BG111169A - Highly sensitive immunochromatographic systems with magnetic nanoparticles and fluorescent markers - Google Patents
Highly sensitive immunochromatographic systems with magnetic nanoparticles and fluorescent markers Download PDFInfo
- Publication number
- BG111169A BG111169A BG111169A BG11116912A BG111169A BG 111169 A BG111169 A BG 111169A BG 111169 A BG111169 A BG 111169A BG 11116912 A BG11116912 A BG 11116912A BG 111169 A BG111169 A BG 111169A
- Authority
- BG
- Bulgaria
- Prior art keywords
- conjugates
- antigen
- magnetic nanoparticles
- concentration
- sample
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Наименование^йа изобретениетоTitle of the invention
Високочуствителни имунохроматографски системи с магнитни наночастици и флуоресцентни маркериHigh-sensitivity immunochromatographic systems with magnetic nanoparticles and fluorescent markers
Област на техникатаField of technology
Производство на уреди и апарати за измерване, изпитание и навигация № 26.51 от Класификацията на икономическите дейности в Република България.Manufacture of instruments and appliances for measuring, testing and navigation № 26.51 of the Classification of Economic Activities in the Republic of Bulgaria.
Предишно състояние на техникатаPrior art
Разработени са редица цветни имунохроматографските тестове на база визуално и абсорбционно измерване, но те осигуряват слаба чуствителност и точност. Известно е, че флуоресцентното измерване подобрява чувствителността с 1-2 порядъка в сравнение с измерването на цвят. При флуоресцентното измерване границата на откриваемост зависи от броя на генерираните флуоресцентни фотони, вместо промяната на цвета на наночастици както е при абсорбционни тест ленти.A number of color immunochromatographic tests based on visual and absorption measurements have been developed, but they provide poor sensitivity and accuracy. It is known that fluorescence measurement improves sensitivity by 1-2 orders of magnitude compared to color measurement. In fluorescence measurement, the limit of detection depends on the number of fluorescent photons generated, instead of the color change of nanoparticles as in absorption test strips.
Едни от най-важните елементи на една имунохроматографска система са маркерите. Маркерите са цветни или флуоресцентни наночастички с размер 15-800 nm, позволяващи безпрепятствено преминаване през мембранния носител. Цветните наночастиците са колоидно злато или оцветен латекс, по-рядко се използват, въглерод или липозоми [1,2]. Ензимите също намират приложение като маркери, но е необходимо допълнително да се добави хромоген [3]. Прилагат се и флуоресцентни багрила директно свързани към антитяло [4] или латексови частици импрегнирани с флуоресцентни багрила [4]. В литературата няма данни за използването едновременно на магнитни наночастици и флуорофор при получаването на имунохроматографски тестове. Предварителното модифициране на магнитните наночастици с подходящ полимер ( хитозан, полиетиленимин) ще доведе до въвеждане на активни групи на повърхността на частиците, необходими за провеждане на имобилизацията на антитялото върху тях. Прилагането на магнитни наночастици ще осигури идеално сепариране и пречистване на маркираните антитела с помощта на магнитно поле, висок имобилизационен добив на антитялото върху голямата специфична С повърхност на наночастиците и съответно до подобрена чувствителност на теста. Добавянето на флуоресцентното багрило като маркер ще доведе до прецизно количествено измерване и подобрена чувствителност на анализа.One of the most important elements of an immunochromatographic system is the markers. The markers are colored or fluorescent nanoparticles with a size of 15-800 nm, allowing unimpeded passage through the membrane carrier. Colored nanoparticles are colloidal gold or colored latex, less commonly used, carbon or liposomes [1,2]. Enzymes are also used as markers, but additional chromogen needs to be added [3]. Fluorescent dyes directly attached to the antibody [4] or latex particles impregnated with fluorescent dyes [4] are also used. There are no data in the literature on the simultaneous use of magnetic nanoparticles and fluorophore in the preparation of immunochromatographic tests. Preliminary modification of the magnetic nanoparticles with a suitable polymer (chitosan, polyethyleneimine) will lead to the introduction of active groups on the surface of the particles necessary for the immobilization of the antibody on them. The application of magnetic nanoparticles will provide perfect separation and purification of the labeled antibodies using a magnetic field, high immobilization yield of the antibody on the large specific C surface of the nanoparticles and, accordingly, to improved test sensitivity. The addition of the fluorescent dye as a marker will result in accurate quantitative measurement and improved sensitivity of the assay.
Мембранният носител също е важен елемент на имунохроматографските тестове. Те се изработват от нитроцелулоза, полиамид, полисулфон и полиетилен [1,2]. Хидрофилността и размера на порите на мембранната подложка влияят съществено върху движението на потока. За тази цел в редица публикации мембраните С се обработват предварително с повърхностно активни вещества или други химични реагенти [1,2]. Подобряването на тези два параметъра може да се осъществи чрез две нови модификации. Модификацията с плазма увеличава хидрофилността и запазва порестата структура на мембраната. Получаването на наноструктурирана мембрана посредством нанасяне на втори полимерен слой, осигурява контролиран размер на порите, добра хидрофилност и значително количество активни групи водещи до висока степен на имобилизация на биоагенти. Тези две модификации ще доведат до намаляване на времето за протичане на анализа вследствие увеличаване скоростта на движение на потока, намаляване на неспецифичната адсорбция на повърхността на мембраната и подобряване на имобилизационния добив на реагентите на тестовата и контролна линия на имунохроматографските системи, както и подобряване на чувствителността на анализа.The membrane carrier is also an important element of immunochromatographic tests. They are made of nitrocellulose, polyamide, polysulfone and polyethylene [1,2]. The hydrophilicity and pore size of the membrane substrate significantly affect the flow flow. For this purpose, in a number of publications, C membranes are pre-treated with surfactants or other chemical reagents [1,2]. The improvement of these two parameters can be achieved by two new modifications. Plasma modification increases the hydrophilicity and preserves the porous structure of the membrane. The preparation of a nanostructured membrane by applying a second polymer layer provides controlled pore size, good hydrophilicity and a significant amount of active groups leading to a high degree of immobilization of bioagents. These two modifications will reduce the analysis time due to the increased flow rate, reduce the non-specific adsorption of the membrane surface and improve the immobilization yield of the test and control line reagents of the immunochromatographic systems, as well as improve the sensitivity. of analysis.
Имунохроматографските тест ленти имат универсален характер и само с промяната на антитялото или рецептора те могат да се прилагат за анализ на различни компоненти в биологични течности, в храни, води и други. Определянето на ниски концентрации от антибиотици в мляко е много важен въпрос. Антибиотиците са ниско молекулни съединения и за тях е подходящ конкурентния w имунологичен метод. Известни са редица експресни имунохроматографски тестове за определя концентрацията на антибиотици в мляко с маркирани антитела или рецептори. Тестовете с рецептори са по-бавни и изискват инкубиране при 50°С [5,6]. Всички посочени имунохроматографски тестове използват като маркери колоидни златни частици или оцветени латексови частици [5-7]. Освен това тези тестове се предлагат само с визуална и полуколичествена детекция чрез ССД камера. Много малко са имунохроматографските тестове за мултианализ. За определяне едновременно на три вида антибиотици (беталактами, сулфонамиди и тетрациклини) в една и съща проба е известна имунохроматографска система β-S.T.A.R, от USB Bioproducts, Belgium описана в www.wikipatents.com/US-Patent- 5434053, [6] базираща се на реакцията на специфични антисеруми и рецептори, конюгирани със златни частици и съответните антибиотици. Остатъка от несвързаните антитела и рецептори се придвижват по мембраната и след това се задържат на тестовата линия от конюгата антиген-протеин. За по добро визуализиране близо до тестовата линия има и контролна линия, съдържаща протеин- златни частици. Основният недостатък на всички публикувани имунохроматографски системи е невъзможността да осигурят количествени измервания, тъй като детекцията е визуална. Освен това всички имунохроматографски тестове имат тестова и контролна линия. При предлаганият от нас вариант с магнитните наночастици и флуоресцентно багрило не е необходимо да има тестова и контролна линии със реагенти и това значително поевтинява теста.Immunochromatographic test strips are universal in nature and only with the change of the antibody or receptor they can be applied for analysis of various components in biological fluids, in food, water and others. Determining low concentrations of antibiotics in milk is a very important issue. Antibiotics are low molecular weight compounds and the competitive immunological method is suitable for them. A number of rapid immunochromatographic assays are known to determine the concentration of antibiotics in milk with labeled antibodies or receptors. Receptor assays are slower and require incubation at 50 ° C [5,6]. All these immunochromatographic tests use colloidal gold particles or colored latex particles as markers [5-7]. In addition, these tests are only available with visual and semi-quantitative detection via an SSD camera. There are very few immunochromatographic tests for multianalysis. For the simultaneous determination of three types of antibiotics (beta-lactams, sulfonamides and tetracyclines) in the same sample, the β-STAR immunochromatographic system is known, from USB Bioproducts, Belgium described in www.wikipatents.com/US-Patent- 5434053, [6] based the response to specific antisera and receptors conjugated to gold particles and the corresponding antibiotics. The remainder of unbound antibodies and receptors travel across the membrane and are then retained on the antigen-protein conjugate test line. For better visualization, there is also a control line near the test line containing protein-gold particles. The main disadvantage of all published immunochromatographic systems is the inability to provide quantitative measurements, as the detection is visual. In addition, all immunochromatographic tests have a test and control line. In our version with magnetic nanoparticles and fluorescent dye, it is not necessary to have test and control lines with reagents and this significantly reduces the cost of the test.
Целта на настоящия патент е разработване на нови високочувствителни наноимунохроматографски системи с прецизна количествена детекция чрез използването на магнитни наночастици и флоресцентни маркери, модифицирана полимерна мембрана и чувствителен флуоресцентен модул.The aim of the present patent is to develop new highly sensitive nanoimmunochromatographic systems with precise quantitative detection using magnetic nanoparticles and fluorescent markers, a modified polymer membrane and a sensitive fluorescent module.
Техническа същност на изобретениетоTechnical essence of the invention
Задачата е решена чрез създаването на метод в чиято основа лежи имобилизацията на няколко - N на брой (в случая за яснота на изложението три) вида антитела или рецептори (1), (2) и (3) съгласно фигура 1, върху повърхността (4) на модифицирани магнитни наночастици (5) с полимерен филм съдържащ активни групи необходими за имобилизацията на антителата или рецепторите. Количеството на сухите магнитните наночастици с имобилизираните антитела или рецептори в кюветата (9) от фигура 1 са определени така, че да са повече от очакваната максимална концентрация на изследваните компоненти във фиксирания обем на пробата (7) на фигура 2. Следва смесване на магнитните наночастици с имобилизираните антитела или рецептори и течната проба (8), която ще се анализира. Последните се свързват със съответните изследвани компоненти (10), (11) и (12), наречени антигени в пробата. Смесването става в кювета (9). Имунохроматографската система е изградена от няколко компоненти, включващи подложка за проба (13), подложка за конюгат (14), пластмасов държател (16), мембрана (17), която съдържа улавящи реагенти и адсорбираща подложка (18), (фиг.З). Подложката (14) съдържа лиофилизирани конюгати от идентични три антигена свързани с три различни флуоресцентни багрила, намиращи се в поле (15). Тестът се потапя в кювета (9) и образуваните конюгати (25) в кюветата се предвижват към втората подложка съдържаща трите конюгати (антиген-флуоресцентно багрило), (15). (фиг.4). Последните се свързват към свободните активни центрове на антителата и се придвижват по модифицираната мембрана (26, 27, 28). В края на мембраната постоянен магнит (29) задържа магнитните конюгати (30) и се осветяват с три различни лазерни или LED източници със съответните възбуждащи дължини (31, 32, 33), отговарящи на възбуждащите дължини на вълните на трите различни флуоресцентни багрила, свързани с конюгатитемагнитни наночастици. Последните започват да фосфоресцират с дължини на вълните съответстващи на свързаните конюгати-багрила към магнитните наночастици. Колкото количеството на антигена в пробата е по-голямо, по-малко количество конюгат антигенфлуоресцентно багрило се свързва с имобилизирания рецептор или антитяло и светлинната емисия е по слаба. Излъченото от фосфоресценцията лъчение се филтрира и фокусира от специална оптична система (34) върху три отделни фотодиода (35) или друг тип високочуствителни фотоприемни елементи за съответните три дължини на вълните. Аналоговите сигнали се преобразуват в цифрови и постъпват в компютърна система за интерпретация чрез специализиран софтуер.The problem is solved by creating a method based on the immobilization of several - N number (in the case of clarity of the statement three) types of antibodies or receptors (1), (2) and (3) according to figure 1, on the surface (4). ) of modified magnetic nanoparticles (5) with a polymer film containing active groups necessary for the immobilization of antibodies or receptors. The amount of dry magnetic nanoparticles with immobilized antibodies or receptors in the cuvette (9) of Figure 1 is determined to be greater than the expected maximum concentration of test components in the fixed sample volume (7) of Figure 2. The magnetic nanoparticles are then mixed with the immobilized antibodies or receptors and the liquid sample (8) to be analyzed. The latter bind to the respective test components (10), (11) and (12), called antigens in the sample. Mixing takes place in a cuvette (9). The immunochromatographic system is composed of several components, including a sample support (13), a conjugate support (14), a plastic holder (16), a membrane (17) containing capture reagents and an adsorbent support (18), (Fig. 3). . The support (14) contains lyophilized conjugates of identical three antigens bound to three different fluorescent dyes located in the field (15). The test is immersed in the cuvette (9) and the conjugates formed (25) in the cuvette are moved to the second support containing the three conjugates (antigen-fluorescent dye), (15). (figure 4). The latter bind to the free active sites of the antibodies and move along the modified membrane (26, 27, 28). At the end of the membrane, a permanent magnet (29) retains the magnetic conjugates (30) and is illuminated by three different laser or LED sources with corresponding excitation lengths (31, 32, 33) corresponding to the excitation wavelengths of the three different fluorescent dyes connected. with conjugates of magnetic nanoparticles. The latter begin to phosphoresce with wavelengths corresponding to the bound dye conjugates to the magnetic nanoparticles. The greater the amount of antigen in the sample, the less amount of antigen-fluorescent dye conjugate binds to the immobilized receptor or antibody and the lower the light emission. The radiation emitted by the phosphorescence is filtered and focused by a special optical system (34) on three separate photodiodes (35) or another type of highly sensitive photodetector elements for the respective three wavelengths. Analog signals are converted into digital and entered into a computer system for interpretation through specialized software.
Предимствата на изобретението са:The advantages of the invention are:
1. Идеална сепарация на образуваните конюгати модифицирани магнитни наночастици-антитяло или модифицирани магнитни наночастици-рецептор благодарение на магнитните наночастици и приложеното магнитно поле.1. Ideal separation of the formed conjugates modified magnetic nanoparticles-antibody or modified magnetic nanoparticles-receptor due to the magnetic nanoparticles and the applied magnetic field.
................
2. Избягване ползването на тестова и контролна линии, съдържащи скъпи реагенти, поради опростеното задържане на магнитните конюгати с постоянен магнит.2. Avoid the use of test and control lines containing expensive reagents due to the simplified retention of magnetic conjugates with a permanent magnet.
3. Висока чувствителност на имунохроматографския тест благодарение на голямата специфична повърхност на магнитните наночастици, водеща до висок имобилизационен добив на антитялото (рецептора).3. High sensitivity of the immunochromatographic test due to the large specific surface area of the magnetic nanoparticles, leading to high immobilization yield of the antibody (receptor).
4. Ниска граница на откриваемост и висока чувствителност на имунохроматографските системи, доминираща над всички останали тестове, поради използването на маркери С флуоресцентни багрила.4. Low limit of detection and high sensitivity of immunochromatographic systems, dominating over all other tests, due to the use of markers with fluorescent dyes.
5. Бърз анализ, благодарение на високата скорост на потока през модифицираната мембрана и бързата кинетична реакция поради добрата контактна повърхност между магнитните наночастички с имобилизирано антитяло или рецептор и антигена.5. Rapid analysis, due to the high flow rate through the modified membrane and the rapid kinetic reaction due to the good contact surface between the magnetic nanoparticles with immobilized antibody or receptor and the antigen.
6. Намаляване на неспецифичната адсорбция вследствие на приложената нова модификация на мембраната.6. Reduction of non-specific adsorption due to the applied new membrane modification.
7. Прецизна количествена детекция гарантирана от q разработения чувствителен флуоресцентен модул.7. Accurate quantitative detection guaranteed by q developed sensitive fluorescent module.
8. Проста манипулация, при което не са необходими измиващи процедури.8. Simple manipulation, which does not require washing procedures.
9. Провеждане на мултианализ благодарение на едновременно използване на няколко различни антитела или рецептори и различни флуоресцентни маркери.9. Conducting multianalysis due to the simultaneous use of several different antibodies or receptors and different fluorescent markers.
10. Имунохроматографският тест и портативния, компактен флуоресцентен детектор могат да се използва в полеви условия и да се проведе анализ в реално място и реално време.10. The immunochromatographic test and the portable, compact fluorescent detector can be used in the field and performed in real place and in real time.
11. Предлаганата имунохроматографската система има универсален характер и може да се използва за анализ на антибиотици, микробни клетки, хормони, токсини и други компоненти в проби от мляко, млечни продукти, храни, биологични течности, води и др.11. The proposed immunochromatographic system has a universal character and can be used for analysis of antibiotics, microbial cells, hormones, toxins and other components in samples of milk, dairy products, food, biological fluids, water and others.
Описание на приложените фигуриDescription of the attached figures
Фигура 1 - Показана е структурата на магнитните наночастици с имобилизираните антитела или рецептори.Figure 1 - The structure of magnetic nanoparticles with immobilized antibodies or receptors is shown.
Фигура 2 - Показано е взаимодействието и свързването на имобилизираните антитела или рецептори върху магнитните наночастици и антигените в анализираната течна проба.Figure 2 - The interaction and binding of immobilized antibodies or receptors on magnetic nanoparticles and antigens in the analyzed liquid sample are shown.
Фигура 3 - Представени са отделните елементи на имунохроматографския тест.Figure 3 - The individual elements of the immunochromatographic test are presented.
Фигура 4 - Показано е потапянето на теста в кюветата, движението на частично свързаните конюгати от кюветата по теста, свързването на конюгатите антигени-флуоресцентните багрила със свободните активни центрове на антителата и задържане на магнитните конюгати от постоянен магнит.Figure 4 - The immersion of the assay in the cuvette, the movement of the partially bound conjugates from the cuvette in the assay, the binding of the antigen-fluorescent dye conjugates to the free active centers of the antibodies and the retention of the magnetic conjugates by a permanent magnet are shown.
Фигура 5. Осветяване с три различни лазерни или LED източници със съответните възбуждащи дължини, отговарящи на възбуждащите дължини на вълните на трите различни флуоресцентни багрила, свързани с конюгатите-магнитни наночастици и детектиране на сигналите.Figure 5. Illumination with three different laser or LED sources with the corresponding excitation lengths corresponding to the excitation wavelengths of the three different fluorescent dyes associated with the conjugates-magnetic nanoparticles and signal detection.
Примери за изпълнениеExamples of implementation
Съгласно фиг.1 лиофилизираните имобилизирани три вида антитела или рецептори (1), (2) и (3) върху магнитни наночастици (5), покрити с хитозанов слой (4), се поставят в кювета (9). Съгласно фиг. 2 след това към обема на имобилизираните рецептори или антитела се накапва с микропипета (8), или автоматизиран дозатор изследваната проба (7). Антигените (10), (11) и (12), съдържащи се в пробата се свързват селективно към съответните рецептори или антитела, но остават незаети активни центрове в последните. Веднага С след това в кюветата (9) се потапя имунохроматографски тест, състоящ се от подложка за проба (13), подложка за конюгат (14), локация (15) на конюгати флуоресцентни багрила-антигени (19.20,21,22,23, 24), пластмасов държател (16), мембрана (17) и адсорбционна подложка (18). Частично свързаните конюгати се предвижват през подложката (13), достигат до конюгатите антигенифлуоресцентни багрила разположени в (15) и те се свързват със свободните активни центрове на антителата. Получените конюгати се придвижват по мембраната (17) и се задържат от постоянния магнит £ (29) в края на мембраната (30). Лазерни системи (31), (32) и (33) илиAccording to Fig. 1, the lyophilized immobilized three types of antibodies or receptors (1), (2) and (3) on magnetic nanoparticles (5) covered with a chitosan layer (4) are placed in a cuvette (9). According to FIG. 2, the test sample (7) is then added to the volume of the immobilized receptors or antibodies with a micropipette (8) or an automated dispenser. The antigens (10), (11) and (12) contained in the sample bind selectively to the respective receptors or antibodies, but remain unoccupied active centers in the latter. Immediately C is then immersed in the cuvette (9) an immunochromatographic test consisting of a sample support (13), a conjugate support (14), a location (15) of fluorescent dye-antigen conjugates (19.20,21,22,23, 24), a plastic holder (16), a membrane (17) and an adsorption pad (18). The partially bound conjugates move through the support (13), reach the conjugates of antigenfluorescent dyes located in (15) and they bind to the free active centers of the antibodies. The resulting conjugates move along the membrane (17) and are held by the permanent magnet £ (29) at the end of the membrane (30). Laser systems (31), (32) and (33) or
LED източници осветяват задържаните конюгати със съответните възбуждащи дължини, отговарящи на възбуждащата светлина на трите различни флуоресцентни багрила. Последните започват да емитират лъчение с дължини на вълните съответстващи на емисиите на флуоресцентните багрила от конюгатите (магнитни наночастицирецептор-антиген-флуоресцентно багрило). Колкото количеството на антигена в пробата е по-голямо, по-малко количество конюгат антигенфлуоресцентно багрило се свързва с имобилизирания рецептор или антитяло и светлинната емисия е по слаба. Емитираната светлина минава през оптичен блок (34), филтрира се и попада на чуствителенLED sources illuminate the retained conjugates with the corresponding excitation lengths corresponding to the excitation light of the three different fluorescent dyes. The latter begin to emit radiation with wavelengths corresponding to the emissions of fluorescent dyes from the conjugates (magnetic nanoparticles receptor-antigen-fluorescent dye). The greater the amount of antigen in the sample, the less amount of antigen-fluorescent dye conjugate binds to the immobilized receptor or antibody and the lower the light emission. The emitted light passes through an optical unit (34), is filtered and falls on a sensitive one
........................
фотодиод (35). Полученият флуоресцентен сигнал е обратнопропорционален на концентрацията на антигена в пробата. Сигналите от трите фотодетектора се усилват и след това се преобразуват от аналогово цифрови преобразователи и постъпват на входа на компютърната система.photodiode (35). The resulting fluorescent signal is inversely proportional to the concentration of antigen in the sample. The signals from the three photodetectors are amplified and then converted by analog-to-digital converters and fed to the input of the computer system.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
BG111169A BG111169A (en) | 2012-03-12 | 2012-03-12 | Highly sensitive immunochromatographic systems with magnetic nanoparticles and fluorescent markers |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
BG111169A BG111169A (en) | 2012-03-12 | 2012-03-12 | Highly sensitive immunochromatographic systems with magnetic nanoparticles and fluorescent markers |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
BG111169A true BG111169A (en) | 2014-09-30 |
Family
ID=56847629
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
BG111169A BG111169A (en) | 2012-03-12 | 2012-03-12 | Highly sensitive immunochromatographic systems with magnetic nanoparticles and fluorescent markers |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
BG (1) | BG111169A (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112595783A (en) * | 2020-05-14 | 2021-04-02 | 山东省农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 | Method for detecting multiple antibiotics in livestock and poultry excrement based on magnetic nanocomposite |
-
2012
- 2012-03-12 BG BG111169A patent/BG111169A/en unknown
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112595783A (en) * | 2020-05-14 | 2021-04-02 | 山东省农业科学院农业质量标准与检测技术研究所 | Method for detecting multiple antibiotics in livestock and poultry excrement based on magnetic nanocomposite |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP4934147B2 (en) | Test equipment for rapid diagnosis | |
JP4346041B2 (en) | Non-liquid phase chemiluminescent enzyme immunoassay and measurement kit | |
CN104105965A (en) | Signal amplification in lateral flow and related immunoassays | |
Ruckstuhl et al. | Highly sensitive biosensing using a supercritical angle fluorescence (SAF) instrument | |
NO331708B1 (en) | Systems and methods for performing magnetic chromatography analyzes | |
Mastichiadis et al. | Simultaneous determination of pesticides using a four-band disposable optical capillary immunosensor | |
US9274056B2 (en) | Use of non-chelated fluorochromes in rapid test systems | |
Yu et al. | Multiplex competitive microbead-based flow cytometric immunoassay using quantum dot fluorescent labels | |
JP2014525577A (en) | Analysis device having optical filter and analysis method | |
US20120316077A1 (en) | System And Method For Detection And Analysis Of A Molecule In A Sample | |
KR102133752B1 (en) | Lateral flow assay strip | |
KR102216459B1 (en) | Method of amplifying detection light using a light-reflecting material in immunochromatography | |
JP4949397B2 (en) | Sensor element for SPR measurement | |
Long et al. | Portable and automated fluorescence microarray biosensing platform for on-site parallel detection and early-warning of multiple pollutants | |
CN112513613A (en) | System, device and method for amplifying lateral flow assay signals | |
US20030119030A1 (en) | Immunoassay diagnostic probe and a method for use thereof | |
US20210208075A1 (en) | Autofluorescence quenching assay and device | |
RU2194972C2 (en) | Device and process to conduct immunofluorescent analyses | |
Daneshvar et al. | Detection of biomolecules in the near-infrared spectral region via a fiber-optic immunosensor | |
CN103743897A (en) | Multi-item mixed fluorescence immune reaction based spectroscopic analysis method | |
BG111169A (en) | Highly sensitive immunochromatographic systems with magnetic nanoparticles and fluorescent markers | |
JP4913454B2 (en) | Method for measuring vitamin concentration and method for measuring PCB concentration | |
JP7190196B2 (en) | Norovirus lateral flow analyzer using time-resolved fluorescence analysis and measurement method using the same | |
RU2776889C1 (en) | Method for the quantitative determination of selectively bound disease marker proteins in planar cells of a biochip and a device for its implementation | |
JP2013205374A (en) | Quantitative method of antigen sample |