CN102871774B - 一种韧带修复支架及其制备方法和用途 - Google Patents
一种韧带修复支架及其制备方法和用途 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102871774B CN102871774B CN201210389821.XA CN201210389821A CN102871774B CN 102871774 B CN102871774 B CN 102871774B CN 201210389821 A CN201210389821 A CN 201210389821A CN 102871774 B CN102871774 B CN 102871774B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- region
- decalcification
- decalcifying
- partly
- ligament repair
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
本发明公开了一种韧带修复支架:它是包括未脱钙区域、部分脱钙区域、完全脱钙区域的皮质骨片材,厚度大于300μm,其中,沿长度方向:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为(15%~25%):(10%~20%):(30%~50%):(10%~20%):(15%~25%),部分脱钙区域分为1个以上节段,沿完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域的方向,脱钙率呈梯度降低。本发明韧带修复支架为一体化设计,材料来源于生物组织,可复合生长因子和接种细胞,性能优良,使用时易于固定,不易断裂,能促进韧带组织修复,支架生产工艺简单,可大规模生产。
Description
发明内容
本发明属于组织工程领域,涉及一种韧带修复支架及其制备方法和用途。
背景技术
随着生活水平的提高以及体育事业的蓬勃发展,韧带损伤已经成为不可忽视的健康问题。
韧带修复的方法多种多样,包括自体肌腱移植、同种或异种肌腱移植和人工韧带修复材料等。自体肌腱移植会造成供区疼痛、感染、损伤,并且所能供给的肌腱来源非常有限;同种异体肌腱移植材料来源有限,不能像自体肌腱一样迅速血管化;人工韧带修复材料因其细胞、组织相容性差以及降解吸收等问题仍未解决,长期疗效有待研究。
目前,因与天然韧带结构较为相似,同种异体或者异种的骨-腱-骨修复韧带的研究和应用较多,如,专利申请号:US2005203620,发明名称:Sterilecomposite graft for tendon and cruciate ligament reconstruction,comprises firstand second bone blocks,each bone block defining teeth的美国专利申请中就公开了一种使用骨块固定肌腱,构建骨块-肌腱-骨块结构的韧带修复支架。但是,因该结构是由肌腱与骨块连接而成,肌腱和骨的硬度相差较大,因而存在骨块与肌腱难以稳固连接的问题,容易在骨块与肌腱的界面发生断裂,导致修复失败。为了解决肌腱与骨之间生物愈合的问题,本领域研究人员提出了许多解决方案,如,在骨与腱的连接界面上加入生长因子或接种干细胞,促进愈合,均未取得良好的效果。Yamada et al(Bone-demineralized bone-bonegraft for ligament reconstruction in rats,Journal of Medical and Dental Sciences.2004Mar;51:45-52)报道了使用大鼠桡骨制备的韧带修复支架,其两端未脱钙,中间部分脱钙。与传统韧带修复支架不同,该材料是完整的,不是几种材料的组合。然而,经研究发现,该种方式制备的支架生物力学性能较差,存在脱钙区与未脱钙区连接部位易断裂的问题,仍未克服现有技术的缺陷。
发明内容
为了克服上述缺陷,本发明提供了一种新的韧带修复支架。
本发明韧带修复支架,它是包括未脱钙区域、部分脱钙区域、完全脱钙区域的皮质骨片材,厚度大于300μm,其中,沿长度方向:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为(15%~25%):(10%~20%):(30%~50%):(10%~20%):(15%~25%),部分脱钙区域分为1个以上节段,沿完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域的方向,脱钙率呈梯度降低。
通常来讲,韧带修复支架长5~12cm,宽6~12mm,厚0.5~5mm。
皮质骨,指骨表面一层十分致密而坚硬的骨质,位于长骨的骨干和扁平骨的表层,又称密质骨。
其中,所述部分脱钙区域有1~9个节段。
其中,所述部分脱钙区域各节段的脱钙率呈均匀梯度降低。
其中,所述部分脱钙区域的脱钙率依次为80%、60%、40%和20%。
其中,所述的皮质骨为哺乳动物的骨干皮质骨。
长骨,分布于四肢,有一体和两端,体又称骨干,骨质致密。骨干皮质骨就是骨干的皮质骨部分。
本发明韧带修复支架的制备方法,它包括如下步骤:
(1)取皮质骨,去除软组织、骨膜和骨髓,制成片材,沿长度方向:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为(15%~25%):(10%~20%):(30%~50%):(10%~20%):(15%~25%),部分脱钙区域分为1个以上节段;
(2)用包埋材料包埋未脱钙区域和部分脱钙区域,浸泡在脱钙液中进行脱钙,直至完全脱钙区域的脱钙率为100%,脱钙期间,从与完全脱钙区域连接的节段开始,逐节敲除部分脱钙区域上的包埋材料,使各节段的脱钙率呈梯度降低;
(3)从脱钙液中取出,敲掉剩余包埋材料,清洗,脱脂,再清洗,即可。
其中,步骤(2)中,所述的包埋材料为石蜡、明矾或者封口膜;所述的脱钙液是浓度为0.1N~1N的盐酸,或者是浓度为0.1%~1%(g/ml)的EDTA。
其中,所述部分脱钙区域各节段的脱钙率呈均匀梯度降低。
本发明韧带修复支架在制备韧带修复移植物中的用途。
本发明韧带修复移植物,它是本发明韧带修复支架与生长因子或细胞的复合物,每1平方厘米的修复材料上复合10~100ng生长因子或104~105个细胞。
其中,所述生长因子为β1转化生长因子(TGF-β1)、成纤维细胞生长因子(FGF)、胰岛素样生长因子(IGF-1)、血管内皮生长因子(VEGF)和结缔组织生长因子(CTGF)中的任意一种或者任意多种;所述细胞为成纤维细胞或骨髓基质干细胞。
本发明韧带修复支架有良好的力学性能,植入体内不易发生断裂,克服了现有技术韧带修复支架易断裂的缺陷,生物相容性优良,可用于体内韧带修复,具有良好的临床应用前景,制备简便,可以大规模生产,应用前景良好。
显然,根据本发明的上述内容,按照本领域的普通技术知识和惯用手段,在不脱离本发明上述基本技术思想前提下,还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。
以下通过实施例形式的具体实施方式,对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。
附图说明
图1本发明的韧带修复支架的结构示意图,其中,A表示未脱钙区域,其脱钙率为0%,B表示完全脱钙区域,其脱钙率为100%,AB表示部分脱钙区域,脱钙率:AB4>AB3>AB2>AB1(AB4、AB3、AB2、AB1各部分平均脱钙率逐渐降低,形成梯度);
图2骨髓基质干细胞在20%脱钙皮质骨表面培养1天(A,600×)、4天(B,600×)、7天(C,600×)和9天(D,400×)的电子显微镜照片;
图3脱钙小牛皮质骨横切HE染色结果(100×)。
具体实施方式
实施例1本发明修复支架的制备
以牛骨为原材料,制备韧带修复支架,具体操作如下:
(1)取牛股骨骨干皮质骨,去除其上的软组织及骨膜;
(2)用去离子水冲洗皮质骨,去除骨髓,清洗干净;
(3)将准备好的皮质骨用运带锯沿力线方向锯成长5cm的全厚皮质骨块;
(4)用砂轮机从各面打磨,将其打磨成长×宽×厚=5cm×6mm×2mm骨片;打磨过程不断用水冲洗降温,防止组织受热损伤;将骨片划分为五个区域:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为15%:10%:50%:10%:15%,部分脱钙区域划分为4个节段;
(5)在室温条件下,将部分脱钙区域和未脱钙区域用石蜡包埋,浸于0.9N盐酸中脱钙;在脱钙开始后,从与完全脱钙区域连接的节段开始,逐节敲除部分脱钙区域的石蜡,使部分脱钙区域的脱钙率呈均匀梯度降低,依次为80%、60%、40%和20%;
(6)至完全脱钙区域完全脱钙,取出支架,用去离子水反复冲洗,并在PBS中浸泡12h;
(7)将上述脱钙支架悬浸于脱脂液(甲醇:乙醇=1:1)中,在室温条件下脱脂24h;
(8)用去离子水反复冲洗脱脂的支架;
(9)将脱钙脱脂支架冻干,分装,灭菌,得到组织工程韧带支架,结构如图1所示。
实施例2本发明修复支架的制备
以牛骨为原材料,制备韧带修复支架,具体操作如下:
(1)取牛股骨皮质骨,去除其上的软组织及骨膜;
(2)用去离子水冲洗皮质骨,去除骨髓,清洗干净;
(3)将准备好的皮质骨用运带锯沿力线方向锯成长5cm的全厚皮质骨块;
(4)用砂轮机从各面打磨,将其打磨成长×宽×厚=5cm×6mm×0.5mm骨片;打磨过程不断用水冲洗降温,防止组织受热损伤;将骨片划分为五个区域:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为20%:15%:30%:15%:20%;
(5)在室温条件下,将部分脱钙区域和未脱钙区域用石蜡包埋,浸于0.1N盐酸中脱钙;在脱钙开始后,敲除部分脱钙区域的石蜡,使部分脱钙区域的脱钙率为50%;
(6)至完全脱钙区域完全脱钙,取出支架,用去离子水反复冲洗,并在PBS中浸泡12h;
(7)将上述脱钙支架悬浸于脱脂液(甲醇:乙醇=1:1)中,在室温条件下脱脂24h;
(8)用去离子水反复冲洗脱脂的支架;
(9)将脱钙脱脂支架冻干,分装,灭菌,得到组织工程韧带支架。
实施例3本发明修复支架的制备
以牛骨为原材料,制备韧带修复支架,具体操作如下:
(1)取牛股骨皮质骨,去除其上的软组织及骨膜;
(2)用去离子水冲洗皮质骨,去除骨髓,清洗干净;
(3)将准备好的皮质骨用运带锯锯成长5cm的全厚皮质骨块;
(4)用砂轮机从各面打磨,将其打磨成长×宽×厚=5cm×6mm×1mm骨片;打磨过程不断用水冲洗降温,防止组织受热损伤;将骨片划分为五个区域:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为25%:10%:30%:10%:25%,部分脱钙区域划分为3个节段;
(5)在室温条件下,将部分脱钙区域和未脱钙区域用石蜡包埋,浸于1N盐酸中脱钙;在脱钙开始后,从与完全脱钙区域连接的节段开始,逐节敲除部分脱钙区域的石蜡,使部分脱钙区域的脱钙率呈均匀梯度降低,依次为75%、50%和25%;
(6)至完全脱钙区域完全脱钙,取出支架,用去离子水反复冲洗,并在PBS中浸泡12h;
(7)将上述脱钙支架悬浸于脱脂液(甲醇:乙醇=1:1)中,在室温条件下脱脂24h;
(8)用去离子水反复冲洗脱脂的支架;
(9)将脱钙脱脂支架冻干,分装,灭菌,得到组织工程韧带支架。
实施例4本发明修复支架的制备
以牛骨为原材料,制备韧带修复支架,具体操作如下:
(1)取牛股骨皮质骨,去除其上的软组织及骨膜;
(2)用去离子水冲洗皮质骨,去除骨髓,清洗干净;
(3)将准备好的皮质骨用运带锯锯成长5cm的全厚皮质骨块;
(4)用砂轮机从各面打磨,将其打磨成长×宽×厚=5cm×6mm×3mm骨片;打磨过程不断用水冲洗降温,防止组织受热损伤;将骨片划分为五个区域:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为15%:15%:40%:15%:15%,部分脱钙区域划分为5个节段;
(5)在室温条件下,将部分脱钙区域和未脱钙区域用石蜡包埋,浸于0.1%EDTA中脱钙;在脱钙开始后,从与完全脱钙区域连接的节段开始,逐节敲除部分脱钙区域的石蜡,使部分脱钙区域的脱钙率呈均匀梯度降低,依次为83.3%、66.6%、49.9%、33.2%和16.6%;
(6)至完全脱钙区域完全脱钙,取出支架,用去离子水反复冲洗,并在PBS中浸泡12h;
(7)将上述脱钙支架悬浸于脱脂液(甲醇:乙醇=1:1)中,在室温条件下脱脂24h;
(8)用去离子水反复冲洗脱脂的支架;
(9)将脱钙脱脂支架冻干,分装,灭菌,得到组织工程韧带支架。
实施例5本发明修复支架的制备
以牛骨为原材料,制备韧带修复支架,具体操作如下:
(1)取牛股骨皮质骨,去除其上的软组织及骨膜;
(2)用去离子水冲洗皮质骨,去除骨髓,清洗干净;
(3)将准备好的皮质骨用运带锯锯成长5cm的全厚皮质骨块;
(4)用砂轮机从各面打磨,将其打磨成长×宽×厚=5cm×6mm×5mm骨片;打磨过程不断用水冲洗降温,防止组织受热损伤;将骨片划分为五个区域:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为15%:20%:30%:20%:15%,部分脱钙区域划分为7个节段;
(5)在室温条件下,将部分脱钙区域和未脱钙区域用石蜡包埋,浸于1.0%EDTA中脱钙;在脱钙开始后,从与完全脱钙区域连接的节段开始,逐节敲除部分脱钙区域的石蜡,使部分脱钙区域的脱钙率依次为90%、75%、60%、50%、40%、25%和10%;
(6)至完全脱钙区域完全脱钙,取出支架,用去离子水反复冲洗,并在PBS中浸泡12h;
(7)将上述脱钙支架悬浸于脱脂液(甲醇:乙醇=1:1)中,在室温条件下脱脂24h;
(8)用去离子水反复冲洗脱脂的支架;
(9)将脱钙脱脂支架冻干,分装,灭菌,得到组织工程韧带支架。
实施例6本发明修复支架的制备
以牛骨为原材料,制备韧带修复支架,具体操作如下:
(1)取牛股骨皮质骨,去除其上的软组织及骨膜;
(2)用去离子水冲洗皮质骨,去除骨髓,清洗干净;
(3)将准备好的皮质骨用运带锯锯成长5cm的全厚皮质骨块;
(4)用砂轮机从各面打磨,将其打磨成长×宽×厚=5cm×6mm×5mm骨片;打磨过程不断用水冲洗降温,防止组织受热损伤;将骨片划分为五个区域:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为20%:15%:30%:15%:20%,部分脱钙区域划分为9个节段;
(5)在室温条件下,将部分脱钙区域和未脱钙区域用石蜡包埋,浸于1.0%EDTA中脱钙;在脱钙开始后,从与完全脱钙区域连接的节段开始,逐节敲除部分脱钙区域的石蜡,使部分脱钙区域的脱钙率呈均匀梯度降低,依次为90%、80%、70%、60%、50%、40%、30%、20%和10%;
(6)至完全脱钙区域完全脱钙,取出支架,用去离子水反复冲洗,并在PBS中浸泡12h;
(7)将上述脱钙支架悬浸于脱脂液(甲醇:乙醇=1:1)中,在室温条件下脱脂24h;
(8)用去离子水反复冲洗脱脂的支架;
(9)将脱钙脱脂支架冻干,分装,灭菌,得到组织工程韧带支架。
实施例7本发明韧带修复移植物的制备
以牛骨和自体静脉血为原材料,制备含生物活性因子的组织工程韧带移植物,具体操作如下:
(1)取新鲜牛骨,按实施例1操作,制备组织工程韧带支架。
(2)采集静脉血前,患者应禁食12h,避免剧烈运动,取平卧位,在腹股沟叩及股动脉波动明显处,75%酒精消毒穿刺处,叩及股动脉最明显处,在其内侧0.5cm处45°刺入,抽取5ml,收集于枸橼酸钠抗凝管中,立即将其轻轻颠倒5-6次,使血液与抗凝剂充分混匀。
(3)室温下,3000rpm,10min,离心,收集上清液,制备富血小板血浆,用微孔滤膜过滤去除细胞碎片。保存在-20℃备用。
(4)将制备好的韧带支架材料,生理盐水复水2h后加入含有富血小板血浆的塑料培养瓶中,放入37℃,5%CO2的培养箱。
(5)培养24h,即得到含有生物活性因子的组织工程韧带移植物。
实施例8本发明韧带修复移植物的制备
以牛骨和自体骨髓为原材料,制备含细胞的组织工程韧带移植物,具体操作如下:
(1)取新鲜牛骨,按实施例1操作,制备组织工程韧带支架。
(2)无菌条件下,采集自体骨髓3ml,1:50肝素抗凝,加入等量PBS液洗涤离心,1000r/min,5min,2次,弃上清,加入PBS液4ml,缓慢加入等量的Percoll分离液,2000r/min,20min,离心。收集白膜层的单个核细胞,用PBS液洗涤离心(1000r/min,5min)2次,弃上清,重新悬于含10%FBS的DMEM/F12培养液中,按105-106/ml接种到塑料培养瓶中,放入37℃,5%CO2,饱和湿度的培养箱培养。原代细胞24h内首次全量换液,之后隔天换液。传代培养至第3代。
(3)制备的组织工程韧带支架经生理盐水复水2h。
(4)将第3代骨髓基质干细胞,用0.25%胰酶-EDTA消化液消化并收集细胞,以5×104/cm2接种到制备的韧带支架上,体外培养7d,制备得到含细胞的组织工程韧带移植物。
实验例1本发明韧带修复支架的性能检测
1、制备韧带修复支架
(1)取新鲜的小牛皮质骨,剔除软组织及骨膜;
(2)用去离子水冲洗皮质骨,去除骨髓,清洗干净;
(3)将准备好的皮质骨用运带锯沿力线方向锯成长5cm的全厚皮质骨块;
(4)加工成7cm×4mm×2mm(长×宽×厚)骨片,分为梯度脱钙组(本发明韧带修复支架)和非梯度脱钙组(对照组):将梯度脱钙组骨片划分为五个区域:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为15%:10%:50%:10%:15%,部分脱钙区域划分为4个节段;非梯度脱钙组划分为3个部分:未脱钙区域-完全脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为25%:50%:25%;
(5)在室温条件下,将部分脱钙区域和未脱钙区域用石蜡包埋,浸于0.9N盐酸中脱钙,从与完全脱钙区域连接的节段开始,在脱钙开始后16h、18h、20h、22h逐节敲除部分脱钙区域包埋的石蜡(经原子吸收光谱法检测,部分脱钙区域的脱钙率依次为80%、60%、40%和20%);非梯度脱钙组皮质骨未脱钙区域用石蜡包埋,浸于0.9N盐酸中脱钙;
(6)至完全脱钙区域完全脱钙,取出支架,用去离子水反复冲洗,并在PBS中浸泡12h;
(7)将上述脱钙支架悬浸于脱脂液(甲醇:乙醇=1:1)中,在室温条件下脱脂24h;
(8)用去离子水反复冲洗脱脂的支架;
(9)将脱钙脱脂支架冻干,分装,灭菌,得到组织工程韧带支架。
2、性能检测
(1)生物力学拉伸性能的检测
将制备好的试件在INSTRON 8874生物力学试验机上行单轴拉伸试验到试件破坏为止,加载速率为5mm/min,室温。试验过程中喷洒PBS使试件保持湿润。
(2)细胞相容性
骨髓基质干细胞在20%脱钙皮质骨表面培养1d(A)、4d(B)、7d(C)和9d(D)的电子显微镜照片,表明支架材料表面具有良好的细胞附着能力,随培养时间延长,细胞黏附和生长增强。
(3)支架组织学
取梯度脱钙组组织工程韧带支架,梯度酒精处理,石蜡包埋,切片,HE染色。
3、检测结果
(1)生物力学拉伸性能的检测
实验结果如表1所示:
表1梯度脱钙组与非梯度脱钙对照组力学性能比较
结果显示:与对照组比较,本发明韧带修复支架(梯度脱钙组)的抗拉伸强度、断裂应变和弹性模量均有显著提高,提高率为30.04%、23.67%和6.91%。
对照组中,支架的强度仅为23.77MPa,难以满足人体对韧带的要求,本发明韧带修复支架的强度为30.91MPa,相比对照组,提高了30.03%,满足人体韧带的基本生物力学特性的要求,可用于体内修复。
(2)细胞相容性
如图2所示,本发明韧带修复支架材料表面有利于细胞附着与生长,具有良好的细胞相容性。
(3)支架组织学
如图3所示,本发明韧带修复支架中存在很多孔隙,便于细胞的附着和生长,是良好的修复支架。
综上,本发明韧带修复支架的力学性能优良,植入人体内不易断裂,克服了现有韧带修复支架固有的缺陷,细胞相容性好,支架孔隙率高,有利于细胞长入,具有良好的应用前景。
Claims (9)
1.一种韧带修复支架,其特征在于:它是包括未脱钙区域、部分脱钙区域、完全脱钙区域的皮质骨片材,厚度大于300μm,其中,沿长度方向:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为(15%~25%):(10%~20%):(30%~50%):(10%~20%):(15%~25%),部分脱钙区域分为4个节段,沿完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域的方向,脱钙率呈均匀梯度降低;
所述部分脱钙区域的脱钙率依次为80%、60%、40%和20%。
2.根据权利要求1所述的韧带修复支架,其特征在于:所述的皮质骨为哺乳动物的骨干皮质骨。
3.一种制备权利要求1或2所述韧带修复支架的方法,其特征在于:它包括如下步骤:
(1)取皮质骨,去除软组织、骨膜和骨髓,制成片材,沿长度方向:未脱钙区域-部分脱钙区域-完全脱钙区域-部分脱钙区域-未脱钙区域,所占长度比例依次为(15%~25%):(10%~20%):(30%~50%):(10%~20%):(15%~25%),部分脱钙区域分为4个节段;
(2)用包埋材料包埋未脱钙区域和部分脱钙区域,浸泡在脱钙液中进行脱钙,直至完全脱钙区域的脱钙率为100%,脱钙期间,从与完全脱钙区域连接的节段开始,逐节敲除部分脱钙区域上的包埋材料,使各节段的脱钙率呈梯度降低;
(3)从脱钙液中取出,敲掉剩余包埋材料,清洗,脱脂,再清洗,即可。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于:步骤(2)中,所述的包埋材料为石蜡、明矾或者封口膜;所述的脱钙液是浓度为0.1N~1N的盐酸,或者是浓度为0.1%~1%(g/ml)的EDTA。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于:所述部分脱钙区域各节段的脱钙率呈均匀梯度降低。
6.权利要求1或2所述韧带修复支架在制备韧带修复移植物中的用途。
7.一种韧带修复移植物,其特征在于:它是权利要求1或2所述的韧带修复支架与生长因子或细胞的复合物,每1平方厘米的修复材料上复合10~100ng生长因子或104~105个细胞。
8.根据权利要求7所述的移植物,其特征在于:所述生长因子为β1转化生长因子(TGF-β1)、成纤维细胞生长因子(FGF)、胰岛素样生长因子、血管内皮生长因子(VEGF)和结缔组织生长因子(CTGF)中的任意一种或者任意多种;所述细胞为成纤维细胞或骨髓基质干细胞。
9.根据权利要求8所述的移植物,其特征在于:所述胰岛素样生长因子为IGF-1。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210389821.XA CN102871774B (zh) | 2012-10-15 | 2012-10-15 | 一种韧带修复支架及其制备方法和用途 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210389821.XA CN102871774B (zh) | 2012-10-15 | 2012-10-15 | 一种韧带修复支架及其制备方法和用途 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102871774A CN102871774A (zh) | 2013-01-16 |
CN102871774B true CN102871774B (zh) | 2015-03-25 |
Family
ID=47473460
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201210389821.XA Active CN102871774B (zh) | 2012-10-15 | 2012-10-15 | 一种韧带修复支架及其制备方法和用途 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102871774B (zh) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106215238A (zh) * | 2016-07-27 | 2016-12-14 | 重庆大学 | 一种基于脱钙处理的三维骨组织工程支架及其制备方法 |
CN110227182B (zh) * | 2019-01-17 | 2020-12-15 | 浙江大学医学院附属邵逸夫医院 | 一种梯度矿化骨细胞外基质材料的制备方法 |
CN111450316B (zh) * | 2020-03-04 | 2021-07-20 | 深圳市迈捷生命科学有限公司 | 一种模拟骨-肌腱-骨矿化到非矿化梯度结构一体化支架 |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20020120338A1 (en) * | 2001-02-28 | 2002-08-29 | Boyer Michael L. | Implants formed with demineralized bone |
US6652529B2 (en) * | 2001-09-12 | 2003-11-25 | Todd V. Swanson | Method and apparatus for treating supracondylar fractures of the femur |
CN1480225A (zh) * | 2002-09-06 | 2004-03-10 | 上海第二医科大学附属第九人民医院 | 组织工程化肌腱 |
US6833005B1 (en) * | 2001-02-02 | 2004-12-21 | John P. Mantas | Ligament graft system and method |
CN101808596A (zh) * | 2007-09-14 | 2010-08-18 | 普渡研究基金会 | 去矿化的松质骨支架 |
US20120253462A1 (en) * | 2001-03-13 | 2012-10-04 | Depuy Mitek, Inc. | Method and apparatus for fixing a graft in a bone tunnel |
-
2012
- 2012-10-15 CN CN201210389821.XA patent/CN102871774B/zh active Active
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6833005B1 (en) * | 2001-02-02 | 2004-12-21 | John P. Mantas | Ligament graft system and method |
US20020120338A1 (en) * | 2001-02-28 | 2002-08-29 | Boyer Michael L. | Implants formed with demineralized bone |
US20120253462A1 (en) * | 2001-03-13 | 2012-10-04 | Depuy Mitek, Inc. | Method and apparatus for fixing a graft in a bone tunnel |
US6652529B2 (en) * | 2001-09-12 | 2003-11-25 | Todd V. Swanson | Method and apparatus for treating supracondylar fractures of the femur |
CN1480225A (zh) * | 2002-09-06 | 2004-03-10 | 上海第二医科大学附属第九人民医院 | 组织工程化肌腱 |
CN101808596A (zh) * | 2007-09-14 | 2010-08-18 | 普渡研究基金会 | 去矿化的松质骨支架 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
《脱钙皮质骨基质的拉伸力学性能研究》;刘国明等;《中国修复重建外科杂志》;20120430;第26卷(第4期);501-501 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN102871774A (zh) | 2013-01-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN100372511C (zh) | 一种脱细胞真皮基质 | |
CN100360190C (zh) | 具有生物活性的人工生物瓣瓣膜的制备方法 | |
CN105963785B (zh) | 一种基于脂肪干细胞膜片的脱细胞基质材料及其制备方法 | |
TW200411050A (en) | Method and carrier for culturing multi-layer tissue in vitro | |
CN101690829B (zh) | 一种可再细胞化的生物瓣瓣膜材料的制备方法 | |
CN101816806A (zh) | 一种组织工程骨软骨复合体及其制备方法 | |
CN101979105A (zh) | 一种用于软骨缺损修复的组织工程支架材料及其制备方法 | |
CN105664260A (zh) | 基于石墨烯/丝素蛋白的骨组织工程三维多孔支架制备方法 | |
CN101417151A (zh) | 生物源性含钙化层骨软骨组织工程支架 | |
CN101332313B (zh) | 纵向钻孔的脱钙皮质骨关节软骨再生用支架及其制备方法 | |
CN102871774B (zh) | 一种韧带修复支架及其制备方法和用途 | |
CN102631706B (zh) | 低免疫原性猪真皮支架的制备方法 | |
CN104307044B (zh) | 一种天然组织来源的全椎间盘脱细胞材料的制备方法 | |
CN110935067A (zh) | 一种聚氨酯/脱细胞纤维环基质纤维支架及其制备和应用 | |
CN109675112B (zh) | 一种人源的脱细胞真皮基质的制备方法 | |
CN102078642B (zh) | 一种关节软骨修复再生用支架及其制备方法 | |
CN103007352B (zh) | 脱细胞纤维环基质的制备方法 | |
CN102178981B (zh) | 一种软骨修复支架材料的制备方法 | |
CN114246988B (zh) | 一种胶原纳米簇复合材料及其制备方法 | |
CN101496915B (zh) | 去基底膜无细胞的异种真皮网状层支架及其制备方法 | |
CN202458781U (zh) | 一种冻干脱细胞猪主动脉血管基质 | |
CN102068327B (zh) | 一种气管替代物的制备方法 | |
CN107469149A (zh) | 一种双相组织工程支架 | |
CN106282101A (zh) | 一种促进人羊膜间充质干细胞向软骨细胞分化的方法及应用 | |
CN208355813U (zh) | 双相组织工程支架 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant |