CA2616704A1 - Use of a polypeptide for detecting, preventing or treating a pathological condition associated with a degenerative, neurological or autoimmune disease - Google Patents

Use of a polypeptide for detecting, preventing or treating a pathological condition associated with a degenerative, neurological or autoimmune disease Download PDF

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protein
proteins
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Dominique Roecklin
Hanno Kolbe
Marie-Helene Charles
Carine Malcus
Lyse Santoro
Herve Perron
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Biomerieux SA
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    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2800/00Detection or diagnosis of diseases
    • G01N2800/52Predicting or monitoring the response to treatment, e.g. for selection of therapy based on assay results in personalised medicine; Prognosis

Abstract

Utilisation d'au moins un polypeptide comprenant au moins un fragment d'une protéine pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, prévenir ou traiter un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif correspond à SEQ ID N~ 1, SEQ ID N~ 2, SE Q ID N~ 3, SEQ ID N~ 4, SEQ ID N~ 5, SEQ ID N~ 6, SEQ ID N~ 7, SEQ ID N~ 8, SEQ ID N~ 1 0, SEQ ID N~ 11, SEQ ID N~ 12, SEQ ID N~ 13, SEQ ID N~ 14, SEQ ID N~ 15, SEQ ID N- 16, SEQ ID N~ 17, SEQ ID N~ 18, SEQ ID N~ 19, SEQ ID N~ 20, SEQ ID N~ 21, SE Q ID N~ 22, SEQ ID N~ 23, SEQ ID N~ 24, SEQ ID N~ 25, SEQ ID N~ 26, SEQ ID N~ 27, SEQ ID N~ 28 et SEQ ID N~ 29, et les séquences peptidiques qui présentent au moi ns 70 % d'identité, de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moi ns 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N~ 1 à SEQ ID N~ 8 et SEQ ID N~ 10 à SEQ ID N~ 29, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, du précurseur d e l'activateur du ganglioside GM2, de la calgranuline B et de la saposine B.Use of at least one polypeptide comprising at least one fragment of a protein for obtaining a diagnostic, prognostic, prophylactic or therapeutic composition intended for detecting, preventing or treating a pathological condition associated with a degenerative and / or neurological and / or auto disease -immune, said protein being chosen from proteins whose peptide sequence in the native state corresponds to SEQ ID N ~ 1, SEQ ID N ~ 2, SE Q ID N ~ 3, SEQ ID N ~ 4, SEQ ID N ~ 5, SEQ ID N ~ 6, SEQ ID N ~ 7, SEQ ID N ~ 8, SEQ ID N ~ 1 0, SEQ ID N ~ 11, SEQ ID N ~ 12, SEQ ID N ~ 13, SEQ ID N ~ 14 , SEQ ID N ~ 15, SEQ ID N- 16, SEQ ID N ~ 17, SEQ ID N ~ 18, SEQ ID N ~ 19, SEQ ID N ~ 20, SEQ ID N ~ 21, SE Q ID N ~ 22, SEQ ID N ~ 23, SEQ ID N ~ 24, SEQ ID N ~ 25, SEQ ID N ~ 26, SEQ ID N ~ 27, SEQ ID N ~ 28 and SEQ ID N ~ 29, and the peptide sequences which present to me ns 70% identity, preferably at least 80% identity and advantageously at least 98% identity with one we have peptide sequences SEQ ID N ~ 1 to SEQ ID N ~ 8 and SEQ ID N ~ 10 to SEQ ID N ~ 29, and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor of plasma retinol binding protein, ganglioside activator GM2 precursor, calgranulin B and saposin B.

Description

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UTILISATION D'UN POLYPEPTIDE POUR DETECTER, PREVENIR OU TRAITER
UN ETAT PATHOLOGIQUE ASSOCIE A UNE MALADIE DEGENERATIVE, .
NEUROLOGIQUE OU AUTOIMMUNE
La présente invention concerne notanunent l'utilisation d'au moins un polypeptide, pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, prévenir ou traiter un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou auto-immune et/ou neurologique.
Selon l'invention, on entend par maladie dégénérative, une maladie dans laquelle un processus de mort cellulaire ou de destruction cellulaire est associé à des troubles physiologiques et/ou cliniques. La maladie d'Alzheimer, la sclérose latérale amyotrophique, la maladie de Parkinson sont classées parmi les maladies neurodégénératives. On entend par maladie auto-immune, une hyperréactivité du système immunitaire vis à vis d'un ou de plusieurs auto-antigène(s). La sclérose en plaques (SEP), la polyarthrite rhumatoïde (PR) et le lupus érythémateux sont classés dans les maladies auto-immunes.
La sclérose en plaques est une maladie chronique du système nerveux central de l'homme, évoluant par succession de phases de rémission et de poussée ou selon une progression régulière, dont la caractéristique anatomopathologique consiste en la formation de zones de démyélinisation bien délimitées dans la substance blanche du cerveau et de la moelle épinière.
Au niveau histologique, ces zones présentent au stade précoce du processus lésionnel, une dégradation de la myéline péri-axonale associée à une atteinte des cellules gliales responsable de cette démyélinisation. Une activation macrophagique inflammatoire impliquant les cellules microgliales (macrophages tissulaires résidants du système nerveux central), ainsi que, probablement, des macrophages provenant de monocytes sanguins infiltrés, est associée à ce processus de démyélinisation et contribue à la destruction des feuillets myélinisés. Au centre de la zone démyélinisée, une déplétion relative en cellules gliales est retrouvée alors qu'une prolifération d'astrocytes se développe à la périphérie et peut envahir la plaque démyélinisée pour générer une plaque fibreuse ou gliotique. Ces structures sclérotiques sont à l'origine du nom donné à la maladie.
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USE OF A POLYPEPTIDE TO DETECT, PREVENT OR TREAT
A PATHOLOGICAL CONDITION ASSOCIATED WITH A DEGENERATIVE DISEASE,.
NEUROLOGICAL OR AUTOIMMUNE
The present invention relates in particular to the use of at least one polypeptide, to obtain a diagnostic, prognostic composition, prophylactic or therapy intended to detect, prevent or treat a pathological condition associated with a degenerative and / or autoimmune and / or neurological disease.
According to the invention, the term degenerative disease means a disease in which a process of cell death or cell destruction is associated with troubles physiological and / or clinical. Alzheimer's disease, lateral sclerosis amyotrophic, the Parkinson's disease is classified as a neurodegenerative disease. We means by autoimmune disease, hyperreactivity of the immune system to a or from several autoantigen (s). Multiple sclerosis (MS), arthritis rheumatoid (RA) and the lupus erythematosus are classified as autoimmune diseases.
Multiple sclerosis is a chronic disease of the central nervous system of man, evolving by succession of remission and pushing phases or according to a regular progression, the anatomopathological characteristic of which consists of the formation of well-defined demyelination zones in the white matter of the brain and marrow spinal.
Histologically, these areas present at the early stage of the process injury, degradation of the periaxonal myelin associated with damage cells glial responsible for this demyelination. Macrophagic activation inflammatory involving microglial cells (tissue macrophages resident in the the nervous system central), as well as probably macrophages from monocytes infiltrated blood, is associated with this demyelination process and contributes to the destruction leaflets myelinated. In the center of the demyelinated zone, a relative depletion in glial cells is found when a proliferation of astrocytes develops at the periphery and can invade the demyelinated plaque to generate a fibrous or gliotic plaque. These structures sclerotics are at the origin of the name given to the disease.

2 Une autre caractéristique de ces plaques est leur association quasi systématique avec un élément vasculaire autour duquel elles se développent.
Au niveau histologique, on observe une altération fréquente de la barrière hémato-encéphalique (BHE) constituée par l'endothélium capillaire. Un des éléments déterminants dans le maintien de la BHE est constitué par la présence sous-jacente d'extensions cytoplasmiques des astrocytes, appelées pieds astrocytaires.
Vraisemblablement, les pieds astrocytaires induisent la formation ou permettent le maintien de structures de jonction étanches qui assurent la cohésion de la barrière endothéliale capillaire concrétisant la BHE. Or, différents modèles pathologiques font to état de l'altération de la BHE et d'une déplétion des pieds astrocytaires.
Par ailleurs, dans le processus lésionnel de la SEP, l'altération de la BHE
contribue à amplifier la réponse inflammatoire associée, par l'afflux de cellules lymphoïdes provenant de la circulation sanguine. La contribution de l'inflammation associée aux cellules immunitaires est importante dans la SEP et participe au processus -15 lésionnel.
L'étiologie de la SEP est source d'un débat d'actualité car la maladie pourrait avoir des origines diverses. Des hypothèses ont été émises sur une origine bactérienne et/ou virale. Par ailleurs, comme décrit dans la demande de brevet WO 95/21859, H. Perron et al. ont été conduits à rechercher un ou des agents effecteurs 2o du processus pathogénique aboutissant à la formation typique de plaques de démyélinisation et à une gliose astrocytaire. Dans le cadre de cette étude, ils ont mis en évidence la présence'dans le liquide céphalo-rachidien (LCR) et le sérum de patients SEP d'au moins un facteur qui présente une activité toxique vis à vis des cellules astrocytaires et oligodendrocytaires humaines ou animales. Cette activité
toxique se 25 caractérise par une désorganisation cytomorphologique du réseau de filaments intermédiaires et/ou une dégradation des protéines desdits filaments et/ou une mort cellulaires par apoptose des cellules gliales. Ils ont établi une corrélation significative entre la détection in vitro de cette activité toxique dans des échantillons de LCR et de sérum de patients SEP et la sclérose en plaques par un dosage colorimétrique 30 quantitatif au bromure de méthyltétrazolium (MTT) des cellules vivantes, comme décrit dans la demande de brevet WO 95/21859. Par ailleurs, C. Malcus-Vocanson et al. ont montré que l'urine est un fluide biologique très favorable pour la détection de
2 Another characteristic of these plates is their almost association systematic with a vascular element around which they develop.
Histologically, there is a frequent alteration of the barrier hematoencephalic (BBB) constituted by the capillary endothelium. One of elements determinants in the maintenance of the BBB is constituted by the presence underlying cytoplasmic extensions of astrocytes, called astrocytic feet.
Presumably, astrocytic feet induce the formation or allow the maintenance of tight junction structures which ensure the cohesion of the fence endothelial capillary materializing the BBB. Different models pathological do to the state of the BBB alteration and depletion of the astrocytic feet.
In addition, in the lesional process of MS, the alteration of the BBB
contributes to amplifying the associated inflammatory response, by the influx of cells lymphoids from the bloodstream. The contribution of inflammation associated with immune cells is important in MS and participates in process -15 injury.
The etiology of MS is the source of a current debate because the disease could have diverse origins. Assumptions have been made on a origin bacterial and / or viral. Furthermore, as described in the patent application WO 95/21859, H. Perron et al. were led to seek one or more agents effectors 2o of the pathogenic process leading to the typical formation of plaques of demyelination and astrocytic gliosis. In this study, they put in evidence of the presence in cerebrospinal fluid (CSF) and serum of patients MS of at least one factor which exhibits toxic activity towards cells human or animal astrocytic and oligodendrocytic. This activity poisonous 25 characterized by a cytomorphological disorganization of the filaments intermediates and / or degradation of the proteins of said filaments and / or a dead cells by apoptosis of glial cells. They established a correlation significant between in vitro detection of this toxic activity in samples of LCR and serum from MS patients and multiple sclerosis by a colorimetric assay 30 quantitative methyltetrazolium bromide (MTT) from living cells, as described in patent application WO 95/21859. Furthermore, C. Malcus-Vocanson and al. have shown that urine is a very favorable biological fluid for detection of

3 l'activité de ce facteur toxique et développé un procédé utilisant la cytométrie de flux pour détecter et/ou quantifier les cellules gliales adhérentes mortes par apoptose.
Toutes les informations concernant ce procédé sont décrites dans la demande de brevet WO
98/11439.
Des essais orit été réalisés à partir d'une fraction protéique de LCR et d'urine de patients SEP pour tenter d'identifier ce facteur toxique. Le contenu protéique de chaque fraction a été séparé sur gel SDS-PAGE 12 % et observé après coloration du gel à l'argent.
Parmi les protéines observées, une fraction protéique centrée sur un poids moléculaire apparent d'environ 21 kD a été trouvée minoritairement associée à l'activité toxique détectée in vitro et une fraction centrée sur un poids moléculaire apparent d'environ 17 kD a été
trouvée majoritairement associée à cette activité toxique.
Une injection de la fraction provenant de LCR de patients SEP dans le cerveau de rat Lewis et une observation histologique post-mortem de coupes de cerveau des rats a permis d'observer, trois mois après l'injection, une apoptose de la population astrocytaire et la formation de plaques de démyélinisation. Toutes les informations sont contenues dans la demande de brevet WO 97/33466. Ces observations sont conformes à celles qui ont pu être faites sur des coupes de cerveau de patients atteints de SEP, après biopsie (N. Benjelloun et al.
Cell. Mol. Biol., 1998, 44 (4), 579-583).
Les présents inventeurs ont maintenant identifié et analysé les protéines associées à cette activité toxique vis à vis des cellules gliales dans des échantillons biologiques de patients SEP, en particulier dans l'urine, le liquide céphalo-rachidien et le sérum.
Après purification des protéines et séparation sur gel SDS-TRICINE, les inventeurs ont mis en évidence la présence de quatre bandes d'intérêt de différents poids moléculaires apparents, respectivement de 8,.14, 18 et 20 kD correspondant à au moins cinq familles de protéines différentes.
Les protéines de ces familles ont ensuite été analysées par spectrométrie de masse et/ou séquençage et recherche d'homologie dans les banques de données (NCBI http :/ww.ncbi.nim.nih.gov, Basic Blast Search, Protein Blastp, les séquences protéiques sont entrées en format FASTA
dans la base de données nr, l'algorithme utilisé est Matrix BLOSUM62, l'identité dénommée
3 activity of this toxic factor and developed a process using the flow cytometry for detect and / or quantify dead adherent glial cells by apoptosis.
All the information concerning this process is described in the patent application WO
98/11439.
Tests have been carried out using a protein fraction of LCR and urine from MS patients to try to identify this toxic factor. Protein content of each fraction was separated on 12% SDS-PAGE gel and observed after gel coloring to money.
Among the proteins observed, a protein fraction centered on a weight apparent molecular approximately 21 kD was found to be minority associated with toxic activity detected in vitro and a fraction centered on an apparent molecular weight of about 17 kD has been found mainly associated with this toxic activity.
Injection of the fraction from CSF from MS patients into the brain rat rat and a post-mortem histological observation of brain sections rats a allowed to observe, three months after the injection, apoptosis of the population astrocytic and the formation of demyelination plates. All information is contained in the WO 97/33466. These observations are consistent with those which could be performed on brain sections of MS patients after biopsy (N. Benjelloun et al.
Cell. Mol. Biol., 1998, 44 (4), 579-583).
The present inventors have now identified and analyzed the proteins associated with this toxic activity with respect to glial cells in biological samples MS patients, especially in the urine, cerebrospinal fluid and the serum.
After purification of the proteins and separation on SDS-TRICINE gel, the inventors have highlighted the presence of four bands of interest of different weights apparent molecular, respectively 8, .14, 18 and 20 kD corresponding to at least five families of different proteins.
The proteins of these families were then analyzed by spectrometry of mass and / or sequencing and homology search in databases (NCBI http : /ww.ncbi.nim.nih.gov, Basic Blast Search, Protein Blastp, protein sequences entered in FASTA format in the base of data nr, the algorithm used is Matrix BLOSUM62, the identity called

4 "Identities" correspond au nombre d'acides aminés identiques donné en pourcentage et la positivité "Positives" correspond aux acides aminés présentant une équivalence biologique selon les paramètres susmentionnés du logiciel donnés en pourcentage). Ces protéines appartiennent aux familles des protéines du Perlecan, du précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine, activatrice du GM2, de la calgranuline et de la saposine B. Plus précisément, les protéines sont (i) pour la bande de 20 kD le fragment C-terminal du Perlecan qui commence à l'acide aminé 3464 et se termine à l'acide aminé 3707 (Murdoch AD et al. J Biol Chem, 1992, April 25;267 (12):8544-47), et référencé dans l'identificateur de séquences SEQ ID N 2 (la protéine l0 entière Perlecan étant référencée en SEQ ID N 1), (ii) pour la bande de 20 kD le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol (Monaco HL et al., Science, 1995, 268 (5213):1039-1041) dont la séquence est donnée en SEQ ID N 4, (iii) pour la bande de 18 kD de protéine activatrice du ganglioside GM2 (Furst W et al., Euro J
Biochem, 1990, Sep 24; 193(3) :709-14) identifié en SEQ ID N 8, (iv) pour la bande de 14 kD la calgranuline B (Lagasse E et al., Mol Cell Biol, 1988, Jun ;8(6) :2402-10) identifiée en SEQ ID N 17 et (v) pour la bande de 8 kD la saposine B(Kleinschmidt T
et al., Biol Chem Hoppe Seyler, 1988, Dec;369(12):1361-5) représentée en SEQ
ID N
24. Ils ont par ailleurs mis également en évidence la présence de séquences variantes auxdites séquences de référénce, en particulier pour la bande de 18 kD une séquence variante de protéine activatrice du GM2 référencée SEQ ID N 9. Ces séquences protéiques variantes sont le produit de mutations au niveau des gènes codant pour lesdites protéines ou sont le résultats =de phénomènes d'épissage. Il est à
noter par exemple que la calprotectine est un variant de la calgranuline B.
Le fragment C-terminal de la protéine Perlecan (SEQ ID N 2) est codée par exemple par la séquence nucléotidique ADN SEQ ID N 69, en tenant compte du code génétique. La protéine précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol (SEQ ID N 4) est codée par exemple par la séquence nucléotidique ADN SEQ ID N

70, en tenant compte du code génétique. La protéine activatrice du GM2 (SEQ ID
N 8) est codée par exemple par la séquence nucléotidique ADN SEQ ID N 31, en tenant compte du code génétique. Les peptides FSWDNCFEGK DPAVIR et YSLPKSEFAV PDLELP
issus du polypeptide muté activateur du GM2 (SEQ ID N 9) sont codés par les séquences nucléotidiques ADN SEQ ID N 66 et SEQ ID N 67 respectivement, en tenant compte du code génétique. La protéine calgranuline B (SEQ ID N 17) est codée par exemple par la séquence nucléotidique ADN SEQ ID N 42, en tenant compte du code génétique. La protéine saposine B (SEQ ID N 24) est codée par exemple par la
4 "Identities" corresponds to the number of identical amino acids given in percentage and the positivity "Positive" corresponds to the amino acids presenting a equivalence biological according to the above parameters of the software given in percentage). These proteins belong to the protein families of Perlecan, the precursor of the plasma protein binding to retinol, protein, activator of GM2, of the calgranulin and saposin B. Specifically, the proteins are (i) for the band by 20 kD the C-terminal fragment of Perlecan which begins at amino acid 3464 and this ends with amino acid 3707 (Murdoch AD et al. J Biol Chem, 1992, April 25; 267 (12): 8544-47), and referenced in the sequence identifier SEQ ID N 2 (the protein l0 whole Perlecan being referenced in SEQ ID N 1), (ii) for the band of 20 kD on precursor of plasma retinol binding protein (Monaco HL et al., Science, 1995, 268 (5213): 1039-1041) whose sequence is given in SEQ ID N 4, (iii) for the 18 kD band of ganglioside activator protein GM2 (Furst W et al., Euro J
Biochem, 1990, Sep 24; 193 (3): 709-14) identified in SEQ ID N 8, (iv) for the bandaged 14 kD calgranulin B (Lagasse E et al., Mol Cell Biol, 1988, Jun; 8 (6) : 2402-10) identified in SEQ ID N 17 and (v) for the 8 kD band saposin B (Kleinschmidt T
et al., Biol Chem Hoppe Seyler, 1988, Dec; 369 (12): 1361-5) shown in SEQ
ID N
24. They also highlighted the presence of sequences variants to said reference sequences, in particular for the 18 kD band a sequence variant of GM2 activating protein referenced SEQ ID N 9. These sequences protein variants are the product of mutations in the coding genes for said proteins or are the results = of splicing phenomena. He is at rate by example that calprotectin is a variant of calgranulin B.
The C-terminal fragment of the Perlecan protein (SEQ ID N 2) is encoded for example by the DNA nucleotide sequence SEQ ID N 69, taking into account of genetic code. The precursor protein of the plasma binding protein with retinol (SEQ ID N 4) is coded for example by the DNA nucleotide sequence SEQ ID N

70, taking into account the genetic code. GM2 activator protein (SEQ ID
N 8) is coded for example by the DNA nucleotide sequence SEQ ID N 31, in holding account for the genetic code. The peptides FSWDNCFEGK DPAVIR and YSLPKSEFAV PDLELP
derived from the mutated GM2 activator polypeptide (SEQ ID N 9) are encoded by DNA nucleotide sequences SEQ ID N 66 and SEQ ID N 67 respectively, in taking into account the genetic code. The protein calgranulin B (SEQ ID N 17) is coded for example by the DNA nucleotide sequence SEQ ID N 42, taking into account of genetic code. The protein saposin B (SEQ ID N 24) is coded for example over there

5 séquence nucléotidique ADN SEQ ID N 53, en tenant compte du code génétique.
Par famille de protéines on entend l'ensemble des protéines codées à partir d'un même gène d'ADN et qui résultent d'un multi-épissage différentiel du gène et/ou d'un cadre de lecture différent. Le gène ADN est transcrit avec des phénomènes d'épissage alternatif ce qui conduit à la traduction de différentes séquences primaires de protéines. Toutes ces protéines appartiennent à une même famille protéique.
On inclut également dans le terme " famille protéique ", les protéines qui présentent au moins 70% d'identité, de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec une séquence protéique de référence de la famille.
On entend par multi-épissage, un épissage intervenant au moins une fois dans la région nucléotidique d'intérêt.
Par exemple, par famille de protéine précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, on désigne la famille de protéines comprenant au moins les protéines ou fragment de protéines de séquence SEQ ID N 4, SEQ IDN 5, SEQ ID
N 6, SEQ ID N 7, et les protéines codées par le gène correspondant selon différents cadres de lecture.
Par exemple, par famille de protéine activatrice du GM2, on désigne la famille de protéines comprenant au moins les protéines ou fragments de protéines de séquence SEQ ID N 8, SEQ ID N 9, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, et les protéines codées par le gène correspondant selon différents cadres de lecture, qui résultent d'un multi-épissage différentiel du gène et/ou d'un cadre de lecture différent.
Par exemple, par famille de protéine calgranuline B, on désigne la famille de protéines comprenant au moins les protéines ou fragments de protéines de séquence SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID
N 22, SEQ ID N 23, et les protéines codées par le gène correspondant selon différents cadres de lecture, qui résultent d'un multi-épissage différentiel du gène et/ou d'un cadre de lecture différent. Les protéines MRP14 (SEQ ID N 17) et MRP8 (SEQ ID
N
5 DNA nucleotide sequence SEQ ID N 53, taking into account the genetic code.
By protein family is meant all of the proteins encoded from of the same DNA gene and which result from differential multi-splicing of the gene and or of a different reading frame. The DNA gene is transcribed with phenomena alternative splicing which leads to the translation of different sequences primary protein. All these proteins belong to the same protein family.
We also includes in the term "protein family", proteins which present to at least 70% identity, preferably at least 80% identity and advantageously at minus 98% identity with a family reference protein sequence.
By multi-splicing is meant splicing occurring at least once in the nucleotide region of interest.
For example, by protein family precursor of plasma protein binding to retinol, denotes the family of proteins comprising at least the proteins or protein fragments of sequence SEQ ID N 4, SEQ IDN 5, SEQ ID
N 6, SEQ ID N 7, and the proteins encoded by the corresponding gene according to different reading frames.
For example, by family of activating protein of GM2, one indicates the family of proteins comprising at least the proteins or fragments of protein sequence SEQ ID N 8, SEQ ID N 9, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, and proteins coded by the corresponding gene according to different reading frames, which result of a multi differential splicing of the gene and / or a different reading frame.
For example, by family of protein calgranulin B, we denote the family of proteins comprising at least the proteins or protein fragments of sequence SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID
N 22, SEQ ID N 23, and the proteins encoded by the corresponding gene according to different reading frames, which result from differential multi-splicing of the gene and / or a different reading frame. Proteins MRP14 (SEQ ID N 17) and MRP8 (SEQ ID
NOT

6 18) ont une séquence protéique différente tout en étant codées par un même gène ; elles appartiennent à la même famille protéique.
Par exemple, par famille de protéine saposine B, on désigne la famille de protéines comprenant au moins les protéines ou fragments de protéines de séquence SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28, SEQ
IDN 29, et les protéines codées par le gène correspondant selon différents cadres de lecture, qui résultent d'un multi-épissage différentiel du gène et/ou d'un cadre de lecture différent.
Par famille d'acides nucléiques codant pour une protéine on entend to l'ensemble des séquences nucléiques ADNc et/ou ARN transcrits à partir d'un même gène ADN et, qui résultent d'un multi-épissage différentiel. Le gène ADN est transcrit avec des phénomènes d'épissage différentiels et conduit à la synthèse de différents acides nucléiques (ADNc, ARN) de séquences différentes. Toutes ces séquences ADNc et ARNm sont considérées comme appartenant à une même famille d'acides - nucléiques.
Par exemple, par famille d'acides nucléiques codant pour la famille de protéine précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, on désigne la famille d'acides nucléiques comprenant au moins les acides nucléiques ou fragments de séquence SEQ ID N 30.
Par exemple, par famille d'acides nucléiques codant pour la famille de protéine activatrice du GM2, on désigne la famille d'acides nucléiques comprenant au moins les acides nucléiques ou fragments de séquences SEQ ID N 3 1, SEQ ID N
32, SEQ ID N 33, SEQ ID.N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N 36, SEQ ID N 37, SEQ ID
N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41 qui résultent d'un multi-épissage différentiel du gène et/ou d'un cadre de lecture différent.
Par exemple, par famille d'acides nucléiques codant pour la famille de protéine calgranuline B, on désigne la famille d'acides nucléiques comprenant au moins les acides nucléiques ou fragments de séquences SEQ ID N 42, SEQ ID N
43, SEQ ID N 44, SEQ ID N 45, SEQ ID N 46, SEQ ID N 47, SEQ ID N 48, SEQ ID
3o N 49, SEQ ID N 50, SEQ ID N 51, SEQ ID N 52 qui résultent d'un multi-épissage différentiel du gène et/ou d'un cadre de lecture différent.
6 18) have a different protein sequence while being coded by the same uncomfortable ; they belong to the same protein family.
For example, by family of protein saposin B, we denote the family of proteins comprising at least the proteins or protein fragments of sequence SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28, SEQ
IDN 29, and the proteins encoded by the corresponding gene according to different frames of reading, which result from differential multi-splicing of the gene and / or frame of different reading.
By family of nucleic acids encoding a protein is meant to all of the cDNA and / or RNA nucleic sequences transcribed from a even DNA gene and, which result from differential multi-splicing. The DNA gene is transcribed with differential splicing phenomena and leads to the synthesis of different nucleic acids (cDNA, RNA) of different sequences. All these sequences CDNA
and mRNA are considered to belong to the same family of acids - nucleic acids.
For example, by family of nucleic acids encoding the family of precursor protein of the retinol-binding plasma protein, means the family of nucleic acids comprising at least the nucleic acids or fragments of sequence SEQ ID N 30.
For example, by family of nucleic acids encoding the family of GM2 activating protein, the family of nucleic acids including at minus the nucleic acids or fragments of sequences SEQ ID N 3 1, SEQ ID N
32, SEQ ID N 33, SEQ ID.N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N 36, SEQ ID N 37, SEQ ID
N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41 which result from a multi-splicing differential of the gene and / or a different reading frame.
For example, by family of nucleic acids encoding the family of protein calgranulin B, denotes the family of nucleic acids comprising at minus the nucleic acids or fragments of sequences SEQ ID N 42, SEQ ID N
43, SEQ ID N 44, SEQ ID N 45, SEQ ID N 46, SEQ ID N 47, SEQ ID N 48, SEQ ID
3o N 49, SEQ ID N 50, SEQ ID N 51, SEQ ID N 52 which result from a multi-splicing differential of the gene and / or a different reading frame.

7 Par exemple, par famille d'acides nucléiques codant pour la famille de protéine saposine B, on désigne la famille d'acides nucléiques comprenant au moins les acides nucléiques ou fragment de séquences SEQ ID N 53, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55 qui résultent d'un multi-épissage différentiel du gène et/ou d'un cadre de lecture différent.
Par épissage on entend un mécanisme d'excision des introns et de raboutage des exons au cours de la maturation des transcrits et par " épissage différentiel " on entend l'existence de plusieurs schémas d'épissage d'un transcrit pr imaire aboutissant à la formation de différents ARN messagers et, pouvant donner lieu à la synthèse de plusieurs protéines différentes (Kaplan et Delpech, Biologie Moléculaire et Médecine, 1993, 2""' édition, Médecine et Sciences, Flammarion, pages 73-77). Ce phénomène est largement décrit dans la littérature scientifique. A titre d'exemple, on peut citer le modèle des gènes qui codent pour les chaînes lourdes et légères des immunoglobulines, le modèle du gène de la dystrophine, le modèle du gène de l'alpha amylase, le gène de la myéline, etc...
II est connu que les gènes eucaryotes, notamment, comprennent des régions (exons) qui codent pour des fragments de la protéine codée par ledit gène et d'autres régions (introns) qui n'ont pas d'équivalent protéique. Ceci est dû au. fait que les gènes sont d'abord transcrits en un ARN " primaire " qui est ensuite coupé par des enzymes d'épissage au niveau de sites nucléotidiques spécifiques (sites d'épissage). Ces enzymes raboutent ensuite les régions codant pour la protéine, reconstituant ainsi un ARN " secondaire "
dont les régions introniques ont été éliminées. Par ailleurs, selon les phénotypes cellulaires (et donc les tissus ou la différenciation) ces enzymes ne sont pas toutes exprimées et, ainsi, un même ARN peut être épissé différemment dans les cellules d'un même individu, générant ainsi des protéines avec des différences de séquence. Cependant, ces phénomènes peuvent aussi s'appliquer à des régions nucléotidiques qui sont entièrement codantes (exons), mais qui, selon différents épissages possibles vont générer plusieurs protéines différentes à partir de la même région nucléotidique, par phénomène d'épissage différentiel entre les différents produits protéiques.
De plus, il est connu que des régions nucléotidiques peuvent avoir plusieurs cadres de lecture selon les trois trames potentielles du code génétique. Ainsi,
7 For example, by family of nucleic acids encoding the family of protein saposin B, denotes the family of nucleic acids comprising at least the acids nucleic acids or sequence fragment SEQ ID N 53, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55 who result from a differential multi-splicing of the gene and / or a reading frame different.
By splicing is meant a mechanism for excision of introns and splicing exons during maturation of transcripts and by "splicing differential "we hear the existence of several splicing patterns of a primary transcript leading to training of different messenger RNAs and, which can give rise to the synthesis of several protein different (Kaplan and Delpech, Molecular Biology and Medicine, 1993, 2 ""' editing, Medicine and Sciences, Flammarion, pages 73-77). This phenomenon is largely described in the scientific literature. As an example, we can cite the gene model who code for heavy and light chains of immunoglobulins, the gene model for dystrophin, the model of the alpha amylase gene, the myelin gene, etc.
It is known that eukaryotic genes, in particular, include regions (exons) which code for fragments of the protein encoded by said gene and other regions (introns) that have no protein equivalent. This is due to. makes them genes are first transcribed into a "primary" RNA which is then cut by enzymes splicing at level specific nucleotide sites (splicing sites). These enzymes butt up then the regions coding for the protein, thus reconstituting a "secondary" RNA
whose regions intronics have been eliminated. Furthermore, according to cell phenotypes (and therefore the fabrics or differentiation) these enzymes are not all expressed and, therefore, a even RNA can be spliced differently in the cells of the same individual, thus generating proteins with sequence differences. However, these phenomena can also apply to nucleotide regions which are fully coding (exons), but which, according to different possible splices will generate several different proteins from the same region nucleotide, by differential splicing phenomenon between the different protein products.
In addition, it is known that nucleotide regions can have several reading frames according to the three potential frames of the code genetic. So,

8 la présence de plusieurs codons initiateurs de traduction dans plusieurs phases de lecture et/ou un épissage d'ARN primaire raboutant des séquences nucléotiques présentes dans des phases de lectures différentes sur l'ADN, permet à une même région ADN de générer des produits protéiques sans rapports entre eux, du point de vue de la séquence peptidique.
Enfin, le polymorphisme génétique existant entre les individus d'une même espèce et/ou des mutations individuelles peuvent créer ou supprimer des sites d'épissage dans une région ADN donnée et, ainsi, modifier la séquence et la structure du ou des produits protéiques normalement produits par cette région.
Ainsi, la combinaison de ces différents phénomènes peut permettre qu'une même séquence nucléotidique correspondant à un segment d'ADN, identifiée comme déterminant une région génétique d'intérêt dans une étude donnée, comprenne l'information nécessaire et suffisante pour définir toute une famille d'ARN épissés selon des schémas différentiels et alternatifs, dans des cadres de lecture divers et, par là évidemment, de protéines et de polypeptides ayant des séquences " mosaïques " selon un cadre de lecture voire selon les trois cadres potentiels et des mutations éventuellement liées au polymorphisme génétique.
Un exemple de ce phénomène peut être représenté par la région nucléotidique du gène env du rétrovirus HIV-1. En effet, plusieurs protéines différentes sont codées par des segments de la même séquence : par exemple, la glycoprotéine d'enveloppe, et les protéines régulatrices TAT, REV, NEF, VIF.
II est encore connu que des protéines peuvent résulter de l'assemblage de sous-unités identiques (homodimères, homomultimères) ou différentes (hétérodimères, hétéromultimères). Ainsi, les différents produits protéiques codés par une même région ADN
peuvent aussi s'assembler entre eux pour constituer des entités protéiques complexes multimériques. Ce phénomène s'ajoute aux précédents et, lorsqu'une protéine est identifiée par un fragment peptidique, on peut logiquement identifier tous les autres éléments constitutifs de cette protéine complexe et les segments ADN et ARN épissés qui les codent, ainsi que tous les membres de la famille de produits protéiques et leurs assemblages.
Un autre exemple est fourni par la région d'ADN humain codant pour la famille de protéines MRP14 ou calgranuline B, MRP8, calprotectine, psoriasine etc.
Aussi, la présente invention a pour objet l'utilisation d'au moins un polypeptide comprenant au moins un fragment d'une protéine pour obtenir une
8 the presence of several translation initiating codons in several reading and / or primary RNA splicing splicing the nucleotic sequences present in phases different readings on DNA, allows the same DNA region to generate products protein without relationship between them, from the point of view of the peptide sequence.
Finally, the genetic polymorphism existing between individuals of the same species and / or individual mutations can create or delete sites splicing in a given DNA region and thus modify the sequence and structure of the or some products proteins normally produced by this region.
Thus, the combination of these different phenomena can allow the same nucleotide sequence corresponding to a segment of DNA, identified as determining a genetic region of interest in a given study, includes information necessary and sufficient to define a whole family of RNAs spliced according to diagrams differentials and alternative, in various reading frames and, by that, obviously, of protein and polypeptides having “mosaic” sequences according to a reading frame or even according to the three potential frameworks and mutations possibly linked to polymorphism genetic.
An example of this phenomenon can be represented by the nucleotide region of the HIV-1 retrovirus env gene. Indeed, several different proteins are encoded by segments of the same sequence: for example, the envelope glycoprotein, and the proteins regulators TAT, REV, NEF, VIF.
It is also known that proteins can result from the assembly of Identical (homodimers, homomultimers) or different subunits (heterodimers, heteromultimers). Thus, the various protein products coded by a same DNA region can also join together to form protein entities complex multimerics. This phenomenon is added to the previous ones and, when a protein is identified by a peptide fragment, we can logically identify all the others building blocks of this complex protein and the spliced DNA and RNA segments that encode them, as well as all members of the protein product family and their assemblies.
Another example is provided by the region of human DNA encoding the family.
protein MRP14 or calgranulin B, MRP8, calprotectin, psoriasin etc.
Also, the subject of the present invention is the use of at least one polypeptide comprising at least one fragment of a protein to obtain a

9 composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou auto-immune, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à
l'état natif correspond à SEQ ID N 1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N
5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N
12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N
18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N
24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28 et SEQ ID N 29 et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité, de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques précitées, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B
et de la saposine B. Dans des modes de réalisation particuliers au moins deux polypeptides précités sont utilisés en combinaison pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé
à une maladie dégénérative et/ou auto-immune.
L'invention concerne également l'utilisation d'au moins un polypeptide comprenant au moins un fragment d'une protéine pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou auto-immune, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à
l'état natif correspond à SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 8, SEQ ID N 17 et SEQ ID N 24 et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité, de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques précitées. Avantageusement les cinq polypeptides qui répondent à la définition précédente sont utilisés en combinaison.

De préférence, la séquence peptidique dudit polypeptide comprend, ou consiste en une séquence choisie parmi l'une quelconque des SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N
8, SEQ ID N 17 et SEQ ID N 24.
L'invention concerne encore l'utilisation d'au moins un fragment d'un des 5 polypeptides précités pour la préparation d'un peptide immunogène, ledit peptide comprenant tout ou partie d'au moins une des séquences référencées SEQ ID N s 58 à 65 et étant utilisé
pour la production d'anticorps monoclonaux.
L'invention a également pour objet, l'utilisation d'au moins un fragment nucléotidique, pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou
9 diagnostic, prognostic, prophylactic or therapeutic composition intended to detect, predict, prevent or treat a medical condition associated with a disease degenerative and / or autoimmune, said protein being chosen from proteins whose peptide sequence to the native state corresponds to SEQ ID N 1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N
5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N
12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N
18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N
24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28 and SEQ ID N 29 and the sequences peptides which have at least 70% identity, preferably at least 80 % identity and advantageously at least 98% identity with any of the sequences peptide mentioned above, and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of plasma protein binding to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B
and saposin B. In particular embodiments at least two polypeptides above are used in combination to obtain a diagnostic, prognostic composition, prophylactic or therapy to detect, predict, prevent or treat a condition associated pathology degenerative and / or autoimmune disease.
The invention also relates to the use of at least one polypeptide comprising at least one fragment of a protein to obtain a composition diagnostic, prognostic, prophylactic or therapeutic intended to detect, predict, prevent or treat a medical condition associated with a degenerative and / or self-immune, said protein being chosen from proteins whose peptide sequence to native state matches to SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 8, SEQ ID N 17 and SEQ ID N 24 and the sequences peptides which have at least 70% identity, preferably at least 80 % identity and advantageously at least 98% identity with any of the sequences peptide mentioned above. Advantageously, the five polypeptides which meet the definition previous are used in combination.

Preferably, the peptide sequence of said polypeptide comprises, or consists in a sequence chosen from any one of SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N
8, SEQ ID N 17 and SEQ ID N 24.
The invention also relates to the use of at least a fragment of one of the 5 aforementioned polypeptides for the preparation of an immunogenic peptide, said peptide comprising all or part of at least one of the sequences referenced SEQ ID N s 58 to 65 and being used for the production of monoclonal antibodies.
Another subject of the invention is the use of at least one fragment nucleotide, to obtain a diagnostic, prognostic composition, prophylactic or

10 thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé
à une maladie dégénérative et/ou auto-immune, selon laquelle ledit fragment nucléotidique est choisi parmi des fragments qui codent pour au moins un fragment d'une protéine, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à
l'état natif correspond à SEQ ID N 1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N
6, SEQ
ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID
N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID
N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID
N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28 ET SEQ ID N 29 et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité, de préférence au moins 80 % et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques ci dessus, et les fragments complémentaires desdits fragments, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice du GM2, de la calgranuline B et de la saposine B. Il est à la portée de l'homme du métier de déterminer les séquences nucléiques des fragments nucléotidiques à partir des séquences peptidiques et du code génétique, ceci faisant partie de ses connaissances générales.
De préférence, ledit fragment nucléotidique code pour une protéine qui à
l'état natif consiste en une séquence choisie parmi l'une quelconque des SEQ ID N s 1 à 8 et SEQ
ID N s 10 à 29 précitées, et parmi les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies
10 therapeutic intended to detect, predict, prevent or treat a associated medical condition degenerative and / or autoimmune disease, whereby said fragment nucleotide is chosen from fragments which code for at least one fragment of a protein said protein being chosen from proteins whose peptide sequence to native state matches at SEQ ID N 1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N
6, SEQ
ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID
N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID
N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID
N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28 AND SEQ ID N 29 and the peptide sequences who have at least 70% identity, preferably at least 80% and advantageously at minus 98% identity with any of the peptide sequences ci on it, and fragments complementary to said fragments, and the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the plasma retinol binding protein precursor, protein activator of GM2, of calgranulin B and saposin B. It is within the reach of those skilled in the art to determine the nucleic acid sequences of the nucleotide fragments from the sequences peptide and genetic code, this being part of his general knowledge.
Preferably, said nucleotide fragment codes for a protein which the state native consists of a sequence chosen from any one of SEQ ID N s 1 at 8 and SEQ
ID N s 10 to 29 above, and among the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of selected proteins

11 parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice du GM2, de la calgranuline B et de la saposine B.
Un autre objet de l'invention est l'utilisation d'au moins un fragment nucléotidique pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé
à une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune selon laquelle ledit fragment est un fragment d'une séquence nucléique choisie parmi l'une quelconque des SEQ ID N 30, SEQ ID N 31, SEQ ID N 32, SEQ ID N 33, SEQ ID N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N
36, SEQ ID N 37, SEQ ID N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41, SEQ ID N
42, SEQ ID N 43, SEQ ID N 44, SEQ ID N 45, SEQ ID N 46 et SEQ ID N 47, SEQ ID
N 48, SEQ ID N 49 et SEQ ID N 50, SEQ ID N 51, SEQ ID N 52, SEQ ID N 53, SEQ ID
N 54, SEQ ID N 55, SEQ ID N 56, SEQ ID N 57, SEQ ID N 67, SEQ ID N 66, SEQ ID N
69, SEQ ID N 70 et SEQ ID N 71 et leurs séquences complémentaires.
L'invention concerne également l'utilisation d'un ligand spécifique d'un polypeptide ou d'un fragment nucléotidique tel que défini ci-dessus pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou auto-immune.
Par ligand, on entend toute molécule susceptible de s'associer au polypeptide, tel que un anticorps monoclonal, un anticorps polyclonal, un récepteur, un substrat d'activité
enzymatique, une enzyme dont ledit polypeptide est un cofacteur. La production d'anticorps polyclonaux et monoclonaux fait partie des connaissances générales de l'homme du métier. On peut citer à titre de référence Kbhler G. et Milstein C. (1975) : Continuous culture of fused cells secreting antibody of predefined specificity, Nature 256 495-497 et Galfre G. et al.
(1977) Nature, 266 : 522-550 pour la production d'anticorps monoclonaux et Roda A., Bolelli G.F. : Production of high-titer antibody to bile acids, Journal of Steroid Biochemistry, Vol. 13, pp. 449-454 (1980) pour la production d'anticorps polyclonaux.
Par ligand, on entend également toute molécule susceptible de s'associer à un fragment nucléotidique, tel qu'un fragment nucléotidique partiellement ou
11 among perlecan, the precursor of the plasma binding protein retinol, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B.
Another object of the invention is the use of at least one fragment nucleotide to obtain a diagnostic, prognostic composition, prophylactic or therapy to detect, predict, prevent or treat a condition associated pathology degenerative and / or neurological and / or autoimmune disease whereby said fragment is a fragment of a nucleic sequence chosen from any one of SEQ ID N 30, SEQ ID N 31, SEQ ID N 32, SEQ ID N 33, SEQ ID N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N
36, SEQ ID N 37, SEQ ID N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41, SEQ ID N
42, SEQ ID N 43, SEQ ID N 44, SEQ ID N 45, SEQ ID N 46 and SEQ ID N 47, SEQ ID
N 48, SEQ ID N 49 and SEQ ID N 50, SEQ ID N 51, SEQ ID N 52, SEQ ID N 53, SEQ ID
N 54, SEQ ID N 55, SEQ ID N 56, SEQ ID N 57, SEQ ID N 67, SEQ ID N 66, SEQ ID N
69, SEQ ID N 70 and SEQ ID N 71 and their complementary sequences.
The invention also relates to the use of a specific ligand of a polypeptide or nucleotide fragment as defined above for get a diagnostic, prognostic, prophylactic or therapeutic composition intended to detect, predict, prevent or treat a medical condition associated with a disease degenerative and / or autoimmune.
By ligand is meant any molecule capable of associating with the polypeptide, Phone that a monoclonal antibody, a polyclonal antibody, a receptor, a activity substrate enzymatic, an enzyme of which said polypeptide is a cofactor. The production antibody polyclonal and monoclonal is part of general human knowledge of career. We may cite by reference Kbhler G. and Milstein C. (1975): Continuous culture of fused cells secreting antibody of predefined specificity, Nature 256 495-497 and Galfre G. et al.
(1977) Nature, 266: 522-550 for the production of monoclonal antibodies and Roda A., Bolelli GF: Production of high-titer antibody to bile acids, Journal of Steroid Biochemistry, Vol. 13, pp. 449-454 (1980) for the production of polyclonal antibodies.
By ligand is also meant any molecule capable of associating with a nucleotide fragment, such as a partially nucleotide fragment or

12 totalement complémentaire, un polynucléotide complémentaire, un anticorps anti-acides nucléiques. La production de fragments nucléotidiques ou de polynucléotides fait partie des connaissances générales de l'homme du métier. On peut notamment citer l'utilisation d'enzymes de restriction, et la synthèse chimique sur synthétiseur automatique, par exemple sur des synthétiseurs commercialisés par la société Applied Biosystem. Par ailleurs, on connaît des techniques pour la production d'anticorps anti-acides nucléiques. On peut citer à titre d'exemples Philippe Cros et al., Nucleic Acides Researc, 1994, Vol. 22, N .
15, 2951-2957;
Anderson, W.F. et al. (1988) Bioessays, 8 (2), 69-74 ; Lee, J.S. et al. (1984) FEBS Lett., 168, 303-306; Malfoy, B. et al. (1982) Biochemistry, 21(22), 5463-5467; Stollar, B.D. et al., J.J.
(eds) Methods in Enzymology, Academic Press, pp. 70-85 ; Traincard, F. et al.
(1989) J.
Immunol. Meth., 123, 83-91 et Traincard, F. et al. (1989) Mol. Cell. Probes, 3, 27-38).
L'invention a encore pour objet un procédé pour détecter au moins une protéine associée à une maladie dégénérative et/ou auto-immune, dans un échantillon biologique dans lequel on met en contact l'échantillon biologique avec au moins un ligand spécifique d'au moins un polypeptide, ledit polypeptide comprenant au moins un fragment d'une protéine et ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif correspond à SEQ ID N 1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID
N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ
ID N
12 fully complementary, a complementary polynucleotide, an anti-acids nucleic acids. Production of nucleotide fragments or polynucleotides is one of general knowledge of a person skilled in the art. We can notably cite use restriction enzymes, and chemical synthesis on a synthesizer automatic, for example on synthesizers marketed by the company Applied Biosystem. Through elsewhere, we know techniques for the production of anti-nucleic acid antibodies. We can quote as of examples Philippe Cros et al., Nucleic Acides Researc, 1994, Vol. 22, N.
15, 2951-2957;
Anderson, WF et al. (1988) Bioessays, 8 (2), 69-74; Lee, JS et al. (1984) FEBS Lett., 168, 303-306; Malfoy, B. et al. (1982) Biochemistry, 21 (22), 5463-5467; Stollar, BD et al., JJ
(eds) Methods in Enzymology, Academic Press, pp. 70-85; Traincard, F. et al.
(1989) J.
Immunol. Meth., 123, 83-91 and Traincard, F. et al. (1989) Mol. Cell. Probes, 3, 27-38).
The invention also relates to a method for detecting at least one protein.
associated with a degenerative and / or autoimmune disease, in a sample organic in which the biological sample is brought into contact with at least one ligand specific of at at least one polypeptide, said polypeptide comprising at least one fragment of a protein and said protein being chosen from proteins whose peptide sequence native corresponds to SEQ ID N 1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID
N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ
ID N

13, SEQ ID N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ
ID N
19, SEQ ID N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ
ID N
25, SEQ ID N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28 et SEQ IDN 29 et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à SEQ ID N 8 et SEQ ID N 10 à 29, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B, puis on détecte la formation d'un complexe entre ledit polypeptide et ledit ligand. Ledit ligand est avantageusement un anticorps monoclonal, un anticorps polyclonal, un récepteur, un substrat d'activité enzymatique ou une enzyme dont ledit polypeptide est un cofacteur.
De même, l'invention concerne un procédé pour détecter au moins un ligand associé à une maladie dégénérative et/ou auto-immune, dans un échantillon biologique, caractérisé en ce que l'on met en contact l'échantillon biologique avec au moins un polypeptide comprenant au moins un fragment d'une protéine, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif correspond à
SEQ ID N 1, SEQ
ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ
ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N
15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N
21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ ID N
27, SEQ ID N 28 et SEQ ID N 29 et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 %
d'identité, de préférencè au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à SEQ
ID N 8 et SEQ ID N s 10 à SEQ ID N 29, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B, puis on détecte la formation d'un complexe entre ledit polypeptide et ledit ligand. Le ligand est toute molécule qui répond aux conditions précédemment décrites.
De préférence, dans les procédés décrits ci dessus la séquence du polypeptide comprend ou consiste en une.séquence peptidique choisie parmi l'une quelconque des SEQ ID
N 1 à 8 et SEQ ID N 10 à 29 précédentes et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B.
L'invention concerne également un nouveau polypeptide qui comprend au moins un fragment d'une protéine dont la séquence peptidique correspond à SEQ ID N
9, ledit fragment présentant au moins une mutation, en particulier au moins deux mutations par rapport à la séquence de référence SEQ ID N 8. Le polypeptide est
13, SEQ ID N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ
ID N
19, SEQ ID N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ
ID N
25, SEQ ID N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28 and SEQ IDN 29 and the sequences peptides which have at least 70% identity, preferably at least 80 % identity and advantageously at least 98% identity with any of the sequences peptide SEQ ID N 1 to SEQ ID N 8 and SEQ ID N 10 to 29, and the peptide sequences where the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of the plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B, then we detect the formation of a complex between said polypeptide and said ligand. Said ligand is advantageously an antibody monoclonal, a polyclonal antibody, a receptor, an enzyme activity substrate or an enzyme of which said polypeptide is a cofactor.
Similarly, the invention relates to a method for detecting at least one ligand associated with a degenerative and / or autoimmune disease, in a sample organic, characterized in that the biological sample is brought into contact with minus one polypeptide comprising at least one fragment of a protein, said protein being chosen among proteins whose native peptide sequence corresponds to SEQ ID N 1, SEQ
ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ
ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N
15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N
21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ ID N
27, SEQ ID N 28 and SEQ ID N 29 and the peptide sequences which exhibit minus 70%
identity, preferably at least 80% identity and preferably at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to SEQ
ID N 8 and SEQ ID N s 10 to SEQ ID N 29, and the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B, then we detect the formation of a complex between said polypeptide and said ligand. The ligand is any molecule that responds to conditions previously described.
Preferably, in the methods described above the sequence of the polypeptide includes or consists of a peptide sequence chosen from any one SEQ IDs N 1 to 8 and SEQ ID N 10 to 29 above and the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B.
The invention also relates to a novel polypeptide which comprises at least a fragment of a protein whose peptide sequence corresponds to SEQ ID N
9, said fragment having at least one mutation, in particular at least two mutations compared to the reference sequence SEQ ID N 8. The polypeptide is

14 avantageusement choisi parmi les polypeptides qui comprennent la séquence en acides aminés FSWDNCFEGKDPAVIR, référencée SEQ ID N 68 et la séquence en acides aminés YSLPKSEFAVPDLELP, référencée SEQ ID N 72.
En particulier, ledit polypeptide comprend ou consiste en SEQ ID N 9.
Ce polypeptide est utilisé pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou auto-immune, seul ou en mélange avec au moins un polypeptide tel que défini précédemment.
L'un des objet de l'invention est également un fragment nucléotidique qui code pour le fragment de la protéine dont la séquence peptidique correspond à
SEQ ID
N 9, ledit fragment de ladite protéine présentant au moins une mutation, en particulier deux mutations par rapport à la séquence de référence SEQ ID N 8. Ledit fragment nucléotidique, én particulier, comprend ou consiste en un fragment qui code pour SEQ
ID N 9. Ce fragment est utilisé pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter,-prévenir, ou traiter un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou auto-immune, seul ou en mélange avec au moins un fragment nucléotidique tel que défini précédemment.
L'invention a aussi pour objet un procédé pour détecter au moins un ligand associé à une maladie dégénérative et/ou auto-immune, dans un échantillon biologique, selon lequel on met en contact l'échantillon biologique avec au moins le polypeptide qui comprend ou consiste en SEQ ID N 9 ou un mélange de polypeptides comprenant ce polypèptide et au moins un polypeptide tel que décrit ci dessus, puis on détecte la formation d'un complexe ou de complexes entre le ou les polypeptides et le ou les ligands conrespondants ; étant entendu que par ligand on entend une molécule qui répond aux conditions précitées.
L'invention conceme également un procédé pour détecter au moins le polypeptide référence SEQ ID N 9 ou un fragment dudit polypeptide, ce fragment comprenant au moins une et de préférence deux mutations par rapport à la séquence de référence SEQ ID N 8, dans un échantillon biologique selon lequel on met en contact l'échantillon biologique avec au moins un ligand spécifique dudit polypeptide, puis on détecte la formation d'un complexe entre ledit polypeptide et ledit ligand. La définition de ligand correspond à celle définie précédemment. Il peut s'agir entre autres d'un anticorps monolonal , d'un anticorps polyclonal, d'un substrat d'activité
enzymatique, ou d'une enzyme dont ledit polypeptide est un cofacteur, d'un récepteur.
On peut également mettre en contact l'échantillon biologique avec un ligand spécifique du polypeptide référence SEQ ID N 9 et au moins un ligand 5 spécifique d'au moins un autre polypeptide tel que défini précédenunent, puis on détecte la formation de complexes entre lesdits polypeptides et lesdits ligands spécifiques desdits polypeptides ; étant entendu que par ligand on entend une molécule qui répond aux conditions décrites précédemment.
Un autre objet de l'invention est un fragment nucléotidique codant pour to tout ou partie du polypeptide SEQ ID N 9, et son utilisation pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à
détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou auto-immune, éventuellement en association avec au moins un fragment nucléotidique tel que défini précédemment, et les fragments complémentaires
14 advantageously chosen from polypeptides which include the sequence in acids amino acids FSWDNCFEGKDPAVIR, referenced SEQ ID N 68 and the acid sequence amines YSLPKSEFAVPDLELP, referenced SEQ ID N 72.
In particular, said polypeptide comprises or consists of SEQ ID N 9.
This polypeptide is used to obtain a diagnostic composition, prognosis, prophylactic or therapeutic intended to detect, predict, prevent or treat a pathological condition associated with a degenerative and / or autoimmune disease, alone or in mixture with at least one polypeptide as defined above.
One of the subject of the invention is also a nucleotide fragment which code for the fragment of the protein whose peptide sequence corresponds to SEQ ID
N 9, said fragment of said protein having at least one mutation, in particular two mutations compared to the reference sequence SEQ ID N 8. Said fragment nucleotide, in particular, comprises or consists of a fragment which codes for SEQ
ID N 9. This fragment is used to obtain a diagnostic composition, prognostic, prophylactic or therapeutic intended to detect, prevent, or treat a pathological condition associated with a degenerative and / or autoimmune disease, alone or in mixing with at least one nucleotide fragment as defined above.
The invention also relates to a method for detecting at least one ligand associated with a degenerative and / or autoimmune disease, in a sample biological, whereby the biological sample is brought into contact with minus the polypeptide which comprises or consists of SEQ ID N 9 or a mixture of polypeptides comprising this polypepide and at least one polypeptide as described above, then we detects the formation of a complex or complexes between the one or more polypeptides and the or the corresponding ligands; it being understood that by ligand is meant a molecule which meets the above conditions.
The invention also relates to a method for detecting at least the reference polypeptide SEQ ID N 9 or a fragment of said polypeptide, this fragment comprising at least one and preferably two mutations with respect to the sequence of reference SEQ ID N 8, in a biological sample according to which contact the biological sample with at least one ligand specific for said polypeptide, then we detects the formation of a complex between said polypeptide and said ligand. The definition of ligand corresponds to that defined above. It can be among others of a monolonal antibody, polyclonal antibody, activity substrate enzymatic, or an enzyme in which said polypeptide is a cofactor, a receptor.
The biological sample can also be brought into contact with a ligand specific for the reference polypeptide SEQ ID N 9 and at least one ligand 5 specific for at least one other polypeptide as defined above, then we detects the formation of complexes between said polypeptides and said ligands specific for said polypeptides; it being understood that by ligand is meant a molecule which meets the conditions described above.
Another subject of the invention is a nucleotide fragment coding for to all or part of the polypeptide SEQ ID N 9, and its use for obtaining a diagnostic, prognostic, prophylactic or therapeutic composition destined to detect, predict, prevent or treat a medical condition associated with sickness degenerative and / or autoimmune, possibly in combination with at least one nucleotide fragment as defined above, and the fragments complementary

15 desdits fragments.
Par fragment polypeptidique, on entend au moins tout ou partie de la séquence peptidique d'une protéine, en particulier un fragment polypeptique qui comprend environ entre 5 et 15 acides aminés et plus précisément environ entre 5 et 10 acides aminés et 6 et 15 acides aminés. Et par fragment nucléotidique, on entend au moins tout ou partie d'une séquence nucléotidique, étant entendu que par séquence nucléotidique, sont couvertes les séquences ADN et ARN.
En particulier, par fragment polypeptidique ou nucléotidique, on entend soit des fragments associés à une même unité moléculaire, soit des fragments dans un complexe moléculaire comprenant plusieurs sous-unités homologues ou hétérologues obtenues de manière naturelle ou artificielle, notamment par multi-épissage différentiel ou par synthèse sélective.
L'invention concerne aussi un procédé pour détecter au moins un polypeptide tel que défini précédemment, selon lequel on prélève un échantillon d'un fluide biologique d'un patient présentant un état pathologique associé à une maladie 3o dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune et éventuellement après purification dudit échantillon de fluide biologique, on analyse par spectrométrie de
15 of said fragments.
By polypeptide fragment is meant at least all or part of the peptide sequence of a protein, in particular a polypeptide fragment who contains approximately between 5 and 15 amino acids and more precisely approximately between 5 and 10 amino acids and 6 and 15 amino acids. And by nucleotide fragment, we hear at less all or part of a nucleotide sequence, it being understood that by sequence nucleotide, the DNA and RNA sequences are covered.
In particular, by polypeptide or nucleotide fragment is meant either fragments associated with the same molecular unit, or fragments in one molecular complex comprising several homologous subunits or heterologists obtained in a natural or artificial way, in particular by multi-splicing differential or by selective synthesis.
The invention also relates to a method for detecting at least one polypeptide as defined above, according to which a sample of a biological fluid of a patient with a medical condition associated with sickness 3o degenerative and / or neurological and / or autoimmune and possibly after purification of said biological fluid sample, it is analyzed by spectrometry of

16 masse le profil de masse obtenu à partir du fluide biologique et on compare à
un profil de masse de référence.
La présente invention concerne également l'utilisation d'au moins un polypeptide de l'invention pour définir des agents efficaces thérapeutiquement, et l'utilisation de ces agents pour prévenir et/ou traiter une maladie auto-inunune et/ou neurologique et/ou dégénérative, en particulier la sclérose en plaques.
Ainsi, d'autres objets de l'invention sont les suivants :
- Utilisation d'au moins un polypeptide comprenant au moins un fragment d'une protéine pour tester l'efficacité d'un agent thérapeutique, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif correspond à SEQ ID N 1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID
N 9, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N
15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ
ID N
21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ
ID N
27, SEQ ID N 28 et SEQ ID N 29, les séqûences peptidiques qui présentent au moins 70 %
d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 d'identité
avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisie parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B;
- Utilisation d'au moins un polypeptide comprenant au moins un fragment d'une protéine pour définir un matériel biologique pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au traitement d'une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, telle que la sclérose en plaques, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif côrrespond à SEQ ID N 1, SEQ IDN
2, SEQ IDN
3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID N
9, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N
15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N

21, SEQ 10 N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ
ID
N 27, SEQ ID N 28 et SEQ
16 mass the mass profile obtained from the biological fluid and we compare to a profile of reference mass.
The present invention also relates to the use of at least one polypeptide of the invention to define effective agents therapeutically, and the use of these agents to prevent and / or treat auto-immune disease and / or neurological and / or degenerative, especially multiple sclerosis.
Thus, other objects of the invention are the following:
- Use of at least one polypeptide comprising at least one fragment of a protein to test the effectiveness of a therapeutic agent, said protein being chosen from among proteins whose peptide sequence in the native state corresponds to SEQ ID N 1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID
N 9, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N
15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ
ID N
21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ
ID N
27, SEQ ID N 28 and SEQ ID N 29, the peptide sequences which exhibit minus 70%
identity preferably at least 80% identity and preferably at least 98 identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, and the sequences peptides or the fragments of said sequences belonging to the same family protein chosen from perlecan, the precursor of the plasma binding protein retinol, activator protein of GM2, calgranulin B and saposin B;
- Use of at least one polypeptide comprising at least one fragment of a protein to define a biological material for the preparation of a composition pharmaceutical intended for the treatment of a degenerative disease and / or neurological and / or autoimmune, such as multiple sclerosis, said protein being selected among proteins whose peptide sequence in the native state corresponds to SEQ ID N 1, SEQ IDN
2, SEQ IDN
3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID N
9, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N
15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N

21, SEQ 10 N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ
ID
N 27, SEQ ID N 28 and SEQ

17 ID N 29, les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisie parmi le perlacan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline et de la saposine ;
Selon une variante avantageuse de l'une des utilisations précédentes, le polypeptide est choisi parmi SEQ ID N 2, 4,8, 9, 17, 24 ;
- Utilisation d'au moins un fragment nucléotidique, pour tester l'efficacité
d'un agent thérapeutique pour un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-inunune, selon laquelle ledit fragment nucléotidique est choisi parmi les fragments qui codent pour au moins un fragment d'une protéine, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif correspond à SEQ ID N
1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N
7, SEQ
ID N 8, SEQ IDN 9, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID
N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID
N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID
N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28 et SEQ ID N 29, les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité, de préférence au moins 80 % et avantageusement au moins 98 % d'identité âvec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N
1 à 29, et les fragments complémentaires desdits fragments et les fragments qui codent pour les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisie parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B.
- Utilisation pour tester l'efficacité d'un agent thérapeutique pour un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, de protéines recombinantes et/ou codées par tout ou partie des fragments nucléotidiques définis au paragraphe précédent ;
17 ID N 29, the peptide sequences which have at least 70% identity of preference to at least 80% identity and advantageously at least 98 identity with one any of peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, and the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlacan, the precursor of plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin and saposin;
According to an advantageous variant of one of the preceding uses, the polypeptide is chosen from SEQ ID N 2, 4,8, 9, 17, 24;
- Use of at least one nucleotide fragment, to test the effectiveness of a therapeutic agent for a pathological condition associated with a disease degenerative and / or neurological and / or auto-immune, whereby said nucleotide fragment is chosen from the fragments which code for at least one fragment of a protein, said protein being chosen from proteins whose peptide sequence in the native state corresponds to SEQ ID N
1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N
7, SEQ
ID N 8, SEQ IDN 9, SEQ ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID
N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID
N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID
N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28 and SEQ ID N 29, the peptide sequences who have at least 70% identity, preferably at least 80% and advantageously at minus 98% identity with any of the peptide sequences SEQ ID N
1 to 29, and the complementary fragments of said fragments and the fragments which code for the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein of connection to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B.
- Use to test the effectiveness of a therapeutic agent for a condition pathological associated with a degenerative and / or neurological and / or auto-immune, from recombinant proteins and / or encoded by all or part of the fragments defined nucleotides in the previous paragraph;

18 - Utilisation d'au moins un fragment nucléotidique pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au traitement d'une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, telle que la sclérose en plaques, selon laquelle ledit fragment nucléotidique est choisi parmi des fragments qui codent pour au moins un fragment d'une protéine, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif correspond à SEQ ID N 1, SEQ ID N
2, SEQ ID N
3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ IDN
9, SEQ
ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N
15, SEQ
ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N
21, SEQ
ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ ID N
27, SEQ
ID N 28 et SEQ ID N 29, les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité, de préférence au moins 80 % et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, et les fragments complémentaires desdits fragments et les fragments qui codent pour les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisie parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B;
- Utilisation pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinéè au traitement d'une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, telle que la sclérose en plaques, de protéines recombinantes et/ou codées par tout ou partie des fragments nucléotidiques définis au paragraphe précédent.
Avantageusement, ledit fragment nucléotidique utilisé code pour ladite protéine.
De préférence, la séquence peptidique de ladite protéine à l'état natif consiste en une séquence choisie parmi l'une quelconque des SEQ ID N 1 à 29, les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séqüences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de
18 - Use of at least one nucleotide fragment for the preparation of a pharmaceutical composition intended for the treatment degenerative and / or neurological and / or autoimmune disease, such as sclerosis in plates, whereby said nucleotide fragment is selected from fragments that code for at least one fragment of a protein, said protein being chosen from the proteins whose peptide sequence in the native state corresponds to SEQ ID N 1, SEQ ID N
2, SEQ ID N
3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ IDN
9, SEQ
ID N 10, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 13, SEQ ID N 14, SEQ ID N
15, SEQ
ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 20, SEQ ID N
21, SEQ
ID N 22, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ ID N
27, SEQ
ID N 28 and SEQ ID N 29, the peptide sequences which have at least 70 % identity, preferably at least 80% and advantageously at least 98% identity with Moon any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, and the fragments complementary of said fragments and the fragments which code for the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B;
- Use for the preparation of a pharmaceutical composition intended for treatment of a degenerative and / or neurological and / or autoimmune disease, such as the multiple sclerosis, recombinant proteins and / or coded by all or part of the fragments nucleotides defined in the previous paragraph.
Advantageously, said nucleotide fragment used codes for said protein.
Preferably, the peptide sequence of said protein in the native state consists in a sequence chosen from any one of SEQ ID N 1 to 29, the sequences peptides which have at least 70% identity, preferably at least 80 % identity and advantageously at least 98 of identity with any one of the sequences peptide SEQ ID N 1 to 29, and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor of the plasma protein binding to retinol,

19 la protéine activâtrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B. Les polypeptides sont préférentiellement choisis parmi SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24.
- Utilisation d'au moins un fragment nucléotidique, pour tester l'efficacité
d'un agent thérapeutique pour un état pathologique associé à une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune selon laquelle ledit fragment est un fragment d'une séquence nucléique choisie parmi l'une quelconque des SEQ ID N 30, SEQ ID N 31, SEQ
ID N 32, SEQ ID N 33, SEQ ID N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N 36, SEQ ID N 37, SEQ ID N
38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41, SEQ ID N 42, SEQ ID N 43, SEQ ID N
44, SEQ ID N 45, SEQ ID N 46 et SEQ ID N 47, SEQ ID N 48, SEQ ID N 49 et SEQ
ID N
50, SEQ ID N 51, SEQ ID N 52, SEQ ID N 53, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55, SEQ
ID N
56, SEQ ID N 57, SEQ ID N 66, SEQ ID N 67, SEQ ID N 69, SEQ ID N 70 , SEQ
ID N
71, et leurs séquences complémentaires.
- Utilisation d'au moins un fragment nucléotidique pour la. préparation d'une composition pharmaceutique destinée au traitement d'une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, telle que la sclérose en plaques selon laquelle ledit fragment est un fragment d'une séquence nucléique choisie parmi l'une quelconque des SEQ ID N 30, SEQ ID N 31, SEQ ID N 32, SEQ ID N 33, SEQ ID
N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N 36, SEQ ID N 37, SEQ ID N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID
N 40, SEQ ID N 41, SEQ ID N 42, SEQ ID N 43, SEQ ID N 44, SEQ ID N 45, SEQ ID
N 46 et SEQ ID N 47, SEQ ID N 48, SEQ ID N 49 et SEQ ID N 50, SEQ ID N
51, SEQ
ID N 52, SEQ ID N 53, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55, SEQ ID N 56, SEQ ID N
57, SEQ
ID N 66, SEQ ID N 67, SEQ ID N 68, SEQ ID N 69, SEQ ID N 70 , SEQ ID N 71, et leurs séquences complémentaires.
La séquence nucléique est de préférence choisie parmi SEQ ID N 30, 31, 42, 53.
- Utilisation de la lycorine pour la préparation d'une composition pour la prévention et/ou le traitement de maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune.
Par efficacité thérapeutique, on entend le bénéfice clinique et biologique acquis après administration d'un agent thérapeutique en vue d'une amélioration, voire d'une guérison de la maladie. Ce bénéfice se traduit entre autre par une diminution des signes cliniques, biologiques, et des effets pathologiques de la maladie après une analyse clinique par le médecin et/ou des analyses biologiques, telles que imagerie par résonance magnétique, analyse des bandes oligoclonales dans le liquide céphalo-5 rachidien, analyse de potentiels évoqués et le test de détection de gliotoxicité appelé
bio-essai, dont le principe est décrit dans la demande de brevet WO 98/11439 précédemment citée. Cette diminution des signes cliniques et effets pathologiques doit entraîner un bénéfice pour le patient (Schwartz et Lazar, 1995, Elements de statistique médicale et biologique, eds Flammarion ; Lazar et Schwartz, 1995, Eléments de to statistique médicale et biologique, eds Flammarion ). La maladie étudiée de préférence est la sclérose en plaques.
On entend par composition à usage prophylactique et/ou thérapeutique, toute composition qui comprend un agent thérapeutiquement efficace. Ces agents thérapeutiques sont- capables (i) d'influencer de manière qualitative et/ou quantitative 15 1' activité biologique et/ou la fonction des protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention, de préférence l'activité gliotoxique et/ou (ii) de moduler et/ou d'inhiber l'expression de ces protéines et/ou (iii) de diminuer la concentration de ces protéines dans un compartiment extracellulaire et/ou intracellulaire, et/ou de substituer une forme non pathogène à une forme pathogène, par exemple mutée, d'une de ces protéines et/ou
19 the activating protein of GM2, calgranulin B and saposin B.
polypeptides are preferably chosen from SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24.
- Use of at least one nucleotide fragment, to test the effectiveness of a therapeutic agent for a pathological condition associated with a disease degenerative and / or neurological and / or autoimmune according to which said fragment is a fragment of a sequence nucleic acid chosen from any one of SEQ ID N 30, SEQ ID N 31, SEQ
ID N 32, SEQ ID N 33, SEQ ID N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N 36, SEQ ID N 37, SEQ ID N
38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41, SEQ ID N 42, SEQ ID N 43, SEQ ID N
44, SEQ ID N 45, SEQ ID N 46 and SEQ ID N 47, SEQ ID N 48, SEQ ID N 49 and SEQ
ID N
50, SEQ ID N 51, SEQ ID N 52, SEQ ID N 53, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55, SEQ
ID N
56, SEQ ID N 57, SEQ ID N 66, SEQ ID N 67, SEQ ID N 69, SEQ ID N 70, SEQ
ID N
71, and their complementary sequences.
- Use of at least one nucleotide fragment for the. preparation of a pharmaceutical composition for treatment degenerative and / or neurological and / or autoimmune disease, such as sclerosis in plates according to which said fragment is a fragment of a nucleic sequence chosen from any of SEQ ID N 30, SEQ ID N 31, SEQ ID N 32, SEQ ID N 33, SEQ ID
N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N 36, SEQ ID N 37, SEQ ID N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID
N 40, SEQ ID N 41, SEQ ID N 42, SEQ ID N 43, SEQ ID N 44, SEQ ID N 45, SEQ ID
N 46 and SEQ ID N 47, SEQ ID N 48, SEQ ID N 49 and SEQ ID N 50, SEQ ID N
51, SEQ
ID N 52, SEQ ID N 53, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55, SEQ ID N 56, SEQ ID N
57, SEQ
ID N 66, SEQ ID N 67, SEQ ID N 68, SEQ ID N 69, SEQ ID N 70, SEQ ID N 71, and their complementary sequences.
The nucleic sequence is preferably chosen from SEQ ID N 30, 31, 42, 53.
- Use of lycorine for the preparation of a composition for the prevention and / or treatment of degenerative and / or neurological disease and / or autoimmune.
By therapeutic efficacy is meant the clinical and biological benefit acquired after administration of a therapeutic agent for improvement, or even a cure for the disease. This benefit translates among other things by a decrease in clinical, biological, and pathological effects of the disease after a clinical analysis by the doctor and / or biological analyzes, such as imagery by magnetic resonance, analysis of the oligoclonal bands in the cephalo- liquid 5 spinal analysis of evoked potentials and the detection test gliotoxicity called bioassay, the principle of which is described in patent application WO 98/11439 previously cited. This decrease in clinical signs and effects pathological must benefit the patient (Schwartz and Lazar, 1995, Elements of statistical medical and biological, eds Flammarion; Lazar and Schwartz, 1995, Elements of to medical and biological statistics, eds Flammarion). The studied disease of preference is multiple sclerosis.
The term “composition for prophylactic and / or therapeutic use” means any composition which includes a therapeutically effective agent. These agents therapeutic - are able (i) to influence qualitatively and / or quantitative The biological activity and / or the function of the proteins of interest identified in this invention, preferably the gliotoxic activity and / or (ii) of modulating and / or to inhibit the expression of these proteins and / or (iii) to decrease the concentration of these protein in an extracellular and / or intracellular compartment, and / or substitute a form non-pathogenic to a pathogenic, for example mutated, form of one of these proteins and or

20 de moduler leur fixation à au moins un de leur ligand ; ledit ligand étant une molécule qui répond aux critères précédemment décrits. Différents agents thérapeutiques sont produits en suivant les approches classiques largement décrites dans la littérature. Les différents groupes d'agents thérapeutiques définis à partir des protéines d'intérêt identifiées dans cette présente invention sont décrits ci-dessous. Leur activité ou efficacité prophylactique et/ou thérapeutique est évaluée in vitro et/ou in vivo.
Evaluation de l'efficacité d'un agent thérapeutique in vitro : des échantillons d'urine d'individus sains et de patients atteints de la sclérose en plaque, de préférence en phase active, sont testés pour leur activité gliotoxique in vitro en suivant le protocole du bio-essai décrit dans la demande de brevet WO 98/11439, précédemment citée. L'expérience est réalisée en parallèle en ajoutant ou non dans les échantillons d'urine testés l'agent thérapeutique dont l'efficacité est à
tester. Des essais sont réalisés à différentes concentrations de cet agent, et après différents temps
20 to modulate their attachment to at least one of their ligands; said ligand being a molecule which meets the criteria described above. Different therapeutic agents are products following the classic approaches widely described in the literature. The different groups of therapeutic agents defined from proteins of interest identified in this present invention are described below. Their activity or prophylactic and / or therapeutic efficacy is evaluated in vitro and / or in vivo.
Evaluation of the efficacy of a therapeutic agent in vitro:
urine samples from healthy individuals and patients with sclerosis in plate, of preferably in the active phase, are tested for their gliotoxic activity in vitro following the bioassay protocol described in patent application WO 98/11439, previously cited. The experiment is carried out in parallel by adding or not in the urine samples tested for the therapeutic agent whose efficacy is test. Tests are carried out at different concentrations of this agent, and after different time

21 d'incubation avec l'échantillon, à une température d'environ 37 C ou à
température ambiante, pour chaque concentration d'agent testé, avant la réalisation du test bio-essai.
L'activité gliotoxique est déterminée pour chaque échantillon' brut ou purifié
d'urine témoin et de patient en présence ou en absence de l'agent thérapeutique testé.
Un agent prophylactique et/ou thérapeutique pour la sclérose en plaques est un agent qui permet une diminution ou une inhibition de l'activité gliotoxique dans un fluide biologique des patients, en particulier dans l'urine. Cette diminution ou inhibition est évaluée par rapport à l'activité gliotoxique détectée dans le fluide biologique des patients SEP en absence de l'agent testé qui fixe la borne supérieure et par rapport à
l'activité
lo gliotoxique détectée dans l'urine d'individu sain qui détermine la borne inférieure (Schwartz et Lazar, 1995, Elements de statistique médicale et biologique, eds .
Flammarion ; Lazar et Schwartz, 1995, Elements de statistique médicale et biologique, eds Flammarion). L'efficacité thérapeutique de plusieurs agents peuvent être évaluée en combinaison dans un même essai.
Evaluation de l'efficacité d'un agent thérapeutique utilisant un modèle animal : à un animal sont injectées des fractions d'urine purifiée et/ou au moins un polypeptide de l'invention et/ou au moins une protéine obtenue par recombinaison génétique qui correspond à au moins un polypeptide de l'invention et/ou au moins un polypeptide de synthèse dont la séquence en acides aminés correspond à la séquence 2o d'au moins un polypeptide de l'invention. Les injections sont effectuées, à
différentes concentrations établies, à des animaux mammiferes, tels que souris ou rat, de préférence un rat Lewis selon le protocole décrit dans la demande de brevet W097/33466 citée précédemment. A des séries d'animaux sont injectées, par voie intradermique, intraveineuse, intrathécale, intracérébrale, intramusculaire, ou autres, différentes concentrations d'une fraction d'urine brute ou purifiée ou d'au moins un polypeptide et/ou une protéine, tels que définis ci-dessus. Un contrôle négatif est effectué en parallèle. L'agent prophylactique et/ou thérapeutique à évaluer et ensuite injecté à différentes concentrations et par différentes voies d'administration à un animal mammif'ere, de préférence à une souris ou à un rat. Les injections sont réalisées en une seule dose ou en doses répétées, avec différents temps d'intervalle entre chaque administration. Quelques heures à quelques semaines après l'administration, des
21 incubation with the sample, at a temperature of about 37 C or temperature ambient, for each concentration of agent tested, before carrying out the bioassay test.
Gliotoxic activity is determined for each raw or purified sample urine control and patient in the presence or absence of the therapeutic agent tested.
An agent prophylactic and / or therapeutic for multiple sclerosis is an agent which allows a decrease or inhibition of gliotoxic activity in a fluid organic patients, especially in the urine. This decrease or inhibition is assessed by relation to the gliotoxic activity detected in the biological fluid of MS patients in absence of the agent tested which fixes the upper bound and in relation to the activity lo gliotoxic detected in the urine of a healthy individual which determines the terminal lower (Schwartz and Lazar, 1995, Elements of medical and biological statistics, eds .
Flammarion; Lazar and Schwartz, 1995, Elements of medical statistics and organic, eds Flammarion). The therapeutic efficacy of several agents can be assessed in combination in one trial.
Evaluation of the efficacy of a therapeutic agent using a model animal: an animal is injected with purified urine fractions and / or minus one polypeptide of the invention and / or at least one protein obtained by recombination genetics which corresponds to at least one polypeptide of the invention and / or to the minus one synthetic polypeptide whose amino acid sequence corresponds to the sequence 2o of at least one polypeptide of the invention. The injections are carried out, at different established concentrations, in mammalian animals, such as mice or rats, of preferably a Lewis rat according to the protocol described in the patent application W097 / 33466 cited above. A series of animals are injected, by way intradermal, intravenous, intrathecal, intracerebral, intramuscular, or others, different concentrations of a raw or purified urine fraction or at least minus one polypeptide and / or protein, as defined above. Control negative is performed in parallel. The prophylactic and / or therapeutic agent to be assessed and then injected at different concentrations and by different routes of administration has a mammalian animal, preferably a mouse or a rat. The injections are carried out in a single dose or in repeated doses, with different interval times between each administration. A few hours to a few weeks after administration, of

22 échantillons biologiques, de préférence du sang, du sérum, du liquide céphalo-rachidien, de l'urine sont prélevés. Sur ces échantillons sont réalisés :
(i) une mesure de l'activité gliotoxique par le bio-essai, et/ou (ii) une mesure d'activité des polypeptides et/ou protéines d'intérêt de l'invention, seuls ou en combinaison comme décrit au moins dans : Li et al., 1983, Am J Hum Genet 35 :629-634 ; Li et al., '1988 J Biol Chem 263 : 6588-6591 ; Li et al., 1981 J Biol Chem 256 : 6234-6240 ;Li et al., 1976 J Biol Chem 251 :1159; Kase et al., 1996, FebsLetters 393 : 74-76 ; Kishimoto et al., 1992, J Lipid Res 33 : 1255-1267 ;
O'Brien et al., 1991 Fasèb J 5: 301-308 ; Murthy et a1.,1993 J Immunol 151 : 6291-6301 to Murao et al., 1990 Cell growth Differ 1: 447-454, et/ou (iii) un dosage des polypeptides et/ou protéines d'intérêt, seuls ou en combinaison, par ELISA (Enzyme Linked-Immunosorbant Assay) et/ou Western Blot, en utilisant des anticorps ou des fragments d'anticorps capables de se fixer à au moins un des polypeptides et/ou protéines de l'invention, ou leur fragment, et/ou iv) un dosage d'anticorps spécifiques des polypeptides et/ou protéines d'intérêt ou leurs fragments, seuls ou en combinaison ou le dosage d'au moins un ligand capable de se fixer aux polypeptides et/ou protéines d'intérêt ou leurs fragments, et/ou (v) un dosage de la réponse immune cellulaire helper et/ou cytotoxique induite contre les polypeptides et protéines d'intérêt ou leurs fragments et tout peptide 2o immunogène dérivant de ces polypeptides, protéines et fragments, en réalisant, par exemple, un test d'activation in vitro de cellules lymphocytes T " helper "
spécifiques de l'antigène administré ; en quantifiant les lymphocytes T cytotoxiques selon la technique dite ELISPOT décrite par Scheibenbogen et al.,1997 Clinical Cancer Research 3 : 221-226. Une telle détermination est particulièrement avantageuse lorsque l'on veut évaluer l'efficacité d'une approche vaccinale pour la mise en aeuvre chez un patient donné ou pour diagnostiquer et/ou pronostiquer un état pathologique potentiel en cherchant à mettre en évidence une réponse immune naturellement développée par le patient contre l'antigène, les polypeptides, les protéines d'intérêt ou les fragments immunogènes dérivés de ces protéines.
Par ligand capable de se fixer à une protéine , on entend toute molécule capable de reconnaître la protéine ou une -partie de la protéine. Cela peut être vérifié par exemple in vitro par tests Elisa et/ou Western blot .
22 biological samples, preferably blood, serum, cephalo-spinal, urine is collected. These samples are made:
(i) a measurement of gliotoxic activity by the bioassay, and / or (ii) a measurement of the activity of the polypeptides and / or proteins of interest of the invention, alone or in combination as described at least in: Li et al., 1983, Am J Hum Genet 35: 629-634; Li et al., '1988 J Biol Chem 263: 6588-6591; Li et al., 1981 J Biol Chem 256: 6234-6240; Li et al., 1976 J Biol Chem 251: 1159; Kase et al., 1996, FebsLetters 393: 74-76; Kishimoto et al., 1992, J Lipid Res 33: 1255-1267;
O'Brien et al., 1991 Fasèb J 5: 301-308; Murthy et a1., 1993 J Immunol 151: 6291-6301 to Murao et al., 1990 Cell growth Differ 1: 447-454, and / or (iii) an assay of the polypeptides and / or proteins of interest, alone or in combination combination, by ELISA (Enzyme Linked-Immunosorbant Assay) and / or Western Blot, using antibodies or antibody fragments capable of binding to at least one of polypeptides and / or proteins of the invention, or their fragment, and / or iv) an assay of antibodies specific for the polypeptides and / or proteins of interest or their fragments, alone or in combination or the determination of at least one ligand capable to attach to the polypeptides and / or proteins of interest or their fragments, and / or (v) an assay of the helper and / or cytotoxic cellular immune response induced against the polypeptides and proteins of interest or their fragments and all peptide 2o immunogen derived from these polypeptides, proteins and fragments, in realizing, by example, an in vitro activation test of helper T lymphocyte cells specific administered antigen; by quantifying the cytotoxic T lymphocytes according to the technique called ELISPOT described by Scheibenbogen et al., 1997 Clinical Cancer Research 3: 221-226. Such a determination is particularly advantageous when we want to evaluate the effectiveness of a vaccine approach for the implementation at a given patient or to diagnose and / or predict a medical condition potential by seeking to highlight a naturally developed immune response through the patient against the antigen, polypeptides, proteins of interest or fragments immunogens derived from these proteins.
By ligand capable of binding to a protein, is meant any molecule able to recognize the protein or a part of the protein. It may be checked by example in vitro by Elisa and / or Western blot tests.

23 On désigne par polypeptides etlou protéines d' intérêt de l'invention le fragment C-terminal du perlecan (SEQ ID N 2), le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol (SEQ ID N 4), la protéine activateur du GM2 (SEQ
ID N 8), la protéine mutée de l'activateur du GM2 (SEQ ID N 9), la calgranuline B
(SEQ ID N 17), la saposine B(SEQ ID N 24), les protéines ou fragments appartenant à la famille du précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol (par exemple SEQ ID N 5 à 7), les protéines ou fragments appartenant à la famille de la protéine activateur du GM2 (par exemple SEQ ID N 10 à 16), les protéines ou fragments appartenant à la famille de la protéine calgranuline B (par exemple SEQ ID N
18 à
lo 23), les protéines ou fragments appartenant à la famille de la protéine saposine B (par exemple SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29.
L'animal est ensuite sacrifié et des coupes histologiques de différents t5 tissus sont réalisées, de préférence des coupes de cerveaux. Différentes études et observations sont réalisées pour détecter et/ou quantifier les effets caractéristiques des polypeptides et/ou protéines actives. associées à la fraction gliotoxique , c'est à dire une apoptosé des cellules gliales, et/ou l'ouverture de la barrière hémato-encéphalique, et/ou une démyélinisation. La présence ou l'expression des polypeptides et/ou protéines 2o d'intérêt identifiées est également observée et/ou quantifiée dans ces tissus :
(i) par des analyses d'immunohistologie classiques en utilisant des ligands des polypeptides et/ou protéines d'intérêt et/ou leurs fragments et/ou des anticorps monoclonaux ou polyclonaux ou des fragments desdits qui se lient aux polypeptides et/ou protéines d'intérêt, ou à leurs fragments, et/ou 25 (ii) par des techniques d'hybridation in situ classiques en utilisant des fragments d'acides nucléiques ou des oligonucléotides définis à partir des séquences polypeptidiques et/ou protéiques d' intérêt ; et/ou (iii) par des techniques d'amplification par PCR et/ou RT-PCR in situ en utilisant des fragments d'acides nucléiques ou des amorces définis à partir des séqùences 30 polypeptidiques et/ou protéiques d'intérêt.
Par anticorps capable de se fixer à un polypeptide, à une protéine ou à
leurs fragments, on entend tout anticorps monoclonal ou polyclonal et tout fragment
23 The term “polypeptides and / or proteins of interest of the invention” denotes the C-terminal fragment of perlecan (SEQ ID N 2), the precursor of the protein plasma binding to retinol (SEQ ID N 4), the activator protein of GM2 (SEQ
ID N 8), the mutated GM2 activator protein (SEQ ID N 9), the calgranulin B
(SEQ ID N 17), saposin B (SEQ ID N 24), proteins or fragments belonging to the family of plasma retinol binding protein precursor (for example SEQ ID N 5 to 7), proteins or fragments belonging to the family of protein activator of GM2 (for example SEQ ID N 10 to 16), proteins or fragments belonging to the family of the protein calgranulin B (for example SEQ ID N
18 to lo 23), proteins or fragments belonging to the protein family saposin B (by example SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which exhibit minus 70 % identity preferably at least 80% identity and preferably at minus 98 % identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29.
The animal is then sacrificed and histological sections of different t5 tissues are produced, preferably brain sections. Different studies and observations are made to detect and / or quantify the effects characteristics of active polypeptides and / or proteins. associated with the gliotoxic fraction, that is to say a apoptosis of glial cells, and / or the opening of the blood-brain barrier encephalic, and / or demyelination. The presence or expression of the polypeptides and / or protein 2o of identified interest is also observed and / or quantified in these fabrics:
(i) by standard immunohistology analyzes using ligands of polypeptides and / or proteins of interest and / or their fragments and / or antibody monoclonal or polyclonal or fragments of said which bind to polypeptides and / or proteins of interest, or their fragments, and / or (Ii) by conventional in situ hybridization techniques using fragments of nucleic acids or oligonucleotides defined from the sequences polypeptides and / or proteins of interest; and or (iii) by PCR and / or RT-PCR amplification techniques in situ in using fragments of nucleic acids or primers defined from the sequences 30 polypeptides and / or proteins of interest.
By antibody capable of binding to a polypeptide, to a protein or to their fragments, we mean any monoclonal or polyclonal antibody and any fragment

24 desdits anticorps capable de reconnaître le polypeptide, la protéine ou leurs fragments.
La capacité des anticorps à i-econnaïtre lesdits polypeptides, protéines ou leurs fragments est vérifiée in vitro, par exemple en ELISA et/ou Western Blot. Un anticorps capable de se fixer à la protéine saposine B (SEQ ID N 24) ou à
tout fragment de cette protéine est décrit par Misasi et al. 1998, J. NeuroChem. 71 : 2313 et Klein et al. 1994, BBRC 200 : 1440-1448 ou peut être produit en utilisant les méthodes conventionnelles, par exemple celles référencées précédemment pour la production d'anticorps monoclonaux et polyclonaux, par immunisation à partir de la protéine naturelle, d'une protéine recombinante, d'un polypeptide de synthèse ou de leurs t0 fragments. Les peptides immunogènes pour la production d'anticorps monoclonaux anti-saposine B sont les peptides correspondant aux séquences SEQ ID N 61 et SEQ
ID N 62.
Par exemple, un anticorps capable de se fixer à la protéine activatrice du GM2 (SEQ ID N 8) ou à tout fragment de cette protéine est illustré par Yuziuk et al., 1998 J Biol Chem 273 : 66-72 ou peut être produit en utilisant les méthodes conventionnelles connues de l'homme de l'art. Cet anticorps peut être par exemple produit après injection à des souris ou lapin de la protéine naturelle ou tout fragment, ét/ou de la protéine recombinante ou tout fragment, et/ou de peptides définis et synthétisés à partir de la séquence protéique de la protéine. Les peptides immunogènes utilisés pour la production d'anticorps monoclonaux anti-GM2 sont les peptides références SEQ ID N 58, SEQ ID N 59 et SEQ ID N 60. Un anticorps capable de se fixer à la protéine Galgranuline B (SEQ ID N 17) ou à tout fragment de cette protéine est décrit par Saintigny et al., 1992 J Invest Dermatol 99 : 639-644 et Goebeler et al 1994 J Leukoc Biol 55 : 259-261, ou peut être produit en utilisant les méthodes conventionnelles. Les peptides immunogènes pour la production d'anticorps monoclonaux anti-calgranuline B sont les peptides correspondant aux séquences SEQ
ID N 63, SEQ ID N 64 et SEQ ID N 65. Un anticorps capable de se fixer à la protéine mutée activatrice du GM2 (SEQ ID N 9) ou à tout fragment de cette protéine peut être produit en utilisant les méthodes conventionnelles définies ci dessus.
Par protéine naturelle et fragment, on entend toute protéine isolée, purifiée totalement ou partiellement obtenue à partir d'échantillon humain ou animal et tout fragment obtenu à partir de cette protéine. Par exemple, on obtient la protéine naturelle correspondant à la saposine B (SEQ ID N 24) en suivant la technique décrite par Waring et al. 1998 Mol Genet Metab 63 : 14-25 ; la protéine naturelle correspondant à
la protéine activatrice du GM2 (SEQ ID N 8) en suivant la technique décrite par DeGasperi et al.,1989 Biochem J 260: 777-783, Vogel et al., 1987 Arch Biochem 5 Biophys 259: 627-638, Mitsuyama, 1983 Hokkaido Igaku Zasshi 58: 502-512 ;
Hirabayashi et al 1983 J Neurochem 40: 168-175, Conzelmann et al, 1979 Hoppe Seylers Z Physiol Chem 360: 1837-1849, Li et al., 1976 J Biol Chem 251 : 1159-1163.
La protéine naturelle correspondant à la calgranuline B (SEQ ID N 17) est obtenue en suivant la technique décrite par Hitomi et al. 1996 J Cell Sci 109: 805-815, Van den 10 Bos et al. 1998 Protein Expr Purif 13 : 313-318 et Raftery et al. 1996 Biochem J 316 :
285-293.
Par protéine recombinante ou fragment d'une protéine recombinante, on fait référence à toute protéine ou fragment de protéine produit dans une cellule procaryote ou eucaryote à partir d'une séquence nucléotidique codant pour la protéine 15 ou son fragment et transfectée dans la cellule, cette protéine ou son fragment étant ensuite purifiée. D'une manière générale, toute cellule issue d'un organisme procaryote ou eucaryote peut être utilisée dans le cadre de la présente invention, mais les cellules issues d'organismes eucaryotes sont préférées. On peut citer à titre d'exemple les cellules CHO, les cellules COS; les cellules Semliki. Aux fins de la présente invention, 20 ladite cellule peut être sauvage ou mutante. Par exemple, la protéine recombinante correspondant à la saposine B (SEQ ID N 24) peut être obtenue en suivant les techniques décrites pâr Zaitash et al. 1998 Bebbs letter 423 : 1-4 et Qi et al. 1994 J Biol Chem 269: 16746-16753. Une telle protéine recombinante est au moins disponible auprès de Kase et al. 1996 Febs Lett 393: 74-76. La protéine recombinante
24 said antibodies capable of recognizing the polypeptide, the protein or their fragments.
The capacity of antibodies to i-recognize said polypeptides, proteins or their fragments is verified in vitro, for example by ELISA and / or Western Blot. A
antibody capable of binding to the protein saposin B (SEQ ID N 24) or to all fragment of this protein is described by Misasi et al. 1998, J. NeuroChem. 71 : 2313 and Klein et al. 1994, BBRC 200: 1440-1448 or can be produced using methods conventional, for example those referenced previously for the production monoclonal and polyclonal antibodies, by immunization from the protein natural, a recombinant protein, a synthetic polypeptide or their t0 fragments. Immunogenic peptides for the production of antibodies monoclonals anti-saposin B are the peptides corresponding to the sequences SEQ ID N 61 and SEQ
ID N 62.
For example, an antibody capable of binding to the activator protein of GM2 (SEQ ID N 8) or any fragment of this protein is illustrated by Yuziuk et al., 1998 J Biol Chem 273: 66-72 or can be produced using the methods known to those skilled in the art. This antibody can be by example produced after injection into mice or rabbit of the natural protein or any fragment, and / or the recombinant protein or any fragment, and / or defined peptides and synthesized from the protein sequence of the protein. Peptides immunogens used for the production of anti-GM2 monoclonal antibodies are the peptides references SEQ ID N 58, SEQ ID N 59 and SEQ ID N 60. An antibody capable of is attach to the protein Galgranuline B (SEQ ID N 17) or to any fragment of this protein is described by Saintigny et al., 1992 J Invest Dermatol 99: 639-644 and Goebeler et al 1994 J Leukoc Biol 55: 259-261, or can be produced using methods conventional. Immunogenic peptides for the production of antibodies anti-calgranulin B monoclonals are the peptides corresponding to the sequences SEQ
ID N 63, SEQ ID N 64 and SEQ ID N 65. An antibody capable of binding to the mutated GM2 activator protein (SEQ ID N 9) or any fragment thereof protein can be produced using conventional methods defined below above.
By natural protein and fragment is meant any isolated, purified protein wholly or partially obtained from human or animal samples and all fragment obtained from this protein. For example, we get the natural protein corresponding to saposin B (SEQ ID N 24) following the technique described through Waring et al. 1998 Mol Genet Metab 63: 14-25; natural protein corresponding to the GM2 activating protein (SEQ ID N 8) following the technique described through DeGasperi et al., 1989 Biochem J 260: 777-783, Vogel et al., 1987 Arch Biochem 5 Biophys 259: 627-638, Mitsuyama, 1983 Hokkaido Igaku Zasshi 58: 502-512;
Hirabayashi et al 1983 J Neurochem 40: 168-175, Conzelmann et al, 1979 Hoppe Seylers Z Physiol Chem 360: 1837-1849, Li et al., 1976 J Biol Chem 251: 1159-1163.
The natural protein corresponding to calgranulin B (SEQ ID N 17) is obtained in according to the technique described by Hitomi et al. 1996 J Cell Sci 109: 805-815, Van den 10 Bos et al. 1998 Protein Expr Purif 13: 313-318 and Raftery et al. 1996 Biochem J 316:
285-293.
By recombinant protein or fragment of a recombinant protein, we refers to any protein or protein fragment produced in a cell prokaryotic or eukaryotic from a nucleotide sequence encoding the protein 15 or its fragment and transfected into the cell, this protein or its fragment being then purified. Generally, any cell from an organism prokaryote or eukaryotic can be used in the context of the present invention, but cells from eukaryotic organisms are preferred. We can cite as an example the CHO cells, COS cells; Semliki cells. For the purpose of this invention, Said cell can be wild or mutant. For example, protein recombinant corresponding to saposin B (SEQ ID N 24) can be obtained by following the techniques described by Zaitash et al. 1998 Bebbs letter 423: 1-4 and Qi and al. 1994 J Biol Chem 269: 16746-16753. At least one such recombinant protein is available from Kase et al. 1996 Febs Lett 393: 74-76. Recombinant protein

25 correspondant à la protéine activatrice du GM2 (SEQ ID N 8) peut être produite par les techniques décrites par Yuziuk et al. 1998 J Biol Chem 273 : 66-72 et Bierfreund et al., 1999 Neurochem Res 24: 295-300. La protéine recombinante correspondant à
la calgranuline B (SEQ ID N 17) peut être obtenue selon le protocole de Longbottom et al.1992 Biochim Biophys Acta 1120 :215-222, Raftery et al. 1999 Protein Expr Purif 15 :228-235. Une telle protéine recombinante est disponible au moins auprès de Klempt et al. 1997 Febs Letter 408 : 81-84.
25 corresponding to the GM2 activating protein (SEQ ID N 8) can be produced by the techniques described by Yuziuk et al. 1998 J Biol Chem 273: 66-72 and Bierfreund and al., 1999 Neurochem Res 24: 295-300. The recombinant protein corresponding to the calgranulin B (SEQ ID N 17) can be obtained according to the Longbottom and al. 1992 Biochim Biophys Acta 1120: 215-222, Raftery et al. 1999 Protein Expr Purif 15: 228-235. Such a recombinant protein is available at least from Klempt et al. 1997 Febs Letter 408: 81-84.

26 Par séquence- nucléotidique d'ADN ou fragment nucléotidique d'ADN
codant pour tout ou partie de la protéine saposine B (SEQ ID N 24), on entend la séquence d'acides nucléiques SEQ ID N 53 ou un fragment de cette séquence.
Par séquence ou fragment nucléotidique ARN codant pour tout ou partie de la protéine saposine B (SEQ ID N 24), on entend toute séquence déduite de la séquence d'ADN
SEQ ID N 53, en tenant compte du code génétique et des phénomènes d'épissage.
Par séquence nucléotidique d'ADN ou fragment nucléotidique d'ADN
codant pour tout ou partie de la protéine activatrice du GM2 (SEQ ID N 8), on entend la séquence d'acides nucléiques SEQ ID N 31 ou un fragment de cette séquence.
Par séquence ou fragment nucléotidique d'ARN codant pour tout ou partie de la protéine activatrice du GM2 (SEQ ID N 8), on entend toute séquence déduite de la séquence ADN SEQ ID N 31, en tenant compte du code génétique et des phénomènes d'épissage.
Par séquence nucléotidique d'ADN ou fragment nucléotidique d'ADN
codant pour tout ou partie de la protéine calgranuline B (SEQ ID N 17), on entend la séquence d'acides nucléiques SEQ ID N 42 ou un fragment de cette séquence.
Par séquence ou fragment nucléotidique d'ARN codant pour tout ou partie de la protéine calgranuline B (SEQ ID N 17), on entend toute séquence déduite de la séquence ADN
SEQ ID N 42, en tenant compte du code génétique et des phénomènes d'épissage.
, Par séquence ou fragment nucléotidique codant pour tout ou partie de la protéine mutée (SEQ ID N 9), on entend la séquence d'acides nucléiques déduite de la séquence SEQ ID N 9, en tenant compte du code génétique. Par séquence ou fragment nucléotidique ARN codant pour tout ou partie de cette protéine mutée B (SEQ ID
N
9), on entend toute séquence déduite de la séquence ADN, en tenant compte du code génétique et des phénomènes d'épissage.
Par activité protéique, on entend une fonction caractéristique biologique de la protéine. Cette activité protéique peut être mise en évidence par des ~techniques connues de l'homme de l'art. Par exemple, l'activité de la saposine B (SEQ ID
N 24) et des protéines de la famille de la saposine B (par exemple SEQ ID N 25 à
29), peut être détectée par la mise en ceuvre des protocoles décrits par Li et al., 1983, Am J Hum Genet 35 :629-634,; Li et al., 1988 J Biol Chem 263 : 6588-6591, Li et al., 1981 J Biol Chem 256: 6234-6240 et Li et al., 1976 J Biol Chem 251 :1159. Par activité de la
26 By DNA nucleotide sequence or DNA nucleotide fragment coding for all or part of the protein saposin B (SEQ ID N 24), is meant the nucleic acid sequence SEQ ID N 53 or a fragment of this sequence.
Through nucleotide sequence or fragment RNA coding for all or part of the protein saposin B (SEQ ID N 24) means any sequence deduced from the sequence DNA
SEQ ID N 53, taking into account the genetic code and splicing phenomena.
By DNA nucleotide sequence or DNA nucleotide fragment encoding all or part of the GM2 activating protein (SEQ ID N 8), we hears the nucleic acid sequence SEQ ID N 31 or a fragment of this sequence.
Through nucleotide sequence or fragment of RNA encoding all or part of the protein activator of GM2 (SEQ ID N 8), we mean any sequence deduced from the sequence DNA SEQ ID N 31, taking into account the genetic code and the phenomena splicing.
By DNA nucleotide sequence or DNA nucleotide fragment coding for all or part of the protein calgranulin B (SEQ ID N 17), we hear the nucleic acid sequence SEQ ID N 42 or a fragment of this sequence.
Through nucleotide sequence or fragment of RNA encoding all or part of the protein calgranulin B (SEQ ID N 17) means any sequence deduced from the sequence DNA
SEQ ID N 42, taking into account the genetic code and splicing phenomena.
, By nucleotide sequence or fragment encoding all or part of the mutated protein (SEQ ID N 9) means the nucleic acid sequence deducted from the sequence SEQ ID N 9, taking into account the genetic code. By sequence or fragment nucleotide RNA coding for all or part of this mutated protein B (SEQ ID
NOT
9) means any sequence deduced from the DNA sequence, taking into account the coded genetics and splicing phenomena.
By protein activity is meant a characteristic biological function protein. This protein activity can be demonstrated by ~ techniques known to those skilled in the art. For example, the activity of saposin B (SEQ ID
N 24) and proteins of the saposin B family (for example SEQ ID N 25 to 29), can be detected by implementing the protocols described by Li et al., 1983, Am J Hum Genet 35: 629-634 ,; Li et al., 1988 J Biol Chem 263: 6588-6591, Li et al., 1981 J Biol Chem 256: 6234-6240 and Li et al., 1976 J Biol Chem 251: 1159. By activity of the

27 protéine activatrice du GM2 (SEQ ID N 8) et des protéines de la même famille (par exemple SEQ ID N 10 à 16), on entend au moins l'activité détectée par la mise en oeuvre des protocoles décrits par exemple par Kase et al., 1996, Febs Letters 393 : 74-76, Kishimoto et al., 1992, J Lipid Res 33 : 1255-1267 et O'Brien et al., 1991 Faseb J
5: 301-308. Par activité de la calgranuline B (SEQ ID N 17) et les protéines de la même famille de la calgranuline b (par exemple SEQ ID N 18à 23) et toute, on entend au moins l'activité détectée par la mise en oruvre des protocoles décrits par exemple par Murthy et al.,1993 J Immunol 151 : 6291-6301 et Murao et al., 1990 Cell growth Differ 1 : 447-454.
L'obtention d'un modèle animal transgénique, de préférence murin, pour une pathologie humaine est techniquement réalisable. Brièvement, l'animal transgénique est produit en utilisant les techniques coriventionnelles décrites et possède intégré dans son génome les acides nucléiques codant pour les protéines ou leurs fragments.
Evaluation de l'efficacité d'un agent thérapeutique et suivi thérapeutique ex vivo, chez l'homme :
les agents thérapeutiques à tester pour une activité thérapeutique et/ou pour un suivi thérapeutique sont administrés par différentes voies à l'homme, telles que les voies intradermique, intraveineuse, intramusculaire, intracérébrale, orale, ou autres.
Différentes doses sont administrées à l'être humain. Le dossier clinique du patient au moment de la première administration est parfaitement connu. Une ou plusieurs administrations peuvent être réalisées avec des temps d'intervalle différents entre chaque administration pouvant aller de quelques jours à quelques années. Des échantillons biologiques sont prélevés à des intervalles de temps déterminés après administration de l'agent thérapeutique, de préférence du sang, du sérum, du liquide céphalo-rachidien et de l'urine. Différentes analyses sont réalisées à partir de ces échantillons. Juste avant la première administration de l'agent thérapeutique, ces prélèvements et ces mêmes analyses sont également réalisés. Un examen clinique et biologique classique (IRM, bandes oligoclonales dans le liquide céphalo-rachidien, potentiels évoqués) est réalisé également en parallèle des analyses supplémentaires qui sont être décrites ci dessous, à différentes temps de l'analyse. Les analyses réalisées sont :
27 GM2 activating protein (SEQ ID N 8) and proteins of the same family (through example SEQ ID N 10 to 16), we mean at least the activity detected by the setting in implementation of the protocols described for example by Kase et al., 1996, Febs Letters 393: 74-76, Kishimoto et al., 1992, J Lipid Res 33: 1255-1267 and O'Brien et al., 1991 Faseb J
5: 301-308. By activity of calgranulin B (SEQ ID N 17) and proteins of the same family of calgranulin b (for example SEQ ID N 18 to 23) and all, we hears at least the activity detected by the implementation of the protocols described by example by Murthy et al., 1993 J Immunol 151: 6291-6301 and Murao et al., 1990 Cell growth Differ 1: 447-454.
Obtaining a transgenic animal model, preferably murine, for human pathology is technically feasible. Briefly, the animal transgenic is produced using corivalent techniques described and has integrated into its genome the nucleic acids encoding proteins or their fragments.
Evaluation of the effectiveness of a therapeutic agent and therapeutic monitoring ex vivo, in humans:
therapeutic agents to be tested for therapeutic activity and / or for therapeutic monitoring are administered by different routes to humans, as intradermal, intravenous, intramuscular, intracerebral routes, oral, or others.
Different doses are administered to humans. The clinical record of patient at time of first administration is well known. One or more administrations can be performed with different interval times Between each administration can range from a few days to a few years. Of biological samples are taken at specified time intervals after administration of the therapeutic agent, preferably blood, serum, liquid cerebrospinal and urine. Different analyzes are carried out from of these samples. Just before the first administration of the therapeutic agent, these samples and these same analyzes are also carried out. A clinical examination and classic biological (MRI, oligoclonal bands in the cephalo-spinal, evoked potentials) is also carried out in parallel with the analyzes additional who are described below, at different times of the analysis. Analyses carried out are :

28 (i) une mesure de l'activité gliotoxique par le bio-essai à partir d'échantillons de sérum, de LCR et d'urine; et/ou (ii) une mesure d'activité des protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention seules ou en combinaison conune décrit par exemple par : Li et al., 1983, Am J Hum Genet 35 :629-634 ; Li et al., 1988 J Biol Chèm 263 : 6588-6591 ; Li et al., 1981 J Biol Chem 256: 6234-6240 ;Li et al., 1976 J Biol Chem 251 :1159; Kase et al., 1996, FebsLetters 393: 74-76;
Kishimoto et al., 1992, J Lipid Res 33 : 1255-1267 ; O'Brien et al., 1991 Faseb J 5 : 301-308 ;
Murthy et a1.,1993 J Immunol 151 : 6291-6301 ; Murao et al., 1990 Cell growth Differ 1: 447-454, et/ou (iii) un dosage des protéines d'intérêt ou de leurs fragments, seuls ou en combinaison, dans les échantillons de sang/sérum, LCR, urine par ELISA et/ou Western Blot, en utilisant des anticorps ou des fragments d'anticorps capables de se fixer à
au moins une des protéines ou à un de leur fragment, et/ou (iv) un dosage d'anticorps spécifiques des protéines d'intérêt ou de leurs fragments dans des échantillons de sang/sérum, LCR, urine, par ELISA et/ou Western blot en utilisant une protéine naturelle ou un fragment de la protéine naturelle et/ou une protéine recombinante ou un fragment de cette protéine recombinante, seuls ou en combinaison. De même un dosage de ligands capables de se fixer aux protéines d'intérêt identifiées, seules ou en combinaison, peut être réalisé, et/ou (v) un dosage de la réponse immune cellulaire helper et/ou cytotoxique induite contre les protéines d'intérêt et tout peptide immunogène dérivant de ces protéines, par exemple en réalisant un test d'activation in vitro de cellules lymphocytes T spécifiques de l'antigène administré. Par exemple en réalisant un test d'activation in vitro de cellules lymphocytes T
helper spécifiques de l'antigène administré; Par exemple en quantifiant les lymphocytes T
cytotoxiques selon la technique dite ELISPOT décrite par Scheibenbogen et al.,1997 Clinical Cancer Research 3 : 221-226. Une telle détermination est particulièrement avantageuse lorsque l'on souhaite évaluer l'efficacité d'une approche vaccinale mise en oeuvre chez un patient donné ou pour diagnostiquer un état pathologique potentiel chez un patient en cherchant à
mettre en évidence une réponse immune naturellement développée par ledit patient contre l'antigène les protéines d'intérêt ou tout fragment immunogène dérivés de ces protéines, seuls ou en combinaison, et/ou (vi) une détection de fragments d'ADN et/ou d'ARN codant pour les protéines ou un fragment des protéines d'intérêt par hybridation nucléotidique selon les techniques bien
28 (i) a measurement of gliotoxic activity by the bioassay from serum samples, CSF and urine; and or (ii) a measure of activity of the proteins of interest identified in the present invention alone or in combination as described for example by: Li et al., 1983, Am J Hum Genet 35: 629-634; Li et al., 1988 J Biol Chèm 263: 6588-6591; Li et al., 1981 J Biol Chem 256: 6234-6240; Li et al., 1976 J Biol Chem 251: 1159; Kase et al., 1996, FebsLetters 393: 74-76;
Kishimoto et al., 1992, J Lipid Res 33: 1255-1267; O'Brien et al., 1991 Faseb J 5: 301-308;
Murthy et al., 1993 J Immunol 151: 6291-6301; Murao et al., 1990 Cell growth Differ 1: 447-454, and / or (iii) an assay of the proteins of interest or their fragments, alone or in combination combination, in blood / serum, CSF, ELISA and / or urine samples Western Blot, using antibodies or antibody fragments capable of binding to at least one of proteins or a fragment thereof, and / or (iv) an assay of antibodies specific for the proteins of interest or their fragments in blood / serum, CSF, urine, ELISA and / or Western blot in using a natural protein or a fragment of the natural protein and / or a protein recombinant or a fragment of this recombinant protein, alone or in combination combination. Of even an assay of ligands capable of binding to the proteins of interest identified, alone or in combination, can be achieved, and / or (v) an assay of the helper and / or cytotoxic cellular immune response induced against proteins of interest and any immunogenic peptide derived from these proteins, for example in performing an in vitro activation test of specific T lymphocyte cells antigen administered. For example by performing an in vitro activation test of cells T cells specific helper of the administered antigen; For example by quantifying the T cells cytotoxic according to the so-called ELISPOT technique described by Scheibenbogen and al., 1997 Clinical Cancer Research 3: 221-226. Such a determination is particularly advantageous when we wish to evaluate the effectiveness of a vaccine approach implemented in a patient given or to diagnose a potential medical condition in a patient in seeking to highlight an immune response naturally developed by said patient against the antigen the proteins of interest or any immunogenic fragment derived from these proteins, alone or in combination, and / or (vi) detection of DNA and / or RNA fragments coding for the proteins or a fragment of the proteins of interest by nucleotide hybridization according to the good techniques

29 connues de l'homme de l'art (Southern blot, Northern blot, ELOSA " Enzyme-Linked Oligosorbent Assay " (Katz JB et al., Am: J. Vet. Res., 1993 Dec ; 54 (12) :2021-6 et François Mallet et al., Journal of Clinical Microbiology, June 1993, p1444-1449)) et/ou par méthode d'amplification de l'ADN et/ou l'ARN , par exemple par PCR, RT-PCR, en utilisant des fragments d'acides nucléiques codant pour la séquence des protéines d'intérêt, et/ou (vii) par biopsie de tissus, de préférence du cerveau, et l'observation des effets caractéristiques des protéines actives associées à la fraction gliotoxique, c'est à dire une apoptose des cellules gliales et/ou l'ouverture de la barrière hémato-encéphalique t0 et/ou l'observation de phénomènes de démyélinisation, et/ou (viii) par biopsie de tissus ou sur cellules circulantes (sang, LCR), l'observation de la présence des protéines d'intérêt et l'estimation de leur expression par observation inununohistologique sur des coupes histologiques réalisées à partir des tissus, en utilisant des ligands et/ou des anticorps ou leurs fragments capables de se fixer aux protéines d'intérêt, et/ou (ix) par biopsie de tissus ou sur cellules circulantes (sang, LCR), l'observation de l'expression des protéines d'intérêt par hybridation in situ des molécules d'ARN codant pour les protéines d'intérêt en utilisant des acides nucléiques définis à partir des séquences des protéines d'intérêt, et/ou (x) par biopsie de tissus ou sur cellules circulantes (sang, LCR), la détermination de l'expression des protéines d'intérêt par amplification de ces ARN par des techniques classiques, comme par exemple, la RT-PCR, en utilisant des acides nucléiques définis à partir des séquences des protéines d'intérêt.
On désigne par polypeptides et/ou protéines d'intérêt de l'invention le fragment C-terminal du perlecan (SEQ ID N 2), le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol (SEQ ID N 4), la protéine activateur du GM2 (SEQ
ID N 8), la protéine mutée de l'activateur du GM2 (SEQ ID N 9), la caigranuline B
(SEQ ID N 17), la saposine B (SEQ ID N 24), les protéines ou fragments appartenant à la famille du précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol (par exemple SEQ ID N 5 à 7), les protéines ou fragments appartenant à la famille de la protéine activateur du GM2 (par exemple SEQ ID N 10 à 16), les protéines ou fragments appartenant à la famille de la protéine calgranuline B (par exemple SEQ ID N
18 à

23), les protéines ou fragments appartenant à la famille de la protéine saposine B (par exeniple SEQ ID N 25 à 29), et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29.
5 On désigne par séquence d'acides nucléiques ADN ou fragments codant pour les 'polypeptides et/ou protéines d'intérêt de l'invention' la séquence d'acides nucléiques codant pour le fragment C-terminal du perlecan (SEQ ID N 2), la séquence d'acides nucléiques codant pour le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol (SEQ ID N 4), la séquence d'acides nucléiques (SEQ ID N 31) codant pour la 1o protéine activateur du GM2 (SEQ ID N 8), la séquence d'acides nucléiques codant pour la protéine mutée de l'activateur du GM2 (SEQ ID N 9), la séquence d'acides nucléique (SEQ ID N 42) codant pour la calgranuline B (SEQ ID N 17), la séquence d'acides nucléiques (SEQ ID N 53) codant pour la saposine B (SEQ ID N 24), les séquences d'acides nucléiques ADN et/ou ARN (SEQ ID N 30 à 57) codant pour les 15 protéines ou fragments appartenant à la famille du précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol (par exemple SEQ ID N 5 à 7), les protéines ou fragments appartenant à la famille de la protéine activateur du GM2 (par exemple SEQ
ID N 10 à 16), les protéines ou fragments appartenant à la famille de la protéine calgranuline B (par exemple SEQ ID N 18 à 23), les protéines ou fragments 20 appartenant à la famille de la protéine saposine B (par exemple SEQ ID N
25 à 29).
Une protéine ou un variant d'une protéine choisie plus particulièrement parmi les séquences définies dans les identificateurs SEQ ID N s 2, 4, 8 , 9, 17 et 24 ou leurs fragments, ou parmi les séquences correspondant aux protéines des familles de ces dites séquences (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ
25 ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 24, SEQ ID N 25 à 29), et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité
et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, indépendamment ou en combinaison, présente un effet toxique directement ou indirectenient, vis à vis de cellules, en particulier vis à vis des
29 known to those skilled in the art (Southern blot, Northern blot, ELOSA "Enzyme-Linked Oligosorbent Assay "(Katz JB et al., Am: J. Vet. Res., 1993 Dec; 54 (12) : 2021-6 and François Mallet et al., Journal of Clinical Microbiology, June 1993, p1444-1449)) and / or by DNA and / or RNA amplification method, for example by PCR, RT-PCR, using nucleic acid fragments encoding the sequence of protein of interest, and / or (vii) by tissue biopsy, preferably from the brain, and observation of effects characteristics of the active proteins associated with the gliotoxic fraction, that is to say apoptosis of glial cells and / or opening of the blood-brain barrier encephalic t0 and / or the observation of demyelination phenomena, and / or (viii) by tissue biopsy or on circulating cells (blood, CSF), observing the presence of the proteins of interest and the estimation of their expression by observation inununohistological on histological sections made from fabrics, in using ligands and / or antibodies or fragments thereof capable of fix to proteins of interest, and / or (ix) by tissue biopsy or on circulating cells (blood, CSF), observation of the expression of the proteins of interest by in situ hybridization of RNA molecules encoding proteins of interest using acids nucleic defined from the sequences of the proteins of interest, and / or (x) by tissue biopsy or on circulating cells (blood, CSF), the determination of the expression of the proteins of interest by amplification of these RNA by conventional techniques, such as RT-PCR, using acids nucleic acids defined from the sequences of the proteins of interest.
The term “polypeptides and / or proteins of interest of the invention” denotes the C-terminal fragment of perlecan (SEQ ID N 2), the precursor of the protein plasma binding to retinol (SEQ ID N 4), the activator protein of GM2 (SEQ
ID N 8), the mutated GM2 activator protein (SEQ ID N 9), the caigranulin B
(SEQ ID N 17), saposin B (SEQ ID N 24), proteins or fragments belonging to the family of plasma retinol binding protein precursor (for example SEQ ID N 5 to 7), proteins or fragments belonging to the family of protein activator of GM2 (for example SEQ ID N 10 to 16), proteins or fragments belonging to the family of the protein calgranulin B (for example SEQ ID N
18 to 23), proteins or fragments belonging to the protein family saposin B (by exeniple SEQ ID N 25 to 29), and the peptide sequences which exhibit minus 70 % identity preferably at least 80% identity and preferably at minus 98 of identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29.
5 The term nucleic acid sequence denotes DNA or fragments encoding for the 'polypeptides and / or proteins of interest of the invention' the sequence acids nucleic acid coding for the C-terminal fragment of perlecan (SEQ ID N 2), the sequence of nucleic acids encoding the precursor of the plasma protein of link to retinol (SEQ ID N 4), the nucleic acid sequence (SEQ ID N 31) encoding for the 1o GM2 activator protein (SEQ ID N 8), the nucleic acid sequence coding for the mutated GM2 activator protein (SEQ ID N 9), the sequence acids nucleic acid (SEQ ID N 42) coding for calgranulin B (SEQ ID N 17), the sequence nucleic acids (SEQ ID N 53) coding for saposin B (SEQ ID N 24), the DNA and / or RNA nucleic acid sequences (SEQ ID N 30 to 57) coding for the 15 proteins or fragments belonging to the family of the precursor of protein plasma binding to retinol (for example SEQ ID N 5 to 7), proteins or fragments belonging to the family of the GM2 activator protein (by SEQ example ID N 10 to 16), proteins or fragments belonging to the family of protein calgranulin B (for example SEQ ID N 18 to 23), proteins or fragments 20 belonging to the saposin B protein family (for example SEQ ID N
25 to 29).
A protein or a variant of a protein chosen more particularly among the sequences defined in the identifiers SEQ ID N s 2, 4, 8, 9, 17 and 24 or their fragments, or among the sequences corresponding to the proteins of families of these said sequences (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ
25 ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 24, SEQ ID N 25 to 29), and the sequences peptide who have at least 70% identity, preferably at least 80% identity and advantageously at least 98 of identity with any of the sequences SEQ ID N 1 to 29 peptides, independently or in combination, has a effect toxic directly or indirectly, towards cells, in particular with respect to

30 cellules gliales, qui est mis en évidence par le bio-essai précité. Les auto-anticorps produits en réponse à la présence de cette protéine ou de ces protéines sont associés au processus auto-immun. Ainsi, la cible du ou des agent(s) thérapeutique(s) est par 30 glial cells, which is highlighted by the aforementioned bioassay. The autoantibody produced in response to the presence of this protein or these proteins are associated with autoimmune process. Thus, the target of the therapeutic agent (s) is through

31 exemple (i) la protéine naturelle ou les protéines naturelles ou leurs variants dans le but de réguler leur expression et/ou leur concentration intracellulaire et/ou leur concentration dans la circulation, (ii) un anticorps spécifique d'au moins une telle protéine.
L'agent thérapeutique ou les agents thérapeutiques définis éliminent la cible directement, par induction d'une réponse immune spécifique et/ou la neutralisent.
La présente invention concerne donc un matériel biologique pour la préparation d'une composition phatmaceutique destinée au traitement de manunifères atteints de pathologies dégénérative et/ou auto-immune et/ou neurologique, de préférence la sclérose en plaques, ladite composition comprenant :
(i) soit au moins une protéine naturelle et/ou une protéine recombinante ou leurs fragments dont la séquence correspond à tout ou partie des séquences référencées SEQ IDN
2, 4, 8, 9, 17 et 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisie parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ IDN 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N
10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29), et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N là
29,.
indépendamment ou en combinaison, (ii) soit au moins un ligand spécifique d'au moins une desdites protéines ou leurs fragments dont la séquence correspond à tout ou partie des séquences référencées SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17 et 24, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisie parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ IDN 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N
10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29), et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à
29, indépendamment ou en combinaison,
31 example (i) natural protein or natural proteins or their variants for the purpose of regulate their expression and / or their intracellular concentration and / or their concentration in the circulation, (ii) an antibody specific for at least one such protein.
The therapeutic agent or the defined therapeutic agents eliminate the target directly, by induction of a response specific immune system and / or neutralize it.
The present invention therefore relates to a biological material for the preparation of a pharmaceutical composition intended for the treatment of manunifers suffering from Degenerative and / or autoimmune and / or neurological pathologies, preferably sclerosis in plates, said composition comprising:
(i) either at least one natural protein and / or a recombinant protein, or their fragments whose sequence corresponds to all or part of the sequences referenced SEQ IDN
2, 4, 8, 9, 17 and 24 and the peptide sequences or fragments thereof sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor of the plasma retinol binding protein, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ IDN 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N
10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29), and the peptide sequences who present at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98 identity with any of the peptide sequences SEQ ID N there 29 ,.
independently or in combination, (ii) either at least one specific ligand of at least one of said proteins or their fragments whose sequence corresponds to all or part of the sequences referenced SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17 and 24, and the peptide sequences or fragments thereof sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor of the plasma retinol binding protein, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ IDN 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N
10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29), and the peptide sequences who present at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98 of identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, independently or in combination,

32 (iii) soit au moins un anticorps polyclonal ou monoclonal spécifique d'au moins une desdites protéines ou leurs fragments dont la séquence correspond à tout ou partie des séquences référencées SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 et 24, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ
ID N 1, SEQ
ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à
29), et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 %
d'identité et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, indépendamment ou en combinaison, (iv) soit au moins une séquence d'acide nucléique comprenant au moins un gène d'intérêt thérapeutique dont la séquence nucléique est déduite des séquences d'ADN et d'ARN
codant pour tout ou partie des protéines dont les séquences sont référencées SEQ iD N 2, 4, 8, 9, 17 et 24, et les séquences d'ADN et/ou ARN (par exemple SEQ ID N 30 à 57) codant pour tout ou partie des protéines appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de, la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B, en association avec des éléments assurant l'expression dudit gène d'intérêt thérapeutique in vivo dans des cellules cibles 'destinées à être génétiquement modifiées par la séquence nucléique du gène d'intérêt thérapeutique, (v) soit au moins une cellule de mammifère ne produisant pas naturellement la protéine d'intérêt ou les protéines d'intérêt ou tout fragment de cette ou de ces protéine(s) ou des anticorps spécifiques d'au moins une desdites protéines ou de ses fragments ladite cellule mammifère étant génétiquement modifiée in vitro par 'au moins une séquence d'acide nucléique ou un fragment d'une séquence d'acide nucléique ou une association de séquences d'acides nucléiques correspondant à des fragments d'acides nucléiques issus d'un même gène ou de gènes différents, la ou lesdites séquences nucléiques étant déduite(s) des séquences d'ADN et ARN codant pour les protéines référencées SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 et 24, et les séquences d'ADN et/ou ARN (par exemple SEQ ID N 30 à 57) codant pour tout ou partie des protéines
32 (iii) either at least one polyclonal or monoclonal antibody specific for at least less one of said proteins or their fragments whose sequence corresponds to any or part of sequences referenced SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 and 24, and the sequences peptide or fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of the plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B (for example SEQ
ID N 1, SEQ
ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29), and the peptide sequences which have at least 70% identity in preference to minus 80%
identity and advantageously at least 98 identity with any of the sequences peptides SEQ ID N 1 to 29, independently or in combination, (iv) either at least one nucleic acid sequence comprising at least one gene of therapeutic interest whose nucleic sequence is deduced from the sequences DNA and RNA
coding for all or part of the proteins whose sequences are referenced SEQ iD N 2, 4, 8, 9, 17 and 24, and the DNA and / or RNA sequences (for example SEQ ID N 30 to 57) coding for all or part of the proteins belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of the plasma retinol binding protein, of, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B, in combination with elements ensuring the expression of said gene of therapeutic interest in vivo in target cells '' intended to be genetically modified by the nucleic sequence of the gene of interest therapeutic, (v) either at least one mammalian cell which does not naturally produce the protein of interest or proteins of interest or any fragment of this or these protein (s) or antibodies specific for at least one of said proteins or of its fragments said cell mammal being genetically modified in vitro by 'at least one sequence acid nucleic acid or a fragment of a nucleic acid sequence or association of sequences of nucleic acids corresponding to nucleic acid fragments from of the same gene or of different genes, the said nucleic sequence (s) being deduced (s) sequences of DNA and RNA coding for the proteins referenced SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 and 24, and DNA and / or RNA sequences (for example SEQ ID N 30 to 57) coding for all or part of protein

33 appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice du GM2, de la calgranuline B et de la saposine B, ledit gène d'intérêt thérapeutique codant pour tout ou partie de la protéine d'intérêt, d'un fragment de la protéine d'intérêt ou d'un anticorps spécifique de la protéine d'intérêt qui sera exprimé à la surface de ladite cellule de mammifère (Toes et al., 1997,PNAS 94: 14660-14665). La composition pharmaceutique peut contenir un agent thérapeutique seul dirigé contre une cible seule ou des agents pris en combinaison dirigés contre plusieurs cibles.

A partir des connaissances des séquences en acides aminés des protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention, il est à la portée de l'homme de l'art de définir et utiliser les molécules décrites ci_dessus et/ou toute molécule capable de se fixer au dites molécules, et/ou toute molécule capable d'inhiber lesdites molécules.
Ainsi la présente invention concerne l'utilisation de protéines naturelles et/ou recombinantes et/ou de polypeptides de synthèse et leurs fragments, de ligand capables de se fixer au dites protéines ou à leur(s) fragment(s), par exemple des anticorps ; de protéines inhibitrices de la fonction et/ôu de l'expression et/ou de la fixation desdites protéines.
33 belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor plasma retinol binding protein, protein activating GM2, from calgranulin B and saposin B, said gene of therapeutic interest coding for everything or part of the protein of interest, a fragment of the protein of interest or of a antibody specific for the protein of interest which will be expressed on the surface of said mammalian cell (Toes et al., 1997, PNAS 94: 14660-14665). The composition pharmaceutical may contain a therapeutic agent alone directed against a target only or agents taken in combination directed against several targets.

Based on knowledge of the amino acid sequences of proteins of interest identified in the present invention, it is within the scope of the man of the art of define and use the molecules described above and / or any molecule able to attach to said molecules, and / or any molecule capable of inhibiting said molecules.
Thus the present invention relates to the use of natural proteins and or recombinant and / or synthetic polypeptides and their fragments, ligand capable to bind to said proteins or to their fragment (s), for example antibodies; of proteins that inhibit the function and / or expression and / or fixing of said proteins.

34 Utilisation de protéine(s) et/ou peptide(s) naturel(s) et/ou de protéine(s) recombinante(s) et/ou de polypeptide(s) de synthèse correspondant aux protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention.
La présente invention concerne un matériel biologique pour la préparation de compositions pharmaceutiques destinées au traitement de mammifères atteint de maladie auto-immune, de préférence la sclérose en plaques, comprenant :
(i) soit au moins une protéine naturelle et/ou une protéine recombinante et/ou un polypeptide de synthèse choisi parmi les protéines dont les séquences en acides aminés sont référencées SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 et 24, et les séquences peptidiques ou les fra.gments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parrni le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, à 7, SEQ ID N 10_ à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29), et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité
et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, seules ou en combinaison, (ii) soit au moins un fragment naturel et/ou synthétique de ces protéines d'intérêt, par exemple un fragment immunogène capable d'induire une réponse inunune contre un polypeptide cible, (iii) soit au moins un peptide mimotope défini à partir des séquences de référence SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 et 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29), et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité
et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, ou une combinaison de mimotopes, capable d'induire une réponse immune contre le polypeptide cible, (iv) soit âu moins toute protéine ou peptide pouvant réguler in vivo la transcription et/ou la traduction des protéines d'intérêt (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 et 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au 5 rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29. L'administration de ces protéines 10 et/ou peptides seuls ou en combinaison peut rétablir la concentration d'une protéine d'intérêt dans l'organisme.
La réponse immune dirigée contre un antigène spécifique peut être divisée en deux catégories distinctes, l'une mettant en jeu les anticorps (réponse immune de type humorale), l'autre les cellules effectrices cytotoxiques telles que par exemple les macrophages, 15 les lymphocytes cytotoxiques (CTL) ou les cellules tueuses (NK) ainsi que les lymphocytes T
helper , notamment les lymphocytes T CD4+ (réponse iminune de type cellulaire). Plus particulièrement, les deux types de réponse se distinguent en ce que les anticorps reconnaissent les antigènes sous leur forme tridimensionnelle alors que les lymphocytes T, par exemple, reconnaissent des portions peptidiques desdits antigènes, associés à des glycoprotéines codées 20 par les gènes du complexe majeur d'histocompatibilité (CMH), notamment les gènes du complexe majeur d'histocompatibilité de type I qui sont exprimés de façon ubiquitaire à la surface des cellules ou les gènes du complexe majeur d'histocompatibilité de type II qui sont exprimés de façon spécifique à la surface des cellules impliquées dans la présentation des antigènes (APC). 1) Selon un premier aspect, la réponse immune de type cellulaire est 25 caractérisée en ce que - les cellules T de type CD4+ (cellules T helper), suite à un phénomène d'activation bien connu (pour une revue voir Alberola-lia 1997, Annu Rev Immunol 15, 125-154) produisent des cytokines qui à leur tour induisent la prolifération de cellules APC capables de produire lesdites cytokines, la différenciation cellulaire des lymphocytes B capables de produire des anticorps spécifiques de l'antigène, et la 30 stimulation des lymphocytes T cytotoxiques (CTL). 2) Selon un second aspect de la réponse immune cellulaire, les cellules effectrices cytotoxiques telles que par exemple les lymphocytes de type CD8+ (CTL) sont activés a) après interaction avec des peptides antigéniques fixés sur et présentés par les glycoprotéines portées par les cellules ubiquitaires et codées par les gènes appartenant au système CMHI, et b) éventuellement par les cytokines produites par les CD4+.
La présente invention concerne l'administration d'une protéine ou d'un peptide dérivés des protéines d'intérêt (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 et 24) ou de leur(s) fragment(s), et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
23, SEQ ID N 25 à 29), et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, seuls ou en combinaison, pour la prophylaxie et/ou la thérapie d'une maladie auto-immune, telle que la sclérose en plaques.
Ces protéines et peptides administrés sont caractérisés en ce que ils doivent avoir perdu leur activité toxique, par exemple leur activité gliotoxique, ou avoir perdu leur capacité à se fixer à
un ligand, et peuvent induire significativement une réponse immune médiée par les lymphocytes T ou/et les anticorps dirigée contre cette protéine sont utilisés.
De telles protéines sont dites 'modifiées', cependant leur immunogénicité est conservée. De telles molécules immunogéniques modifiées sont obtenues par un nombre de traitements conventionnels, par exemple la dénaturation chimique ou à la chaleur, la troncation ou la mutation avec délétion, insertion ou emplacement d'acides aminés. Un exemple de troncation consiste en la troncation d'acides aminés à l'extrémité carboxy-terminale pouvant aller jusqu'à 5-30 acides aminés. Les molécules modifiées peuvent être obtenues par des techniques synthétiques ou/et recombinantes ou par des traitements chimiques ou physiques des molécules naturelles.
Les protéines d'intérêt naturelles et/ou recombinantes identifiées dans la présente invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 et 25), et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ
ID N 1, SEQ
ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10'à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à
29), et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 %
d'identité et avantageusement au moins 98 d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, ou leur(s) fragment(s), sont utilisées en vaccination prophylactique et thérapeutique contre les maladies auto-immunes, de préférence la SEP. Un vaccin comprend une quantité immunogénique effective de la protéine immunogène en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable et éventuellement un adjuvant et/ou un diluant. Les véhicules, adjuvants et diluants pharmaceutiquement acceptables sont bien connus de l'homme du métier. On peut citer à titre de référence le Remington's Pharmaceutical Sciences. L'utilisation de compositions vaccinales est particulièrement avantageuse en association avec un diagnostic précoce de la maladie. La protéine immunogène est utilisée dans la préparation de médicament pour la vaccination prophylactique ou thérapeutique. Les protéines d'intérêt peuvent être éliminées de l'organisme sans induire d'effets secondaires indésirables. L'identification de telles protéines ou peptides vaccins est réalisée comme suit : les molécules candidates modifiées comme décrit précédemment (protéines naturelles, recombinantes, peptides) sont analysées dans un test fonctionnel pour vérifier qu'elles ont perdues leur toxicité, par exemple leur activité
gliotoxique en utilisant le test appelé bio-essai, et pour vérifier leur immunogénicité (i) en réalisant un test in vitro de prolifération de lymphocytes T CD4+ spécifiques de l'antigène administré (T
cell assay) ou un test in vitro de cytotoxicité des lymphocytes CD8+ spécifiques de l'antigène administré et (ii) en mesurant entre autre le taux d'anticorps circulants dirigés contre la protéine naturelle. Ces formes modifiées sont utilisées pour immuniser des hommes par des procédures standard avec des adjuvants appropriés.
Les vaccins préparés sont injectables, c'est-à-dire en solution liquide ou en suspension. En option, la préparation peut aussi être émulsifiée. La molécule antigénique peut être mélangée avec des excipients qui sont pharmaceutiquement acceptables et compatibles avec l'ingrédient actif. Des exemples d'excipients favorables sont l'eau, une solution saline, le dextrose, le glycérol, l'éthanol ou des équivalents et leurs combinaisons. Si désiré, le vaccin peut contenir des quantités mineures de substances auxiliaires comme des agents " wetting " ou émulsifiants, des agents qui tamponnent le pH ou des adjuvants comme l'hydroxide d'aluminium, le dipeptide muramyl ou leurs variations. Dans le cas des peptides, leur couplâge à une plus grosse molécule (KLH, toxine tétanique) augmente quelquefois l'inununogénicité. Les vaccins sont administrés conventionnellement par injection par exemple sous cutanée ou intramusculaire.
Des formulations additionnelles favorables avec d'autres modes d'administration incluent des suppositoires et quelquefois des formulations orales.
En général la concentration du polynucléotide dans la composition utilisée pour une administration in vivo est de 0.l g /ml jusqu'à 20 mg /ml. Le polynucléotide peut être homologue ou hétérologue de la cellule cible dans laquelle il va être introduit.
La présente invention concerne également l'utilisation de vaccins incluant des molécules d'acides nucléiques qui codent pour les protéines d'intérêt ou des peptides immunogènes ou leur fragment(s), non actifs, correspondant aux protéines d'intérêt (SEQ ID
N 2, 4, 8, 9, 17 et 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N
10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29. Les vaccins d'acides nucléiques, en particulier les vaccins ADN, sont administrés généralement en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable en injection intramusculaire.
A partir de la séquence en acides aminés des protéines d'intérêt décrites (SEQ
ID N 2, 4, 8, 9, 17 et 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ
ID N 5 à
7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 %
d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, des peptides ou des fragments correspondant à tout ou partie de la séquence primaire de ces protéines peuvent être synthétisés par des méthodes classiques de synthèse peptidique ou obtenus par recombinaison génétique.
Des protéines recombinantes correspondante aux protéines d'intérêt, produites dans un système cellulaire procaryote ou eucaryote, sont disponibles auprès de différentes équipes et sont décrites dans la littérature. Elles peuvent être également lo produite par l'homme du métier à partir de la connaissance dès séquences des gènes correspondants décrits dans la littérature et en tenant compte de la dégénérescence du code génétique. Toutes les séquences protéiques identifiées dans la présente invention sont ainsi susceptibles d'être obtenues par recombinaison génétique. Les gènes sont clonés dans des vecteurs adaptés. Des vecteurs différents sont utilisés pour transformer des cellules procaryotes (par exemple E. coli) et des cellules eucaryotes (par exemple cellules COS, CHO et cellules Simliki). Les protéines recombinantes correspondant aux protéines d'intérêt ou à des fragments des protéines d'intérêt peuvent être ainsi produits dans des systèmes cellulaires procaryotes et/ou encaryotes. Dans les cellules E. coli, les protéines recombinantes sont produites avec une queue poly-histidine. La fraction protéique insoluble est solubilisée dans de l'urée 8M.
L'enrichissement du produit a été effectué sur résine chélatée au nickel (Qiagen). La colonne a été lavée avec des concentrations décroissantes d'urée. L'élution a été faite avec de l'imidazole en l'absence d'urée. La séquence complète des protéines d'intérêt peut être également clonée dans un plasmide adapté puis transférée dans le virus de la vaccine pour obtenir un virus recombinant.
Utilisation de ligands capables de se fixer aux protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention.
La présente invention conceme un matériel biologique pour la préparation de compositions pharmaceutiques destinées au traitement de mammiféres atteint de maladie auto-immune, de préférence la sclérose en plaques, comprenant :
(i) soit au moins un ligand capable de se fixer aux protéines et/ou fragments des protéines choisies parmi les protéines cibles SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 14 et 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéineplasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice du GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ IDN 3, SEQ IDN 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
5 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, le ligand étant capable ou non d'inhiber l'activité protéique, (ii) soit au moins un anticorps polyclonal ou monoclonal capable de se fixer à
au 10 moins une protéine ou un de ses fragments choisie parmi les protéines cibles SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 14 et 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à
une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice du GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ IDN 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ IDN 10 à
16, 15 SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29.
Cet anticorps peut être ou non neutralisant, c'est-à-dire capable ou non d'inhiber l'activité de la protéine d'intérêt. Le ligand peut être choisi parmi toute molécule ou fragment molécule capable de se 20 fixer aux protéines cibles, par exemple les récepteurs de ce protéines, les cofacteurs de ces protéines, les anticorps polyclonaux ou monoclonaux capables de se fixer aux protéines ou tout -fragment de ces protéines.
Ces anticorps sont très utiles notamment pour permettre la niise en oeuvre de compositions thérapeutiqaes car ils conduisent par exemple, à des réactions immunes, dirigées 25 spécifiquement à l'encontre d'épitopes immunodominants ou contre des antigènes présentant une grande variabilité. On administre chez le patient soit des anticorps solubles neutralisants pour inhiber leur fonction, soit des anticorps solubles spécifiques pour éliminer le peptide par formation de-complexes immuns. L'invention décrit l'utilisation d'anticorps capables de reconnaître spécifiquement au moins une protéine décrite dans la présente invention pour le traitement et /ou pour le suivi thérapeutique de maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, de préférence la sclérose en plaques. Ces anticorps sont polyclonaux et de préférence monoclonaux. De préférence ces anticorps reconnaissent le site actif de la protéine et en se fixant, inhibe la fonction de la protéine. La capacité de l'anticorps à se fixer spécifiquement à la protéine est analysé par des techniques conventionnelles décrites, comme par exemple par des tests ELISA
ou de Western blot en utilisant la protéine ou le peptide immunogène naturel ou synthétique.
Le titre de l'anticorps est déterminé. La capacité de l'anticorps à
neutraliser la fonction de la protéine peut être analysée par différents moyen, par exemple en déterminant la diminution de l'activité de la protéine ou du peptide immunogène en présence de l'anticorps, de préférence en déterminant la diminution de l'activité gliotoxique en utilisant le test bio-essai in vitro.
Par exemple, les anticorps monoclonaux dirigés contre la protéine cible ou une partie de cette protéine sont produits par des techniques conventionnelles utilisées pour produire des antiçorps contre des antigènes de surface Des souris ou des lapins sont immunisées (i) soit avec la protéine naturelle ou recombinante d'intérêt, (ii) soit avec tout peptide immunogène de cette protéine d'intérêt, (iii) soit avec des cellules murines qui expriment la protéine ou le peptide d'intérêt et les molécules du CMHII. La lignée murine Balb/c est la plus fréquemment utilisée. L'immunogène est également un peptide choisi parmi les peptides définis à partir des séquences primaires des protéines d'intérêt. Par exemple, l'immunogène suivant a été préparé : les peptides SEQ ID N s 58, 59, issus de la séquence de la protéine activatrice de GM2, les peptides SEQ ID N
s 61, 62 issus de la séquence de la saposine B et les peptides SEQ ID N s 63, 64, 65 issus de la calgranuline B ont été couplé à de l'hémocyanine de Lymphet Keyhole, en abrégé peptide-KLH, comme support pour son utilisation en immunisation, ou couplé à de l'albumine de sérique humaine, en abrégé peptide-HSA. Les animaux ont été soumis à une injection de peptide-KLH ou de peptide-HSA en utilisant de l'adjuvant complet de Freund (IFA). Les sérums et les surnageants de culture d'hybridome issus des animaux immunisés avec chaque peptide ont été analysés pour la présence d'anticorps anti-protéines par un test ELISA utilisant les protéines initiales. Les cellules spléniques de ces souris ont par conséquent été
récupérées et fusionnées avec des cellules de myélome. Le polyéthylèneglycol (PEG) est l'agent de fusion le plus fréquemment utilisé. Les hybridomes produisant les anticorps les plus spécifiques et les plus sensibles sont sélectionnés. Les anticorps monoclonaux peuvent être produits in vitro par culture cellulaire des hybridomes produits ou par récupération de liquide d'ascite murin après injection intrapéritonéale des hybridomes chez la souris. Quel que soit le mode de production en surnageant ou en ascite, il importe ensuite de purifier l'anticorps monoclonal. Les méthodes de purification utilisées sont essentiellement la filtration sur gel échangeur d'ions ou par chromatographie d'exclusion, voire l'immunoprécipitation. Pour chaque anticorps il faut choisir la méthode qui permettra d'obtenir le meilleur rendement. Un nombre suffisant d'anticorps anti-protéines sont criblés dans des tests fonctionnels pour identifier les anticorps les plus performants pour fixer la protéine d'intérêt et/ou pour bloquer l'activité de la protéine d'intérêt. Les anticorps monoclonaux sélectionnés sont humanisés par des méthodes standard de CDR grafting (protocole réalisé
par de nombreuses compagnies, sous forme de service). Ces anticorps humanisés peuvent être testés cliniquement chez le patient. L'efficacité de ces anticorps peut être suivie par des paramètres cliniques.
La production in vitro d'anticorps, de fragments d'anticorps ou de dérivés d'anticorps, tels que les anticorps chimères, produits par génie génétique, dans des cellules eucaryotes a été décrite (EP 120 694 ou EP 125 023) et est aussi applicable à
la présente invention.
Utilisation de molécules inhibitrices des protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention.
La présente invention concerne un matériel biologique pour la préparation de compositions pharmaceutiques destinées au traitement de mammifères atteint de maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, de préférence la sclérose en plaques, ladite composition comprenant (i) soit au moins une molécule inhibitrice de la fonction d'au moins une protéine choisie parmi les protéines identifiées dans la présente invention (SEQ ID
N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N
10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, par exemple inhibitrice de l'activité gliotoxique, (ii) soit au moins une molécule régulatrice de l'expression d'au moins une protéine choisie parmi les protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, par exemple pour bloquer la transcription ou la traduction, (iii) soit au moins une molécule régulatrice du métabolisme d'au moins une protéine choisie panni les protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID
N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ
ID N 25 à
29) et les séquences peptidiques qüi présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des s équences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, (iv) soit au moins une molécule régulatrice de l'expression et/ou du métabolisme d'un ligand d'au moins une protéine choisie parmi les protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité
et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à SEQ ID N 8 et SEQ ID N 10 à 29 et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, par exemple un récepteur ou un cofacteur. On peut penser que ces protéines de l'organisme humain peuvent être inhibées sans effet secondaire.
Un autre aspect important de l'invention concerne l'identification et l'évaluation de l'efficacité thérapeutique de substances naturelles et/ou synthétiques (i) capables de bloquer et/ou d'inhiber l'activité des protéines d'intérêt de l'invention et/ou de leur fragment : SEQ ID
N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B
et de la saposine B (par exemple SEQ ID N l, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à
16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29 et/ou (ii) capables d'inhiber leur métabolisme tels les inhibiteurs du métabolisme correspondant, les inhibiteurs d'enzymes activées par les coenzymes, (iii) capables de réguler l'expression des protéines d'intérêt (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N l, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à
7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité
et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, (iv) capables d'inhiber la fonction et/ou l'expression des ligands des protéines d'intérêt SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à
7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, comme par exemple des récepteurs. Ces substances peuvent être utilisées dans des traitements prophylactiques et thérapeutiques de la.maladie.
L'invention concerne 5 également des méthodes pour traiter et prévenir une maladie auto-immune, par exemple la SEP, en administrant des quantités effectives de ces substances. Les substances peuvent être des protéines, des. anticorps, de petites molécules synthétiques ou naturelles, des dérivés des protéines identifiées dans cette invention, des lipides, des glycolipides etc... Les petites molécules peuvent être criblées et identifiées en grande quantité en utilisant des librairies 10 combinatoires chimiques. L'invention concerne également des compositions pharmaceutiques comprenant ces substances en association avec des carriers physiologiques acceptables, et des méthodes pour la préparation de médicaments à utiliser en thérapie ou en prévention de maladies auto-immunes dont la SEP en utilisant ces substances.
Pour identifier des molécules inhibitrices de faible poids moléculaire comme des 15 drogues candidates pour les maladies dégénératives et/ou neurologiques et/ou auto-immunes, telles que la sclérose en plaques, on utilise les tests et protocoles décrits conune précédemment et dans les demandes de brevet référencées ci-dessus, en utilisant des échantillons prélevés du patient non traité ou traité, du modèle animal non traité ou traité, ou de tissus du modèle animal non traité ou traité. Cet aspect de l'invention inclue également un procédé pour 20 identifier des substances capables de bloquer ou d'inhiber l'activité des protéines d'intérêt, comprenant l'introduction de ces substances dans un test in vitro ou dans un modèle animal in vivo. Les molécules sélectionnées sont testées à différentes concentrations.
Ces inhibiteurs sont aussi testés dans des essais de toxicité et pharmacocinétique pour savoir si ils peuvent représenter des drogues candidates valables. Les substances testées pour l'inhibition ou le 25 blocage des activités protéiques ou de l'expression des protéines, dans ces procédures de criblage peuvent être des protéines, des anticorps, des fragments d'anticorps, de petites molécules synthétiques ou naturelles, des dérivés des protéines d'intérêt, etc. Les petites molécules peuvent être criblées et identifiées en grande quantité en utilisant des librairies combinatoires chimiques.
30 A titre d'exemple, on peut citer comme substances inhibitrices :

Les inhibiteurs des protéines identifiées dans la présente invention (SEQ ID N

2, 4, 8, 9, 17, 24), les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à
une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice du GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité. et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, et les inhibiteurs des fragments desdites protéines. Ces inhibiteurs peuvent être compris dans une composition prophylactique et thérapeutique, en particulier pour le traitement de la sclérose en plaques. Par exemple, la lycorine, alcaloïde extrait de Amaryllidaceae (ex:
Crinum Asiaticum) est utilisée in vitro à une concentration comprise entre 0.1 et 0.5 gg /ml et in vivo à une concentration comprise entre 0.1 et 1 mg / kg /jour. Par exemple, le Rolipram (nom commercial) et l'Ibudilast (nom commercial), qui sont deux molécules de la même famille des inhibiteurs des phosphodiestérases 4(PDE4) sont utilisées in vitro à des concentrations comprises entre 1 et 10 M/1 et in vivo à des concentrations comprises entre environ 10 mg/kg/jour.
A partir des séquences d'acides aminés des protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et des séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice du GM2, de la calgranuline B et de la saposine B(par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
23, SEQ ID N 25 à 29) il est évident que l'on peut déduire les séquences nucléotidiques ADN
et ARN (SEQ ID N 30, 31, 42, 53) correspondant aux protéines d'intérêt et les séquences codant pour les protéines de la famille de ces protéines d'intérêt ( par exemple SEQ ID N 32 à
41, SEQ ID N 43 à 52, SEQ ID N 54 à 57, SEQ ID N 66 à 67), en tenant compte du code génétique et de sa dégénérescence. Ainsi la présente invention concerne l'utilisation de ces séquences nucléotidiques sous forme :
- de séquences anti-sens, - de séquences codant pour un gène thérapeutique, - de séquences pouvant être contenue dans un vecteur pour la réalisation de transformation cellulaire ex vitro et/ou in vivo (thérapie génique).
Utilisation d'acides nucléiques déduits des séquences en acides aminés des protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention ; acides nucléiques anti-sens et/ou codant pour un gène thérapeutique.
La présente invention concerne un matériel biologique pour la préparation de compositions phannaceutiques destinées au traitement de mammifères atteint de maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, en particulier la sclérose en plaques, la composition comprenant (i) soit au moins une séquence d'acide nucléique capable de s'hybrider à une séquence d'acides nucléiques codant pour les protéines d'intérêt (SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ IDN 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N
10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, ou leur(s) fragment(s), (ii) soit au moins une séquence d'acide nucléique comprenant au moins un gène d'intérêt thérapeutique codant pour les protéines ou un fragment de protéines (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24), les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B
(par exemple SEQ IDN 1, SEQ ID N 3, SEQ iD N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ

à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, et des éléments assurant l'expression dudit gène in vivo dans des cellules cibles destinées à être génétiquement modifiées par ladite séquence nucléique.
Par séquence d'acide nucléique, on entend un fragment d'ADN et/ou d'ARN, double brin ou simple brin, linéaire ou circulaire, naturel et isolé ou de synthèse, désignant un enchaînement précis de nucléotides, modifiés ou non, permettant de définir un fragment ou une région d'un acide nucléique choisi dans le groupe consistant en un ADNc ; un ADN génomique ; un ADN plasmidique ; un ARN messager. Ces séquences d'acides nucléiques sont déduites de la séquence d'acides aminés des protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à
une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N
10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, en utilisant le code génétique. En raison de la dégénérescence du code génétique l'invention englobe également des séquences équivalentes ou homologues. Ces séquences définies permettent à
l'homme de l'art de définir lui-même les acides nucléiques adaptés.
Aussi, la présente invention concerne un matériel biologique pour la préparation de compositions pharmaceutiques comprenant au moins une séquence d'acide nucléique capable de s'hybrider à une séquence d'acides nucléiques codant pour les protéines d'intérêt ou leur(s) fragment(s) (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragrnents desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ
IDN 1, SEQ
ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à
29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 %
d'identité et avantageusement au moins 98. % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29.
L'invention consiste à définir et utiliser des molécules d'acides nucléiques complémentaires des séquences ADN et/ou ARN codant pour les protéines d'intérêt ou leur(s) fragment(s). Ces fragments correspondent à des molécules anti-sens ou ribozyme et peuvent être synthétisés à l'aide de synthétiseurs automatiques, tels que ceux conimercialisés par la société Applied Biosystem. L'invention décrit l'utilisation de ces acides nucléiques capables de s'hybrider dans des conditions stringentes à
l'ADN ou/et ARN
codant pour les protéines de l'invention ou pour leu(s) fragment(s). Des conditions de stringence caractéristiques sont celles qui correspondent à une combinaison de la température et de la concentration saline choisie approximativement entre 12 à 20 C sous le Tm ( melting temperature ) de l'hybride à l'étude. De telles molécules sont synthétisées et peuvent être marquées en utilisant des méthodes de marquage conventionnelles utilisées pour les sondes moléculaires, ou peuvent être utilisées comme amorces dans les réactions d'amplification. Les séquences qui présentent au moins 90% d'homologie par rapport à une séquence de référence font également partie de l'invention, de même que les fragments de ces séquences qui présentent au moins 20 nucléotides et de préférence 30 nucléotides contigus homologues par rapport à une séquence de référence. Afin de réduire la proportion de peptides naturels ou variants, il est possible d'envisager une approche anti-sens et/ou ribozyme.
Une telle approche est largement décrite dans la littérature. Bien entendu, de telles molécules anti-sens peuvent constituer en tant que telles des vecteurs. On peut également utiliser des vecteurs qui comprennent une séquence d'acides nucléique qui code pour un anti-sens.
La présente invention concerne un matériel biologique pour la préparation de compositions pharmaceutiques destinées au traitement de mammifères atteint de maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, telle que la sclérose en plaques, ladite composition comprenant au moins une séquence d'acide nucléique contenant au moins un gène d'intérêt thérapeutique et des éléments assurant l'expression dudit gène in vivo dans des cellules cibles destinées à être génétiquement modifiées par ladite séquence nucléique.
Ces séquences d'acides nucléiques et/ou vecteurs (anti-sens ou codant pour une protéine ou un fragment d'une protéine) permettent de cibler les cellules dans lesquelles le peptide est exprimé, telles que les cellules macrophages :(i) soit par l'utilisation d'une molécule de ciblage introduite sur le vecteur, (ii) soit par l'utilisation d'une propriété
particulière de ces cellules.
Utilisation de vecteurs comprenant un ' gène d'intérêt thérapeutique correspondant aux gènes des protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention.

La présente invention concerne un matériel biologique pour la préparation de compositions pharmaceutiques destinées à la prévention et au traitement de maladies dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, telles que la sclérose en plaques, la composition comprenant une séquence d'acide nucléique comprenant un gène d'intérêt 5 thérapeutique et des éléments d'expression dudit gène d'intérêt. Les gènes peuvent être non mutés ou mutés. Ils peuvent également consister en des acides nucléiques modifiés de sorte qu'il ne leur est pas possible de s'intégrer dans le génome de la cellule cible ou des acides nucléiques stabilisés à l'aide d'agents, tels que la spermine.
Un tel gène d'intérêt thérapeutique code notamment :
10 (i) soit au moins pour une protéine choisie parmi les protéines identifiées dans la présente invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parnii le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, 15 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ IDN 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité
et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, ou leur(s) fragment(s), (ii) soit au moins pour tout ou partie d'un anticorps polyclonal ou monoclonal 20 capable de se fixer à au moins une protéine ou un fragment de protéine choisi parmi les protéines identifiées dans la présente invention (SEQ IDN 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID
25 N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à
29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29. Il peut notamment s'agir d'anticorps transmembranaire natif, ou de fragment ou dérivé d'un tel anticorps, pour autant que ledit anticorps, fragment ou dérivé d'anticorps soit exprimé à la surface de la cellule cible du mammifère génétiquement modifiée et soit capable de se fixer à un polypeptide présent à la surface d'une cellule effectrice cytotoxique ou d'un lymphocyte T helper impliqué dans le procédé d'activation d'une telle cellule, (iii) soit au moins pour une molécule inhibitrice d'au moins une protéine ou de ses fragments, ladite protéine étant choisie parmi les protéines identifiées (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B
et de la saposine B
(par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ

à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29; les protéines inhibitrices de la fonction et/ou du métabolisme et/ou de la fixation des protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à
une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, (iv) soit au moins pour un ligand ou toute partie d'un ligand capable de se fixer à au moins une protéine ou un fragment de protéine choisi parmi les protéines identifiées (SEQ ID N 2, 4, 8, 9,17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ

à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 %
d'identité et avantageusement au moins 98 %

d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, et/ou d'inhiber sa fonction.
Plus particulièrement, par fragment d'anticorps, on entend les fragments F(ab)2, Fab', Fab, sFv (Blazar et al., 1997, Journal of Immunology 159: 5821-5833 ;
Bird et al., 1988 Science 242: 423-426) d'un anticorps natif et par dérivé on entend, par exemple, un dérivé
chimérique d'un tel anticorps (voir par exemple les chimères des anticorps antiCD3 Souris/Homme dans Arakawa et al., 1996 J Biochem 120: 657-662 ou les immunotoxines telles que sFv-toxine de Chaudary et al 1989, Nature 339: 394-397). Par anticorps transmembranaire on entend un anticorps dont au moins la région fonctionnelle capable de reconnaître et de se fixer à son antigène spécifique est exprimée à la surface des cellules cibles pour permettre lesdites reconnaissance et fixation. Plus particulièrement, les anticorps selon la présente invention consistent en des polypeptides de fusion comprenant les acides aminés définissant ladite région fonctionnelle et une séquence d'acides aminés (polypeptide transmembranaire) permettant l'ancrage au sein de la double couche lipidique membranaire de la cellule cible ou à la surface externe de cette bi-couche. Les séquences nucléiques codant pour de nombreux polypeptides transmembranaires sont décrites dans la littérature. Selon un cas tout à fait avantageux, la séquence d'acide nucléique codant pour la chaîne lourde de l'anticorps est fusionnée avec la séquence d'acide nucléique codant pour undit polypeptide transmembranaire.
Par éléments assurant l'expression dudit gène in vivo on fait notamment référence aux éléments nécessaires pour assurer l'expression dudit gène après son transfert dans une cellule cible. Il s'agit notanunent des séquences promotrices et/ou des séquences de régulation efficaces dans ladite cellule, et éventuellement les séquences requises pour permettre l'expression à la surface des cellules cibles dudit polypeptide. Le promoteur utilisé
peut être un promoteur viral, ubiquitaire ou spécifique de tissu ou encore un promoteur synthétique. A titre d'exemple, on mentionnera les promoteurs tels que les promoteurs des virus RSV (Rous Sarcoma Virus), MPSV, SV40 (Simian Virus), CMV
(Cytomegalovirus) ou du virus de la vaccine, les promoteurs du gène codant pour la créatine kinase musculaire, pour l'actine. Il est en outre possible de choisir une séquence promotrice spécifique d'un type cellulaire donné, ou activable dans des conditions définies. La littérature procure un grand nombre d'informations i-elatives à de telles séquences promotrices.
Par ailleurs, ledit acide nucléique peut comprendre au moins deux séquences, identiques ou différentes, présentant une activité de promoteur transcriptionnel et/ou au moins deux gènes, identiques ou différents, situés l'un par rapport à l'autre de manière coiltiguë, éloignée, dans le même sens ou dans le sens inverse, pour autant que la fonction de promoteur transcriptionnel ou la transcription desdits gènes ne soit pas affectée.
De même dans ce type de construction d'acide nucléique, il est possible t0 d'introduire des séquences nucléiques neutres ou introns qui ne nuisent pas à la transcription et sont épissées avant l'étape de traduction. De telles séquences et leurs utilisations sont décrites dans la littérature (référence : demande de brevet PCT WO
94/29471).
Ledit acide nucléique peut également comprendre des séquences requises pour le transport intracellulaire, pour la réplication et/ou pour l'intégration, pour la transcription et/ou la traduction. De telles séquences sont bien connues de l'homme de l'art.
Par ailleurs, les acides nucléiques utilisables selon la présente invention peuvent également être des acides nucléiques modifiés de sorte qu'il ne leur est pas possible de s'intégrer dans le génome de la cellule cible ou des acides nucléiques stabilisés à l'aide d'agents, tels que par exemple la spermine, qui en tant que tels n'ont pas d'effet sur l'efficàcité de la transfection.
Selon un mode de réalisation de l'invention, la séquence d'acide nucléique est une séquence d'ADN ou ARN nue, c'est à dire libre de tout composé
facilitant son introduction dans les cellules (transfert de séquence d'acide nucléique)..
Toutefois, selon un second mode de réalisation de l'invention, afin de favoriser son introduction dans les cellules cibles et afin d'obtenir les cellules génétiquement modifiées de l'invention, cette séquence d'acide nucléique peut être sous la forme d'un vecteur , et plus particulièrement sous la forme d'un vecteur viral, tel que par exemple un vecteur adénoviral, rétroviral, un vecteur dérivé d'un poxvirus, notamment dérivé du virus de la vaccine ou du Modified Virus Ankara (MVA) ou d'un vecteur non viral tel que, par exemple, un vecteur consistant en au moins une dite séquence d'acide nucléique complexée ou conjuguée à au moins une molécule ou substance porteuse sélectionnée parmi le groupe consistant en un amphiphile cationique, notamment un lipide cationique, un polymère cationique ou neutre, un composé polaire pratique notamment choisi parmi le propylène glycol, le polyéthylène glycol, le glycérol, l'éthanol, la 1-méthyl L-2-pyrrolidone ou leurs dérivés, et un composé polaire aprotique notamment choisi parmi le diméthylsulfoxide (DMSO), le diéthylsulfoxide, le di-n-propylsulfoxide, le diméthylsulfone, le sulfolane, la diméthylformamide, le diméthylacetamide, la tetraméthylurée, l'acétonitrile ou leurs dérivés. La littérature procure un nombre important d'exemples de tels vecteurs viraux et non viraux.
De tels vecteurs peuvent en outre et de préférence comprendre des éléments de ciblage pouvant permettre de diriger le transfert de séquence d'acide nucléique vers certains types cellulaires ou certains tissus particuliers tels que les cellules cytotoxiques et les cellules présentatrices de l'antigène. Ils peuvent également permettre de diriger le transfert d'une substance active vers certains compartiments intracellulaires préférés tel que le noyau, les mitochondries ou les peroxysomes, par exemple. Il peut en outre s'agir d'éléments facilitant la pénétration à l'intérieur de la cellule ou la lyse de compartiments intracellulaires. De tels éléments de ciblage sont largement décrits dans la littérature. Il peut par exemple s'agir de tout ou partie de lectines, de peptides, notamment le peptide JTS-1 (voir demande de brevet PCT
WO 94/40958), d'oligonucléotides, de lipides, d'hormones, de vitamines, d'antigènes, d'anticorps, de ligands spécifiques de récepteurs membranaires, de ligands susceptibles de réagir avec un anti-ligand, de peptides fusogènes, de peptides de localisation nucléaire, ou d'une composition de tels composés.
Utilisation de cellules transformées in vivo après injection de vecteurs contenant au moins un gène d'intérêt thérapeutique défini à partir des protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice du GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à
16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 %

d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29.
La présente invention concerne un matériel biologique pour la préparation de compositions pharmaceutiques destinée à la prévention et au traitement de mammifères atteint 5 de maladies dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, de préférence la sclérose en plaques, la composition comprenant au moins un vecteur contenant un gène thérapeutique comme décrit ci-dessous, capable d'être introduit dans une cellule cible in vivo et d'exprimer le gène d'intérêt thérapeutique in vivo. L'avantage de cette invention repose sur la possibilité
de maintenir sur le long terme un niveau basal de molécules exprimées dans le patient traité.
10 Des vecteurs ou acides nucléiques codant pour des gènes d'intérêt thérapeutique sont injectés.
Ces vecteurs et acides nucléiques doivent être transportés jusqu'aux cellules cibles et transfecter ces cellules dans lesquelles ils doivent être exprimés in vivo.
L'invention concerne l'expression in vivo de séquences nucléotidiques et/ou de vecteurs tels que désignés dans le paragraphe précédent, c'est-à-dire des séquences 15 correspondant à des gènes d'intérêt thérapeutique codant notamment :
(i) soit au moins pour une protéine choisie parmi les protéines identifiées dans la présente invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice de GM2, de 20 la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à
7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité
et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, ou leur(s) fragment(s), 25 (i) soit au moins pour tout ou partie d'un anticorps polyclonal ou monoclonal capable de se fixer à au moins une protéine choisie parmi les protéines identifiées dans la présente invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison 30 au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ
ID N
à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 %
d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des 5 séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29. Il peut s'agir d'anticorps transmembranaire natif, ou de fragment ou dérivé d'un tel anticorps, pour autant que ledit anticorps, fragment ou dérivé d'anticorps soit exprimé à la surface de la cellule cible de mammifère génétiquement modifiée et en ce que ledit anticorps est capable de se fixer à
un polypeptide présent à la surface d'une cellule effectrice cytotoxique ou d'un lymphocyte T helper et impliqué dans le procédé d'activation d'une telle cellule. Il peut s'agir de fragments d'anticorps exprimés par des cellules capables de sécréter lesdits anticorps dans la circulation sanguine d'un mammif"ere ou patient porteur des cellules génétiquement modifiées par le gène codant pour l'anticorps, (ii) soit au moins pour une molécule inhibitrice d'au moins une protéine choisie parmi les protéines identifiées (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences pèptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 %
d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29;
protéine inhibitrice de la fonction etlou du métabolisme et/ou de la fixation des protéines SEQ
ID N 2, 4, 8,9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ
ID N 1 à 29, (i) soit au moins pour un ligand ou toute partie du ligand capable de se fixer sur au moins une protéine choisie parmi les protéines identifiées (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à
une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ IDN 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
23, SEQ IDN 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ IDN 1 à 29, et/ou d'inhiber sa fonction.
Selon un mode de réalisation particulier, il s'agit d'utiliser la thérapie génique de manière à diriger la réponse immune contre la protéine, le peptide ou la molécule d'intérêt cible, c'est-à-dire contre toute protéine choisie parmi les protéines SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à
une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B
(par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ

à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ IDN 1 à 29, leur(s) fragment(s) et/ou contre toute molécule inhibitrice de la fonction et/ou de l'expressibn et/ou du métabolisme desdites protéines d'intérêt, et/ou des ligands desdites protéines comme par exemple les récepteurs.
Pour cela il est évident que les cellules à cibler pour la transformation avec un vecteur sont des cellules appartenant au système immun, soit des cellules de type lymphocytes (CD4/CD8), soit des cellules présentatrices de l'antigène (cellules dendritiques, macrophages, ...).
Selon un mode de réalisation particulier, on modifie génétiquement, notamment in vivo, les cellules présentatrices de l'antigène (CPA). Les CPA comme les macrophages, les cellules dendritiques, les microgliocytes, les astrocytes jouent un rôle dans l'initiation de la réponse immune. Elles sont les premières composantes cellulaires qui capturent l'antigène, l'apprêtent dans la cellule et expriment des molécules du CMHI et CMHII
transmembranaires impliquées dans la présentation de l'immunogène aux cellules T CD4+ et CD8+, elles produisent des protéines accessoires spécifiques qui participent à
l'activation des cellules T (Debrick et al;, 1991, J. Inununol 147: 2846 ; Reis et al., 1993, J
Ep Med 178:
509; Kovacsovics-bankowski et al., 1993, PNAS 90: 4942; Kovacsovics-bankowski et al., 1995 Science 267 : 243 ; Svensson et al., 1997, J Immunol 158 : 4229 ; Norbury et al ;, 1997, Eur J Immunol 27 : 280). Pour une vaccination, il peut être avantageux de disposer d'un système de thérapie génique qui peut cibler le transfert de gène dans de telles cellules APC, c'est-à-dire un gène qui code pour un polypeptide qui peut, après sa production intracellulaire et son processing , être présenté aux cellules CD8+ et/ou CD4+ par les molécules des complexes CMHI et CMHII respectivement à la surface de ces cellules.
On choisit d'exprimer à la surface des cellules CPA in vivo tout ou partie d'un anticorps et/ou d'un ligand comme par exemple un récepteur, capable de réagir avec la protéine ou le peptide cible choisis parmi les protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au __rétino e la protéine activatrice du eanglioside GM2, de la calgranuline B
etde la saposine B
(par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ
ID. N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29. De telles cellules vont alors spécifiquement phagocyter ladite protéine ou ledit peptide, le processer de façon à ce que des fragments de ce peptide soient présentés à la surface des cellules présentatrices de l'antigène.
La littérature propose un grand nombre d'exemples de gènes codant pour des anticorps capables de réagir avec des polypeptides ou récepteurs. Il est à la protée de l'homme de l'art d'obtenir les séquences d'acides nucléiques codant pour de tels anticorps.
Citons par exemple les gènes codant pour les chaînes légères et lourdes de l'anticorps YTH 12.5 (anti-CD3) (Routledge et al. 1991, Eur J Immunol 21 :
2717-2725), de l'anti-CD3 selon Arakawa et al ; 1996, J. Biochem. 120: 657-662. Les séquences d'acide nucléique de tels anticorps sont aisément identifiables à partir des bases de données communément utilisées par l'honune du métier. Il est également possible à
partir d'hybridomes disponibles auprès de l'ATCC de cloner les séquences d'acides nucléiques codant pour les chaînes lourdes et/ou légères de oes différents anticorps par les méthodes d'amplification telles que la RT-PCR à l'aide d'oligonucléotides spécifiques ou les techniques mettant en oeuvre des banques d'ADNc (Maniatis et al., 1982, Molecular cloning. A laboratory manual CSH
Laboratory, Cold Spring Harbor, New York). Les séquences ainsi clonées sont alors disponibles pour leur clonage dans des vecteurs. Selon un cas préféré de l'invention, la séquence d'acide nucléique codant pour la chaîne lourde de l'anticorps est fusionnée par recombinaison homologue avec la séquence d'acide nucléique codant pour un polypeptide transmembranaire tel que la glycoprotéine rabique ou la gpl60 (Polydefkis et al., 1990, J Exp Med 171 : 875-887). Ces techniques de biologie moléculaire ont été
parfaitement bien décrites.
On choisit d'exprimer à la surface des cellules CPA in vivo des fragments immunogènes correspondant à au moins une protéines choisie parmi les protéines SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N
10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29.
Pour cela, on peut choisir de faire exprimer par le vecteur soit le polypeptide complet soit de manière préféré
des polypeptides sélectionnés pour réagir avec des ligands et/ou récepteurs spécifiques. Le peptide immunogène codé par le polynucléotide introduit dans la cellule du vertébré in vivo peut être produit et/ou sécrété, apprêté puis présenté à une cellule présentatrice de l'antigène (APC) dans le contexte des molécules du CMH. Les APC ainsi transférées in vivo induisent une réponse immune dirigée contre l'immunogène exprimé in vivo. Les APC possèdent différents mécanismes pour capturer les antigènes : (a) la capture des antigènes par des récepteurs membranaires comme les récepteurs aux immunoglobulines (Fc) ou pour le complément disponibles à la surface des granulocytes, des monocytes ou macrophages permettant une délivrance efficace de l'antigène dans les 5 compartiments intracellulaires après phagocytose médiée par les récepteurs.
(b) l'entrée dans les APC par pinocytose en phase fluide, impliquant différents mécanismes : la micropinocytose c'est-à-dire la capture de petites vésicules (0.1 m) par les puits recouverts de clathrine et la macropinocytose c'est-à-dire la capture de plus grosses vésicules (avec une taille variant ente 0.5 m et environ 6 m) (Sallusto et al. 1995, J Exp Med 182: 389-400). Tandis que la 10 micropinocytose existe de façon constitutive dans toutes les cellules, la macropinocytose est limitée à des types cellulaires, comme par exemple les macrophages, les cellules dendritiques, les astrocytes, les cellules épithéliales stimulées par des facteurs de croissance (Racoosin et al., J Cell Sci 1992, 102: 867-880). Dans cette invention, on entend par cellules capables de macropinocytose, les cellules qui peuvent réaliser les événements décrits ci-dessus et les 15 cellules qui peuvent capturer des macromolécules de préférence entre 0.5 pm et environ 6 m dans le cytoplasme.
Selon un mode de réalisation particulier, on modifie génétiquement notamment in vivo, les cellules effectrices cytotoxiques ou les lymphocytes T helper de façon à ce qu'elles expriment à leur surface un polypeptide correspondant aux protéines SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17, 20 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B
(par exemple SEQ ID N 1, SEQ IDN 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID

à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
25 de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, à des ligands desdites protéines, naturellement non exprimés par ces cellules, et capables d'induire le procédé
d'activation de telles cellules, par l'introduction dans ces cellules de séquences d'acide nucléique renfermant le gène codant pour un tel polypeptide. Conformément à la présente 30 invention, il est également possible de sélectionner une séquence d'acide nucléique contenant un gène d'intérêt thérapeutique codant pour tout ou partie d'un anticorps dirigé contre une protéine choisie parmi les protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B
et de la saposine B
(par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ

à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité
de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au nloins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, susceptible d'être exprimé à la surface des cellules cibles du patient à traiter, ledit anticorps étant capable de se fixer à un polypeptide naturellement non exprimé par ces cellules effectrices cytotoxiques ou lymphocytes T helper.
Par cellules effectrices cytotoxiques, on entend désigner les macrophages, les astrocytes, les lymphocytes T cytotoxiques (TCL) et les cellules tueuses (NK) ainsi que leurs dérivés telles que par exemple les LAK (Versteeg 1992 Immunology today 13: 244-247 ;Brittende et al 1996, Cancer 77 :T226-1243). Par 'lymphocytes T helper' on entend désigner notamment les CD4, qui permettent après activation la sécrétion de facteurs d'activation des cellules effectrices de la réponse immune. Les polypeptides et notamment les récepteurs exprimés à la surface de ces cellules et qui sont impliqués dans l'activation de telles cellules consistent notamment en tout ou partie du complexe TCR ou le CD3, tout ou partie des complexes CD8, CD4, CD28, LFA-1, 4-1BB (Melero et al., 1998, Eur J Immunol 28:

1121), CD47, CD2, CDl, CD9, CD45, CD30, CD40, tout ou partie des récepteurs de cytolcines (Finke et al., 1998, Gene therapy 5 : 31-39), telles que IL-7, IL-4, IL-2, IL-15 ou GM-CSF, tout ou partie du complexe récepteur des cellules NK tel que par exemple NKAR, Nkp46, .. ;
(Kawano et al., 1998 Immunology 95 :5690-5693 ; Pessino et al., 1998 J Exp Med188 :953-960), Nkp44, tout ou partie des récepteurs de macrophages tels que par exemple le récepteur Fc (Deo et al., 1997, Immunology Today 18 : 127-135).
De nombreux outils ont été développés pour introduire différents gènes hétérologues et/ou vecteurs dans des cellules, en particulier des cellules de mammifères. Ces techniques peuvent être divisées en deux catégories : la première catégorie implique des technique physiques comme la micro-injection, l'électroporation ou le bombardement de particules. La seconde catégorie est basée sur l'utilisation de techniques en biologie moléculaire et cellulaire avec lesquelles le gène est transféré avec un vecteur biologique ou synthétique qui facilite l'introduction du matériel dans la cellule in vivo. Aujourd'hui, les vecteurs les plus efficaces sont les vecteurs viraux en particulier les adénoviraux et rétroviraux. Ces virus possèdent des propriétés naturelles pour traverser les membranes plasmiques, éviter la dégradation de leur matériél génétique et introduire leur génome dans le noyau de la cellule.
Ces virus ont été largement étudiés et certains sont déjà utilisés expérimentalement dans des applications humaines en vaccination, en immunothérapie, ou pour compenser des déficiences génétiques. Cependant cette approche virale a des limitations notamment due à la capacité de clonage restreinte dans ces génomes viraux, le risque de disséminer les particules virales produites dans l'organisme et l'environnement, le risque de mutagenèse artéfactuelle par insertion dans la cellule hôte dans le cas des rétrovirus, et la possibilité d'induire une forte réponse immune inflammatoire in vivo pendant le traitement, ce qui limite le nombre d'injections possibles (Mc Coy et al.
11995, Human Gene Therapy 6: 1553-1560; Yang et al., 1996 Immunity 1: 433-422). D'autres systèmes alternatifs à ces vecteurs viraux existent. L'utilisation de méthodes non virales comme par exemple la co-précipitation avec le phosphate de calcium, l'utilisation de récepteurs qui miment les systèmes viraux (pour un résumé
voir Cotten et Wagner 1993, Current Opinion in Biotechnology, 4: 705-710), ou l'utilisation de polymères comme les polyamidoamines (Haensler et Szoka 1993, Bioconjugate Chem 4: 372-379). D'autres techniques non virales sont basées sur l'utilisation de liposomes dont l'efficacité pour l'introduction de macromolécules biologiques comme l'ADN, l'ARN des protéines ou des substances pharmaceutiques actives a été largement décrite dans la littérature scientifique. Dans ce domaine des équipes ont proposé
l'utilisation de lipides cationiques avant une forte affinité pour les membranes cellulaires et/ou les acides nucléiques. En fait, il a été montré qu'une molécule d'acide nucléique elle-même pouvait traverser la membrane plasmique de certaines cellules in vivo (WO
,0 90/11092), l'efficacité étant dépendante en particulier de la nature polvanionique de l'acide nucléique. Dès 1989 (Felgner et al., Nature 337 : 387-388) les lipides cationiques ont été proposés pour faciliter l'introduction de larges molécules anioniques, ce qui neutralise les charges négatives de ces molécules et favorise leur introduction dans les cellules. Différentes équipes ont développés de tels lipides cationiques :
le DOTMA ( Felgner et al., 1987, PNAS 84: 7413-7417), le DOGS ou TransfectamTM
(Behr et al., 1989, PNAS 86: 6982-6986), le DMRIE et le DORIE (Felgner et al., 1993 methods 5: 67-75), le DC-CHOL (Gao et Huang 1991, BBRC 179: 280-285), le DOTAPTM (McLachlan et al., 1995, Gene therapy 2: 674-622) ou la LipofectamineTM, et les autres molécules décrites dans les brevets W09116024, W09514651, W09405624. D'autres groupes ont développés des polymères cationiques qui facilitent le transfert de macromolécules en particulier des macromolécules anioniques dans lescellules. Le brevet W095/24221 décrit l'utilisation de polymères dendritiques, le document W096/02655 décrit l'utilisation du polyéthylèneimine ou polypropylèneimine et les document US-A-5595897.et FR 2719316,1'utilisation des conjugués polylysine.
Etant donné que l'on souhaite obtenir in vivo une transformation ciblée vers un type cellulaire donné, il est évident que le vecteur utilisé doit pouvoir être lui-même ciblé , comme décrit ci dessus.
Utilisation de cellules transformées in vitro ou ex vivo avec des vecteurs contenant iin gène d'intérêt thérapeutique défini par rapport aux protéines d'intérêt identifiées dans la présente invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ
ID N 1, SEQ
ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à
29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 %
d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séqûences peptidiques SEQ ID N 1 à 29.
La présente invention concerne un matériel biologique pour la préparation de compositions pharmaceutiques destinée à la prévention et au traitement de maladies dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, de préférence la sclérose en plaques, la composition comprenant au moins une cellule, notamment une cellule ne produisant pas naturellement des anticorps, sous une forme permettant leur administration dans l'organisme d'un mammifère, humain ou animal, ainsi qu'éventuellement leur culture préalable, ladite cellule étant génétiquement modifiée in vitro par au moins une séquence d'acide nucléique contenant au moins un gène codant in vivo pour :
(i) au moins une protéine choisie parmi les protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID

à 16, SEQ ID N 18 à 23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N
1 à 29 et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, et tout fragment (ü) au moins un peptide défini à partir de la séquence primaire d'au moins une protéine choisie parmi les protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 %
d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, (iii) au moins toute molécule inhibitrice de la fonction et/ou de la fixation et/ou de l'expression de ces protéines, (iv) au moins un peptide issu de la séquence primaire d'une protéine choisie parmi les protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par eXemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 %
5 d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29, et capable de se fixer sur au moins une glycoprotéine du CMHI, (v) au moins tout anticorps et toute partie d'anticorps capables de se fixer à
au moins une protéine choisie parmi les protéines SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24, et les 10 séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines choisies parmi le perlecan, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol, de la protéine activatrice de GM2, de la calgranuline B et de la saposine B (par exemple SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 à 7, SEQ ID N 10 à 16, SEQ ID N
18 à
23, SEQ ID N 25 à 29) et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 %
15 d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 %
d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N 1 à 29.
Plus particulièrement, ladite cellule cible provient soit du mammifère à
traiter, soit d'un autre mammifère que celui à traiter. Dans ce dernier cas, il convient de noter que ladite cellule cible aura subi un traitement la rendant compatible avec le mammifère à traiter.
20 Par mammifère on entend, de préférence, un mammifère humain. Ces cellules sont établies en lignées cellulaires et sont préférentiellement CMHII+ ou CMHII+-inductibles comme les lyrnphocytes, les monocytes, les astrocytes, les oligodendrocytes.
L'invention concerne également les cellules modifiées et un procédé de préparation d'une. cellule telle que décrite ci dessus caractérisé en ce que l'on introduit dans 25 une cellule de mammifère ne produisant pas naturellement d'anticorps, par tout moyen approprié, au moins une séquence d'acide nucléique contenant au moins un gène d'intérêt thérapeutique et des éléments assurant l'expression dudit gène dans ladite cellule, ledit gène d'intérêt thérapeutique contenant une séquence d'acide nucléique codant pour une molécule ou un fragment de molécule in vivo, comme décrit juste ci-dessus. Plus particulièrement, elle concerne des cellules procaryotes , des cellules de levure et des cellules animales, en particulier des cellules de manunifères transformées par au moins une séquence nucléotidique et/ou un vecteur tel que décrit précédemment.
Selon un mode de réalisation particulier, les cellules (cellules dendritiques, macrophages, astrocytes, lymphocytes T CD4+, lymphocytes T CD8+) du patient ou allogéniques sont placées en côntact d'une préparation purifiée du polypeptide cible, celui-ci étant intemalisé, apprêté et présenté à la surface cellulaire associé aux molécules du CMHI
et/ou CMHII et ainsi induire une réponse immune spécifique contre le peptide.
Les cellules activées sont ensuite administrées au patient chez lequel elles vont induire une réponse immune spécifique des antigènes (on utilise une voie naturelle de la réponse inunune, mais on contrôle ce que la cellule présentatrice de l'antigène va présenter) Selon un mode de réalisation particulier, les cellules présentatrices d'antigène (cellule dendritique, macrophage, astrocytes) sont modifiées in vitro pour exprimer les antigènes dans la cellule transformée qui vont s'associer aux molécules du CMHI et/ou CMHII
et être présentées à la surface- des cellules pour induire chez le patient chez lequel on administre la cellule modifiée une réaction immune parfaitement ciblée.
Toutes les approches vaccinales ne sont pas toujours satisfaisantes et conduisent par exemple à des réactions immunes limitées dirigées uniquement à l'encontre d'épitopes immunodominants ou contre des antigènes présentant une grande variabilité. De même la présentation incorrecte des antigènes par les glycoprotéines du système CMH à
la surface des cellules, ne permet pas de développer chez le patient traité une immunité anti-protéine d'intérêt convenable. Afin de pallier ces problèmes, certains auteurs ont proposé dans le cadre de tels procédés vaccinaux, de sélectionner les fragments minimaux antigéniques correspondant aux portions de peptide susceptibles d'être reconnus spécifiquement par les lymphocytes T
cytotoxiques, de les exprimer dans les cellules afin qu'ils s'associent aux molécules du CMHI
et soient présentés à la surface des cellules pour induire chez le patient traité une réaction immunitaire parfaitement ciblée (Toes et al. 1997, PNAS 94: 14660-14665). Plus particulièrement, il a été montré que des épitopes de très petites tailles (variant de 7 à

environ 13 acides aminés) qui sont exprimés à partir de minigènes introduits dans un virus de la vaccine, pouvaient induire une immunisation de type cellulaire. Il a par ailleurs été montré que plusieurs minigènes pouvaient être exprimés conjointement à
partir d'un même vecteur (cette construction particulière est appelée string of beads ). Une telle construction présente l'avantage d'induire une réaction immune de type CTL synergique (Whitton et al ;, 1993 J. of Virology 67 : 348-352).
Protocole de mise en contact des cellules et du fragment antigénique :
La présentation des fragments antigéniques par les molécules CMHI
repose sur un procédé intracellulaire identifié (voir Groettrup et al., 1996 Immunology 1 o Today 17 : 429-435 pour une revue) au cours duquel des peptides antigéniques de très courtes tailles (environ 7-13 acides aminés) sont produits par dégradation d'un polypeptide plus complexe contre lequel la réaction immune finale sera dirigée. Ces cottrts peptides sont ensuite associés aux molécules du CMHI ou du CMHII pour former un complexe protéique qui est transporté à la surface cellulaire afin de présenter lesdits peptides aux lymphocytes T cytotoxiques circulants ou aux lymphocytes T
helper circulants, respectivement. Il convient en outre de noter que la spécificité des molécules CMH I ou CMH II vis-à-vis des peptides antigéniques varie en fonction des molécules CMH I ou CMH II (exemple pour le CMHI : HLA-A, HLA-B, ...) et de l'allèle (exemple pour le CMH I: HLA-A2, HLA-A3, HLA-A11) considérés. Au sein 2o d'une même espèce animale, d'un individu à l'autre, il existe une grande variabilité des gènes codant pour les molécules du système CMH (à ce sujet, voir notamment George et al., 1995, Immunology Today 16 : 209-212).
Selon un mode de réalisation particulier, les cellules,'telles que les cellules dendritiques, les macrophages, les astrocytes, les lymphocytes T CD4+, les lymphocytes T CD8+, sont modifiées de manière à exprimer à leur surface des anticorps spécifiques du peptide ciblé. Le peptide est neutralisé par les anticorps exprimés à la surface des cellules. Ces cellules sont de préférence immunes, de préférence du patient, de préférence cytotoxiques, modifiées pour exprimer tout ou partie d'un anticorps spécifique du polypeptide cible.
Isolement de cellules mononucléées à partir de sang périphérique En 1968, Boyum décrivit une technique rapide qui permet par centrifugation du sang sur gradient de densité, de séparer les cellules mononucléées (lymphocytes et monocytes) avec un bon rendement (rendement théorique 50 %, c'est-à-dire 106 cellules /ml de sang). 50 ml de sang périphérique prélevés stérilement dans des tubes héparinés sont centrifugés 20 minutes à 150g à 20 C. Les cellules récupérées sont diluées dans deux volumes de sang périphérique initial de PBS stérile. 10 ml de cette suspension sont déposés sur 3m1 d'une solution de Ficoll-Hypaque (milieu de séparation des lymphocytes, Flow). Après centrifugation pendant 20 minutes à
400g et 20 C sans freinage de décélération , les cellules mononucléées sédimentent à
l'interface PBS-Ficoll, en une couche dense, opalescente, alors que la quasi-totalité des globules rouges et des polynucléaires sédimentent au fond du tube. Les cellules i0 mononucléées sont récupérées et lavées en PBS stérile.
Internalisation des antigènes par les cellules présentatrices de l'antigène :
Traitement préalable des cellules présentatrices de l'antigène : les cellules présentatrices de l'antigène sont préalablement lavées avec un tampon PBS-BSA
à
0.5% (p/v) puis énumérées puis elle sont préincubées en présence de différents inhibiteurs de réduction trois fois en PBS-BSA 0.5% contenant de 10 M à 10 mM
final de DTNB (acide 5,5'-dithio-bis-2-nitrobenzoïque) ou de NEM (N-éthylmaléimide). Les étapes ultérieures de fixation d'antigènes à la surface cellulaire ou d'internalisation d'antigènes se réalisent aussi en présence des différentes concentrations d'inhibiteurs.
Protocole d'internalisation des antigènes par les cellules présentatrices de l'antigène :
8.10' cellules sont internalisées en présence de quantité saturante de protéines radiomarquées à l'iode 125 (1 g) dans des micropuits dans 70 l.
Après une heure d'incubation à 4 C sous agitation, les antigènes sont fixés à la surface des cellules. La suspension cellulaire est lavée deux fois en PBS-BSA et les culots cellulaires sont repris dans 70 l de tampon et incubées.à 37 C pendant différentes périodes allant jusqu'à 2 heures. Cellules et sumageants sont séparés par centrifugation à 800g pendant 5 minutes 4 C. Pour des plus longues périodes d'incubation, l'étape préliminaire de préfixation des antigènes à la surface des cellules est supprimée. Les cellules sont diluées dans un milieu RPMI-10% SVF en présence de 20 mM Hépès, à
10'cellules iml. Les cellules sont incubées en présence d'un excès d'antigène pendant différentes périodes à 37 C (1 gg de molécules /5.10' cellules monocytes/macrophages ou /108 cellules B-EBV).
Tous les agents thérapeutiques définis dans le cadre de la présente invention sont utilisés pour prévenir et/oû traiter une maladie dégénérative et/ou neurologique et/ou auto-immune, telle que la sclérose en plaques, seuls ou en combinaison. Ils petivent être utilisés également pour évaluer leur efficacité
in vitro ou in vivo.
Administration chez l'homme des agents thérapeutiques:
Le matériel biologique selon l'invention peut être administré in vivo l0 notamment sous forme injectable. On peut également envisager une injection par voie épidermique, intraveineuse, intra-artéri elle, intramusculaire, intracérébrale par seringue ou tout autre moyen équivalent. Selon un autre mode de réalisation par administration orale ou tout autre moyen parfaitement connu de l'homme de l'art et applicable à la présente invention. L'administration peut avoir lieu en dose unique ou répétée, une ou plusieurs fois après un certain délai d'intervalle. La voie d'administration et le dosage les mieux appropriés varient en fonction de différents paramètres tels que par exemple l'individu ou la maladie à traiter, du stade et/ou de l'évolution de la maladie, ou encore de l'acide nucléique et/ou de la protéine et/ou peptide et/ou molécule et/ou cellule à
transférer ou de l'organe/tissus cible.
Pour la mise en ceuvre du traitement du mammifère mentionné dans la présente invention, il est possible de disposer de compositions pharmaceutiques conlprenant un inatériel biologique tel que précédemment décrit, avantageusement associé avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable pour l'administration à
l'homme ou à l'animal. L'utilisation de tels supports est décrite dans la littérature (voir par exemple Remington's Pharmaceutical Sciences 16''' ed. 1980, Mack Publishing Co). Ce véhicule pharmaceutiquement acceptable est préférentiellement isotonique, hypotonique ou présente une faible hypertonicité et a une force ionique relativement basse, tel qtie par exemple une solution de sucrose. Par ailleurs, ladite composition peut contenir des solvants, des véhicules aqueux ou partiellement aqueux tels que de l'eau stérile, libre d'agents pyrogène et des milieux de dispersion par exemple. Le pH de ces compositions pharmaceutiques est convenablement ajusté et tamponné selon les techniques conventionnelles.

Figures La figure 1 représente la séquence en acides aminés de la protéine GM2AP, et la localisation des peptides, qui est soulignée, et qui sont utilisés pour la production des anticorps anti-peptides GM2AP.
5 La figure 2 représente la séquence en acides aminés de la protéine MRP14, et la localisation des peptides, qui est soulignée, et qui sont utilisés pour la production des anticorps anti-peptides MRP 14.
La figure 3 représente la séquence en acides aminés de la protéine Saposine B, et la localisation des peptides, qui est soulignée, et qui sont utilisés pour la production des 10 anticorps anti-peptides Saposine B.
La figure 4 représente le dosage de la protéine MRP8 (ng/ml - en ordonnée) dans les urines de patients atteints de sclérose en plaques (SEP), dans les urines de patients atteints d'autres maladies neurologiques (AMN) et dans les urines de témoins considérés sains (TS). n signifie le nombre d'urines testées par catégorie.
15 La figure 5 représente le dosage de la protéine MRP 14 (ng/ml - en ordonnée) dans les urines de patients atteints de sclérose en plaques (SEP), dans les urines de patients atteints d'autres maladies neurologiques (AMN) et dans les urines de témoins considérés sains (TS). n signifie le nombre d'urines testées par catégorie.
La figure 6 représente le dosage de la protéine MRP8/14 (ng/ml - en ordonnée) 20 dans les urines de patients atteints de sclérose en plaques (SEP), dans les urines de patients atteints d'autres maladies neurologiques (AMN) et dans les urines de témoins considérés sains (TS). n signifie le nombre d'urines testées par catégorie.
La figure 7 représente les concentrations moyennes des protéines MRP8, MRP14, MRP8/14 (ng/ml - en ordonnée) dans les urines de patients atteints de sclérose en 25 plaques (SEP), dans les urines de patients atteints d'autres maladies neurologiques (AMN) et dans les urines de témoins considérés sains (TS). n signifie le nombre d'urines testées par catégorie..
La figure 8 représente le dosage de la protéine GM2AP (ng/ml - en ordonnée) dans les urines de patients atteints de sclérose en plaques (SEP), dans les urines 30 de patients atteints d'autres maladies neurologiques (AMN) et dans les urines de témoins considérés sains (TS). n signifie le nombre d'urines testées par catégorie.

La figure 9 représente le dosage de la protéine Saposine B( g/ml - en ordonnée) dans les urines de patients atteints de sclérose en plaques (SEP), dans les urines de patients atteints d'autres maladies neurologiques (AMN) et dans les urines de témoins considérés sains (TS). n signifie le nombre d'urines testées par catégorie.
La figure 10 représente la co-détection des protéines Saposine B( g/ml - en ordonnée) et GM2AP (ng/ml - en abscisse) dans des échantillons d'urine de patients SEP, de témoins supposés sains et de patients atteints d'autres maladies neurologiques et la corrélation observée entre les taux des deux protéines.
La figure 11 représente : figure 11A, le dosage de la protéine GM2AP en ng/ml dans les urines d'un patient SEP en forme rémittente progressive (courbe claire) et la gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT
(courbe foncée) ;
figure 11B le dosage de la protéine Saposine B en g/ml dans les urines d'un patient SEP en forme rémittente progressive (courbe claire) et la gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT (courbe foncée).
La figure 12 représente le produit des concentrations des protéines GM2AP et saposine B en ngx g/m12 dans les urines d'un patient SEP en forme rémittente progressive (courbe claire) et la gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT
(courbe foncée).
La figure 13: figure 13A, le dosage de la protéine GM2AP en ng/ml dans les urines d'un patient SEP en forme progressive (courbe claire) et la gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT (courbe foncée) ; figure 13B le dosage de la protéine Saposine B en g/ml dans les urines d'un patient SEP en forme progressive (courbe claire) et la gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT (courbe foncée).
La figure 14 représente le produit des concentrations des protéines GM2AP et saposine B en ngx g/m12 dans les urines d'un patient SEP en forme progressive (courbe claire) et la gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT
(courbe foncée).

La figure 15 représente la corrélation entre les concentrations de GM2AP
en ng/ml (abscisse) et de gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT (ordonnée) détérminées dans des urines de patients SEP et de témoins.
La figure 16 représente la corrélation entre les concentrations de Saposine B en g/ml (abscisse) et de gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT (ordonnée) déterminées dans des urines de patients SEP et de témoins.
La figure 17 représente la corrélation entre le produit des concentrations de GM2AP et Saposine B en ngx g/ml' (abscisse) et de gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT (ordonnée) déterminées dans des urines de to patients SEP et de témoins.
La figure 18 représente la corrélation entre les concentrations en GM2AP
(ng/ml - en ordonnée gauche), les concentrations en Saposine B( g/ml -ordonnée droite) et la gliotoxicité en pourcentage de cellules mortes estimées par le test MTT
(abscisse). Deux droites de corrélation estimées sont représentées sur le graphe. Les lignes en gras sont relatives aux concentrations en saposine B; les lignes en noir clair sont relatives aux concentrations en GM2AP.

Exemples :

Exemple I: Recueil et pool d'urines.
Des échantillons d'urine de volumes différents ont été prélevés à partir d'individus sains (SEP négatifs) n'ayant a priori aucune maladie neurologique ou auto-immune. L'activité toxique de chaque prélèvement vis à vis de cellules astrocytaires murines a été testée in vitro en utilisant le test MTT. Au total un pool de 20 litres d'urine a été constitué (pool SEP négatif). Parallèlement, des échantillons d'urine de volumes différents ont été prélevés à partir d'individus atteints de sclérose en plaques (SEP positifs) à différents stade de la maladie. L'activité tôxique de chaque prélèvement vis à vis de cellules astrocytaires murines a été testée in vitro en utilisant le test MTT. Au total un pool de 80 litres d'urine a été constitué (pool SEP
positif).

Exemple 2 : Purification des protéines urinaires.

Les pools d'urine SEP positif et SEP négatif, recueillis et testés selon l'exeinple 1, ont été purifiés pour obtenir une concentration en protéines élevée et éliminer au maximum les protéines de haut poids moléculaire.
Précipitation : des précipitations au sulfate d'ammonium (Prolabo - réf. 21 333 365) ont été effectuées sur les pools d'urine SEP positif et SEP négatif.
Le pourcentage de 60 % de. sulfate d'ammonium saturé pour 40 % d'urine, soit 390 grammes de sulfate d'ammonium par litre d'urine a été utilisé. Chaque pool est réparti en fractions de 1,8 litres dans des flacons de 2 litres pour améliorer la précipitation. La précipitation a été effectuée durant 2 x 8 heures, à température ambiante, sous agitation douce. Après centrifugation des pools d'urine à 3 000 tpm pendant 10 min., à
une température de 10 C, le culot obtenu est repris dans un tampon Tris 20 mM
contenant du CaCI, 1 mM et de l'urée à 0,25 M. Le mélange a ensuite été centrifugé à 3 000 tpm pendant 10 min. Le sumageant contient les protéines concentrées. II est soit utilisé
immédiatement pour l'étape suivante, soit congelé si l'étape suivante ne peut être effectuée en continu.
Chromatographie par échange d'ions : la solution contenant les protéines a ensuite été passée sur un gel DEAE fast Flow (commercialisé par PHARMACIA).
Cette étape est effectuée à basse pression sur une colonne PHARMACIA remplie de gel. Les tampons sont amenés sur la colonne par une pompe péristaltique qui permet un débit régulier. Le tampon d'équilibration de la colonne est le tampon Tris 20 mM, pH
7. La fraction correspondant au surnageant de précipitation et contenant une quantité de sels trop élevée est dialysée contre ce tampon avant dépôt sur la colonne. Une élution par un gradient salin permet de récupérer les protéines. Le gradient d'élution est effectué par palier de NaCI 100, 200, 300, 500 mM dans le tampon d'équilibration de la colonne. Les fractions d'élution sont testées par le test MTT et ne seront conservées que les fractions positives, soit la fraction éluée à 200 Mm NaCI. Ces fractions pourront être traitées immédiatement ou conservées à l'état lyophilisé.
Purification : Une chromatographie d'exclusion stérique basée sur la différence de taille et de forme des protéines à éluer a été utilisée. La fraction correspondant à l'élution 200 mM NaCI est déposée sur la colonne. Au cours de l'élution, les protéines de faible masse moléculaire sont retenues et donc éluées plus tardivement que les grosses molécules. Les purifications ont été effectuées sur HPLC

avec une colonne TosoHaas TSK Prep G 3000 SW, d'un diamètre de 21,5 mm et d'une longueur de 300 mm, la limite d'exclusion en masse moléculaire est de 500 000 daltons. Le tampon d'élution utilisé contient du phosphate 100 mM, du sulfate de sodium 100 mM, à pH 6,8. La séparation du mélange de protéines a été effectué
en 60 min. Seule la fraction correspondant à une masse de 15-20 000 daltons a été
conservée.
Cette fraction est dialysée dans un tampon Tris 20 mM contenant du CaCI, 0,2 mM, pH
7,2, puis lyophilisée.
A chaque étape, seules les fractions présentant une activité toxique significative ont été retenues.pour l'étape.suivante. Un contrôle de l'activité toxique 1o des protéines a été effectué à chaque étape, à l'aide du test MTT. Seules les fractions présentant une activité toxique significative ont été retenues pour l'étape de purification supplémentaire décrite dans l'exemple 3.

Exemple 3 : Purification supplémentaire des protéines urinaires par chromatographie phase inverse.
Des pools d'urine provenant de patients SEP (pool SEP positif) et de patients non SEP (pool SEP négatif), obtenus après purification selon l'exemple 2, ont été repris dans de l'eau distillée, puis dilués avec une solution 0,2% TFA/10%
acétonitrile pour obtenir une concentration finale d'environ 130 à 140 g/ml.
La séparation par HPLC phase inverse C8 a été effectuée sur une colonne Brownlee Aquapore (nom commercial) commercialisée par la société Perkin Elmer (caractéristiques de la colonne : 300 angstroms/7 m/(100x4,6) mm). Deux colonnes distinctes ont été utilisées respectivement pour les pools positif et négatif.
Les injections ont été réalisées par multi-injections de 250 l. Les protéines ont été éluées avec un gradient linéaire de 5% à 15% de tampon B en 5 min., puis de 15% à
100% de tampon B en 95 min., à un débit de 0,5 ml/min. Les tampons de séparation A et B
utilisés sont respectivement le tampon 0,1% TFA (Pierce n 28904)/ eau Mi11iQ
et le tampon 0,09% TFA/80% acétonitrile (Baker). La détection a été effectuée par mesure de l'absorbance W à 205 et 280 nm. La collecte des fractions a été effectuée en fractions de 1,5 ml et de 0,5-1 ml dans la zone d'intérêt. Les fractions ont été congelées après la collecte dans de la carboglace.

Les fractions collectées ont ensuite été séchées sous vide et reprises dans 100 l de 0,1% TFA/30% acétonitrile. 20 1 des fractions ont été transférés dans des eppendorfs de 500 l, séchés et lavés à deux reprises avec 100 l d'eau MilliQ, puis séchés de nouveau.
L'activité toxique dés protéines contenues dans chaque fraction recueillie après 5 élution a été déternùnée à l'aide du test MTT. Seule la fraction 21 présentant une activité
toxique significative a été retenue. Le numéro de cette fraction correspond à
l'ordre de l'élution en fonction des conditions d'élution énoncée dans cet exemple.

Exemple 4: Analyse des protéines obtenues par séparation sur HPLC sur gel 10 SDS-TRICINE.
Le pool de collecte de la fraction 21 obtenue par HPLC, comme décrit dans l'exemple 3, et provenant de 20 injections du pool SEP positif, a été déposé
sur un gel SDS-TRICINE 16% précoulé de 10 puits et de 1 mm d'épaisseur (commercialisé par la société
Novex). Les conditions d'utilisation du gel correspondent à celles préconisées par le 15 fournisseur. L'échantillon est repris dans 75 gl du tampon d'échantillon 1 fois concentré (SDS-TRICINE N LC 1676, 1 ml deux fois concentré + 50 1 de (3-mercaptoéthanol (Pierce) dilué
au 1/2 dans de l'eau) et 251i1 de l'écharitillon sont déposés sur le gel en trois fois. Le pool de collecte de la fraction 21 provenant de 6 injections du pool SEP négatif a été
déposé sur le gel dans les mêmes conditions que celles décrites pour le pool SEP positif. La migration sur les 20 deux gels a été effectuée en parallèle dans la même cuve de migration (XCELL II NOVEX
(nom commercial)) à un voltage constanf de 125 mV pendant 2 heures. La cuve est placée dans un bac contenant de la glace. Les gels ont été colorés directement après la migration par coloration au zinc/imidazole (kit de coloration 161-0440 commerciâlisé par la société
BIORAD) pour obtenir une coloration négative réversible. Les bandes de protéines sont 25 translucides sur fond opaque.

Exemple 5: Digestion à la trypsine des bandes de gel.
Toutes les bandes de protéines visualisées dans les dépôts de la fraction 21 ont été découpées et soumises à une protéolyse par la trypsine.

Les bandes de gels sont découpées au scalpel en tranches de 1 mm et transférées dans des tubes eppendorfs. Les eppendorfs sont soumis à un pic de centrifugation pour faire tomber les morceaux de gel et après centrifugation 100 gl de tampon de lavage (100 Mm NHIC03/50% CH3CN) sont ajoutés aux morceaux de gel.
Après 30 min. d'agitation à température ambiante, le surnageant est enlevé par fractions de 20 l et l'étape de lavage est renouvelée deux fois. Les eppendorfs sont séchés pendant 5 min. en speed vac. 20 g de trypsine (Modified sequenal grade PROMEGA V5111) sont repris dans 200 gl de tampon de digestion (5 mM TRIS, pH
8) et sont dissous pendant 30 min. à température ambiante, sous agitation intermittente et 20 à 30 l de trypsine resuspendue sont ajoutés aux morceaux de gel. Les eppendorfs sont centrifugés et conservés en chambre chaude à 28 C pendant une nuit. Après digestion les bandes de gel peuvent être utilisées immédiatement pour les mesures de masse ou congelées pour usage ultérieur.

Exemple 6: Digestion chimique au CNBR des bandes de gel.
Dans l'éventualité d'une protéine résistante aux clivages enzymatiques, en particulier à l'action de la trypsine comme décrit dans l'exemple 5, les bandes entre 16kD et 20kD ont été traitées avec du CNBR. Les bandes de gel, déjà utilisées pour les digestions avec la trypsine, sont séchées 5 à 10 min. en speed vac.
Une solution de CNBR (FLUKA) à 200 mg/ml a été préparée dans 70 % acide formique (BAKER). 20 l de cette solution ont été utilisées pour réhydrater les morceaux de gel. La réaction s'est faite pendant 20 h à température ambiante et à
l'obscurité. Les peptides sont extraits 3 fois 30 min. avec 100 gl de 0.1 %
TFA / 60%
Acétonitrile. Les solutions d'extraction sont réunies et concentrées à 20 l.
Ces échantillons sont dilués 5 fois dans 0,1 % TFA/eau. Les conditions de séparation sont celles décrites pour les peptides de la digestion avec la trypsine.

Exemple 7: Analyse par spectrométrie MALDI-TOF.
l de tampon d'extraction (2 % TFA/50 % acétronitrile) sont ajoutés 30 aux échantillons. Les eppendorfs à analyser sont soumis à une cenirifugation de 5 min., puis à une sonication de 5 min. et finalement à une centrifugation de 1 min.

Sur un disque en acier inoxydable, 14 dépôts de 0,5 l de matrice (acide a-cyano-4-hydroxy-trans-cinnamique à saturation dans de l'acétone) sont réalisés. Une fine couche microcristalline"
uniforme est obtenue. 0,5 l d'une solution de 2 % TFA/eau sont déposés sur cette sous-couche sur les 14 dépôts, puis 0,5 l d'échantillon à analyser sont ajoutés.
Dans cette goutte ainsi formée, 0,5 l d'une solution à saturation d'acide d'acide a-cyano-4-hydroxy-trans-cinnamique dans 50 % acétonitrile/eau sont ajoutés. Après un séchage à
température ambiante pendant 30 min., les dépôts cristallins sont lavés avec 2 l d'eau qui sont immédiatement évacués par un souffle d'air. Tous les spectres sont obtenus sur un spectromètre de masse BRUKER BIFLEX (marque de commerce) équipé d'un réflectron. Les mesures (90 à
120 tirs laser sur l'ensemble du dépôt) sont accumulées pour obtenir un spectre de masse qui soit le plus représentatif de l'ensemble des peptides présents dans le sandwich matrice-échantillon.
Pour chaque dépôt, une calibration avec les peptides de l'autolyse de la trypsine a été faite afin de pouvoir utiliser une précision de mesure inférieure à 100 ppm.
Les recherches dans les banques de données ont été exécutées dans MS-FIT
PROTEINPROSPECTOR. Les paramètres communs, utilisés dans ces recherches, sont (1) base de données : NCBInr, (2) une tolérance de 100-50 ppm, (3) les cystéines ne sont pas modifiées, (4) les méthionines peuvent être oxydées, (5) gamme de poids moléculaire : 1000-100000 Da, (6) jusqu'à 3 sites de coupure peuvent être ignorés.

Exemple 8: Séquençage N-terminal des peptides de digestion.
(i) Extraction et séparation par HPLC des peptides de digestion.
Après les mesures de masse sur la totalité de la digestion, le reste des peptides est extrait en 3 fois 30 min. dans un bain de sonication avec 0,1 % TFA/60 %
acétonitrile.
Les solutions d'extraction sont réunies et séchées jusqu'à 20 l sous vide.
Après dilution dans 80 l de tampon A (0,1 % TFA/eau), les extractions des bandes de gel, digérées avec de la trypsine, sont injectées sur une colonne C18/MZ-Vydac/(125x1,6)mm/5 m. L'élution des peptides se fait à un débit de 150 l/min. et dans un gradient allant de 5 % de tampon B (0,09 % TFA/80 % acétronitrile) à
40 % de tampon B en 40 min., puis de 40 % de tampon B à 100 % de tampon B en 10 min.
La détection est faite par mesure de l'absorbance UV à 205 nm. La collecte des pics est effectuée dans des tubes eppendorf de 500 l. Les fractions sont conservées sur la glace et pour la bande de 18-20 kD du pool 21 SEP positif analysées par spectrométrie de masse MALDI-TOF.
(ü) Séquençage N-terminal.
Les fractions ne correspondant qu'à un seul pic de masse ont été analysées par dégradation d'Edman sur un séquenceur (Modèle 477A PERKIN ELMER/Applied Biosystems). Les conditions de séquençage sont celles décrites par le constructeur. Une micro cartouche a été utilisée pour le dépôt des échantillons et les PTH-AminoAcid to sont identifiés avec un système HPLC online (Modèle 120A PERKIN
ELMER/Applied Biosystems).
Le dépôt de la fraction à séquencer s'est fait en plusieurs dépôts de 15 gl avec des séchages intermédiaires. Le tube ayant contenu le peptide est lavé
avec 15 l d'acide formique 85 % (BAKER). Les séquences d'acides aminés correspondent toujours aux masses mesurées. Les peptides, dont les masses ne correspondent pas à la protéine principale identifiée, ont été séquencés en priorité. De cette manière, il a été
possible d'identifier jusqu'à trois protéines dans une bande de gel.

Exemple 9: Résultats et discussion.
Après HPLC inverse du pool témoin SEP négatif et du pool SEP positif, l'activité toxique de chaque fraction d'élution a été déterminée en utilisant le test MTT.
Seule la fraction 21 du pool SEP positif présente une activité toxique in vitro. La fraction 21 du pool témoin SEP négatif ne présente aucune activité toxique.
L'activité
toxique de la fraction 21 du pool SEP positif a été confirmée in vitro par FACS, comme décrit dans la demande de brevet WO 98/11439 sur des cellules astrocytaires murines.
Le contenu protéique de la fraction 21 du pool témoin SEP négatif et du pool SEP positif a été observé après séparation sur gel SDS-TRICINE 16% et coloration du gel au zinc/imidazole. Des protéines de poids moléculaires apparents élevés ont été trouvées dans les deux fractions. Par contre cinq bandes différentes et de poids moléculaires apparents faibles ne sont visibles que dans la fraction 21 du pool SEP positif (bandes 8, 14, 18 et 20 kD). A chaque bande correspond au moins une protéine et des variants desdites protéines qui ont un poids moléculaire apparent proche de celui de la protéine native. Ces séquences variantes présentent un pourcentage d'homologie ou d'identité avec les séquences natives d'au moins 70%, de préférence d'au moins 80% et avantageusement d'au moins 98 %.
Les protéines d'intérêt de la fraction 21 du pool SEP positif ont ensuite été
analysées par spectrométrie de masse et/ou séquençage et recherche d'homologie dans les banques de données. Les résultats montrent la présence de cinq bandes de protéines migrant entre 22 et 5 kD dans la fraction 21 du pool SEP positif et des variants desdites protéines.
Ces protéines sont le fragment C-terminal du Perlecan, qui commence à l'acide aminé 3464 et se termine à l'acide aminé 3707 de la séquence protéique complète, identifiée dans l'identificateur de séquences SEQ ID N 2, le précurseur de la protéine plasmatique de liaison au rétinol dont la séquence est donnée en SEQ ID N 4, la protéine activatrice de GM2 identifié en SEQ ID N 8, la calgranuline B identifiée en SEQ ID N 17 et la saposine B
représentée en SEQ ID N 24. Comme décrit ci dessus des homologues ou variants desdites protéines ont également été identifiés par séquençage. Ces séquences protéiques homologues ou variantes sont le produit de mutations au niveau des gènes codant pour lesdites protéines. A
titre d'exemple, la SEQ ID N 9 présente 99 % d'homologie ou d'identité avec la SEQ IDN 8 de la protéine activatrice de GM2 et le fragment de SEQ ID N 9 qui commence à
l'acide aminé 34 et se termine à l'acide aminé 202 présente 98,88 % d'homologie ou d'identité avec le fragment correspondant de la protéine native identifiée en SEQ ID N 8.
Exemple 10 : Mise en évidence des protéines dans un échantillon urinaire.
Des échantillons d'urine provenant d'un individu SEP négatif et d'un patient SEP positif ont été prélevés. Ces échantillons d'urine ont été purifiés selon le protocole décrit précédemment.
Les fractions d'élution finales 21 ont été analysées séparément par spectrométrie de masse. Le profil de masse de chaque fraction correspondant à chaque échantillon d'urine a été comparé
au profil de masse obtenu pour les protéines identifiées dans les exemples précédents. Les résultats montrent que pour l'échantillon d'urine provenant du patient SEP
positif les masses correspondent aux molécules (i) fragment C-terminal du Perlecan, (ii) protéine activarice de GM2, (iii) calgranuline B et (iv) saposine B
identifiées précédemment.
Par contre aucune de ces masses n'a été identifiée dans le profil de masse obtenu après analyse de l'échantillon d'urine provenant de l'individu SEP négatif. Le procédé
décrit est utilisable comme essai de diagnostic.

Exemple 11 : Essai en Western Blot.
Des Western Blot ont été réalisés sur différentes fractions d'urine brute ou purifiée comme décrit dans l'exemple 2. Des échantillons d'urine provenant d'individus sains et de patients atteints de sclérose en plaques sont testés en parallèle. Les échantillons sont 10 déposés sur un gel d'électrophorèse permettant de séparer les différentes protéines en fonction de leur masse moléculaire sous l'action d'un champ électrique. Les Western Blot sont réalisés après transfert des protéines du gel sur une membrane. Pour révéler les protéines transférées, la membrane est saturée en tampon de saturation, puis incubée avec un anticorps directement marqué à la phosphatase alcaline. L'anticorps utilisé est un anticorps anti-calgranuline 15 (anticorps monoclonal de souris, clone CF 145 sous-type IgG 2b commercialisé par la société
Valbiotech : référence MAS 696p lot PC96G696). Le substrat de l'enzyme est le dichlorure de 3,3'-(1,1'-biphényl)4,4'diazonium et 2-naphtalenyl phosphate de sodium (commercialisé sous la dénomination (3 Naphtyl acid phosphate Sigma réf. N7375 et ô dianisine Tetrazotized D3502) est ajouté pour la révélation des bandes et la visualisation des protéines liées à
20 l'anticorps. Une molécule de masse moléculaire apparente d'environ 14 000 Da est révélée dans les urines purifiées de patients atteints de SEP, avec un signal relativement intense. Cette protéine correspond à la calgranuline B (masse moléculaire apparente : 14 kD).
Par contre, aucun signal n'est observé à partir d'urine d'individus sains. Cette observation confinne la présence de cette protéine spécifiquement dans les urines de patients atteints de SEP et la mise 25 en oeuvre d'un procédé de détection utilisant un anticorps reconnaissant la protéine.

Exemple 12 : Production d'anticorps monoclonaux.
La production d'anticorps monoclonaux par ascite impose ùne compatibilité du système H-2 entre l'hybridome et la souris productrice. 20 souris femelles Balb/c, âgées de 6 30 semaines, subissent une injection de 0.5ml de Pristane (2-6 10-14 acide tétraméthylpentadécane) dans leur cavité péritonéale, pour la production d'ascite (Porter et al., 1972). Une semaine à 10 jours plus tard, 5.106 à 10.106 hybridomes dilués dans 0.5ml de tampon stérile NaCI 0,145M, NaZHPO410 mM, KC1 2.7 mM, KH2PO4 1.5 mM à
pH
7.4 sont injectés par voie intrapéritonéale. L'ascite apparaît une à deux semaines plus tard. Les liquides d'ascites présents dans la cavité péritonéale sont alors recueillis avec une seringue après incision du péritoine. Le liquide recueilli est centrifugé à 3000g pendant 15 minutes à
température ambiante, filtré sur gaze pour éliminer le gras, puis tamponné en ajoutant 1/20 ' de son volume de tris-HCI 1M à pH 8Ø Cette méthode permet d'obtenir des quantités d'anticorps 10 fois supérieures à celles obtenues par culture d'hybridomes.
Les immunoglobulines présentes dans le liquide d'ascite sont relarguées par les sels (sulfate d'ammonium ou sulfate de sodium). Le liquide d'ascite est précipité par le sulfate d'ammonium 40%. Après 20 minutes au froid la solution est centrifugée 15 minutes 8000g à
4 C. Le précipité est lavé et resuspendu à froid dans une solution de sulfate d'ammonium 40%
puis de nouveau centrifugé. Le nouveau précipité enrichi en IgG est remis en solution dans du tampon PBS et dialysé la nuit contre le tampon Tris-HC1 25 mM, NaC1 150 mM pH
7,4.
Parallèlement une colonne d'agarose-Protéine A (ou protéine G) (commercialisée sous forme lyophilisée, Pierce) est lavée extensivement avec le tampon Tris-HCl 25 mM, NaCI 150mM
pH7.4. La solution enrichie en IgG est déposé sur la colonne puis la colonne est lavée. Les IgG
retenues par la colonne sont éluées à pH acide (glycine 200 mM pH 2.8). Les fractions éluées sont neutralisées avec un volume de Tris-Base 1 M pH 10.5. Le contenu en immunoglobulines de chaque fraction recueillie est quantifié par lecture d'absorbance à 280 nm (e 1%,lcm = 14.0 Prahl et Porter 1968). Les fractions riches sont poolées. Le degré de purification des IgGs poolées est analysé par électrophorèse en gel d'acrylamide en présence de SDS.
Les IgGs purifiées sont dialysées une nuit contre le tampon Tris-HC1 25 mM, NaCI l50mM
pH7.4, filtrées stérilement, aliquotées et conservées à-20 C. Leur concentration finale est déterminée par lecture de l'absorbance à 280 nm ou par dosage micro-BCA. Les peptides immunogènes référencés SEQ ID N 58, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55, SEQ ID N 56, SEQ ID N
57, SEQ
ID N 58, SEQ ID N 59 et SEQ ID N 65 ont été utilisés pour la production d'anticorps monoclonaux, selon le protocole décrit ci dessus. Mais, il est à la portée de l'homme du métier de définir d'autres protocoles pour la production d'anticorps monoclonaux, par exemple à partir des techniques décrites par Kôhler et Milstein et par Galfre G. et al.
précédemment cités ou des techniques dérivées de celles ci.
Production de protéines recombinantes et d'anticorps polyclonaux et monoclonaux.
Protéines recombinantes Les protéines recombinantes GM2AP (SEQ ID NO :73) et Saposine B
(SEQ ID NO :74) utilisées pour réaliser la gamme étalon de cette étude ont été
produites en système procaryote et purifiées à partir des clones de ces deux protéines obtenus dans notre laboratoire en utilisant les méthodes et protocoles bien connus de l'homme de l'art.
Anticorps anti-GM2AP ou anti-Saposine B
Les anticorps anti-GM2AP ou anti-Saposine B utilisés pour réaliser l'étude ont été soit produits dans notre laboratoire ou donnés généreusement.
Des anticorps polyclonaux anti-Saposine B et anti-GM2AP (Li et al, Glycoconjugate, 1984) ont été utilisés pour l'étude (cf les exemples ci-dessous) : ils sont dénonunés SAP84 et GM2AP84.
Des anticorps polyclonaux anti-GM2AP ou anti-Saposine B ont été
produits et purifiés dans le laboratoire en utilisant les protocoles et méthodes bien connus de l'homme de l'art : 50 g de protéine GM2 ou Saposine B procaryote achetée ont été injectés à des lapins aux jours JO, J28 et J56 ; deux injections de rappel ont été réalisés une fois par mois pendant deux mois consécutifs. Les deux anticorps polyclonaux anti-GM2AP et deux anticorps polyclonaux anti-Saposine B ont ainsi été
obtenus et leur spécificité vis-à-vis de la protéine recombinante a été
vérifiée par Western blot et par Elisa.

Des anticorps polyclonaux anti-peptides GM2AP ou Saposine B ont été
produits et purifiés dans le laboratoire en utilisant les protocoles et méthodes bien connus de l'homme de l'art; 75 g de peptides GM2AP ou Saposine B définis, produits et couplés à KLH dans notre laboratoire ont été injectés aux jours JO, J28 et J56 ; plusieurs boosts ont été réalisés une fois par mois pendant 5 mois consécutifs avec injection de 75 g à chaque fois. Quatre anticorps polyclonaux anti-peptides GM2AP, quatre anticorps polyclonaux anti-peptides Saposine B et quatre anticorps polyclonaux de lapins anti-peptides MRP 14 ont ainsi été obtenus et leur spécificité vis-à-vis de la protéine recombinante a été vérifiée par Western blot et par Elisa. La séquence des peptides GM2AP, Saposine B et MRP14 choisis sont décrites dans les figures de 1 à 3.
Il a été obtenu:
- un anticorps anti-mélange de deux peptides de 13 et 15 acides aminés de GM2AP: 189-190; un anticorps anti-peptide de 18 acides aminés de GM2AP: 191-192 (cf.
Figure 1), - un anticorps anti-mélange de deux peptides de 13 et 19 acides aminés de MRP14 :193; un anticorps anti-peptide de 17 acides aminés de MRP14: 195-196 (cf. Figure 2), - un anticorps anti-mélange de trois peptides de 12, 15 et 15 acides aminés de Saposine B: 74-75 ; un autre anticorps anti-mélange de 3 peptides de 12, 15 et 15 acides aminés de Saposine B : 72-73 (cf. Figure 3).
Dcs anticorps monoclonaux anti-fraction native ont été produits et purifiés dans le laboratoire en utilisant les protocoles et méthodes bien connus de l'homme de l'art. La fraction native correspond à la fraction d'élution cytotoxique obtenue à
partir du pool des 80 litres d'urine de patients SEP et après purification. C'est la dernière fraction d'élution qui contient les trois protéines GM2AP, Saposine B, MRP14. 30 g de cette fraction de purification ont été injectés à trois souris aux jours JO, J14, J28 et le prélèvement a été effectué
à J38. Après screening et fusion cellulaire, protocoles connus de l'homme de l'art pour l'établissement d'hybridomes et d'anticorps monoclonaux, les hybridomes ont été ré-injectés à
la souris et le liquide d'ascite a été récupéré 10 jours après. Les anticorps ont été purifiés sur colonne sépharose-Protéine A et la spécificité vis-à-vis de la fraction utilisée pour l'immunisation a été vérifiée par Western blot et par Elisa. Ainsi quatre anticorps monoclonaux ont été obtenus: 19C1A7, 3D3F9, 18C8C5 et 7D12A8.
Exemple 13 : Dosage des protéines MRP14 dans les urines par technique ELISA.
Les protéines MRP14, MRP8 et l'hétérocomplexe MRP8/14 ont été dosés dans des urines humaines en utilisant (i) soit une technique de dosage Elisa selon le procédé connu de l'honune de l'art et en utilisant les anticorps anti-MRP
décrits dans les exemples précédents ; (ii) soit le kit 'MRP Enzyme Immunoassay' commercialisé
par BMA
Biomedicals AG, Augst, Switzerland, en utilisant les anticorps du kit, le protocole étant réalisé
suivant la notice du kit.
Détection de MRP14 et MRP8/14 dans des urines.
Les dosages a été réalisés à partir de 17 urines d'individus issus de la population active (TS), de 27 urines de patients atteints de sclérose en plaques (SEP) et de 7 urines de patients atteints d'autres maladies neurologiques (AMN).
- La figure 4 illustre les taux de MRP8 dosés dans ces urines : alors que la concentration en MRP8 est quasiment nulle dans les urines AMN, il n'y a pas vraiment de différence de distribution entre les urines TS et SEP. Notons cependant que les différences observées sont quasiment négligeables car les concentrations dosées sont extrêmement faibles.
- La figure 5 illustre les taux de MRP14 dosés dans les mêmes urines : alors qu'il n'y a pas vraiment de différences de distribution des concentrations entre les urines TS et AMN, les concentrations sont plus élevées dans certaines urines SEP.
- La figure 6 illustre les taux d'hétérodimère MRP8/14 dosés dans les mêmes urines :alors qu'il n'y a pas vraiment de différence entre les concentrations des urines TS et AMN, on observe des plus fortes concentrations dans certaines urines SEP, correspondant peut-être à une sous population de patients SEP caractérisée par une activité
de la maladie.
MRRP8/14 dosé dans les urines est un marqueur de l'activité de la maladie SEP
(caractérisée par un pic d'inflammation).
- La figure 7 récapitulative confirme qu'il n'y a pas de différence significative de concentration en MRP8 et en MRP14 entre les urines TS, AMN et SEP, alors qu'une faible différence de concentration en MRP8/14 est observée entre ces urines, cette concentration étant plus élevée en moyenne dans les urines SEP et étant un marqueur de l'activité de la maladie (pic d'inflammation).

Exemple 14 : Protocoles ELISA utilisés pour le, dosage des protéines GM2AP et Saposine B.
Les protéines GM2AP ou Saposine B ont été dosées dans des urines humaines en utilisant des anticorps polyclonaux anti-GM2AP ou anti-Saposine B en suivant le protocole Elisa décrit par Gardas et al. (Glycoconjugate Journal 1, 37-42, 1984). Les principales étapes sont brièvement décrites ci-dessous :
A chaque étape, les puits d'une microplaque de 96 puits sont remplis avec 200 l de la solution désignée. Les puits sont d'abord recouverts avec une solution de GM2AP
5 (protéine recombinante procaryote) diluée à 50 ng/ml dans un tampon carbonate-bicarbonate, pH 9,6. Après incubation une nuit à 4 C, la solution est éliminée et les puits sont lavés quatre fois avec du tampon PBS pH 7,4 contenant du Tween-20 0.05% (PBS-Tween). Les microplaques ainsi recouvertes sont stockées à 4 C pendant environ 2 semaines.
Les échantillons d'urine à trois dilutions différentes (20x, 40x et 80x ou d'autres 10 dilutions appropriées) sont incubés avec une dilution appropriée de l'anticorps polyclonal de lapin anti-GM2AP ou anti-Saposine B pendant une nuit à 4 C. Une série de dilutions standard d'une protéine recombinante allant de 2,0 à 62,5 ng/ml est utilisée pour réaliser la gamme étalon et sont traitée de la même façon. Toutes les dilutions sont faites en tampon PBS-Tween contenant 1 mg/ml d'ovalbumine. Ainsi, 0,2 ml de chaque solution incubée est ajoutée dans 15 des puits recouverts en duplicat et les plaques sont laissées pendant 2 heures à température ambiante. Les puits sont alors lavés quatre fois en PBS-Tween et remplis encore avec une solution d'anticorps de chèvre anti-IgG de lapin couplés à la peroxidase et diluée environ 1200 fois. Après une incubation de 2 heures à température ambiante, les puits sont lavés quatre fois en PBS-Tween et remplis e nouveau avec le réactif de coloration. Le réactif de coloration 20 consiste en 100 mg d'acide 2,2'-azino-di-(3-éthylbenzothiazoline) sulfonique et 10 1 de 30%
de peroxide d'hydrogène pendant une heure à température ambiante et le degré
de coloration de chaque micropuits est estimé par lecture d'absorbance à 405 nm.
Une courbe standard est construite en mettant en abscisse la concentration de GM2AP de la gamme étalon ou de Saposine B avec une échelle logarithmique et en ordonné le 25 pourcentage d'absorbance avec une échelle linéaire. Le pourcentage d'absorbance de l'échantillon est le rapport d'absorbance entre l'échantillon d'urine et le contrôle qui contient seulement l'antisérum, sans l'antigène soluble.
Une solution de protéine recombinante GM2AP produite en système procaryote, et de concentration 3 mg/ml est diluée en tampon carbonate 50 mM, pH 9,6 et 50 1 sont 30 ajoutés dans chaque puits d'une microplaque à 96 puits, soit 50 1 par puits d'une solution à 0,5 g/ml. Les plaques ainsi préparées sont incubées une nuit à
température ambiante, L'anticorps polyclonal anti-GM2AP produit dans le laboratoire (lapin 79) a été purifié et dilué en tampon PBS-Tween 0,05% en présence de sérum de cheval 10%. Cette solution est diluée au 1/8000'"u La solution est utilisée pour réaliser une gamme étalon avec 8 points de gamme couvrant les concentrations de 0 à 500 ng/ml. Une préincubation est réalisée pendant une nuit à température ambiante ente 100 l d'anticorps et 100 l d'échantillon d'urine à doser ou de solution protéine recombinante GM2AP ou Saposine B servant pour la gamme étalon. Après lavage de la microplaque en PBS-Tween, 50 1 du mélange d'incubation sont ajoutés par puits, puis lo incubés pendant deux heures à température ambiante. La microplaque est de nouveau lavée en PBS-Tween, puis 50 l d'anticorps anti-IgG de lapin couplé à la peroxidase et dilués au 1/5000 sont ajoutés dans chaque micropuits de la plaque et incubés pendant deux heures à température ambiante. Après de nouveaux lavages de la microplaque, 100 1 d'OPD sont ajoutés dans chaque puits et incubés pendant 20 minutes à
température ambiante. La coloration de - chaque puits, proportionnelle à la concentration de GM2AP ou de Saposine B reconnue par l'anticorps spécifique utilisé, est estimée par lecture d'absorbance.

Une solution de protéine recombinante GM2AP ou Saposine B produite en système procaryote, et de concentration 3 mg/ml est diluée en tampon carbonate 50 mM, pH 9,6 et 501il sont ajoutés dans chaque puits d'une microplaque à 96 puits, soit 50 1 par puits d'une solution à 1,5 g /ml. Les plaques ainsi préparées sont incubées une nuit à température ambiante. Les anticorps polyclonaux anti-peptides GM2AP
produits dans le laboratoire (lapin 190 et lapin 191) purifiés sont utilisés seuls ou en mélange dilués au 1/1000 pour chacun en tampon PBS-Tween 0,05% en présence de sérum de cheval 10%. La gamme étalon est réalisée en utilisant de la protéine recombinante procaryote GM2AP ou Saposine B diluée de façon à couvrir la gamme de concentration 0 à 1500 ng/ml avec 8 points. 100 l d'anticorps (un anticorps ou les deux ensemble) sont pré-incubés en présence de 100 1 d'échantillon d'urine à
tester ou de solution GM2AP ou Saposine B recombinante, pendant une nuit à température ambiante. Après lavage de la micrôplaque en PBS-Tween, 50 l du mélange d'incubation est ajouté par puits puis incubés pendant deux heures à
température ambiante. La microplaque est de nouveau lavée en PBS-Tween, puis 50 l d'anticorps anti-IgG
de lapin couplé à la peroxidase, dilués au 1/5000, sont ajoutés dans chaque micropuits de la plaque et incubés pendant deux heures à température ambiante. Après lavage de la microplaque, 100 1 d'OPD sont ajoutés dans chaque puits et incubés pendant 20 minutes à
température ambiante. La coloration de chaque puits, proportionnelle à la concentration de GM2AP ou Saposine B reconnue par l'anticorps spécifique utilisé, est estimée par lecture d'absorbance.

Exemple 15 : Dosage des protéines GM2AP dans les urines.
La protéine GM2AP a été dosée dans les urines de 22 patients atteints de sclérose en plaques (SEP), 5 patients atteints d'autres maladies neurologiques (AMN) et 9 individus, témoins considérés sains (TS), choisis parmi la population active et recueillies pendant une visite médicale, en suivant le protocole Elisa décrit ci-dessous, utilisant des anticorps polyclonaux anti-GM2AP. Les patietits SEP sélectionnés pour cette étude sont des patients tout azimut, c'est-à-dire avec différents stades et profils de la maladies, et différents traitements, etc.
Les résultats du dosage sont rapportés dans la figure 8. Alors que seulement urines AMN et 2/9 urines dites 'TS' présentent une concentration en GM2AP
supérieure à 200 ng/ml , 10/22 (soit 45%) présentent une concentration supérieure à 200 ng/ml.
Ces résultats indiquent que si la protéine GM2AP est présente en très faible concentration (<400 ng/ml) dans les urines d'individus de la population active, elle est présente en plus forte concentration dans les urines de patients SEP.
Cependant 12 urines SEP
présentent également des taux faibles de GM2AP. Parmi ces 12 patients, 10 sont en traitement.
Les fortes concentrations urinaires de GM2AP semblent être un mârqueur de la pathologie SEP, et plus précisément un marqueur d'un stade ou d'une forme de la maladie, de l'activité de la maladie, et est certainement influencé par tout traitement en cours. Notons que deux individus de la population active ont des concentrations élevées de GM2AP (ces deux cas ont été inclus volontairement dans l'étude, car ils présentaient tous deux une activité gliotoxique dans leur urines contrairement aux autres individus de cette même catégories).
Il est impossible de savoir s'il s'agit d'individus sains, ou atteints d'une pathologie, ou des individus atteints d'une sclérose en plaques car les échantillons des individus dits TS
ont été prélevés de manière anonyme, sans connaissance du dossier clinique.
Des concentrations urinaires plus élevées de GM2AP sont détectées dans les urines de patients SEP ; une concentration élevée de GM2AP peut être alors un marqueur de la pathologie SEP, et plus précisément d'une forme de la maladie, d'un stade de la maladie, d'une période d'activité, et peut être influencée par tout traitement en cours. Ces concentrations urinaires élevées en GM2AP peut également avoir une valeur prédictive d'un début d'aggravation de la maladie, ou d'une SEP benigne en début d'évolution, etc.
Les valeurs absolues des concentrations GM2AP détectées dans les urines sont dépendantes de l'affinité et de la spécificité de l'anticorps utilisé, mais d'une façon générale, la tendance entre les trois groupes d'individus est conservée quelque soit l'anticorps utilisé.

Exemple 16: Dosage des protéines Saposine B dans les urines.
La protéine Saposine B a été détectée dans les même échantillons d'urines que ceux utilisés pour l'étude de la détection de GM2AP. Les dosages ont été
réalisés en parallèle avec ceux du GM2AP, dans une même étude, en suivant le protocole Elisa décrit ci-dessous, utilisant des anticorps polyclonaux anti-Saposine B.
Les résultats du dosage Saposine B sont reportés dans la Figure 9. 0/5 urines AMN et 2/9 urines TS présentent une concentration en Saposine B supérieure à 2 g/ml , alors que 6/22 (soit 27%) présentent une concentration supérieure à 2 g /ml.
Ces résultats indiquent que la protéine Saposine B est présente dans chaque urine (population dite saine ou population dite malade) à des concentrations non négligeables, c'est-à-dire < 2 g /ml. Ces résultats de dosage sont compatibles avec ceux décrits dans la bibliographie. Cependant même si la Saposine B est présente dans chaque urine, elle semble être présente en plus forte concentration dans certaines urines SEP. Cette augmentation de concentration de saposine B dans les urines Sep est peut-être masquée par la concentration basale de cette protéine à l'état ordinaire.
Ainsi les fortes concentrations urinaires de Saposine B semblent être un marqueur de la pathologie SEP, et plus précisément un marqueur d'un stade ou d'une forme de la maladie, de l'activité de la maladie, et est certainement influencée par tout traitement en cours.
La Saposine B dosée seule semble être cependant un marqueur un peu moins discriminant d'une forme ou d'une activité de la maladie que le GM2AP. Notons encore uen fois que deux individus de la population active ont des concentrations élevées de Saposine B
et que ce sont les deux même individus qui présentaient aussi une forte concentration en GM2AP dans leurs urines.
En conclusion, des concentrations urinaires plus élevées de Saposine B sont détectées dans les urines de patients SEP ; une concentration élevée de Saposine B peut être alors un marqueur de la pathologie SEP, et plus précisément d'une forme de la maladie, d'un stade de la maladie, d'une période d'activité, et peut être influencée par tout traitement en cours. Ces concentrations urinaires élevées en GM2AP peut également avoir une valeur prédictive d'un début d'aggravation de la maladie, ou d'une SEP benigne en début d'évolution, etc. Mais d'une façon générale, les fortes concentrations de Saposine B seules semblent être des marqueurs moins discriminants que les fortes concentrations de GM2AP
seules.
Les valeurs absolues des concentrations Saposine B détectées dans les urines sont dépendantes de l'affinité. et de la spécificité de l'anticorps utilisé, mais d'une façon générale, la tendance entre les trois groupes d'individus est conservée quelque soit l'anticorps utilisé.

Exemple 17 : Co-dosage des protéines GM2AP et Saposine B dans les urines.
La Figure 10 reporte les concentrations de GM2AP dosée dans les échantillons d'urine décrites dans la Figure 5 par rapport à la concentration de Saposine B
dosëe dans ces mêmes échantillons et décrite dans la Figure 6. Dans ce graphe sont reportés les échantillons SEP (losanges foncés) et les échantillons OND et 'Healthy' (losanges blancs).
Sur ce graphe, il apparaît clairement que :
- plus la concentration en GM2AP est élevée dans les urines, plus la concentration en Saposine B est élevée. (Nous avons montré que ce n'est pas un cas général avec d'autres protéines et que cela ne traduit pas une perturbation rénale, avec le dosage de la créatinine en parallèle pour chacun des échantillons testés.) ;

- les concentrations élevées de GM2AP et Saposine B sont caractéristiques des échantillons SEP (à l'exception des deux urines de la population active, mentionnées ci-dessus).Ces concentrations élevées conjointes de GM2AP et Saposine B sont des marqueurs de la pathologie SEP, plus précisément d'une fenêtre de la 5 maladie (quadran à droite et en haut du graphe).
En conclusion, cette analyse confirme que des concentrations urinaires élevées de GM2AP (>400 ng /ml) et de Saposine B (>2 g /ml) sont co-détectées dans les urines de patients SEP et peuvent représenter des marqueurs de la pathologie SEP, plus précisément d'une forme de la maladie, d'un stade de la maladie, d'une période lo d'activité, et peuvent être influencée par tout traitement en cours: Il est avantageux de doser les deux protéines en parallèle dans chaque échantillons, et de considérer les deux concentrations.
Dosage de GM2AP et Saposine B dans l'urine de deux patients en cinétique.
15 Patient SEP n 1 - Forme Rémittente Progressive.
Des urines de ce patients ont été prélevées au cours de l'évolution de sa maladie. Le patient a été hospitalisé à JO pour une poussée. Il a subit à J1 un flash de corticoïdes puis a été suivi dans le temps d'un point de vue clinique (le flash a apporté
une amélioration clinique). La figure 11 montre le profil de dosage du GM2AP
et de la 20 Saposine B dans ces urines au cours de l'évolution, et la figure 12 montre le profil du produit des deux concentrations en GM2AP et Saposine B, traduisant une co-détection de concentrations élevées. Les concentrations en GM2AP et Saposine B élevées au moment de la poussée et de l'hospitalisation, diminuent progressivement dans le temps après le flash de corticoïdes jusqu'à 90 jours.
25 Patient SEP n 2 - Forme Progressive.
Des urines de ce patients ont été prélevées au cours de l'évolution de sa maladie. Le patient a été hospitalisé à JO pour une poussée. Il a subit à JI
un flash d'Endoxan puis a été suivi dans le temps d'un point de vue clinique (le flash a apporté
une amélioration clinique et à J60, des signes d'aggravation de la maladie ont été
30 observés). La figure 13 montre le profil de dosage du GM2AP et de la Saposine B dans ces urines au cours de l'évolution, et la figure 14 montre le profil du produit des deux concentrations en GM2AP et Saposine B, traduisant une co-détection de concentrations élevées. Les concentrations en GM2AP et Saposine B élevées au moment de la poussée et de l'hospitalisation; diminuent progressivement dans le temps après le flash d'Endoxan (ou encore appelé cyclophosphamide) jusqu'à 23 jours et semblent augmenter pour devenir élevées à J60, montrant ainsi une parfaite corrélation avec l'évolution des signes cliniques.
Ces résultats confirment que:
- des concentrations fortes de GM2AP et Sapsoine B dans les urines sont des marqueurs de la pathologies SEP, et en particulier la co-détection des fortes concentrations des deux protéines conjointement (traduit par le produit des deux concentrations);
- les fortes concentrations de GM2AP et Saposine B dans les urines sont des marqueurs de l'activité de la maladie (ici pendant la poussée) ou sont des marqueurs influencés par les traitements immuno-suppresseurs comme les corticoïdes ou l'Endoxan qui abaissent les concentrations.
Cet exemple illustre le fait que ces marqueurs peuvent être utilisés entre autres:
- pour réaliser un suivi thérapeutique d'un patient et évaluer le bénéfice thérapeutique d'un traitement pour un patient donné ; ou - de prédire une, aggravation de la maladie, prédire un pic d'activité. etc...
- de décider une (re)prise thérapeutique anticipée sur les signes cliniques Exemple 18 : Corrélation ente la détection des protéines MRP14, GM2AP et Saposine B dans les urines et la gliotoxicité mesurée dans ces urin'es.
Afin de vérifier une corrélation entre la présence de ces protéines seules ou en combinaison dans les urines et la gliotoxicité des urines, ont été dosées en parallèle les concentrations en protéine d'intérêt et là gliotoxicité d'un échantillonage d'urines de patients atteints de sclérose en plaques (SEP), de patients atteints d'autres maladies neurologiques (AMN) et d'individus issus de la population active dit TS . Parmi les patients. SEP, on note des patients avec différentes formes et stades de la maladie, sous traitement ou non, à
différentes activités de la maladie.
Les protéines MRP, GM2AP et Saposine B ont été dosées dans des urines humaines en suivant les protocoles Elisa décrits ci-dessus. Les dosages analysés dans cet exemples sont ceux décrits dans les exemples précédents. Chaque échantillon d'urine analysé en Elisa a été analysé par le test MTT pour mesurer la gliotoxicité de chaque échantillon. La gliotoxicité est exprimée en pourcentage de cellules mortes (estimé par colorimétrie en utilisant les sels de tetrazolium) d'une lignée cellulaire astrocytaire murine (CLTT1.1) après 48 heures d'incubation en présence d'urine centrifugée.
La figure 15 représente la concentration en GM2AP en fonction de la gliotoxicité des urines déterminée par test MTT.
22 urines SEP (losanges gris), 5 urines AMN (losanges noirs) et 9 urines dites TS (losanges noirs) ont été reportés sur le graphe. Ce sont les mêmes urines qui ont été
étudiées dans les exemples 15 et 16. On observe que toutes les urines témoins (AMN et TS) ont des taux en GM2AP faibles (<400 ng/ml) et une gliotoxicité faibles (<15%), à l'exception d'une urine témoin TS (déjà commentée dans l'exemple 15) pour laquelle on observe une forte concentration en GM2AP et une gliotoxicité.
Les urines SEP sont réparties en trois sous-populations:
- urines à faible concentration en GM2AP (<400 ng /ml) et faible gliotoxicité
(<15%), - urines à faible concentration en GM2AP (<400 ng /ml) et gliotoxicité (>15%), soit essentiellement 3 urines, - urines à forte concentration en GM2AP (>400 ng /ml) et forte gliotoxicité
(>15%).
Ces trois sous populations traduisent peut-être des sous populations SEP, c'est-à-dire différentes formes ou stades de la maladie, différentes activités de la maladie, différents bénéfices thérapeutiques, ...
Cependant on peut noter que toutes les urines présentant une forte concentration en GM2AP présentent également une forte gliotoxicité.
En conclusion: on observe une corrélation entre concentration urinaire élevée en GM2AP et gliotoxicité (toutes les urines avec une forte concentration en GM2AP sont gliotoxiques (10/10), et toutes les urines avec une faible concentration en GM2AP ne sont pas gliotoxiques (<15%), à l'exception de 3 urines/1 2 SEP).
Ceci traduit l'implication de. la protéine GM2AP dans le mécanisme de gliotoxicité, seule ou en combinaison, sous sa forme naturelle ou modifiée, mais reconnaissable par un anticorps anti-GM2AP. De plus la co-détection d'une forte concentration en GM2AP dans les urines et d'une forte gliotoxicité corrèle avec une sous population de patients atteints de SEP.
La figure 16 représente la concentration en Saposine B en fonction de la gliotoxicité des urines déterminée par test MTT.
22 urines SEP (losanges gris), 5 urines AMN (losanges noirs) et 9 urines dites TS (losanges gris clair) ont été reportés sur le graphe. Ce sont les mêmes urines qui ont été
étudiées dans les exemples 15 et 16. On observe. que plus les urines sont riches en Saposine B, plus elles sont gliotoxiques. Il y a une corrélation assez nette entre concentration de Saposine B
et gliotoxicité des urines.

En conclusion : on observe une corrélation entre concentration urinaire élevée en Saposine B et gliotoxicité. Ceci traduit l'implication de la protéine Saposine B dans le mécanisme de gliotoxicité, seule ou en combinaison, sous sa forme naturelle ou modifiée mais reconnaissable par l'anticorps anti-saposine B utilisé pour le dosage.

La figure 17 représente le produit des concentrations en GM2AP et Saposine B
en fonction de la gliôtoxicité des urines déterminée par test MTT.
Les 22 urines SEP (losanges gris), 5 urines AMN (losanges noirs) et 9 urines dites TS (losanges gris clair) des exemples 15 et 16 ont été reportés dans la figure 17. La gliotoxicité de ces urines est analysée en fonction du produit des concentrations en GM2AP et Saposine B, c'est-à-dire en fonction de la co-détection des deux protéines dans les urines. On observe très nettement une corrélation entre le produit des deux concentrations GM2AP et Saposine B et la gliotoxicité, bien plus importante qu'en ne considérant qu'une seule protéine.
On observe que 5/5 des urines AMN ont un produit de concentration GM2AP et Saposine B
faible et une gliotoxicité faible ; 8/9 urines TS ont un produit de concentration GM2AP et SaposineB faible et/ou une gliotoxicité faible. Par contre, on distingue essentiellement trois sous-populations d'urines SEP :
- urines à faible concentration en GM2AP.Saposine B et faible gliotoxicité
(<15%), - urines à forte concentration en GM2AP. Saposine B et forte gliotoxicité
(>15%).
Ces deux sous populations traduisent peut-être des sous populations SEP, c'est-à-dire différentes formes ou stades de la mâladie, différentes activités de la maladie, différents bénéfices thérapeutiques, .... Cependant il est très important de noter que toutes les urines présentant une forte concentration en GM2AP et Saposine B, c'est-à-dire ayant conjointement une forte concentration en GM2AP et Saposine B, présentent également une forte gliotoxicité. Les deux sous populations de patients SEP
sont d'autant plus marquées et nettes que l'on considère conjointement les trois 1o marqueurs : gliotoxicité, concentration élevée en GM2AP et concentration élevée en Saposine B. Ceci est confirmé à la figure 18.
En conclusion : on observe une corrélation entre concentration urinaire élevée de GM2AP et Saposine B et Gliotoxicité. Toutes les urines avec une forte concentration en GM2AP et Saposine B sont gliotoxiques, et toutes les urines avec une faible concentration en GM2AP et Saposine B ne sont pas gliotoxiques (<15%), à
l'exception de 2 urines/22 SEP. Ceci traduit l'implication des deux protéines et Saposine conjointement ou en combinaison dans le mécanisme de gliotoxicité, sous leur forme naturelle ou modifiée mais reconnaissable par les anticorps anti-GM2AP et anti-saposine B utilisés pour le dosage. De plus la co-détection d'une forte concentration urinaire en GM2AP et Saposine B et d'une forte gliotoxicité
corrèle avec une sous population de patients atteints de SEP (stade, forme, activité, traitement de la maladie ?), par rapport à une autre sous population. Ces trois marqueurs considérés conjointement permettent de discriminer entre deux sous populations de patients SEP.
Evolution de la gliotoxicité et des concentrations en GM2AP et Saposine B en fonction de l'évolution de la maladie de deux patients après et pendant traitement.
La corrélation entre gliotoxicité, forte concentration en GM2AP ET
Saposine dans les urines et pathologie SEP a également été confirmée en mesurant ces trois paramètres dans l'urine de deux patients au cours de l'évolution de leur nialadie.
Patient n 1 : SEP forme rémittente-progressive, hospitalisé à JO pour une 10 poussée et ayant reçu un flash de corticoïde à JI. Après le flash, il a montré une amélioration clinique jusqu'à J90 - (cf. figures 11,12), Patient n 2 : SEP forme progressive, hospitalisé à JO pour une poussée et ayant reçu un flash d'Endoxan (encore appelé cyclophosphamide) à J1. A J60, il présente de nouveaux des signes cliniques d'aggravation de sa maladie - (cf.
figures 13,14). .
5 Pour les deux patients, il a été montré :
- une corrélation entre la gliotoxicité urinaire et l'évolution clinique de la maladie (lorsque les signes cliniques sont sévères, la gliotoxicité est élevée ; lorsque les signes cliniques diminuent suite au traitement, la gliotoxicité diminue et devient stationnaire ; lorsque les signes d'aggravation apparaissent après le traitement, la 10 gliotoxicité semble augmenter de nouveau), - une corrélation entre le taux de gliotoxicité dans les urines de patients et les concentrations de GM2AP et Saposine B, et - une corrélation entre les concentrations élevées de GM2AP et Saposine B et l'évolution clinique de la maladie.
15 En conclusion : le dosage des protéines GM2AP ET Saposine B dans les urines est un bon marqueur discriminatif d'une sous population de la SEP
(stade, forme, activité, traitement de la maladie). Les protéines GM2AP et/ou Saposine B sont impliquées dans le mécanisme de gliotoxicité, seules ou en combinaison, sous leur forme naturelle ou sous une forme reconnaissable par les anticorps polyclonaux utilisés 20 pour leur dosage. Comme les protéines GM2AP et Saposine sont co-détectées en forte concentration dans les. urines gliotoxiques, il est possible que ces deux protéines agissent en combinaison pour induire la gliotoxicité.

Exemple 19 : Analyse immunohistochimique de l'expression des protéines 25 GM2A, SAPB, MRP14 et MRP8 dans un système de culture producteur de gliotoxine in vitro (cultures de monocytes), ainsi que dans le tissu cérébral normal et pathologique de SEP et de témoins.
Protocole : Des cultures de monocytes d'un patient atteint de SEP et d'un témoin sain ont été réalisées en parallèle, selon le protocole présent décrit brièvement.
30 A partir de sang périphérique de ces deux volontaires prélevé sur ACD, les PBMC
(Peripheral Blood Mononuclear Cel1s) sont isolés sur Ficoll en utilisant la technique connue de l'homme de l'art. Les cellules récupérés (au niveau de l'anneau) sont lavées deux fois en milieu RPMI. Les cellules sont alors énumérées sur Kovas-slide et sont ensemencées en flacon primaire de 25 cmZ ou sur lame Labteck (8 cupules) (en permanox) en milieu RPMI supplémenté avec 15% de sérum AB humain à JO. Les cellules sont cultivées sur des lames alvéolées de type Labtek afin de disposer d'un support direct pour l'analyse des monocytes qui adhèrent au support et se différencient ultérieurement en macrophages. Pour les lames, 2.106 cellules sont ainsi ensemencées à raison de 0,25 106 cellules/puits. Pour les flacons, 4.106 cellules sont ensemencées à raison de 0,25 106 cellules/puits.
A J1, les cellules en suspension sont récupérées et les puits des Labteck ou les flacons sont lavés deux fois en RPMI (au préalable chauffé à 37 C) avant de rajouter du milieu RPMI
supplémenté avec 5%
de sérum AB humain. A J 1, J3, J6, J9, J 12 ou 14, J 15 le milieu de culture est changé ; les surnageants sont prélevés et les cellules fixées sur lames en utilisant les techniques connues de l'homme de l'art. A chaque changement de milieu, au moins deux lames ont été
fixées en paraformaldéhyde et conservées pour l'analyse immunohistochimique.
Composition du milieu : RPMI (500 ml) avec 15m1 de glutamate 200 mM, 5 ml de pyruvate de sodium 100 M, 5 ml d'acides aminés non essentiels (100x), des antibiotiques penicilline et streptomycine 100 000 U/ l et des anticorps anti-interferon humains à 100 U/ l.
Résultats : Quatre cultures de monocytes in vitro ont été ainsi étudiées en cinétique : deux cultures de monocytes issus de sang d'individus contrôles et deux cultures de monocytes issus de patients SEP. A différents temps de la culturé (JO, JI, J3, J6, J9, J12), les surnageants correspondants ont été également récupérés. Une fois la cinétique complétée, les lames correspondant aux différents jours de cultures ont été incubées en présence d'anticorps polyclonaux anti-GM2A, SAP-B, MRP-8 et MRP14. La gliotoxicité de chaque surnagea nt ainsi récupéré a été estimé par test MTT. La concentration en protéine GM2AP, MRP14 et Saposine B a également été déterminée dans chaque surnageant par protocole Elisa comme décrit dans les exemples 13 et 14.
Les résultats d'immunofluorescence sur cellules fixées sont résumés ci-dessous ;
on peut noter :
- une absence d'expression de MRP8 à tous les stades des 2 cultures - une expression nette de MRP-14 dans la période entre J9 et J15, retrouvée dans les deux cultures, quoique plus forte dans la culture SEP.
Cette expression semble corréler une étape de différenciation macrophagique.
- une très faible expression (faible intensité et faible nombre de cellules) est observée en début de culture dans la culture témoin et correspond vraisemblablement à la présence physiologique de GM2A dans les lysosomes macrophagiques.
- Dans la culture SEP, une expression beaucoup plus nette de GM2A (plus forte intensité et nombre de cellules plus important) est observée, avec un marquage t0 cytoplasmique relativement homogène entre J3 et J6, disparaît à J9 et est à
nouveau notée à J 14-J 15 avec un marquage intense et localisé à la périphérie cytoplasmique, dessinant le contour interne de la membrane plasmique. Ces observations ne sont pas retrouvées dans l'ensemble des lames témoins.
L'analyse avec le anticorps anti-SAP-B n'a pas permis d'obtenir un marquage immuno-histochimique interprétable.
Dans les cultures de monocytes SEP déjà effectuées, 3/3 ont présenté un pic de gliotoxicité à J9 et 2/3 un pic plus faible à J6. Aucun pic n'étant détecté dans les cultures de monocytes de 2/2 témoins non-SEP analysés en parallèle. De même, le dosage des protéines MRP 14, GM2AP et Saposine B dans le surnageant des cultures cellulaires au cours de la cinétique a montré que les protéines SapB et GM2AP
sont détectées par Elisa dans les surnageants des monocytes SEP et non dans ceux des monocytes témoins, aux jours J6 et surtout J9 de la culture ; les protéines ne sont pas détectées au-delà de cette cinétique. Notons que les anticorps utilisés pour le dosage peuvent reconnaître les formes physiologiques des protéines, mais également des formes complexées et/ou modifiées.
On constate donc que la période J6-J9 pendant laquelle on observe une gliotoxicité la plus importante dans le surnageant, est couverte par la période J3-J15 pendant laquelle on observe une production moins différenciée du témoin négatif de GM2A dans les cellules avec des fluctuations quantitatives et qualitatives de son =0 expression cellulaire (quantité d'expression et localisation cellulaire).

Exemple 20: Technique d'immunohistologie sur coupes de cerveaux en paraffine.
Les coupes histologiques préparées en paraffine sont déparaffinées en xylène et alcool avant de subir un prétraitement qui a pour but de démasquer les antigènes ; ce prétraitement peut correspondre à(i) deux fois 5 minutes sous micro-onde (750W) en présence d'un tampon citrate de sodium, acide citrique, (ii) un traitement à
l'acide par incubation 15 minutes dans une solution d'acide périodique 1% ou par incubation 5 minutes dans une solution d'acide formique 99%. Les peroxydases endogènes sont ensuite bloquées par incubation des lames 30 minutes en eau oxygénée 1% puis lavage extensif en eau pendant 15 minutes. Le bruit de fond est bloqué en incubant les lames 30 minutes en présence de PBS
Triton 0.03%, 10% sérum d'âne (pour les anticorps polyclonaux) ou 10% sérum de chèvre (pour les anticorps monoclonaux). Un marquage avec l'anticorps primaire est réalisé en appliquant 100 à 200 l de solution d'anticorps primaire par lame (0.5 à 5 g /mi selon le titre) dans du PBS Triton 0.03% puis en incubant 2 heures à température ambiante. Les lames sont ensuite rincées 3 fois en PBS-Triton pendant 10 minutes. Un marquage anticorps secondaire est réalisé en utilisant des anticorps biotinylés capàbles de se fixer spécifiquement aux anticorps primaires, par exemples des anti-IgG de lapin. ou anti-IgG de souris dilués dans du PBS-Triton 0.03%. les lames sont lavées et incubées dans une solution pendant 2 heures (2 l complexe streptavidine-biotine-peroxides, 1600 l PBS-Triton 0.03%). Les lames sont de nouveau lavées avant d'être révélées à l'abri de la lumière dans le tampon A
puis rincées à
l'eau avant observation microscopique. Tampon A pour 5 lames : 25 ml Tris0.05M
pH 7.6, 2.5 ml Inzidazole 1M, 15 ml eau stérile, 2 ml DAB 5 mg/ml, 5 ml Nickel d'ammonium 10%, 30 l HZ02 1 %.
Les mêmes anticorps ont été utilisés pour une étude immunohistochimique, selon la technique décrite brièvement ci-dessous, sur lames paraffinées obtenues par coupe au microtome de cerveaux prélevés post-mortem de SEP et de témoins décédés de pathologies non-neurologiques.
Les résultats de l'analyse sont résumés ci-dessous :
Il n'y a pas de marquage des cerveaux non-SEP et SEP dans là substance grise et la substance blanche normale (non lésée) avec les différents anticorps anti-MRP8, MRP14, GM2A. Une réactivité non spécifique n'a pas permis d'interpréter les résultats avec l'anticorps anti-saposine B dans cette application immunohistochimique.
Par contre on note, dans les zones de plaques des cerveaux SEP
- une réactivité anti-MRP14 dans les cellules macrophagiques et microgliales, ayant une distribution relativement homogène sur toute l'étendue des zones de démyélinisation (plaques), - une plus faible (moins fréquente) réactivité anti-MRP8 liée essentiellement aux infiltrats lymphoïdes périvasculaires - une nette réactivité anti-GM2A dans les macrophages et microgliocytes to des zones de plaques, avec une densité particulière dans les zones constituant le mur glial en limite périphérique de plaque. Un marquage de quelques astrocytes a aussi été retrouvé dans les zones de démyélinisation.
Ces différentes observations montrent qu'il existe une hyperexpression particulière des protéines MRP-14 et GM2A dans les çultures de monocytes de SEP
produisant une activité gliotoxique dans leur sumageant, ainsi que dans les zones définissant des plaques de démyélinisation dans les cerveaux de SEP. Elles témoignent donc de la réalité de la coïncidence entre leur co-expression anormale, la production d'activité gliotoxique et les lésions de démyélinisation.
De plus, leur production anorrmale dans le contexte de la SEP, dans les cellules macrophagiques sanguines ainsi que dans celles du cerveau, indique qu'il est fondé, de réaliser leur dosage dans les fluides biologiques pour corréler leur quantité
avec l'activité lésionnelle et inflammatoire de la SEP.

Exemple 21 : Mesure de l'activité des cellules T par prolifération des cellules T (Sredni et al., 1981).
Les cellules T sont lavées deux fois en milieu de culture pour éliminer toute trace d'IL2 présente dans le milieu initial de culture. Des lymphocytes B (EBV-LCL) ou des monocytes/macrophages pris comme cellules présentatrices de l'antigène, sont irradiées à 10000 rads, lavées deux fois avec du niilieu de culture (RPMI). 2.10' cellules T(2:W cellules /ml) et 2.10' cellules B autologues irradiées (2.10' cellules /ml) sont incubées ensemble en présence d'une gamme de concentration croissante de l'antigène sous un volume final de 200 l dans des micropuits. Après 48 heures de culture à 37 C, 1 Ci de 3H- thymidine dans 50 l de milieu RPMI est ajouté
dans chaque puits. Les cellules T, seules à se diviser, incorporent la thymidine tritiée dans l'ADN. Après 18 heures de culture, les cellules de chaque micropuits sont récoltées sur des pastilles de laine de verre par aspiration. Après lyse osmotique des cellules, la radioactivité incorporée dans l'ADN est absorbée sur les pastilles (cell Harvester 530, Inotech). Chaque pastille séchée est placée dans un tube plastique qui contient 2 ml de scintillant ; la radioactivité b adsorbée sur chacune des pastilles est quantifiée dans un compteur bêta à scintillation liquide (LKB Rackbeta 1217). Les résultats sont exprimés lo comme moyenne arithmétique de cpm/culture ('coups par minute').

Exemple 22 : Protocole de détection de l'association entre les peptides et les molécules d'histocompatibilité (approche APC transformées avec un peptide se fixant au CMH 1).
1) Matériel Les sources de molécules d'histocompatibilité sont actuellement de deux types principaux : les cellules mutantes et les molécules d'histocompatibilité
purifiées.
La cellule mutante utilisée est la cellule humaine T2 qui et un variant de la lignée TI produite par fusion du lymphome T CEM et du lymphome B 721.174 (Salter and Cresswell Embo J 1986, 5.: 943-949). Cette cellule qui est dépourvue de transporteurs de peptides contient des chaînes lourdes de molécules de classe I libres de peptides qui vont pouvoir accepter de peptides exogènes.
Des molécules d'histocompatibilité de classe I purifiées par chromatographie d'affinité à partir de lignées de cellules B humaines transformées par I'EBV peuvent être également utilisées. Dans ce cas les peptides endogènes doivent être éliminés par un traitement avec de l'uréel.5 M et de la soude 12.5 mM (pH
11.7) pendant 1 heure à 4 C,suivi de leur élimination par une colonne de désalage (PDLO, Pharmacia). Les molécules d'histocompatibilité sont immédiatement remises en présence des peptides à tester dans un tampon PBS avec 0.05% Tween 20, 2 mM
3o EDTA, 0.1% NP40 et6mM CHAPS, en présence de 2 giml B2m pour faciliter la réassociation (Gnjatic et al., Eur J Immünol 1995 25 : 1638-1642).

Les peptides testés ont en général 8 à 10 résidus, parfois 11 ou 12. Ils ont été synthétisés par Néosystems (Strasbourg), ou par Chiron mimotopes (Victoria, Australie). Ils sont utilisés à des concentrations variant de 100 M à0.1 nM.
2) Protocole de l'assemblage (Connan et al., Eur J Immunol 1994, 24 :
777 ; Couillin et al. Eur J Immunol 1995, 25 : 728-732).
Des aliquotes de 8.105 cellules dans un volume de 64 l, répartis dans des tubes microfuge Eppendorf, sont mis en présence d'un tampon de lyse contenant mM PBS, pH 7.5 1% NP40, des inhibiteurs de protéases (1 mM PMSF, 100 . M
iodoacétamide, 2 g /ml aprotinine, 10 M leupeptine, 10 M pepstatine et 10 g/ml to inhibiteur de trypsine). La lyse se fait en présence des peptides à tester pendant 30 minutes ou 1 heure à 37 C. Après élimination du matériel non solubilisé par une centrifugation à 15 000 tours /minute à 4 C, le surnageant et additionné de 140 l de PBS contenant 0.05% de Tween 20, 3 mM d'azide de sodium, 1 mM PMSF et 10 mg /ml d'albumine bovine. Chaque échantillon est incubé pendant 20 heures à 4 C
t5 dans 2 puits d'une plaque à microtitration de type Nunc,Maxisorb, préalablement recouverts d'un anticorps monoclonal (10 g /ml en PBS) qui reconnaît les molécules d'histocompatibilité ayant une(des) conformation(s) conforme(s) pour la présentation de peptides et semblable(s) à celle(s) présente(s) à la surface des cellules.
La plaque recouverte d'anticorps est préalablement saturée par de l'albumine bovine à 10 mg /ml 20 dans du PBS-Tween avant la mise de l'échantillon. Le second anticorps qui permet la détection de l'assemblage des molécules d'histocompatibilité est dirigé contre la B2m.
Il est couplé soit à la biotine (NHS-LC biotin, Pierce) soit à la phosphatase alcaline (P-552, Sigma) et est incubé à 2 g /ml pendant une heure à 37 C. Dans le cas de l'emploi de la biotine, une incubation de 45 minutes à 20-25 C avec de la streptavidine couplée 25 à la phosphatase alcaline (E-2636, Sigma) est réalisée. L'activité de la phosphatase alcaline est mesurée en utilisant comme substrat le 4-méthyl-umbelliféryl-phosphate (M-8883, Sigma) à 100 M dans de la diéthanolamine 50 mM, pH 9.5 avec du MgC12 1 mM. La lecture est faite à 340/460 nm à l'aide d'un cytofluorimètre.
3) Stabilité des complexes HLA/peptides :
30 La stabilité des complexes précités a été étudiée car elle conditionne la bonne présentation de l'antigène et l'induction de la réponse T. A cet effet, on a utilisé
soit du HLA purifié, soit le lysat de la cellule T2. Avec le HLA purifié, on a éliminé les peptides endogènes (comme décrit en 2) puis on l'a mis en présence du peptide à tester en tube Eppendorf à 37 C, pendant des temps variables de quelques minutes à
plusieurs jours. La phase suivante d'incubation sur plaque de 96 puits (comme décrit en 2) avec l'anticorps anti-HLA se fait pendant une heure à 37 C. La révélation est effectuée de manière classique. Avec le lysat de la cellule T2, toutes les incubations sont également faites à 37 C, après ajout de tous les inhibiteurs de protéases.

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34 Use of natural protein (s) and / or peptide (s) and / or protein (s) recombinant (s) and / or synthetic polypeptide (s) corresponding to proteins of interest identified in the present invention.
The present invention relates to biological material for the preparation of pharmaceutical compositions intended for the treatment of mammals suffering from self disease immune, preferably multiple sclerosis, comprising:
(i) either at least one natural protein and / or a recombinant protein and / or a synthetic polypeptide chosen from proteins whose sequences in amino acids are referenced SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 and 24, and the peptide sequences or the fra.gments said sequences belonging to the same family of proteins chosen parrni the perlecan, the precursor of plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, to 7, SEQ ID N 10_ to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29), and the peptide sequences who have at least 70% identity, preferably at least 80% identity and advantageously at least 98 of identity with any of the sequences peptide SEQ ID N 1 to 29, alone or in combination, (ii) either at least one natural and / or synthetic fragment of these proteins of interest, for example an immunogenic fragment capable of inducing a response inunune against a target polypeptide, (iii) either at least one mimotope peptide defined from the sequences of reference SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 and 24 and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, at 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29), and the peptide sequences who have at least 70% identity, preferably at least 80% identity and advantageously at least 98 of identity with any of the sequences peptide SEQ ID N 1 to 29, or a combination of mimotopes, capable of inducing immune response against the target polypeptide, (iv) at least any protein or peptide capable of regulating in vivo the transcription and / or translation of the proteins of interest (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 and 24) and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein of connection to 5 retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70 % identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98 identity with one any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29. The administration of these protein 10 and / or peptides alone or in combination can restore the concentration of a protein of interest in the body.
The immune response directed against a specific antigen can be divided into two distinct categories, one involving antibodies (immune response Of type humoral), the other cytotoxic effector cells such as by example macrophages, 15 cytotoxic lymphocytes (CTL) or killer cells (NK) as well as T cells helper, in particular CD4 + T lymphocytes (immune response of the type cellular). More in particular, the two types of response are distinguished in that the antibodies recognize antigens in their three-dimensional form whereas T lymphocytes, for example, recognize peptide portions of said antigens, associated with encoded glycoproteins 20 by the genes of the major histocompatibility complex (MHC), in particular the genes major type I histocompatibility complex that are expressed so ubiquitous to the cell surface or genes of the major histocompatibility complex of type II which are expressed specifically on the surface of cells involved in presentation of antigens (APC). 1) According to a first aspect, the type immune response cell is 25 characterized in that - CD4 + type T cells (helper T cells), next to a well-known activation phenomenon (for a review see Alberola-lia 1997, Annu Rev Immunol 15, 125-154) produce cytokines which in turn induce proliferation APC cells capable of producing said cytokines, differentiation cell of B cells capable of producing antibodies specific to the antigen, and the 30 stimulation of cytotoxic T lymphocytes (CTL). 2) According to a second aspect of the cellular immune response, cells cytotoxic effector such as for example CD8 + lymphocytes (CTL) are activated a) after interaction with antigenic peptides attached to and presented by the glycoproteins worn by ubiquitous cells and encoded by genes belonging to the CMHI system, and b) possibly by cytokines produced by CD4 +.
The present invention relates to the administration of a protein or a peptide.
derived from the proteins of interest (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 and 24) or from their (s) fragment (s), and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein of connection to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ ID N 25 to 29), and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, alone or in combination combination, for prophylaxis and / or therapy of an autoimmune disease, such as multiple sclerosis.
These proteins and peptides administered are characterized in that they must to have lost their toxic activity, for example their gliotoxic activity, or having lost their ability to attach to a ligand, and can significantly induce an immune response mediated by the T cells and / or antibodies to this protein are used.
Such proteins are said to be 'modified', however their immunogenicity is retained. Such molecules modified immunogens are obtained by a number of treatments conventional, by example chemical or heat denaturation, truncation or mutation with deletion, insertion or location of amino acids. An example of truncation consists of the truncation amino acids at the carboxy-terminal end of up to 5-30 amino acids. The modified molecules can be obtained by synthetic techniques or and recombinant or by chemical or physical treatment of molecules natural.
The proteins of natural and / or recombinant interest identified in the present invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17 and 25), and the sequences peptide or fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen among perlecan, the precursor of the plasma binding protein retinol, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B (for example SEQ
ID N 1, SEQ
ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 'to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29), and the peptide sequences which have at least 70% identity in preference to minus 80%
identity and advantageously at least 98 identity with any of the sequences SEQ ID N 1 to 29 peptides, or their fragment (s), are used in vaccination prophylactic and therapeutic against autoimmune diseases, preferably MS. A
vaccine includes an effective immunogenic amount of the immunogenic protein in association with a pharmaceutically acceptable vehicle and optionally an adjuvant and / or a diluent. Pharmaceutical vehicles, adjuvants and diluents acceptable are well known to those skilled in the art. We can cite by reference the Remington's Pharmaceutical Sciences. The use of vaccine compositions is particularly advantageous in combination with early diagnosis of the disease. The immunogenic protein is used in the preparation of medicament for vaccination prophylactic or therapeutic. Proteins of interest can be eliminated from the body without inducing unwanted side effects. Identification of such proteins or peptides vaccine is carried out as follows: the candidate molecules modified as described previously (natural, recombinant proteins, peptides) are analyzed in a test functional for check that they have lost their toxicity, for example their activity gliotoxic using the test called bioassay, and to check their immunogenicity (i) by performing an in vitro test of proliferation of CD4 + T lymphocytes specific for the administered antigen (T
cell assay) or a in vitro cytotoxicity test for antigen-specific CD8 + lymphocytes administered and (ii) by measuring, among other things, the level of circulating antibodies directed against natural protein. These modified forms are used to immunize men through procedures standard with suitable adjuvants.
The vaccines prepared are injectable, that is to say in liquid solution or in suspension. Optionally, the preparation can also be emulsified. The molecule antigenic can be mixed with excipients which are pharmaceutically acceptable and compatible with the active ingredient. Examples of favorable excipients are water, a saline, the dextrose, glycerol, ethanol or equivalents and their combinations. If desired, the vaccine may contain minor amounts of auxiliary substances such as wetting or emulsifying agents, agents who buffer pH or adjuvants like aluminum hydroxide, dipeptide muramyl or their variations. In the case of peptides, their coupling to a larger molecule (KLH, tetanus toxin) sometimes increases immunity. The vaccines are administered conventionally by injection, for example subcutaneous or intramuscular.
Of additional favorable formulations with other modes of administration include suppositories and sometimes oral formulations.
In general the concentration of the polynucleotide in the composition used for in vivo administration is from 0.lg / ml up to 20 mg / ml. The polynucleotide can be homolog or heterolog of the target cell in which it is going to be introduced.
The present invention also relates to the use of vaccines including nucleic acid molecules that code for proteins of interest or peptides immunogens or their fragment (s), not active, corresponding to proteins of interest (SEQ ID
N 2, 4, 8, 9, 17 and 24) and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor of the plasma retinol binding protein, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N
10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences who have at least 70% identity, preferably at least 80% identity, and advantageously at least 98% identity with any of the sequences peptides SEQ ID N 1 to 29. Nucleic acid vaccines, in particular the DNA vaccines, are usually given in combination with a vehicle pharmaceutically acceptable for intramuscular injection.
From the amino acid sequence of the proteins of interest described (SEQ
ID N 2, 4, 8, 9, 17 and 24) and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor of the plasma retinol binding protein, GM2 activator protein, of the calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ
ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70%
identity preferably at least 80% identity and preferably at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, of peptides or fragments corresponding to all or part of the sequence primary of these proteins can be synthesized by conventional synthesis methods peptide or obtained by genetic recombination.
Recombinant proteins corresponding to the proteins of interest, produced in a prokaryotic or eukaryotic cell system, are available nearby from different teams and are described in the literature. They can also be lo produced by a person skilled in the art from knowledge from sequences of genes correspondents described in the literature and taking into account the degeneration of genetic code. All protein sequences identified herein invention are thus likely to be obtained by genetic recombination. The genes are cloned into suitable vectors. Different vectors are used for transform prokaryotic cells (e.g. E. coli) and eukaryotic cells (e.g.
example COS, CHO cells and Simliki cells). Recombinant proteins corresponding to proteins of interest or to fragments of proteins of interest can to be so produced in prokaryotic and / or encaryotic cell systems. In the cells E. coli, recombinant proteins are produced with a poly- tail histidine. The insoluble protein fraction is dissolved in 8M urea.
The enrichment of product was made on nickel chelated resin (Qiagen). Column a been washed with decreasing concentrations of urea. The elution was made with imidazole in the absence of urea. The complete sequence of proteins of interest can be also cloned into a suitable plasmid and then transferred to the vaccinia virus to get a recombinant virus.
Use of ligands capable of binding to proteins of interest identified in the present invention.
The present invention relates to biological material for the preparation of pharmaceutical compositions intended for the treatment of affected mammals of autoimmune disease, preferably multiple sclerosis, comprising:
(i) either at least one ligand capable of binding to proteins and / or fragments of the proteins chosen from the target proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 14 and 24 and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of plasma protein binding to retinol, GM2 activating protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ IDN 3, SEQ IDN 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 5 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, the ligand being capable or not to inhibit protein activity, (ii) either at least one polyclonal or monoclonal antibody capable of binding to at 10 minus a protein or a fragment thereof chosen from proteins targets SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 14 and 24 and the peptide sequences or fragments thereof sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of protein retinol binding plasma, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ IDN 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ IDN 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and preferably at minus 98%
of identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29.
This antibody may or may not be neutralizing, i.e. capable or not of inhibiting protein activity of interest. The ligand can be chosen from any molecule or fragment molecule capable of 20 attach to target proteins, for example receptors for this protein, cofactors of these proteins, polyclonal or monoclonal antibodies capable of binding to protein or whatever -fragment of these proteins.
These antibodies are very useful in particular for enabling the implementation of therapeutic compositions because they lead for example to reactions immune, directed 25 specifically against immunodominant epitopes or against antigens with great variability. The patient is administered either soluble antibodies neutralizers to inhibit their function, either specific soluble antibodies to eliminate the peptide by formation of-immune complexes. The invention describes the use of antibodies capable of specifically recognize at least one protein described in the present invention for the treatment and / or for follow-up therapy of degenerative and / or neurological and / or autoimmune disease, preferably the multiple sclerosis. These antibodies are polyclonal and preferably monoclonals. Of preferably these antibodies recognize the active site of the protein and fixing, inhibits the protein function. The ability of the antibody to specifically bind to the protein is analyzed by conventional techniques described, such as for example by ELISA tests or Western blot using the natural immunogenic protein or peptide or synthetic.
The titer of the antibody is determined. The ability of the antibody to neutralize the function of the protein can be analyzed by different means, for example by determining the decrease of the activity of the immunogenic protein or peptide in the presence of the antibody, preferably determining the decrease in gliotoxic activity using the test in vitro bioassay.
For example, monoclonal antibodies against the protein target or part of this protein is produced by techniques used to produce antibodies against antigens of surface Mice or rabbits are immunized (i) with either the protein natural or recombinant of interest, (ii) either with any immunogenic peptide of this protein of interest, (iii) either with murine cells which express the protein or the peptide of interest and the CMHII molecules. The Balb / c murine line is the most frequently used. The immunogen is also a peptide chosen from peptides defined from the primary sequences of the proteins of interest. Through example, the following immunogen was prepared: peptides SEQ ID N s 58, 59, from the sequence of the activator protein of GM2, the peptides SEQ ID N
s 61, 62 derived from the saposin B sequence and the peptides SEQ ID N s 63, 64, 65 from of calgranulin B were coupled to hemocyanin from Lymphet Keyhole, in abbreviated peptide-KLH, as a support for its use in immunization, or coupled with human serum albumin, abbreviated peptide-HSA. Animals were injected with peptide-KLH or peptide-HSA using of Freund's complete adjuvant (IFA). Serums and culture supernatants hybridoma from animals immunized with each peptide were analyzed for the presence of anti-protein antibodies by an ELISA test using the initial proteins. The spleen cells of these mice therefore summer recovered and fused with myeloma cells. Polyethylene glycol (PEG) is the most frequently used fusion agent. Hybridomas producing the the most specific and sensitive antibodies are selected. The antibody monoclonals can be produced in vitro by cell culture of hybridomas produced or by recovery of murine ascites fluid after intraperitoneal injection hybridomas in the mouse. Whatever the mode of production by supernatant or ascites, it then imports from purify the monoclonal antibody. The purification methods used are basically the filtration on ion exchange gel or by exclusion chromatography, or even immunoprecipitation. For each antibody it is necessary to choose the method which will get the best performance. A sufficient number of anti-protein antibodies are screened in functional tests to identify the best performing antibodies for fix the protein of interest and / or to block the activity of the protein of interest. The monoclonal antibodies selected are humanized by standard CDR grafting methods (protocol carried out by many companies, as a service). These humanized antibodies can be clinically tested in the patient. The effectiveness of these antibodies can be followed by clinical parameters.
In vitro production of antibodies, antibody fragments or derivatives antibodies, such as chimeric antibodies, produced by genetic engineering, in cells eukaryotes has been described (EP 120 694 or EP 125 023) and is also applicable to the current invention.
Use of inhibitory molecules for proteins of interest identified in the present invention.
The present invention relates to biological material for the preparation of pharmaceutical compositions intended for the treatment of mammals suffering from sickness degenerative and / or neurological and / or autoimmune, preferably sclerosis in plates, said composition comprising (i) either at least one molecule inhibiting the function of minus one protein selected from the proteins identified herein invention (SEQ ID
N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the peptide sequences or fragments thereof sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor of the plasma retinol binding protein, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N
10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences who present at less 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98 % identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, for example inhibitor of gliotoxic activity, (ii) at least one molecule expression regulator at least one protein chosen from the proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and them peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein of connection to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70 % identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, for example for block the transcription or translation, (iii) either at least one regulatory molecule at metabolism minus one protein chosen from the proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and the sequences peptides or the fragments of said sequences belonging to the same family protein chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein of binding to retinol, activator protein of GM2, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID
N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ
ID N 25 to 29) and the peptide sequences which exhibit at least 70% identity of preference to at least 80% identity and advantageously at least 98% identity with one any peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, (iv) or at least one molecule regulator the expression and / or metabolism of a ligand of at least one protein chosen from proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, at 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the sequences peptides which have at least 70% identity, preferably at least 80 % identity and advantageously at least 98% identity with any of the sequences SEQ ID N 1 to SEQ ID N 8 and SEQ ID N 10 to 29 peptides and the sequences peptide who present to less 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98 % identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, for example a receiver or a cofactor. You might think that these proteins in the body human can be inhibited without side effects.
Another important aspect of the invention relates to the identification and evaluation therapeutic efficacy of natural and / or synthetic substances (i) able to block and / or inhibit the activity of the proteins of interest of the invention and / or their fragment: SEQ ID
N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or fragments thereof sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor of the plasma retinol binding protein, GM2 activator protein, calgranulin B
and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 at 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which present to less 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98 % identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29 and / or (ii) able to inhibit their metabolism such as metabolism inhibitors correspondent, the inhibitors of enzymes activated by coenzymes, (iii) capable of regulating the expression of proteins of interest (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the plasma retinol binding protein precursor, protein activator of GM2, of calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 at 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the sequences peptide who have at least 70% identity, preferably at least 80% identity and advantageously at least 98% identity with any of the sequences peptide SEQ ID N 1 to 29, (iv) capable of inhibiting the function and / or expression of ligands proteins of interest SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the plasma retinol binding protein precursor, protein activator of GM2, of calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 at 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the sequences peptides which have at least 70% identity, preferably at least 80 % identity and advantageously at least 98% identity with any of the sequences peptide SEQ ID N 1 to 29, such as for example receivers. These substances can be used in prophylactic and therapeutic treatments of the disease.
The invention relates to Also methods for treating and preventing an autoimmune disease, for example example the MS, by administering effective amounts of these substances. The substances can be proteins,. antibodies, small synthetic molecules or natural, derivatives of proteins identified in this invention, lipids, glycolipids etc ... The little ones molecules can be screened and identified in large quantities using bookstores 10 chemical combinatorics. The invention also relates to compositions pharmaceutical including these substances in association with physiological carriers acceptable, and methods for the preparation of drugs for use in therapy or prevention of autoimmune diseases including MS using these substances.
To identify low molecular weight inhibitory molecules like of 15 candidate drugs for degenerative and / or neurological diseases and / or autoimmune, such as multiple sclerosis, the tests and protocols described are used previously and in the patent applications referenced above, using samples taken from untreated or treated patient, untreated or treated animal model, or model fabrics untreated or treated animal. This aspect of the invention also includes a process for 20 identify substances capable of blocking or inhibiting the activity of proteins of interest, including the introduction of these substances in an in vitro test or in a animal model in vivo. The selected molecules are tested at different concentrations.
These inhibitors are also tested in toxicity and pharmacokinetics tests to find out if they can represent valid candidate drugs. The substances tested for inhibition or 25 blocking protein activities or protein expression in these procedures screening can be proteins, antibodies, antibody fragments, small synthetic or natural molecules, derivatives of proteins of interest, etc. The little molecules can be screened and identified in large quantities using bookstores chemical combinatorics.
By way of example, the following may be mentioned as inhibiting substances:

The protein inhibitors identified in the present invention (SEQ ID N

2, 4, 8, 9, 17, 24), the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of protein retinol binding plasma, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 at 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity. and advantageously at minus 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, and the fragment protein inhibitors. These inhibitors can be included in a prophylactic and therapeutic composition, especially for treatment sclerosis in plates. For example, lycorine, an alkaloid extracted from Amaryllidaceae (ex:
Crinum Asiaticum) is used in vitro at a concentration between 0.1 and 0.5 gg / ml and in vivo at a concentration between 0.1 and 1 mg / kg / day. For example, Rolipram (last name commercial) and Ibudilast (trade name), which are two molecules of the same family of phosphodiesterase 4 (PDE4) inhibitors are used in vitro at concentrations between 1 and 10 M / 1 and in vivo at concentrations between around 10 mg / kg / day.
From the amino acid sequences of the proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and peptide sequences or fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the protein plasma binding to retinol, GM2 activating protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) it is obvious that the sequences can be deduced nucleotide DNA
and RNA (SEQ ID N 30, 31, 42, 53) corresponding to the proteins of interest and the sequences coding for proteins of the family of these proteins of interest (by example SEQ ID N 32 to 41, SEQ ID N 43 to 52, SEQ ID N 54 to 57, SEQ ID N 66 to 67), taking into account code genetics and its degeneration. Thus the present invention relates the use of these nucleotide sequences in the form:
- anti-sense sequences, - sequences coding for a therapeutic gene, - of sequences which can be contained in a vector for the realization of cell transformation ex vitro and / or in vivo (gene therapy).
Use of nucleic acids deduced from the amino acid sequences of proteins of interest identified in the present invention; nucleic acids antisense and / or coding for a therapeutic gene.
The present invention relates to biological material for the preparation of pharmaceutical compositions intended for the treatment of mammals suffering from sickness degenerative and / or neurological and / or autoimmune, in particular sclerosis in plates, the composition comprising (i) either at least one nucleic acid sequence able to hybridize to a nucleic acid sequence encoding proteins of interest (SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17, 24) and the peptide sequences or fragments thereof belonging sequences to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of protein plasma binding to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ IDN 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N
10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and preferably at minus 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, or their (s) fragment (s), (ii) either at least one nucleic acid sequence comprising at least minus one gene of therapeutic interest coding for proteins or a protein fragment (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24), the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of plasma protein binding to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B
(for example SEQ IDN 1, SEQ ID N 3, SEQ iD N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ

to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, and elements ensuring expression of said gene in vivo in target cells intended to be genetically modified by said nucleic sequence.
By nucleic acid sequence is meant a DNA and / or RNA fragment, double strand or single strand, linear or circular, natural and isolated or synthesis, designating a precise sequence of nucleotides, modified or not, allowing to define a fragment or a region of a nucleic acid chosen from the group consisting of a CDNA; genomic DNA; plasmid DNA; a messenger RNA. These sequences of nucleic acids are deduced from the amino acid sequence of proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or fragments thereof sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of protein plasma binding to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N
10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and preferably at minus 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, using the genetic code. Due to the degeneracy of the genetic code the invention includes also equivalent or homologous sequences. These defined sequences allow those skilled in the art define themselves the suitable nucleic acids.
Also, the present invention relates to biological material for the preparation pharmaceutical compositions comprising at least one acid sequence nucleic capable of hybridizing to a nucleic acid sequence coding for proteins of interest or their fragment (s) (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the sequences peptide or fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of the plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B (for example SEQ
IDN 1, SEQ
ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and peptide sequences which have at least 70% identity in preference to minus 80%
identity and preferably at least 98.% identity with any one sequences peptides SEQ ID N 1 to 29.
The invention consists in defining and using nucleic acid molecules complementary to DNA and / or RNA sequences encoding proteins of interest or their (s) fragment (s). These fragments correspond to antisense molecules or ribozyme and can be synthesized using automatic synthesizers, such as those sold by Applied Biosystem. The invention describes the use of these nucleic acids capable of hybridizing under stringent conditions to DNA and / or RNA
encoding the proteins of the invention or their leu (s) fragment (s). Of conditions of Characteristic stringency are those that correspond to a combination of temperature and the salt concentration chosen approximately between 12 to 20 C below the Tm (melting temperature) of the hybrid under study. Such molecules are synthesized and can be marked using conventional marking methods used to respondents molecular, or can be used as primers in reactions amplification. The sequences that have at least 90% homology to a sequence reference are also part of the invention, as are the fragments of these sequences which have at least 20 nucleotides and preferably 30 contiguous nucleotides counterparts by compared to a reference sequence. In order to reduce the proportion of peptides natural or variants, it is possible to envisage an antisense and / or ribozyme approach.
Such an approach is widely described in the literature. Of course, such molecules antisense can constitute as such vectors. You can also use vectors which include a nucleic acid sequence that codes for antisense.
The present invention relates to biological material for the preparation of pharmaceutical compositions intended for the treatment of mammals suffering from sickness degenerative and / or neurological and / or autoimmune, such as sclerosis in plates, said composition comprising at least one nucleic acid sequence containing at least minus one gene of therapeutic interest and of elements ensuring the expression of said gene in vivo in target cells intended to be genetically modified by said sequence nucleic acid.
These nucleic acid and / or vector sequences (antisense or coding for a protein or a fragment of a protein) can target cells in which the peptide is expressed, such as macrophage cells: (i) either by the use of a targeting molecule introduced onto the vector, (ii) either by the use of a property particular of these cells.
Use of vectors comprising a gene of therapeutic interest corresponding to the genes of the proteins of interest identified herein invention.

The present invention relates to biological material for the preparation of pharmaceutical compositions for the prevention and treatment of diseases degenerative and / or neurological and / or autoimmune, such as sclerosis in plates, the composition comprising a nucleic acid sequence comprising a gene of interest 5 therapeutic and elements of expression of said gene of interest. The genes can be no transferred or transferred. They can also consist of nucleic acids modified so that it is not possible for them to integrate into the genome of the cell target or acids nucleic acids stabilized using agents, such as spermine.
Such a gene of therapeutic interest codes in particular:
10 (i) or at least for a protein chosen from the proteins identified in the present invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of proteins chosen by parnii the perlecan, the precursor of plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, 15 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ IDN 25 to 29) and the peptide sequences who have at least 70% identity, preferably at least 80% identity and advantageously at least 98% identity with any of the sequences peptide SEQ ID N 1 to 29, or their fragment (s), (ii) at least for all or part of a polyclonal or monoclonal antibody 20 capable of binding to at least one protein or protein fragment chosen from proteins identified in the present invention (SEQ IDN 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the sequences peptides or the fragments of said sequences belonging to the same family protein chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein of binding to retinol, activator protein of GM2, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID
25 N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity of preference to at least 80% identity and advantageously at least 98% identity with one any of peptide sequences SEQ ID N 1 to 29. They may in particular be antibodies native transmembrane, or fragment or derivative of such an antibody, for as much as said antibody, fragment or derivative of antibody is expressed on the surface of the target cell of the genetically modified mammal and be able to attach to a polypeptide present at the surface of a cytotoxic effector cell or a T helper lymphocyte involved in the method of activating such a cell, (iii) either at least for an inhibitor molecule of at least one protein or of its fragments, said protein being chosen from the proteins identified (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of plasma protein binding to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B
and saposin B
(for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ

to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29; the proteins inhibitors function and / or metabolism and / or binding of proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the protein plasma binding retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70 % identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any one of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, (iv) at least for a ligand or any part of a ligand capable of attach to at least one protein or a protein fragment chosen from proteins identified (SEQ ID N 2, 4, 8, 9,17, 24) and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor of the plasma retinol binding protein, GM2 activator protein, of the calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ

at 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the sequences peptides which have at least 70% identity, preferably at least 80 %
identity and preferably at least 98%

identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, and / or inhibit his function.
More particularly, by antibody fragment is meant the fragments F (ab) 2, Fab ', Fab, sFv (Blazar et al., 1997, Journal of Immunology 159: 5821-5833;
Bird et al., 1988 Science 242: 423-426) of a native antibody and by derivative is understood, by example, a derivative chimeric of such an antibody (see for example the chimeras of the antibodies antiCD3 Mouse / Man in Arakawa et al., 1996 J Biochem 120: 657-662 or immunotoxins such as sFv-toxin de Chaudary et al 1989, Nature 339: 394-397). Through antibody transmembrane means an antibody including at least the functional region able to recognize and attach to its specific antigen is expressed on the surface target cells to allow said recognition and fixation. More specifically, antibody according to present invention consist of fusion polypeptides comprising amino acids defining said functional region and an amino acid sequence (polypeptide transmembrane) allowing anchoring within the lipid double layer membrane of the target cell or the external surface of this bi-layer. The sequences nucleic encoding for many transmembrane polypeptides are described in the literature. According to a entirely advantageous case, the nucleic acid sequence encoding the heavy chain of the antibody is fused with the nucleic acid sequence encoding undit polypeptide transmembrane.
By elements ensuring the expression of said gene in vivo we make in particular reference to the elements necessary to ensure the expression of said gene after his transfer in a target cell. These are, in particular, promoter sequences and / or sequences of efficient regulation in said cell, and possibly the sequences required for allow expression on the surface of target cells of said polypeptide. The promoter used can be a viral, ubiquitous or tissue specific promoter or a promoter synthetic. By way of example, mention will be made of promoters such as promoters of RSV virus (Rous Sarcoma Virus), MPSV, SV40 (Simian Virus), CMV
(Cytomegalovirus) or vaccinia virus, promoters of the gene encoding creatine kinase muscle, for actin. It is also possible to choose a promoter sequence specific of a cell type given, or activable under defined conditions. The literature provides a large amount of information i-elative to such promoter sequences.
Furthermore, said nucleic acid can comprise at least two identical or different sequences exhibiting promoter activity transcriptional and / or at least two identical or different genes located one by relation to the other in a coiltiguë, distant, in the same direction or in the meaning inverse, insofar as the function of transcriptional promoter or the transcription of said genes is not affected.
Similarly in this type of nucleic acid construction, it is possible t0 to introduce neutral nucleic sequences or introns which do no harm not at the transcription and are spliced before the translation step. Such sequences and their uses are described in the literature (reference: patent application PCT WO
94/29471).
Said nucleic acid may also include required sequences for intracellular transport, for replication and / or for integration, for the transcription and / or translation. Such sequences are well known from the man of art.
Furthermore, the nucleic acids which can be used according to the present invention can also be modified nucleic acids so that they don't is not possible to integrate into the genome of the target cell or acids nucleic stabilized with agents, such as for example spermine, which as that such have no effect on the efficiency of transfection.
According to one embodiment of the invention, the nucleic acid sequence is a naked DNA or RNA sequence, i.e. free of any compound facilitating his introduction into cells (nucleic acid sequence transfer).
However, according to a second embodiment of the invention, in order to promote its introduction in the target cells and in order to get the cells genetically modified from the invention, this nucleic acid sequence may be in the form of a vector, and more particularly in the form of a viral vector, such as for example a adenoviral vector, retroviral, a vector derived from a poxvirus, in particular derived from Vaccinia virus or Modified Virus Ankara (MVA) or a non-vector viral such that, for example, a vector consisting of at least one so-called acid sequence nucleic acid complexed or conjugated with at least one molecule or carrier substance selected from the group consisting of a cationic amphiphile, in particular a lipid cationic, a cationic or neutral polymer, a practical polar compound notably chosen among propylene glycol, polyethylene glycol, glycerol, ethanol, 1-methyl L-2-pyrrolidone or their derivatives, and a polar aprotic compound in particular chosen among the dimethylsulfoxide (DMSO), diethylsulfoxide, di-n-propylsulfoxide, dimethyl sulfone, the sulfolane, dimethylformamide, dimethylacetamide, tetramethylurea, acetonitrile or their derivatives. The literature provides a large number of examples of such viral vectors and not viral.
Such vectors may further and preferably include elements of targeting that can direct the acid sequence transfer nucleic towards some cell types or certain specific tissues such as cells cytotoxic and cells presenters of the antigen. They can also be used to direct the transfer of a active substance towards certain preferred intracellular compartments such as the nucleus, the mitochondria or peroxisomes, for example. It can also be elements facilitating the penetration into the cell or lysis of compartments intracellular. Such targeting elements are widely described in the literature. He can by example be all or part of lectins, peptides, in particular the peptide JTS-1 (see request of PCT patent WO 94/40958), oligonucleotides, lipids, hormones, vitamins, antigens, antibodies, ligands specific for membrane receptors, ligands likely to react with an anti-ligand, fusogenic peptides, localization peptides nuclear, or of a composition of such compounds.
Use of cells transformed in vivo after injection of vectors containing at least one gene of therapeutic interest defined from protein of interest identified in the present invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a even family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the protein plasma binding to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and of the saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 at 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which present at least 70% identity preferably at least 80%

identity and preferably at least 98% identity with any one sequences peptides SEQ ID N 1 to 29.
The present invention relates to biological material for the preparation of pharmaceutical compositions for the prevention and treatment of affected mammals 5 of degenerative and / or neurological and / or autoimmune diseases, preferably sclerosis in plates, the composition comprising at least one vector containing a gene therapeutic as described below, capable of being introduced into a target cell in vivo and express the gene of therapeutic interest in vivo. The advantage of this invention is on the possibility to maintain over the long term a basal level of molecules expressed in the patient treated.
10 Vectors or nucleic acids encoding genes of interest therapeutic are injected.
These vectors and nucleic acids must be transported to cells targets and transfect these cells in which they are to be expressed in vivo.
The invention relates to the in vivo expression of nucleotide sequences and / or vectors as designated in the previous paragraph, i.e.
sequences 15 corresponding to genes of therapeutic interest coding in particular:
(i) at least for a protein chosen from the proteins identified in the present invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the peptide sequences or the fragments said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the plasma retinol binding protein precursor, protein activator of GM2, of 20 calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 at 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the sequences peptide who have at least 70% identity, preferably at least 80% identity and advantageously at least 98% identity with any of the sequences peptide SEQ ID N 1 to 29, or their fragment (s), (I) either at least for all or part of a polyclonal antibody or monoclonal capable of binding to at least one protein chosen from protein identified in the present invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the sequences peptides or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein link Retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ
ID N
at 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the sequences peptides which have at least 70% identity, preferably at least 80 %
identity and preferably at least 98% identity with any one of 5 peptide sequences SEQ ID N 1 to 29. They may be antibodies transmembrane native, or fragment or derivative of such an antibody, provided that said antibody, antibody fragment or derivative is expressed on the surface of the target cell of genetically modified mammal and in that said antibody is capable of attach to a polypeptide present on the surface of a cytotoxic effector cell or of a T helper lymphocyte and involved in the activation process of such cell. he can they are fragments of antibodies expressed by cells capable of secreting said antibodies in the bloodstream of a mammal or patient with cells genetically modified by the gene encoding the antibody, (ii) either at least for an inhibitor molecule of at least one protein chosen from the proteins identified (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the sequences peptides or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein link retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which exhibit minus 70%
identity preferably at least 80% identity and preferably at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29;
protein inhibitor of the function and / or metabolism and / or SEQ proteins ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or fragments thereof sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, precursor retinol-binding plasma protein, activator protein of GM2, of calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity in preference to less 80% identity and advantageously at least 98% identity with any of the SEQ peptide sequences ID N 1 to 29, (i) at least for a ligand or any part of the ligand capable of binding sure at least one protein chosen from the proteins identified (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the protein plasma binding retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ IDN 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ IDN 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70 % identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ IDN 1 to 29, and / or to inhibit its function.
According to a particular embodiment, it involves using therapy gene from way of directing the immune response against the protein, peptide or molecule of interest target, i.e. against any protein chosen from the proteins SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to one family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the protein plasma binding to retinol, the GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B
(for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ

to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ IDN 1 to 29, their (s) fragment (s) and / or against any molecule that inhibits the function and / or the expressibn and / or the metabolism of said proteins of interest, and / or ligands of said proteins such as for example receptors.
For this it is obvious that the cells to be targeted for transformation with a vector are cells belonging to the immune system, i.e. lymphocyte-like cells (CD4 / CD8), or antigen presenting cells (dendritic cells, macrophages, ...).
According to a particular embodiment, genetically modified, in particular in vivo, the antigen presenting cells (APC). CPA like macrophages, dendritic cells, microgliocytes, astrocytes play a role in initiation of the immune response. They are the first components cell phones that capture the antigen, prime it in the cell and express molecules CMHI and CMHII
transmembrane involved in the presentation of the immunogen to cells T CD4 + and CD8 +, they produce specific accessory proteins which participate in activation of T cells (Debrick et al ;, 1991, J. Inununol 147: 2846; Reis et al., 1993, J
Ep Med 178:
509; Kovacsovics-bankowski et al., 1993, PNAS 90: 4942; Kovacsovics-bankowski et al., 1995 Science 267: 243; Svensson et al., 1997, J Immunol 158: 4229; Norbury et al .; 1997, Eur J Immunol 27: 280). For a vaccination, it may be advantageous to have a gene therapy system that can target gene transfer in such APC cells, that is to say a gene which codes for a polypeptide which can, after its intracellular production and its processing, be presented to CD8 + and / or CD4 + cells by molecules of CMHI and CMHII complexes respectively on the surface of these cells.
We choose to express all or part of the surface of CPA cells in vivo of a antibody and / or a ligand such as for example a receptor, capable of reacting with the protein or target peptide chosen from proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein of connection to __retino e activator protein eanglioside GM2, calgranulin B
and saposin B
(for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ
ID. N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29. Such cells then go specifically phagocyte said protein or peptide, process it so that fragments of this peptide are presented on the surface of cells presenters of the antigen.
The literature offers a large number of examples of genes coding for antibodies capable of reacting with polypeptides or receptors. He is at the protected from those skilled in the art of obtaining the nucleic acid sequences encoding for such antibodies.
Let us quote for example the genes coding for the light and heavy chains of the antibody YTH 12.5 (anti-CD3) (Routledge et al. 1991, Eur J Immunol 21:
2717-2725), of anti-CD3 according to Arakawa et al; 1996, J. Biochem. 120: 657-662. The sequences acid nucleic acid such antibodies are easily identifiable from the bases of data commonly used by the profession. It is also possible to from hybridomas available from ATCC to clone nucleic acid sequences coding for heavy and / or light chains of these different antibodies by methods amplification such than RT-PCR using specific oligonucleotides or techniques implementing cDNA banks (Maniatis et al., 1982, Molecular cloning. A laboratory manual CSH
Laboratory, Cold Spring Harbor, New York). The sequences thus cloned are so available for cloning into vectors. According to a preferred case of the invention, the nucleic acid sequence encoding the heavy chain of the antibody is merged by homologous recombination with the nucleic acid sequence coding for a polypeptide transmembrane such as rabies glycoprotein or gpl60 (Polydefkis and al., 1990, J Exp Med 171: 875-887). These molecular biology techniques have been perfectly well described.
We choose to express fragments on the surface of CPA cells in vivo immunogens corresponding to at least one protein chosen from proteins SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or fragments thereof belonging sequences to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of protein plasma binding to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N
10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and preferably at minus 98%
of identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29.
For that, we can choose to have the vector express either the complete polypeptide or preferably polypeptides selected to react with ligands and / or receptors specific. The immunogenic peptide encoded by the polynucleotide introduced into the cell of the vertebrate in vivo can be produced and / or secreted, prepared and then presented to a cell presenter of antigen (APC) in the context of MHC molecules. APCs as well transferred in vivo induce an immune response directed against the immunogen expressed in vivo. CPAs have different mechanisms for capture them antigens: (a) capture of antigens by membrane receptors such as receivers immunoglobulins (Fc) or for the complement available on the surface of granulocytes, monocytes or macrophages allowing efficient delivery of the antigen in the 5 intracellular compartments after phagocytosis mediated by receptors.
(b) entry into APCs by pinocytosis in the fluid phase, involving different mechanisms:
micropinocytosis i.e. the capture of small vesicles (0.1 m) by the covered wells of clathrin and the macropinocytosis, i.e. the capture of larger vesicles (with a size varying ente 0.5 m and about 6 m) (Sallusto et al. 1995, J Exp Med 182: 389-400). While that the 10 micropinocytosis exists constitutively in all cells, the macropinocytosis is limited to cell types, such as macrophages, dendritic cells, astrocytes, epithelial cells stimulated by growth (Racoosin et al., J Cell Sci 1992, 102: 867-880). In this invention, by cells is meant able to macropinocytosis, the cells that can carry out the events described above above and them 15 cells which can capture macromolecules preferably between 0.5 pm and about 6 m in the cytoplasm.
According to a particular embodiment, genetically modified in particular in vivo, cytotoxic effector cells or helper T cells from so that they express on their surface a polypeptide corresponding to the proteins SEQ ID N
2, 4, 8, 9, 17, 20 24 and the peptide sequences or fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the protein plasma binding to retinol, the GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B
(for example SEQ ID N 1, SEQ IDN 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID

to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity Preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, to ligands said proteins, naturally not expressed by these cells, and capable of inducing the process activation of such cells, by introducing into these cells acid sequences nucleic acid containing the gene encoding such a polypeptide. In accordance with the present 30 invention, it is also possible to select a nucleic acid sequence containing a gene of therapeutic interest encoding for everything or part of an antibody directed against a protein chosen from proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24 and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of plasma protein binding to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B
and saposin B
(for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ

to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, capable of to be expressed at the surface of the target cells of the patient to be treated, said antibody being able to attach to a polypeptide naturally not expressed by these effector cells cytotoxic or T helper lymphocytes.
By cytotoxic effector cells is meant the macrophages, the astrocytes, cytotoxic T lymphocytes (TCL) and killer cells (NK) as well as their derivatives such as for example LAK (Versteeg 1992 Immunology today 13: 244-247; Brittende et al 1996, Cancer 77: T226-1243). By 'helper T cells' we hear designate in particular the CD4, which allow after activation the secretion of factors activation of effector cells of the immune response. The polypeptides and in particular the receptors expressed on the surface of these cells and which are involved in activating such cells consist in particular of all or part of the TCR complex or CD3, all or part of CD8, CD4, CD28, LFA-1, 4-1BB complexes (Melero et al., 1998, Eur J Immunol 28:

1121), CD47, CD2, CDl, CD9, CD45, CD30, CD40, all or part of the receptors for cytolcines (Finke et al., 1998, Gene therapy 5: 31-39), such as IL-7, IL-4, IL-2, IL-15 or GM-CSF, all or part of the NK cell receptor complex such as for example NKAR, Nkp46, ..;
(Kawano et al., 1998 Immunology 95: 5690-5693; Pessino et al., 1998 J Exp Med188: 953-960), Nkp44, all or part of the macrophage receptors such as for example the receiver Fc (Deo et al., 1997, Immunology Today 18: 127-135).
Many tools have been developed to introduce different genes heterologous and / or vectors in cells, in particular cells of mammals. These techniques can be divided into two categories: the first category involves physical techniques like micro-injection, electroporation or bombardment of particles. The second category is based on the use of techniques in molecular and cellular biology with which the gene is transferred with a biological or synthetic vector which facilitates the introduction of material in the cell in vivo. Today, the most effective vectors are the viral vectors, in particular adenovirals and retrovirals. These viruses have natural properties to cross plasma membranes, avoid degradation of their genetic material and introduce their genome into the nucleus of the cell.
These viruses have been widely studied and some are already used experimentally in human applications in vaccination, immunotherapy, or to compensate for genetic deficiencies. However, this viral approach has limitations especially due to the limited cloning capacity in these viral genomes, the risk of disseminate viral particles produced in the body and the environment, risk of artefactual mutagenesis by insertion into the host cell in the case of retrovirus, and the possibility of inducing a strong inflammatory immune response in vivo during the treatment, which limits the number of possible injections (Mc Coy et al.
11995, Human Gene Therapy 6: 1553-1560; Yang et al., 1996 Immunity 1: 433-422). Others Alternative systems to these viral vectors exist. The use of methods no viral such as co-precipitation with calcium phosphate, the use of receptors that mimic viral systems (for a summary see Cotten and Wagner 1993, Current Opinion in Biotechnology, 4: 705-710), or the use of polymers such as polyamidoamines (Haensler and Szoka 1993, Bioconjugate Chem 4: 372-379). Other non-viral techniques are based on the use of liposomes whose effectiveness for the introduction of biological macromolecules such as DNA, the RNA of proteins or active pharmaceutical substances has been widely described in scientific literature. In this area, teams have proposed use cationic lipids before a strong affinity for cell membranes and / or nucleic acids. In fact, it has been shown that a nucleic acid molecule she-even could cross the plasma membrane of certain cells in vivo (WO
, 0 90/11092), the efficiency being dependent in particular on the nature polvanionic of nucleic acid. From 1989 (Felgner et al., Nature 337: 387-388) lipids cationic have been proposed to facilitate the introduction of large molecules anionics, which neutralizes the negative charges of these molecules and promotes their introduction into cells. Different teams have developed such cationic lipids:
DOTMA (Felgner et al., 1987, PNAS 84: 7413-7417), DOGS or TransfectamTM
(Behr and al., 1989, PNAS 86: 6982-6986), DMRIE and DORIE (Felgner et al., 1993 methods 5: 67-75), DC-CHOL (Gao and Huang 1991, BBRC 179: 280-285), DOTAPTM (McLachlan and al., 1995, Gene therapy 2: 674-622) or LipofectamineTM, and others molecules described in patents W09116024, W09514651, W09405624. Other groups have developed cationic polymers which facilitate the transfer of macromolecules into particular of anionic macromolecules in cells. Patent W095 / 24221 describes the use of dendritic polymers, document W096 / 02655 describes the use of polyethyleneimine or polypropyleneimine and the documents US-A-5595897.and FR 2719316.1 conjugates polylysine.
Since it is desired to obtain a targeted transformation in vivo towards a given cell type, it is obvious that the vector used must be able to be himself targeted, as described above.
Use of cells transformed in vitro or ex vivo with vectors containing a gene of therapeutic interest defined in relation to proteins of interest identified in the present invention (SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24) and the sequences peptide or fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from the perlecan, the precursor of the plasma retinol binding protein, protein activator of GM2, calgranulin B and saposin B (for example SEQ
ID N 1, SEQ
ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and peptide sequences which have at least 70% identity in preference to minus 80%
identity and preferably at least 98% identity with any one sequences peptides SEQ ID N 1 to 29.
The present invention relates to biological material for the preparation of pharmaceutical compositions for the prevention and treatment of diseases degenerative and / or neurological and / or autoimmune, preferably sclerosis in plates, the composition comprising at least one cell, in particular a cell not not producing naturally antibodies, in a form allowing their administration in the organism of a mammal, human or animal, as well that eventually their prior culture, said cell being genetically modified in vitro by at least one nucleic acid sequence containing at least one gene coding in vivo for:
(i) at least one protein chosen from the proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24, and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of protein plasma binding to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (for example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID
# 10 to 16, SEQ ID N 18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which present at least 70% identity preferably at least 80% identity and advantageously at minus 98% identity with any of the peptide sequences SEQ ID N
1 to 29 and the peptide sequences which have at least 70% identity of preference to at least 80% identity and advantageously at least 98% identity with one any peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, and any fragment (ü) at least one peptide defined from the primary sequence of at least a protein chosen from the proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24, and the sequences peptides or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein of connection to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70 %
identity preferably at least 80% identity and preferably at least 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, (iii) at least any molecule that inhibits function and / or binding and / or the expression of these proteins, (iv) at least one peptide derived from the primary sequence of a selected protein among the proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24, and the peptide sequences where the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the plasma protein of connection to retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (by EXAMPLE SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70 %
5 identity preferably at least 80% identity and preferably at minus 98%
identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29, and capable to bind to at least one CMHI glycoprotein, (v) at least any antibody and any part of antibody capable of binding to at least one protein chosen from proteins SEQ ID N 2, 4, 8, 9, 17, 24, and 10 peptide sequences or fragments of said sequences belonging to a same family of proteins chosen from perlecan, the precursor of the protein plasma binding retinol, GM2 activator protein, calgranulin B and saposin B (by example SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5 to 7, SEQ ID N 10 to 16, SEQ ID N
18 to 23, SEQ ID N 25 to 29) and the peptide sequences which have at least 70 %
15 identity preferably at least 80% identity and preferably at minus 98%
of identity with any of the peptide sequences SEQ ID N 1 to 29.
More particularly, said target cell comes either from the mammal to treat, or from a mammal other than the one to be treated. In the latter case, it should be noted that said target cell will have undergone a treatment making it compatible with the mammal to be treated.
By mammal is preferably meant a human mammal. These cells are established in cell lines and are preferably CMHII + or CMHII + -inducible like the lyrnphocytes, monocytes, astrocytes, oligodendrocytes.
The invention also relates to the modified cells and a method of preparation of a. cell as described above characterized in that we introduce in 25 a naturally occurring antibody-free mammalian cell, for example any means appropriate, at least one nucleic acid sequence containing at least one gene of interest therapeutic and elements ensuring the expression of said gene in said cell, said gene of therapeutic interest containing a nucleic acid sequence coding for a molecule or a fragment of a molecule in vivo, as described just above. More particularly, it relates to prokaryotic cells , cells yeast and animal cells, especially manuniferous cells transformed by at minus a nucleotide sequence and / or a vector as described above.
According to a particular embodiment, the cells (dendritic cells, macrophages, astrocytes, CD4 + T lymphocytes, CD8 + T lymphocytes) of the patient or allogenic are placed in contact with a purified preparation of the polypeptide target this one being internalized, primed and presented on the cell surface associated with CMHI molecules and / or CMHII and thus induce a specific immune response against the peptide.
Cells activated are then administered to the patient in whom they will induce answer immune specific for antigens (we use a natural response pathway inunune, but we controls what the antigen presenting cell will present) According to a particular embodiment, the presenting cells antigen (dendritic cell, macrophage, astrocytes) are modified in vitro to express them antigens in the transformed cell that will associate with the molecules of the CMHI and / or CMHII
and be presented on the surface of cells to induce in the patient where we administers the modified cell a perfectly targeted immune reaction.
Not all vaccine approaches are always satisfactory and drive for example to limited immune reactions directed only against epitopes immunodominant or against antigens with high variability. Of even the incorrect presentation of antigens by glycoproteins of the MHC system at the surface of does not allow the patient treated to develop anti-immunity protein of interest suitable. In order to overcome these problems, some authors have proposed in the framework of such vaccine procedures, to select minimal antigenic fragments corresponding to portions of peptide likely to be specifically recognized by T cells cytotoxic, to express them in cells so that they associate with CMHI molecules and be presented on the surface of cells to induce in the patient treated a reaction perfectly targeted immune system (Toes et al. 1997, PNAS 94: 14660-14665). More in particular, it has been shown that very small epitopes (varying from 7 to about 13 amino acids) which are expressed from introduced minigens in one vaccinia virus, could induce cell-type immunization. he a by elsewhere has been shown that several minigens could be expressed together with from the same vector (this particular construction is called string of beads). The advantage of such a construction is that it induces a reaction immune from synergistic CTL type (Whitton et al;, 1993 J. of Virology 67: 348-352).
Protocol for bringing the cells and the antigenic fragment into contact:
Presentation of antigenic fragments by CMHI molecules is based on an identified intracellular process (see Groettrup et al., 1996 Immunology 1 o Today 17: 429-435 for a review) during which peptides very antigenic short sizes (about 7-13 amino acids) are produced by degradation of a more complex polypeptide against which the final immune reaction will be directed. These cottrts peptides are then associated with CMHI or CMHII molecules to form a protein complex which is transported to the cell surface so to present said peptides to circulating cytotoxic T lymphocytes or to lymphocytes T
circulating helper, respectively. It should also be noted that the specificity of CMH I or CMH II molecules vis-à-vis the antigenic peptides varies in function of CMH I or CMH II molecules (example for CMHI: HLA-A, HLA-B, ...) and the allele (example for MHC I: HLA-A2, HLA-A3, HLA-A11) considered. Within 2o of the same animal species, from one individual to another, there is a large variability of genes coding for the molecules of the MHC system (on this subject, see in particular George et al., 1995, Immunology Today 16: 209-212).
According to a particular embodiment, the cells, 'such as the cells dendritics, macrophages, astrocytes, CD4 + T lymphocytes, CD8 + T lymphocytes are modified so as to express on their surface antibodies specific for the target peptide. The peptide is neutralized by antibody expressed on the surface of cells. These cells are preferably immune, of patient preference, preferably cytotoxic, modified to express all or part of an antibody specific for the target polypeptide.
Isolation of mononuclear cells from peripheral blood In 1968 Boyum described a rapid technique which allows centrifugation of blood on density gradient, to separate cells mononuclear (lymphocytes and monocytes) with a good yield (theoretical yield 50%, it is-i.e. 106 cells / ml of blood). 50 ml of peripheral blood collected sterile in heparinized tubes are centrifuged for 20 minutes at 150g at 20 C. The cells recovered are diluted in two volumes of initial peripheral blood of sterile PBS. 10 ml of this suspension are deposited on 3m1 of a Ficoll-Hypaque solution (medium of separation of lymphocytes, Flow). After centrifugation for 20 minutes at 400g and 20 C without deceleration braking, the mononuclear cells sediment at the PBS-Ficoll interface, in a dense, opalescent layer, while almost all of red blood cells and polymorphonuclear cells sediment at the bottom of the tube. The cells 10 mononuclear cells are recovered and washed in sterile PBS.
Internalization of antigens by cells presenting the antigen:
Preliminary treatment of antigen presenting cells: cells presenting the antigen are washed beforehand with a PBS-BSA buffer at 0.5% (w / v) then listed then they are preincubated in the presence of different 0.5% reduction inhibitors in PBS-BSA 0.5% containing 10 M to 10 mM
final DTNB (5,5'-dithio-bis-2-nitrobenzoic acid) or NEM (N-ethylmaleimide). The subsequent steps of fixing antigens to the surface cellular or internalization of antigens are also carried out in the presence of different inhibitor concentrations.
Protocol for internalization of antigens by cells presenting the antigen:
8.10 'cells are internalized in the presence of a saturated amount of 125 Iodine radiolabelled proteins (1 g) in microwells in 70 l.
After one incubation time at 4 ° C. with agitation, the antigens are fixed to the surface of cells. The cell suspension is washed twice with PBS-BSA and the caps cells are taken up in 70 l of buffer and incubated. at 37 C for different periods up to 2 hours. Cells and supernatants are separated by centrifugation at 800g for 5 minutes 4 C. For longer incubation periods, the stage pre-fixation of antigens on the cell surface is deleted. The cells are diluted in RPMI-10% FCS medium in the presence of 20 mM Hepes, at 10'iml cells. Cells are incubated in the presence of excess antigen while different periods at 37 C (1 gg of molecules / 5.10 'cells monocytes / macrophages or / 108 B-EBV cells).
All therapeutic agents defined within the framework of this invention are used to prevent and / or treat a degenerative disease and or neurological and / or autoimmune, such as multiple sclerosis, alone or in combination combination. They can also be used to assess their effectiveness in vitro or in vivo.
Administration of therapeutic agents in humans:
The biological material according to the invention can be administered in vivo 10 in particular in injectable form. We can also consider an injection by way epidermal, intravenous, intra-arterial, intramuscular, intracerebral by syringe or any other equivalent means. According to another embodiment by administration oral or any other means perfectly known to those skilled in the art and applicable to the present invention. Administration can take place as a single dose or repeated, one or more several times after a certain interval. Route of administration and the dosage the most suitable ones vary according to different parameters such as by example the individual or the disease to be treated, the stage and / or the evolution of the illness, or nucleic acid and / or protein and / or peptide and / or molecule and / or cell to transfer or target organ / tissue.
For the implementation of the treatment of the mammal mentioned in the present invention, it is possible to have compositions pharmaceutical containing biological material as previously described, advantageously associated with a pharmaceutically acceptable vehicle for administration to man or animal. The use of such supports is described in the literature (see for example Remington's Pharmaceutical Sciences 16 '''ed. 1980, Mack Publishing Co). This pharmaceutically acceptable vehicle is preferably isotonic, hypotonic or has low hypertonicity and has ionic strength relatively low, such as a sucrose solution, for example. Furthermore, said composition can contain solvents, aqueous or partially aqueous vehicles such as some water sterile, free of pyrogenic agents and dispersing media for example. The pH of these pharmaceutical compositions is suitably adjusted and buffered according to conventional techniques.

Figures FIG. 1 represents the amino acid sequence of the GM2AP protein, and the localization of the peptides, which is underlined, and which are used for the antibody production GM2AP anti-peptides.
FIG. 2 represents the amino acid sequence of the protein MRP14, and the localization of the peptides, which is underlined, and which are used for the antibody production anti-MRP peptides 14.
FIG. 3 represents the amino acid sequence of the protein Saposine B, and the localization of the peptides, which is underlined, and which are used for the production of 10 Saposin B anti-peptide antibodies FIG. 4 represents the assay of the protein MRP8 (ng / ml - on the ordinate) in the urine of patients with multiple sclerosis (MS), in the urine of patients with other neurological diseases (AMN) and in the urine of controls considered healthy (TS). not means the number of urines tested by category.
FIG. 5 represents the assay of the protein MRP 14 (ng / ml - in ordered) in the urine of patients with multiple sclerosis (MS), patient urine other neurological diseases (AMN) and in control urine considered healthy (TS). n means the number of urines tested by category.
FIG. 6 represents the assay of the protein MRP8 / 14 (ng / ml - on the ordinate) 20 in the urine of patients with multiple sclerosis (MS) patient urine other neurological diseases (AMN) and in control urine considered healthy (TS). n means the number of urines tested by category.
FIG. 7 represents the average concentrations of the MRP8 proteins, MRP14, MRP8 / 14 (ng / ml - on the ordinate) in the urine of patients with sclerosis in 25 plaques (MS), in the urine of patients with other diseases neurological (AMN) and in the urine of controls considered healthy (TS). n means the number urine tested by category..
FIG. 8 represents the assay of the GM2AP protein (ng / ml - in prescribed) in the urine of patients with multiple sclerosis (MS), in the urine 30 from patients with other neurological diseases (AMN) and in witness urine considered healthy (TS). n means the number of urines tested by category.

FIG. 9 represents the assay of the protein Saposine B (g / ml - in ordered) in the urine of patients with multiple sclerosis (MS), patient urine other neurological diseases (AMN) and in control urine considered healthy (TS). n means the number of urines tested by category.
FIG. 10 represents the co-detection of the Saposin B proteins (g / ml - in order) and GM2AP (ng / ml - abscissa) in urine samples from MS patients, from supposed healthy witnesses and patients with other neurological diseases and the correlation observed between the levels of the two proteins.
FIG. 11 represents: FIG. 11A, the assay of the GM2AP protein in ng / ml in the urine of a progressive remitting MS patient (curve claire) and the gliotoxicity as a percentage of dead cells estimated by the MTT test (dark curve);
FIG. 11B the assay of the protein Saposine B in g / ml in the urine of a MS patient in progressive remitting form (clear curve) and gliotoxicity in percentage cells dead estimated by the MTT test (dark curve).
FIG. 12 represents the product of the concentrations of the GM2AP proteins and saposin B in ngx g / m12 in the urine of a relapsing-remitting MS patient progressive (clear curve) and gliotoxicity as a percentage of dead cells estimated by the MTT test (dark curve).
FIG. 13: FIG. 13A, the assay of the GM2AP protein in ng / ml in the urine from a progressive MS patient (clear curve) and the gliotoxicity in percentage dead cells estimated by the MTT test (dark curve); figure 13B on dosage of Saposin B protein in g / ml in the urine of a fit MS patient progressive (curve clear) and gliotoxicity as a percentage of dead cells estimated by the MTT test (curve dark).
FIG. 14 represents the product of the concentrations of the GM2AP proteins and saposin B in ngx g / m12 in the urine of a progressive MS patient (clear curve) and gliotoxicity as a percentage of dead cells estimated by the MTT test (dark curve).

Figure 15 shows the correlation between GM2AP concentrations in ng / ml (abscissa) and gliotoxicity in percentage of dead cells estimated by the MTT test (ordered) determined in the urine of MS patients and controls.
Figure 16 shows the correlation between Saposin concentrations B in g / ml (abscissa) and gliotoxicity in percentage of dead cells estimated by the MTT test (ordered) determined in the urine of MS patients and witnesses.
Figure 17 shows the correlation between the product of the concentrations GM2AP and Saposin B in ngx g / ml '(abscissa) and gliotoxicity in percentage of dead cells estimated by the MTT test (ordered) determined in urine from to MS and control patients.
Figure 18 shows the correlation between GM2AP concentrations (ng / ml - on the y-axis), the concentrations of Saposin B (g / ml -orderly right) and gliotoxicity as a percentage of dead cells estimated by the MTT test (abscissa). Two estimated correlation lines are shown on the graph. The bold lines relate to saposin B concentrations; the lines in light black relate to GM2AP concentrations.

Examples:

Example I: Collection and pool of urine.
Urine samples of different volumes were taken from healthy individuals (negative MS) with no neurological disease a priori or self-immune. The toxic activity of each sample with respect to cells astrocytic murines was tested in vitro using the MTT test. In total a pool of 20 liters urine was constituted (negative SEP pool). At the same time, samples urine from different volumes were taken from individuals with sclerosis in plates (MS positive) at different stages of the disease. The ticking activity of each sample taken from murine astrocytic cells has been tested in vitro using the MTT test. A total of 80 liters of urine was pooled (SEP pool positive).

Example 2: Purification of urinary proteins.

SEP positive and SEP negative urine pools, collected and tested according to exeinple 1, have been purified to obtain a protein concentration high and eliminate high molecular weight proteins as much as possible.
Precipitation: precipitation with ammonium sulphate (Prolabo - ref. 21 333 365) were performed on the SEP positive and SEP negative urine pools.
The 60% percentage of. saturated ammonium sulphate for 40% urine, i.e. 390 grams of ammonium sulfate per liter of urine was used. Each pool is distributed in 1.8 liter fractions in 2 liter bottles to improve precipitation. The precipitation was carried out for 2 x 8 hours, at room temperature, under agitation sweet. After centrifuging the urine pools at 3000 rpm for 10 min., At a temperature of 10 C, the pellet obtained is taken up in a 20 mM Tris buffer containing CaCl, 1 mM and 0.25 M urea. The mixture was then centrifuged at 3 000 rpm for 10 min. The supernatant contains the concentrated proteins. He is either used immediately for the next step, or frozen if the next step cannot to be performed continuously.
Ion exchange chromatography: the protein-containing solution has then passed over a DEAE fast Flow gel (marketed by PHARMACIA).
This step is carried out at low pressure on a PHARMACIA column filled of gel. The pads are brought to the column by a peristaltic pump which allows a regular flow. The column equilibration buffer is the Tris 20 buffer mM, pH
7. The fraction corresponding to the precipitation supernatant and containing a number of too high salt is dialyzed against this buffer before depositing on the column. A
elution by a salt gradient makes it possible to recover the proteins. The elution gradient East carried out in steps of NaCI 100, 200, 300, 500 mM in the buffer balancing the column. The elution fractions are tested by the MTT test and will not be preserved as the positive fractions, that is the fraction eluted at 200 Mm NaCl. These fractions may be processed immediately or stored in a freeze-dried state.
Purification: A size exclusion chromatography based on the difference in size and shape of the proteins to be eluted was used. The fraction corresponding to the 200 mM NaCl elution is deposited on the column. During elution, low molecular weight proteins are retained and therefore eluted more late than large molecules. The purifications have been carried out on HPLC

with a TosoHaas TSK Prep G 3000 SW column, with a diameter of 21.5 mm and of a length of 300 mm, the molecular weight exclusion limit is 500,000 daltons. The elution buffer used contains 100 mM phosphate, sulfate of 100 mM sodium, pH 6.8. Separation of the protein mixture has been carried out in 60 min. Only the fraction corresponding to a mass of 15-20,000 daltons has been preserved.
This fraction is dialyzed in a 20 mM Tris buffer containing CaCl, 0.2 mM, pH
7.2, then lyophilized.
At each stage, only the fractions exhibiting toxic activity have been selected for the next step. A control of toxic activity 1o of proteins was carried out at each step, using the MTT test. Alone fractions with significant toxic activity were selected for the additional purification described in Example 3.

EXAMPLE 3 Additional Purification of the Urinary Proteins by reverse phase chromatography.
Urine pools from MS patients (MS pool positive) and non-MS patients (negative MS pool), obtained after purification according to example 2, have was taken up in distilled water, then diluted with a 0.2% TFA / 10% solution acetonitrile to obtain a final concentration of approximately 130 to 140 g / ml.
Separation by reverse phase C8 HPLC was carried out on a column Brownlee Aquapore (trade name) marketed by Perkin Elmer (column characteristics: 300 angstroms / 7 m / (100x4.6) mm). Of them columns separate were used for the positive and negative pools, respectively.
The injections were made by multi-injections of 250 l. Proteins have been elected with a linear gradient of 5% to 15% of buffer B in 5 min., then from 15% to 100% of buffer B in 95 min., at a flow rate of 0.5 ml / min. Separation buffers A and B
used respectively are the 0.1% TFA buffer (Pierce n 28904) / Mi11iQ water and the 0.09% TFA / 80% acetonitrile buffer (Baker). Detection was performed by measured absorbance W at 205 and 280 nm. The fractions have been collected in 1.5 ml and 0.5-1 ml fractions in the area of interest. The fractions have been frozen after collection in dry ice.

The collected fractions were then dried under vacuum and taken up in 100 l 0.1% TFA / 30% acetonitrile. 20 1 of the fractions were transferred to eppendorfs from 500 l, dried and washed twice with 100 l of MilliQ water, then dried again.
The toxic activity of the proteins contained in each fraction collected after 5 elution was determined using the MTT test. Only fraction 21 presenting an activity significant toxic was retained. The number of this fraction corresponds to the order of elution according to the elution conditions set out in this example.

Example 4 Analysis of Proteins Obtained by Separation on HPLC on Gel 10 SDS-TRICINE.
The collection pool for fraction 21 obtained by HPLC, as described in Example 3, and originating from 20 injections of the positive SEP pool, was deposited on an SDS gel-TRICIN 16% precast from 10 wells and 1 mm thick (sold by the society Novex). The conditions of use of the gel correspond to those recommended speak 15 supplier. The sample is taken up in 75 g of sample buffer 1 once concentrated (SDS-TRICINE N LC 1676, 1 ml twice concentrated + 50 1 of (3-mercaptoethanol (Pierce) diluted 1/2 in water) and 251i1 of the sample are placed on the gel in thrice. The pool of collection of fraction 21 from 6 injections of the negative SEP pool was deposited on the gel under the same conditions as those described for the positive SEP pool. The migration on 20 two gels were made in parallel in the same migration tank (XCELL II NOVEX
(trade name)) at a constant voltage of 125 mV for 2 hours. Tank is placed in a container with ice. The gels were stained directly after migration by staining with zinc / imidazole (staining kit 161-0440 sold by the society BIORAD) to obtain a reversible negative coloring. The strips of proteins are 25 translucent on opaque background.

Example 5: Trypsin digestion of the gel bands.
All the protein bands visualized in the deposits of fraction 21 have were cut and subjected to proteolysis with trypsin.

The gel strips are cut with a scalpel into 1 mm slices and transferred to eppendorf tubes. The eppendorfs are subject to a peak of centrifugation to drop the gel pieces and after centrifugation 100 gl of washing buffer (100 Mm NHIC03 / 50% CH3CN) are added to the gel pieces.
After 30 min. stirring at room temperature, the supernatant is removed by 20 l fractions and the washing step is repeated twice. The eppendorfs are dried for 5 min. in speed vac. 20 g of trypsin (Modified sequenal grade PROMEGA V5111) are taken up in 200 g of digestion buffer (5 mM TRIS, pH
8) and are dissolved for 30 min. at room temperature, with stirring intermittent and 20 to 30 l of resuspended trypsin are added to the gel pieces. The eppendorfs are centrifuged and stored in a hot room at 28 C overnight. After digestion gel strips can be used immediately for measures of mass or frozen for later use.

Example 6: Chemical digestion at CNBR of the gel bands.
In the event of a protein resistant to enzymatic cleavages, in particular to the action of trypsin as described in Example 5, the bands between 16kD and 20kD were processed with CNBR. The gel bands, already used for the digests with trypsin, are dried 5 to 10 min. in speed vac.
A solution of CNBR (FLUKA) at 200 mg / ml was prepared in 70% acid formic (BAKER). 20 l of this solution was used to rehydrate the pieces of gel. The reaction was carried out for 20 h at room temperature and to darkness. The peptides are extracted 3 times 30 min. with 100 gl of 0.1%
VAT / 60%
Acetonitrile. The extraction solutions are combined and concentrated to 20 l.
These samples are diluted 5 times in 0.1% TFA / water. The conditions of separation are those described for the peptides of digestion with trypsin.

Example 7: Analysis by MALDI-TOF spectrometry.
l of extraction buffer (2% TFA / 50% acetronitrile) are added 30 to samples. The eppendorfs to be analyzed are subjected to a 5 min cenirifugation, then a 5 min sonication. and finally to a centrifugation of 1 min.

On a stainless steel disc, 14 deposits of 0.5 l of matrix (acid a-cyano-4-hydroxy-trans-cinnamic to saturation in acetone) are produced. A fine microcrystalline layer "
uniform is obtained. 0.5 l of a 2% TFA / water solution are deposited on this sub-layer on the 14 deposits, then 0.5 l of sample to be analyzed are added.
In this drop thus formed, 0.5 l of an a-cyano-4- acid acid saturation solution hydroxy-trans-cinnamic in 50% acetonitrile / water are added. After drying at ambient temperature for 30 min., the crystal deposits are washed with 2 l of water which are at once evacuated by a breath of air. All spectra are obtained on a mass spectrometer BRUKER BIFLEX (trademark) equipped with a reflectron. The measures (90 to 120 shots laser on the entire deposit) are accumulated to obtain a spectrum of mass which is the more representative of all the peptides present in the sandwich sample matrix.
For each deposit, a calibration with the peptides of the autolysis of the trypsin was made so to be able to use a measurement accuracy of less than 100 ppm.
Databases searches were performed in MS-FIT
PROTEINPROSPECTOR. The common parameters used in this research are (1) database: NCBInr, (2) a tolerance of 100-50 ppm, (3) cysteines are not modified, (4) methionines can be oxidized, (5) weight range molecular: 1000-100,000 Da, (6) up to 3 switching sites can be ignored.

Example 8: N-terminal sequencing of digestion peptides.
(i) Extraction and separation by HPLC of the digestion peptides.
After mass measurements on the entire digestion, the rest of the peptides is extracted in 3 times 30 min. in a sonication bath with 0.1% TFA / 60%
acetonitrile.
The extraction solutions are combined and dried to 20 l under vacuum.
After dilution in 80 l of buffer A (0.1% TFA / water), the extractions of the bands gel, digested with trypsin, are injected into a C18 / MZ- column Vydac / (125x1.6) mm / 5 m. The elution of the peptides is done at a rate of 150 l / min. and in a gradient ranging from 5% buffer B (0.09% TFA / 80% acetronitrile) to 40% of buffer B in 40 min., then from 40% buffer B to 100% buffer B in 10 min.
The detection is made by measuring the UV absorbance at 205 nm. Collecting peaks is carried out in 500 l eppendorf tubes. Fractions are kept on the ice and for the 18-20 kD band of the positive SEP 21 pool analyzed by spectrometry of MALDI-TOF mass.
(ü) N-terminal sequencing.
Fractions corresponding to only one mass peak were analyzed by Edman degradation on a sequencer (Model 477A PERKIN ELMER / Applied Biosystems). The sequencing conditions are those described by the constructor. A
micro cartridge was used for depositing samples and PTH-AminoAcid to are identified with an online HPLC system (Model 120A PERKIN
ELMER / Applied Biosystems).
The deposit of the fraction to be sequenced was done in several deposits of 15 gl with intermediate drying. The tube containing the peptide is washed with 15 l 85% formic acid (BAKER). The amino acid sequences correspond always at the measured masses. Peptides, whose masses do not correspond not at the main protein identified, were sequenced in priority. Of this way it was possible to identify up to three proteins in a gel strip.

Example 9: Results and discussion.
After reverse HPLC of the negative SEP control pool and of the positive SEP pool, the toxic activity of each elution fraction was determined using the MTT test.
Only fraction 21 of the positive SEP pool exhibits toxic activity in vitro. The fraction 21 of the negative SEP control pool shows no toxic activity.
The activity toxic of fraction 21 of the positive SEP pool was confirmed in vitro by FACS, like described in patent application WO 98/11439 on astrocytic cells murines.
The protein content of fraction 21 of the negative SEP control pool and of the positive MS pool was observed after separation on SDS-TRICINE 16% gel and staining of the zinc / imidazole gel. Molecular weight proteins apparent were found in both fractions. By cons five bands different and from low apparent molecular weights are only visible in fraction 21 from the pool MS positive (bands 8, 14, 18 and 20 kD). Each band corresponds at least a protein and variants of said proteins which have molecular weight apparently close that of the native protein. These variant sequences present a percentage of homology or identity with the native sequences of at least 70%, preferably at least minus 80% and advantageously at least 98%.
The proteins of interest of fraction 21 of the positive SEP pool were then analyzed by mass spectrometry and / or sequencing and search for homology in the databases. The results show the presence of five bands of migrating protein between 22 and 5 kD in fraction 21 of the positive SEP pool and variants of said proteins.
These proteins are the C-terminal fragment of Perlecan, which begins with acid amino 3464 and ends at amino acid 3707 of the protein sequence complete, identified in the sequence identifier SEQ ID N 2, the precursor of the protein plasma binding to retinol whose sequence is given in SEQ ID N 4, the protein activator of GM2 identified in SEQ ID N 8, calgranulin B identified in SEQ ID N 17 and the saposin B
represented in SEQ ID N 24. As described above, homologs or variants said proteins have also been identified by sequencing. These sequences homologous proteins or variants are the product of mutations in genes encoding said proteins. AT
As an example, SEQ ID N 9 has 99% homology or identity with of the GM2 activator protein and the fragment of SEQ ID N 9 which begins to acid amino 34 and ends at amino acid 202 has 98.88% homology or identity with the corresponding fragment of the native protein identified in SEQ ID N 8.
Example 10: Demonstration of proteins in a urine sample.
Urine samples from an MS negative individual and a patient Positive MS have been collected. These urine samples were purified according to the protocol described previously.
The final elution fractions 21 were analyzed separately by mass spectrometry. The mass profile of each fraction corresponding to each urine sample was compared the mass profile obtained for the proteins identified in the examples previous. The results show that for the urine sample from the MS patient positive the masses correspond to the molecules (i) C-terminal fragment of Perlecan, (ii) activator protein of GM2, (iii) calgranulin B and (iv) saposin B
previously identified.
However, none of these masses has been identified in the mass profile obtained after analysis of the urine sample from the individual MS negative. The process described is usable as a diagnostic test.

Example 11: Western Blot test.
Western blots were carried out on different fractions of raw urine or purified as described in Example 2. Urine samples from healthy individuals and patients with multiple sclerosis are being tested in parallel. The samples are 10 deposited on an electrophoresis gel to separate the different protein based of their molecular mass under the action of an electric field. Westerners Blot are made after transfer of the proteins from the gel to a membrane. To reveal the transferred proteins, the membrane is saturated in saturation buffer, then incubated with an antibody directly labeled with alkaline phosphatase. The antibody used is an anti-calgranulin 15 (mouse monoclonal antibody, clone CF 145 subtype IgG 2b marketed by the company Valbiotech: reference MAS 696p lot PC96G696). The substrate of the enzyme is dichloride 3.3 '- (1,1'-biphenyl) 4,4'diazonium and sodium 2-naphthalenyl phosphate (marketed under the name (3 Naphtyl acid phosphate Sigma ref. N7375 and ô dianisine Tetrazotized D3502) is added for the revelation of the bands and the visualization of the proteins related to 20 antibody. A molecule with an apparent molecular mass of approximately 14,000 Da is revealed in purified urine from MS patients, with a signal relatively intense. This protein corresponds to calgranulin B (apparent molecular mass: 14 kD).
On the other hand, no signal is observed from the urine of healthy individuals. This observation confines the presence of this protein specifically in the urine of patients with of SEP and the setting 25 implementing a detection method using an antibody recognizing the protein.

Example 12: Production of monoclonal antibodies.
The production of monoclonal antibodies by ascites requires compatibility of the H-2 system between the hybridoma and the producing mouse. 20 female mice Balb / c, aged 6 30 weeks, undergo an injection of 0.5ml of Pristane (2-6 10-14 tetramethylpentadecane acid) in their peritoneal cavity, for the ascites production (Porter et al., 1972). One week to 10 days later, 5.106 to 10.106 hybridomas diluted in 0.5ml sterile buffer NaCI 0.145M, NaZHPO410 mM, KC1 2.7 mM, KH2PO4 1.5 mM at pH
7.4 are injected intraperitoneally. Ascites appears one by two weeks later. The ascites liquids present in the peritoneal cavity are then collected with a syringe after incision of the peritoneum. The collected liquid is centrifuged at 3000g for 15 minutes at room temperature, filtered through gauze to remove fat, then buffered adding 1/20 ' of its volume of tris-HCI 1M at pH 8Ø This method makes it possible to obtain quantities antibodies 10 times higher than those obtained by hybridoma culture.
The immunoglobulins present in the ascites fluid are released by salts (sulfate ammonium or sodium sulfate). The ascites liquid is precipitated by the sulfate 40% ammonium. After 20 minutes in the cold the solution is centrifuged 15 8000g minutes to 4 C. The precipitate is washed and resuspended cold in a sulfate solution 40% ammonium then centrifuged again. The new precipitate enriched in IgG is put back in solution in PBS buffer and dialyzed overnight against 25 mM Tris-HC1 buffer, 150 mM NaC1 pH
7.4.
In parallel, an agarose-Protein A (or protein G) column (sold form lyophilized, Pierce) is washed extensively with 25 mM Tris-HCl buffer, NaCI 150mM
pH7.4. The solution enriched in IgG is deposited on the column then the column is washed. IgG
retained by the column are eluted at acid pH (glycine 200 mM pH 2.8). The eluted fractions are neutralized with a volume of Tris-Base 1 M pH 10.5. The content in immunoglobulins of each fraction collected is quantified by reading absorbance at 280 nm (e 1%, lcm = 14.0 Prahl and Porter 1968). The rich fractions are pooled. The degree of purification of IgGs pooled is analyzed by acrylamide gel electrophoresis in the presence of SDS.
IgGs purified are dialyzed overnight against the 25 mM Tris-HCl buffer, 150 mM NaCl pH7.4, sterile filtered, aliquoted and stored at -20 C. Their concentration final is determined by reading the absorbance at 280 nm or by micro-BCA assay. Peptides immunogens referenced SEQ ID N 58, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55, SEQ ID N 56, SEQ ID N
57, SEQ
ID N 58, SEQ ID N 59 and SEQ ID N 65 were used for production antibody monoclonal, according to the protocol described above. But, it is within reach of the man of profession to define other protocols for the production of antibodies monoclonal, by example from the techniques described by Kôhler and Milstein and by Galfre G. et al.
previously cited or techniques derived from them.
Production of recombinant proteins and polyclonal antibodies and monoclonals.
Recombinant proteins Recombinant proteins GM2AP (SEQ ID NO: 73) and Saposin B
(SEQ ID NO: 74) used to carry out the standard range of this study were produced in a prokaryotic system and purified from the clones of these two protein obtained in our laboratory using the methods and protocols well known to one skilled in the art.
Anti-GM2AP or anti-Saposin B antibodies Anti-GM2AP or anti-Saposin B antibodies used to make the study were either produced in our laboratory or donated generously.
Anti-Saposin B and anti-GM2AP polyclonal antibodies (Li et al, Glycoconjugate, 1984) were used for the study (see the examples below): they are denounced SAP84 and GM2AP84.
Anti-GM2AP or anti-Saposin B polyclonal antibodies have been produced and purified in the laboratory using protocols and methods well known to those skilled in the art: 50 g of GM2 protein or prokaryotic Saposin B
purchased were injected into rabbits on days OJ, D28 and D56; of them booster shots were performed once a month for two consecutive months. Both antibody anti-GM2AP polyclonal antibodies and two anti-Saposin B polyclonal antibodies have summer obtained and their specificity with respect to the recombinant protein was verified by Western blot and by Elisa.

Polyclonal antibodies against GM2AP or Saposin B peptides have been produced and purified in the laboratory using protocols and methods well known to those skilled in the art; 75 g of defined GM2AP or Saposin B peptides, products and coupled with KLH in our laboratory were injected daily OJ, J28 and J56; several boosts were made once a month for 5 months consecutive with injection of 75 g each time. Four anti-polyclonal antibodies peptides GM2AP, four polyclonal anti-Saposin B peptides and four antibody polyclonal rabbits anti-peptides MRP 14 were thus obtained and their specificity with respect to the recombinant protein was checked by Western blot and by Elisa. The peptide sequence GM2AP, Saposin B and MRP14 chosen are described in Figures 1 to 3.
It was obtained:
- an anti-mixture antibody of two peptides of 13 and 15 amino acids of GM2AP: 189-190; an anti-peptide antibody of 18 amino acids from GM2AP: 191-192 (cf.
Figure 1), - an anti-mixture antibody of two peptides of 13 and 19 amino acids of MRP14: 193; an anti-peptide antibody of 17 amino acids of MRP14: 195-196 (cf. Figure 2), - an anti-mixture antibody of three peptides of 12, 15 and 15 amino acids of Saposin B: 74-75; another anti-mixing antibody of 3 peptides of 12, 15 and 15 acids Saposin B amines: 72-73 (see Figure 3).
Native anti-fraction monoclonal antibodies were produced and purified in the laboratory using well-known protocols and methods art. The native fraction corresponds to the cytotoxic elution fraction obtained at from the pool of 80 liters of urine from MS patients and after purification. It's the last elution fraction which contains the three proteins GM2AP, Saposine B, MRP14. 30 g of this fraction of purification were injected into three mice on days OJ, D14, D28 and the sample has been taken at D38. After screening and cell fusion, protocols known to man art for establishing hybridomas and monoclonal antibodies, hybridomas have been re-injected at the mouse and the ascites fluid were recovered 10 days later. Antibodies have been purified on Sepharose-Protein A column and the specificity with respect to the fraction used for the immunization was checked by Western blot and by Elisa. So four antibody monoclonals were obtained: 19C1A7, 3D3F9, 18C8C5 and 7D12A8.
EXAMPLE 13 Determination of the MRP14 Proteins in the Urine by Technique ELISA.
The proteins MRP14, MRP8 and the heterocomplex MRP8 / 14 were assayed in human urine using (i) either an Elisa assay technique according to the known method of the art and using anti-MRP antibodies described in previous examples; (ii) either the 'MRP Enzyme Immunoassay' kit marketed by BMA
Biomedicals AG, Augst, Switzerland, using the antibodies in the kit, the protocol being carried out according to the kit instructions.
Detection of MRP14 and MRP8 / 14 in urine.
The assays were carried out from 17 urines of individuals from the population active (TS), from 27 urines from multiple sclerosis (MS) patients and 7 urine patients with other neurological diseases (AMN).
- Figure 4 illustrates the levels of MRP8 assayed in this urine: while the MRP8 concentration is almost zero in AMN urine, there is no really from difference in distribution between TS and MS urine. Note however that the differences observed are almost negligible because the concentrations measured are extremely weak.
- Figure 5 illustrates the levels of MRP14 measured in the same urine: then that he there are not really any differences in the distribution of concentrations between the TS urine and AMN, the concentrations are higher in some MS urine.
- Figure 6 illustrates the MRP8 / 14 heterodimer rates measured in the same urine: while there is not really a difference between the concentrations TS urine and AMN, we observe higher concentrations in some MS urine, corresponding perhaps to a subpopulation of MS patients characterized by an activity of the disease.
MRRP8 / 14 measured in the urine is a marker for MS disease activity (characterized by an inflammation peak).
- Figure 7 summary confirms that there is no difference significant of concentration of MRP8 and MRP14 between TS, AMN and MS urine, then that a weak difference in MRP8 / 14 concentration is observed between these urines, this concentration being higher on average in MS urine and being a marker for the activity of the illness (peak inflammation).

Example 14: ELISA Protocols Used for the Assay of the GM2AP and Proteins Saposin B.
The GM2AP or Saposin B proteins were measured in human urine in using anti-GM2AP or anti-Saposin B polyclonal antibodies in following the Elisa protocol described by Gardas et al. (Glycoconjugate Journal 1, 37-42, 1984). The main steps are briefly described below:
At each step, the wells of a 96-well microplate are filled with 200 l of the designated solution. The wells are first covered with a solution from GM2AP
5 (recombinant prokaryotic protein) diluted to 50 ng / ml in buffer carbonate-bicarbonate, pH 9.6. After incubation overnight at 4 ° C., the solution is eliminated and the wells are washed four times with PBS pH 7.4 buffer containing 0.05% Tween-20 (PBS-Tween). The microplates thus coated are stored at 4 C for approximately 2 weeks.
Urine samples at three different dilutions (20x, 40x and 80x or others 10 appropriate dilutions) are incubated with an appropriate dilution of the polyclonal antibody of anti-GM2AP or anti-Saposin B rabbit overnight at 4 C. A series of standard dilutions a recombinant protein ranging from 2.0 to 62.5 ng / ml is used for realize the range standard and are treated the same. All dilutions are made in PBS-Tween buffer containing 1 mg / ml ovalbumin. So 0.2 ml of each incubated solution is added in 15 of the wells covered in duplicate and the plates are left for 2 hours at temperature ambient. The wells are then washed four times in PBS-Tween and filled still with a solution of goat anti rabbit IgG antibodies coupled to peroxidase and diluted around 1200 time. After a 2 hour incubation at room temperature, the wells are washed four times in PBS-Tween and again filled with the staining reagent. The reagent of coloring 20 consists of 100 mg of 2,2'-azino-di- (3-ethylbenzothiazoline) acid sulfonic and 10 1 of 30%
of hydrogen peroxide for one hour at room temperature and the degree coloring of each microwell is estimated by reading the absorbance at 405 nm.
A standard curve is constructed by abscissa the concentration of GM2AP of the standard range or of Saposin B with a logarithmic scale and in ordered on 25 percent absorbance with a linear scale. The percentage absorbance of the sample is the absorbance ratio between the urine sample and the control which contains only the antiserum, without the soluble antigen.
A GM2AP recombinant protein solution produced in a prokaryotic system, and concentration 3 mg / ml is diluted in 50 mM carbonate buffer, pH 9.6 and 50 1 are 30 added to each well of a 96-well microplate, i.e. 50 1 per well of a 0.5 g / ml solution. The plates thus prepared are incubated overnight at room temperature, The anti-GM2AP polyclonal antibody produced in the laboratory (rabbit 79) was purified and diluted in 0.05% PBS-Tween buffer in the presence of serum horse 10%. This solution is diluted to 1/8000 '"u The solution is used to realize a standard range with 8 points of range covering concentrations from 0 to 500 ng / ml. Pre-incubation is carried out overnight at room temperature between 100 l of antibody and 100 l of urine sample to be assayed or protein solution GM2AP or Saposin B recombinant used for the standard range. After washing the microplate in PBS-Tween, 50 l of the incubation mixture are added per well, then lo incubated for two hours at room temperature. The microplate is new washed in PBS-Tween, then 50 l of rabbit anti-IgG antibody coupled to the peroxidase and diluted 1/5000 are added to each microwell of the plate and incubated while two hours at room temperature. After further washes of the microplate, 100 l of OPD are added to each well and incubated for 20 minutes at ambient temperature. The coloring of - each well, proportional to the concentration of GM2AP or Saposin B recognized by the specific antibody used, is estimated by reading absorbance.

A GM2AP or Saposin B recombinant protein solution produced in prokaryotic system, and concentration 3 mg / ml is diluted in buffer carbonate 50 mM, pH 9.6 and 501il are added to each well of a 96 microplate well either 50 1 per well of a 1.5 g / ml solution. The plates thus prepared are incubated overnight at room temperature. GM2AP anti-peptide polyclonal antibodies purified laboratory products (rabbit 190 and rabbit 191) are used alone or in mixture diluted to 1/1000 for each in 0.05% PBS-Tween buffer in the presence of horse serum 10%. The standard range is carried out using protein GM2AP or Saposin B prokaryotic recombinant diluted to cover the range concentration 0 to 1500 ng / ml with 8 points. 100 l of antibody (one antibodies or two together) are pre-incubated in the presence of 100 l of urine sample to test or GM2AP or recombinant Saposin B solution, overnight at temperature ambient. After washing the microplate in PBS-Tween, 50 l of the mixture incubation is added per well and then incubated for two hours at temperature ambient. The microplate is again washed in PBS-Tween, then 50 l anti-IgG antibodies of rabbit coupled with peroxidase, diluted to 1/5000, are added to each microwells of the plate and incubated for two hours at room temperature. After washing the microplate, 100 1 of OPD are added to each well and incubated for 20 minutes to ambient temperature. The coloring of each well, proportional to the concentration of GM2AP or Saposin B recognized by the specific antibody used, is estimated by reading absorbance.

Example 15: Determination of GM2AP proteins in the urine.
The GM2AP protein was measured in the urine of 22 patients with multiple sclerosis (MS), 5 patients with other neurological diseases (AMN) and 9 individuals, controls considered healthy (TS), chosen from the active population and collected during a medical visit, following the Elisa protocol described below, using anti-GM2AP polyclonal antibodies. The SEP patietits selected for this study are all-round patients, i.e. with different stages and profiles of the diseases, and different treatments, etc.
The results of the assay are reported in Figure 8. While only AMN urine and 2/9 so-called 'TS' urine have a GM2AP concentration greater than 200 ng / ml, 10/22 (i.e. 45%) have a concentration greater than 200 ng / ml.
These results indicate that if the GM2AP protein is present in very low concentration ( <400 ng / ml) in the urine of individuals in the population active she is present in higher concentration in the urine of MS patients.
However 12 MS urine also have low levels of GM2AP. Of these 12 patients, 10 are Processing.
High urinary concentrations of GM2AP appear to be a pathology MS, and more precisely a marker of a stage or a form of the disease, of the activity of the disease, and is certainly influenced by any treatment in progress. Note that two individuals in the workforce have high concentrations of GM2AP (these two cases have were voluntarily included in the study because they both had a gliotoxic activity in their urine unlike other individuals in this same category).
It is impossible to know if they are healthy individuals, or suffering from a pathology, or people with multiple sclerosis because samples from so-called TS individuals were taken anonymously, without knowledge of the clinical record.
Higher urinary concentrations of GM2AP are detected in urine from MS patients; a high GM2AP concentration can then be a marker of the MS pathology, and more specifically a form of the disease, a stage of disease, of period of activity, and can be influenced by any treatment in progress. These concentrations urinary tract high in GM2AP can also have a predictive value of a start worsening of the disease, or mild MS at the start of its development, etc.
The absolute values of GM2AP concentrations detected in the urine are dependent on the affinity and specificity of the antibody used, but in general, the trend between the three groups of individuals is preserved whatever the antibody used.

Example 16: Determination of Saposin B proteins in the urine.
The protein Saposine B was detected in the same urine samples as those used for the study of GM2AP detection. The dosages were carried out in parallel with those of GM2AP, in the same study, following the Elisa protocol described below, using polyclonal anti-Saposin B antibodies.
The results of the Saposine B assay are shown in Figure 9. 0/5 urine AMN and 2/9 TS urine have a Saposin B concentration greater than 2 g / ml, then that 6/22 (or 27%) have a concentration greater than 2 g / ml.
These results indicate that the protein Saposine B is present in each urine (so-called healthy population or so-called sick population) has concentrations no negligible, i.e. <2 g / ml. These assay results are compatible with those described in the bibliography. However even if Saposin B is present in each urine, it seems to be present in higher concentration in some urine SEP. This increased concentration of saposin B in Sep urine is can-be masked by the basal concentration of this protein in the ordinary state.
So the high urinary concentrations of Saposin B appear to be a marker of MS pathology, and more precisely a marker of a stage or a form of the disease, disease activity, and is certainly influenced by everything ongoing treatment.
Saposin B measured alone seems to be a slightly less marker discriminant of a form or activity of the disease than GM2AP. We also note a two times Labor force individuals have high concentrations of Saposin B
and that these are the same two individuals who also had a high concentration of GM2AP in their urine.
In conclusion, higher urinary concentrations of Saposin B are detected in the urine of MS patients; a high concentration of Saposin B can be then a marker of MS pathology, and more precisely of a form of the disease, of stage of the disease, a period of activity, and can be influenced by any treatment in Classes. These high urinary GM2AP concentrations may also have a value predictive of an onset of worsening of the disease, or mild MS in early evolution, etc. But generally speaking, the high concentrations of Saposin B alone seem to be less discriminating markers than high concentrations of GM2AP
alone.
Absolute values of Saposin B concentrations detected in urine are dependent on affinity. and the specificity of the antibody used, but in a way general, the trend between the three groups of individuals is maintained whatever the antibody used.

Example 17: Co-assay of the GM2AP and Saposin B proteins in the urine.
Figure 10 shows the concentrations of GM2AP assayed in the samples of urine described in Figure 5 versus the concentration of Saposin B
dosed in these same samples and described in Figure 6. In this graph are reported the samples SEP (dark diamonds) and the OND and 'Healthy' samples (white diamonds).
In this graph, it is clear that:
- the higher the GM2AP concentration in the urine, the more Saposin B concentration is high. (We have shown that it is not a case general with other proteins and that that doesn't translate a disturbance renal, with the creatinine assay in parallel for each of the samples tested.);

- high concentrations of GM2AP and Saposin B are characteristic MS samples (with the exception of two urines from the workforce, above) .These joint high concentrations of GM2AP and Saposin B are markers of MS pathology, more precisely of a window of the 5 disease (quadran on the right and at the top of the graph).
In conclusion, this analysis confirms that urinary concentrations of GM2AP (> 400 ng / ml) and Saposin B (> 2 g / ml) are co-detected in the urine of MS patients and may represent markers of MS pathology, more precisely of a form of the disease, a stage of the disease, a period lo of activity, and can be influenced by any treatment in progress: It is advantageous to measure the two proteins in parallel in each sample, and consider the two concentrations.
Assay of GM2AP and Saposin B in the urine of two patients kinetic.
15 Patient MS # 1 - Progressive Remittent Form.
Urine from this patient was collected during the course of his sickness. The patient was hospitalized at JO for an attack. He suffered on D1 a flash of corticosteroids then was followed in time from a clinical point of view (the flash brought clinical improvement). Figure 11 shows the GM2AP dosage profile and some 20 Saposin B in this urine during evolution, and Figure 12 shows the profile of produces two concentrations of GM2AP and Saposin B, reflecting a co-detection high concentrations. High GM2AP and Saposin B concentrations at moment of relapse and hospitalization, gradually decrease in time after the corticosteroid flash up to 90 days.
25 Patient MS # 2 - Progressive Form.
Urine from this patient was collected during the course of his sickness. The patient was hospitalized at JO for an attack. He suffered at JI
a flash of Endoxan then was followed in time from a clinical point of view (the flash provided clinical improvement and at D60, signs of worsening of the disease summer 30 observed). Figure 13 shows the dosage profile of GM2AP and Saposin B in this urine during evolution, and Figure 14 shows the profile of the product of both GM2AP and Saposin B concentrations, reflecting co-detection of concentrations high. Elevated GM2AP and Saposin B concentrations at the time of thrust and hospitalization; gradually decrease over time after the flash Endoxan (or also called cyclophosphamide) up to 23 days and appear to increase for become high at D60, thus showing a perfect correlation with the evolution of the signs clinics.
These results confirm that:
- high concentrations of GM2AP and Sapsoine B in the urine are markers of MS pathologies, and in particular the co-detection of strong concentrations of two proteins together (translated by the product of the two concentrations);
- high concentrations of GM2AP and Saposin B in the urine are disease activity markers (here during the outbreak) or are influenced markers by immunosuppressive treatments such as corticosteroids or Endoxan which lower them concentrations.
This example illustrates that these markers can be used between other:
- to carry out therapeutic monitoring of a patient and assess the benefit therapeutic treatment for a given patient; or - predict a worsening of the disease, predict a peak in activity. etc ...
- decide on an early therapeutic (re) take on clinical signs EXAMPLE 18 Correlation Between the Detection of the Proteins MRP14, GM2AP and Saposin B in the urine and gliotoxicity measured in this urine.
In order to verify a correlation between the presence of these proteins alone or in combination in the urine and gliotoxicity of the urine, were dosed in parallel them protein concentrations of interest and there gliotoxicity of a sampling patient urine with multiple sclerosis (MS), patients with other diseases neurological (AMN) and individuals from the workforce known as TS. From patients. SEP, we note patients with different forms and stages of the disease, under treatment or not, at different disease activities.
The proteins MRP, GM2AP and Saposine B were measured in urine following the Elisa protocols described above. The dosages analyzed in this examples are those described in the previous examples. Each urine sample analyzed in Elisa was analyzed by the MTT test to measure the gliotoxicity of each sample. Gliotoxicity is expressed as a percentage of dead cells (estimated by colorimetry using tetrazolium salts) from a cell line murine astrocytic (CLTT1.1) after 48 hours of incubation in the presence of centrifuged urine.
FIG. 15 represents the concentration of GM2AP as a function of the gliotoxicity of urine determined by MTT test.
22 MS urine (gray diamonds), 5 AMN urine (black diamonds) and 9 so-called urines TS (black diamonds) have been plotted on the graph. It's the same urine who have been studied in Examples 15 and 16. It is observed that all of the control urines (AMN and TS) have low GM2AP levels ( <400 ng / ml) and low gliotoxicity ( <15%), except of a control TS urine (already commented on in Example 15) for which observe a strong GM2AP concentration and gliotoxicity.
MS urine is divided into three sub-populations:
- urine with low GM2AP concentration ( <400 ng / ml) and low gliotoxicity ( <15%), - urine with low GM2AP concentration ( <400 ng / ml) and gliotoxicity (> 15%), or essentially 3 urines, - urine with a high concentration of GM2AP (> 400 ng / ml) and high gliotoxicity (> 15%).
These three sub-populations perhaps reflect MS sub-populations, that is say different forms or stages of the disease, different activities of the disease, different therapeutic benefits, ...
However it can be noted that all urine presenting a strong concentration in GM2AP also exhibit high gliotoxicity.
In conclusion: there is a correlation between urinary concentration high in GM2AP and gliotoxicity (all urine with high concentration in GM2AP are gliotoxic (10/10), and all urine with low concentration in GM2AP are not gliotoxic ( <15%), with the exception of 3 urines / 1 2 MS).
This translates the implication of. GM2AP protein in the mechanism of gliotoxicity, only or in combination, in its natural or modified form, but recognizable by an antibody anti-GM2AP. In addition, the co-detection of a high concentration of GM2AP in urine and high gliotoxicity correlates with a subpopulation of patients with of SEP.
FIG. 16 represents the concentration of Saposin B as a function of the gliotoxicity of urine determined by MTT test.
22 MS urine (gray diamonds), 5 AMN urine (black diamonds) and 9 so-called urines TS (light gray diamonds) have been plotted on the graph. They are the same urine that has been studied in Examples 15 and 16. We observe. that the more urine is rich in Saposin B, the more gliotoxic they are. There is a fairly clear correlation between concentration of Saposin B
and gliotoxicity of urine.

In conclusion: there is a correlation between high urinary concentration in Saposin B and gliotoxicity. This reflects the involvement of the protein Saposine B in the gliotoxicity mechanism, alone or in combination, in its natural form or modified but recognizable by the anti-saposin B antibody used for the assay.

FIG. 17 represents the product of the concentrations of GM2AP and Saposin B
as a function of the urine toxicity determined by MTT test.
22 SEP urines (gray diamonds), 5 AMN urines (black diamonds) and 9 urines say TS (light gray diamonds) examples 15 and 16 have been reported in Figure 17. The gliotoxicity of this urine is analyzed according to the product of GM2AP concentrations and Saposin B, i.e. based on the co-detection of the two proteins in the urine. We very clearly observes a correlation between the product of the two GM2AP concentrations and Saposin B and gliotoxicity, much more important than considering it only one protein.
It is observed that 5/5 of the AMN urines have a product of GM2AP concentration and Saposin B
low and low gliotoxicity; 8/9 TS urine has a product of GM2AP concentration and Weak SaposineB and / or low gliotoxicity. However, there are basically three MS urine subpopulations:
- urine with low GM2AP.Saposin B concentration and low gliotoxicity ( <15%), - urine with a high concentration of GM2AP. Saposin B and high gliotoxicity (> 15%).
These two subpopulations perhaps reflect MS subpopulations, that is to say different forms or stages of malaria, different activities of the illness, various therapeutic benefits, .... However, it is very important to note that all urine with a high concentration of GM2AP and Saposin B, i.e. jointly having a high concentration of GM2AP and Saposin B, also exhibit high gliotoxicity. The two subpopulations of MS patients are all the more marked and clear when we jointly consider the three 1o markers: gliotoxicity, high GM2AP concentration and concentration high in Saposin B. This is confirmed in Figure 18.
In conclusion: there is a correlation between urinary concentration high of GM2AP and Saposin B and Gliotoxicity. All urine with a strong GM2AP and Saposin B levels are gliotoxic, and all urine with a low concentration of GM2AP and Saposin B are not gliotoxic ( <15%), at the exception of 2 urines / 22 SEP. This reflects the involvement of the two proteins and Saposin jointly or in combination in the mechanism of gliotoxicity, under their natural or modified form but recognizable by the anti-GM2AP and anti-saposin B used for the assay. Plus the co-detection of a strong urinary GM2AP and Saposin B concentration and high gliotoxicity correlates with a subpopulation of MS patients (stage, form, activity, treatment of disease?), compared to another subpopulation. These three markers considered jointly allow to discriminate between two subpopulations of MS patients.
Evolution of gliotoxicity and GM2AP and Saposin concentrations B depending on the course of the disease of two patients after and during treatment.
The correlation between gliotoxicity, high concentration of GM2AP AND
Saposin in urine and MS pathology has also been confirmed in measuring these three parameters in the urine of two patients during the course of their nialadie.
Patient # 1: MS remittent-progressive form, hospitalized at OJ for a 10 thrust and received a corticosteroid flash at JI. After the flash, he shown a clinical improvement until D90 - (see Figures 11,12), Patient # 2: MS progressive form, hospitalized at OJ for a flare-up and having received a flash from Endoxan (also called cyclophosphamide) on D1. At D60, there presents new clinical signs of worsening of his disease - (cf.
figures 13.14). .
5 For both patients, it was shown:
- a correlation between urinary gliotoxicity and the clinical course of disease (when clinical signs are severe, gliotoxicity is high ; when the clinical signs decrease following treatment, gliotoxicity decreases and bECOMES
stationary; when signs of worsening appear after treatment, the 10 gliotoxicity seems to increase again), - a correlation between the gliotoxicity rate in the urine of patients and GM2AP and Saposin B concentrations, and - a correlation between the high concentrations of GM2AP and Saposine B and the clinical course of the disease.
15 In conclusion: the dosage of GM2AP AND Saposin B proteins in urine is a good discriminatory marker of a subpopulation of MS
(Stadium, form, activity, treatment of the disease). GM2AP and / or Saposin proteins B are involved in the mechanism of gliotoxicity, alone or in combination, under their natural form or in a form recognizable by polyclonal antibodies used 20 for their dosage. As GM2AP and Saposin proteins are co-detected in strong concentration in. gliotoxic urine it's possible that these two protein act in combination to induce gliotoxicity.

EXAMPLE 19 Immunohistochemical Analysis of Protein Expression 25 GM2A, SAPB, MRP14 and MRP8 in a cropping system producing gliotoxin in vitro (monocyte cultures), as well as in normal brain tissue and pathological MS and witnesses.
Protocol: Monocyte cultures from a patient with MS and a healthy control were carried out in parallel, according to the present protocol described briefly.
30 From the peripheral blood of these two volunteers taken from ACD, the PBMC
(Peripheral Blood Mononuclear Cel1s) are isolated on Ficoll using the technical known to those skilled in the art. Recovered cells (at the level of the ring) are washed twice in RPMI environment. The cells are then listed on Kovas-slide and are sown in a 25 cmZ primary bottle or on a Labteck slide (8 cups) (in permanox) in RPMI medium supplemented with 15% human AB serum at OJ. The cells are grown on dimpled Labtek type blades to provide direct support for analysis of monocytes which adhere to the support and subsequently differentiate into macrophages. For the slides, 2,106 cells are thus seeded at a rate of 0.25 106 cells / well. For the vials, 4,106 cells are seeded at the rate of 0.25 106 cells / well.
At D1, the cells in suspension are recovered and the Labteck wells or flasks are washed twice in RPMI (previously heated to 37 C) before adding RPMI medium supplemented with 5%
human AB serum. AJ 1, J3, J6, J9, J 12 or 14, J 15 the culture medium is changed; the supernatants are removed and cells fixed on slides using the known techniques of one skilled in the art. At each change of environment, at least two slides were fixed in paraformaldehyde and stored for immunohistochemical analysis.
Composition of the medium: RPMI (500 ml) with 15 ml of 200 mM glutamate, 5 ml 100 M sodium pyruvate, 5 ml non-essential amino acids (100x), antibiotics penicillin and streptomycin 100,000 U / l and anti-interferon antibodies humans at 100 U / l.
Results: Four cultures of monocytes in vitro were thus studied in kinetics: two cultures of monocytes from the blood of control individuals and two cultures of monocytes from MS patients. At different times of cultivation (OJ, JI, J3, J6, J9, J12), the Corresponding supernatants were also recovered. Once the kinetics completed, the slides corresponding to the different culture days were incubated in presence of antibodies polyclonal anti-GM2A, SAP-B, MRP-8 and MRP14. The gliotoxicity of each floated thus recovered was estimated by MTT test. The GM2AP protein concentration, MRP14 and Saposin B was also determined in each supernatant by protocol Elisa like described in Examples 13 and 14.
The results of immunofluorescence on fixed cells are summarized below ;
we can note :
- an absence of expression of MRP8 at all stages of the 2 cultures - a clear expression of MRP-14 in the period between D9 and D15, found in both cultures, although stronger in the MS culture.
This expression seems to correlate a step of macrophagic differentiation.
- very low expression (low intensity and low number of cells) is observed at the start of culture in the control culture and corresponds presumably physiological presence of GM2A in lysosomes macrophagic.
- In MS culture, a much clearer expression of GM2A (more high intensity and larger number of cells) is observed, with a marking relatively homogeneous cytoplasmic t0 between D3 and D6, disappears on D9 and is at new noted on J 14-J 15 with intense marking and located at the periphery cytoplasmic, drawing the internal contour of the plasma membrane. These observations do not are not found in all of the control slides.
Analysis with the anti-SAP-B antibody did not yield a interpretable immunohistochemical labeling.
In the cultures of MS monocytes already carried out, 3/3 presented a gliotoxicity peak on D9 and 2/3 a lower peak on D6. No peak being detected in cultures of 2/2 non-MS control monocytes analyzed in parallel. Likewise, the determination of the proteins MRP 14, GM2AP and Saposin B in the supernatant of cultures during kinetics showed that the proteins SapB and GM2AP
are detected by Elisa in the supernatants of MS monocytes and not in those of control monocytes, on days D6 and especially D9 of the culture; proteins don't are not detected beyond these kinetics. Note that the antibodies used to the dosage can recognize the physiological forms of proteins, but also of complexed and / or modified forms.
We therefore observe that the period J6-J9 during which we observe a most important gliotoxicity in the supernatant, is covered by the period J3-J15 during which we observe a less differentiated production of the control negative of GM2A in cells with quantitative and qualitative fluctuations in his = 0 cellular expression (amount of expression and cellular localization).

Example 20: Immunohistology technique on brain sections in paraffin.
Histological sections prepared in paraffin are dewaxed in xylene and alcohol before undergoing a pretreatment which aims to unmask antigens; this pretreatment can correspond to (i) twice 5 minutes in the microwave (750W) in presence of a sodium citrate buffer, citric acid, (ii) treatment with acid by incubation for 15 minutes in a 1% periodic acid solution or by 5 minute incubation in 99% formic acid solution. The endogenous peroxidases are then blocked by incubating the slides for 30 minutes in 1% hydrogen peroxide then extensive washing in water during 15 minutes. The background noise is blocked by incubating the slides for 30 minutes in presence of PBS
Triton 0.03%, 10% donkey serum (for polyclonal antibodies) or 10% donkey serum goat (for monoclonal antibodies). Labeling with the primary antibody is made in applying 100 to 200 l of primary antibody solution per slide (0.5 to 5 g / mi depending on the title) in 0.03% Triton PBS and then incubating for 2 hours at room temperature. The blades are then rinsed 3 times in PBS-Triton for 10 minutes. Antibody labeling secondary is performed using biotinylated antibodies capable of binding specifically to primary antibodies, for example anti-rabbit IgG. or anti-mouse IgG
diluted in PBS-Triton 0.03%. the slides are washed and incubated in a solution for 2 hours (2 l streptavidin-biotin-peroxides complex, 1600 l PBS-Triton 0.03%). The blades are from washed again before being revealed protected from light in buffer A
then rinsed out water before microscopic observation. Buffer A for 5 slides: 25 ml Tris0.05M
pH 7.6, 2.5 ml Inzidazole 1M, 15 ml sterile water, 2 ml DAB 5 mg / ml, 5 ml Ammonium nickel 10%, 30 l HZ02 1%.
The same antibodies were used for an immunohistochemical study, according to the technique described briefly below, on paraffin slides obtained by cut to microtome of brains collected post-mortem from MS and controls deceased from pathologies non-neurological.
The results of the analysis are summarized below:
There is no labeling of non-MS and MS brains in this substance gray and normal white matter (not damaged) with the different anti antibodies MRP8, MRP14, GM2A. Non-specific reactivity did not allow to interpret the results with the anti-saposin B antibody in this application immunohistochemical.
On the other hand, we note, in the areas of MS brain plates - anti-MRP14 reactivity in macrophagic cells and microglial, having a relatively homogeneous distribution over the whole extent of demyelination zones (plaques), - a lower (less frequent) anti-MRP8 reactivity linked essentially to perivascular lymphoid infiltrates - clear anti-GM2A reactivity in macrophages and microgliocytes to areas of plates, with a particular density in the areas constituting the wall glial in peripheral edge of plate. A marking of some astrocytes has also found in demyelination areas.
These various observations show that there is hyperexpression particular of the proteins MRP-14 and GM2A in the cultures of monocytes of Sep producing gliotoxic activity in their supernatant, as well as in zones defining demyelination plaques in MS brains. They testify therefore of the reality of the coincidence between their abnormal co-expression, the production of gliotoxic activity and demyelination lesions.
In addition, their abnormal production in the context of MS, in macrophage cells in the blood as well as in the brain, indicates that it is founded, to carry out their dosage in biological fluids to correlate their amount with the lesional and inflammatory activity of MS.

Example 21 Measurement of the Activity of T Cells by Proliferation of T cells (Sredni et al., 1981).
T cells are washed twice in culture medium to remove any trace of IL2 present in the initial culture medium. Lymphocytes B (EBV-LCL) or monocytes / macrophages taken as cells presenting the antigen, are irradiated at 10,000 rads, washed twice with culture medium (RPMI). 2.10 ' T cells (2: W cells / ml) and 2.10 'autologous irradiated B cells (2.10' cells / ml) are incubated together in the presence of a concentration range growing from the antigen in a final volume of 200 l in microwells. After 48 hours of culture at 37 ° C., 1 Ci of 3H-thymidine in 50 l of RPMI medium is added in each well. T cells, the only ones to divide, incorporate thymidine tritiated in DNA. After 18 hours of culture, the cells of each microwell are harvested on glass wool pellets by aspiration. After osmotic lysis of cells, the radioactivity incorporated into DNA is absorbed on the pellets (cell Harvester 530, Inotech). Each dried tablet is placed in a plastic tube which contains 2 ml of scintillating; the radioactivity b adsorbed on each of the pellets is quantified in a liquid scintillation beta meter (LKB Rackbeta 1217). The results are expressed lo as arithmetic mean of cpm / culture ('counts per minute').

Example 22: Protocol for detecting the association between the peptides and histocompatibility molecules (APC approach transformed with a peptide is setting at CMH 1).
1) Material The sources of histocompatibility molecules are currently two main types: mutant cells and histocompatibility molecules purified.
The mutant cell used is the human T2 cell which is a variant of the TI line produced by fusion of CEM T lymphoma and B lymphoma 721.174 (Salter and Cresswell Embo J 1986, 5 .: 943-949). This cell which is devoid of peptide transporters contains heavy chains of class molecules I free from peptides which will be able to accept exogenous peptides.
Class I histocompatibility molecules purified by affinity chromatography from human B cell lines transformed by EBV can also be used. In this case the endogenous peptides have to be eliminated by treatment with urea. 5 M and sodium hydroxide 12.5 mM (pH
11.7) for 1 hour at 4 C, followed by their elimination by a desalting column (PDLO, Pharmacia). The histocompatibility molecules are immediately put back into presence of the peptides to be tested in a PBS buffer with 0.05% Tween 20, 2 mM
3o EDTA, 0.1% NP40 and 6mM CHAPS, in the presence of 2 giml B2m to facilitate the reassociation (Gnjatic et al., Eur J Immünol 1995 25: 1638-1642).

The peptides tested generally have 8 to 10 residues, sometimes 11 or 12. They have been synthesized by Néosystems (Strasbourg), or by Chiron mimotopes (Victoria, Australia). They are used at concentrations varying from 100 M to 0.1 nM.
2) Assembly protocol (Connan et al., Eur J Immunol 1994, 24:
777; Couillin et al. Eur J Immunol 1995, 25: 728-732).
Aliquots of 8.105 cells in a volume of 64 l, distributed in Eppendorf microfuge tubes, are placed in the presence of a lysis buffer containing mM PBS, pH 7.5 1% NP40, protease inhibitors (1 mM PMSF, 100. M
iodoacetamide, 2 g / ml aprotinin, 10 M leupeptin, 10 M pepstatin and 10 g / ml to trypsin inhibitor). Lysis takes place in the presence of the peptides to be tested for 30 minutes or 1 hour at 37 C. After removal of the non-solubilized material by a centrifugation at 15,000 rpm at 4 ° C., the supernatant and added with 140 l of PBS containing 0.05% Tween 20, 3 mM sodium azide, 1 mM PMSF and 10 mg / ml bovine albumin. Each sample is incubated for 20 hours at 4 VS
t5 in 2 wells of a microtiter plate of the Nunc, Maxisorb type, beforehand coated with a monoclonal antibody (10 g / ml in PBS) which recognizes the molecules histocompatibility with a conforming conformation (s) for the presentation peptides and similar to that (s) present on the surface of cells.
The plaque coated with antibodies is previously saturated with bovine albumin at 10 mg / ml 20 in PBS-Tween before placing the sample. The second antibody that allows the detection of the assembly of histocompatibility molecules is directed against the B2m.
It is coupled either to biotin (NHS-LC biotin, Pierce) or to phosphatase alkaline (P-552, Sigma) and is incubated at 2 g / ml for one hour at 37 C. In the case of the job biotin, 45 minute incubation at 20-25 C with streptavidin coupled 25 with alkaline phosphatase (E-2636, Sigma) is carried out. The activity of the phosphatase alkaline is measured using as substrate 4-methyl-umbelliferyl-phosphate (M-8883, Sigma) at 100 M in 50 mM diethanolamine, pH 9.5 with MgC12 1 mM. The reading is made at 340/460 nm using a cytofluorimeter.
3) Stability of HLA / peptide complexes:
30 The stability of the aforementioned complexes has been studied because it conditions the good presentation of the antigen and induction of the T response. To this end, We used either purified HLA or the T2 cell lysate. With purified HLA, we have eliminated the endogenous peptides (as described in 2) then it was placed in the presence of the peptide to test in Eppendorf tube at 37 C, for varying times from a few minutes to several days. The next incubation phase on a 96-well plate (as described in 2) with anti-antibody HLA is done for one hour at 37 C. The revelation is carried out so classic. With T2 cell lysate, all incubations are also done at 37 C, after adding all protease inhibitors.

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NOTE: For additional volumes please contact the Canadian Patent Office.

Claims (35)

1. ~Utilisation d'au moins un polypeptide comprenant au moins un fragment d'une protéine pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, prévenir ou traiter un état pathologique associé à la sclérose en plaques, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à
l'état natif correspond à SEQ ID N° 17, SEQ ID N° 18, SEQ ID
N° 19, SEQ ID N° 20, SEQ
ID N° 21, SEQ ID N° 22, SEQ ID N° 23, et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité, de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID
N° 17 à SEQ ID N°
23, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à la même famille que la calgranuline B.
1. ~ Use of at least one polypeptide comprising at least one fragment a protein to obtain a diagnostic, prognostic composition, prophylactic or therapy intended to detect, prevent or treat a pathological condition associated with sclerosis in plates, said protein being chosen from proteins whose sequence peptide to the native state corresponds to SEQ ID N ° 17, SEQ ID N ° 18, SEQ ID
N ° 19, SEQ ID N ° 20, SEQ
ID N ° 21, SEQ ID N ° 22, SEQ ID N ° 23, and the sequences peptides that present at at least 70% identity, preferably at least 80% identity and advantageously at least 98% identity with any of the SEQ ID peptide sequences N ° 17 to SEQ ID N °
23, and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family than calgranulin B.
2. ~Utilisation selon la revendication 1, d'au moins deux polypeptides en combinaison tels que définis à la revendication 1. 2. ~ Use according to claim 1, of at least two polypeptides in combination as defined in claim 1. 3. ~Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en en ce que ladite protéine est choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif correspond à SEQ ID
N° 17 et les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 %
d'identité, de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec la séquence peptidique SEQ ID N° 17. 1
3. ~ Use according to claim 1, characterized in that said protein is chosen from proteins whose peptide sequence in the native state corresponds to SEQ ID
N ° 17 and the peptide sequences which present at least 70%
identity, preferably less 80% identity and advantageously at least 98% identity with the sequence peptide SEQ ID No. 17. 1
4. ~Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que la séquence peptidique dudit polypeptide comprend SEQ ID N° 17. 4. ~ Use according to any one of claims 1 to 3, characterized in this that the peptide sequence of said polypeptide comprises SEQ ID No. 17. 5. ~Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que la séquence peptidique dudit polypeptide consiste en SEQ ID N° 17. 5. ~ Use according to any one of claims 1 to 3, characterized in this that the peptide sequence of said polypeptide consists of SEQ ID No. 17. 6. ~Utilisation d'au moins un fragment nucléotidique, pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé à la sclérose en plaques, selon laquelle ledit fragment nucléotidique est choisi parmi des fragments qui codent pour au moins un fragment d'une protéine telle que définie à la revendication 1. 6. ~ Use of at least one nucleotide fragment, to obtain a diagnostic, prognostic, prophylactic or therapeutic composition intended to detect, predict, prevent or treat a medical condition associated with sclerosis in plates, according to which said nucleotide fragment is chosen from fragments which code for at least a fragment of a protein as defined in claim 1. 7. ~Utilisation selon la revendication 6, caractérisée en ce que ledit fragment nucléotidique code pour ladite protéine. 7. ~ Use according to claim 6, characterized in that said fragment nucleotide code for said protein. 8. ~Utilisation d'au moins un fragment nucléotidique pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé à la sclérose en plaques, selon laquelle ledit fragment est un fragment d'une séquence nucléique choisie parmi l'une quelconque des séquences SEQ ID N o 42, SEQ ID N o 43, SEQ ID N o 44, SEQ ID N
o 45, SEQ ID N o 46, SEQ ID N o 47, SEQ ID N o 48, SEQ ID N o 49, SEQ ID N o 50, SEQ
ID N o 51, SEQ ID N o 52 et leurs séquences complémentaires.
8. ~ Use of at least one nucleotide fragment to obtain a diagnostic, prognostic, prophylactic or therapeutic composition intended to detect, predict, prevent or treat a medical condition associated with sclerosis in plates, according to which said fragment is a fragment of a nucleic sequence chosen from Moon any of the sequences SEQ ID N o 42, SEQ ID N o 43, SEQ ID N o 44, SEQ ID N
o 45, SEQ ID No. 46, SEQ ID No. 47, SEQ ID No. 48, SEQ ID No. 49, SEQ ID No. 50, SEQ
ID No. 51, SEQ ID N o 52 and their complementary sequences.
9. Utilisation d'un ligand spécifique d'un polypeptide ou d'un fragment nucléotidique selon l'une quelconque des revendications précédentes pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, pronostiquer, prévenir ou traiter un état pathologique associé à la sclérose en plaques. 9. Use of a specific ligand for a polypeptide or a fragment nucleotide according to any one of the preceding claims for get a diagnostic, prognostic, prophylactic or therapeutic composition intended to detect, predict, prevent or treat a medical condition associated with sclerosis in plates. 10. Procédé pour détecter au moins une protéine associée à la sclérose en plaques, dans un échantillon biologique, caractérisé en ce que l'on met en contact l'échantillon biologique avec au moins un ligand spécifique d'au moins un polypeptide tel que défini à la revendication 1, puis on détecte la formation d'un complexe entre ledit polypeptide et ledit ligand. 10. Method for detecting at least one protein associated with sclerosis in plates, in a biological sample, characterized in that one puts in contact the biological sample with at least one specific ligand of at least one polypeptide such as defined in claim 1, then detecting the formation of a complex between said polypeptide and said ligand. 11. Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que ledit ligand est un anticorps monoclonal, un anticorps polyclonal, un récepteur, un substrat d'activité
enzymatique ou une enzyme dont ledit polypeptide est un cofacteur.
11. Method according to claim 10, characterized in that said ligand is a monoclonal antibody, polyclonal antibody, receptor, substrate of activity enzymatic or an enzyme of which said polypeptide is a cofactor.
12. Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que l'échantillon biologique consiste en des cellules ou des surnageants desdites cellules d'un patient susceptible d'être atteint par la sclérose en plaques. 12. Method according to claim 10, characterized in that the sample biological consists of cells or supernatants of said cells of a patient likely to be affected by multiple sclerosis. 13. Procédé selon la revendication 10 ou 12, dans lequel l'échantillon biologique consiste en des cellules monocytes ou macrophages ou des surnageants de ces cellules. 13. The method of claim 10 or 12, wherein the sample biological consists of monocyte or macrophage cells or supernatants of these cells. 14. Procédé selon l'une quelconque des revendications 10, 12 ou 13, dans lequel l'échantillon biologique consiste en des cellules en culture ou des surnageants de ces cellules en culture, après un délai compris entre 6 et 12 jours de culture, préférentiellement après 9 jours. 14. Method according to any one of claims 10, 12 or 13, in which the biological sample consists of cultured cells or supernatants of these cells in culture, after a period of between 6 and 12 days of culture, preferably after 9 days. 15. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 10, 12 ou 13, dans lequel l'échantillon biologique consiste en des cellules, ex vivo, préférentiellement monocytes ou macrophages. 15. Method according to any one of claims 10, 12 or 13, in which the biological sample consists of cells, ex vivo, preferably monocytes or macrophages. 16. Procédé pour détecter au moins un ligand associé à la sclérose en plaques, dans un échantillon biologique, caractérisé en ce que l'on met en contact l'échantillon biologique avec au moins un polypeptide tel que défini à la revendication 1, puis on détecte la formation d'un complexe entre ledit polypeptide et ledit ligand. 16. Method for detecting at least one ligand associated with multiple sclerosis, in a biological sample, characterized in that one puts in contact the sample biological with at least one polypeptide as defined in claim 1, then we detect the forming a complex between said polypeptide and said ligand. 17. Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que le ligand est un anticorps, un récepteur, un substrat d'activité enzymatique ou une enzyme dont ledit polypeptide est un cofacteur. 17. The method of claim 16, characterized in that the ligand is a antibody, receptor, enzyme activity substrate or an enzyme whose said polypeptide is a cofactor. 18. Procédé selon l'une quelconque des revendications 10 à 17, caractérisé en ce que la séquence dudit polypeptide comprend une séquence peptidique choisie parmi l'une quelconque de SEQ ID N o 17 à 23. 18. Method according to any one of claims 10 to 17, characterized in this that the sequence of said polypeptide comprises a chosen peptide sequence among one any of SEQ ID Nos. 17 to 23. 19. Procédé selon l'une quelconque des revendications 10 à 17, caractérisé en ce que la séquence dudit polypeptide consiste en une séquence peptidique choisie parmi l'une quelconque de SEQ ID N o 17 à 23. 19. Method according to any one of claims 10 to 17, characterized in this that the sequence of said polypeptide consists of a chosen peptide sequence among one any of SEQ ID Nos. 17 to 23. 20. Procédé selon l'une quelconque des revendications 10 à 19, caractérisé en ce que l'échantillon biologique est l'urine, le liquide céphalo-rachidien ou le sérum. 20. Method according to any one of claims 10 to 19, characterized in this that the biological sample is urine, cerebrospinal fluid or serum. 21. Procédé pour détecter, dans un échantillon d'un fluide biologique, au moins un polypeptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 5, selon lequel, éventuellement après purification dudit échantillon, on analyse par spectrométrie de masse le profil de masse obtenu à partir dudit échantillon et on compare à un profil de masse de référence. 21. Method for detecting, in a sample of a biological fluid, the less a polypeptide as defined in any one of claims 1 to 5, according to which, optionally after purification of said sample, it is analyzed by mass spectrometry the mass profile obtained from said sample and compared to a profile of mass of reference. 22. Utilisation d'au moins un polypeptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 5, pour obtenir une composition diagnostique, pronostique, prophylactique ou thérapeutique destinée à détecter, prévenir ou traiter un état pathologique associé à la sclérose en plaques, et de préférence d'au moins un polypeptide tel que défini à la revendication 4. 22. Use of at least one polypeptide as defined in any one of claims 1 to 5, to obtain a diagnostic, prognostic composition, prophylactic or therapeutic intended to detect, prevent or treat a pathological condition associated with the multiple sclerosis, and preferably at least one polypeptide as defined to the claim 4. 23. Utilisation selon la revendication 22, dans laquelle les séquences peptidiques comprennent les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à la même famille de protéines que la calgranuline B. 23. Use according to claim 22, in which the sequences peptide include the peptide sequences or fragments of said sequences belonging to the same family of proteins as calgranulin B. 24. Utilisation selon la revendication 22 ou 23, qui est associée à
l'utilisation d'une détection d'une activité gliotoxique.
24. Use according to claim 22 or 23, which is associated with use detection of gliotoxic activity.
25. Procédé de détection, dans un échantillon, d'une valeur de concentration d'au moins un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, ladite concentration étant associée à un état pathologique, caractérisé en ce qu'on dose ledit polypeptide, le dosage permettant d'obtenir une valeur de concentration qui est comparée à une valeur seuil représentative de la sclérose en plaques. 25. Method for detecting, in a sample, a concentration value from at at least one polypeptide according to any one of claims 1 to 5, said concentration being associated with a pathological condition, characterized in that said dose polypeptide, the assay to obtain a concentration value which is compared to a threshold value representative of multiple sclerosis. 26. Utilisation d'au moins un polypeptide tel que défini à la revendication 1 pour tester l'efficacité d'un agent thérapeutique. 26. Use of at least one polypeptide as defined in claim 1 for test the effectiveness of a therapeutic agent. 27. Utilisation d'au moins un polypeptide comprenant au moins un fragment d'une protéine pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au traitement de la sclérose en plaques, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif correspond à SEQ ID N o 17, SEQ ID N o 18, SEQ ID N
o 19, SEQ ID
N o 20, SEQ ID N o 21, SEQ ID N o 22, SEQ ID N o 23, les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité de préférence au moins 80 % d'identité et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N o 17 à 23, et les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à une même famille de protéines que la calgranuline.
27. Use of at least one polypeptide comprising at least one fragment of a protein for the preparation of a pharmaceutical composition intended to treatment multiple sclerosis, said protein being chosen from proteins whose sequence peptide in the native state corresponds to SEQ ID No. 17, SEQ ID No. 18, SEQ ID No.
o 19, SEQ ID
No. 20, SEQ ID No. 21, SEQ ID No. 22, SEQ ID No. 23, peptide sequences who have at least 70% identity, preferably at least 80% identity, and advantageously at least 98% identity with any of the sequences peptide SEQ ID N o 17 to 23, and the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins as calgranulin.
28. Utilisation selon la revendication 27, caractérisée en ce que le polypeptide a la séquence SEQ ID NO : 17. 28. Use according to claim 27, characterized in that the polypeptide a the sequence SEQ ID NO: 17. 29. Utilisation d'au moins un fragment nucléotidique, pour tester l'efficacité

d'un agent thérapeutique pour un état pathologique associé à la sclérose en plaques, selon laquelle ledit fragment nucléotidique est choisi parmi les fragments qui codent pour au moins un fragment d'une protéine, ladite protéine étant choisie parmi les protéines dont la séquence peptidique à l'état natif correspond à SEQ ID N o 17, SEQ ID N o 18, SEQ ID N
o 19, SEQ ID
N o 20, SEQ ID N o 21, SEQ ID N o 22, SEQ ID N o 23, les séquences peptidiques qui présentent au moins 70 % d'identité, de préférence au moins 80 % et avantageusement au moins 98 % d'identité avec l'une quelconque des séquences peptidiques SEQ ID N
o 17 à 23, et les fragments complémentaires desdits fragments et les fragments qui codent pour les séquences peptidiques ou les fragments desdites séquences appartenant à la même famille de protéines que la calgranuline B.
29. Use of at least one nucleotide fragment, to test the effectiveness of a therapeutic agent for a pathological condition associated with sclerosis in plates, according to which said nucleotide fragment is chosen from the fragments which code for at least a fragment of a protein, said protein being chosen from proteins whose sequence peptide in the native state corresponds to SEQ ID No. 17, SEQ ID No. 18, SEQ ID No.
o 19, SEQ ID
No. 20, SEQ ID No. 21, SEQ ID No. 22, SEQ ID No. 23, peptide sequences who have at least 70% identity, preferably at least 80% and advantageously at minus 98% identity with any of the peptide sequences SEQ ID N
o 17 to 23, and the complementary fragments of said fragments and the fragments which encode for the peptide sequences or the fragments of said sequences belonging to the same family of proteins than calgranulin B.
30. Utilisation pour tester l'efficacité d'un agent thérapeutique pour un état pathologique associé à la sclérose en plaques, de protéines recombinantes et/ou codées par tout ou partie des fragments nucléotidiques définis à la revendication 29. 30. Use to test the efficacy of a therapeutic agent for a condition pathology associated with multiple sclerosis, recombinant proteins and / or coded by all or part of the nucleotide fragments defined in claim 29. 31. Utilisation d'au moins un fragment nucléotidique pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au traitement de la sclérose en plaques, selon laquelle ledit fragment nucléotidique est tel que défini à la revendication 29. 31. Use of at least one nucleotide fragment for the preparation of a pharmaceutical composition intended for the treatment of multiple sclerosis, that said nucleotide fragment is as defined in claim 29. 32. Utilisation pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au traitement de la sclérose en plaques, de protéines recombinantes et/ou codées par tout ou partie des fragments nucléotidiques définis à la revendication 29. 32. Use for the preparation of a pharmaceutical composition intended for the treatment of multiple sclerosis, recombinant proteins and / or coded by all or part of the nucleotide fragments defined in claim 29. 33. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 29 à 32, caractérisée en ce que ledit fragment nucléotidique code pour ladite protéine. 33. Use according to any one of claims 29 to 32, characterized in what said nucleotide fragment codes for said protein. 34. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 29 à 31, caractérisé
en ce que ledit fragment est un fragment d'une séquence nucléique choisie parmi l'une quelconque des SEQ ID N o 42, SEQ ID N o 43, SEQ ID N o 44, SEQ ID N o 45, SEQ
ID N o 46 et SEQ ID N o 47, SEQ ID N o 48, SEQ ID N o 49 et SEQ ID N o 50, SEQ ID N o 51, SEQ ID
N o 52, et leurs séquences complémentaires.
34. Use according to any one of claims 29 to 31, characterized in that said fragment is a fragment of a nucleic sequence chosen from Moon any of SEQ ID No. 42, SEQ ID No. 43, SEQ ID No. 44, SEQ ID No. 45, SEQ
ID No. 46 and SEQ ID No. 47, SEQ ID No. 48, SEQ ID No. 49 and SEQ ID No. 50, SEQ ID No.
51, SEQ ID
No. 52, and their complementary sequences.
35. Utilisation selon la revendication 34, caractérisée en ce que la séquence nucléique est SEQ ID N o 42. 35. Use according to claim 34, characterized in that the sequence nucleic acid is SEQ ID No. 42.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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