总的ROS水平。
从图4所示的检测结果可以发现,150μM H2O2作用6h使胰岛细胞活性氧水平显著升高(P<0.05),而PLTF(7.5、5、2.5μM)显著降低H2O2诱导胰岛细胞产生的活性氧,而且呈浓度依赖性。
7、细胞抗氧化指标测定
实验过程按照南京建成生物工程公司生产的测试试剂盒说明书进行。图5-1~5-5所示分别为SOD、CAT、GSH、MDA、NO损伤抗氧化指标。150μMH2O2作用胰岛细胞6h导致SOD、GSH、CAT活力显著下降(P<0.01),NO、MDA含量显著上升(P<0.01),差异具有统计学意义。而PLTF增加了H2O2损伤下胰岛细胞内的SOD、GSH和CAT活性,呈一定的浓度依赖性。PLTF使SOD、GSH、CAT都明显升高(P<0.01),NO、MDA都明显下降(P<0.01),而且随着PLTF浓度的增大,这种趋势越来越明显,差异具有统计学意义(P<0.01)。这就表明PLTF不仅能够提高胰岛Min6细胞抗氧化酶的活力,而且能抵抗H2O2所致胰岛Min6细胞损伤。
8、RT-PCR分析检测Bcl-2、Bax、iNOS、Caspaes-3mRNA表达
提取RNA过程按照TAKARA RNA提取试剂盒进行。逆转录步骤按PrimeScript RT Master Mix Perfect Real Time反转录酶试剂盒说明书操作。
所用引物见表1。
表1RT-CR分析用引物
Bcl-2、Bax、Bcl-2/Bax、iNOS、Caspase-3的mRNA指标见图6-1~6-5。从图中可见,用H2O2处理的胰岛细胞Bcl-2mRNA与对照组相比在损伤组内表达水平上升(P<0.01),可认为H2O2激活了通路,Bax mRNA表达水平极显著增高(P<0.01);加入PLTF后,7.5、5、2.5、1.25μM能降低Bax mRNA表达水平,促进Bcl-2mRNA表达水平的增加,与H2O2组相比有显著性差异。Bax/bcl-2结果显示,150uM H2O2能明显增加了细胞凋亡(P<0.01),7.5μMPLTF却显著减少了细胞凋亡(P<0.01),这就说明PLTF能抑制H2O2引起的凋亡。用H2O2处理胰岛细胞后iNOS mRNA和Caspase-3mRNA表达水平极显著增高(P<0.01),而PLTF预孵育后,随着PLTF浓度的增大,iNOS和Caspase-3mRNA量减小,说明PLTF能抑制H2O2引起的凋亡。
9、蛋白质免疫印迹测p65蛋白表达
将细胞接种6孔板中,处理细胞后用PBS洗涤细胞3次,每孔加入100μl裂解液,冰上裂解60min,不断混匀震荡6孔板。最后在高速低温离心机中4℃、14,000rpm离心20min,吸上清-20℃保存备用。考马斯亮蓝蛋白定量,SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,中性滤纸和硝酸纤维素膜。电转转膜,恒压100V-150V电转1-1.5h。将膜放入封闭液室温平缓摇1h,用TBST液室温洗3次。加入鼠源p65多克隆抗体(1∶1000)、兔源p38多克隆抗体(1∶1000)、兔源p-p38多克隆抗体(1∶1000)及鼠源β-actin多克隆抗体(1∶5000)中孵育,4℃过夜后用TBST洗涤3次。加入相应的二抗,摇动1-2h,TBST洗涤3次。利用增强化学发光法(ECL)显影检测蛋白,过程参照Western BlottingLuMinol Reagent说明书。待膜稍干后,将SolutionA和Solution B等体积混合后加至膜上,反应1分钟。在暗室中进行膜与X光胶片的压片,根据荧光强弱选择曝光时间。显影,定影。用ECL法进行扫描。条带灰度用Quantityone图像分析软件半定量分析,各浓度组通过与相应β-actin条带密度比较,分析趋势。
p65蛋白是NF-κB激活后的活性片断,其核转位后可调节其下游iNOS基因转录。用PLTF预处理Min6细胞24h后,加入150μM H2O2,作用6h后,Western blot检测结果可见图7。与损伤组相比,在加入PLTF的细胞中胞核NF-κBp65蛋白水平降低,说明PLTF可保护Min6细胞,使NF-κB激活片断p65蛋白的核内转位水平降低。
综上,利用高糖DMEM培养基常规培养胰岛细胞,然后加入柿叶总黄酮24小时后H2O2损伤6h,建立损伤应激损伤基础,通过MTT实验测定细胞生长率,胰岛素分泌量,结果证实柿叶总黄酮促进了胰岛细胞增殖和胰岛素的分泌量;通过流式细胞术分析细胞凋亡率,可以知道柿叶总黄酮能够有效抑制细胞凋亡,再通过细胞内各项抗氧化指标测试,发现柿叶总黄酮能降低胰岛细胞自由基的产生、细胞MDA和NO含量;另外,经实验证实能够减少iNOS、Caspase3、Bax mRNA表达,增加Bcl-2mRNA的表达和抑制p65蛋白的表达,找到了柿叶总黄酮的作用靶点。所以,柿叶总黄酮能够应用于制备抗糖尿病药物和/或保健品。
Claims (10)
1.柿叶总黄酮在制备抗糖尿病药物和/或保健品中的应用。
2.如权利要求1所述的应用,其特征在于,所述的抗糖尿病药物和/或保健品为促进胰岛细胞增殖和提高胰岛素分泌量的药物和/或保健品。
3.如权利要求1所述的应用,其特征在于,所述的抗糖尿病药物和/或保健品为增加Bcl-2mRNA表达和/或抑制p65蛋白表达的药物和/或保健品。
4.如权利要求1所述的应用,其特征在于,所述的抗糖尿病药物和/或保健品为抑制胰岛β细胞凋亡的药物和/或保健品。
5.如权利要求4所述的应用,其特征在于,所述的抗糖尿病药物和/或保健品为减少iNOS、Caspase3、Bax mRNA表达的药物和/或保健品。
6.如权利要求1所述的应用,其特征在于,所述的抗糖尿病药物和/或保健品为增强胰岛细胞抗氧化活性的药物和/或保健品。
7.如权利要求6所述的应用,其特征在于,所述的抗糖尿病药物和/或保健品为降低胰岛细胞自由基的产生的药物和/或保健品。
8.如权利要求6所述的应用,其特征在于,所述的抗糖尿病药物和/或保健品为增强抗氧化酶活性的药物和/或保健品。
9.一种柿叶总黄酮的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)将粉碎后干燥的柿叶,按1g:10~25ml的比例加入体积浓度为50~80%的乙醇,在微波超声下,加热回流提取10~30min,滤渣重复提取至少两次,合并提取液得到醇提液;
2)将醇提液用调节pH值至4.5~5.5后,依次用石油醚和乙酸乙酯萃取,然后有机相用大孔树脂吸附,水洗至流出液无色,再用质量浓度为体积浓度为50~80%的乙醇洗脱,收集洗脱液;
3)将洗脱液减压浓缩后冷冻干燥,得到柿叶总黄酮。
10.如权利要求9所述的柿叶总黄酮的制备方法,其特征在于,所述的微波超声的频率为2000~3000MHz,功率为400~600W。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2012104727092A CN102949435A (zh) | 2012-11-20 | 2012-11-20 | 柿叶总黄酮抑制胰岛β细胞凋亡的应用及其提取方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2012104727092A CN102949435A (zh) | 2012-11-20 | 2012-11-20 | 柿叶总黄酮抑制胰岛β细胞凋亡的应用及其提取方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102949435A true CN102949435A (zh) | 2013-03-06 |
Family
ID=47759194
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2012104727092A Pending CN102949435A (zh) | 2012-11-20 | 2012-11-20 | 柿叶总黄酮抑制胰岛β细胞凋亡的应用及其提取方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102949435A (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2015033898A1 (ja) * | 2013-09-03 | 2015-03-12 | サンスター株式会社 | 血糖代謝改善用組成物 |
CN105963336A (zh) * | 2016-05-11 | 2016-09-28 | 卢鑫 | 一种柿叶总黄酮的提取方法 |
CN107823243A (zh) * | 2017-11-30 | 2018-03-23 | 广西南宁栩兮科技有限公司 | 一种柿子籽中黄酮的提取方法 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101194921A (zh) * | 2006-12-08 | 2008-06-11 | 广州白云山和记黄埔中药有限公司 | 柿叶黄酮提取物及其制备方法和用途 |
-
2012
- 2012-11-20 CN CN2012104727092A patent/CN102949435A/zh active Pending
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101194921A (zh) * | 2006-12-08 | 2008-06-11 | 广州白云山和记黄埔中药有限公司 | 柿叶黄酮提取物及其制备方法和用途 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
胡忠泽等: "柿叶黄酮对糖尿病小鼠降血糖作用及机制探讨", 《营养学报》, vol. 28, no. 06, 25 December 2006 (2006-12-25) * |
高永峰等: "柿叶总黄酮对糖尿病小鼠降血糖降血脂作用及其机制研究", 《泰山医学院学报》, vol. 30, no. 04, 25 April 2009 (2009-04-25) * |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2015033898A1 (ja) * | 2013-09-03 | 2015-03-12 | サンスター株式会社 | 血糖代謝改善用組成物 |
EP3042661A1 (en) * | 2013-09-03 | 2016-07-13 | Sunstar Inc. | Composition for improving blood sugar metabolism |
JPWO2015033898A1 (ja) * | 2013-09-03 | 2017-03-02 | サンスター株式会社 | 血糖代謝改善用組成物 |
EP3042661A4 (en) * | 2013-09-03 | 2017-05-17 | Sunstar Inc. | Composition for improving blood sugar metabolism |
US9801917B2 (en) | 2013-09-03 | 2017-10-31 | Sunstar Inc. | Composition for improving blood sugar metabolism |
CN105963336A (zh) * | 2016-05-11 | 2016-09-28 | 卢鑫 | 一种柿叶总黄酮的提取方法 |
CN107823243A (zh) * | 2017-11-30 | 2018-03-23 | 广西南宁栩兮科技有限公司 | 一种柿子籽中黄酮的提取方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Li et al. | HPLC fingerprint analysis of Phyllanthus emblica ethanol extract and their antioxidant and anti-inflammatory properties | |
Alema et al. | Antidiabetic activity of extracts of Terminalia brownii Fresen. Stem bark in mice | |
Dechakhamphu et al. | Screening for anti-pancreatic lipase properties of 28 traditional Thai medicinal herbs | |
Nickavar et al. | Evaluation of α-amylase inhibitory activities of selected antidiabetic medicinal plants | |
AbouZid et al. | Antihyperglycemic effect of crude extracts of some Egyptian plants and algae | |
Sangeetha | Luteolin in the management of type 2 diabetes mellitus | |
El-Tantawy | Natural products for the management of hyperuricaemia and gout: a review | |
Lachowicz et al. | Profile and content of phenolic compounds in leaves, flowers, roots, and stalks of Sanguisorba officinalis L. determined with the LC-DAD-ESI-QTOF-MS/MS analysis and their in vitro antioxidant, antidiabetic, antiproliferative potency | |
Park et al. | Antioxidative and Anti‐Inflammatory Activities of Galloyl Derivatives and Antidiabetic Activities of Acer ginnala | |
Fattaheian-Dehkordi et al. | A review on antidiabetic activity of Centaurea spp.: A new approach for developing herbal remedies | |
Calderon Guzman et al. | Consumption of cooked common beans or saponins could reduce the risk of diabetic complications | |
Yang et al. | Antioxidant and α‐Glucosidase Inhibitory Activities Guided Isolation and Identification of Components from Mango Seed Kernel | |
Feunaing et al. | In Vitro Evaluation of α-amylase and α-glucosidase Inhibition of 2, 3-Epoxyprocyanidin C1 and Other Constituents from Pterocarpus erinaceus Poir | |
CN102949435A (zh) | 柿叶总黄酮抑制胰岛β细胞凋亡的应用及其提取方法 | |
Tefera et al. | Antidiabetic effect of germinated Lens culinaris medik seed extract in streptozotocin-induced diabetic mice | |
Ahmad et al. | Isolation, structure elucidation & antidiabetic potential of Rosa brunonii L. fruit–fight diabetes with natural remedies | |
Khan et al. | Ethno-medicinal species of genus Ficus L. used to treat diabetes in Pakistan | |
Feng et al. | Mulberry leaf polysaccharide extracted by response surface methodolog suppresses the proliferation, invasion and migration of MCF-7 breast cancer cells | |
CN109200082A (zh) | 一种从余甘子中提取具有抗氧化活性同时具有抑菌活性物质的方法 | |
Naz et al. | Anti-diabetic potentials of Sorbaria tomentosa Lindl. Rehder: Phytochemistry (GC-MS analysis), α-amylase, α-glucosidase inhibitory, in vivo hypoglycemic, and biochemical analysis | |
Jiang | Microcos paniculata: a review on its botany, traditional uses, phytochemistry and pharmacology | |
Wang et al. | Hypoglycemic effect of Camellia chrysantha extract on type 2 diabetic mice model | |
Abraham et al. | Antidiabetic and antidyslipidemic activities of the aqueous extract of Cochlospermum planchonii leaves in streptozotocin-induced diabetic rats | |
CN101156908B (zh) | 蕨麻提取物在制备α-葡萄糖苷酶抑制剂中的应用 | |
CN105640971A (zh) | 未成熟罗汉果提取物中的总皂苷在制备辅助降血糖药物方面的应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20130306 |