CN102321696A - 一种新的三萜合成酶的功能及应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种新的三萜合成酶的功能及应用。本发明提供的0s0SC8蛋白在制备三萜化合物中的应用；所述0s0SC8蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。本发明的实验证明，本发明提供水稻中0s0SC8基因的生化功能为合成(3S，13S)-malabarica-17，21-dien-3β，14-diol，从而证明，0s0SC8基因编码(3S，13S)-malabarica-17，21-dien-3β，14-diol合成酶。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域，尤其涉及一种新的三萜合成酶的功能及应用。
背景技术
三萜化合物包括游离三萜和三萜皂苷，广泛存在于高等植物中。三萜化合物是通过异戊二烯途径来合成的，其生物合成路线为：甲羟戊酸(Mevalonic acid)生成的异戊烯二磷酸(IPP)及其异构体二甲基丙烯二磷酸(DAPP)在香草二磷酸合成酶(GPS)作用下首先形成香叶二磷酸(GPP)，接着利用法呢二磷酸合成酶(FPS)转化成法呢二磷酸(FPP)，又在鲨烯合成酶(Squalene synthase，SQS)的作用下合成鲨烯，然后经鲨烯环氧酶(Squalene epoxidase，SQE)催化转变为2，3-氧化鲨烯(2，3-oxidosqualene)。2，3-氧化鲨烯在氧化鲨烯环化酶(OSCs)的作用下环化形成三萜化合物的前体物质，如β-香树素(β-amyrin)。目前已经从拟南芥、水稻、苜蓿、百脉根等不同的植物中分离得到了几十个编码OSCs酶的基因，除了合成植物甾醇的环阿屯醇合成酶(cycloartenol synthase，CAS)，还包括arabidiol synthase，羽扇醇合成酶(lupeol synthas，LUP)、β-香树素合成酶(β-Amyrin synthase，βAS)、葫芦二烯醇合成酶(cucurbitadienol，CPQ)、thalianol synthase(THA)、marneral synthase(MRN)、camelliol synthase(CAMS)、baruol synthase(BARS)、isomultiflorenolsynthase(IMS)等。另外，人们从双子叶植物中发现了羊毛甾醇合成酶(lanosterolsynthase，LAS)，并证实在拟南芥中参与了植物甾醇的合成。三萜化合物骨架在依赖细胞色素P450单加氧酶、糖基转移酶和酰基转移酶进行氧化、糖基化及酰基化等化学修饰，最终获得不同种类的三萜皂苷。
众所周知，三萜化合物是一种重要的天然药物，例如，齐墩果酸具有降低转氨酶的功能，临床用于治疗急性黄疸肝炎；人参皂苷具有增加白细胞数量、提高人体免疫力、促进物质代谢、抗疲劳、抗衰老等作用。但三萜化合物的生物学功能的了解还非常少，例如燕麦在根尖合成的燕麦苷(avenacins)具有广谱的抗菌功能，能防止多种病原菌侵染根部，发挥抗病作用。
在水稻中发现有7个可编码全长OSCs酶的基因序列，并鉴定了其中4个OSC基因的生化功能，它们分别是环阿屯醇合酶基因(0s02g04710/0s0SC3)，帕克醇(parkeol)合酶基因(0s11g08569/0s0SC9)，蓍醇B (achilleol B)合酶基因(0s11g181/0s0SC10)，以及异山苷子萜醇(isoarborinol)合酶基因(0s11g35710/0s0SC12)，还有一些OSC基因的功能不清楚。
发明内容
本发明的一个目的是提供0s0SC8蛋白的应用。
本发明提供了0s0SC8蛋白在制备三萜化合物中的应用；
所述0s0SC8蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。
所述三萜化合物的结构式如下式I所示：
式I。
所述0s0SC8蛋白的编码基因的核苷酸序列为序列表中的序列1。
本发明的另一个目的是一种制备三萜化合物的方法。
本发明提供的方法，包括如下步骤：
1)将0s0SC8蛋白的编码基因导入目的植物得到转基因植物，
2)提取步骤1)得到转基因植物的叶片，收集提取产物，即得到三萜化合物；
所述0s0SC8蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。
步骤1)中，所述蛋白的编码基因通过重组载体导入目的植物；
步骤2)中，所述提取步骤1)得到转基因植物的叶片的方法包括如下步骤：
A、用裂解液裂解所述转基因植物的叶片，得到裂解产物、过滤，收集滤液；
B、将步骤A得到的滤液用等体积正己烷萃取，收集正己烷层，再用等体积饱和NaCl水溶液洗涤，收集正己烷层，即得到三萜化合物。
步骤1)中，所述0s0SC8蛋白的编码基因的核苷酸序列为序列表中得序列1；
所述重组载体为将所述0s0SC8蛋白的编码基因插入表达载体pH7WG2D，1，得到表达所述蛋白的载体；
步骤2)中，所述裂解液按照如下方法制备：将KOH、乙醇和水混合，得到裂解液，所述KOH在所述裂解液中的浓度为10％(质量百分含量)，所述乙醇(EtOH)在所述裂解液中的浓度为80％(体积百分含量)；
所述裂解液和所述转基因植物的叶片的配比为5L∶500g；
所述裂解的温度为80℃，所述裂解的时间为2h；
所述三萜化合物的结构式如下式I所示：
式I。
所述目的植物为单子叶植物，所述单子叶植物为水稻，具体为粳稻品种中花11号。
本发明的第三个目的是提供0s0SC8蛋白的应用。
本发明提供了0s0SC8蛋白作为三萜化合物合成酶中的应用；
所述0s0SC8蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2；
所述三萜化合物的结构式如下式I所示：
式I。
本发明的第四个目的是提供一种重组载体。
本发明提供的重组载体，为将所述0s0SC8蛋白的编码基因插入表达载体pH7WG2D，1，得到表达所述蛋白的载体。
所述0s0SC8蛋白的编码基因的核苷酸序列为序列表中的序列1。
本发明的实验证明，本发明提供水稻中0s0SC8基因的生化功能为合成(3S，13S)-malabari ca-17，21-dien-3β，14-diol，从而证明，0s0SC8基因编码(3S，13S)-malabarica-17，21-dien-3β，14-diol合成酶。
附图说明
图1为RT-PCR的琼脂糖电泳图
图2为pCR8/GW/TOPO结构示意图
图3为pH7WG2D，1-0s0SC8结构示意图
图4为转0s0SC8水稻的western blot分析结果
图5为TLC检测结果
图6为GCMS检测结果
图7为质谱分析结果
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。
实施例1、0s0SC8基因的获得
根据水稻基因组序列，设计0s0SC8的引物：5’端引物：5`-ATGTGGAAGCTCAAGATTGCCGAG-3`；3’端引物：5`-TCAAGTTGGCGCTGTTGTACTTGC-3`。以粳稻品种中花11号(Oryza sativa L.spp.Japonica，水稻花培育种前景，李梅芳，作物杂志03：17-18，1991，公众可从中国科学院植物研究所获得。)花总RNA为模板，在上述引物对的引导下，RT-PCR扩增0s0SC8的cDNA序列，具体方法包括以下步骤：
1、总RNA的提取：用Trizol法(所用试剂购自Invitrogen公司)提取2周幼苗总RNA，具体方法为：收集水稻材料100mg，立即置于液氮中研磨，加入1mL Trizol试剂，充分混匀后，25℃放置5分钟；加入0.2mL氯仿，剧烈振摇15秒，25℃温育3分钟；4℃，12000g离心15分钟；将上清液转移到一个新的1.5mL离心管中，加入0.5mL异丙醇沉淀RNA；最后将RNA沉淀用1mL 75％乙醇洗涤后溶于适量经DEPC处理过的双蒸水中，-70℃保存备用。
2、第一链cDNA的合成：用Superscript II RT试剂盒(Invitrogen)并按试剂盒说明书进行操作：取5μg步骤1获得的水稻总RNA放入灭活了RNase的PCR管中，加入Oligo(dT)12-18(500mg/mL)1μL和dNTP Mix(10mM each)1μL，用DEPC处理后的双蒸水补充至12μL，混匀后在65℃下加热5分钟，然后迅速置于冰上，1分钟。短暂离心后再加入5×第一链合成缓冲液4μL、0.1M DTT 2μL和RNaseOut(40unit/μL)1μL，轻轻混匀后，42℃温育2分钟，然后加入Superscript II反转录酶(200unit/μL)1μL，混匀，42℃温育50分钟，70℃加热15分钟使酶失活，得到第一链cDNA。
3、0s0SC8cDNA的合成：取1μL步骤2获得的反转录产物cDNA为模板，在5’端引物和3’端引物的引导下，进行PCR，PCR反应体系为：Platinum(invitrogen公司)0.5μL、10×缓冲液5μL、dNTP 1μL、5’端引物(10μM/L)1μL、3’端引物(10μM/L)1μL、模板1μL、加双蒸水补充反应体系至50μL。PCR反应条件为：先95℃5分钟；再94℃45秒，60℃45秒，72℃5分钟，共35个循环；最后72℃10分钟。
反应结束后，对PCR产物进行0.8％琼脂糖凝胶电泳检测，检测结果如图1所示(泳道D15000为DNA标准分子量D15000，泳道1-5为RT-PCR产物)，得到分子量约为2.3kb的条带，与预期结果相符。
用琼脂糖凝胶回收试剂盒(北京天为时代公司)回收该片段，然后将该回收片段与载体pCR8/GW/TOPO(Invitrogen，K250020，结构示意图如图2)进行连接，连接体系为：PCR产物4μL，salt solution 1ul TOPO vector 1μL，25℃反应20min。参照Cohen等的方法，将连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞，得到重组子，根据pCR8/GW/TOPO载体上的壮观霉素抗性标记筛选阳性克隆。提取阳性克隆的质粒，送去测序，以该质粒载体上的M13F和M13R序列为引物对其进行核苷酸序列测定，测序结果表明该质粒连接的PCR产物具有序列表中的序列1所示的核苷酸，该PCR产物即为基因0s0SC8，编码的蛋白命名为0s0SC8，其氨基酸序列为序列表中的序列2。该质粒为将序列表中序列1所示的核苷酸插入pCR8/GW/TOPO中得到的质粒，命名为pCR8-0s0SC8。
序列表中的序列1由2358个碱基组成，其开放阅读框(ORF)为序列1自5’端第1-2358位碱基。序列2由785个氨基酸组成。
实施例2、转0s0SC8水稻获得及0s0SC8的功能研究
一、转0s0SC8水稻获得
1、0s0SC8物表达载体的构建
1)用限制性内切酶Mlu I将pCR8-0s0SC8完全酶切。酶切体系为：5μg质粒、2.5μL 10×酶切缓冲液、1μL Mlu I，加ddH2O补充反应体系至50μL。酶切反应条件为：37℃酶切1小时。
2)用琼脂糖电泳对酶切产物进行分离，回收线性化的产物，溶解于20μL ddH2O中。
3)将步骤2)获得的线性化的产物进行LR反应。5μl反应体系中加下列组分：0.5μL终端载体pH7WG2D，1(Karimi，M.，Inzé，D.and Depicker，A.(2002)GATEWAYvectors for Agrobacterium-mediated plant transformation，Trends in PlantScience；7(5)：193-5，公众可从中国科学院植物研究所获得。)(200ng/μl)、2μL线性化产物(50ng/μL)、1μL LR mix、1.5μl TE pH8.0，25℃温育4h。加0.5μLproteinase K，37℃，10min。
4)将LR反应的产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞，用含有壮观霉素的LB平板(spe浓度为100ug/ml)进行筛选，得到阳性克隆。
5)提取阳性克隆的质粒进行PCR鉴定，引物如下：5`-ATGTGGAAGCTCAAGATTGCCGAG-3`；5`-TCAAGTTGGCGCTGTTGTACTTGC-3`，结果表明，该质粒为将序列表中的序列1重组到pH7WG2D，1，将该重组质粒命名为pH7WG2D，1-0s0SC8(见图3)。
2、将pH7WG2D，1-0s0SC8导入农杆菌(EHA105)
1)冰浴电击杯，取50ng质粒pH7WG2D，1-0s0SC8于100μl农杆菌EHA105(A.tumefaciens，Hood，E.E.，Gelvin，S.B.，Melchers，L.S.& Hoekema，A.(1993).New Agrobacterium helper plasmids for gene transferto plants.Transgen.Res.2，208-218.公众可从中国科学院植物研究所获得。)感受态细胞，轻轻混匀，转入1mm电击杯(Bio-RAD)，盖上盖。
2)1800V电击(德国eppendorf公司)，迅速加入900μl YEB培养基，混匀，28℃，200rpm摇1h。
3)将菌液涂于含有50ug/ml利福平和100ug/ml壮观霉素的YEB固体培养基板上，28℃，两天，得到阳性克隆，提取阳性克隆的质粒送去测序，结果为该质粒为pH7WG2D，1-0s0SC8，将该阳性克隆命名为EHA105/pH7WG2D，1-0s0SC8。
3、将0s0SC8转入野生型水稻
1)在含2mg/L的2，4-D的N6培养基上诱导成熟胚的水稻(粳稻品种中花11号，以下简称为野生型水稻，)愈伤组织。
2)将EHA105/pH7WG2D，1-0s0SC8在28℃，200rpm培养到OD600＝1.0。3000rpm离心收集菌体，AAM培养基悬浮。
3)把愈伤组织在农杆菌悬浮液中浸泡30分钟，在滤纸上吸干，置于含乙酰丁香统(AS)的N6培养基上共培养3天。
4)用头孢霉素(cefotaxime)和羧苄青霉素(carbenicillin)洗去多余农杆菌，沥干。
5)置于25mg/L的hygromycin B的N6筛选培养基上筛选2周，提高hygromycinB浓度(50mg/L)继续筛选2周，
6)在包含NAA和6-BA的再生MS培养基上(16小时白昼22℃/8小时黑夜18℃)长苗，获得16株T0代转0s0SC8水稻，移栽到温室(12小时白昼30-35℃/12小时黑夜18～22℃)中生长。
4、0s0SC8过表达株系外源基因的表达验证
提取T0代转0s0SC8水稻植株叶片的总蛋白，进行western blot分析，表明0s0SC8在部分水稻株系中成功过量表达。
1)植株叶片总蛋白的提取：
剪取自然条件网室生长的生殖期(8-12周)T0代转0s0SC8水稻水稻叶片，在液氮中研磨成粉末状，用预冷的小勺将粉末装入1.5ml离心管中，每克粉末加入3ml水稻总蛋白抽提液，立即涡旋混匀，冰浴10min；8000rpm离心15min，收集蛋白上清液于新的1.5ml离心管中，加入等体积的2×SDS loading buffer，用手指轻弹混匀后，沸水浴10min。将变性的蛋白质在室温(25℃)下8000rpm离心5min，使杂质沉入管底，4℃保存备用。
水稻总蛋白抽提液配方：
2)PAGE胶电泳：
制备8％的PAGE胶，每份叶片总蛋白上样5μl，蛋白预染Marker 5μl，100V电泳10min后150V电泳1h。
3)转膜：
切取分离胶，量取长宽后，在转移缓冲液中浸泡30min；剪取同分离胶大小一样的PVDF膜，甲醇中浸泡5min后，置于转移缓冲液中浸泡15min。同时剪取和分离胶大小一样的两张滤纸，浸泡于转移缓冲液中；将海绵垫浸湿后放在转移孔板黑面上，再依次放上滤纸、分离胶、PVDF膜、滤纸、海绵垫，注意赶走各层之间的气泡，然后合上转移孔板的黑白面并夹紧；把转移芯放在电泳槽中，并加入大半槽的转膜缓冲液，按照转移孔板的黑面对应转移芯黑色面，红面对应红色面的方法，将夹板插于转移芯中，补加转膜缓冲液至blotting刻度线。按红色电极对应红线，黑色电极对应黑线的方法盖上电泳槽盖后，接上电泳仪，然后把电泳槽放于4℃冰箱中，100V转膜1h20’。
4)封闭和抗体孵育：
将膜浸于TBST缓冲液配制的5％脱脂牛奶中，4℃封闭过夜。
一抗：从脱脂牛奶中取出PVDF膜，用TBST洗去表面的牛奶后，滴去表面多余的缓冲液后，正面朝上(蛋白与PVDF膜结合的那一面)放在parafilm封口膜上(封口膜平铺于培养皿底)，将抗0s0SC8的特异性抗体13G12(由Abmart公司制备，本抗体是定制，通过合成多肽免疫小鼠细胞系获得，多肽片段是KLKIAEGGPWLKSGNSHVGRETWEFDPNFGTSEEREAVEAARIEFQKNRFRTRHTSDVLARMQLAKANNFSIDLQKEKDGNPINIDTATVSDILKKALSYFSAIQAYDGHWPGDFPGPLFTTATMIIVLYVTESLTITLSSEHHKEICRYLYNRQNIDGGWGLHAEGESSMLSTALNYTALRLLGENVDDGPDISMHKARK)按1∶500的比例用TBST缓冲液配制的1％脱脂牛奶稀释后，用移液枪滴于整张PVDF膜上，盖上培养皿盖，室温静止杂交1h。
二抗：先用TBST洗去膜表面的杂交液后，再在摇床上用TBST洗膜3次，每次10min。滴去表面多余的缓冲液后，正面朝上放在parafilm封口膜上，将康为世纪公司生产的HRP标记的山羊抗小鼠(CW0122)的二抗按1∶5000的比例用TBST缓冲液配制的1％脱脂牛奶稀释后，用移液枪滴于整张PVDF膜上，盖上培养皿盖，室温静止杂交1h。
4)化学发光和显影：
先用TBST洗去膜表面的杂交液后，再用TBST洗膜3次，每次10min。在平整的桌面上铺一张长宽约20cm的保鲜膜，用吸水纸吸去PVDF膜表面的液体后，正面朝上，平铺于保鲜膜上。将Thermo scientific公司生产的SuperSignal West Dura ExtendedDuration Substrate化学发光试剂盒中的A、B液按1∶1混合后，滴于膜的表面，静置5min。打开暗盒，剪一张长宽比暗盒盖子及底部总大小稍小的保鲜膜，铺于暗盒中，盒底部分的保鲜膜用两滴水轻轻的贴在底部。弃去膜表面的发光液，用吸水纸吸去PVDF膜表面多余液体，将PVDF膜正面朝上并且按上下方向正确地平铺于暗盒底部的保鲜膜上，再盖上盒盖部分的保鲜膜，注意盒盖部分的保鲜膜与PVDF膜之间不要产生气泡，盖好后关灯。
取出柯达X-film胶片，在右下角剪去一个三角形的角(以示方向)，观察好荧光情况后迅速准确地压在暗盒中，2s-10s(视情况而定，如果荧光强，2s即可，如果弱，可能需要1min以上)后迅速取出胶片，置于显影液中，直到条带显出，取出胶片放入水中清洗几下后，滴去多余的水后放入定影液中，2-3min后开灯观察显影效果。从定影液中取出胶片，用水清洗后晾干，观察记录后扫描保存。
以野生型水稻的花和叶片为对照。
T0代转0s0SC8水稻的western blot分析结果如图4所示，其中，WT F为野生型水稻花，WT L为野生型水稻叶片，OE8-4-OE8-10：为编号为OE8-4-OE8-10的T0代转0s0SC8水稻叶片，可以看出，野生型水稻叶片中没有目的蛋白，野生型水稻花中有目的蛋白，编号为OE8-4、OE8-5、OE8-7、OE8-8、OE8-9、OE8-10的T0代转0s0SC8水稻的叶片中有88.8KD的蛋白表达，与预期结果一致，为阳性T0代转0s0SC8水稻。
收集阳性T0代转0s0SC8水稻种子、播种、传代，直到得到T3代转0s0SC8水稻.
采用同样的方法，将空载体pH7WG2D，1转入野生型水稻中，得到转空载体水稻，同样westenblot检测，结果转空载体水稻的叶片仍然没有目的蛋白，说明得到转空载体水稻。
二、0s0SC8的功能研究
利用OE8过表达水稻株系产生(3S，13S)-malabarica-17，21-dien-3β，14-diol：
1)称编号为OE8-10的T3代转0s0SC8水稻的叶片和野生型水稻的叶片，分别约500g，液氮磨样，加入碱裂解液5L(10％KOH(w/v)，80EtOH(乙醇，v/v)，所述裂解液按照如下方法制备：将KOH、EtOH和水混合，得到裂解液，所述KOH在所述裂解液中的浓度为10％(质量百分含量)，所述EtOH在所述裂解液中的浓度为80％(体积百分含量)，80℃水浴2h，其间不断混匀样品。
2)过滤去掉沉淀，等体积正己烷萃取三次，等体积饱和NaCl水溶液洗三次，合并正己烷层，减压蒸馏，分别得到编号为OE8-10的T3代转0s0SC8水稻粗提物、野生型水稻粗提物。
3)乙醚溶粗提物样品，少量样品TLC检测：展开剂：正己烷∶乙醚＝1∶1；显色剂：2％(体积百分含量)茴香醛和2％(体积百分含量)硫酸乙酸，125℃下显色。
以转空载体水稻为对照。
将上述步骤3)得到的粗提物进行TLC检测结果见图5，OE8为编号为OE8-10的T3代转0s0SC8水稻，Z11为野生型水稻，从图中看出，编号为OE8-10的T3代转0s0SC8水稻粗提物比野生型水稻粗提物多个斑点(箭头所指)，即可能多一种化合物。
将上述步骤3)得到的粗提物进行GCMS分析，GCMS分析方法：(安捷伦7890，进样1ul；氦气流速：0.8ml./min；GC方法：柱子DB-5，进样口280℃，转移线280℃，升温程序60-220℃30℃/min，220℃保持3min，220-300℃2℃/min，300℃保持5min；MS方法：50-600MS，检测器电压1600v，电子能量-70V)，结果如图6所示，上图表示编号为OE8-10的T3代转0s0SC8水稻，下图表示野生型水稻，编号为OE8-10的T3代转0s0SC8水稻比野生型水稻多一个目的峰(箭头所指)，该目的峰对应的保留时间为43.742min，该峰的化合物的分子量为426.4。
转空载体水稻和野生型水稻的结果无显著差异。
通过上述结果看出，编号为OE8-10的T3代转0s0SC8水稻粗提物比野生型水稻粗提物多一个分子量为426.4的化合物。然后对编号为OE8-10的T3代转0s0SC8水稻进行大量提取，重复步骤1)-3)。
4)将上述粗提物在直径24mm层析柱中填入30g粒径200目的层析硅胶，用正己烷∶乙醚＝1∶1洗脱，收集组分47-62/10ml，挥干后溶于乙醚。
5)在直径24mm层析柱中填入8g粒径200目的层析硅胶，用正己烷∶乙醚＝4∶1洗脱，收集组分104-150/2ml挥干后，得到提取产物。
将提取产物进行TLC检测，结果提取产物为分子量为426.4的化合物。
6)提取3次500g叶片共得到干重14mg的提取产物/1500g叶片，取干重14mg的提取产物进行1H-、13C-NMR(400MHz)和MS分析。
提取产物的质谱分析(方法同GCMS)，结果如图7所示。
提取产物的1H-、13C-NMR(北京大学核磁中心布鲁克400MHz，溶剂峰δH＝7.28ppm，δC＝128.0ppm作为内参)，
结果如表1所示，
表1为400Hz NMR date，δppm，in C6D6
文献报道的结构数据如下(Hoshino et al.，Angew.Chem.Int.Ed.2004.43：6700-6703)：EI-MS m/z：69(100)，93(61)，135(63)，189(65)，207(45)，229(50)，247(28)，426(M+H2O，12％)，具体见表2：
表2为600Hz NMR date，δppm，in C6D6
从上述可以看出，确定提取产物为(3S，13S)-malabarica-17，21-dien-3β，14-diol，为一种三萜化合物，结构式如式I所示：
式I。
Claims (10)
1.0s0SC8蛋白在制备三萜化合物中的应用；
所述0s0SC8蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。
2.根据权利要求1所述的应用，其特征在于：
所述三萜化合物的结构式如下式I所示：
式I。
3.根据权利要求1或2所述的应用，其特征在于：
所述0s0SC8蛋白的编码基因的核苷酸序列为序列表中的序列1。
4.一种制备三萜化合物的方法，包括如下步骤：
1)将0s0SC8蛋白的编码基因导入目的植物得到转基因植物，
2)提取步骤1)得到转基因植物的叶片，收集提取产物，即得到三萜化合物；
所述0s0SC8蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。
5.根据权利要求4所述的方法，其特征在于：
步骤1)中，所述蛋白的编码基因通过重组载体导入目的植物；
步骤2)中，所述提取步骤1)得到转基因植物的叶片的方法包括如下步骤：
A、用裂解液裂解所述转基因植物的叶片，得到裂解产物、过滤，收集滤液；
B、将步骤A得到的滤液用等体积正己烷萃取，收集正己烷层，再用等体积饱和Nacl水溶液洗涤，收集正己烷层，即得到三萜化合物。
6.根据权利要求4或5所述的方法，其特征在于：
步骤1)中，所述0s0SC8蛋白的编码基因的核苷酸序列为序列表中得序列1；
所述重组载体为将所述0s0SC8蛋白的编码基因插入表达载体pH7WG2D，1，得到表达所述蛋白的载体；
步骤2)中，所述裂解液按照如下方法制备：将KOH、乙醇和水混合，得到裂解液，所述KOH在所述裂解液中的浓度为10％(质量百分含量)，所述乙醇在所述裂解液中的浓度为80％(体积百分含量)；
所述裂解液和所述转基因植物的叶片的配比为5L∶500g；
所述裂解的温度为80℃，所述裂解的时间为2h；
所述三萜化合物的结构式如下式I所示：
式I。
7.根据权利要求4-6任一所述的方法，其特征在于：所述目的植物为双子叶植物。
8.0s0SC8蛋白在作为三萜化合物合成酶中的应用；
所述0s0SC8蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2；
所述三萜化合物的结构式如下式I所示：
式I。
9.一种重组载体，为将0s0SC8蛋白的编码基因插入表达载体pH7WG2D，1，得到表达所述蛋白的载体。
10.根据权利要求9所述的重组载体，其特征在于：所述0s0SC8蛋白的氨基酸序列为序列表中的序列2。
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