CN101225434B - Cpt基因芯片及其检测方法和应用 - Google Patents

Cpt基因芯片及其检测方法和应用 Download PDF

Info

Publication number
CN101225434B
CN101225434B CN2007100366075A CN200710036607A CN101225434B CN 101225434 B CN101225434 B CN 101225434B CN 2007100366075 A CN2007100366075 A CN 2007100366075A CN 200710036607 A CN200710036607 A CN 200710036607A CN 101225434 B CN101225434 B CN 101225434B
Authority
CN
China
Prior art keywords
dna
probe
rna
chip
sequence
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN2007100366075A
Other languages
English (en)
Other versions
CN101225434A (zh
Inventor
盛海辉
肖华胜
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shanghai Biotechnology Corporation
Original Assignee
SHANGHAI BIOCHIP CO Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by SHANGHAI BIOCHIP CO Ltd filed Critical SHANGHAI BIOCHIP CO Ltd
Priority to CN2007100366075A priority Critical patent/CN101225434B/zh
Publication of CN101225434A publication Critical patent/CN101225434A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN101225434B publication Critical patent/CN101225434B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种CPT基因芯片,包括:DNA-RNA-DNA探针和固定在固相载体上的Zip探针,所述DNA-RNA-DNA探针一端的DNA片段末端连接有与Zip探针互补的ZipCode序列。本发明还公开了应用上述基因芯片进行检测的方法以及该芯片在临床检测中的应用。本发明的CPT基因芯片不仅大幅提高低表达基因的检出率,而且使芯片的非特异性杂交明显降低。

Description

CPT基因芯片及其检测方法和应用
技术领域
本发明涉及一种基因芯片,尤其涉及一种基于ZipCode序列的CPT基因芯片;此外,本发明还涉及该基因芯片的检测方法与应用。
背景技术
基因芯片是人类基因组计划带来的最具应用价值的科研成果,它融合了生命科学、化学、微电子技术、计算机科学、统计学和生命信息学等多种学科的最新技术。随着微加工技术的发展,高密度寡核苷酸芯片最高密度可达上百万个探针,因此基因芯片通量水平并不受芯片技术本身制约,而是受样本的处理和基因芯片设计方法的限制。高通量单核苷酸多态性(single nucleotide polymorphism,SNP)芯片在临床诊断中的应用,仍有赖于DNA处理、芯片设计等方面的发展。
直接用基因组DNA进行SNP分型显然可以避开DNA扩增这一问题,并能同时对几百万的SNPs进行分型。低等生物的基因组复杂性较低,已成功地利用芯片直接对基因组DNA进行了多态分析,这些生物包括酵母(基因组DNA约为12Mb)和拟南芥(基因组DNA约为120Mb)。然而,人类基因组DNA虽已成功地应用于cDNA、BAC和寡核苷酸芯片比较基因组杂交(comparative genomic hybridization,CGH)芯片(IshkanianAS,Mailoff CA,Watson SK,et al.A tiling resolution DNA microarray withcomplete coverage of the human genome.Nat Genet.2004;36:299-303),但由于人类基因组DNA的高度复杂性,直接进行SNP分析的难度显然要高于低等生物,从约30亿碱基对序列中鉴别一个SNP仍是一项艰巨的挑战工作。通过近几年的研究,已有几种技术可以对人类基因组DNA进行SNP分型,包括胶体金检测技术、侵入切割(invasive cleavage)、侵入切割结合滚环扩增(rolling circle amplification)和等位基因特异性引物延伸法(allele-specific primer extension)结合信号级联放大等技术,但这些技术普遍存在DNA用量大、信噪比低、操作复杂或低多重水平等缺点,它们在疾病基因组学和药物基因组学等领域和临床诊断方面的应用,尚有待于进一步的发展和完善。另一方面,人类基因组约有2-2.5万个基因,涵盖这些人类基因组所有的基因和表达序列标签对于目前的表达谱芯片技术虽然简单,但却往往无法检测出表达水平低下的基因,即使应用RNA线性扩增技术也无法解决。提高探针长度可在一定程度上提高检出率,然而探针长度增加的同时,探针局部序列的特异性也大为降低,从而造成假阳性率大为增高。鉴于核酸扩增技术不足以解决基因表达谱和SNP芯片存在的问题,如何放大荧光信号将是提高芯片检测能力的关键所在。级联放大由于放大倍数有限,显然不如侵入切割,这也反应在基于这两种技术的基因组DNA直接进行SNP分型所用的DNA量(Gunderson KL,Steemers FJ,Lee G,et al.A genome-widescalable SNP genotyping assay using microarray technology.Nat Genet.2005;37:549-54)。侵入切割对靶DNA序列的检测是通过荧光共振能量转移(fluorescenceresonance energy transfer,FRET)来实现。它高效的信号放大作用使得基因组DNA不经扩增可直接进行SNP分型,但最大的缺陷是信噪比低下,并且探针设计较为复杂,其在SNP芯片中的最终应用尚有待于进一步发展和完善。
循环探针技术(cycling probe technology,CPT)是另一种对靶DNA信号进行放大的技术(Duck P,Alvarado-Urbina G,Burdick B,et al.Probe amplifier system basedon chimeric cycling oligonucleotides.Biotechniques.1990;9:142-8)。CPT探针为一含DNA-RNA-DNA的嵌合体,长约25-30个碱基,内含4-6个连续的嘌呤核苷酸。其原理是在等温反应中,探针与单链靶DNA序列杂交后,在核糖核酸酶H(RNase H)的作用下,DNA-RNA-DNA探针中的RNA部分被特异性切割。RNase H是一种核糖核酸内切酶,它能够特异性地水解杂交到DNA链上的RNA磷酸二酯键,故能分解RNA/DNA杂交体系中的RNA链,该酶不能消化单链RNA、单链或双链DNA。由于酶切后的探针片段的退火温度远低于反应温度,切割后的CPT探针的两端DNA部分也随之从靶DNA序列上脱落下来,使得靶DNA序列又可以与完整的探针结合,从而提高了靶DNA序列的使用率。因此,每条靶DNA序列能与许多条完整探针杂交结合,从而产生很多切割的探针片段,其量随着时间而堆积,呈线性扩增。通过结合凝胶电泳或免疫学检测分析,CPT已被成功地应用于细菌及耐药检测。由于CPT具有线性扩增的特性,在探针的两端DNA序列分别标记上荧光基团和淬灭基团,就可对荧光信号进行放大,达到实时定量检测的目的。并且RNase H对DNA-RNA-DNA探针的切割存在着序列依赖性,只有RNA部分与靶DNA序列完全匹配的探针才能被切割,因此CPT也可用于SNP检测。
与侵入切割一样,CPT最大的特点就是不需要这种链式的扩增反应,它们是对DNA或者RNA的信号进行扩增。并且由于不需要链式扩增过程,整个反应过程只要控制在探针的退火温度,不需要像PCR那样反复升温、降温,因此可以节省很多时间。并且CPT与PCR不同,它们不是放大的靶DNA序列被检测,因此可减少由于PCR自身污染造成的假阳性。只有当特异的DNA存在时,这种方法才能使信号分析累积,并可用多种仪器检测。相比于侵入切割,CPT仅设计一条序列特异性探针或两条等位基因特异性探针,设计较为简单,所能检测的基因序列更多。另一方面,在侵入切割中,酶切后的探针片段中能与靶DNA序列互补的序列长度仅比完整的探针少一个碱基,探针片段和完整的探针与靶DNA序列的退火与分离的动力学基本一致,两者与靶DNA序列的结合存在着竞争。而CPT探针与靶DNA序列结合后,是被RNase H从中间部分切开,酶切后的探针片段的退火温度远低于反应温度,脱落的探针片段不太可能再结合到靶DNA序列上,这使得CPT的信号放大效应远高于侵入切割。因此,若将CPT应用于基因芯片中,产生的信噪比将明显优于侵入切割,能大幅提高低表达基因的检出率,并降低基因组DNA直接进行SNP分型的难度,更加适用于高通量、大规模的核酸检测。
当前SNP芯片和表达谱芯片的技术已较为完善,但远不能满足生物医学研究和临床检测诊断所需。在不影响准确率的情况下,如何提高表达水平低下的基因的表达谱芯片检出率,如何将基因组DNA以最少的量直接应用于SNP芯片检测,一直是当今基因芯片技术的难点所在。虽然核酸扩增或级联放大能在一定程度上提高荧光信号,但这些技术不能根本性解决这些问题,并且操作相对较为复杂。通过改变传统的每个靶DNA序列只与一条探针杂交的策略,从增加每条靶DNA序列所能杂交的探针数目来提高每条靶DNA序列的使用率,以达到放大荧光信号的目的。其高效的信号放大效应,不仅使样本不需任何放大或扩增处理即可用于芯片杂交检测,而且能使基因组DNA更易于直接进行芯片检测,大幅提高表达谱芯片中表达水平低下的基因的检出率。
发明内容
本发明要解决的技术问题之一是提供一种CPT基因芯片,该芯片可有效放大检测信号,从而显著提高表达谱芯片中表达水平低下的基因的检出率。
本发明要解决的技术问题之二是提供一种应用上述基因芯片进行检测的方法。
本发明要解决的技术问题之三是提供上述基因芯片在临床检测中的应用。
为了解决上述技术问题,本发明通过如下技术方案实现:
在本发明的一个方面,提供了一种CPT基因芯片,包括:DNA-RNA-DNA探针和固定在固相载体上的Zip探针,所述DNA-RNA-DNA探针一端的DNA片段末端连接有与Zip探针互补的ZipCode序列。
所述DNA-RNA-DNA探针可在连接有ZipCode序列的一端DNA片段上标记有荧光基团,并在另一端DNA片段上标记有淬灭基团。
所述DNA-RNA-DNA探针可在连接有ZipCode序列的一端DNA片段上不标记荧光或淬灭基团,在另一端DNA片段上进行标记,该标记包括:荧光素标记、生物素标记、放射性元素标记、电化学发光标记和酶标记。
本发明中所述固相基质可选用本领域周知的基质,只要所述基质与所述反应物相容,不会影响检测结果就可以。
所述DNA-RNA-DNA探针的序列与靶DNA序列互补,优选该探针的RNA序列与靶DNA序列完全互补,该探针的RNA序列与探针任何序列的连续互补碱基数不超过3个。
所述DNA-RNA-DNA探针的退火温度为37~75℃。
所述DNA-RNA-DNA探针序列可包含1~10个错配碱基,较佳地,可包含l~5个错配碱基,更佳地,可包含l~2个错配碱基。
本发明基因芯片还包括至少一种对照探针,所述对照探针选自:阴性对照探针、阳性对照探针和固定化对照探针。
在本发明的另一方面,提供了一种应用上述基因芯片进行检测的方法,包括如下步骤:
(1)获取待测样品核酸;
(2)将上述的DNA-RNA-DNA探针和待测样品核酸在含RNase H酶的溶液中进行酶切,并使其反应足够时间;
(3)在适于与所述Zip探针进行杂交的条件下,在固定有该Zip探针的芯片上加入含步骤(2)酶切产物的杂交液,并使其反应足够时间;
(4)洗涤后检测杂交反应的结果。
本发明中的RNase H酶包括耐高温和不耐高温RNase H酶,耐高温RNase H酶在变性前后均可加入,而不耐高温RNase H酶在变性冷却后加入。
所述的杂交温度为25℃~72℃,所述杂交时间为1分钟~40小时。可以改变杂交条件以提高或降低杂交的严谨程度、杂交特异性。
所述杂交结果在检测前的洗涤可使用任何适当的洗涤液,该洗涤液可含有0~3%(w/w)的表面活性剂,洗涤可持续适当的时间,如l~30分钟。可以用室温的洗涤液进行洗涤,或预热后洗涤,如42℃。可用不同的洗涤液先后进行洗涤。
在本发明的另一方面,还提供了本发明的基因芯片在临床检测中的应用。
本发明的CPT基因芯片,使基因芯片的检测能力达到新的高度,不仅大幅提高表达谱芯片中表达水平低下的基因的检出率,而且由于本发明CPT探针所含的Zipcode序列与被检测物种的基因组DNA不存在同源性,使该基因芯片的非特异性杂交大大减少,此外,本发明RNase H酶的酶切反应在液相进行,比原先在固相载体上反应效率更高。
附图说明
图1是本发明的芯片杂交与信号放大的原理图;
图2是本发明的芯片杂交与信号降低的原理图;
图3是本发明实施例2的芯片杂交结果图;
图4是本发明实施例3的芯片杂交结果图;
图5是本发明实施例5的芯片杂交结果图。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明作进一步详细的说明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。
实施例1CPT探针和Zip探针设计和芯片制备
1.CPT探针设计
探针的设计标准如下:1)所选择的基因或SNP位点侧翼的序列经Blast,排除序列特异性差的基因序列或SNPs,以免造成非特异性杂交;2)SNP位点处于RNA序列中,并位于探针的中间部分;3)探针退火温度48-60℃之间,两端DNA部分的退火温度比整条探针至少低15℃,使酶切后的探针片段与靶DNA序列分离;4)探针自身互补序列不超过3个碱基对,并且探针之间不得形成二聚体,特别是RNA序列,以免产生高荧光背景;5)进行SNP Blast,确保探针序列在目的SNP位点外,无其他多态位点,以免影响杂交效率。
2.ZipCode设计
ZipCode的设计标准如下:1)Zipcode序列与被检测物种的基因组DNA不存在同源性,特别是目的基因或SNP,因此Zipcode序列能有效减少非特异性杂交;2)探针长度25个碱基对;3)退火温度不低于60℃:4)自身互补序列不超过8个碱基对。
3.ZipCode芯片的制备
(1)与ZipCode序列互补的Zip探针溶解
ZipCode序列互补的Zip探针合成,先在Zip探针的5’端加上一段连接臂,再将每条探针用TE溶液稀释,终浓度为10mM。将浓度为10mM的探针与浓度为200mM的PBS溶液于384孔板中等体积混合,以粘胶片封好384孔板,室温下振荡2分钟,离心,-20℃保存,以备点样使用。
(2)点样
将预先设计并合成好的探针通过接触式点样或喷墨式点样点载到玻片、硅片等材质的固相载体片基上,同时设立阳性和阴性对照。片基采用Cell Associates CSS-100醛基片基,GeneMachine公司的Ominigrid 100型号的点样仪,在湿度:65-75%(以FullMoon片基为准),温度为25℃的条件下点样,点样的格式为1×3,每个矩阵为8×18,点样完毕后,放置半小时后,将芯片取出,室温干燥保存。
实施例2应用具有荧光基团和淬灭基团的CPT探针对基因组DNA进行检测
1.目的基因扩增
(1)引物序列:
引物1F  5’-gtcgcaacctggtgcctataa-3’(SEQID NO:1);
引物1R  5’-tgctataagccagctgagagattt-3’(SEQ ID NO:2);
引物2F  5’-aagccaaggctatgacattct-3’(SEQ ID NO:3);
引物2R  5’-aattcccggagaacttgtgct-3’(SEQ ID NO:4)。
(2)探针序列:CY3是荧光基团,ECLIPSE是淬灭基团,中间括号内大写碱基序列为RNA序列。
rs13431727-A
5’-GATGATCGACGAGACACTCTCGCCA-ggcctt(Cy3)(ATAG)g(ECLIPSE)ggaattta-3’(SEQID NO:5);
rs13431727-T
5’-ACGACTGCGAGGTGCGGTAAGCACA-ggcctta(Cy3)(TTGG)g(ECLIPSE)gaattta-3’(SEQID NO:6);
rs13431727-C
5’-CGGTCGACGAGCTGCCGCGCAAGAT-ggcctta(Cy3)(TCGG)g(ECLIPSE)gaattta-3’(SEQID NO:7);
rs1146808-A
5’-GCGATCGCCGGGAGATATACCCAAC-ggaaatgt(Cy3)(TATC)a(ECLIPSE)aattatctg-3’(SEQ ID NO:8);
rs1146808-C
5’-GACATTCGCGATCGCCGCCCGCTTT-ggaaatgt(Cy3)(TCTC)a(ECLIPSE)aattatct-3’(SEQ ID NO:9);
rs1146808-C
5’-TCGTGCCGGACTCGAGCACCAATAC-ggaaatgt(Cy3)(TGTC)a(ECLIPSE)aattatct-3’(SEQ ID NO:10)。
用SEQ ID NO:1~4所示序列的引物进行PCR扩增,在60μl反应体系进行,反应体系是0.3mM dNTP、10mM Tris-HCl、50mM KCl、2mM MgCl2、20% Q solution(Qiagen)、上游和下游引物的浓度0.16μM、基因组DNA 60ng,Taq酶1.2U(Takara)。应用Touch-down PCR反应程序[Don RH,Cox PT,Wainwright BJ,Baker K,MattickJS.’Touchdown’PCR to circumvent spurious priming during gene amplification.Nucleic Acids Res.1991,19:4008]:94℃变性5mins;94℃变性40s,64℃退火1min,每个循环降低0.5℃,72℃延伸30s,共10个循环;然后94℃变性40s,59℃退火40s,72℃延伸30s,共30个循环;最后72℃延伸5mins。
2.PCR产物单链化处理
取上述PCR产物5μl,进行扩增,反应体系含0.3mM dNTP、10mM Tris-HCl、50mM KCl、2mM MgCl2、20% Q solution(Qiagen)、下游引物的浓度0.16μM和Taq酶0.6U(Takara)。PCR循环参数:94℃变性5min;然后94℃变性40s,56℃退火40s,72℃延伸50s,共35个循环。PCR产物用QIAquick PCR Purification Kit(Qiagen,Cat.No.28106)纯化,操作按照试剂盒说明书。
3.酶切反应
将上述的PCR产物95℃变性10分钟,立即置于冰上,加入RNase H混匀,用于酶切反应。反应体系:275mM KCl,50mM Tris-HCl(pH 8.3@25℃),3mM MgCl2,10mM DTT,0.05%SDS,15U RNase H,200ng纯化PCR产物,1nM CPT探针。60℃温浴15分钟,随后加入1μl的0.1M EDTA终止反应。
4.杂交和洗涤
酶切产物与等量的杂交液混合,用ZipCode芯片进行杂交,55℃1小时。然后用含0.5×SSC和0.1%SDS洗液洗涤5分钟,最后用ddH2O洗涤15秒。
5.检测杂交结果
芯片杂交与信号放大的原理如图1所示,当RNase H从中间RNA部分切开探针,标记有淬灭基团的游离端DNA片段和连接有ZipCode序列并标记有荧光基团的DNA片段分开,当ZipCode序列再与ZipCode芯片上的Zip探针杂交,并通过洗涤去除淬灭基团后,使芯片的荧光信号放大。
洗涤后的芯片,经甩干后,即可用激光扫描仪进行扫描(这里用的是GenePix4000B共聚焦激光扫描仪,也可以用其他的激光扫描仪)。扫描杂交后的芯片得到的杂交结果如图3所示,再用GenePix Pro处理图像得到数据文件,然后对数据文件进行分析就可以判断目的序列。
实施例3应用仅有荧光基团的CPT探针对基因组DNA进行检测
1.目的基因扩增
(1)引物序列:
引物1F  5’-gtcgcaacctggtgcctataa-3’(SEQ ID NO:1);
引物1R  5’-tgctataagccagctgagagattt-3’(SEQ ID NO:2);
引物2F  5’-aagccaaggctatgacattct-3’(SEQ ID NO:3);
引物2R  5’-aattcccggagaacttgtgct-3’(SEQ ID NO:4)。
(2)探针序列:CY3是荧光基团,中间括号内大写碱基序列为RNA序列。
rs13431727-A
5’-GATGATCGACGAGACACTCTCGCCA-ggcctt(ATAG)gggaattta(Cy3)-3’(SEQID NO:11);
rs13431727-T
5’-ACGACTGCGAGGTGCGGTAAGCACA-ggcctta(TTGG)ggaattta(Cy3)-3’(SEQID NO:12);
rs13431727-C
5’-CGGTCGACGAGCTGCCGCGCAAGAT-ggcctta(TCGG)ggaattta(Cy3)-3’(SEQID NO:13);
rs1146808-A
5’-GCGATCGCCGGGAGATATACCCAAC-ggaaatgt(TATC)aaattatctg(Cy3)-3’(SEQ ID NO:14);
rs1146808-C
5’-GACATTCGCGATCGCCGCCCGCTTT-ggaaatgt(TCTC)aaattatct(Cy3)-3’(SEQ ID NO:15);
rs1146808-C
5’-TCGTGCCGGACTCGAGCACCAATAC-ggaaatgt(TGTC)aaattatct(Cy3)-3’(SEQ ID NO:16)。
用SEQ ID NO:1~4所示序列的引物进行PCR扩增,在60μl反应体系进行,反应体系是0.3mM dNTP、10mM Tris-HCl、50mM KCl、2mM MgCl2、20%Q solution(9iagen)、上游和下游引物的浓度0.16μM、基因组DNA 60ng,Taq酶1.2U(Takara)。应用Touch-down PCR反应程序(同实施例2):94℃变性5mins;94℃变性40s,64℃退火1min,每个循环降低0.5℃,72℃延伸30s,共10个循环;然后94℃变性40s,59℃退火40s,72℃延伸30s,共30个循环;最后72℃延伸5mins。
2.接着依次进行PCR产物单链化处理、酶切反应、杂交和洗涤,具体操作步骤和反应条件同实施例2。
3.检测杂交结果
芯片杂交与信号降低的原理如图2所示,当RNase H从中间RNA部分切开探针,标记有荧光基团的游离端DNA片段和连接有ZipCode序列的DNA片段分开,当ZipCode序列再与ZipCode芯片上的Zip探针杂交,并通过洗涤去除荧光基团后,使芯片的荧光信号降低。
洗涤后的芯片,经甩干后,即可用激光扫描仪进行扫描(这里用的是GenePix4000B共聚焦激光扫描仪,也可以用其他的激光扫描仪)。扫描杂交后的芯片得到的杂交结果如图4所示,再用GenePix Pro处理图像得到数据文件,然后对数据文件进行分析就可以判断目的序列。
实施例4应用具有荧光基团和淬灭基团的CPT探针对RNA进行检测
1.总RNA抽提(TRIzol法)
(1)100mg甲状腺组织可以加入1ml Trizol,用液氮研磨或采用电动匀浆器充分打碎组织块。
(2)加入约1/5体积的氯仿,上下颠倒充分混匀1分钟左右,室温下静置5分钟。
(3)4℃,12,000rpm离心15分钟后小心将上清液转入新的1.5ml离心管,加入等体积的异丙醇,轻轻颠倒混匀,室温静置5分钟。
(4)4℃,12000rpm离心10分钟后,去上清,向沉淀中加入2/5体积的70%醇,4℃,12000rpm离心洗涤沉淀15分钟。
(5)去上清,沉淀室温晾干后加入适量无RNA酶的水充分溶解沉淀,测定A260和A280值。
2.cDNA探针的制备
(1)从-70冰箱中取出RNA,在室温下解冻,然后在0.2ml PCR管中配制反应溶液。
总RNA                              5μg
随机引物6聚体(5μg/μl)            1μl
10mM dNTP mix                      1μl
无核酸酶的水                       Xμl(补充水至12μl)
总体积                             12μl
(2)70℃预变性10min,立即置于冰上冷却2min,随后在PCR管中配制eDNA第一链合成反应体系
5×first-strand buffer             4μl
0.1M DTT                           2μl
RNA抑制剂                          1μl
总体积                             19μl
42℃保温2min后加入1μl Superscript II(200U/μl)(Invitrogen,USA)。
(3)42℃保温2小时,70℃变性10min。
3.酶切反应
探针序列:CY3是荧光基团,ECLIPSE是淬灭基团,中间括号内大写碱基序列为RNA序列。
rs13431727-A
5’-GATGATCGACGAGACACTCTCGCCA-ggcctt(Cy3)(ATAG)g(ECLIPSE)ggaattta-3’(SEQID NO:5);
rs13431727-T
5’-ACGACTGCGAGGTGCGGTAAGCACA-ggcctta(Cy3)(TTGG)g(ECLIPSE)gaattta-3’(SEQID NO:6);
rs13431727-C
5’-CGGTCGACGAGCTGCCGCGCAAGAT-ggcctta(Cy3)(TCGG)g(ECLIPSE)gaattta-3’(SEQID NO:7)。
cDNA于95℃变性10分钟,立即置于冰上,加入RNase H混匀,用于酶切反应。反应体系:275mMKCl,50mM Tris-HCl(pH 8.3@25℃),3mM MgCl2,10mM DTT,0.05%SDS,20U RNase H,1nM CPT探针,15μgcDNA。60℃温浴60分钟。
4.杂交和洗涤
酶切产物与等量的杂交液混合,用ZipCode芯片进行杂交,55℃1小时。然后用含0.5×SSC和0.1%SDS洗液洗涤5分钟,最后用ddH2O洗涤15秒。
洗涤后的芯片,经甩干后,即可用激光扫描仪进行扫描(这里用的是GenePix4000B共聚焦激光扫描仪,也可以用其他的激光扫描仪)。扫描杂交后的芯片得到的杂交结果图,再用GenePix Pro处理图像得到数据文件,然后对数据文件进行分析就可以判断基因表达情况。
实施例5应用具有荧光基团和淬灭基团的CPT探针进行DNA直接杂交的检测
探针序列:CY3是荧光基团,ECLIPSE是淬灭基团,中间括号内大写碱基序列为RNA序列。
b1a25’-ACGACTGCGAGGTGCGGTAAGCACA-cttgtcga(Cy3)(TTCTT)C(ECLIPSE)ttgggat(SEQ ID NO:17);
b1aZ 5’-CGGTCGACGAGCTGCCGCGCAAGAT-gccaagag(Cy3)(GTAAT)G(ECLIPSE)aaggaa(SEQ ID NO:18);
EH105’-GCGATCGCCGGGAGATATACCCAAC-ccatctcg(Cy3)(AAAAA)A(ECLIPSE)cggtgaa(SEQ ID NO:19);
EH15’-GACATTCGCGATCGCCGCCCGCTTT-tcagtaccta(Cy3)(AAAGA)T(ECLIPSE)attcagct(SEQ ID NO:20)。
抽提的DNA用DNase I进行片段化,反应体系包括:
Figure G200710036607520070207D000111
37℃温浴5min,然后95℃15min。
片段化产物95℃变性10分钟,立即置于冰上,加入RNase H混匀,用于酶切。反应体系:275mM KCl,50mM Tris-HCl(pH 8.3@25℃),3mM MgCl2,10mM DTT,0.05%SDS,20U RNase H,1nM CPT探针。50℃温浴120分钟。然后酶切产物与等量的杂交液混合,用ZipCode芯片进行杂交,55℃1小时。然后用含0.5×SSC和0.1%SDS洗液洗涤5分钟,最后用ddH2O洗涤15秒。
洗涤后的芯片,经甩干后,即可用激光扫描仪进行扫描(这里用的是GenePix4000B共聚焦激光扫描仪,也可以用其他的激光扫描仪)。扫描杂交后的芯片得到的杂交结果如图5所示,再用GenePix Pro处理图像得到数据文件,然后对数据文件进行分析就可以判断目的序列。
实施例6应用仅有荧光基团的CPT探针进行DNA直接杂交的检测
探针序列:CY3是荧光基团,ECLIPSE是淬灭基团,中间括号内大写碱基序列为RNA序列。
bla2  5’-ACGACTGCGAGGTGCGGTAAGCACA-cttgtcga(TTCTT)Cttgggat(Cy3)(SEQ ID NO:21);
blaZ 5’-CGGTCGACGAGCTGCCGCGCAAGAT-gccaagag(GTAAT)Gaaggaa(Cy3)(SEQ ID NO:22);
EH105’-GCGATCGCCGGGAGATATACCCAAC-ccatctcg(AAAAA)Acggtgaa(Cy3)(SEQ ID NO:23);
EH15’-GACATTCGCGATCGCCGCCCGCTTT-tcagtaccta(AAAGA)Tattcagct(Cy3)(SEQ ID NO:24)。
抽提的DNA用DNase I进行片段化,反应体系包括:
Figure G200710036607520070207D000121
37℃温浴5min,然后95℃15min。
片段化产物95℃变性10分钟,立即置于冰上,加入RNase H混匀,用于酶切。反应体系:275mM KCl,50mM Tris-HCl(pH 8.3@25℃),3mM MgCl2,10mM DTT,0.05%SDS,20U RNase H,1nM CPT探针。50℃温浴120分钟。然后酶切产物与等量的杂交液混合,用ZipCode芯片进行杂交,55℃1小时。然后用含0.5×SSC和0.1%SDS洗液洗涤5分钟,最后用ddH2O洗涤15秒。
洗涤后的芯片,经甩干后,即可用激光扫描仪进行扫描(这里用的是GenePix4000B共聚焦激光扫描仪,也可以用其他的激光扫描仪)。扫描杂交后的芯片得到杂交结果图,再用GenePix Pro处理图像得到数据文件,然后对数据文件进行分析就可以判断目的序列。
序列表
<110>上海生物芯片有限公司
<120>CPT基因芯片及其检测方法和应用
<130>NP-07-11228
<160>24
<170>PatentIn version 3.3
<210>1
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<223>引物
<400>1
gtcgcaacct ggtgcctata a         21
<210>2
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<223>引物
<400>2
tgctataagc cagctgagag attt      24
<210>3
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<223>引物
<400>3
aagccaaggc tatgacattct          21
<210>4
<211>21
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<223>引物
<400>4
aattcccgga gaacttgtgc t                              21
<210>5
<211>44
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(31)..(31)
<220>
<221>modified_base
<222>(36)..(36)
<400>5
gatgatcgac gagacactct cgccaggcct tataggggaa ttta    44
<210>6
<211>44
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(32)..(32)
<220>
<221>modified_base
<222>(37)..(37)
<400>6
acgactgcga ggtgcggtaa gcacaggcct tattggggaa ttta    44
<210>7
<211>44
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(32)..(32)
<220>
<221>modified_base
<222>(37)..(37)
<400>7
cggtcgacga gctgccgcgc aagatggcct tatcggggaa ttta    44
<210>8
<211>47
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(33)..(33)
<220>
<221>modified_base
<222>(38)..(38)
<400>8
gcgatcgccg ggagatatac ccaacggaaa tgttatcaaa ttatctg    47
<210>9
<211>46
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(33)..(33)
<220>
<221>modified_base
<222>(38)..(38)
<400>9
gacattcgcg atcgccgccc gctttggaaa tgttctcaaa ttatct    46
<210>10
<211>46
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(33)..(33)
<220>
<221>modified_base
<222>(38)..(38)
<400>10
tcgtgccgga ctcgagcacc aatacggaaa tgttgtcaaa ttatct    46
<210>11
<211>44
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(44)..(44)
<400>11
gatgatcgac gagacactct cgccaggcct tataggggaa ttta    44
<210>12
<211>44
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(44)..(44)
<400>12
acgactgcga ggtgcggtaa gcacaggcct tattggggaa ttta    44
<210>13
<211>44
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(44)..(44)
<400>13
cggtcgacga gctgccgcgc aagatggcct tatcggggaa ttta       44
<210>14
<211>47
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(47)..(47)
<400>14
gcgatcgccg ggagatatac ccaacggaaa tgttatcaaa ttatctg    47
<210>15
<211>46
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(46)..(46)
<400>15
gacattcgcg atcgccgccc gctttggaaa tgttctcaaa ttatct    46
<210>16
<211>46
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(46)..(46)
<400>16
tcgtgccgga ctcgagcacc aatacggaaa tgttgtcaaa ttatct    46
<210>17
<211>46
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified base
<222>(33)..(33)
<220>
<221>modified_base
<222>(39)..(39)
<400>17
acgactgcga ggtgcggtaa gcacacttgt cgattcttct tgggat    46
<210>18
<211>45
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(33)..(33)
<220>
<221>modified_base
<222>(39)..(39)
<400>18
cggtcgacga gctgccgcgc aagatgccaa gaggtaatga aggaa        45
<210>19
<211>46
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(33)..(33)
<220>
<221>modified_base
<222>(39)..(39)
<400>19
gcgatcgccg ggagatatac ccaacccatc tcgaaaaaac ggtgaa       46
<210>20
<211>49
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(35)..(35)
<220>
<221>modified_base
<222>(41)..(41)
<400>20
gacattcgcg atcgccgccc gcttttcagt acctaaaaga tattcagct    49
<210>21
<211>46
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(46)..(46)
<400>21
acgactgcga ggtgcggtaa gcacacttgt cgattcttct tgggat    46
<210>22
<211>45
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(45)..(45)
<400>22
cggtcgacga gctgccgcgc aagatgccaa gaggtaatga aggaa     45
<210>23
<211>46
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(46)..(46)
<400>23
gcgatcgccg ggagatatac ccaaeccatc tcgaaaaaac ggtgaa       46
<210>24
<211>49
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<221>misc_feature
<222>(1)..(25)
<220>
<221>modified_base
<222>(49)..(49)
<400>24
gacattcgcg atcgccgccc gcttttcagt acctaaaaga tattcagct    49

Claims (8)

1.一种循环探针技术基因芯片,包括:DNA-RNA-DNA探针和固定在固相载体上的Zip探针,其特征在于,所述DNA-RNA-DNA探针一端的DNA片段末端连接有与Zip探针互补的ZipCode序列。
2.如权利要求1所述的循环探针技术基因芯片,其特征在于,所述DNA-RNA-DNA探针在连接有ZipCode序列的一端DNA片段上标记有荧光基团,并在另一端DNA片段上标记有淬灭基团。
3.如权利要求1所述的循环探针技术基因芯片,其特征在于,所述DNA-RNA-DNA探针在连接有ZipCode序列的一端DNA片段上不标记荧光或淬灭基团,在另一端DNA片段上进行标记。
4.如权利要求3所述的循环探针技术基因芯片,其特征在于,所述另一端DNA片段上的标记包括:荧光素标记、生物素标记、放射性元素标记、电化学发光标记和酶标记。
5.如权利要求1所述的循环探针技术基因芯片,其特征在于,所述DNA-RNA-DNA探针的退火温度为37~75℃。
6.一种应用权利要求1所述的循环探针技术基因芯片进行检测的方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)获取待测样品核酸;
(2)将权利要求1所述的DNA-RNA DNA探针和待测样品核酸在含RNase H酶的溶液中进行酶切,并使其反应足够时间;
(3)在适于与所述Zip探针进行杂交的条件下,在固定有该Zip探针的芯片上加入含步骤(2)酶切产物的杂交液,并使其反应足够时间;
(4)洗涤后检测杂交反应的结果。
7.如权利要求6所述的方法,其特征在于,步骤(2)所述的RNase H酶包括耐高温和不耐高温RNase H酶。
8.如权利要求6所述的方法,其特征在于,所述的步骤(3)中杂交温度为25℃~72℃,杂交时间为1分钟~40小时。
CN2007100366075A 2007-01-18 2007-01-18 Cpt基因芯片及其检测方法和应用 Active CN101225434B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2007100366075A CN101225434B (zh) 2007-01-18 2007-01-18 Cpt基因芯片及其检测方法和应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2007100366075A CN101225434B (zh) 2007-01-18 2007-01-18 Cpt基因芯片及其检测方法和应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN101225434A CN101225434A (zh) 2008-07-23
CN101225434B true CN101225434B (zh) 2011-09-14

Family

ID=39857639

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2007100366075A Active CN101225434B (zh) 2007-01-18 2007-01-18 Cpt基因芯片及其检测方法和应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN101225434B (zh)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1091831A (zh) * 1992-12-09 1994-09-07 株式会社日立制作所 检测核酸的方法
CN1129461A (zh) * 1993-06-17 1996-08-21 Id生物学和医学公司 改进的测定核酸序列的方法
CN1236395A (zh) * 1996-07-26 1999-11-24 爱德华·E·维因格 核苷酸同质实时试验

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1091831A (zh) * 1992-12-09 1994-09-07 株式会社日立制作所 检测核酸的方法
CN1129461A (zh) * 1993-06-17 1996-08-21 Id生物学和医学公司 改进的测定核酸序列的方法
CN1236395A (zh) * 1996-07-26 1999-11-24 爱德华·E·维因格 核苷酸同质实时试验

Also Published As

Publication number Publication date
CN101225434A (zh) 2008-07-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11293048B2 (en) Attenuators
US9932576B2 (en) Methods for targeted genomic analysis
KR100226297B1 (ko) 유기상 내로의 추출에 의한 소수성 증폭생성물의 검출방법
EP2225393B1 (en) Method for hybridizing nucleic acids
JP2007532100A5 (zh)
CA2544202A1 (en) Multiplexed nucleic acid analysis by fragmentation of double-stranded dna
CN1824786A (zh) 基于连接的选择性扩增方法
JP2009533066A5 (zh)
US20070003938A1 (en) Hybridization of genomic nucleic acid without complexity reduction
EP1047794A2 (en) Method for the detection or nucleic acid of nucleic acid sequences
JP2011505812A5 (zh)
WO2002064842A3 (en) Quantitative epstein barr virus pcr rapid assay
CN101191143B (zh) 无需核酸标记的基因芯片及其检测方法和应用
WO2012034130A2 (en) Methods and compositions for nucleic acid detection
EP1275738A1 (en) Method for random cDNA synthesis and amplification
CN109234388A (zh) 用于dna高甲基化区域富集的试剂、富集方法及应用
CN101225434B (zh) Cpt基因芯片及其检测方法和应用
JP2010532668A5 (zh)
Li et al. Single nucleotide polymorphism genotyping and point mutation detection by ligation on microarrays
EP1275734A1 (en) Method for random cDNA synthesis and amplification
US20100297622A1 (en) Method for high-throughput gene expression profile analysis
CN107400722B (zh) 一种检测人基因组的竞争性实时荧光pcr snp探针
JP2008125471A (ja) マルチプレックスな核酸増幅方法
WO2024048602A1 (ja) ハイブリダイゼーション用バッファー組成物及びハイブリダイゼーション方法
Baldocchi et al. Design considerations for array CGH to oligonucleotide arrays

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
EE01 Entry into force of recordation of patent licensing contract

Assignee: Shanghai Biotechnology Corporation

Assignor: Shanghai Biochip Co., Ltd

Contract record no.: 2011310000186

Denomination of invention: CPT gene chip as well as detection method and uses thereof

License type: Exclusive License

Open date: 20080723

Record date: 20110905

ASS Succession or assignment of patent right

Owner name: SHANGHAI BIOTECHNOLOGY CORPORATION

Free format text: FORMER OWNER: SHANGHAI BIOCHIP CO., LTD

Effective date: 20130819

C41 Transfer of patent application or patent right or utility model
TR01 Transfer of patent right

Effective date of registration: 20130819

Address after: 201203 Shanghai city Pudong New Area Zhangjiang libing Road No. 151

Patentee after: Shanghai Biotechnology Corporation

Address before: 201203 Shanghai city Pudong New Area Zhangjiang libing Road No. 151

Patentee before: Shanghai Biochip Co., Ltd