BG67567B1 - Метод за количествена оценка за бързо прогнозиране и контрол на дисбиози при кърмачета на възраст от един месец до една година - Google Patents

Метод за количествена оценка за бързо прогнозиране и контрол на дисбиози при кърмачета на възраст от един месец до една година Download PDF

Info

Publication number
BG67567B1
BG67567B1 BG113148A BG11314820A BG67567B1 BG 67567 B1 BG67567 B1 BG 67567B1 BG 113148 A BG113148 A BG 113148A BG 11314820 A BG11314820 A BG 11314820A BG 67567 B1 BG67567 B1 BG 67567B1
Authority
BG
Bulgaria
Prior art keywords
breast milk
sample
feces
infant
dysbiosis
Prior art date
Application number
BG113148A
Other languages
English (en)
Other versions
BG113148A (bg
Inventor
Илия ИЛИЕВ
Николов Илиев Илия
Деян Прокопов
Крумов Прокопов Деян
Вълко Калинкин
Иванов Калинкин Вълко
Тонка Василева
Атанасова Василева Тонка
Веселин Биволарски
Петров Биволарски Веселин
Мариана Николова
Манолова Николова Мариана
Даниела Моллова
Георгиева Моллова Даниела
Original Assignee
Гама Консулт-Калинкин, Прокопов И С-Ие Сд
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Гама Консулт-Калинкин, Прокопов И С-Ие Сд filed Critical Гама Консулт-Калинкин, Прокопов И С-Ие Сд
Priority to BG113148A priority Critical patent/BG67567B1/bg
Priority to EP20742153.8A priority patent/EP4162081A1/en
Priority to PCT/BG2020/050001 priority patent/WO2021237312A1/en
Publication of BG113148A publication Critical patent/BG113148A/bg
Publication of BG67567B1 publication Critical patent/BG67567B1/bg

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/689Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for bacteria
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • C12Q1/10Enterobacteria
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6883Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2570/00Omics, e.g. proteomics, glycomics or lipidomics; Methods of analysis focusing on the entire complement of classes of biological molecules or subsets thereof, i.e. focusing on proteomes, glycomes or lipidomes
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2800/00Detection or diagnosis of diseases
    • G01N2800/06Gastro-intestinal diseases

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретението се отнася до метод за ин витро оценка и прогноза за балансиране на чревната микробиота при новородени от един месец до една година, основаващ се на интегриран подход с изчисляване на коефициенти на корелация между ключови показатели, разделени на три основни групи: 1. Корелация между състав и количество на микроорганизмите в майчина кърма и във фецес на детето; 2. Корелация между ензимен профил и активност на ензимите, отговорни за усвояването и метаболизирането на компонентите на кърмата (лактоза, липиди, олигозахариди, протеини) в проби от кърма и фецес на детето; 3. Корелация между количеството на метаболитите, получени от метаболизирането на основните компоненти на кърмата от микробиотата в кърмата и във фецеса на детето. Методът съгласно изобретението осигурява възможност за бързо прогнозиране на дисбиози при кърмачета от един месец до една година. По този начин той ще намери приложение в алгоритъма при прецизна диагностика на чревната микробиота при новородени на възраст от един месец до една година, като методът спомага и за бързо последващо установяване на вида на дисбиозата и степента на нарушение.

Description

Настоящото изобретение се отнася до областта на медицинската диагностика, фармацията, биотехнологиите.
Предшестващо състояние на техниката
Съществуват различни данни, че кърменето осигурява значителна защита срещу инфекциозни и възпалителни заболявания, различни увреждания и подобрява познавателните способности (Bartick and Reinhold, 2010; Dieterich et al., 2013; Kramer et al., 2009). Това до голяма степен се дължи на свойствата на кърмата и съдържащите се в нея олигозахариди да повлияват микробиалното колонизиране при новородените. Palmer et al. (2007) показват, че бебетата се колонизират с приблизително 107 различни вида микроорганизми през първата седмица от живота. Тези тесни взаимоотношения на организма с гастроинтестиналната микрофлора може да са в основата и да бъдат критични по отношение на здравето на новороденото, както и с риска от развитие на различни други неинфекциозни заболявания. Оптималното кърмене всъщност остава високо ефективна стратегия за общественото здраве за оцеляване на бебетата, особено за намаляване на смъртността поради гастроентерит и пневмония в развиващите се страни (Bhutta et al., 2013). Изследванията на кърменето показват защитната роля на кърмата срещу много хронични и имунни състояния, по-специално, диабет тип 1, некротизиращ ентероколит, астма и левкемия (Bartick and Reinhold, 2010).
Развитието на микробиотата в храносмилателната система на новороденото е постепенен и динамичен процес, който се определя от няколко фактора, като например начин на раждане, недоносеност, вида на хранене, свързани заболявания и антибиотичната терапия, както и от влиянието на околната среда, което налага персонализиран подход (Wall et al. 2009). Освен това процесът на колонизацията е силно повлиян от диетата (кърмата и /или изкуственото мляко). По време на първия месец след раждането бифидобактериите и колиформите (в частност Е. coli) са преобладаващи, последвани от Lactobacillus spp. и Bacteroides и се различава в широки граници между отделните индивиди (Wall et al., 2009). Промени в съотношението на доминиращите представители на чревната микрофлора на новородените се появяват след около една година от живота, главно в резултат на въвеждане на нова храна в диетата на бебето. Броят на представителите на Lactobacillus spp., Bacteroides spp. и Clostridia се увеличава, докато бифиброидите и Е. coli намаляват. Найнакрая на възраст от около 2 години, микробните съобщества в червата достигат по състав, подобен на този открит в червата на възрастните (Koenig et al. 2011). Видът Bifidobacterium longum е най-честият първоначален колонизатор на гастроинтестиналният тракт на новородените (Palmer et al., 2007).
Човешкото мляко притежава множество механизми за защита на новородените: клетки на имунният отговор, имуноглобулини, вродени защитни протеини, пептиди, свободни мастни киселини, цитокини и хемокини, гликани и олигозахариди (Ballard and Morrow, 2013). Сред различните биоактивни компоненти на човешкото мляко, олигозахаридите са най-разпространените и включват значително повече от 100 различни биоактивни въглехидрата, изградени от 3 до 32 монозахарида (Newburg et al., 2005). Като клас олигозахаридите са 6 - 12 g/L от кърмата и до голяма степен се синтезират от лактоза (Bode, 2012). Човешката коластра съдържа приблизително 22 - 24 g/L млечни олигозахариди (Newburg et al., 1995; Urashima et al., 2012). В човешкото мляко олигозахаридите са третият по концентрация компонент след лактозата и липидите и тяхното количество е доста по-високо от количеството на протеините (Newburg et al., 1995). Структурата на повече от 100 човешки олигозахариди е характеризирана до момента (Urashima et al., 2011а, b; Kobata, 2010). Характеризирането на физиологията бифидо бактериите е фокусирано в голяма степен върху способността им да метаболизират различни хранителни олигозахариди. Този род бактерии разполагат с набор от трансмембранни пермеази, осигуряващи метаболизирането на различни въглехидратни полимери, като хранителни фибри, включително човешки млечни олигозахариди, които преминават неразградени до дисталните отдели на храносмилателния тракт (Moro et al., 2006; Macfarlane and Cummings, 1999).
Съществуват данни само за няколко вида бифидобактерии, способни да метаболизират и използват, като въглероден източник човешки млечни олигозахариди. Такива видове типично са изолирани предимно от микрофлората на гастроинтестиналният тракт на новородени. Установено е, че асоциирани с новороденото бифидобактерии са способни да усвояват предимно лакто-N-тетраози (LNT) или лакто-N-неотетраози (LNnT) (LoCascio et al., 2007).
B bifidum секретира извънклетъчна 1,2-п-1-фукозидаза (ЕС 3.2.1.63), която разцепва крайни 1,2-вфукозилови връзки, които защитават галактозните остатъци в лакто-N-биоза, като по този начин позволяват продължаване на катаболитните процеси до пълното им усвояване (Katayama et al., 2004; Nagae et al., 2007). В допълнение, лакто-N-биозидаза (EC 3.2.1.140) освобождава лакто-N-биоза от лакто-N-тетраоза и от други млечни олигозахариди, в които липсва фукозилиране или сиалиране (Wada et at., 2008). Веднъж получена, лакто-N-биозата се транспортира през клетъчната мембрана от специален ABC транспортер, който интегрира лакто-N-биозо свързваща субединица (Suzuki et al., 2008; Wada et al., 2007). Известно е също така, че B. longum използва ендо-п-N-ацетилгалактозаминидаза (ЕС 3.2.1.97) за извличане на галакто-N-биоза от О-свързани муцинови гликани (Fujita et al., 2005). Всъщност, присъствието на както ендо-N-ацетилгалактозаминидаза, така и на фукозидазната активност дава възможност на В. bifidum да разгражда муцин (Ruas-Madiedo et al., 2008). Данните за усвояване на олигозахаридите от майчината кърма от лактобацилите и останалата съпътстваща микрофлора са оскъдни, като липсват конкретни корелации в посока тип ензим-ензимна активност-вид микроорганизъм-количество микроорганизми.
Метаболитите са следствие на физиологичното състояние на човешкия организъм от една страна, а от друга на физиологичната активност на съпътстващата микрофлора в интестиналния тракт. Това ги прави идеален начин за проследяване на промените, предизвикани от болестно състояние или при лечение. Оценката на количеството и разнообразието на метаболити е особено важен момент за разбирането на многобройните взаимодействия между генетика, околна среда и микробиота. В ключови точки от метаболитните процеси, където те се пресичат нискомолекулните метаболити посредничат при тези взаимоотношения.
Изследователите разглеждат микробиома, като потенциален източник на биомаркери за различни заболявания. Въпреки че това може да е плодородна зона за биомаркерите, има много примери за това, че различни метаболити могат да се свързват с едно и също заболяване, което намалява надежността им, като биомаркери.
Друг показател, чийто потенциал се изследва за биомаркер са стойностите на pH на фекални проби. Има данни, че те директно корелират с бактериалните видове, колонизиращи червата на бебето. Например установена е пряка връзка между по-ниските стойности на pH на фекални проби и значително намалени количества на потенциално патогенни бактериални популации (т. е. Clostridiaceae, Enterobacteriaceae, Peptosteptoccocaceae и Veillonellaceae). Друг пример е констатираната корелация между изобилието от специфични видове Enterobacteriaceae, които предизвикват възпаление на червата и наличие на колики при кърмачета. Тези не благоприятни ефекти могат да се дължат на факта, че липополизахаридите, получени от ентеробактерии, индуцират по-силни възпалителна активност в сравнение с други бактерии, произвеждащи липополизахариди.
Астмата е най-разпространеното хронично заболяване на детството. Установена е от канадски учени корелация между настъпващи промени в микробиома на червата при бебета до една година (дисбиоза), които повлияват развитието на астма. Изследвани са ефектите на микробиалната дисбиоза на червата върху атопичен хрип при население, живеещо в развиващи се страни с нисък икономически стандарт. Микробиални дисбиози на 3-месечна възраст се свързват с по-късно развитие на атопичен хрип. Например наблюдавана е дисбиоза при еквадорските бебета, включващи различни бактериални таксони, включително и няколко таксона микроскопични гъбички. Нивата на фекалните късоверижни мастни киселини при тримесечни бебета с атопичен хрип показват ясни тенденции на увеличена концентрация на ацетат и намалена концентрация на капронова киселина.
Някои от защитните механизми на човешкото мляко се дължат на олигозахаридите. Като се има предвид нарастващата степен на заболявания, свързани с нерегулираната микробиота и имунитет на гостоприемника, налице е глобален интерес за тестване на нови хранителни подходи и функционални храни, съответстващи на тези, открити в кърмата, за да се оптимизира здравето на гостоприемника и да се възстанови бактериалната флора. Описаните дотук данни от литературата доказват, че използваните модели на изследване както за диагностични цели, така и за контрол на микробиотата при деца на възраст до една година не могат да предоставят алгоритъм за бърза и надежна оценка състоянието на чревната микробиота и асоциирането й с различни заболявания, защото са линейни, отнесени само за един показател.
Създаването на метод за количествена оценка за бързо прогнозиране на дисбиози при кърмачета от 1 месец до 1 година и за изследване на отклонения в човешката микробиота изисква интердисциплинарен подход и при крайната оценка може да включва данните от различни методи на изследване, които се обработват като бази данни със специфични изчислителни техники.
Техническа същност на изобретението
Задачата на изобретението е да създаде метод на база ин витро количествена оценка, който да осигури възможност за бързо прогнозиране на дисбиози при кърмачета на възраст от 1 месец до 1 година, и който да намери приложение в създаване на модел (алгоритъм) за прецизна диагностика на чревната микробиота при новородени на възраст от един месец до една година, като методът спомага и бързо последващо установяване на вида на дисбиозата и степента на нарушение. Методът се базира на интердисциплинарен подход при анализ на количествения и качествен състав на микробиота, вида и количеството на ключови ензими и метаболити и анализ на данните посредством информационна система.
През последните няколко години в проучвания са разкрили, че и коластрата и кърмата от здрави жени съдържа бактерии, включително стафилококи, стрептококи, коринебактерии, млечнокисели бактерии, пропионобактерии и бифидобактерии (Fernandez et al., 2013). Напоследък прилагането на различни техники, включително и метагеномни подходи потвърди присъствието на ДНК от тези и други бактериални родове в кърмата и коластрата (Hunt et al., 2011; Cabrera-Rubio et al., 2012; Fernandez et al., 2013; Jost et al., 2013, 2014; Ward et al., 2013; Jimenez et at.,2015). Следователно, тези биологични течности са непрекъснати източници на живи бактерии към стомашно-чревния тракт (McGuire and McGuire, 2015) Други проучвания показват, че има трансфер на бактериални щамове от майка към бебето в процеса на кърмене (Albesharat et al., 2011; Martin et al., 2012; Jost et al., 2014). Въпреки някои установени корелации на количеството и състава на чревната микробиота с детекция на определени заболявания, и използваните молекулярно-биологични методи са продължителни и скъпи за ежедневната практика, което ги прави недостъпни за масова употреба. Няма установени корелационни зависимости с данните за ключови ензими и метаболити, отговорни за усвояването на специфични компоненти от коластрата и кърмата и динамиката на концентрацията им при промяна на диетата и за преодоляване на чревни дисбиози.
Някои бактерии от устната кухина на бебето могат да замърсят млякото по време на сучене поради поток на мляко обратно в млечните канали (Ramsey et al., 2004). Установено е, че в рамките на 24 часа след раждането, коластрата съдържа типични устни бактерии като Veillonella, Leptotrichia и Prevotella (CabreraRubio et al., 2012). Въпреки, че произходът на човешкия слюнчен микробиом все още е доста не добре проучен (Zaura et al., 2014), Streptococcus spp. изглежда е един от доминиращите видове както при възрастни (Nasidze et al., 2009; Yang et al., 2012) така и при бебета (Bearfield et al., 2002; Cephas et al., 2011). Стрептококите също са сред доминиращите видове в човешката коластра и кърма (Jimenez et al., 2008а, b; Hunt et al., 2011; Martin et al., 2015). Доказано е, че устното здраве на майката корелира тясно с вероятността за развитие на зъбен кариес при детето (Zaura et al., 2014). Някои съединения в човешкото мляко (например, човешки млечни олигозахариди, протеини) могат да повлияят на колонизацията на отделни видове индиректно. Например, открити са млечни протеини, като казеини и лактоферин, които имат способност да инхибират прикрепването на кариогенни стрептококи към хидроксиапатит и да насърчават прикрепването на коменсални бактерии in vitro (Johansson и Lif Holgerson, 2011). Няма проведени достатъчно мащабни и за продължително време проучвания, характеризиращи развитието на оралната микрофлора по време на неонаталният период и детството. В първоначални проучвания се е смятало, че оралната колонизация от бактерии, причиняващи зъбен кариес може да се случи след поникване на първите млечни зъби при новороденото, като по-късно обаче е доказано, че кариогенният Streptococcus mutans може да присъства в устната кухина на бебето преди появата на твърди тъкани там (Law et al., 2007).
Епидемиологичните изследвания разкриват редица експозиции в околната среда, свързани с астма. Това би могло да обясни ескалацията на астмата през последните 30 години. Бебетата, изложени на риск от астма, проявяват преходни състояния на чревна дисбиоза и промени в метаболизма (например уробилиноген) през първите 3 месеца от живота. Тези метаболитите или разликите в микробиомите се използват при проектирането на предварително за използване на пробиотици или да послужат, като прогностични биомаркери. Разработен е модел чрез комбиниране оценки на производителността на екосистемите и генерирането на екосистемни услуги за дефиницията на дисбиоза при кърмачета. Според него микробиома на червата се характеризира с:1) без смущения в състава и количествата на таксоните при промяна на диетата или приема на антибиотици; 2) висока податливост на инвазия от външни таксони; и 3) слабо използване на наличните ресурси (в т. ч. олигозахариди от кърма). Здравословното/балансираното състояние на микробиотата се характеризира, като високо функционираща екосистема, когато микробиома на червата е: 1) стабилен във времето по състав и количество на таксоните, 2) устойчив на инвазия от алохтонни бактерии; и 3) да демонстрира висока конверсия на олигозахаридите на кърмата в крайни продукти и биомаса от полза за бебетата. Този модел е агностичен по метод и индекс на избор и осигурява количествен показател и обективен подход за оценка микробиома, но е ограничен основно в данни за състава и количеството на микроорганизмите и не се базира на корелационни зависимости между състав и количество на микроорганизмите, активност на ензимите, отговорни за усвояването на олигозахаридите от кърмата и количеството на метаболитите, секретирани от микробиотата.
Настоящата заявка за патент се отнася до разработването на специфичен метод за ин витро количествена оценка за бързо прогнозиране на дисбиози при кърмачета на възраст от 1 месец до 1 година, при което се постига възможност за контрол на човешкия микробиом, като при метода, съгласно описанието се отчитат от една страна общи показатели като възраст и пол, а от друга специфичните показатели за здравословното състояние на човека. Предлаганият метод е основан на обработването на данни от анализи на разнообразието и съотношението на микроорганизмите в интестиналния тракт на детето и други телесни течности (слюнка, кърма, фецес), количество на метаболити използвани, като биомаркери и отчитане на нивото на ензимна активност на ензими, използвани като биомаркери, като се позволява отчитане на индивидуалните особености на хората.
Методът, предмет на настоящата заявка за патент се основава на интегриран подход за ин витро анализ на баланса на чревната микробиота при деца от един до дванадесет месеца и прогноза за нейното възстановяване при установена дисбиоза, посредством изчисляване на коефициенти на корелация между ключови показатели, разделени на три основни групи:
1. Корелация между състав и количество на микроорганизмите в майчина кърма и във фецес на детето.
2. Корелация между ензимен профил и активност на ензимите, отговорни за усвояването и метаболизирането на компонентите на кърмата (лактоза, липиди, олигозахариди, протеини) в проба от кърма и проба от фецес на детето.
3. Корелация между количеството на метаболитите, получени от метаболизирането на основните компоненти на кърмата от микробиотата в кърмата и във фецеса на детето.
Методът за ин витро количествена оценка за бързо прогнозиране на дисбиози при кърмачета до една година изисква следния ход на анализа:
1. Протокол за количествен анализ на човешка микробиота чрез в реално време qPCR. Представеният протокол може да се прилага за установяване на отклонения за анализ на дисбиоза при новородени от един до дванадесет месеца и да бъде включен към алгоритъм за идентифициране на състояние, отклонения и правила за възстановяване баланса на микробиотата. Чрез него ще могат да се определят количествено различни групи микроорганизми от полезната и патогенната микрофлора, които да се използват за изчисляване на съотношенията между отделните видове (таблица 1). От съществено значение за определяне степента на дисбиоза представляват съотношенията бифидобактерии/ бактероиди; лактобацили/бактероиди; (бифидобактерии+лактобацили)/бактероиди;(бифидо-бактерии+лактобацили)/дрожди;
(бифидобактерии+лактобацили)/Е. coli. Друг важен показател е съотношението между бифидобактериите и основните ензими, отговорни за усвояването на основните компоненти на кърмата (лактоза, липиди, протеини, олигозахариди).
Стойностите на отделните съотношения варират в зависимост от възрастта, здравословното състояние и диетата. Диапазонът на съотношенията при здрави индивиди е представен в таблица 6.
Би LAB Вас Др Би Е а- С- a- Lip Pro Μ фи ter aw фа cob да! gat fuc ase tea em df old du du/ act att mi se аб es asi an das on 5 des das e am е e μ
we Sacreraitfes Дрожди
£_ еоМ а- ______ 1
в-gatactasfdasn
a-fucosidosc Lipase Protease ---
|
Метаболити L 1
BG 67567 Bl
Таблица 1. Модел на съпоставяне на данните от изследваните 12 показатели.
2. Анализ на ензими в проби от майчина кърма и фецес от деца от един до дванадесет месеца, които са отговорни за метаболизирането на основните компоненти на кърмата (лактоза, олигозахариди, липиди, протеини - β-галактозидаза, α-галактозидаза, а-глюкозидаза, β-глюкозидаза, α-фукозидаза, липаза, протеаза). За целите на метода се изчисляват съотношенията между отделните ензими, което дава информация за типа на метаболитните процеси, които се осъществяват, а от друга страна дават информация за капацитета на полезната микрофлора за поддържане баланса на чревната микрофлора. Ензимът α-фукозидаза дава пряка информация за потенциала на адхезия на полезната микрофлора (бифидобактерии и лактобацили) върху епителните клетки на чревната лигавица, докато останалите ензими дават информация за скоростта на размножаване на полезните микроорганизми и мястото им с тази специфична екологична ниша. Данните за количеството на ензимите корелират с данните за количеството метаболити, установени в съответните проби. Диапазонът на съотношенията на стойностите на ензимните активност е описан в таблица 6.
3. Анализ на количеството късоверижни мастни киселини в проби от кърма и фецес на бебета от един до дванадесет месеца. Количественият анализ на лактат, ацетат пропионат и бутират в проби от кърма и фецес на бебета на възраст до една година дават обективна информация за метаболитните процеси осъществявани и с участието на съпътстващата микробиота. Наличие на късоверижни мастни киселини е пряко потвърждение за функционалната активност на бифидобактериите и лактобацилите. Съотношението между отделните групи микроорганизми, описани в първа точка на предлагания метод и количеството на късоверижните мастни киселини предоставя съществена информация за баланса на микробиотата и за нейното функционално състояние. Освен това за целите на предлагания метод могат да се изчислят съотношенията между ензимните активности на ензимите от втора точка (вторият етап на анализа) и количеството на късоверижните мастни киселини. Диапазонът на съотношенията на стойностите на ензимните активност е описан в таблица 6.
4. Изчисляване корелационните зависимости между съотношенията на отделните компоненти за дефиниране на статуса на микробиома при деца от един до дванадесет месеца. Предлаганият от нас ин витро модел за определяне на чревната дисбиоза при деца от един до дванадесет месеца, като състояние на специфичната екологична ниша в интестиналния тракт, корелиращо с намаляване на риска от остри и хронични заболявания. Освен това моделът може да предоставя рамка за оценка на ефективността на стратегии за превенция и лечение на чревни дисбиози.
Примери на изпълнение на изобретението
Пример 1
Ин витро изследване на 12 показателя по оценка на баланса на микробиотата при бебета от един месец до дванадесет месеца:
1. Протокол за количествен анализ на човешката микробиота чрез в реално време qPCR.
Представеният протокол може да се прилага за установяване на отклонения за анализ на дисбиоза при новородени от един до дванадесет месеца и да бъде включен към алгоритъм за идентифициране на състояние, отклонения и правила за възстановяване баланса на микробиотата.
А. Праймери и флуоресцентно белязани сонди за провеждане в реално време qPCR детекция на бактериални групи и видове в проби от таргетните групи.
Праймерните двойки и флуоресцентно белязани сонди за провеждане в реално време qPCR детекция на бактериални видове и съобщества и в проби от таргетните групи са представени в таблица 2
Таблица 2. Праймери и флуоресцентно белязани сонди за провеждане в реално време qPCR детекция на бактериални групи и видове в представеното изследване.
Ttprentt Ойитришпа груп· ИМ пял ПргВчгрки инди HaTirfttWK i
Bifidobacterium ip. Bif-F Bif-R TCGCGTC KGGTGTGAAAG CCAC ATCCAGCRТССАС Rinffita e! cl!, 2004 ____________________[,
iumr/ildel, Г r t v е 1 t i i a FcWsfiiyrmtioriiH BPP-F BPP-R GGTGTCGCrCTTA AGTGCCAT CGGAYGTAAGGGCCGTGC tiirwia fl al. 20&t
Loctobucilius Lacb-F 1 .act*· Fl AGCAGTAGGGAATC ГГССА CАСГПСТАСACACATGGAG Wafer ci ui.. iWf Heitigfio!t
Bijidchaetemirrt F Bifid 04c RBiHd 06 CGGGTGAGTA ATGUGTG ACC TGATAGGACGCGACCCCA Fuw ei a!
Bacteraidei, PrcvotcHe F Barter II R Bartct 08 CCTWCOATGGATAGGGGTT C ACGCTACTTCXXTTGGTTCA G Fuki et uL 2i?(W
Luctiihailllti» Ltueotoitnc, РеЛостСгит FJ.actt DS R L-Mto tM agc act aggg a atcttcc a cgccactggtgttcvtccatata Fum ft tit-. 1009
Тотална 4pciha бактериални микрофлора F Ban 1369 R~Prokl4« cggtgaatacgttcccgg tacggctaccttgttacgactt cl pl,. lOM
F CkptOD RCiept DU CCTTCCGTGCCQSAGTTA GAATTAAACCACATACTCCACTOCTT Fwct ct at 1009
CiaiSritiivm ctxcaitlei FCcoc 07 R_Ccoc 14 GACGCCOCGTGAAGGA AGCCCC AGCCTTTC ACATC Fiwt etat. 1009
Bifiitfibaeieriiiirt сонда P_Bifid tFAM-CTCCTGGAAAC6<4i TG-HHQ-I Furet at at.. 2009
Butltrfildfi, Pwalella OWJW PBkJOj HEX-AAGGTCCCCCACATTG- bmq-i Atanzcfat, 1996
To Тил на ЧрбКна бактериална ни ирофлпра Сонда P TMISIOF ό F A M*CTTG T A C A C ACCGCCC □ ТС BHQ-I Sublet ft al., 2000
Ootfridutm itptum Сонда FclepOl 6FAM- CACAATAAGTAATCCACCBHQ- Fortt tint.. 2009
' Clwiridwm eocenides Сснкля F_Lr«4H2 HEX- CGGTACCTGACTAAGAAGUHQ*I Frenis eta), i9Wi
BG 67567 Bl
2. Контролни бактериални щамове
Бактериални щамове, използвани за контрол на специфичността на използваните праймери и белязани сонди, както за количествена оценка на отделни бактериални видове и съобщества са представени в таблица 3. Използваните щамове са закупени от Националната банка за промишлени микроорганизми и клетъчни култури (НБПМК) и German collection of Microorganisms and cell cultures (DSMZ). Щамовете се култивират аеробно или анаеробно в селективни хранително среди, съгласно препоръките на НБПМК и DSMZ. От развитите култури за всеки щам се правят серии от разреждания, които се поставят върху съответната агарова среда в петрита, за да се определи общ брой бактерии-колоно-образуващи единици (CFU). Допълнително от направените разреждания се вземат проби от по 1,0 ml, които се центрофугират при следните условия: 12000 rpm/3min. Получените утайки от бактериални клетки се съхраняват при - 80°С до използването им за анализ.
Таблица 3 Контролни бактериални щамове използвани в изследването
Щди Hrwmrc Првлакпик n rtsoMM ДНК ιψ· ipeuaw PCR _
Lactobacillus deibruectit subip. ButgarKus 1113-2 T ΗΕΠΜΚΚ детекция нв Lactnhaciilus, без югалаванс нд флуоресцентни сонди
Laciobacillm acidophilus IBW T НБПМКК летеици* на Laetabaciifus, 6ci нцгщшмне на флуоресцентни сити
tjiiiiituKittui rhuittnasur 1010 T HbilMKK детекция на Loctolmciil^ без нзпалавзнг на фтуорссисиши сонди
BtfiitebacteruM longvm iubsp. inngum DSM*20219 DSMZ детекция на Bifidobaciermni, без използване на флуоресцентни «ндИ
Bacieraidet /rugllil DSM-2151 DSMZ детекция нв без нзпшшше на флуоресцентни ишдн
ndulescintis 3 DSMZ детекция па Bifidirhticteriitm, с флуоресцентно белязани сонди
BifidobtKiifrmm Icmgwn sutsp. infunhs D$M-2M88 D5MZ детекция на Bijidiibacterium, е флуоресцентно белязани сонди
Bifidobacterium breve DSM-202 i J DSMZ детекция на Bifidobacterium, с флуоресцентно белязани сонди
Ch>slridiun> tepirtm ΟΐΜ-753 DSMZ детекция кд с флуоресцентно белязани сонди
Clostridium eoeeoidtt (Siautla iueeoidts) D5M-935 DSMZ детекция нв Closindium е флуоресцентно бета йнн сонди
BG 67567 Bl
3. Изолиране на ДНК от бактериални култури и проби от таргетните групи
Бактериалната геномна ДНК от контролните щамове и изолати от проби на таргетните групи се екстрахира чрез използване на Blood and Tissue kit DNeasy (Qiagen, Hilden, Germany).
Микробиална ДНК от фекални проби и от кърма се изолира QIAamp DNA Stool mini kit (Qiagen, Hilden, Germany). Първоначално 200 mg фекална проба/кърма се разреждат с 1,8 ml стерилен Pbs буфер. Към 200 μΐ разредена фекална проба се прибавят 20 μΐ лизозим (150 mg/ml) и 130 μΐ лизиращ буфер (2,0 Mm Na2EDTA; 20 Mm Tris-HCL; 1,2 1.2% Triton X-100). Сместа се инкубира при 37°С за 30 min, след което се изолира ДНК.
4. Количествено определяне на ДНК
Количеството и честотата на бактериалната геномна ДНК изолирана от щамовете стандарти и от изследваните проби се определя спектрофотометрично. За целта се определя абсорбцията на подходящо разредените проби ДНК при дължини на вълните 260 nm и 280 nm. Измерванията се извършват на спектрофотометър Shimadzu UV-2600 при светлинен лъч 8,5 mm, след нулиране на апарата срещу кювета с елуираш буфер. Еднородността на геномната ДНК се определи чрез визуализиране на изолираната ДНК в 1% (w/v) агарозен гел чрез електрофореза и оцветяване с етидиев бромид. Пробите с изолираната ДНК се съхраняват при -20°С.
5. Провеждане на В реално време qPCR
В реално време qPCR реакциите за детекция и количествено определяне без използване флуоресцентни сонди се използва SYBR Green PCR Master Mix (Applied Biosystems). Реакциите се залагат в 96-ямкови плаки с краен обем на всяка 25 μΐ. Реакциите се провеждат в реално време PCR CFX96 Touch (BIO-RAD) с версия на софтуера 3.0.1224 при условия за всяка от целевите групи посочени в таблица 4.
Таблица 4 Праймери и реакционни условия за провеждане на в реално време qPCR за количествено определяне на бактерии във фекални проби.
ДряЦямрн· дмМкя Целеи срути Реанштта умвшц it
Bi UF и Bif-R 1 Bifiiiubaclcrimii Прий мери - 0,5 μ М всека; Предснстураиия-З m in^5 *C; Дсщтурзцш - |5 “C; Свързивпе па ираймерите 20 , Уям*авднс “ 30 sci/72 X; Детекция )0 «сХОХ; Брой тгижлн - 35-
BPP-F в BPP-R Улгркугптопт ПрЙЙиерц -0.5 дМ кскч; Прсжнитурапиг - 5 ntih/95 X; Дсииураци* |5«t/95X; Свързване на праймсрнте - 20 “С; Улължааше - 30 sec/72 X; Детекция - 30 ЗСС&О X; Брой цикли -35.
Latb-F и LaclabaciHia Праймери 0,5 μΜ вмкн; Преде мкггураиил - 5 Ηΐίη/95 X; Дсн^тураляя - 15 sw-45 X: Свързване на праймерате - 20 «с/58 X; Удъ-1г*нва1»е - 30 мс/72 X; Детекция - 30 kCSO X; Брой инклн-35.
F Jjirto 05 и R_Latie> 04
Првймер^ - 0,2 μ M Ьсекн; Прсде(|щгу1И11нв - 10 min'95 Деиятурацня - 30 soc^S X; € вързване на пряймсрлтс - 30 («Μ X;
Удио*айанг I min.T2 °C;
Детекция - 30 тес/ЯО *С Брой цнклц Ю.
BG 67567 Bl
В реално време qPCR реакциите за детекция и количествено определяне на бактерии с използване на флуоресцентно белязани сонди се използва TaqMan Universal PCR Master Mix (Applied Biosystems). Реакциите се залагат в 96-ямкови плаки с краен обем на всяка реакция 25 μΐ. Условия за провеждане на всеки от анализите за определяне на целевите групи бактерии са посочени в таблица 5.
Таблица 5. Праймери, флуоресцентни сонди и реакционни условия за провеждане на В реално време qPCR за количествено определяне на бактерии във фекални проби.
ПраЬмкрпдм&к* Целеи група yr И детекция
1 F Bifid 09c, R Bifid 06. сонда Bifidobacterium Прдймсри - 0,2 μ M всеки; Сонда - 0,2 μΜ: Преленатурацил - 10 min^S C; Денатурацчя - 30 sec/95 ΎΖ; Удължаване на нраймерте н детскина = 1 τηϊπ/60 С: Spoil цикли = 40.
F Bactcr 11, R Banter OS, сонда РВасЗОЗ Bacteniide*. Prevaietla
F Bart 1369. R 1492, сонда Определяне на общо кпличегтно бактерии
F Ckpt 09, R Clepi 08, сонда PilepOl Clostridium leprum
F CcocOT, R Ccoc 14, сонда P”Erec482 Ciostndt urn caecaides
BG 67567 Bl
Всички В реално време qPCR анализи на количествено определяне на бактерии във фекални проби и кърма се провеждат с минимум двукратно повторение от различни анализи.
6. Електрофоретичен анализ на ДНК фрагменти, получени след провеждане на В реално време qPCR.
За проверка на размера и интегритета на амплимерите, получени след провеждане на В реално време qPCR, се провежда агарозна гел-електрофореза на реакционните продукти. Разделянето на фрагментите, ДНК се извършва в 2% агарозен гел, при напрежение 35 V и 25 mA сила на тока. Разделените фрагменти се визуализрат флуоресцентно - чрез обработка на гела с етидиев бромид и осветяване с UB светлина. Приблизителните размери на ДНК фрагментите се определят чрез съпоставка със стандар, съдържащ малки ДНК фрагменти с известни размери - SmartLadder SF (Eurogentec, Belgium).
7. Статистическа обработка на данните
Статистическата обработка на данните и тяхното графично представяне се извършват със софтуер SYSTAT версия 13.2 и SigmaPlot версия 12.0 (Systat Software Inc., USA).
Анализ на ензими в проби от майчина кърма и фецес от новородено
1. Определяне на ензимна активност на β-галактозидаза (ЕС 3.2.1.23)
Ензимната реакция се проведе при условия: 100 тМ натриево ацетатен буфер, pH 6.0, съдържащ 2 тМ разтвор на о-нитрофенил-З-О-галактопиранозид (ONP-Gal) и подходящо разредени клетки или надутаечна течност след дезинтегриране на клетките при 37°С Реакцията се спира с 1 М натриев карбонат. Една единица активност на ензима катализира получаването на 1.0 pmol о-нитрофенол за една минута при pH 4.0 и 37°С. Съдържанието на о-нитрофенол се определя спектрофотометрично при 410 nm дължина на вълната на спектрофотометър Beckman Coulter DU 800.
Всички експерименти за определяне на ензимната активност са проведени с трикратна повтаряемост.
2. Определяне активността на α-галактозидаза (ЕС 3.2.1.22)
Ензимната реакция се проведе при условия: 400 тМ цитратен буфер, pH 4.0, съдържащ 9.9 тМ разтвор на р-нитрофенил a-D-галактопиранозид (PNP-Gal) (приготвя се в дестилирана вода чрез разтваряне на рнитрофенол a-D-галактопиранозид, Sigma кат. N.« N-0877) и подходящо разредени клетки или надутаечна течност след дезинтегриране на клетките при 37°С. Реакцията се спира с 200 тМ боратен буфер, pH 9.8. Една единица активност превръща 1.0 qmole от р-нитрофенил a-D-галактопиранозид в о-нитрофенол и D-галактоза за една минута при pH 4.0 и 37°С.
Съдържанието на р-нитрофенол се определя спектрофотометрично при 405 nm дължина на вълната на спектрофотометър Beckman Coulter DU 800.
Всички експерименти за определяне на ензимната активност са проведени с трикратна повтаряемост.
3. Определяне активността на α-L - фукозидаза (ЕС 3.2.1.51)
Ензимната реакция се проведе при условия: 100 mМ цитратен буфер, pH 6.5, съдържащ 10 mМ разтвор на р-нитрофенил a-L-фукопиранозид (PNP-FUC) (приготвя се посредством разреждане на р-нитрофенил a-Lфукопиранозид (Sigma кат. № N3628) с дестилирана вода и подходящо разредени клетки при 37°С . Реакцията се спира с 200 mМ боратен буфер, pH 9.8. Една единица активност превръща 1.0 pmole от р-нитрофенил a-Lфукопиранозид в р-нитрофенол и L-фукопиранозид за една минута при pH 4.0 и 37°С. Съдържанието на рнитрофенол се определя спектрофотометрично при 405 nm дължина на вълната на спектрофотометьр Beckman Coulter DU 800.
Всички експерименти за определяне на ензимна активност са проведени с трикратна повтаряемост.
4. Определяне активността на α-глюкозидаза (ЕС 3.2.1.20)
Ензимната реакция се проведе при условия: 100 mМ ацетатен буфер, pH 6,0, съдържащ 1.25 mМ разтвор на р-нитрофенил a-D-глюкопиранозид (приготвя се посредством разреждане на р-нитрофенил a-Dглюкопиранозид (Sigma кат. № N3628) с дестилирана вода, и подходящо разредени клетки при 37°С. Реакцията се спира с 0.5 М натриев карбонат. Една единица активност превръща 1.0 pmоlе от р-нитрофенол a-D-глюкопиранозид в р-нитрофенол и D-глюкопиранозид за една минута при pH 6.0 и 37°С. Съдържанието на р-нитрофенол се определя спектрофотометрично при 405 nm дължина на вълната на спектрофотометър Beckman Coulter DU800.
Всички експерименти за определяне на ензимна активност са проведени с трикратна повтаряемост.
5. Определяне активността на β-глюкозидаза (ЕС 3.2.1.28)
Ензимната реакция се проведе при условия: 0.1 М ацетатен буфер, pH 5.0, съдържащ 20 mM разтвор на р-нитрофенил-b-D-глюкопиранозид (ONP-Glu) и подходящо разредени клетки при 37°С. Реакцията се спира с 0.2 М натриев карбонат. Една единица активност превръща 1.0 pmole от р-нитрофенил a-D-глюкопиранозид в р-нитрофенол и D-глюкопиранозид за една минута при pH 5.0 и 37°С. Съдържанието на р-нитрофенол се определя спектрофотометрично при 405 nm дължина на вълната на спектрофотометър Beckman Coulter DU 800.
Всички експерименти за определяне на ензимна активност са проведени с трикратна повтаряемост.
6. Определяне активността на протеаза
Протеазната активност на клетките и надутаечната течност (HYT) се изследва в присъствие на казеин (Fluka) като субстрат. Една единица (U) активност на протеазата се дефинира като количеството ензим, което хидролизира казеина до 1 pmol тирозин за 1 минута, при pH 7,5 и 37°С.
Ензимната реакция се провежда при следните условия: в 50 mМ фосфатен буфер, pH 7,5 се разтвяря 0,65% (w/v) казеин и 1,0 ml подходящо разредена проба (клетки или HYT). Реакцията протича за 10 min при 37°С на водна баня. Реакцията се спира с добавяне на 110 тМ трихлорооцетна киселина (ТХО) (Merck) при 37°С. Пробите се инкубират с ТХО за 30 минути при същата температура. За отделяне на неразградения казеин, пробите се центрофугират при 9000 об./15 min, 4°С. Надутаечната течност се анализира за количество освободен тирозин, от разграждането на казеина, в присъствие на 500 mM NazCOs и 0,5 М разтвор на Фолин реагент (Merck) при 37°С за 30 минути. Измерва се абсорбцията при Z = 660 nm (А660) на спектрофотометър Beckman Coulter DU 800, спрямо контрола, съдържаща вместо проба дестилирана вода. От измерената А660 по стандартна права се определя концентрацията на тирозина (pmol). За построяването на стандартна права се използва като стандарт L-тирозин (Sigma-Aldrich).
Всички експерименти за определяне на протеазна активност са проведени минимум с трикратна повторяемост.
7. Определяне активността на липаза (ЕС 3.1.1.3)
Ензимната реакция се проведе при условия: 0.1 М ацетатен буфер, pH 7,6, съдържащ 0,8 mМ разтвор на р-нитрофенил-палмитат и подходящо разредени клетки при 37°С. Реакцията се спира с 0.2 М оловен ацeтат lеаd (II). Една единица активност превръща 1.0 pmole от р-нитрофенил палмитат в р-нитрофенол и палмитат за една минута при pH 7,6 и 37°С. Съдържанието на р-нитрофенол се определя спектрофотометрично при 405 nm дължина на вълната на спектрофотометър Beckman Coulter DU 800.
Всички експерименти за определяне на ензимна активност са проведени с трикратна повторяемост.
Анализ на късоверижни мастни киселини в проби от кърма и фецес на бебета от един до дванадесет месеца.
За показването на късоверижните мастни киселини в пробите от екскременти е разработен следният протокол:
1. Изолиране на късоверижни мастни киселини от екскременти.
Към 100 mg прясна фекална проба или майчина кърма се добавя 2% НзРО4 или 0,05% H2SO4 в съотношение 1:10. Пробите се хомогенизират много добре на вортекс 2 пъти по 2 min. Полученият хомогенизат се центрофугира 10 min, 13 000 rpm, след което се отделя супернатанта. От супернатанта се вземат 200 pL, които се екстрахират с 200 μL органичен разтворител (CH2CI2, AcCN, EtOH, EtOAc). Пробите се хомогензират, след което се центрофугира 5 min, 13 000 rpm. Полученият органичен слой се отделя и подлага на HPLC анализ.
2. HPLC метод за анализ на късоверижни мастни киселини.
Използвана е HPLC ситема Konik-Tech (Испания) снабдена с колона Aminex НРХ-87Н Ion Exclusion Column (7.8 mm i.d. x 30 cm, Biorad, Richmond, СА) и предколона Micro-Guard Cation-H (4.6 mm i.d. x 30 mm, Biorad). Определянето на пробите е осъществено с UV детектор при дължина на вълната 210 nm, при подвижна фаза 0,005М H2SO4, скорост на потока 0,6 ml/min и температура на колоната Т = 40°С.
Идентифицирането на пиковете е осъществено по времената на задържане спрямо стандарти на късоверижни мастни киселини: млечна киселина, оцетна киселина, пропионова киселина и бутенова киселина. За количественото определяне на късоверижните мастни киселини са изготвени стандартни прави в концентрации 25 - 1,56 mmol/L. Изведени са корелационни уравнения, описващи площа на ника (у) и концентрацията на късоверижните мастни киселини (х, mmol/L). Стандартните прави са с линейни участъци между 25 - 1,65 mmol/L и с коефициент на корелация 2 > 0,9999.
| Параметри Кърма Фецес
| Видове микроорганизми
1 1. Бифндобактсрни 10-10*
2 Лактобацилн 1040* 10М0*
3. Клостридин ПВ-10*
4. Bacte™ deles * J0M0?
5. Ентероюки 5-1О7 KH-IO
6 Е. кол и — типични -
7- Дражлоподобни гъбички от род Candida - 103-1 ¢5
BG 67567 Bl
1. Алфв-галактозндаза (U/mg протеин 1 0,1 АЗ 0JA1
2. Бета-гапактозидата (П/mg протеин) 0,4-2,0 0,2-1,0
3. Алфа-П юкозндаза (U/mg протеин) 0,2-1,2 0.1 А5
4, Бста-глютпндвза (U/mg протеин) одая одая
5. А глфа-фукозиддча (U/mg протеин) одая 0,05 АЗ
6. Липата (IJ/mg протеин)
7. npoTtaia (U/mg протеин) 0,5-3,0 0,2-1.5 ,
Мета&олнти
1. Млечна кисел н на {mmol/g) 0.5-1.2 0,2-0.8
2. Опетни киселина (mmol/g) 0,2-0,6 0,3-0,7
3. Пропионова к нсслин a 1mmoi/g) 0JA3 0,05-0,3
4. Маслена киселина (mmol'g) 0.05-02 0,02-0.13
Таблица 6. Диапазон на стойностите на измерваните показатели при здрави деца на възраст от един до дванадесет месеца.
В резултат на проведените анализи на тестваните майчина кърма и фецес от новородено на възраст между един и дванадесет месеца се изчисляват следните коефициентни съотношения:
- количеството Бифидобактерии/Бактероиди >1.0;
- количеството Бифидобактерии/Лактобацили >1.0;
- количеството Бифидобактерии+Лактобацили/Бактероиди >1.0;
- количеството Бифидобактерии+Лактобацили/Дрожди (за фецес от детето) >1.0;
- количеството Бактероиди/Дрожди (за фецес от детето) >1.0;
- количеството Бифидобактерии+Лактобацили/Е. Коли >1.0;
- количеството Бифидобактерии+Лактобацили/активност на бета-галактозидаза при съотношение от 0,1 - 1,0;
- количеството Бифидобактерии+Лактобацили/активност на алфа-фукозидаза при съотношение от 0,1 > 1,0;
- ензимните активности бета-галактозидаза/алфа-галактозидаза при съотношение от 0,1 > 1,0;
- ензимните активности бета-галактозидаза/алфа-фукозидаза при съотношение от 0,1 > 1,0;
- ензимните активности бета-галактозидаза/липаза при съотношение от 0,1 > 1,0;
- ензимните активности бета-галактозидаза/протеаза при съотношение от 0,1 > 1,0;
- ензимните активности бета-галактозидаза+алфа-галактозидаза/алфа-фукозидаза при съотношение от 0,1 >1,0;
- метаболитите млечна киселина/оцетна киселина/маслена киселина при съотношение от 0,1 > 1,0.
BG 67567 Bl
Където:
1. С - съотношение между числеността на бактерии (ензими, метаболити) А и В;
2. А - численост на бактерии (ензими, метаболити) А;
3. A nom.min. - долната граница на нормата за численост на бактерии (ензими, метаболити)А;
A nom.max. - горна граница на нормата за численост на бактерии (ензими, метаболити) А; В - численост на бактерии (ензими, метаболити) В;
В nom.min. - долната граница на нормата за численост на бактерии (ензими, метаболити) В;
В nom.max. - горна граница на нормата за численост на бактерии (ензими, метаболити) В.
Тенденциите при отчитане на съотношенията са изразени в таблица 7, които се получават при съответното съотношение на показателя от колоната на таблицата към показателя реда на таблицата.
BG 67567 Bl
Бифидо
LAB
Bacteroides
Дрожди
Бифидо+МКБ
E. coli «- galactosidase в-gatactoiidase a-fucasidase
Lipase
Protease
Метоболити
Би LAB Вас Др Би Е.
фи ter от фи cofl
да aid ди до+
МК
Б
а- в σ- up Pro Me
gal O5C tea I7T0
ЕГ€£ act asi se
OS) das urn
dos das е U
е е
Таблица 7. Тенденции на съотношенията между отделните показатели, със стрелка нагоре се отбелязва положителен ефект върху микробиотата, а със стрелка надолу отрицателен ефект върху микробиотата.
Пример 2.
Ин витро изследване на 6 показателя по оценка на баланса на микробиотата при бебета от един месец до дванадесет месеца:
1. Протокол за количествен анализ на човешка микробиота чрез в реално време qPCR.
Представеният протокол може да се прилага за установяване на отклонения за анализ на дисбиоза при новородени от един до дванадесет месеца и да бъде включен към алгоритъм за идентифициране на състояния, отклонения и правила за възстановяване баланса на микробиотата.
А. Праймери и флуоресцентно белязани сонди за в реално време qPCR детекция на бактериални групи и видове в проби от таргетни групи
Праймерните двойки и флуоресцентно белязани сонди за провеждане на в реално време qPCR детекция на бактериални видове и съобщества в проби от различни таргетни групи са представени в таблица 8
Таблица 8. Праймери и флуоресцентно белязани сонди за в реално време qPCR детекция на бактериални групи и видове, използвани в представеното изследване
TftprrTUI баГПфШдв» група ИЛИ МНО ПрвЖмсрни СОПДН 5*3 HiTwmur
Bifidatsacterium sp. Qif-F ЖСК TCGCGTC YGGTGTGA A AG CC AC АГСС AGC RTCCAC Rinlftlu eiaL, 2004
Вас tetuides, Р r е v d t с 11 a, Porpfyrun/ιηίΙ, dpp-f ЯРР-R GGTGTCGGCTTA AGTGCCAT CGG A YGTA AGGGCCG TGC Binifiln ei ai.
Lactobacilli Lacb-F Lacb-R AGCAGTAGGGAATC ГГССА C ACCGCTAC AC AC ATOG AG Waiter el til.. 2001 2001
Btfidoftaclerium F_Ili|id09c I 06 CGGGTGA GTA Al GCG TG ACC TGATAGGACCCGACCCCA Furetet al., 2009
Bacteroidei, Prcvofiila F_Bactcr 11 R_Bactcr OS CCTWCG ATGG A1AGGGGTT CACGCTACTTGGCTGGTTCAG Puret etal, 2009
LaciahaciilMt, Leμζvη os 1 pc, Pediacoccus F_Lacio 05 R^Laclo 04 AGC AGTAGCiG A ATCTTCC A CGCC ACTGGTGTTC YTCC ATATA - - Pitret er ai.t 2009 1
BG 67567 Bl
2. Контролни бактериални щамове
Бактериални щамове, използвани за контрол на специфичността на използваните праймери и белязани сонди, както и за количествена оценка на отделни бактериални видове и съобщества са представени в таблица 2. Използваните щамове са закупени от Националната банка за промишлени микроорганизми и клетъчни култури (НБПМК) и German Collection of Microorganisms and Cell Cultures (DSMZ). Щамовете се култивират аеробно или анаеробно в селективни хранителни среди, съгласно препоръките на DSMZ и НБПМК. От развитите култури за всеки щам се правят серия от разреждания, които се посяват върху съответната агарова среда в петрита, за да се определи общ брой бактерии - колоно-образуващи единици (CFU). Допълнително, от направените разреждания се вземат проби от по 1,0 ml, които се центрофугират при следните условия: 12000 rpm/3min. Получените утайки от бактериални клетки се съхраняват при -80°С до използването им за анализ.
Таблица 9. Контролни бактериални щамове, използвани в изследването.
Щам HjTvHinik Приливни щ гтвкная ДЦК npw ruJb din« HR
Lactobacillus deibrueekii зиЬзр, BulgonciL! 1132 Т НБГ1МКК Детекция ня Lactobacillus, Get изполааанс на флуоресцентни сонди
Lactobacillia acidophilus Α89ά Т НБПМКК петекшн па Lactobacillus. без използване на флуоресцентни сонди
Laclobacitiia rhamtu/xiu 1-010 1 НБПМКК дстсяния на LactfrbtiLiliux, без тпотшмне на флуцресцеггтни сонан
Bifidfd>actcrium tongam subsp, Amgum DSM-3Q2I9 DSMZ детекция иа Bifidobacterium, без използване на флуоресцентни сонди
BacteroidcJJragdis DS M-2151 DSMZ детекция на Bacte^ides. без изполляалс на флуоресцентни сонди
Bifidobacterium adtdnscertii.t DSM*2OO8j DSMZ детекция на Bifidobacterium, с флуоресцентно белязани сонди
Bifidobacterium Itmgum iubsp. Infinitis DSM-200S8 DSMZ детекция на Bifidobacterium, е флуоресцентно белязани сонди
Bifidohctclerium breve DSM’20213 DSMZ детекция на Bifidobacterium. е флуоресцентно беляздни сонди
C/tumdium leptum DSM-75J DSMZ детекция на Clostridium с флуоресцентно белязани сонди
Clostridium caccaidex ifHuuiia coceoidej} DSM-9JS DSMZ детекция иа Closfr/dtum с флуоресцентно белязани сонди
BG 67567 Bl
3. Изолиране на ДНК от бактериални култури и проби от таргетните групи
Бактериална геномна ДНК от контролните щамове и изолати от проби на таргетните групи се екстрахира чрез използване на Blood and Tissue kit DNeasy (Qiagen, Hilden, Germany). Микробиална ДНК от фекални проби и от кърма се изолира чрез използване на QIAamp DNA Stool Mini Kit (Qiagen, Hilden, Germany). Първоначално 200 mg фекалната проба/кърма се разрежда в 1,8 ml стерилен PBS буфер. Към 200 μΐ разредена фекална проба се добавят 20 μΐ лизозим (150 mg/ml) и 130 (лизиращ буфер (2,0 mM Na2EDTA; 20 тМ TrisНС1; 1,2% Triton X-100). Сместа се инкубира при 37°С за 30 минути, след което се изолира ДНК.
4. Количествено определяне на ДНК
Количеството и чистотата на бактериалната геномна ДНК изолирана от щамовете стандарти и от изследваните проби се определят спектофотометрично. За целта се определя абсорбцията на подходящо разредените проби ДНК при дължини на вълните 260 nm и 280 nm. Измерванията се извършват на спектофотометър Shimadzu UV-2600 при светлинен път 8,5 mm, след нулиране на апарата срещу кювета с елуираш буфер. Еднородността на геномната ДНК се определи чрез визуализиране на изолираната ДНК в 1% (w/v) агарозен гел чрез електрофореза и оцветяване е етидиев бромид. Пробите с изолираната ДНК се съхраняват при -20°С.
5. Провеждане на В реално време qPCR
В В реално време qPCR реакциите за детекция и количествено определяне на бактерии без използване на флуорсцентни сонди се използва SYBR Green PCR Master Mix (Applied Biosystems). Реакциите се залагат в 96-ямкови плаки с краен обем на всяка реакция 25 pL. Реакциите се провеждат на В реално време PCR CFX96 Touch (BIO-RAD) с версия на софтуера 3.0.1224 при условия за всяка от целевите групи бактерии, посочени в таблица 10.
Таблица 10. Праймери и реакционни условия за провеждане на В реално време qPCR за количествено определяне на бактерия във фекални проби.
1 Цч|«ж* група уздм· а ЙГПКЩМ L
ЗГ-F н Bif R mfidetiacurium пдоиерн - 0.5 um всеки; Прсденатураика S min/95 °C; - 15 IC; Свързване на премерите - 20 «a/ii Tl; Удължаване -= 30 ксг73 °C; Детткаииа 30 десЦЮ °C; Брой uukjih - J5,
ΕϊΡΡ-F н HPP-R 1 f'nrphyromamii Праймери -0,5 μΜ всеки; П редени т^рация — 5 пйпОД f; Денатурадця = 15 -С; СвърЗЬалС на праймернтс - -0 5Съ:68 *С. I Удължаване — J0 ЗсС/72 С; Д«е*ШИ- 30 кс/ВД | Брой анали - 35.
Lacb-F и Lteb-Я Праймери - 0,5 μΜ всеки; Преде нитурдии! — 5 °C: Денатураиля - [5 я&45 *С; Свързване на праймерте — 20 °C; Улължаяие - Ю кес/72 °C; Детекция - ЗОмсЛЮ °C; bpoil ιιηικλη-35.
F Leclo 05 н R_Licto 04 /WinJet'uj ЙраРмсрн -0,1 цМ всеки. Предена ураияя - 10 °C. Лс№пурвн1№1 - 30 иСУЗ °C; Спршне нд цранмерше - ID κΰόΟ *С; Упмжлмне ~ 1 mln/73 °C; । Дияцив 30 «е/ВО *С; Крой цикли - 40.
BG 67567 Bl
В реално време qPCR реакциите за детекция и количествено определяне на бактерии с използване на флуоресцентно белязани сонди се използва TaqMan Universal PCR Master Mix (Applied Biosystems). Реакциите се залагат в 96-ямкови плаки с краен обем на всяка реакция 25 pL. Условия за провеждане на всеки от анализите за определяне на целевите групи бактерии са посочени в таблица 11.
Таблица 11. Праймери, флуоресцентни сонди и реакционни условия за провеждане на В реално време qPCR за количествено определяне на бактерии във фекални проби.
1 Пдоймфи· а : фяуорстЦсипи бслжпиа озда Целнм група ————=----------. ----1 Рс1кпжяпП1 зтлмка дгтооиг»
09c, R Bifid 06, сонда Ρ_ΒίίΜ BifltiotutcKrfvm Прайчери -0,2 μΜ кекн: Сонда -0,2 μΜ: Прсдснатурацна- IB min/95 “С; Дснату раци* - 30 sec^S “С. Удължаване на гтрай перите и дете кцня - 1 ηίη'&ϋ Έ.
F Bactcr 1L, R Bader 08, ctwm Р^ВлсУВ F Baa 1369, R >492, сонди РЛМ13Я9Р Raeferotdtn, Γηνοίίϋϋ Определяне на общо количество бактерии ——_____
BG 67567 Bl
Всички В реално време qPCR анализи на количествено определяне на бактерии във фекални проби и кърма се провеждат с минимум двукратно повторение от различни анализи.
6. Електрофоретичен анализ на ДНК фрагменти, получени след провеждане на В реално време qPCR
За проверка на размера и интегритета на амплимерите, получени след провеждане на В реално време qPCR, се провежда агарозна гел-електрофореза на реакционните продукти. Разделянето на фрагментите ДНК се извършва в 2% агарозен гел, при напрежение 35 V и 25 mA сила на тока. Разделените фрагменти се визуализрат флуоресцентно - чрез обработка на гела с етидиев бромид и осветяване с UB светлина. Приблизителните размери на ДНК фрагментите се определят чрез съпоставка със стандар, съдържащ малки ДНК фрагменти с известни размери - SmartLadder SF (Eurogentec, Belgium).
7. Статистическа обработка на данните
Статистическата обработка на данните и тяхното графично представяне се извършват със софтуер SYSTAT версия 13.2 и SigmaPlot версия 12.0 (Systat Software Inc., USA).
Анализ на ензими в проби от майчина кърма и фецес от новородено
1. Определяне на ензимна активност на О-галактозидаза (ЕС 3.2.1.23)
Ензимната реакция се проведе при условия: 100 тМ натриево ацетатен буфер, pH 6.0, съдържащ 2 тМ разтвор на о-нитрофенил-Б-О-галактопиранозид (ONP-Gal) и подходящо разредени клетки или надутаечна течност след дезинтегриране на клетките при 37°С. Реакцията се спира с 1 М натриев карбонат. Една единица активност на ензима катализира получаването на 1.0 pmol о-нитрофенол за една минута при pH 4.0 и 37°С. Съдържанието на о-нитрофенол се определя спектрофотометрично при 410 nm дължина на вълната на спектрофотометър Beckman Coulter DU 800.
Всички експерименти за определяне на ензимната активност са проведени с трикратна повтаряемост.
2. Определяне активността на a-L-фукозидаза (ЕС 3.2.1.51)
Ензимната реакция се проведе при условия: 100 тМ цитратен буфер, pH 6.5, съдържащ 10 тМ разтвор на р-нитрофенил a-L-фукопиранозид (PNP-FUC) (приготвя се посредством разреждане на р-нитрофенил a-Lфукопиранозид (Sigma кат. № N3628) с дестилирана вода и подходящо разредени клетки при 37°С. Реакцията се спира с 200 тМ боратен буфер, pH 9.8. Една единица активност превръща 1.0 pmole от р-нитрофенил a-L фукопиранозид в р-нитрофенол и L-фукопиранозид за една минута при pH 4.0 и 37°С. Съдържанието на рнитрофенол се определя спектрофотометрично при 405 nm дължина на вълната на спектрофотометър Beckman Coulter DU 800.
Всички експерименти за определяне на ензимна активност са проведени с трикратна повтаряемост.
Анализ на късоверижни мастни киселини в проби от кърма и фсцес на бебета от един до дванадесет месеца.
За доказването на късоверижните мастни киселини в пробите от екскременти е разработен следният протокол:
3. Изолиране на късоверижни мастни киселини от екскременти.
Към 100 mg прясна фекална проба или майчина кърма се добавя 2% НЗРО4 или 0,05% H2SO4 в съотношение 1:10. Пробите се хомогенизират много добре на вортекс 2 пъти по 2 min. Полученият хомогенизат се центрофугира 10 min, 13 000 rpm, след което се отделя супернатанта. От супернтанта се вземат 200 pL, които се екстрахират с 200 pL органичен разтворител (СН2С12, AcCN, EtOH, EtOAc). Пробите се хомогензират, след което се центрофугира 5 min, 13 000 rpm. Полученият органичен слой се отделя и подлага на HPLC анализ.
4. HPLC метод за анализ на късоверижни мастни киселини.
Използвана е HPLC ситема Konik-Tech (Испания) снабдена с колона Aminex НРХ-87Н Ion Exclusion Column (7.8 mm i.d. x 30 cm, Biorad, Richmond, СА) и предколона Micro-Guard Cation-H (4.6 mm i.d. x 30 mm, Biorad). Определянето на пробите е осъществено с UV детектор при дължина на вълната 210 nm, при подвижна фаза 0,005М H2SO4, скорост на потока 0,6 ml/min и температура на колоната Т = 40°С.
Идентифицирането на пиковете е осъществено по времената на задържане спрямо стандарти на късоверижни мастни киселини: млечна киселина, оцетна киселина, пропионова киселина и бутенова киселина. За количественото определяне на късоверижните мастни киселини са изготвени стандартни прави в концентрации 25 - 1,56 mmol/L. Изведени са корелационни уравнения, описващи площта на пика (у) и концентрацията на късоверижните мастни киселини (х, mmol/L). Стандартните прави са с линейни участъци между 25 - 1,65 mmol/L и с коефициент на корелация г2 > 0,9999.
Таблица 12. Диапазон на параметри, изследвани при деца от един до дванадесет месеца.
BG 67567 Bl
Параметри Фешс
Rhjhw чнкрооргаинзкн
1. Бнфидобшсрпи 10=-10т ИР-Юн
2. Лактийчодли 10»-10«
3. BacteraidetEi - I0L | от
Ензими
4. Бета·галагнимдаза (LP^mg протеин) 0.4-2,0 0.2-1.0
5, А лфд~фукйпНДилл (U/mg ΠρίπτΗΉ } 0J4J.S 0.05-0,3
МегаВслитм
6. Млечна каеспнна (rnmol/g) 0.5-1Д 0.2-О.8
7. Оистна киселина (mmol/g) ДЗ-0,7
а ПрОПМгюаа Киселини i|mma|/g) 0.I-OJ 0.05-0,3
9. Маслена кнеелннн (minol/g} 0.05-03 0,02-О.Н
В резултат на проведените анализи на тестваните майчина кърма и фецес от новородено на възраст между един и дванадесет месеца се изчисляват следните коефициенти:
1. Съотношение на количеството Бифидобактерии/Бактероиди;
2. Съотношението на количеството Бифидобактерии/Лактобацили;
3. Съотношението на количеството (Бифидобактерии+Лактобацили)/Бактероиди;
4. Съотношението на количеството (Бифидобактерии+Лактобацили)/активност на бета-галактозидаза;
5. Съотношението на количеството (Бифидобактерии+Лактобацили)/активност на алфа-фукозидаза;
6. Съотношението на ензимните активности бета-галактозидаза/алфа-фукозидаза;
7. Съотношението на ензимните активности бета-галактозидаза/протеаза;
8. Съотношение на метаболитите млечна киселина/оцетна киселина/маслена киселина.
Изчисленията се правят по посочената формула.
Таблица 13. Тенденции на съотношенията между отделните показатели, със стрелка нагоре се отбелязва положителен ефект върху микробиотата, а със стрелка надолу отрицателен ефект върху микробиотата.
Би LAB Bat Su β Й- Me
фи ter фи gat ma
до aid oct
es MX oil dm
Б dos e 0
L40 eactetaides
BG 67567 Bl
Бифидо+МКБ
S-galactosidase a-fucasidose
МетаНолита

Claims (1)

  1. Метод за количествена оценка за бързо прогнозиране и контрол на дисбиози при кърмачета от един месец до една година чрез оценка на количествения и качествен състав на микробиома на проба от кърма на майката и проба от фецес на кърмачето, вид и количество на ензими и метаболити, характеризиращ се с това, че методът включва следните етапи: а) провеждане на in vitro анализи на разнообразието и съотношението на микроорганизми в проба от фецес на кърмачето и на проба от кърма на майката; б) определяне на количество на метаболити, използвани като биомаркери от проба от фецес на кърмачето и на проба от кърма на майката; в) отчитане на нивото на ензимна активност на ензими, използвани като биомаркери, от проба от фецес на кърмачето и на проба от кърма на майката; г) обработване по математически модел на данните от предходните етапи, който като резултат извеждат: - изчислени коефициенти на корелация между състав и количество на микроорганизмите от проба от фецес на кърмачето и на проба от кърма на майката. - изчислени коефициенти на корелация между ензимен профил и активност, ензимите отговорни за усвояването и метаболизирането на компонентите на проба от фецес на кърмачето и на проба от кърма на майката; - изчислени коефициенти на корелация между количеството на метаболитите, получени от метаболизирането на основните компоненти на микробиотата от проба от фецес на кърмачето и основните компоненти на микробиотата от проба от кърма на майката.
BG113148A 2020-05-27 2020-05-27 Метод за количествена оценка за бързо прогнозиране и контрол на дисбиози при кърмачета на възраст от един месец до една година BG67567B1 (bg)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
BG113148A BG67567B1 (bg) 2020-05-27 2020-05-27 Метод за количествена оценка за бързо прогнозиране и контрол на дисбиози при кърмачета на възраст от един месец до една година
EP20742153.8A EP4162081A1 (en) 2020-05-27 2020-05-28 Method for quantitative evaluation (mqe both for rapid prognosis of disbiosis in infants -up to 1 year of age(mqe/rpdi-1y), and for multi-factural diseases (mqe/mfd)
PCT/BG2020/050001 WO2021237312A1 (en) 2020-05-27 2020-05-28 Method for quantitative evaluation (mqe both for rapid prognosis of disbiosis in infants -up to 1 year of age(mqe/rpdi-1y), and for multi-factural diseases (mqe/mfd)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
BG113148A BG67567B1 (bg) 2020-05-27 2020-05-27 Метод за количествена оценка за бързо прогнозиране и контрол на дисбиози при кърмачета на възраст от един месец до една година

Publications (2)

Publication Number Publication Date
BG113148A BG113148A (bg) 2021-12-15
BG67567B1 true BG67567B1 (bg) 2023-09-15

Family

ID=71661600

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
BG113148A BG67567B1 (bg) 2020-05-27 2020-05-27 Метод за количествена оценка за бързо прогнозиране и контрол на дисбиози при кърмачета на възраст от един месец до една година

Country Status (3)

Country Link
EP (1) EP4162081A1 (bg)
BG (1) BG67567B1 (bg)
WO (1) WO2021237312A1 (bg)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT202200008705A1 (it) * 2022-04-29 2023-10-29 Wellmicro S R L Metodo per determinare una funzionalita’ metabolica di una popolazione batterica e apparato per eseguire detto metodo

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20160243138A1 (en) * 2014-10-29 2016-08-25 Glycom A/S Composition comprising HMSs/HMOs and use thereof
SG11201811227QA (en) * 2016-07-01 2019-01-30 Evolve Biosystems Inc Method for facilitating maturation of the mammalian immune system
EP3551194B1 (en) * 2016-12-06 2023-10-18 DSM Nutritional Products, LLC Glycan polymers and related methods thereof
US11666611B2 (en) * 2017-12-11 2023-06-06 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Defined therapeutic microbiota and methods of use thereof

Also Published As

Publication number Publication date
WO2021237312A1 (en) 2021-12-02
BG113148A (bg) 2021-12-15
EP4162081A1 (en) 2023-04-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9669059B2 (en) Butyrogenic bacteria as probiotics to treat clostridium difficile
Tamanai-Shacoori et al. Roseburia spp.: a marker of health?
Milani et al. The first microbial colonizers of the human gut: composition, activities, and health implications of the infant gut microbiota
Ignacio et al. Correlation between body mass index and faecal microbiota from children
Rigsbee et al. Quantitative profiling of gut microbiota of children with diarrhea-predominant irritable bowel syndrome
Bridgman et al. Gut microbiota and allergic disease in children
McNulty et al. The impact of a consortium of fermented milk strains on the gut microbiome of gnotobiotic mice and monozygotic twins
Cecchini et al. Functional metagenomics reveals novel pathways of prebiotic breakdown by human gut bacteria
US20150104423A1 (en) Use of blood group status iii
EP2598155A2 (en) Use of blood group status iii
Sirilun et al. Impact of maternal bifidobacteria and the mode of delivery on Bifidobacterium microbiota in infants
Hirano et al. Next-generation prebiotic promotes selective growth of bifidobacteria, suppressing Clostridioides difficile
Rocha Martin et al. Colonization of Cutibacterium avidum during infant gut microbiota establishment
Rubio-del-Campo et al. Human milk and mucosa-associated disaccharides impact on cultured infant fecal microbiota
Damé-Teixeira et al. Gene expression profile of Scardovia spp. in the metatranscriptome of root caries
Song et al. An investigation into the correlation of intestinal flora with obesity and gestational diabetes mellitus
Park et al. Comprehensive analysis of the effect of probiotic intake by the mother on human breast milk and infant fecal microbiota
Xin et al. Preventive effects of Lactobacillus johnsonii on the renal injury of mice induced by high fluoride exposure: Insights from colonic microbiota and co-occurrence network analysis
BG67567B1 (bg) Метод за количествена оценка за бързо прогнозиране и контрол на дисбиози при кърмачета на възраст от един месец до една година
Yazdi et al. Long-term daily high-protein, drained yoghurt consumption alters abundance of selected functional groups of the human gut microbiota and fecal short-chain fatty acid profiles in a cohort of overweight and obese women
Mollova et al. In vitro Digestion: Exploring the probiotic abilities and metabolization of human milk oligosaccharides by two strains of Limosilactobacillus fermentum isolated from breast milk
Zhu et al. Comparison between the molecular diagnostic test and chest X-ray combined with multi-slice spiral CT in the diagnosis of lobar pneumonia
Ingribelli et al. Culture-dependent screening of endospore-forming clostridia in infant feces
Wang et al. Intestinal persistence of Bifidobacterium infantis is determined by interaction of host genetics and antibiotic exposure
Odenwald et al. Prebiotic activity of lactulose optimizes gut metabolites and prevents systemic infection in liver disease patients