CN101962685B - 一种基于液相芯片检测微小核糖核酸的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种检测核糖核酸的方法,尤其是一种检测微小核糖核酸(microRNA)的方法,属于生物技术领域。利用不对称PCR扩增结合液相芯片技术,先在生物样品中加入定量的外源性microRNA,将microRNA进行预扩增及扩增得到扩增产物,并将修饰后的含有microRNA特征信息的特异性检测探针与荧光微球偶联制成液相芯片,扩增产物与液相芯片杂交后通过液相芯片检测仪检测,通过比较待检测microRNA的荧光信号与外源性microRNA的荧光信号的相对水平达到相对定量检测microRNA的目的,为microRNA的定量检测提供新的途径。
Description
技术领域
本发明涉及一种检测核糖核酸的方法,尤其是一种检测微小核糖核酸的方法,属于生物技术领域。
背景技术
微小核糖核酸,英文名为microRNA,是一类长约19至23个核苷酸的非编码单链小核糖核酸分子。它们在进化上高度保守,并与动物的许多正常生理活动,如生物个体发育、组织分化、细胞调亡以及能量代谢等密切相关,同时也与许多疾病的发生及发展存在着紧密的联系。最早对于 microRNA
表达的研究是 1993 年由 Harvord
大学 Ambros
课题组报道的,他们在线虫(Caenorhabditis elegans
)体内发现了源于 lin-4 基因的一系列 microRNA
分子。随后,人们采用多种实验方法和生物信息学手段寻找microRNA 分子,至今已经在各种物种中已发现一万多种miRNA,人类已发现七百多种miRNA,随着研究的深入将会有新的miRNA被发现,并对其中一些分子的功能进行了深入研究。然而,这些研究依赖的一个技术关键是如何分离、检测microRNA 分子。特别是各种细胞或组织 microRNA
表达图谱还不清楚的时候,开发和改善检测 microRNA
的技术就显得尤为重要。目前常用的方法是先将 microRNA
分子扩增放大,然后再通过不同的方法来检测。因为 microRNA
的长度太短,与常用的 PCR 引物长度相当,因此用传统的扩增技术进行放大非常困难。一种比较常用的方法是先分离小片段 RNA 分子,然后在每一个分子的两端各加一个连接(核酸)分子(Adaptor) ,再根据连接分子来设计引物,最后进行 RT-PCR 扩增为下一步检测做好准备。检测 microRNA
的绝对定量或相对定量方法包括real time-PCR、Northern Blot、微阵列芯片(Microarray)、微球等不同的技术。real time-PCR是一种基于荧光染料或MGB探针检测microRNA 的方法,该方法简单快速,但均是专利技术,使用价格昂贵;Northern Blot 是一种在硝酸纤维素膜上利用同位素探针杂交检测microRNA 的方法,该方法程序复杂、耗时费力,虽然其稳定性和可靠性都比较高,但是这两种方法均不能高通量的检测多种microRNA;而 microarray 技术是利用微量点样等方法,将大量基因的寡核苷酸序列有序地固化于支持物表面,然后与待测生物样品中标记的靶分子杂交,再通过特定仪器对杂交信号的强度进行检测、分析,从而判断样品中靶分子数量的一种技术,但该技术灵敏度不如前两种方法,对样品起始量要求较大,一般需要1-10μg的RNA量,而且由于microRNA 碱基数过少,探针碱基序列的选择余地受限,不同microRNA 有不同的最适宜杂交温度,即使在相同的杂交条件下,也会引起很大程度的错配杂交,从而限制了对于相似序列 microRNA
的高效识别。另外,目前microRNA的相对定量检测时常用表达水平较高的内源性microRNA作为参考,如has-mir-16等,但研究发现这些表达水平较高的microRNA,如has-mir-16在各生物组织中及细胞中表达差异也较大,使得microRNA的相对定量检测存在一定困难。
发明内容
本发明要解决的技术问题是针对以上现有技术存在的缺陷,提出一种新的
microarray技术,在微球上嫁接相应microRNA的核酸分子探针,利用流式细胞分离技术,可以改善传统microarray 的错配杂交问题,并可以同时检测近百种microRNA,达到高通量检测的目的。
本发明的技术原理是:利用不对称PCR扩增结合液相芯片技术,先在生物样品中加入定量的外源性microRNA,将microRNA进行扩增得到扩增产物,并将修饰后的含有microRNA特征信息的特异性检测探针与荧光微球偶联制成液相芯片,扩增产物与液相芯片杂交后通过液相芯片检测仪检测,通过比较待检测microRNA的荧光信号与外源性microRNA的荧光信号的相对水平达到相对定量检测microRNA的目的。
本发明的技术方案通过以下步骤实现:
步骤一、制备液相芯片,从Sanger MiRBase数据库中选取成熟的microRNA序列作为探针序列,在所述探针序列的5’端加上C12 分子臂和氨基修饰,并将修饰后的探针与不同编码的荧光微球偶联,得到特异性检测微球,即液相芯片;
步骤二、设计引物和探针,在所述成熟的microRNA序列后8位反向互补序列的5’端加上CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAG组成反转录引物,剩余序列的5’端加上ACACTCCAGCTGGG组成正向引物,并设计通用正、反向引物,在通用反向引物的5’端第1位及第5位T碱基以生物素标记,在通用正向引物的第3位和第5位碱基进行锁核酸(LNA)修饰;
步骤三、在待检测的RNA中加入外源性人工合成的2种microRNA ,加入量为每50 ng待测RNA各加5 fmol;
步骤四、对待测样品RNA进行反转录反应,得到合成的cDNA;
步骤五、对所述cDNA进行预扩增反应,得到预扩增产物;
步骤六、对所述预扩增产物进行不对称PCR扩增反应,得到待测样品的PCR扩增产物;
步骤七、将所述待测样品的PCR扩增产物与特异性检测微球杂交,得到杂交反应产物;
步骤八、将所述杂交反应产物离心弃上清后,与链霉菌抗生物素蛋白-藻红蛋白反应,得到反应产物;
步骤九、用液相芯片检测仪对步骤八中的反应产物进行检测,得到检测结果。
本发明的技术方案通过以下步骤进一步实现:
步骤一中偶联的体积为25 μl,每1×106个荧光微球对应的特异性检测探针加入量为0.04~0.1 nmol。
步骤二中所述通用反向引物序列为TGGTGTCGTGGAGTCG,所述通用正向引物序列为ACACTCCAGCTGGG。
步骤三中所述外源性人工合成microRNA的序列为CAGUCAGUCAGUCAGUCAGUCAG,GACCUCCAUGUAAACGUACAA。
步骤四中反转录反应体系为10X Reverse Transcription
Buffer 2 μl, 25XdNTPs 0.8 μl, 50 U/μL 的MultiScribeTM Reverse Transcriptase 1 μl,RNAase抑制剂1 U,所述反转录引物5 nM,RNA 50 ng,补水至20 μl,反应条件为16℃ 30 min,60个循环的20℃ 30 s,42℃ 30 s,50℃ 1 s,最后85℃, 5 min灭活反转录酶,得到合成的cDNA。
步骤五中反应体系为Multiplex PCR master mix
12.5 μl,正向引物各50 nM,通用反向引物0.2 μM, 步骤四中合成的cDNA 2 μl,补充水至25 μl,反应条件为95℃ 15min,18个循环的94℃ 15s,60℃ 5s,55℃ 15s,72℃ 15s,最后72℃ 2min。
步骤六中反应体系为Multiplex PCR master mix
10 μl,通用正向引物各0.1 μM,通用反向引物1 μM, 以水1:400稀释步骤五中的预扩增产物2 μl,补充水至20 μl,反应条件为95℃ 15 min,40个循环的94℃ 15 s,60℃ 1 min,最后72℃ 2 min,94℃ 3 min。
步骤七中杂交反应体系是:33 μl的1.5×TMAC、液相芯片2.5~5 μl、待测样品的PCR扩增产物1~10 μl,空白孔以等量TE取代PCR产物,以TE补足反应体积至50 μl,52℃杂交10 min。
步骤八中加入1×TMAC稀释后浓度为4 μg/ml的链霉菌抗生物素蛋白-藻红蛋的白反应,52℃杂交10 min。
本发明所提供的相对定量检测微小核糖核酸(microRNA)的液相芯片检测方法可以用于microRNA的相对定量检测,其优点在于:1.克服了普通PCR和荧光定量PCR在多重检测方面的局限性;2.克服了固相芯片检测结果的可重复性差及敏感性不高的缺陷,本发明中较为关键的预扩增步骤可显著增加样品中低峰度的microRNA检测;3.具有检测种类多,一次反应可同时检测近百个microRNA,对于检测超过100种的microRNA,可将这些microRNA分成几组,分几次检测完成全部所需microRNA的检测;4.反应时间短、整个反应可在4小时内完成;5.本发明只需提取样品中总RNA,无需分离microRNA,简化了样品制备过程,另外,在总RNA中加入定量的外源性人工合成的microRNA作为参考,通过比较其它microRNA与外源性人工合成的microRNA的相对水平,解决了microRNA相对定量检测问题;6.由于杂交反应在液相环境中进行,可以改善传统microarray方法的错配杂交问题,本发明的液相芯片特异性强且检测准确。为microRNA的定量检测提供新的途径。
具体实施方式
实施例
本实施例检测microRNA的液相芯片,是由分别包被有特异性检测探针的荧光微球构成,其中,检测探针序列与miRBase数据库中的成熟的microRNA序列(包括2种人工合成的microRNA序列,其序列与现有Sanger MiRBase数据库中microRNA序列均不同)相同,(实际应用时具有至少一种即可),在5’端加上C12 分子臂和氨基修饰得到特异性检测探针。
步骤一、运用生物信息学知识和相关生物信息学软件检索Sanger MiRBase数据库中所有的microRNA序列信息,取成熟microRNA序列作为探针序列,在探针的5’端加上C12 分子臂和氨基修饰,得到特异性检测探针,将特异性检测探针与荧光微球偶联,成为特异性检测微球,即液相芯片。具体做法是:取200 μl (2.5×106个)羧基化的微球(购自美国Bio-Rad公司),10000 g离心2 min后弃上清,加入2-[N-吗啉代]乙磺酸(MES)(0.1 M, pH=4.5)25 μl,混匀。将特异性检测探针用MES稀释至0.1 mM,取2 μl加至反应体系中,再加入新鲜配置的10 mg/ml 1-乙基-3-(3-二甲氨丙基)碳二亚胺盐酸盐(EDC)2.5 μl(1.25~2.5 μl),混匀后室温避光孵育30 min,重复加入新鲜配置的EDC一次,再次室温避光孵育30 min,用0.5 ml吐温-20(Tween-20)(0.02% V/V)和0.5 ml十二烷基磺酸钠(SDS)(0.1% W/V)各洗涤一次,最后用200 μl Tris-EDTA(TE)重悬微球,血细胞计数器计数后混合各种微球,用TE稀释每种微球的浓度至2000个/μl,4℃避光保存。
步骤二、运用生物信息学知识和相关生物信息学软件检索Sanger MiRBase数据库中所有的microRNA序列信息,取成熟microRNA序列后8位反向互补序列的在5’端加上CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAG组成反转录引物(R),剩余序列在5’端加上ACACTCCAGCTGGG组成正向引物(F),通用反向引物(UR)序列为TGGTGTCGTGGAGTCG,通用反向引物的5’端第1位及第5位T碱基以生物素标记,通用正向引物(UF)序列为ACACTCCAGCTGGG, 5’端第3位和第5位碱基进行锁核酸(LNA)修饰;
步骤三、提取样品中总RNA,将待检测的RNA定量,每50 ng总RNA加入外源性人工合成的2种microRNA各5 fmol,外源性人工合成的microRNA序列为CAGUCAGUCAGUCAGUCAGUCAG,GACCUCCAUGUAAACGUACAA。
步骤四、反转录反应,反转录反应含10X Reverse Transcription
Buffer 2 μl, 25XdNTPs 0.8 μl, MultiScribeTM
Reverse Transcriptase(50 U/μL) 1 μl,RNAase抑制剂1 U,各种反转录引物(R)5 nM,RNA 50 ng,补水至20 μl,反应条件为16℃ 30 min,60个循环的20℃ 30 s,42℃ 30 s,50℃ 1 s,最后85℃ 5 min灭活反转录酶。
步骤五、预扩增反应,反应体系为Multiplex PCR master mix
12.5 μl,正向引物(F)各50 nM,通用反向引物(UR)0.2 μM, 步骤四合成的cDNA 2 μl,补充水至25 μl,反应条件为95℃ 15min,18个循环的94℃ 15 s,60℃ 5 s,55℃ 15 s,72℃ 15 s,最后72℃ 2 min。
步骤六、进行不对称PCR扩增,反应体系为Multiplex PCR master mix
10 μl,通用正向引物(UF)各0.1 μM,通用反向引物(UR)1 μM, 步骤五预扩增产物(以水1:400稀释)2 μl,补充水至20 μl,反应条件为95℃ 15min,40个循环的94℃ 15 s,60℃ 1 min,最后72℃ 2 min,94℃ 3 min。
步骤七、取步骤六中待测样品的PCR扩增产物与制得的特异性检测微球杂交,得到杂交反应物,PCR扩增产物与液相芯片的杂交反应体系为50 μl:1.5×氯化四甲铵(TMAC)33 μl,液相芯片5 μl,PCR扩增产物1-10μl,空白孔以等量TE取代PCR扩增产物,用TE补足反应体积至50 μl。杂交反应的条件为:52℃杂交15min;
步骤八、杂交反应产物与链霉菌抗生物素蛋白-藻红蛋白(SA-PE)进行反应,取步骤四制得的杂交反应产物10000 g离心2 min后弃上清,加入1×TMAC新鲜稀释的SA-PE (4 μg/ml)共 75 μl,52℃杂交10 min;
步骤九、通过液相芯片检测仪检测,分析数据;首先,通过液相芯片检测仪(Bio-Plex
System)直接读取以上实验中偶联特异性探针的微球,重复3次,确定Gate value的值为4000-15000,然后芯片检测仪的参数设置如下:
Events:50;Min Events:0;偶联特异性探针的微球所确定的Gate value:4000-15000。
杂交反应产物与SA-PE反应10min后上机检测。
所述主要溶液的配方如下:
20% Sarkosyl配方:Sarkosyl (N-Lauroylsarcosine)
50 g,加水至250 ml,过滤后室温储存;
1.5 × TMAC杂交缓冲液配方(250 ml):5 M TMAC 225 ml,20% Sarkosyl
1.88 ml,1 M Tris-HCl(pH8.0)18.75 ml,0.5 M EDTA(pH 8.0)3.0 ml,水1.37 ml,室温储存;
1 × TMAC杂交缓冲液配方(250 ml):5 M TMAC 150 ml,20% Sarkosyl
1.25 ml,1 M Tris-HCl(pH8.0)12.5 ml,0.5 M EDTA 2.0 ml,水84.25 ml,室温储存。
检测结果与数据分析:
1:获得各个样本每种microRNA原始荧光值(MFI);
2:将原始MFI值减去空白孔对应的荧光值得到净MFI;
3:将外源性人工合成的2种microRNA的净MFI取几何均数;
4:将各样本每种microRNA的净MFI除以步骤3得到的几何均数即可得到各个microRNA的相对表达水平。
本实施例中对一例样本中15种microRNA进行检测,并与荧光定量检测方法进行比较,结果如下:可见本发明检测方法一次性检测种类多,且与荧光定量检测方法有较高的一致性。
microRNA名称 | 空白孔MFI | 样本孔MFI | 净MFI | 相对表达量 | 荧光定量检测 |
外源microRNA-1 | 23 | 3100 | 3077 | ||
外源microRNA-2 | 32 | 4321 | 4289 | ||
hsa-let-7b | 18 | 1335 | 1317 | 0.36 | 0.3 |
hsa-mir-23a | 45 | 3452 | 3407 | 0.94 | 0.95 |
hsa-mir-23b | 42 | 7890 | 7848 | 2.16 | 2.26 |
hsa-mir-10a | 13 | 12211 | 12198 | 3.36 | 3.45 |
hsa-mir-92a-1 | 46 | 975 | 929 | 0.26 | 0.21 |
hsa-mir-32 | 12 | 3576 | 3564 | 0.98 | 1.05 |
hsa-mir-99a | 22 | 9877 | 9855 | 2.71 | 2.7 |
hsa-mir-122 | 17 | 16431 | 16414 | 4.52 | 4.3 |
hsa-mir-125b-1 | 38 | 1234 | 1196 | 0.33 | 0.39 |
hsa-mir-192 | 51 | 5678 | 5627 | 1.55 | 1.59 |
hsa-mir-324 | 34 | 557 | 523 | 0.14 | 0.19 |
hsa-mir-375 | 23 | 783 | 760 | 0.21 | 0.3 |
hsa-mir-423 | 41 | 432 | 391 | 0.11 | 0.16 |
hsa-mir-342-3p | 22 | 13353 | 13331 | 3.67 | 3.15 |
hsa-mir-636 | 18 | 6331 | 6313 | 1.74 | 1.45 |
除上述实施例外,本发明还可以有其他实施方式。凡采用等同替换或等效变换形成的技术方案,均落在本发明要求的保护范围。
序列表
<110> 江苏省疾病预防控制中心
<120> 一种基于液相芯片检测微小核糖核酸的方法
<160>
6
<210> 1
<211> 36
<212> DNA
<213>
人工序列
<220>
<221>
反转录引物(R)接头
<222>
(1)…(36)
<400>
1
CTCAACTGGT
GTCGTGGAGT CGGCAATTCA GTTGAG 36
<210> 2
<211> 14
<212> DNA
<213>
人工序列
<220>
<221>
正向引物(F)接头
<222>
(1)…(14)
<400>
2
ACACTCCAGC
TGGG 14
<210> 3
<211> 16
<212> DNA
<213>
人工序列
<220>
<221>
通用反向引物序列为(UR)
<222>
(1)…(16)
<400>
3
TGGTGTCGTG
GAGTCG 16
<210> 4
<211> 14
<212> DNA
<213>
人工序列
<220>
<221>
通用正向引物序列(UF)
<222>
(1)…(14)
<400>
4
ACACTCCAGC TGGG
14
<210> 5
<211> 23
<212> RNA
<213>
人工序列
<220>
<221>
外源性人工合成的microRNA序列一
<222>
(1)…(23)
<400>
5
CAGUCAGUCA GUCAGUCAGU CAG 23
<210> 6
<211> 21
<212> RNA
<213>
人工序列
<220>
<221>
外源性人工合成的microRNA序列二
<222>
(1)…(21)
<400>
6
GACCUCCAUG UAAACGUACA A 21
Claims (7)
1.一种基于液相芯片检测微小核糖核酸的方法,包括以下步骤:
步骤一、制备液相芯片,从Sanger MiRBase数据库中选取成熟的microRNA序列作为探针序列,在所述探针序列的5′端加上C12 分子臂和氨基修饰,并将修饰后的探针与不同编码的荧光微球偶联,得到特异性检测微球,即液相芯片;
步骤二、设计引物和探针,在所述成熟的microRNA序列后8位反向互补序列的5’端加上CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAG组成反转录引物,剩余序列的5’端加上ACACTCCAGCTGGG组成正向引物;并设计通用正、反向引物,在通用反向引物5’端第1位及第5位T碱基以生物素标记,在通用正向引物的第3位和第5位碱基进行锁核酸修饰;所述通用反向引物序列为TGGTGTCGTGGAGTCG,所述通用正向引物序列为ACACTCCAGCTGGG;
步骤三、在待检测的RNA中加入外源性人工合成的2种microRNA ,加入量为每50 ng待测RNA各加5 fmol,所述外源性人工合成的2种microRNA序列为CAGUCAGUCAGUCAGUCAGUCAG,GACCUCCAUGUAAACGUACAA;
步骤四、对待测样品RNA进行反转录反应,得到合成的cDNA;
步骤五、对所述cDNA进行预扩增反应,得到预扩增产物,预扩增反应所用引物为所述正向引物和所述通用反向引物;
步骤六、对所述预扩增产物进行不对称PCR扩增反应,得到待测样品的PCR扩增产物,不对称PCR扩增反应所用引物为所述通用正向引物和所述通用反向引物;
步骤七、将所述待测样品的PCR扩增产物与特异性检测微球杂交,得到杂交反应产物;
步骤八、将所述杂交反应产物离心弃上清后,与链霉菌抗生物素蛋白-藻红蛋白反应,得到反应产物;
步骤九、用液相芯片检测仪对步骤八中的反应产物进行检测,得到检测结果。
2.根据权利要求1所述基于液相芯片检测微小核糖核酸的方法,其特征是:步骤一中偶联的体积为25 μl,每1×106个荧光微球对应的特异性检测探针加入量为0.04~0.1 nmol。
3.根据权利要求1所述基于液相芯片检测微小核糖核酸的方法,其特征是:步骤四中反转录反应体系为10X Reverse Transcription
Buffer 2 μl, 25XdNTPs 0.8 μl, 50 U/μL 的MultiScribe™ Reverse Transcriptase 1 μl,RNAase抑制剂1 U,所述反转录引物5 nM,RNA 50 ng,补水至20 μl,反应条件为16°C 30 min, 60个循环的 20 °C 30 s, 42°C 30 s, 50°C 1 s,最后85°C, 5 min灭活反转录酶,得到合成的cDNA。
4.根据权利要求1所述基于液相芯片检测微小核糖核酸的方法,其特征是:步骤五中反应体系为Multiplex PCR master mix
12.5 μl,正向引物各50 nM,通用反向引物0.2 μM, 步骤四中合成的cDNA 2 μl,补充水至25 μl,反应条件为95 °C 15 min,18个循环的94 °C 15 s,60 °C 5 s,55 °C 15 s,72°C 15 s,最后72°C 2 min。
5.根据权利要求1所述基于液相芯片检测微小核糖核酸的方法,其特征是:步骤六中反应体系为Multiplex PCR master mix
10 μl,通用正向引物各0.1 μM,通用反向引物1 μM, 以水1:400稀释步骤五中的预扩增产物2 μl,补充水至20 μl,反应条件为95 °C 15 min,40个循环的94 °C 15 s,60 °C 1 min,最后72°C 2 min,94°C 3 min。
6.根据权利要求1所述基于液相芯片检测微小核糖核酸的方法,其特征是:步骤七中杂交反应体系是:33 μl的1.5×TMAC、液相芯片2.5~5 μl、待测样品的PCR扩增产物1~10 μl,空白孔以等量TE取代PCR产物,以TE补足反应体积至50 μl,52 ℃杂交10 min。
7.根据权利要求1所述基于液相芯片检测微小核糖核酸的方法,其特征是:步骤八中加入1×TMAC稀释后浓度为4 μg/ml的链霉菌抗生物素蛋白-藻红蛋的白反应,52℃杂交10 min。
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JP6930832B2 (ja) | 2013-11-18 | 2021-09-01 | ディアミール, エルエルシーDiamir, Llc | パーキンソン病(PD)の検出およびモニタリングのための、体液からのmiRNAを使用する方法 |
CN103667516B (zh) * | 2014-01-07 | 2014-12-10 | 山东大学齐鲁医院 | 早期结直肠腺癌miRNAs检测试剂盒或生物芯片 |
CN105002285A (zh) * | 2015-07-30 | 2015-10-28 | 中国人民解放军第三军医大学第一附属医院 | 微小rna的液态芯片恒温检测方法 |
US10975436B2 (en) | 2016-01-05 | 2021-04-13 | Diamir, Llc | Methods of using miRNA from bodily fluids for diagnosis and monitoring of neurodevelopmental disorders |
WO2017165458A1 (en) | 2016-03-21 | 2017-09-28 | Diamir, Llc | Methods of using mirnas from bodily fluids for detection and differentiation of neurodegenerative diseases |
US10781487B2 (en) | 2017-07-24 | 2020-09-22 | Diamir, Llc | miRNA-based methods for detecting and monitoring aging |
CN108531550A (zh) * | 2018-02-01 | 2018-09-14 | 武汉尚码生物科技有限公司 | 一种微粒载体的标记和鉴别方法及其应用 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101063683A (zh) * | 2007-04-30 | 2007-10-31 | 中山大学肿瘤防治中心 | 检测多种抗eb病毒抗原抗体的液相芯片试剂盒及其制备方法 |
CN101565749A (zh) * | 2009-04-15 | 2009-10-28 | 广州益善生物技术有限公司 | Cyp2c19、abcb1基因snp检测液相芯片及其检测方法 |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20060194231A1 (en) * | 2005-01-25 | 2006-08-31 | Stojanovic Milan N | Suspension arrays of cross-reactive oligonucleotide-based sensors |
-
2010
- 2010-11-11 CN CN201010539260A patent/CN101962685B/zh not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101063683A (zh) * | 2007-04-30 | 2007-10-31 | 中山大学肿瘤防治中心 | 检测多种抗eb病毒抗原抗体的液相芯片试剂盒及其制备方法 |
CN101565749A (zh) * | 2009-04-15 | 2009-10-28 | 广州益善生物技术有限公司 | Cyp2c19、abcb1基因snp检测液相芯片及其检测方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101962685A (zh) | 2011-02-02 |
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