CN102253017A

CN102253017A - 一种钾离子的荧光检测方法

Info

Publication number: CN102253017A
Application number: CN2011100916739A
Authority: CN
Inventors: 徐慧; 高淑丽; 徐平平; 柳全文
Original assignee: Ludong University
Current assignee: Ludong University
Priority date: 2011-04-07
Filing date: 2011-04-07
Publication date: 2011-11-23

Abstract

本发明公开了一种钾离子的荧光检测方法。对钾离子特异性DNA(5’-GGGTTAGGGTTAGGGTTAGGG-3’)进行了有序切割加工，成为两段(5’-GGG TTA GGGTTA-3’和5’-FAM-TAA GGG ATT GGG-3’)，其中一段的5’端标记了荧光素FAM。在没有钾离子存在时两段DNA链呈无规卷曲状态，容易快速吸附在纳米金的表面，荧光基团与纳米金表面靠近，荧光猝灭；加入钾离子后，两段DNA链形成G四链体结构，由于高的电荷密度和较为刚性的结构不能有效吸附在纳米金的表面，荧光基团与纳米金的距离增大，荧光增强。随钾离子浓度增加，荧光强度逐渐增强。本发明不仅具有高度的灵敏度，较好的特异性，而且操作简单。

Description

一种钾离子的荧光检测方法

技术领域

本发明涉及钾离子的检测领域，特别涉及一种钾离子的荧光检测方法。

背景技术

钾离子(K⁺)作为一种重要的生理元素，与Na⁺共同作用，在维持细胞新陈代谢、调节体液渗透压、维持酸碱平衡及保存细胞应激功能等方面发挥着极其重要的作用[Yu S P，Canzoniero M T，Choi D W.Curr.Opin.Cell Biol.，2001，13：405-411.Walz W.Neurochem.Int.，2000，36：291-300]，因此开发高灵敏度、高特异性的K⁺检测方法具有重要意义。目前，钾离子检测方法很多，[Lu M，Guo Q，Kallenbach N R.Biochemistry，1993，32(2)：598-601.YamauchiA，Hayashita T，Nishizawa S，Watanabe M，Norio T A.J.Am.Chem.Soc.，1999，121(10)：2319-2320.Crossley R，Goolamli Z，Gosper J J，et al.J.Chem.Soc.，Perkin Trans.，1994，2：513-520.Li C，Law G-L，Wong W-T.Org.Lett.，2004，6(26)：4841-4844.Baruah M，Qin W W，Vallée Renaud A L，Beljonne D，Rohand T，Dehaen W，Boens N.Org.Lett.，2005，7(20)：4377-4380.]，但这些方法大多操作复杂，离子干扰大，或不适合水相体系。

核酸适体(aptamer)是近年来发展起来的一类经体外人工合成筛选出的一段DNA或RNA分子。由于对于某一种特定的目标分子，总能找到一种或多种与之特异结合的核酸适体，并且他们与目标靶分子具有高度的亲和力和特异性。因此核酸适体为化学生物学界和生物医学界提供了一种新的高效快速识别的研究平台[Ellington A D，Szostak J W.Nature，1990，346(6287)：818-822.Breaker R R.Curr.Opin.Chem.Bio.，1997，1：26-31]。相比抗体而言，核酸适体自身稳定性好、制备合成相对简单、快速、易获得、易功能化修饰与标记，且在生物传感器设计中应用灵活等优点，近几年在生物分析检测方面备受关注。目前已经成为临床诊断、环境监测、药学研究等许多领域中的研究热点[Hermann T，Patel D J.Science，2000，287：820-825.Joyce G F.Annu.Rev.Biochem.，2004，73：791-836.]。钾离子特异性DNA(5’-GGG TTAGGG TTA GGG TTA GGG-3’)能够特异性与钾离子结合，在结合钾离子后能从无规卷曲结构变为G-四链体结构，而G-四链体结构具有重要的生物相关功能。近年来，基于核酸适体构象变化检测钾离子的方法已有文献报道[Nagatoishi S，Nojima T，Galezowska E，Juskowiak B，Takenaka S.ChemBioChem，2006，7(11)：1730-1737.He F，Tang Y L，Wang S，Li Y L，Zhu D B.J.Am.Chem.Soc.，2005，127(35)：12343-12346.Nagatoishi S，Nojima T，Juskowiak B，Takenaka S.Angew.Chem.Int.Ed.Engl.，2005，32(44)：5067-5070.Nagatoishi S，Nojima T，Galezowska E，Gluszynska A，Juskowiak B，Takenaka S.Anal.Chim.Acta.，2007，581：125-131.Ueyama H，Takagi M，Takenaka S.J.Am.Chem.Soc.，2002，124(48)：14286-14287.Radi A-E，O’Sullivan CK.Chem.Comm.，2006，32：3432-3434]。但这些方法有的需要对核酸适体进行双标记，有的需要共轭高分子，有的是荧光“关”型传感器。操作繁琐，价格昂贵，易受干扰，限制了其在实际样品检测中的应用。

纳米金是一种优秀的光学探针。它具有高消光系数，颜色具有强烈的尺寸依赖性，以其独特的光学性质和生物相容性在化学和生物检测中得到了广泛的应用。1998年Li等发现DNA单双链在纳米金表面的吸附能力不同，单链DNA为一柔性结构，暴露在外面的碱基可以通过Au-N相互作用使单链DNA吸附在纳米金表面，通过提高纳米金表面的电荷密度而有效的提高了纳米金在电解质中的稳定性。而双链DNA是刚性的，碱基被包在双螺旋内部因此无法与金发生相互作用，因此在提高电解质浓度后，纳米金就会发生聚集，宏观上呈现由红到蓝的颜色变化。因此，当纳米金分别与DNA单链或双链作用后，加入适当的盐会使得纳米金呈现不同的颜色[Li H X，Rothberg L J.J.Am.Chem.Soc.，2004，125(35)：10958-1096.]。此种性质可用于DNA的相关检测、金属离子检测和其他物质分析。后来Wang等发现G-四链体与双链DNA一样，由于高的电荷密度和较为刚性的结构不能有效吸附在纳米金的表面，加盐纳米金易聚集[Wang L H，Liu X F，Hu X G，Song S P，Fan C H.Chem.Commun.，20063780-3782.]。Zhang等对钾离子特异性DNA(5’-GGG TTA GGG TTA GGG TTA GGG-3’)进行了有序的切割加工，使一段DNA链变成两个柔性单链片段DNA-1(5’-GGG TTA GGGTTA-3’)和DNA-2(5’-TAA GGG ATT GGG-3’)，由于DNA链的长度变短，不易形成分子内二级结构，而且不影响对配体的结合能力。加入钾离子后，两段可以通过配体结合反应重新结合成G-四链体结构，并且短链DNA在金表面的吸附动力学较快，纳米金可以有效区分加入靶前后的DNA结构，实现对靶的快速比色检测[Zhang J，Wang L H，Pan D，Song S P，Boey FY C，Zhang H，Fan C H.Small，2008，4：1196-1200]。实验和理论均证明纳米金是一种高效猝灭剂，通过电子转移或能量转移几乎可以高效猝灭所有染料的荧光[Dubertret B，Calame M，Libchaber A.Biotechnol，2001，19：365-370.Fan C，Plaxco K W，Heeger A J.J.Am.Chem.Soc.，2002，124(20)：5642-5643.Dulkeith E，Morteani A C，Niedereichholz T，Klar T A，Feldmann J，Levi S A，van Veggel F C J M，Reinhoudt D N，

M，Gittins D I，Phys.Rev.Lett.，2002，89：203002-203005.]。纳米金的超猝灭性能已被用来检测DNA单碱基错配、蛋白质和汞离子[Li HX，Rothberg L J.Anal.Chem.，2004，76：5414-5417.Wang W J，Chen C L，Qian M X，Zhao X S.Anal.Biochem.，2008，373：213-219.Wang H，Wang Y X，Jin J Y，Yang R H.Anal.Chem.，2008，80：9021-9028.]。以汞离子检测为例，Wang等将一标记有荧光染料的含有T-T错配碱基的单链DNA作为探针，在高的离子强度下，无Hg²⁺时，单链DNA吸附到纳米金的表面，使得溶液的颜色从蓝灰色变为红色，同时染料靠近金表面荧光被猝灭；当有Hg²⁺存在时，由于形成T-Hg²⁺-T结构可使单链DNA形成准双链结构，不易吸附在纳米金表面，降低了裸金抵抗盐诱导团聚的能力，溶液颜色还为蓝灰色，但是由于荧光基团远离纳米金，荧光信号比无Hg²⁺要强。该传感器不需要对金纳米粒子作任何共价修饰，检测成本低；在水溶液中对Hg²⁺具有优异的灵敏度和特异性，检测限可达到4.0×10^-8M。颜色变化显著并且是荧光“开”模式。

发明内容

本发明的目的是要解决现有技术的缺陷，利用纳米金的超猝灭性、核酸适体的构象变化和纳米金对单链DNA和G-四链体吸附性能的差异，提供一种高灵敏度和特异性，操作简单的荧光“开”型钾离子检测方法。

为实现上述目的，本发明的技术方案如下：

(1)对钾离子特异性DNA进行了有序的切割加工，变成两段DNA-1和DNA-2，其中DNA-2的5’端标记荧光素。将DNA-1和DNA-2等比例混合，取20μL与5μL待测金属阳离子或水或实际样品混合，室温孵育半个小时。

(2)将10μL上述溶液加入到150μL纳米金溶液中，吸附5min后加入15μL磷酸盐缓冲溶液，加入150μL超纯水，测量其荧光发射光谱。

本发明中所说的钾离子特异性DNA序列为5’-GGGTTAGGGTTAGGGTTAGGG-3’。当体系中存在钾离子时，能够形成G四链体结构。

本发明中所说的DNA-1和DNA-2序列分别为：5’-GGG TTA GGG TTA-3’，5’-FAM-TAAGGG ATT GGG-3’。DNA-1、DNA-2与金属阳离子或水或实际样品混合后的终浓度均为4μM。

本发明中所说的待测金属阳离子的浓度指的是DNA-1、DNA-2与金属阳离子混合后的浓度。

本发明中所说的纳米金是指用柠檬酸钠还原氯金酸制备的，平均粒径13nm，浓度约3.5nM。

本发明中所说的磷酸盐缓冲溶液是指10mM PB，含0.5M NaCl，pH8.0。

本发明中所说的待测金属阳离子为钾离子，锂离子，钙离子，镁离子，铵根离子，钠离子。

本发明的积极进步效果在于：

1、本发明只需两步即可完成，大大简化了操作步骤。一般工作者只需通过简单训练即可完成，无需专业工作人员进行操作。

2、本发明40分钟之内即可完成检测。节约了检测时间。

3、本发明是荧光“开”型传感器，克服了荧光“关”型传感器易受干扰的不足。

4、本发明具有高度的灵敏度，检测限可达到3.9μM。

附图说明

图1为根据本发明的方法基于纳米金和核酸适体的钾离子检测示意图。

图2为根据本发明的方法测定的不同钾离子浓度的荧光光谱(图2a)和线性动力学范围(图2b，c)。其中[DNA-1]＝[DNA-2]＝4μM，图2a中钾离子浓度从下到上依次为：0，0.01，0.05，0.1，0.5，1，2，4，6，8，10，20，30，40，50mM。图2b和c为钾离子的两个线性动力学范围。

图3为根据本发明的方法测定的不同金属离子的荧光光谱(图3a)和荧光强度(图3b)。其中，各种金属离子浓度为20mM。

具体实施方式

下面根据附图，给出本发明优选的实施例，并予以详细的描述，使能更好地理解本发明的功能、特点。

实验仪器

所用仪器为荧光分光光度计(LS-55，美国Perkins Elmer仪器有限公司)，仪器测定条件为：脉冲式氙灯激发，激发波长为480nm，荧光光谱的扫描范围490-620nm，激发和发射狭缝宽度均为5nm，用宽度10mm石英比色皿进行测量，样品体积2mL；室温。

作为本发明实施例中试验用材料，经有序切割加工的两段DNA序列如下，由Takara公司合成并经HPLC纯化。

DNA-1：5’-GGG TTA GGG TTA-3’，DNA-2：5’-FAM-TAA GGG ATT GGG-3’，DNA-2的5’端标记荧光素FAM。

分析纯的氯化铵，氯化镁，氯化钙，氯化钠，氯化钾，氯化锂购自国药化学试剂有限公司。13nm(≈3.5nM)纳米金为柠檬酸钠还原氯金酸制备[K.C.Grabar，R.G.Freeman，M.B.Hommer，M.J.Natan，Anal.Chem.67(1995)735-743.]，于4℃保存。所有溶液均用三次蒸馏水配制。

实施例1

将10μM DNA-1和10μM DNA-2等比例混合，取20μL与5μL不同浓度钾离子或水混合，室温孵育半个小时。将10μL上述溶液加入到150μL纳米金溶液中，吸附5min后加入15μL磷酸盐缓冲溶液(10mM PB，0.5M NaCl，pH8.0)使溶液变色。加入150μL超纯水，检测其荧光发射光谱，如图2a所示，随钾离子浓度的增大荧光强度不断增加。图2b和图2c表明钾离子的浓度在0.01～10mmol/L和10mmol/L～50mmol/L范围内与荧光强度呈正比。说明本发明能够定量检测不同浓度的钾离子。检出限(S/N＝3)为3.9×10^-6mol/L。

实施例2

将钾离子换成其它金属阳离子如钙离子，镁离子，锂离子，铵离子，钠离子重复实施例1步骤，其中金属阳离子浓度为20mM，结果如图3所示。锂离子，铵根离子，钠离子也能使荧光强度发生增加，但与钾离子相比，增加幅度很小；钙离子，镁离子使荧光强度的增加幅度稍高，但也远低于钾离子。说明本发明受其它金属阳离子的干扰较小，具有比较好的选择性。

Claims

1.一种钾离子的荧光检测方法，其包括下列步骤：

(1)对钾离子特异性DNA进行了有序的切割加工，变成两段DNA-1和DNA-2，其中DNA-2的5’端标记荧光素，将DNA-1和DNA-2等比例混合，取20μL与5μL待测金属阳离子或水或实际样品混合，室温孵育半个小时。

2.如权利要求1所述的荧光检测方法，其特征在于钾离子特异性DNA序列为5’-GGGTTAGGGTTAGGGTTAGGG-3’。

3.如权利要求1或2所述的荧光检测方法，其特征在于对钾离子特异性DNA进行了有序的切割加工后的两段DNA链，其序列为，DNA-1：5’-GGG TTA GGG TTA-3’，DNA-2：5’-FAM-TAA GGG ATT GGG-3’。

4.如权利要求1所述的荧光检测方法，其特征在于所说的金属阳离子的浓度指的是DNA-1、DNA-2与金属阳离子混合后的浓度。

5.如权利要求1所述的荧光检测方法，其特征在于DNA-1、DNA-2与金属阳离子或水或实际样品混合后的终浓度均为4μM。

6.如权利要求1所述的荧光检测方法，其特征在于所用的纳米金是指用柠檬酸钠还原氯金酸制备的，平均粒径13nm，浓度约3.5nM。

7.如权利要求1所述的荧光检测方法，其特征在于磷酸盐缓冲溶液是指10mM PB，含0.5MNaCl，pH8.0。

8.如权利要求1所述的荧光检测方法，其特征在于所说的待测金属阳离子为钾离子，锂离子，钙离子，镁离子，铵根离子，钠离子。