KR20150028063A - Liquid Type Melting Array Using Probe Comprising Reporter and Quenching and Method for Target DNA or Mutant Detection Using Liquid Type Melting Array - Google Patents

Liquid Type Melting Array Using Probe Comprising Reporter and Quenching and Method for Target DNA or Mutant Detection Using Liquid Type Melting Array Download PDF

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송민식
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주식회사 시선바이오머티리얼스
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Abstract

The present invention relates to a liquid array using a probe comprising a reporter and a quencher, and to a method for detecting a target nucleic acid or a mutant using the same, and more specifically, to a method for detecting a target nucleic acid or a mutant, which analyzes a melting profile of the target nucleic acid or the mutant by using a liquid array comprising a reporter and a quencher. According to the present invention, the method for detecting a target nucleic acid or a mutant can fix the probe on a plate, can reduce false negative and false positive signals as a washing process is omitted after hybridization of the probe and the target nucleic acid or the mutant, and can simply and effectively detect single nucleotide polymorphism of the target nucleic acid and mutation caused by loss or insertion of a base. Also, the method can diagnose infection bacteria and discriminate drug resistance bacteria, and can be widely applied to various fields for discrimination of species of an organism, forensic medicine, etc.

Description

리포터 및 소광자가 결합된 프로브를 이용한 액상형 어레이 및 이를 이용한 표적핵산 또는 돌연변이 검출방법{Liquid Type Melting Array Using Probe Comprising Reporter and Quenching and Method for Target DNA or Mutant Detection Using Liquid Type Melting Array}BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention [0001] The present invention relates to a liquid type array using a probe coupled with a reporter and a quencher, and a method for detecting a target nucleic acid or a mutation using the probe.

본 발명은 리포터(repoter) 및 소광자(quencher)가 결합된 프로브를 이용한 액상형 어레이(liquid oarray) 및 이를 이용한 표적핵산 또는 돌연변이 검출방법에 관한 것으로, 더욱 자세하게는 리포터 및 소광자가 결합된 프로브를 포함하는 액상형 어레이를 이용하여 표적핵산 또는 돌연변이의 융해곡선을 분석하는 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법에 관한 것이다.
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a liquid oarray using a probe coupled with a reporter and a quencher, and a method for detecting a target nucleic acid or a mutation using the same, and more particularly, to a probe comprising a reporter and a quencher And analyzing the melting curve of the target nucleic acid or the mutant using a liquid-phase array of the target nucleic acid or mutant.

단일염기서열변이(SNP, Single Nucletide Polymorphism), 염기의 삽입(insertion) 또는 결실(deletion)에 의한 유전체 서열의 일부분의 차이는 개체간, 종간, 또는 서식지 및 원산지 판별에 중요한 마커로 사용되며, 이러한 유전체 서열의 변화 또는 차이의 분석은 생물학적 정보를 연구하는데 중요하다. 특히, 유전관련 질환 진단 및 유전 형질에 따른 맞춤의약을 가능하게 하고 감염균의 진단 및 약제 내성균을 판별할 수 있고, 그 밖에도 생물체의 종 판별 및 법의학 등 수많은 분야에서 광범위하게 응용이 가능하며, 돌연변이의 검출은 매우 중요하기 때문에 분석하고자 하는 목적 또는 유전자의 종류에 따라 진단을 위한 다양한 검출 방법들이 계속해서 보고되고 있다 (Taylor CF, Taylor GR. Methods Mol . Med ., 92:9, 2004). Differences in the portion of the genomic sequence due to single nucleotide polymorphism (SNP), insertion or deletion of the base are used as important markers in interspecific, interspecific, or habitat and origin discrimination. Analysis of changes or differences in genomic sequence is important for studying biological information. In particular, it is possible to diagnose genetic diseases and make customized medicines according to genetic traits, to diagnose infectious bacteria and to identify drug resistant bacteria, and in addition, it can be widely applied in many fields such as species discrimination and forensic examination of living organisms, Since detection is very important, various detection methods for diagnosis have been reported according to the purpose of analysis or the type of gene (Taylor CF, Taylor GR. Methods Mol . Med . , 92: 9, 2004).

위와 같은 돌연변이 검출을 위한 대표적인 방법으로는 염기서열 분석법, 중합효소 연쇄반응법(PCR), 마이크로어레이법(microarray) 등 다양한 분석법이 있다. 특히 마이크로어레이법은 프로브 혼성화 원리를 이용하여 수십 개부터 수만 개의 아주 적은 양의 유전물질을 고형지지체에 고밀도로 붙여 동시에 많은 유전자를 분석할 수 있는 DNA 칩이 유용한 기술로 각광받고 있으며, 한번의 시료 증폭으로 다수의 유전자 변이 부위를 검사할 수 있는 장점이 있다. Representative methods for detecting such mutations include various methods such as sequencing, PCR (PCR), and microarray. Particularly, in the microarray method, a DNA chip capable of analyzing a large number of genes at the same time by attaching tens of tens to tens of thousands of very small amounts of genetic material to a solid support at a high density is attracting attention as a useful technique. Amplification has the advantage of being able to examine multiple gene mutation sites.

하지만 단일 형광을 결합한 프로브 혹은 표적핵산을 사용하는 마이크로어레이의 경우, 혼성화 과정 후 결합하지 않은 프로브 혹은 표적핵산을 제거하는 세척 과정을 반드시 거쳐야 한다. 이 과정은 추가적인 시간을 요구하며 세척의 강도에 따라 혼성화의 효율에 많은 영향을 미치게 되며, 노출된 상황에서 진행되는 만큼 외부요인에 영향을 받을 수 있다. 이는 실험결과의 위해성(false positive, false negative)를 야기할 수 있어 진단 등에서 주요한 논쟁거리로 남아있다.However, in the case of a probe combining a single fluorescence or a microarray using a target nucleic acid, a washing process to remove unbound probe or target nucleic acid must be performed after hybridization. This process requires additional time, and depending on the intensity of the washing, it greatly affects the efficiency of hybridization, and may be influenced by external factors as far as it is exposed. This can lead to false positives (false negatives) of the experimental results and remain a major controversy in diagnosis.

또한, 다수의 프로브를 사용한 마이크로어레이 칩의 경우 프로브 추가 등의 변동이 있을 때마다 혼성화 조건을 최적화해야 하는 등 제작에 어려움이 있으며, 마이크로어레이 칩의 제작에 있어 프로브를 칩에 고정시키는 방법인 Pen-tip, 잉크젯 방식, 전극을 사용하는 방식 등은 추가적인 장비를 요구하므로 일반 사용자가 손쉽게 접근하기 힘든 문제점이 있다.
In addition, in the case of a microarray chip using a plurality of probes, it is difficult to make a hybridization condition every time there is a change in the probe addition or the like. In the fabrication of a microarray chip, a probe -tip, inkjet method, and electrode-using method require additional equipment, which makes it difficult for general users to easily access.

이에 본 발명자들은 상기와 같은 문제를 해결하기 위하여 노력한 결과, 리포터 및 소광자가 결합된 프로브가 포함된 액상형 어레이를 이용해 표적핵산 또는 돌연변이의 융해곡선 분석을 수행하면, 프로브를 판형에 고정시키거나, 프로브와 표적핵산 또는 돌연변이의 혼성화 과정 후 세척 과정이 생략되어 위음성 및 위양성 시그널을 감소시킬 수 있으며, 간편하고 효과적으로 표적핵산 또는 돌연변이를 검출할 수 있는 것을 확인하고 본 발명을 완성하였다.
Accordingly, the present inventors have made efforts to solve the above problems. As a result, the present inventors have found that when a melting curve analysis of a target nucleic acid or a mutant is performed using a liquid type array including a reporter and a quencher-conjugated probe, And the target nucleic acid or mutant can be detected easily and effectively, and the false negative and false positive signals can be reduced by omitting the washing process after hybridization of the target nucleic acid or the mutant.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 In order to achieve the above object,

리포터(repoter) 및 소광자(quencher)가 결합된 프로브를 포함하는 액상형 어레이(liquid array)를 이용하여 표적핵산 또는 돌연변이의 융해곡선을 분석하는 것을 특징으로 하는 표적핵산의 유무 또는 돌연변이의 검출방법을 제공한다.
A method for detecting the presence or absence of a target nucleic acid or a mutation thereof, characterized in that the melting curve of a target nucleic acid or a mutant is analyzed using a liquid array including a probe having a reporter and a quencher attached thereto to provide.

다른 식으로 정의되지 않는 한, 본 명세서에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어들은 본 발명이 속하는 기술 분야에서 숙련된 전문가에 의해서 통상적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 갖는다. 일반적으로 본 명세서에서 사용된 명명법은 본 기술 분야에서 잘 알려져 있고 통상적으로 사용되는 것이다.
Unless otherwise defined, all technical and scientific terms used herein have the same meaning as commonly understood by one of ordinary skill in the art to which this invention belongs. In general, the nomenclature used herein is well known and commonly used in the art.

본 발명의 '표적핵산'은 검출하고자 하는 핵산서열을 의미하며, 혼성화, 어닐링 또는 증폭 조건 하에서 프라이머 또는 프로브와 어닐링 또는 혼성화된다. '표적핵산'은 본 명세서에서 사용되는 용어 '타겟 핵산', '타겟 핵산서열' 또는 '타겟 서열'과 차이가 없으며, 본 명세서에서 혼용된다. The 'target nucleic acid' of the present invention means a nucleic acid sequence to be detected, and is annealed or hybridized with a primer or a probe under hybridization, annealing or amplification conditions. The 'target nucleic acid' is not different from the term 'target nucleic acid', 'target nucleic acid sequence' or 'target sequence' as used herein, and is used in this specification.

본 발명의 '혼성화'는 상보적인 단일가닥 핵산들이 이중-가닥 핵산을 형성하는 것을 의미한다. 혼성화는 2개의 핵산 가닥 간의 상보성이 완전할 경우(perfect match) 일어나거나 또는 일부 부정합(mismatch) 염기가 존재하여도 일어날 수 있다. 혼성화에 필요한 상보성의 정도는 혼성화 조건에 따라 달라질 수 있으며, 특히 온도에 의하여 조절될 수 있다."Hybridization" of the present invention means that complementary single-stranded nucleic acids form a double-stranded nucleic acid. Hybridization can occur either in perfect match between two nucleic acid strands, or even in the presence of some mismatching bases. The degree of complementarity required for hybridization can vary depending on the hybridization conditions, and can be controlled, in particular, by temperature.

본 발명의 '돌연변이'는 표적핵산의 염기서열에 변이가 일어난 것으로, 단일염기 다형성(SNP; single nucleotide polymorphism)뿐만 아니라, 염기의 치환, 결실 또는 삽입되어 변이가 일어난 것을 포함하는 것을 특징으로 하며, 본 발명의 프로브는 표적핵산의 1개 내지 4개의 염기가 치환, 결실 또는 삽입되어 변이가 일어난 것을 융해곡선 분석을 통해 분석할 수 있다. The 'mutation' of the present invention is characterized by a mutation in the nucleotide sequence of the target nucleic acid and includes not only a single nucleotide polymorphism (SNP) but also a nucleotide substitution, deletion or insertion, The probes of the present invention can be analyzed by melting curve analysis in which one to four bases of the target nucleic acid are substituted, deleted or inserted to cause mutation.

상기 '프로브(probe)'는 합성된 인공 DNA(deoxyribonucleic acid), PNA(peptide nucleic acids) 및 LNA(Locked nucleic acid)로 구성된 군에서 하나 이상 선택하여 표적핵산과 상보적으로 결합할 수 있도록 합성하여 사용할 수 있으며, 양 말단에 리포터(reporter)와 리포터 형광을 소광(quenching) 할 수 있는 소광자(quencher)의 형광 물질이 결합할 수 있다. 상기 리포터(reporter)는 FAM(6-carboxyfluorescein), Texas red, HEX(2',4',5',7',-tetrachloro-6-carboxy-4,7-dichlorofluorescein) 및 CY5로 구성되는 군에서 선택되는 하나 이상일 수 있으며, 상기 소광자는 TAMRA(6-carboxytetramethyl-rhodamine), BHQ1, BHQ2 및 Dabcyl로 구성되는 군에서 선택되는 하나 이상일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 바람직하게는 Dabcyl을 사용하는 것을 특징으로 한다. The 'probe' may be synthesized to be complementary to a target nucleic acid by selecting at least one selected from the group consisting of synthesized DNA (deoxyribonucleic acid), PNA (peptide nucleic acids) and LNA (locked nucleic acid) And a quencher fluorescent material capable of reporter and quenching the reporter fluorescence can be combined at both ends. The reporter may be selected from the group consisting of 6-carboxyfluorescein, Texas red, HEX (2 ', 4', 5 ', 7', -tetrachloro-6-carboxy-4,7-dichlorofluorescein) And the quencher may be at least one selected from the group consisting of TAMRA (6-carboxytetramethyl-rhodamine), BHQ1, BHQ2 and Dabcyl, but is not limited thereto. Preferably, Dabcyl is used .

본 발명의 '액상형 어레이'는 기존의 마이크로어레이와 같이 DNA 또는 프로브를 고정화시는 것이 아닌, 프로브를 포함하는 반응용액을 어레이 플레이트(array plate)에 구획화시킨 다음, 시료를 각각 첨가하여 분석하는 것으로, 본 발명에서는 리포터 및 소광자가 결합된 프로브가 구획화된 어레이 플레이트를 사용하였다. The 'liquid-phase array' of the present invention is characterized not by immobilizing a DNA or a probe as in a conventional microarray but by dividing a reaction solution containing a probe into an array plate and then adding and analyzing each sample In the present invention, an array plate in which a reporter and a quencher-attached probe are partitioned is used.

본 발명에 있어서, 액상형 어레이는 리포터 및 소광자가 결합된 프로브뿐만 아니라 엑소뉴클라아제(exonuclease) 및 반응에 필요한 버퍼가 추가로 첨가되어 있는 것을 특징으로 할 수 있으며, 본 발명에서는 리포터 및 소광자가 결합된 프로브, 엑소뉴클라아제, 반응 버퍼 등을 포함하는 반응용액을 어레이 플레이트에 구획화시켜 표적핵산 또는 돌연변이 검출에 사용하였다. In the present invention, the liquid-type array may be characterized in that not only a reporter and a probe with a quencher are bonded but also an exonuclease and a buffer necessary for the reaction are further added. In the present invention, The reaction solution containing the probes, exonuclease, reaction buffer, etc. was partitioned into array plates and used for target nucleic acid or mutation detection.

본 발명의 '액상형 어레이'는 기존의 마이크로어레이와 같이 DNA 또는 프로브를 고정화시는 것이 아닌, 프로브를 포함하는 반응용액을 어레이 플레이트(array plate)에 구획화시킨 다음, 시료를 각각 첨가하여 분석하는 것으로, 본 발명에서는 리포터 및 소광자가 결합된 프로브가 구획화된 어레이 플레이트를 사용하였다.
The 'liquid-phase array' of the present invention is characterized not by immobilizing a DNA or a probe as in a conventional microarray but by dividing a reaction solution containing a probe into an array plate and then adding and analyzing each sample In the present invention, an array plate in which a reporter and a quencher-attached probe are partitioned is used.

본 발명의 표적핵산 또는 돌연변이 검출방법은 구체적으로, (a) 표적핵산 또는 돌연변이를 인산기가 5' 말단에 결합된 프라이머와 혼합시킨 다음, 비대칭 PCR(asymmetric PCR)을 사용하여 증폭하는 단계; (b) 상기 증폭산물을 리포터 및 소광자가 결합된 프로브 및 엑소뉴클라아제가 포함된 액상형 어레이에 첨가하여 혼성화시키는 단계; (c) 온도를 변화시키면서 상기 혼성화된 산물을 융해시켜 융해곡선을 얻는 단계; 및 (d) 상기 얻어지는 융해곡선을 분석하여,표적핵산의 유무 또는 돌연변이를 검출하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하며, 검출하고자 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 수에 따라 프로브에 표지되는 리포터를 표적핵산별로 다르게 하여, 2 이상의 표적핵산 또는 돌연변이를 검출할 수 있다. Specifically, the method of detecting a target nucleic acid or a mutation of the present invention comprises: (a) mixing a target nucleic acid or a mutation with a primer having a phosphate group at the 5 'end and then amplifying the target nucleic acid or mutation using asymmetric PCR; (b) adding the amplification product to a liquid-phase array containing a reporter and a quencher-coupled probe and an exonuclease to hybridize; (c) melting the hybridized product while changing the temperature to obtain a melting curve; And (d) analyzing the obtained melting curve to detect the presence or absence of a target nucleic acid or a mutation thereof. According to the number of the target nucleic acid or the mutation to be detected, the reporter labeled with the probe is detected by the target nucleic acid Alternatively, two or more target nucleic acids or mutations can be detected.

도 1에 나타난 바와 같이, 인산기가 5' 말단에 결합된 프라이머를 사용하여 증폭된 시료 속의 표적핵산 또는 돌연변이를 람다 엑소뉴클라아제가 및 리포터 및 소광자가 결합된 프로브가 각 웰에 분주되어 있는 어레이 플레이트에 첨가하여 융해곡선 분석을 수행하게 된다. 혼성화 정도는 실시간 중합효소 연쇄반응기 내에서 융해곡선 분석을 통하여 나타내며, 리포터 및 소광자가 포함된 프로브는 표적핵산과 혼성화 된 후 형광 신호가 발생한다. 온도가 올라감에 따라 프로브의 적정 융해 온도에서 표적핵산과 빠르게 융해되어 형광 신호가 소광되며, 이러한 온도 변화에 따른 상기 형광 신호로부터 얻어진 고 해상도의 융해곡선 분석(fluorescence melting curve analysis; FMCA)을 통하여 표적핵산 또는 돌연변이의 유무를 검출할 수 있다.As shown in Fig. 1, a target nucleic acid or a mutant in a sample amplified by using a primer having a phosphate group at the 5'-terminal thereof is divided into an array in which a lambda exonuclease and a probe in which a reporter and a quencher are combined are distributed in each well Lt; / RTI > plate to perform a melting curve analysis. The degree of hybridization is indicated by a melting curve analysis in a real-time PCR chain, and a probe containing a reporter and a quencher is hybridized with a target nucleic acid and then a fluorescence signal is generated. As the temperature rises, the fluorescence signal is rapidly fused with the target nucleic acid at the optimal melting temperature of the probe, and the fluorescence signal is extinguished. The high-resolution fluorescence melting curve analysis (FMCA) The presence or absence of nucleic acid or mutation can be detected.

본 발명에 있어서, 상기 (b) 단계에서 리포터 및 소광자가 결합된 프로브와 증폭된 표적핵산 또는 돌연변이의 혼성화를 위해, 람다 엑소뉴클라아제를 사용하여 표적핵산 또는 돌연변이를 단일가닥으로 만들어 준다. In the present invention, in step (b), a target nucleic acid or a mutation is made into a single strand using a lambda exonuclease to hybridize the amplified target nucleic acid or the mutant with the reporter-and-exonuclease-conjugated probe.

표적핵산 또는 돌연변이의 단일가닥 생성은 람다 엑소뉴클라아제의 5' 인산기 특이적 DNA 분해반응을 이용하며, 상기 (a) 단계의 표적핵산 또는 돌연변이의 증폭은 인산기가 5' 말단에 결합된 프라이머를 사용하여 증폭한다. 본 발명에서는 프로브가 혼성화되는 타겟 가닥(strand)에 상보적인 프라이머의 5' 말단에 인산기를 결합시켜 프라이머를 제조하였다.The single strand production of the target nucleic acid or mutant utilizes the 5 'phosphate-specific DNA degradation reaction of lambda exonuclease, and the amplification of the target nucleic acid or mutation in step (a) . In the present invention, a primer was prepared by binding a phosphate group to the 5 'end of a primer complementary to a target strand to which a probe was hybridized.

또한, 상기 (a) 단계의 비대칭 PCR(asymmetric PCR) 증폭 방법은 이중 가닥 DNA의 한쪽 사슬에 대응하는 시발체를 과잉으로 가한 조건에서 PCR반응을 하여 한쪽의 DNA사슬만을 대량으로 증폭하는 방법으로, 한쪽 시발체만을 과잉(수십 배)으로 하면 한쪽의 시발체가 먼저 소비되고 나머지 반응은 과한 쪽 시발체로만 진행하여 한쪽 DNA사슬이 대량으로 생산된다. 본 발명에서는 프로브가 혼성화되는 타겟 가닥에 상보적인 프라이머를 그렇지 않은 프라이머 보다 1/5 내지 1/100 낮은 비율로 첨가하였다.In the asymmetric PCR amplification method of the above step (a), PCR is performed under the condition that a primer corresponding to one side of double-stranded DNA is excessively added to amplify a single DNA chain in a large amount, If only the primer is excessively (several tens of times), one primer is consumed first, and the remaining reaction proceeds only to the excess primer, and a large amount of one DNA chain is produced. In the present invention, a primer complementary to a target strand in which a probe is hybridized is added at a ratio of 1/5 to 1/100 lower than that of a primer not complementary thereto.

본 발명의 액상형 어레이를 이용하여 융해곡선을 분석하는 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이 검출방법은 프로브를 판형에 고정시키거나, 프로브와 표적핵산 또는 돌연변이의 혼성화 과정 후 세척 과정이 생략되어 위음성 및 위양성 시그널을 감소시킬 수 있으며, 표적핵산의 단일염기변이 및 염기의 결손 또는 삽입에 의한 변이를 간편하고 효과적으로 검출할 수 있다 (도 2).A method for detecting a target nucleic acid or a mutation, which comprises analyzing a fusion curve using the liquid-phase array of the present invention, comprises the steps of immobilizing the probe in a plate form, omitting the washing step after hybridization of the probe and the target nucleic acid or mutant, The signal can be reduced, and a single base mutation of a target nucleic acid and a mutation due to deletion or insertion of a base can be detected simply and effectively (Fig. 2).

본 발명에 있어서, 프로브는 표적핵산 염기서열과 완전한 혼성화(perfect match)를 이루어 예상된 융해온도(Tm) 값을 보이며, 염기변이가 존재하는 표적핵산과는 불완전한 혼성화(mismatch)를 이루어 예상보다 낮은 융해온도(Tm) 값을 보이는 것을 특징으로 할 수 있다. In the present invention, the probe exhibits a perfect match with the target nucleic acid sequence and exhibits the expected melting temperature (Tm) value, and mismatches with the target nucleic acid in which the base mutation is present, And has a melting temperature (Tm) value.

본 발명의 일 실시예에서, 리포터 및 소광자가 결합된 프로브를 이용한 액상 어레이 방법을 이용하여 표적핵산 또는 돌연변이 검출 방법의 구현 및 작동 가능성을 확인하기 위하여, 감염성 바이러스의 진단과 동시에 종간구별이 가능한지 확인하고자 하였다. 표 1과 같이 랩도바이러스과 (Rhabdovirus Species) 3종의 G-protein 유전자염기서열을 align하여 3종간의 차이가 있는 부분을 프로브로 제작하였으며, HRV는 PNA 프로브와 정확하게 상보적인 서열을, IHNV는 1개의 mismatch를, 그리고 VHSV는 2개의 mismatch를 가지는 부위를 탐색하여 PNA 프로브 결합 부위로 삼았다. 프라이머는 인산기가 5' 말단에 결합된 프라이머와 결합되지 않은 프라이머를 각각 제작하였으며, 프로브는 리포터로 Texas red, 소광자로는 Dabcyl가 결합된 PNA 프로브를 사용였다. In an embodiment of the present invention, in order to confirm the feasibility and feasibility of the target nucleic acid or mutation detection method using the liquid-phase array method using the reporter and the quencher-conjugated probe, . As shown in Table 1, three kinds of G-protein gene sequences of Rhabdovirus Species were aligned, and a portion having a difference between the three species was made as a probe. HRV was a sequence complementary to PNA probe and IHNV was 1 , And VHSV was used as a PNA probe binding site by searching for a region having two mismatches. The primers were primers that did not bind to the 5 'end of the phosphate group and primers that did not bind to the 5' end of the probe. The probes were Texas red as the reporter and Dabcyl coupled PNA probes as the quencher.

비대칭 PCR 방법으로 증폭된 표적핵산 또는 돌연변이는 리포터 및 소광자가 결합된 프로브 및 람다 엑소뉴클라아제가 혼합되어 각각의 구획으로 나누어진 액상형 어레이 플레이트에 분주시키고, 실시간 중합효소 연쇄 반응기 내에서 37℃에서 15 분 동안 반응시켜, 인산기가 5' 말단에 결합된 표적핵산의 가닥을 람다 엑소뉴클라아제가 분해시키는 동시에 PNA 프로브의 혼성화가 진행된다. 융해곡선 분석은 25℃에서 85℃까지 1℃씩 상승시키며 형광을 측정하는 용해곡선 분석을 수행하였다. 각 단계 사이마다 5초간 정지상태를 유지하였으며, 반응에 필요한 온도 및 반응 시간은 표적핵산의 길이 및 혼성화 조건에 따라 달라질 수 있다. The target nucleic acid or mutant amplified by the asymmetric PCR method is prepared by mixing a reporter and a quencher-conjugated probe and a lambda exonuclease into a liquid type array plate divided into respective compartments, The reaction is carried out for 15 minutes so that the laminar exonuclease decomposes the strand of the target nucleic acid to which the phosphate group is bonded at the 5 'end, and the hybridization of the PNA probe proceeds. Melting curve analysis was performed by increasing the melting temperature from 25 캜 to 85 캜 by 1 캜 and measuring the fluorescence. The temperature and reaction time required for the reaction were varied depending on the length of the target nucleic acid and the hybridization conditions.

상기 방법과 같이 바이러스 유전자인 표적핵산을 일반 PCR 방법으로 증폭시킨 후, 그 산물을 리포터와 소광자가 결합된 PNA프로브와 람다 엑소뉴클라아제가 분주된 액상어레이에 5㎕ 분주하여 융해곡선을 분석한 결과, PNA 프로브와 표적핵산이 완전히 일치하는 경우(서열번호 3), 1개의 염기가 상보적이지 않은 경우(서열번호 2), 2개의 염기가 상보적이지 않은 경우(서열번호 1)가 각각 융해곡선 및 융행온도가 다르게 나타나는 것을 확인하였다 (도 3). As described above, the target nucleic acid as a viral gene was amplified by a general PCR method, and 5 μl of the product was added to a liquid phase array of a PNA probe and a lambda exo nuclease coupled with a reporter and a quencher to analyze the melting curve As a result, when the PNA probe and the target nucleic acid were completely matched (SEQ ID NO: 3), one base was not complementary (SEQ ID NO: 2), and two bases were not complementary (SEQ ID NO: 1) It was confirmed that the curves and the transition temperatures appear differently (Fig. 3).

즉, 본 발명의 리포터 및 소광자가 결합된 프로프를 이용한 액상형 어레이를 사용하여 표적핵산 검출뿐만 아니라, 감염성 바이러스의 진단과 동시에 종간구별이 가능한 것을 확인하였다. 또한, 표적핵산과 PNA 프로브와 융해온도 분석을 통해, 표적핵산 내의 단일염기변이 및 염기의 결손 또는 삽입에 의한 변이도 효과적으로 검출할 수 있다는 것을 확인하였다.That is, it was confirmed that not only the target nucleic acid detection but also the diagnosis of the infectious virus and the species discrimination were possible using the liquid type array using the reporter and the photocoagulated probe of the present invention. In addition, it was confirmed through the analysis of the melting temperature of the target nucleic acid and the PNA probe that single base mutation in the target nucleic acid and mutation due to deletion or insertion of the base can be effectively detected.

본 발명은 다른 관점에서, 본 발명의 표적핵산 또는 돌연변이 검출방법을 이용하요, 리포터(reporter) 및 소광자(quencher)가 결합된 프로브를 함유하는 액상형 어레이(liquid array)를 포함하는 표적핵산 또는 돌연변이 검출용 키트에 관한 것이다. In another aspect, the invention features a method for detecting a target nucleic acid or mutation comprising a liquid array containing a probe coupled with a reporter and a quencher using the target nucleic acid or mutation detection method of the present invention, To a detection kit.

본 발명에 있어서, 상기 키트는 시료에 포함된 2 이상의 표적핵산 또는 돌연변이를 검출할 수 있으며, 내성바이러스, 내성균 등의 돌연변이의 유전형을 분석하는데 이용할 수 있다. In the present invention, the kit can detect two or more target nucleic acids or mutations contained in a sample, and can be used for analyzing genotypes of mutations of resistant viruses, resistant bacteria, and the like.

본 발명의 키트는 버퍼, DNA 중합효소 조인자 및 데옥시리보뉴클레오타이드-5-트리포스페이트와 같은 타겟 증폭 PCR 반응(예컨대, PCR 반응)을 실시하는데 필요한 시약을 선택적으로 포함할 수 있다. 선택적으로, 본 발명의 키트는 또한 비대칭 PCR 수행을 위한 다양한 폴리뉴클레오타이드 분자, 역전사효소, 다양한 버퍼 및 시약, 및 DNA 중합효소 활성을 억제하는 항체를 포함할 수 있으며, 액상형 어레이를 이용한 융해곡선 분석을 위한 람다 엑소뉴클라아제, 다양한 버퍼 및 시약, 마이크로웰 플레이트를 포함할 수 있다. The kit of the present invention can optionally include reagents necessary for conducting a target amplification PCR reaction (e. G., PCR reaction) such as a buffer, a DNA polymerase joiner and deoxyribonucleotide-5-triphosphate. Alternatively, the kit of the present invention may also comprise various polynucleotide molecules, reverse transcriptase, various buffers and reagents for inhibiting asymmetric PCR, and antibodies that inhibit DNA polymerase activity and may be analyzed by melting curve analysis using a liquid- For example, lambda exonuclease, various buffers and reagents, and microwell plates.

또한, 키트는 특정 반응에서 사용되는 시약의 최적량은, 본 명세서에 개시사항을 습득한 당업자에 의해서 용이하게 결정될 수 있다. 전형적으로, 본 발명의 키트는 앞서 언급된 구성성분들을 포함하는 별도의 포장 또는 컴파트먼트(compartment)로 제작된다.
Also, the optimal amount of reagent used in a particular reaction in a kit can be readily determined by those skilled in the art having the teachings herein. Typically, the kit of the present invention is fabricated as a separate package or compartment comprising the aforementioned components.

본 발명에 따른 표적핵산 또는 돌연변이 검출방법을 이용하면, 프로브를 판형에 고정하거나, 프로브와 표적핵산 또는 돌연변이의 혼성화 과정 후 세척 과정이 생략되어 위음성 및 위양성 시그널을 감소시킬 수 있으며, 표적핵산의 단일염기변이 및 염기의 결손 또는 삽입에 의한 변이를 간편하고 효과적으로 검출할 수 있다. 또한, 감염균의 진단 및 약제 내성균을 판별할 수 있으며, 그 밖에도 생물체의 종 판별 및 법의학 등 수많은 분야에서 광범위하게 응용이 가능하다.
By using the method for detecting a target nucleic acid or a mutation according to the present invention, it is possible to fix the probe to a plate form, or to eliminate the washing process after the hybridization process of the probe and the target nucleic acid or the mutation, thereby reducing the false negative and false positive signals, It is possible to simply and effectively detect base mutation and base mutation or mutation due to insertion. In addition, it is possible to diagnose infectious bacteria and to identify drug-resistant bacteria, and in addition, it can be widely applied in many fields such as species discrimination and forensic examination of living organisms.

도 1은 리포터 및 소광자가 결합된 PNA 프로브를 이용한 액상형 어레이 방법에 대한 모식도를 나타낸 것이다.
도 2는 본 발명의 액상형 어레이와 기존의 마이크로어레이 방법을 비교한 그림이다.
도 3은 1종의 PNA 프로브가 혼합된 액상의 어레이에 증폭된 표적핵산을 처리하여 분석한 결과를 나타낸 데이터이다.
Figure 1 is a schematic diagram of a liquid-phase array method using a PNA probe coupled with a reporter and a quencher.
2 is a diagram comparing a liquid type array of the present invention with a conventional microarray method.
Fig. 3 is a data showing the result of analyzing a target nucleic acid amplified in a liquid-phase array in which one PNA probe is mixed.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.
Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples. It is to be understood by those skilled in the art that these examples are for illustrative purposes only and that the scope of the present invention is not construed as being limited by these examples.

바이러스 종 판별을 위한 액상형 어레이 분석Liquid-based array analysis for virus species identification

1-1 : 표적핵산 올리고면, 1-1: Target nucleic acid Oligo surface, 프라이머primer  And PNAPNA 프로브Probe 제작 making

본 발명의 리포터 및 소광자가 결합된 프로브를 이용한 액상 어레이 방법을 이용하여 표적핵산 또는 돌연변이 검출 방법의 구현 및 작동 가능성을 확인하기 위하여, 표 1과 같이 랩도바이러스과 (Rhabdovirus Species)의 Hirame rhabdovirus (HRV), Infectious Hematopoietic Necrosis Virus (IHNV), Viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV)의 G-protein 유전자 일부서열을 타켓으로 하여 DNA를 합성하였다. In order to confirm the implementation and operability of the target nucleic acid or mutation detection method using the liquid-phase array method using the reporter and the quencher-coupled probe of the present invention, Hirame rhabdovirus (HRV) of Rhabdovirus Species ), Infectious Hematopoietic Necrosis Virus (IHNV), and Viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV).

수산어류의 감염성 바이러스인 랩도바이러스의 검사와 동시에 종구별을 하기위하여, 랩도바이러스 3종의 G-protein 유전자염기서열을 align하여 3종간의 차이가 있는 부분을 프로브로 제작하였으며, HRV는 PNA 프로브와 정확하게 상보적인 서열을, IHNV는 1개의 mismatch를, 그리고 VHSV는 2개의 mismatch를 가지는 부위를 탐색하여 PNA 프로브 결합 부위로 삼았다. In order to distinguish species from the lapdog viruses, which are infectious viruses of marine fishes, three kinds of L-dopa virus G-protein gene sequences were aligned, IHNV searches for one mismatch, and VHSV searches for two mismatches to identify PNA probe binding sites.

감염성 바이러스의 진단과 동시에 종간구별이 가능한지 확인하기 위해, HRV(서열번호 3), IHNV (서열번호 2) 및 VHSV(서열번호 1)의 표준 G-protein 염기서열을 사용하여 유전자를 인공적으로 합성하였으며, 액상형 어레이 검사의 타겟으로 사용하였다.Genes were artificially synthesized using standard G-protein nucleotide sequences of HRV (SEQ ID NO: 3), IHNV (SEQ ID NO: 2) and VHSV (SEQ ID NO: 1) , And used as a target of the liquid type array test.

또한, 프라이머 및 프로브는 표적핵산에 상보적으로 결합하도록 제작하였으며, 프로브는 리포터로 Texas red, 소광자로는 Dabcyl가 결합된 PNA 프로브를 사용하였다. PNA 프로브와 표적핵산과의 결합온도 차이를 크게 하기 위해, 표적핵산의 변이부분과 결합하는 부분이 PNA 프로브 결합 부위 가운데에 위치하도록 제조하였다.In addition, primers and probes were prepared so as to complementarily bind to target nucleic acids. PNA probes conjugated with Texas red as a reporter and Dabcyl as a quencher were used as probes. To increase the difference in the binding temperature between the PNA probe and the target nucleic acid, a portion binding to the mutated portion of the target nucleic acid was positioned in the middle of the PNA probe binding site.

프라이머는 인산기가 5' 말단에 결합된 프라이머와 결합되지 않은 프라이머를 각각 제작하였으며, 프라이머의 선정은 PNA 프로브가 혼성화되는 타겟 가닥(strand)에 상보적인 프라이머의 5' 말단에 인산기를 추가하여 합성하였다. 이는 혼성화를 위한 표적핵산을 단일가닥화 하기 위한 람다 엑소뉴클라아제(lambda exonuclease)의 특이적인 분해를 위하여 사용되었다.The primers were synthesized by adding a phosphate group to the 5 'end of a primer complementary to a target strand to which a PNA probe was hybridized. . It was used for the specific degradation of lambda exonuclease to single strand the target nucleic acid for hybridization.

본 발명에서 사용한 모든 PNA 프로브, 프라이머 및 표적핵산은 파나진(Panagene, 한국)에서 HPLC 정제 방법을 통해 합성하였으며, 합성된 PNA 프로브의 순도는 질량분석법을 이용하여 확인하였으며, 표적핵산과의 더 효과적인 결합을 위해 프로브의 불필요한 이차구조는 피하였다.
All PNA probes, primers and target nucleic acids used in the present invention were synthesized by HPLC purification method in PANAGENE, Korea. The purity of the synthesized PNA probes was confirmed by mass spectrometry, and more effective binding with the target nucleic acid The unnecessary secondary structure of the probe was avoided.

합성 이중가닥 DNA서열 및 프라이머 및 PNA 프로브 올리고머 서열Synthetic double stranded DNA sequences and primers and PNA probe oligomer sequences Sequence (5'-3')Sequence (5'-3 ') 서열번호SEQ ID NO: Target 1Target 1
AGTGGAATGCTTGTTCAAAGGAACCTGGTGGAAATTCCCCATCTGAGTATTGTGTTCGTCTCCAACACATCTGATCTCTCCACTAACCACATCCACACCAATCTAATTCCTTCGGATTGGTCA T TCAA T TGGAGTCTTTGGCCGTCACTATCAGGAATGGGGGTGATGGGAGGGGCCCTCCTTCTACTAGTGCTCTGCTGTTGCTGCAAGGCATCTCCTCCTATTCCGAGTTACGGGATT CCGATGCAGCAGTTCTCCAGAAACCCGATGGTCTGA

AGTGGAATGCTTGTTCAAAGGAACCTGGTGGAAATTCCCCATCTGAGTATTGT GTTCGTCTCCAACACATCTGATC TCTCCACTAACCACATCCACACCAATCTAATTCCTTCGGATTGG TCA T TCAA T TGGAG TCTTTGGCCGTCACTATCAGGAATGGGGGTGATGGGAGGGGCCCTCCTTCTACTAGTGCTCTGCTGTTGCTGCAAGGCATCTCCTCCTATTCCGAGTTACGGGAT T CCGATGCAGCAGTTCTCCA GAAACCCGATGGTCTGA
서열번호 1SEQ ID NO: 1
Target 2Target 2
TGAGCATGATGGAACCGATGAGCATCAAATCCGTACCCCATCCGAGCATCCTGGACTTCTACAATGAGACAGACGTATCTGGGATCTCCATCAGGAAATTGGACTCGTTCGACCTTCAATCACTC C ACTGGAGTTTCTGGCCCACAATCTCCACCCTGGGTGGGGTTCCCCTGGTTCTCCTCCTTGCTGTTGCCGCGTGCTGCTGCTGGTCAGGGAGACCTCCCACTCCTTCTGCGCCGCAGAGCATCCCCATGTATCACCTGGCAAACCGGTCCT

TGAGCATG ATGGAACCGATGAGCATCAAATC CGTACCCCATCCGAGCATCCTGGACTTCTACAATGAGACAGACGTATCTGGGATCTCCATCAGGAAATTGGACTCGTTCGACCTTCAA TCACTC C ACTGGAG TTTCTGGCCCACAATCTCCACCCTGGGTGGGGTTCCCCTGGTTCTCCTCCTTGCTGTTGCCGCGTGCTGCTGCTGGTCAGGGAGACCTCCCACTCCTTCTGCGCCGCAGAGCAT CCCCATGTATCACCTGGCAAAC CGGTCCT
서열번호 2SEQ ID NO: 2
Target 3Target 3
AAGGTGAGCATGATGGACAAGATGGACATTCGCCCCGTTCCGCATCCTAGTGTCCAGATACTCTACAACGACACAGACACCGCAGACATCACAATCAGGAAGATAGACTCGTTTGATCTGCAATCACTCAACTGGAGCTTCTGGCCATCATTGTCAGCACTGGGAGGGGTTCCAATACTCCTCGCCCTCGTATTCTTTCTGTACTGCTGCATGAACAGAAGACCCTCCATGCCTGCAGCACCCCAAGAGATCCCCATGTACCACCTCGCCAGTCGA

AAGGTGAGCATG ATGGACAAGATGGACATTCGCC CCGTTCCGCATCCTAGTGTCCAGATACTCTACAACGACACAGACACCGCAGACATCACAATCAGGAAGATAGACTCGTTTGATCTGCAA TCACTCAACTGGAG CTTCTGGCCATCATTGTCAGCACTGGGAGGGGTTCCAATACTCCTCGCCCTCGTATTCTTTCTGTACTGCTGCATGAACAGAAGACCCTCCATGCCTGCAGCACCCC AAGAGATCCCCATGTACCACCT CGCCAGTCGA
서열번호 3SEQ ID NO: 3
Primer F1Primer F1 P-GTTCGTCTCCAACACATCTGATCP-GTTCGTCTCCAACACATCTGATC 서열번호 3SEQ ID NO: 3 Primer F2Primer F2 P-ATGGAACCGATGAGCATCAAATCP-ATGGAACCGATGAGCATCAAATC 서열번호 5SEQ ID NO: 5 Primer F3Primer F3 P-ATGGACAAGATGGACATTCGCCP-ATGGACAAGATGGACATTCGCC 서열번호 6SEQ ID NO: 6 Primer R1Primer R1 TGGAGAACTGCTGCATCGGATGGAGAACTGCTGCATCGGA 서열번호 7SEQ ID NO: 7 Primer R2Primer R2 GTTTGCCAGGTGATACATGGGGGTTTGCCAGGTGATACATGGGG 서열번호 8SEQ ID NO: 8 Primer R3Primer R3 AGGTGGTACATGGGGATCTCTTAGGTGGTACATGGGGATCTCTT 서열번호 9SEQ ID NO: 9 PNA probe (SSRVP02)PNA probe (SSRVP02) Dabcyl-TCACTCAACTGGAG-O-K(Texas Red)Dabcyl-TCACTCAACTGGAG-O-K (Texas Red) 서열번호 10SEQ ID NO: 10

상기 표 1에서 PNA 프로브의 O는 링커 및 K는 라이신(lysine), 프라이머의 P는 phosphate를 의미하며, 밑줄로 표시된 글씨 및 굵은 글씨는 PNA 프로브와 프라이머가 혼성화되는 부분 및 염기가 변이된 부분을 의미한다.
In Table 1, O means linker, K means lysine, P means phosphate, and underlined letters and bold characters indicate the hybridization of the PNA probe and the primer and the mutated portion of the base it means.

1-2 : 표적핵산의 중합효소 연쇄반응을 사용한 증폭1-2: Amplification of the target nucleic acid by polymerase chain reaction

상기에서 합성한 프라이머를 사용하여 일반 중합효소 연쇄반응을 사용하여 표적핵산을 증폭시켰으며, PCR 조건은 다음과 같다; 총 볼륨이 50㎕가 되도록 2x Enzynomics Hot start Taq Premix 25㎕, 프라이머 (10pmole/㎕) 1㎕, 합성 핵산 시료 1㎕를 첨가한 다음 표 2의 조건으로 PCR을 수행하였다.
Using the primers synthesized above, the target nucleic acid was amplified using a general polymerase chain reaction. The PCR conditions were as follows; 25 μl of 2x Enzynomics Hot start Taq Premix, 1 μl of a primer (10 pmole / μl) and 1 μl of a synthetic nucleic acid sample were added so that the total volume was 50 μl, and PCR was performed under the conditions shown in Table 2.

PCR 반응 조건PCR reaction conditions 온도Temperature 반응시간Reaction time 94℃94 ° C 5분5 minutes 1cycle1 cycle 94℃94 ° C 20초20 seconds 40 cycle40 cycles 58℃58 ℃ 30초30 seconds 72℃72 ℃ 30초30 seconds 72℃72 ℃ 7분7 minutes 1cycle1 cycle

1-3 : 표적핵산의 1-3: 단일가닥화Single-stranded , , PNAPNA 프로브와의With probe 혼성화Hybridization 및 융해곡선 분석 And melting curve analysis

상기 1-2에서 증폭한 산물을 5㎕씩 람다 엑소뉴클라아제(lambda exonuclease) 1unit, PNA 프로브 5pmole 및 Melting Array™ Buffer(시선바이오머티리얼스, 한국)가 혼합되어 구획화된 어레이(well plate)에 분주한 후, 실시간 중합효소 연쇄반응기 CFX96™ Real-Time 시스템 (BIO-RAD 사, 미국)에서 37℃에서 15 분 동안 람다 엑소뉴클라아제의 단일가닥화 반응과 PNA 프로브의 혼성화 반응을 시켜준 후 연속적으로 융해곡선을 분석하였다. 융해곡선 분석은 25℃에서 85℃까지 1℃씩 상승시키며 형광을 측정하는 용해곡선 분석을 수행하였다. 각 단계 사이마다 5초간 정지상태를 유지하였다.5 μl of the product amplified in 1-2 above was mixed with 1 unit of lambda exonuclease, 5 pmole of PNA probe, and Melting Array ™ Buffer (Seen Biomaterials, Korea) to prepare a well plate After dispensing, the single-stranded lambda exonuclease reaction and the hybridization of the PNA probe were performed in a real-time PCR reactor CFX96 ™ real-time system (BIO-RAD, USA) at 37 ° C. for 15 minutes The melting curves were analyzed continuously. Melting curve analysis was performed by increasing the melting temperature from 25 캜 to 85 캜 by 1 캜 and measuring the fluorescence. The stationary state was maintained for 5 seconds between each step.

상기 방법과 같이 바이러스 유전자인 표적핵산을 일반 PCR 방법으로 증폭시킨 후, 그 산물을 리포터와 소광자가 결합된 PNA프로브와 람다 엑소뉴클라아제가 분주된 액상어레이에 5㎕ 분주하여 융해곡선을 분석한 결과, PNA 프로브와 표적핵산이 완전히 일치하는 경우(서열번호 3), 1개의 염기가 상보적이지 않은 경우(서열번호 2), 2개의 염기가 상보적이지 않은 경우(서열번호 1)가 각각 융해곡선 및 융행온도가 다르게 나타나는 것을 확인하였다 (도 3). As described above, the target nucleic acid as a viral gene was amplified by a general PCR method, and 5 μl of the product was added to a liquid phase array of a PNA probe and a lambda exo nuclease coupled with a reporter and a quencher to analyze the melting curve As a result, when the PNA probe and the target nucleic acid were completely matched (SEQ ID NO: 3), one base was not complementary (SEQ ID NO: 2), and two bases were not complementary (SEQ ID NO: 1) It was confirmed that the curves and the transition temperatures appear differently (Fig. 3).

즉, 본 발명의 리포터 및 소광자가 결합된 프로프를 이용한 액상형 어레이를 사용하여 표적핵산 검출뿐만 아니라, 감염성 바이러스의 진단과 동시에 종간구별이 가능한 것을 확인하였다. 또한, 표적핵산과 PNA 프로브와 융해온도 분석을 통해, 표적핵산 내의 단일염기변이 및 염기의 결손 또는 삽입에 의한 변이도 효과적으로 검출할 수 있다는 것을 확인하였다.
That is, it was confirmed that not only the target nucleic acid detection but also the diagnosis of the infectious virus and the species discrimination were possible using the liquid type array using the reporter and the photocoagulated probe of the present invention. In addition, it was confirmed through the analysis of the melting temperature of the target nucleic acid and the PNA probe that single base mutation in the target nucleic acid and mutation due to deletion or insertion of the base can be effectively detected.

이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다. While the present invention has been particularly shown and described with reference to specific embodiments thereof, those skilled in the art will appreciate that such specific embodiments are merely preferred embodiments and that the scope of the present invention is not limited thereby. something to do. It is therefore intended that the scope of the invention be defined by the claims appended hereto and their equivalents.

<110> Seasunbiomaterials <120> Liquid Type Melting Array Using Probe Comprising Reporter and Quenching and Method for Target DNA or Mutant Detection Using Liquid Type Melting Array <130> P13-B236 <160> 10 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 276 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Hirame rhabdovirus G-protein <400> 1 agtggaatgc ttgttcaaag gaacctggtg gaaattcccc atctgagtat tgtgttcgtc 60 tccaacacat ctgatctctc cactaaccac atccacacca atctaattcc ttcggattgg 120 tcattcaatt ggagtctttg gccgtcacta tcaggaatgg gggtgatggg aggggccctc 180 cttctactag tgctctgctg ttgctgcaag gcatctcctc ctattccgag ttacgggatt 240 ccgatgcagc agttctccag aaacccgatg gtctga 276 <210> 2 <211> 276 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Infectious Hematopoietic Necrosis Virus G-protein <400> 2 tgagcatgat ggaaccgatg agcatcaaat ccgtacccca tccgagcatc ctggacttct 60 acaatgagac agacgtatct gggatctcca tcaggaaatt ggactcgttc gaccttcaat 120 cactccactg gagtttctgg cccacaatct ccaccctggg tggggttccc ctggttctcc 180 tccttgctgt tgccgcgtgc tgctgctggt cagggagacc tcccactcct tctgcgccgc 240 agagcatccc catgtatcac ctggcaaacc ggtcct 276 <210> 3 <211> 276 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Viral haemorrhagic septicaemia virus G-protein <400> 3 aaggtgagca tgatggacaa gatggacatt cgccccgttc cgcatcctag tgtccagata 60 ctctacaacg acacagacac cgcagacatc acaatcagga agatagactc gtttgatctg 120 caatcactca actggagctt ctggccatca ttgtcagcac tgggaggggt tccaatactc 180 ctcgccctcg tattctttct gtactgctgc atgaacagaa gaccctccat gcctgcagca 240 ccccaagaga tccccatgta ccacctcgcc agtcga 276 <210> 4 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer F1 <400> 4 gttcgtctcc aacacatctg atc 23 <210> 5 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer F2 <400> 5 atggaaccga tgagcatcaa atc 23 <210> 6 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer F3 <400> 6 atggacaaga tggacattcg cc 22 <210> 7 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer R1 <400> 7 tggagaactg ctgcatcgga 20 <210> 8 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer R2 <400> 8 gtttgccagg tgatacatgg gg 22 <210> 9 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer R3 <400> 9 aggtggtaca tggggatctc tt 22 <210> 10 <211> 14 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> PNA probe <400> 10 tcactcaact ggag 14 <110> Seasunbiomaterials <120> Liquid Type Melting Array Using Probe Comprising Reporter and          Quenching and Method for Target DNA or Mutant Detection Using          Liquid Type Melting Array <130> P13-B236 <160> 10 <170> Kopatentin 2.0 <210> 1 <211> 276 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Hirame rhabdovirus G-protein <400> 1 agtggaatgc ttgttcaaag gaacctggtg gaaattcccc atctgagtat tgtgttcgtc 60 tccaacacat ctgatctctc cactaaccac atccacacca atctaattcc ttcggattgg 120 tcattcaatt ggagtctttg gccgtcacta tcaggaatgg gggtgatggg aggggccctc 180 cttctactag tgctctgctg ttgctgcaag gcatctcctc ctattccgag ttacgggatt 240 ccgatgcagc agttctccag aaacccgatg gtctga 276 <210> 2 <211> 276 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Infectious Hematopoietic Necrosis Virus G-protein <400> 2 tgagcatgat ggaaccgatg agcatcaaat ccgtacccca tccgagcatc ctggacttct 60 acaatgagac agacgtatct gggatctcca tcaggaaatt ggactcgttc gaccttcaat 120 cactccactg gagtttctgg cccacaatct ccaccctggg tggggttccc ctggttctcc 180 tccttgctgt tgccgcgtgc tgctgctggt cagggagacc tcccactcct tctgcgccgc 240 agagcatccc catgtatcac ctggcaaacc ggtcct 276 <210> 3 <211> 276 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Viral haemorrhagic septicaemia virus G-protein <400> 3 aaggtgagca tgatggacaa gatggacatt cgccccgttc cgcatcctag tgtccagata 60 ctctacaacg acacagacac cgcagacatc acaatcagga agatagactc gtttgatctg 120 caatcactca actggagctt ctggccatca ttgtcagcac tgggaggggt tccaatactc 180 ctcgccctcg tattctttct gtactgctgc atgaacagaa gaccctccat gcctgcagca 240 ccccaagaga tccccatgta ccacctcgcc agtcga 276 <210> 4 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer F1 <400> 4 gttcgtctcc aacacatctg atc 23 <210> 5 <211> 23 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer F2 <400> 5 atggaaccga tgagcatcaa atc 23 <210> 6 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer F3 <400> 6 atggacaaga tggacattcg cc 22 <210> 7 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer R1 <400> 7 tggagaactg ctgcatcgga 20 <210> 8 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer R2 <400> 8 gtttgccagg tgatacatgg gg 22 <210> 9 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Primer R3 <400> 9 aggtggtaca tggggatctc tt 22 <210> 10 <211> 14 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> PNA probe <400> 10 tcactcaact ggag 14

Claims (10)

리포터(repoter) 및 소광자(quencher)가 결합된 프로브를 포함하는 액상형 어레이(liquid oarray)를 이용하여 표적핵산 또는 돌연변이의 융해곡선을 분석하는 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법.
Characterized in that the melting curve of the target nucleic acid or mutant is analyzed using a liquid oarray comprising a probe coupled with a reporter and a quencher.
제1항에 있어서, 상기 리포터(reporter)는 FAM(6-carboxyfluorescein), Texas red, HEX(2',4',5',7',-tetrachloro-6-carboxy-4,7-dichlorofluorescein) 및 CY5로 구성되는 군에서 선택되는 1개 이상인 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법.
4. The method of claim 1 wherein the reporter is selected from the group consisting of 6-carboxyfluorescein, Texas red, HEX (2 ', 4', 5 ', 7', - tetrachloro-6-carboxy-4,7-dichlorofluorescein) Gt; CY5 &lt; / RTI &gt; in the target nucleic acid or mutant.
제1항에 있어서, 상기 소광자(quenching)는 TAMRA(6-carboxytetramethyl-rhodamine), BHQ1, BHQ2 및 Dabcyl으로 구성되는 군에서 선택되는 1개 이상인 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법.
The method according to claim 1, wherein the quenching is one or more selected from the group consisting of 6-carboxytetramethyl-rhodamine (TAMRA), BHQ1, BHQ2, and Dabcyl.
제1항에 있어서, 상기 프로브는 합성된 인공 DNA(deoxyribonucleic acid), PNA(peptide nucleic acids) 및 LNA(Locked nucleic acid)로 구성되는 군에서 선택되는 1개 이상인 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법.
The probe according to claim 1, wherein the probe is one or more selected from the group consisting of synthesized artificial DNA (deoxyribonucleic acid), PNA (peptide nucleic acids) and LNA (locked nucleic acid). Detection method.
제1항에 있어서, 상기 액상형 어레이는 엑소뉴클라아제(exonuclease)가 추가로 첨가되어 있는 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법.
The method of claim 1, wherein the liquid-phase array is further supplemented with an exonuclease.
제1항에 있어서, 상기 액상형 어레이는 6, 8, 12, 96 및 384 웰 플레이트(well plate)로 구성되는 군에서 선택되는 어레이 플레이트(array plate)를 사용하여 표적핵산 또는 돌연변이를 포함하는 액상의 시료를 구획화하는 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법.
The method of claim 1, wherein the liquid-phase array is a liquid phase comprising a target nucleic acid or a mutant using an array plate selected from the group consisting of 6, 8, 12, 96 and 384 well plates A method for detecting a target nucleic acid or a mutation, characterized in that the sample is segmented.
제1항에 있어서, 다음 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법:
(a) 표적핵산 또는 돌연변이를 5' 말단에 인산기가 결합된 프라이머와 혼합시킨 다음, 비대칭 PCR(asymmetric PCR)을 사용하여 증폭하는 단계;
(b) 상기 증폭산물을 리포터 및 소광자가 결합된 프로브 및 엑소뉴클라아제가 포함된 액상형 어레이에 첨가하여 혼성화시키는 단계;
(c) 온도를 변화시키면서 상기 혼성화된 산물을 융해시켜 융해곡선을 얻는 단계; 및
(d) 상기 얻어지는 융해곡선을 분석하여, 표적핵산 또는 돌연변이를 검출하는 단계.
The method according to claim 1, comprising the step of detecting a target nucleic acid or a mutation.
(a) mixing a target nucleic acid or a mutation with a phosphate-bound primer at the 5 'end and then amplifying using asymmetric PCR;
(b) adding the amplification product to a liquid-phase array containing a reporter and a quencher-coupled probe and an exonuclease to hybridize;
(c) melting the hybridized product while changing the temperature to obtain a melting curve; And
(d) analyzing the obtained melting curve to detect a target nucleic acid or a mutation thereof.
제1항에 있어서, 프로브는 표적핵산 염기서열과 완전히 혼성화(perfect match)를 이루어 예상된 융해온도(Tm) 값을 보이며, 염기변이를 가지는 표적핵산과는 불완전 혼성화(mismatch)를 이루어 예상보다 낮은 융해온도(Tm) 값을 보이는 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법.
The probe according to claim 1, wherein the probe exhibits a perfect match with the target nucleic acid sequence and exhibits a predicted melting temperature (Tm) value, and mismatches with the target nucleic acid having a base mutation, (Tm) of the target nucleic acid or mutant.
제1항에 있어서, 2 이상의 표적핵산 또는 돌연변이를 사용하고, 프로브에 표지되는 리포터를 표적핵산별로 다르게 하여, 2 이상의 표적핵산 또는 돌연변이를 검출하는 것을 특징으로 하는 표적핵산 또는 돌연변이의 검출방법.
The method according to claim 1, wherein two or more target nucleic acids or mutations are used and the reporter labeled on the probe is different for each target nucleic acid, thereby detecting two or more target nucleic acids or mutations.
제1항 내지 제9항 중에서 선택된 어느 한 항의 방법을 이용하고, 리포터(repoter) 및 소광자(quencher)가 결합된 프로브를 함유하는 액상형 어레이(liquid array)를 포함하는 표적핵산 또는 돌연변이 검출용 키트.A kit for detecting a target nucleic acid or a mutant, comprising a liquid array containing a probe combined with a reporter and a quencher using the method of any one of claims 1 to 9, .
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Cited By (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101595442B1 (en) * 2015-08-18 2016-02-18 대한민국 Probes for identifying geographical distribution and molecular epidemiology of Viral Hemorrhagic Septicemia Virus (VHSV) and Uses Thereof
WO2016104949A1 (en) * 2014-12-24 2016-06-30 주식회사 시선바이오머티리얼스 Method for guaranteeing quality of artificial synthetic oligo using pna probe
KR101642784B1 (en) * 2016-01-15 2016-07-27 대한민국 Genetic Markers for Discrimination of Viral Hemorrhagic Septicemia Virus, and Method for Discrimination of Causative Virus Using the Same
KR101642783B1 (en) * 2016-01-15 2016-07-27 대한민국 Genetic Markers for Detection of Causative Virus of Red Sea Bream Iridoviral Disease(RSIVD), and Method for Detection of Causative Virus Using the Same
KR101644776B1 (en) * 2016-04-29 2016-08-04 대한민국 Genetic Markers for Detection of Red Sea Bream Iridoviral(RSIV), and Method for Detection of the Causative Virus Using the Same
KR101655069B1 (en) * 2016-04-29 2016-09-07 대한민국 Genetic Markers for Discrimination of Koi Herpesvirus Gray Sph and Method for Discrimination of Causative Virus Using the Same
KR101655068B1 (en) * 2016-04-29 2016-09-07 대한민국 Genetic Markers for Discrimination of Koi Herpesvirus Bercoiver TK and Method for Discrimination of Causative Virus Using the Same
KR101655071B1 (en) * 2016-04-29 2016-09-07 대한민국 Genetic Markers for Discrimination of Red Sea Bream Iridovirus, and Method for Discrimination of Causative Virus Using the Same
KR20170125490A (en) 2016-05-04 2017-11-15 주식회사 시선바이오머티리얼스 Method for Determining Nucleotide Sequence Identity Using Probe and Melting Profile Analysis
WO2018048021A1 (en) * 2016-09-12 2018-03-15 대한민국(관리부서:행정자치부 국립과학수사연구원장) Method for analyzing snp of mitochondrial dna by using pna probe and melting curve analysis
WO2018092998A1 (en) * 2016-11-15 2018-05-24 대한민국(관리부서:국립수산과학원) Method for detecting genetic mutation of viral hemorrhagic septicemia virus
KR20180063411A (en) * 2016-12-01 2018-06-12 해양환경공단 PNA probe for pathogenic enterococcus and its use in ballast water
KR20180130627A (en) * 2017-05-29 2018-12-10 한양대학교 에리카산학협력단 Identifying method of squid species using dual labeled probe and fluorescence melting curve analysis
KR20190076944A (en) * 2019-06-25 2019-07-02 대한민국(관리부서:국립수산과학원) Genetic Marker for Discrimination and Detection of Vibriosis in fish and Method for Discrimination and Detection of Vibriosis in fish Using the Same
KR20190078555A (en) * 2019-06-25 2019-07-04 대한민국(관리부서:국립수산과학원) Genetic Marker for Discrimination and Detection of Vibriosis in fish and Method for Discrimination and Detection of Vibriosis in fish Using the Same

Cited By (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016104949A1 (en) * 2014-12-24 2016-06-30 주식회사 시선바이오머티리얼스 Method for guaranteeing quality of artificial synthetic oligo using pna probe
WO2017030322A1 (en) * 2015-08-18 2017-02-23 대한민국(관리부서:국립수산과학원) Probes for identifying region-specific genotypes of viral hemorrhagic septicemia virus and use of same
US10557178B2 (en) 2015-08-18 2020-02-11 National Institute Of Fisheries Science Probes for identifying geographical distribution and molecular epidemiology of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) and uses thereof
JP2018521647A (en) * 2015-08-18 2018-08-09 大韓民国(国立水産科学院)REPUBLIC OF KOREA(National Institute of Fisheries Science) Probe for discriminating region-specific genotype of viral hemorrhagic sepsis virus and its use
KR101595442B1 (en) * 2015-08-18 2016-02-18 대한민국 Probes for identifying geographical distribution and molecular epidemiology of Viral Hemorrhagic Septicemia Virus (VHSV) and Uses Thereof
CN107810275A (en) * 2015-08-18 2018-03-16 大韩民国(国立水产科学院) Probe of regiospecificity genotype for identifying viral hemorrhagic septicemia, VHS virus and application thereof
US11041190B2 (en) 2016-01-15 2021-06-22 National Institute Of Fisheries Science Genetic markers for discrimination and detection of red sea bream iridovirus causing infectious aquatic organism diseases, and method of discriminating and detecting the virus using the same
KR101642783B1 (en) * 2016-01-15 2016-07-27 대한민국 Genetic Markers for Detection of Causative Virus of Red Sea Bream Iridoviral Disease(RSIVD), and Method for Detection of Causative Virus Using the Same
KR101642784B1 (en) * 2016-01-15 2016-07-27 대한민국 Genetic Markers for Discrimination of Viral Hemorrhagic Septicemia Virus, and Method for Discrimination of Causative Virus Using the Same
WO2017122897A1 (en) * 2016-01-15 2017-07-20 대한민국(관리부서:국립수산과학원) Genetic marker for detecting causative virus of red sea bream iridoviral disease, and causative virus detection method using same
WO2017122896A1 (en) * 2016-01-15 2017-07-20 대한민국(관리부서:국립수산과학원) Genetic marker for discriminating and detecting causative virus of marine creature infectious disease, and causative virus discrimination and detection method using same
US11041189B2 (en) 2016-01-15 2021-06-22 National Institute Of Fisheries Science Genetic markers for discrimination and detection of a virus causing red sea bream iridovirus disease which is an infectious aquatic organism disease, and method of discriminating and detecting the virus using the same
US11041191B2 (en) 2016-01-15 2021-06-22 National Institute Of Fisheries Science Genetic markers for discrimination and detection of gray SPH region on Koi herprsvirus causing infectious aquatic organism diseases, and method of discriminating and detecting the virus using the same
JP2018522574A (en) * 2016-01-15 2018-08-16 リパブリック オブ コリア(ナショナル フィッシェリーズ リサーチ アンド デベロップメント インスティチュート) Genetic marker for discrimination and detection of aquatic product infectious disease-causing virus, and method for discriminating and detecting the virus using the same
US10494666B2 (en) 2016-01-15 2019-12-03 National Institute Of Fisheries Science Genetic markers for discrimination and detection of bercoiver tk region on koi herpesvirus causing infectious aquatic organism diseases, and method of discriminating and detecting the virus using the same
KR101644776B1 (en) * 2016-04-29 2016-08-04 대한민국 Genetic Markers for Detection of Red Sea Bream Iridoviral(RSIV), and Method for Detection of the Causative Virus Using the Same
KR101655071B1 (en) * 2016-04-29 2016-09-07 대한민국 Genetic Markers for Discrimination of Red Sea Bream Iridovirus, and Method for Discrimination of Causative Virus Using the Same
KR101655069B1 (en) * 2016-04-29 2016-09-07 대한민국 Genetic Markers for Discrimination of Koi Herpesvirus Gray Sph and Method for Discrimination of Causative Virus Using the Same
KR101655068B1 (en) * 2016-04-29 2016-09-07 대한민국 Genetic Markers for Discrimination of Koi Herpesvirus Bercoiver TK and Method for Discrimination of Causative Virus Using the Same
KR20170125490A (en) 2016-05-04 2017-11-15 주식회사 시선바이오머티리얼스 Method for Determining Nucleotide Sequence Identity Using Probe and Melting Profile Analysis
WO2018048021A1 (en) * 2016-09-12 2018-03-15 대한민국(관리부서:행정자치부 국립과학수사연구원장) Method for analyzing snp of mitochondrial dna by using pna probe and melting curve analysis
US10337055B2 (en) 2016-09-12 2019-07-02 Republic Of Korea (National Forensic Service Director, Ministry Of Public Administration & Security) Method for analyzing SNPs of mitochondrial DNA using PNA probes and melting curve analysis
WO2018092998A1 (en) * 2016-11-15 2018-05-24 대한민국(관리부서:국립수산과학원) Method for detecting genetic mutation of viral hemorrhagic septicemia virus
US11473154B2 (en) 2016-11-15 2022-10-18 National Fishery Products Quality Management Service Method for detecting mutation in viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) non-viron (NV) gene
KR20180063411A (en) * 2016-12-01 2018-06-12 해양환경공단 PNA probe for pathogenic enterococcus and its use in ballast water
KR20180130627A (en) * 2017-05-29 2018-12-10 한양대학교 에리카산학협력단 Identifying method of squid species using dual labeled probe and fluorescence melting curve analysis
KR20190078555A (en) * 2019-06-25 2019-07-04 대한민국(관리부서:국립수산과학원) Genetic Marker for Discrimination and Detection of Vibriosis in fish and Method for Discrimination and Detection of Vibriosis in fish Using the Same
KR20190076944A (en) * 2019-06-25 2019-07-02 대한민국(관리부서:국립수산과학원) Genetic Marker for Discrimination and Detection of Vibriosis in fish and Method for Discrimination and Detection of Vibriosis in fish Using the Same

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