CN101260436B - 一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法 - Google Patents
一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101260436B CN101260436B CN 200810052845 CN200810052845A CN101260436B CN 101260436 B CN101260436 B CN 101260436B CN 200810052845 CN200810052845 CN 200810052845 CN 200810052845 A CN200810052845 A CN 200810052845A CN 101260436 B CN101260436 B CN 101260436B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- ssdna
- solution
- blm
- forming
- film
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Abstract
本发明公开了一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法,包括下述步骤:(1)将正癸烷与N,N-二乙基苯胺混合;(2)将卵磷脂和胆固醇加入到步骤(1)制成的溶液中;(3)将ssDNA溶解于乙基-(3-二甲基丙基)碳化二亚胺盐酸盐咪唑溶液中;(4)将步骤(2)制成的溶液与步骤(3)制成的溶液混合,充分震荡5分钟后静止分层,上层溶液即一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液。本发明在双层类脂膜形成之前先将ssDNA探针引入成膜液中,ssDNA的探针与双层类脂膜的形成一步完成,不仅保证了双层类脂膜的稳定性,而且ssDNA探针每次的固定化量相同,保证了方法的重复性与稳定性。
Description
技术领域
本发明涉及一种双层类脂膜成膜溶液的制备方法,特别是涉及一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法。
背景技术
双层类脂膜(BLM)是双分子层超薄度(厚度小于10nm)和两个有各向异性又相互联结的脂质界面。它具有与生物膜相似的厚度、电化学性质、渗透性和可激发性。在分子结构上具有亲水部分或极性头(polar head)和疏水部分或称非极性尾(nonpolar tail)。两亲化合物在水介质中的定向分布,导致膜脂装配成表面是亲水部分,内部是疏水部分的脂质双分子层。从生物相容性来看,BLM有很大优越性。在其它反应体系中的活性物质多被固定在刚性的类似固体体系中,在BLM中活性物质是被镶嵌于其中的,镶嵌意味着BLM中感兴趣的物质(即膜修饰物,如多肽、蛋白质、电子受体、供体、组织或整个细胞)是相对自由地顺应它的周围环境,同时BLM的存在极大地降低了界面的背景噪音。
目前报道的双层类脂膜主要有平板双层类脂膜(P-BLM),金属支撑的双层类脂膜(s-BLM),盐桥支撑的双层类脂膜(sb-BLM)及微滤膜支撑的双层类脂膜(filter-BLM)。其中平板双层类脂膜的通透性最好,存在状态也最接近真实的生物膜,但机械稳定性差,许多研究难以进行。金属支撑的双层类脂膜的稳定性虽然很好,但由于膜的一侧为金属材料,使得膜的通透性很差,不能用于膜通道等方面的研究。sb-BLM和filter-BLM稳定性和通透性介于两者之间,弥补了这方面的缺陷。将具有电子传递功能的化合物嵌入sb-BLM中,修饰后的sb-BLM可以作为电极使用,与其它电极组合,形成一个固体支撑的双层脂膜研究体系,该体系既能保持双层脂膜的自组装、超薄、易于形成等优点,又具有较好的稳定性,应用电化学手段,可以获取有关电子跨膜传递的重要信息。
基于BLMs表面核酸探针的固定化已有很多报道,目前国内外采用的方法均是BLM形成后,将ssDNA进行修饰,利用修饰物与膜之间的疏水作用或静电作用将ssDNA分子固定到BLMs上。Nikolelis等终端带有一个C16烷烃链的ssDNA(dT20)可嵌入s-BLM中作为核酸探针,由于C16烷烃链与成膜的磷脂分子的脂肪烃链之间的疏水作用和静电作用,dT20-C16与BLM有较高的结合常数,核酸探针的吸附使BLM与溶液界面的负表面电位增加,进而使膜表面的阳离子数量增加,跨膜电流增加。
本研究室也在文献报道的基础上进行了相关的研究,利用C12对设计的ssDNA进行修饰,研究结果表明:在BLMs表面固定C12修饰的ssDNA探针后,可使膜电流从十几PA增加到几百PA。虽然将ssDNA进行修饰在一定程度上能够提高固定化效果,但经过C12修饰的ssDNA价格较高,固定化效果也不十分理想,由于成膜与修饰分步进行,很难保证方法的重复性,这也限制了BLM在DNA检测领域的进一步应用。
发明内容
本发明的目的是克服现有技术中的不足,提供一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法。
本发明的技术方案概述如下:
一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法,包括下述步骤:
(1)按体积比3∶1的比例将正癸烷与N,N-二乙基苯胺混合配成溶液;
(2)将卵磷脂和胆固醇加入到步骤(1)制成的溶液中,使卵磷脂的终浓度为0.016mg/L,使胆固醇的终浓度为0.004mg/L;
(3)将ssDNA溶解于0.1mol/L的乙基-(3-二甲基丙基)碳化二亚胺盐酸盐咪唑溶液中,使ssDNA的终浓度为1-5.0OD;
(4)按体积比为1∶1的比例将步骤(2)制成的溶液与步骤(3)制成的溶液混合,充分震荡5分钟后静止分层,上层溶液即一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液。
优选的是所述ssDNA的终浓度为2.5OD。
本发明的方法通过对成膜溶液的修饰,采用共价结合的方法,在双层类脂膜形成之前先将ssDNA探针引入成膜液中,ssDNA的探针与双层类脂膜的形成一步完成,不仅保证了双层类脂膜的稳定性,而且ssDNA探针每次的固定化量相同,保证了方法的重复性与稳定性。
附图说明
图1为本发明方法制备的一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液固定化效果时间-电流曲线。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步的说明。
实施例1
一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法,包括下述步骤:
(1)按体积比3∶1的比例将正癸烷与N,N-二乙基苯胺混合配成溶液;
(2)将卵磷脂和胆固醇加入到步骤(1)制成的溶液中,使卵磷脂的终浓度为0.016mg/L,使胆固醇的终浓度为0.004mg/L;
(3)将ssDNA溶解于0.1mol/L的乙基-(3-二甲基丙基)碳化二亚胺盐酸盐咪唑溶液中,使ssDNA的终浓度为5.0OD;
(4)按体积比为1∶1的比例将步骤(2)制成的溶液与步骤(3)制成的溶液按混合,充分震荡5分钟后静止分层,上层溶液即一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液。
实施例2
一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法,包括下述步骤:
(1)按体积比3∶1的比例将正癸烷与N,N-二乙基苯胺混合配成溶液;
(2)将卵磷脂和胆固醇加入到步骤(1)制成的溶液中,使卵磷脂的终浓度为0.016mg/L,使胆固醇的终浓度为0.004mg/L;
(3)将ssDNA溶解于0.1mol/L的乙基-(3-二甲基丙基)碳化二亚胺盐酸盐咪唑溶液中,使ssDNA的终浓度为1.0OD;
(4)按体积比为1∶1的比例将步骤(2)制成的溶液与步骤(3)制成的溶液按混合,充分震荡5分钟后静止分层,上层溶液即一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液。
实施例3
一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法,包括下述步骤:
(1)按体积比3∶1的比例将正癸烷与N,N-二乙基苯胺混合配成溶液;
(2)将卵磷脂和胆固醇加入到步骤(1)制成的溶液中,使卵磷脂的终浓度为0.016mg/L,使胆固醇的终浓度为0.004mg/L;
(3)将ssDNA溶解于0.1mol/L的乙基-(3-二甲基丙基)碳化二亚胺盐酸盐咪唑溶液中,使ssDNA的终浓度为4.0OD;
(4)按体积比为1∶1的比例将步骤(2)制成的溶液与步骤(3)制成的溶液按混合,充分震荡5分钟后静止分层,上层溶液即一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液。
实施例4
一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法,包括下述步骤:
(1)按体积比3∶1的比例将正癸烷与N,N-二乙基苯胺混合配成溶液;
(2)将卵磷脂和胆固醇加入到步骤(1)制成的溶液中,使卵磷脂的终浓度为0.016mg/L,使胆固醇的终浓度为0.004mg/L;
(3)将ssDNA溶解于0.1mol/L的乙基-(3-二甲基丙基)碳化二亚胺盐酸盐咪唑溶液中,使ssDNA的终浓度为2.5OD;
(4)按体积比为1∶1的比例将步骤(2)制成的溶液与步骤(3)制成的溶液按混合,充分震荡5分钟后静止分层,上层溶液即一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液。
实施例5
1琼脂支撑(Sb)-BLMs的制备过程
第一步:将8~10cm长、直径为0.3mm的银丝和6cm长、直径为0.8mm的聚四氟乙烯管分别用洗涤剂,水和去离子水洗净,干燥,并将银丝的一部分绕成螺旋状,其直径和长度分别略小于0.8mm和4cm;
第二步:将银丝的螺旋状部分插入聚四氟乙烯管中;
第三步:将琼脂溶液煮沸融化,然后,用注射器将热的琼脂溶液灌入包括有银丝的聚四氟乙烯管中,冷却,浸泡在0.1mol/L KCl溶液中,得到sb电极备用;
第四步:将sb电极的琼脂端切出一个新鲜表面,立即将其放入实施例1制备的连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液中5分钟,然后移入电解液中,将该电极的金属丝一端和参比电极与测试仪器连接,测定膜电流和膜电位-电流关系,大约10分钟,双层类脂膜形成后,即可用于反应体系的测定。
观察ssDNA探针的固定化效果,如图1所示,图1中采样间隔:0.1S,a为实施例4制得成膜溶液的电流-时间曲线;b为乙基-(3-二甲基丙基)碳化二亚胺盐酸盐(EDC)咪唑溶液与含有N,N-二乙基苯胺(NNA)的溶液充分反应后制得成膜溶液的电流-时间曲线。
从图1可以看出,在相同条件下,引入了ssDNA之后的成膜溶液其膜电流大大增加,这与文献报道相一致,由于ssDNA在BLM上的镶嵌,使膜电阻降低,膜电流增加。
Claims (2)
1.一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法,其特征是包括下述步骤:
(1)按体积比3∶1的比例将正癸烷与N,N-二乙基苯胺混合配成溶液;
(2)将卵磷脂和胆固醇加入到步骤(1)制成的溶液中,使卵磷脂的终浓度为0.016mg/L,使胆固醇的终浓度为0.004mg/L;
(3)将ssDNA溶解于0.1mol/L的乙基-(3-二甲基丙基)碳化二亚胺盐酸盐咪唑溶液中,使ssDNA的终浓度为1-5.0OD;
(4)按体积比为1∶1的比例将步骤(2)制成的溶液与步骤(3)制成的溶液混合,充分震荡5分钟后静止分层,上层溶液即一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液。
2.根据权利要求1所述的连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法,其特征是所述ssDNA的终浓度为2.5OD。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 200810052845 CN101260436B (zh) | 2008-04-22 | 2008-04-22 | 一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 200810052845 CN101260436B (zh) | 2008-04-22 | 2008-04-22 | 一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101260436A CN101260436A (zh) | 2008-09-10 |
CN101260436B true CN101260436B (zh) | 2012-01-11 |
Family
ID=39961132
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN 200810052845 Expired - Fee Related CN101260436B (zh) | 2008-04-22 | 2008-04-22 | 一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101260436B (zh) |
-
2008
- 2008-04-22 CN CN 200810052845 patent/CN101260436B/zh not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101260436A (zh) | 2008-09-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Zhou et al. | In vivo monitoring of oxygen in rat brain by carbon fiber microelectrode modified with antifouling nanoporous membrane | |
Steinle et al. | Ion channel mimetic micropore and nanotube membrane sensors | |
DE60218187T2 (de) | Mit mehreren schichten überzogene poröse materialien und herstellungsverfahren dafür | |
Baker et al. | Biomaterials and biotechnologies based on nanotube membranes | |
CN110954686B (zh) | 混合纳米孔传感器 | |
Zhang et al. | Natural channel protein inserts and functions in a completely artificial, solid-supported bilayer membrane | |
CN110231392B (zh) | 基于dna四面体的固态纳米孔单分子蛋白质检测方法 | |
US20180067108A1 (en) | Electrochemical aptasensors with a gelatin b matrix | |
JP2013519088A5 (zh) | ||
DE112007001084T5 (de) | Nanoporenelektrode, Nanoporenmembran, Verfahren zu deren Herstellung und Oberflächenmodifikation, und deren Verwendung | |
Chen et al. | Bienzymatic glucose biosensor based on three dimensional macroporous ionic liquid doped sol–gel organic–inorganic composite | |
US20160151747A1 (en) | Porous Nanomembranes | |
Lin et al. | Gated molecular transport in highly ordered heterogeneous nanochannel array electrode | |
JP2017532723A (ja) | 小型化された電気化学セルの製造方法及び小型化された電気化学セル | |
Okuno et al. | A simple method for ion channel recordings using fine gold electrode | |
CN105907844B (zh) | 一种基于三维石墨烯-树枝状纳米金的电化学dna生物传感器及制备方法 | |
Abraham et al. | Quantitative description of the vesicle fusion mechanism on solid surfaces and the role of cholesterol | |
Zhou et al. | Versatile bottom-up synthesis of tethered bilayer lipid membranes on nanoelectronic biosensor devices | |
Hamsawahini et al. | PVDF–ErGO–GRC electrode: a single setup electrochemical system for separation, pre-concentration and detection of lead ions in complex aqueous samples | |
Mintz Hemed et al. | On-demand, reversible, ultrasensitive polymer membrane based on molecular imprinting polymer | |
CN101260436B (zh) | 一种连接有ssDNA探针的双层类脂膜成膜溶液的制备方法 | |
Said et al. | Chemically modified electrodes for recessed microelectrode array | |
Ma et al. | Defined Ion-Transfer Voltammetry of a Single Microdroplet at a Polarized Liquid/Liquid Interface | |
Labbé et al. | Electrode‐supported and free‐standing bilayer lipid membranes: Formation and uses in molecular electrochemistry | |
Barhoumi et al. | Urea impedimetric biosensor based on modified gold microelectrode with 2-amino-6-purinethiol |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
C17 | Cessation of patent right | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20120111 Termination date: 20120422 |