CN101858859A - 黑果枸杞色素质量控制方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种黑果枸杞色素质量控制方法，该方法以总花色苷含量、原花青素含量和总多酚含量的测定作为质量控制指标，具有所用试剂量少，操作简单方便，灵敏度高，精密度高稳定性好等优点，可以实现对黑果枸杞色素进行生理活性的有效评价。
Description
技术领域
本发明涉及一种色素质量控制方法，尤其涉及黑果枸杞色素质量控制方法。
背景技术
黑果枸杞色素是以茄科枸杞属植物黑果枸杞(Lycium ruthenicum Murr.)的成熟果实提取的色素，有较强的抗氧化性，属于天然花色苷类植物色素，呈紫红色、粉末状，无毒，应用于医药、食品及化妆品。
黑果枸杞色素中主要含有花色苷类物质、原花青素和总多酚。其中花色苷类物质是水溶性植物色素之一，广泛存在于植物的花和果实中，属酚类化合物中的类黄酮，具有清除体内自由基、抗氧化、降血脂及防治动脉粥样硬化等作用；原花青素(Proanthocyanidins或Procyanidins，简称PC，又译原花色素、前花色素等)是植物中广泛存在的一大类天然多酚化合物的总称，具有清除人体自由基、抗氧化、抗致突变、酶抑制等活性；总多酚具有清除自由基、抗氧化的功能。
但是，黑果枸杞色素目前还没有完整的质量控制方法，不利于保证黑果枸杞色素应用的有效性。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种简单、快速、准确的黑果枸杞色素质量控制方法。
为解决上述问题，本发明所述的一种黑果枸杞色素质量控制方法，其特征在于：该方法以总花色苷含量、原花青素含量和总多酚含量的测定作为质量控制指标；其中
——总花色苷含量的测定方法是：(1)制备样品溶液：将0.05～5g黑果枸杞色素用水定容至10～100mL，再将定容液稀释1～50倍后取0.1～10mL，加入5～25mL盐酸-乙醇溶液中，在15～80℃温度下保温1～36小时后即得；(2)测定样品溶液吸光度值：用紫外-可见光分光光度计在波长为450～600nm处测定样品溶液吸光度值；(3)计算样品溶液中总花色苷含量；
——原花青素含量的测定方法是：①制备对照品溶液：将甲醇加入到儿茶素对照品中，制成每1ml含儿茶素0.1mg的溶液后即得；②制备标准曲线：分别将0.0、0.5、1、1.5、2、2.5ml的对照品溶液用甲醇定容至25ml，即得浓度为0.01～0.5mg/mL的标准使用液；③制备样品溶液：在0.01～2g黑果枸杞色素中加入甲醇，经超声处理10～40分钟后，冷却至室温，并用甲醇定容至2～100ml，摇匀，即得；④测定样品溶液中原花青素含量：在0.1～2mL样品溶液中，依次加入1～5mL香草醛甲醇溶液、0.5～2mL浓盐酸，混合均匀，室温下显色10～20mim后，在波长为400～600nm处比色即得；
——总多酚含量的测定方法是：(a)制备对照品溶液：在1～10mg没食子酸对照品中加入水，经超声溶解后定容至2～25ml，即得每1ml含没食子酸0.25g的溶液；(b)制备标准曲线：分别将0.0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5ml的对照品溶液用水定容至50ml，摇匀，即得；(c)制备样品溶液：将0.01～0.5g黑果枸杞色素用水溶解，并用水逐级稀释1～100倍，即得样品溶液；(d)测定样品溶液吸光度值：在样品溶液中加福林-酚显色剂，摇匀后加入碳酸钠溶液，定容至10ml；以加入福林-酚显色剂和碳酸钠的溶液为空白，用紫外-可见光分光光度计在波长为300-800nm处测定样品溶液吸光度值；(e)计算样品溶液中总多酚含量。
所述总花色苷含量的测定方法中的步骤(1)中盐酸的质量浓度为0.01～1％，乙醇的质量浓度为50～90％。
所述原花青素含量的测定方法中的步骤④中香草醛甲醇溶液的质量浓度为4％。
所述总多酚含量的测定方法中的步骤(d)中碳酸钠溶液的质量浓度为20％。
本发明与现有技术相比具有以下优点：
1、由于本发明采用分光光度法测定黑果枸杞色素中总花色苷、原花青素及总多酚，而该法具有所用试剂量少，操作简单方便，灵敏度高，精密度高稳定性好等优点，因此，适宜测定黑果枸杞色素的花色苷、原花青素及总多酚，从而实现对黑果枸杞色素进行生理活性的有效评价。
2、经对本发明进行精密度实验、稳定性实验、回收率实验后，可以看出本发明具有较高的精密度、在8小时内稳定性良好、准确可靠，可以实现对黑果枸杞色素有效地质量控制(参见表1、表2、表3)。
表1：精密度实验(次数n＝5)
| 测定项目 | 平均含量 | RSD(％) |
| 花色苷 | 20mg/g | 1.49 |
| 原花青素 | 22g/100g | 1.32 |
| 总多酚 | 67g/100g | 1.08 |
表2：稳定性实验(t＝8h)
| 测定项目 | 平均含量 | RSD(％) |
| 花色苷 | 21.2mg/g | 1.89 |
| 原花青素 | 22.8g/100g | 1.11 |
| 总多酚 | 66.2g/100g | 1.23 |
表3：回收率实验
| 测定项目 | 平均回收率(％) | RSD(％) |
| 花色苷 | 104.14 | 1.65 |
| 原花青素 | 101.58 | 1.90 |
| 总多酚 | 99.17 | 1.57 |
3、本发明简单、快速，易于推广。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明做进一步说明，下述实施例仅用于说明本发明，而并非对本发明的限制。
实施例1一种黑果枸杞色素质量控制方法，该方法以总花色苷含量、原花青素含量和总多酚含量的测定作为质量控制指标。其中
——总花色苷含量的测定方法是：
(1)制备样品溶液：取0.1g黑果枸杞色素，置50ml量瓶中，加水溶解，定容至刻度，摇匀。精密量取2ml，置10ml量瓶中，用水稀释至刻度，摇匀；取1ml至试管中，加入10mL0.1％盐酸-80％乙醇溶液，在25℃温度下保温24小时后即得。
(2)测定样品溶液吸光度值：用紫外-可见光分光光度计在波长为540nm处测定样品溶液吸光度值为0.47。
(3)计算样品溶液中总花色苷含量。
总花色苷含量(mg/g)＝(A×MW×DF)/b，式中A为吸光度；MW为相对分子量(取449.2)；DF为稀释倍数；b为摩尔吸光度(取26900)，得到黑果枸杞色素的总花色苷的含量为20mg/g。
——原花青素含量的测定原理：原花青素是含有儿茶素和表儿茶素单元的聚合物。原花青素本身无色，在酸性介质中与香草醛反应，可以生产深红色的花青素离子。
测定方法是：
①制备对照品溶液：将甲醇加入到儿茶素对照品中，制成每1ml含儿茶素0.1mg的溶液后即得。
②制备标准曲线：分别将0.0、0.5、1、1.5、2、2.5ml的对照品溶液置25ml量瓶中，甲醇定容至25ml，摇匀，即得浓度为0.01～0.5mg/mL的标准使用液。以甲醇为空白，在500nm波长测定吸光度A，以浓度C对吸光度A进行回归，得回归方程为A＝5.4012C+0.0014，Γ＝0.9997。
③制备样品溶液：取黑果枸杞色素0.1g，精密称定，置具塞锥形瓶中，精密加入甲醇25ml，密塞，称定重量，超声处理(功率250W，频率35KHz)20分钟后，冷却至室温，再称定重量，用甲醇补足减失的重量，定容至25ml，摇匀，即得。
④测定样品溶液中原花青素含量：用锡箔纸将试管包裹严，仅留管口用于加样。取样品1ml加入试管中，再加3ml的4％香草甲醛溶液混合，然后加入1.5ml的浓盐酸，彻底混匀，室温显色15分钟，最后在波长为500nm处比色。
含量测定结果：经计算，黑果枸杞色素原花青素含量为22g/100g。
——总多酚含量的测定方法是：
(a)制备对照品溶液：在1～10mg没食子酸对照品中加入水，经超声(功率400W，频率57KHz)溶解后定容至2～25ml，即得每1ml含没食子酸0.25g的溶液。
(b)制备标准曲线：分别将0.0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5ml的对照品溶液置于50ml量瓶中，用水定容至50ml，摇匀，即得。在760nm波长测定吸光度A，以浓度C对吸光度A进行回归，得回归方程为A＝3.0940C+0.0178，Γ＝0.9994。
(c)制备样品溶液：将0.1g黑果枸杞色素置50ml量瓶中，加水定容至50ml；精密量取1ml，置10ml量瓶中，加水稀释至刻度，摇匀，即得样品溶液。
(d)测定样品溶液吸光度值：取样品溶液1ml，置10ml量瓶中，加水6ml，加福林-酚显色剂0.5ml，摇匀，10分钟内加入20％碳酸钠溶液1.5ml，定容至刻度10ml，摇匀。以加入福林-酚显色剂和碳酸钠的溶液为空白，用紫外-可见光分光光度计在波长为760nm处测定样品溶液吸光度值。
福林-酚显色剂：称取10g钨酸钠和2.5g钼酸钠，用70ml蒸馏水溶于250ml回流瓶中，加入5ml磷酸和10ml浓盐酸，混匀，微沸回流2小时，加入15g硫酸锂、5ml蒸馏水和3滴溴水，开口沸腾15分钟(至溴水挥尽为止)，冷却至室温，定容至100ml，滤过，置棕色瓶中保存备用。使用时加入1倍蒸馏水稀释即可。
20％碳酸钠溶液的配制：称取20g无水碳酸钠，置100ml容量瓶中，加80ml水超声溶解，冷却至室温后定容至100ml，摇匀、滤过，即得。
(e)计算样品溶液中总多酚含量。
总多酚含量(g/g)＝稀释后的含量×稀释倍数×样品质量-1，得到黑果枸杞色素总多酚含量为67g/100g。
实施例2一种黑果枸杞色素质量控制方法，该方法以总花色苷含量、原花青素含量和总多酚含量的测定作为质量控制指标。其中
——总花色苷含量的测定方法是：
(1)制备样品溶液：取0.05g黑果枸杞色素，置10ml量瓶中，加水溶解，定容至刻度，摇匀。精密量取5ml，置10ml量瓶中，用水稀释至刻度，摇匀；取2ml至试管中，加入20mL0.01％盐酸-50％乙醇溶液，在15℃温度下保温36小时后即得。
(2)测定样品溶液吸光度值：用紫外-可见光分光光度计在波长为450nm处测定样品溶液吸光度值为2.5。
(3)计算样品溶液中总花色苷含量。
总花色苷含量(mg/g)＝(A×MW×DF)/b，式中A为吸光度；MW为相对分子量(取449.2)；DF为稀释倍数；b为摩尔吸光度(取26900)，得到黑果枸杞色素的总花色苷的含量为17mg/g。
——原花青素含量的测定方法是：
①制备对照品溶液、②制备标准曲线同实施例1。
③制备样品溶液：取黑果枸杞色素0.01g，精密称定，置具塞锥形瓶中，精密加入甲醇2ml，密塞，称定重量，超声处理(功率200W，频率50KHz)10分钟后，冷却至室温，再称定重量，用甲醇补足减失的重量，定容至2ml，摇匀，即得。
④测定样品溶液中原花青素含量：用锡箔纸将试管包裹严，仅留管口用于加样。取样品0.1ml加入试管中，再加1ml的4％香草甲醛溶液混合，然后加入0.5ml的浓盐酸，彻底混匀，室温显色10分钟，最后在波长为400nm处比色。
含量测定结果：经计算，黑果枸杞色素原花青素含量为21.6g/100g。
——总多酚含量的测定方法是：(a)制备对照品溶液、(b)制备标准曲线同实施例1。
(c)制备样品溶液：将0.01g黑果枸杞色素置25ml量瓶中，加水定容至25ml；精密量取5ml，置25ml量瓶中，加水稀释至刻度，摇匀，即得样品溶液。
d)测定样品溶液吸光度值：取样品溶液1ml，置10ml量瓶中，加水6ml，加福林-酚显色剂0.5ml，摇匀，10分钟内加入20％碳酸钠溶液1.5ml，定容至刻度10ml，摇匀。以加入福林-酚显色剂和碳酸钠的溶液为空白，用紫外-可见光分光光度计在波长为300nm处测定样品溶液吸光度值。
福林-酚显色剂和20％碳酸钠溶液的制备同实施例1。
(e)计算样品溶液中总多酚含量。
总多酚含量(g/g)＝稀释后的含量×稀释倍数×样品质量-1，得到黑果枸杞色素总多酚含量为65g/100g。
实施例3一种黑果枸杞色素质量控制方法，该方法以总花色苷含量、原花青素含量和总多酚含量的测定作为质量控制指标。其中
——总花色苷含量的测定方法是：
(1)制备样品溶液：取5g黑果枸杞色素，置100ml量瓶中，加水溶解，定容至刻度，摇匀。精密量取2ml，置100ml量瓶中，用水稀释至刻度，摇匀；取10ml至试管中，加入25mL1％盐酸-90％乙醇溶液，在80℃温度下保温1小时后即得。
(2)测定样品溶液吸光度值：用紫外-可见光分光光度计在波长为600nm处测定样品溶液吸光度值为1.1。
(3)计算样品溶液中总花色苷含量。
总花色苷含量(mg/g)＝(A×MW×DF)/b，式中A为吸光度；MW为相对分子量(取449.2)；DF为稀释倍数；b为摩尔吸光度(取26900)，得到黑果枸杞色素的总花色苷的含量为19mg/g。
——原花青素含量的测定方法是：
①制备对照品溶液、②制备标准曲线同实施例1。
③制备样品溶液：取黑果枸杞色素2g，精密称定，置具塞锥形瓶中，精密加入甲醇100ml，密塞，称定重量，超声处理(功率180W，频率45KHz)40分钟后，冷却至室温，再称定重量，用甲醇补足减失的重量，定容至100ml，摇匀，即得。
④测定样品溶液中原花青素含量：用锡箔纸将试管包裹严，仅留管口用于加样。取样品2ml加入试管中，再加5ml的4％香草甲醛溶液混合，然后加入2ml的浓盐酸，彻底混匀，室温显色20分钟，最后在波长为600nm处比色。
含量测定结果：经计算，黑果枸杞色素原花青素含量为21.6g/100g。
——总多酚含量的测定方法是：
(a)制备对照品溶液、(b)制备标准曲线同实施例1。
(c)制备样品溶液：将0.5g黑果枸杞色素置25ml量瓶中，加水定容至25ml；精密量取1ml，置100ml量瓶中，加水稀释至刻度，摇匀，即得样品溶液。
(d)测定样品溶液吸光度值：取样品溶液1ml，置10ml量瓶中，加水6ml，加福林-酚显色剂0.5ml，摇匀，10分钟内加入20％碳酸钠溶液1.5ml，定容至刻度10ml，摇匀。以加入福林-酚显色剂和碳酸钠的溶液为空白，用紫外-可见光分光光度计在波长为800nm处测定样品溶液吸光度值。
福林-酚显色剂和20％碳酸钠溶液的制备同实施例1。
(e)计算样品溶液中总多酚含量。
总多酚含量(g/g)＝稀释后的含量×稀释倍数×样品质量-1，得到黑果枸杞色素总多酚含量为66g/100g。
实施例4一种黑果枸杞色素质量控制方法，该方法以总花色苷含量、原花青素含量和总多酚含量的测定作为质量控制指标。其中
——总花色苷含量的测定方法是：
(1)制备样品溶液：取2g黑果枸杞色素，置100ml量瓶中，加水溶解，定容至刻度，摇匀。精密量取10ml，置100ml量瓶中，用水稀释至刻度，摇匀；取0.1ml至试管中，加入5mL1％盐酸-90％乙醇溶液，在50℃温度下保温10小时后即得。
(2)测定样品溶液吸光度值：用紫外-可见光分光光度计在波长为500nm处测定样品溶液吸光度值为0.235。
(3)计算样品溶液中总花色苷含量。
总花色苷含量(mg/g)＝(A×MW×DF)/b，式中A为吸光度；MW为相对分子量(取449.2)；DF为稀释倍数；b为摩尔吸光度(取26900)，得到黑果枸杞色素的总花色苷的含量为20mg/g。
——原花青素含量的测定方法是：
①制备对照品溶液、②制备标准曲线同实施例1。
③制备样品溶液：取黑果枸杞色素2g，精密称定，置具塞锥形瓶中，精密加入甲醇100ml，密塞，称定重量，超声处理(功率440W，频率58KHz)40分钟后，冷却至室温，再称定重量，用甲醇补足减失的重量，定容至100ml，摇匀，即得。
④测定样品溶液中原花青素含量：用锡箔纸将试管包裹严，仅留管口用于加样。取样品2ml加入试管中，再加5ml的4％香草甲醛溶液混合，然后加入2ml的浓盐酸，彻底混匀，室温显色20分钟，最后在波长为600nm处比色。
含量测定结果：经计算，黑果枸杞色素原花青素含量为21.6g/100g。
——总多酚含量的测定方法是：
(a)制备对照品溶液、(b)制备标准曲线同实施例1。
(c)制备样品溶液：将0.5g黑果枸杞色素置25ml量瓶中，加水定容至25ml；精密量取1ml，置100ml量瓶中，加水稀释至刻度，摇匀，即得样品溶液。
(d)测定样品溶液吸光度值：取样品溶液1ml，置10ml量瓶中，加水6ml，加福林-酚显色剂0.5ml，摇匀，10分钟内加入20％碳酸钠溶液1.5ml，定容至刻度10ml，摇匀。以加入福林-酚显色剂和碳酸钠的溶液为空白，用紫外-可见光分光光度计在波长为800nm处测定样品溶液吸光度值。
福林-酚显色剂和20％碳酸钠溶液的制备同实施例1。
(e)计算样品溶液中总多酚含量。
总多酚含量(g/g)＝稀释后的含量×稀释倍数×样品质量-1，得到黑果枸杞色素总多酚含量为66g/100g。
实施例5一种黑果枸杞色素质量控制方法，该方法以总花色苷含量、原花青素含量和总多酚含量的测定作为质量控制指标。其中
——总花色苷含量的测定方法是：
(1)制备样品溶液：取1g黑果枸杞色素，置100ml量瓶中，加水溶解，定容至刻度，摇匀。精密量取2ml，置100ml量瓶中，用水稀释至刻度，摇匀；取10ml至试管中，加入15mL1％盐酸-90％乙醇溶液，在70℃温度下保温3小时后即得。
(2)测定样品溶液吸光度值：用紫外-可见光分光光度计在波长为500nm处测定样品溶液吸光度值为2.35。
(3)计算样品溶液中总花色苷含量。
总花色苷含量(mg/g)＝(A×MW×DF)/b，式中A为吸光度；MW为相对分子量(取449.2)；DF为稀释倍数；b为摩尔吸光度(取26900)，得到黑果枸杞色素的总花色苷的含量为20mg/g。
——原花青素含量的测定方法是：
①制备对照品溶液、②制备标准曲线同实施例1。
③制备样品溶液：取黑果枸杞色素2g，精密称定，置具塞锥形瓶中，精密加入甲醇100ml，密塞，称定重量，超声处理(功率420W，频率47KHz)40分钟后，冷却至室温，再称定重量，用甲醇补足减失的重量，定容至100ml，摇匀，即得。
④测定样品溶液中原花青素含量：用锡箔纸将试管包裹严，仅留管口用于加样。取样品2ml加入试管中，再加5ml的4％香草甲醛溶液混合，然后加入2ml的浓盐酸，彻底混匀，室温显色20分钟，最后在波长为600nm处比色。
含量测定结果：经计算，黑果枸杞色素原花青素含量为21.6g/100g。
——总多酚含量的测定方法是：
(a)制备对照品溶液、(b)制备标准曲线同实施例1。
(c)制备样品溶液：将0.5g黑果枸杞色素置25ml量瓶中，加水定容至25ml；精密量取1ml，置100ml量瓶中，加水稀释至刻度，摇匀，即得样品溶液。
(d)测定样品溶液吸光度值：取样品溶液1ml，置10ml量瓶中，加水6ml，加福林-酚显色剂0.5ml，摇匀，10分钟内加入20％碳酸钠溶液1.5ml，定容至刻度10ml，摇匀。以加入福林-酚显色剂和碳酸钠的溶液为空白，用紫外-可见光分光光度计在波长为800nm处测定样品溶液吸光度值。
福林-酚显色剂和20％碳酸钠溶液的制备同实施例1。
(e)计算样品溶液中总多酚含量。
总多酚含量(g/g)＝稀释后的含量×稀释倍数×样品质量-1，得到黑果枸杞色素总多酚含量为66g/100g。
Claims (4)
1.一种黑果枸杞色素质量控制方法，其特征在于：该方法以总花色苷含量、原花青素含量和总多酚含量的测定作为质量控制指标；其中
——总花色苷含量的测定方法是：(1)制备样品溶液：将0.05～5g黑果枸杞色素用水定容至10～100mL，再将定容液稀释1～50倍后取0.1～10mL，加入5～25mL盐酸-乙醇溶液中，在15～80℃温度下保温1～36小时后即得；(2)测定样品溶液吸光度值：用紫外-可见光分光光度计在波长为450～600nm处测定样品溶液吸光度值；(3)计算样品溶液中总花色苷含量；
——原花青素含量的测定方法是：①制备对照品溶液：将甲醇加入到儿茶素对照品中，制成每1ml含儿茶素0.1mg的溶液后即得；②制备标准曲线：分别将0.0、0.5、1、1.5、2、2.5ml的对照品溶液用甲醇定容至25ml，即得浓度为0.01～0.5mg/mL的标准使用液；③制备样品溶液：在0.01～2g黑果枸杞色素中加入甲醇，经超声处理10～40分钟后，冷却至室温，并用甲醇定容至2～100ml，摇匀，即得；④测定样品溶液中原花青素含量：在0.1～2mL样品溶液中，依次加入1～5mL香草醛甲醇溶液、0.5～2mL浓盐酸，混合均匀，室温下显色10～20mim后，在波长为400～600nm处比色即得；
——总多酚含量的测定方法是：(a)制备对照品溶液：在1～10mg没食子酸对照品中加入水，经超声溶解后定容至2～25ml，即得每1ml含没食子酸0.25g的溶液；(b)制备标准曲线：分别将0.0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5ml的对照品溶液用水定容至50ml，摇匀，即得；(c)制备样品溶液：将0.01～0.5g黑果枸杞色素用水溶解，并用水逐级稀释1～100倍，即得样品溶液；(d)测定样品溶液吸光度值：在样品溶液中加福林-酚显色剂，摇匀后加入碳酸钠溶液，定容至10ml；以加入福林-酚显色剂和碳酸钠的溶液为空白，用紫外-可见光分光光度计在波长为300-800nm处测定样品溶液吸光度值；(e)计算样品溶液中总多酚含量。
2.如权利要求1所述的黑果枸杞色素质量控制方法，其特征在于：所述总花色苷含量的测定方法中的步骤(1)中盐酸的质量浓度为0.01～1％，乙醇的质量浓度为50～90％。
3.如权利要求1所述的黑果枸杞色素质量控制方法，其特征在于：所述原花青素含量的测定方法中的步骤④中香草醛甲醇溶液的质量浓度为4％。
4.如权利要求1所述的黑果枸杞色素质量控制方法，其特征在于：所述总多酚含量的测定方法中的步骤(d)中碳酸钠溶液的质量浓度为20％。
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Cited By (6)
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|---|---|---|---|---|
| CN102141519A (zh) * | 2010-12-30 | 2011-08-03 | 浙江现代中药与天然药物研究院有限公司 | 一种检测原花青素含量的方法 |
| CN102507558A (zh) * | 2011-11-03 | 2012-06-20 | 湖南科技大学 | 产原花色素微生物的快速检测方法 |
| CN102879500A (zh) * | 2012-10-11 | 2013-01-16 | 中国科学院西北高原生物研究所 | 一种dpph-hplc法检测黑果枸杞果汁中抗氧化成分的方法 |
| CN103483304A (zh) * | 2013-05-20 | 2014-01-01 | 宁夏润丰枸杞生物制品有限公司 | 从黑枸杞中提取花青素的工艺方法 |
| CN104198653A (zh) * | 2014-09-17 | 2014-12-10 | 山东阿如拉药物研究开发有限公司 | 一种黑枸杞的检测方法 |
| CN106124428A (zh) * | 2016-06-14 | 2016-11-16 | 安徽平唐微食疗科技有限公司 | 一种总多酚含量检测方法 |
-
2010
- 2010-05-20 CN CN201010179451A patent/CN101858859A/zh active Pending
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102141519A (zh) * | 2010-12-30 | 2011-08-03 | 浙江现代中药与天然药物研究院有限公司 | 一种检测原花青素含量的方法 |
| CN102141519B (zh) * | 2010-12-30 | 2013-03-13 | 浙江现代中药与天然药物研究院有限公司 | 一种检测原花青素含量的方法 |
| CN102507558A (zh) * | 2011-11-03 | 2012-06-20 | 湖南科技大学 | 产原花色素微生物的快速检测方法 |
| CN102879500A (zh) * | 2012-10-11 | 2013-01-16 | 中国科学院西北高原生物研究所 | 一种dpph-hplc法检测黑果枸杞果汁中抗氧化成分的方法 |
| CN103483304A (zh) * | 2013-05-20 | 2014-01-01 | 宁夏润丰枸杞生物制品有限公司 | 从黑枸杞中提取花青素的工艺方法 |
| CN104198653A (zh) * | 2014-09-17 | 2014-12-10 | 山东阿如拉药物研究开发有限公司 | 一种黑枸杞的检测方法 |
| CN104198653B (zh) * | 2014-09-17 | 2016-03-02 | 山东金诃药物研究开发有限公司 | 一种黑枸杞的检测方法 |
| CN106124428A (zh) * | 2016-06-14 | 2016-11-16 | 安徽平唐微食疗科技有限公司 | 一种总多酚含量检测方法 |
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