WO2023094579A1 - Methode de detection de la presence d'un pathogene et determination de ses caracteristiques en sante humaine et animale - Google Patents
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- C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
- C12Q1/6895—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for plants, fungi or algae
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/70—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving virus or bacteriophage
Definitions
- the invention relates to the field of diagnostics for the detection of pathogens in human and animal health. More particularly, it relates to a method for detecting the presence of a pathogen and for determining its characteristics of virulence and resistance to treatments for appropriate treatment. It also relates to a ready-to-use diagnostic kit for implementing the method.
- Diagnostic tools are valuable aids for the identification of infectious diseases but also for their monitoring: propagation, appearance of new variants, evolution of variants.
- the state of the art teaches many methods for detecting the presence of pathogens using the PCR method.
- the reliability of these methods can be uncertain depending on the detection method used.
- polymers can form, resulting from a mismatch of the primer sequences and the targeted DNA sequences.
- the formation of these polymers, in particular of dimers, plays a determining role in the reliability of the results obtained during the revelation of the amplified sequences.
- the presence of polymerizations indeed leads to false positives, especially if the revelation is done on an immunological strip. Neutralization of these polymers is therefore essential to obtain reliable results.
- the document WO2006112818A2 describes a method reducing the formation of dimers by adding modified nucleobases to the 3' end of the primers.
- the document provides for polynucleotides comprising at least one nucleobase modified pyrimidine and no more than 4 nucleotides at the 3' end of the polynucleotide.
- the document EP2814976 B1 proposes a method making it possible to reduce the nonspecific formation of dimeric or polymeric nucleic acid in which the 2-amino- deoxyadenosine (2-amino-dA), 2-thio-deoxythymidine (2-thio-dT) or other nucleotide analogs of interest are incorporated into the random hexamers used for amplification of the target nucleic acid.
- SNP Single Nucleotide Polymorphism
- One of the detection methods already known in the state of the art is that using amplification by recombinase polymerase which makes it possible to highlight the presence of a specific marker characterizing a bio-aggressor of a plant (also known as the name of Flashdiag).
- This method is characterized by: the removal of a piece of leaf showing a symptom, the extraction of the DNA from the sample by stages of grinding and/or filtration, the sample is then placed in a tube containing the probes and the primers necessary for the detection and the mixture undergoes amplification by recombinase polymerase, finally, for the revelation of the results, an immunological strip is placed in the tube of mix, with the PCR reagents including 3 'and 5' primers specific DNA.
- the invention relates to a method for diagnosing the presence of at least one pathogen infecting humans or animals. It also makes it possible to determine the characteristics of interest associated with the pathogens detected, such as a genetic variation associated with a modification in the behavior of the pathogen, resistance to a treatment, multi-resistance.
- the method according to the invention comprises the provision of a biological sample from an individual suspected of being infected, the extraction of DNA or RNA from said sample, the amplification by PCR or RT-PCR of sequences DNA or RNA of the pathogen to determine i) the presence of the latter thanks to a pair of specific primers making it possible to amplify a sequence characteristic of this pathogen, ii) the possible presence of at least one genetic variation associated with a modification of the behavior of the pathogen, or responsible for resistance to a treatment, this amplification being carried out in the presence of interfering DNA complementary to the parts of the primers capable of forming polymers between them in order to avoid the formation of aspecific bands on the strips immunological responsible for false positives; the revelation of the presence of said pathogen and possibly of a resistance of the latter is carried out on immunological strips (for example of the nitrocellulose type DAS-ELISA).
- a restriction enzyme is added to the sample after extraction and before amplification so as to eliminate the wild copy of the codon corresponding to the codon carrying the sought mutation to avoid the amplification of non-specific sequences which would give false positives.
- the invention also relates to a kit for detecting the presence of a pathogen and determining its characteristics of interest suitable for use outside the laboratory (in the field, for example in the natural environment) but also usable in the laboratory, in particular in laboratories that do not have equipment dedicated to molecular diagnostics.
- the present invention meets a need in the medical world by proposing a rapid, reliable and easy-to-interpret diagnostic method making it possible to demonstrate both the presence of a pathogen and to characterize the latter as to the existence of a genetic variation associated with a change in the behavior of the pathogen or resistance to a treatment.
- This method is based on quantitative PCR amplification that can be performed using a portable “point-of-care” type device and detection on immunological strips.
- PCR amplification allows rapid and efficient determination of a pathogen and genetic mutation/variation of interest.
- the DNA or RNA extract from the sample is directly introduced into a mixture containing the primers specific for the pathogen and others specific for other mutations of interest and the whole is subjected to a PCR amplification step or RT-PCR followed by the revelation of the results thanks to an immunological strip.
- the results are obtained by detection via antibodies attached to the strip of an antigenic marker attached to the end of the amplified primers. This method does not require any DNA or RNA probe and allows a simple and rapid sequence of steps.
- the primers used in the mixture can form polymers. As a general rule and in reading on gel, this only induces a loss of efficiency of the system, more or less significant depending on the polymer formed. On the other hand, when the technology uses revelation on an immunological strip, this induces, in addition, the formation of “false positives”. Indeed, the strip is able to identify a polymer, if it has the two necessary antigenic markers at each end of the dimer or polymer formed. In this case, a band will light up while the sample is negative.
- the inventors have unexpectedly demonstrated that the addition of interfering DNA acts significantly on the formation of polymers between primers, thus avoiding the appearance of aspecific bands responsible for false positives. Contrary to what the prior art teaches, the added interfering DNA is not bound here to a primer. Thanks to the use of interfering DNA, it is possible to increase the number of primers present in the mixtures, while being able to avoid the appearance of false positives. Thus, the invention proposes to simultaneously detect 4 markers in the same PCR reaction by using two revelation bands for 2 markers each.
- the inventors propose to add (optionally) a step for eliminating wild-type sequences likely to be amplified aspecifically by cutting the latter at the level of the wild-type codon corresponding to the codon comprising the sought-after mutation, thanks to the use of restriction enzymes.
- the restriction enzymes used are specific for the wild type codon corresponding to the mutated codon carrying the sought mutation.
- This technology therefore provides access to a high-performance and reliable diagnostic tool - in the field - for effective and targeted patient care.
- the kit according to the invention is easy and quick to use, the result being available in less than one hour.
- the kit has been designed to allow use by people without any laboratory experience, without special protective equipment and without risk to the environment or the handler (without toxic component).
- the result is presented in the form of strips, it is easy to interpret (point of care quick diagnosis).
- the present invention is applicable at the medical level both in humans and in animals. It is suitable for use in the natural environment (field diagnosis), but also in the laboratory, especially when the latter has only rudimentary equipment.
- the availability of the method in the form of a kit makes it accessible to perform diagnostics in general practitioner and veterinary practices as well as in pharmacies.
- a first object of the invention relates to a method for diagnosing the presence of a pathogen in a biological sample originating from an individual suspected of being infected, comprising the steps of: a. Provision of said sample b. Extraction of DNA or RNA from said sample c. Amplification by PCR or RT-PCR of the sequences of said DNA or RNA of the pathogen to determine the presence of said pathogen using a pair of specific primers making it possible to amplify a sequence characteristic of said pathogen d.
- This method makes it possible to determine whether the individual suspected of being infected by a pathogen is indeed infected or whether it is another pathology. It can also determine if the pathogen in question has resistance to a known drug treatment or if it carries another point mutation/genetic variation associated with a change in the behavior of the pathogen in order to guide management.
- this method offers a complete diagnosis.
- the extracted DNA is treated by bringing it into contact with a restriction enzyme before amplification.
- This enzyme is chosen so as to cut the genomic DNA, specifically at the level of a wild-type codon (the mutated codon being the desired target) before carrying out the PCR specifically targeting the mutated codon (SNP). Thanks to this step, only the desired sequence is amplified and non-specific amplifications are prevented; therefore obtaining false positives is avoided. This reduction in false positives is crucial for veterinary and medical applications.
- Restriction enzymes being specific to DNA, the method comprising a step of using such enzymes will preferably be implemented from genomic DNA. It is however possible to adapt this method in order to detect the presence or characteristics of a pathogen from RNA. In this particular case, a step of converting the RNA into cDNA by RT-PCR will be required before the enzymatic digestion step.
- a person skilled in the art is familiar with the RT-PCR method. On the other hand, he knows how to choose the restriction enzymes adapted to the sequences which it is desired not to be amplified (that is to say the wild-type sequences to be eliminated).
- the enzymatic digestion step is done after DNA extraction and can be done in a portable PCR device (point-of-care). Indeed, this just requires adding a step (incubation at a given temperature for a given time depending on the enzyme used, generally between 20 and 30 min maximum) at the start of the PCR program for amplification of the targeted mutations .
- the restriction enzyme then being inactivated at the very beginning of the PCR cycles (by a temperature rise to 95° C.).
- this method makes it possible to detect, in addition to the presence of a first pathogen, the presence of at least one other pathogen and/or to determine at least one characteristic associated with at least one of the pathogens chosen from a genetic variation associated with a modification of the behavior of the pathogen, resistance to a treatment, multi-resistance.
- the method makes it possible to simultaneously obtain up to 4 results associated with the detection and/or characterization of one or more pathogens from the same amplification reaction.
- the revelation will be carried out using two strips which will both be impregnated in the same amplification reaction mixture.
- pathogen within the meaning of the invention means any biologically active agent responsible for symptoms in humans or animals, such as single- or double-stranded DNA viruses, bacteria or fungi.
- interfering DNA means small DNA sequences complementary to part of a primer. This identified part of the primer can, when mismatched during amplification, form polymers with the other primers. This then creates false positives when revealing the results on the strips. Thanks to total complementarity with the corresponding part of the primer, the interfering DNA sequence will compete with the other primers and prevent the formation of polymers by avoiding pairings between them. These sequences are short, generally less than 15 nucleotides, preferably less than 10 nucleotides in length. The concentration of these interfering DNAs and the interfering DNA/primers ratio must be adapted so as not to harm the effectiveness of the PCR.
- genetic variation associated with a modification of the behavior of the pathogen within the meaning of the invention, is meant a point mutation or SNP, which modifies the virulence (infectious capacity, aggressiveness).
- characteristics of interest of a pathogen, we mean any characteristic making it possible to orient, adapt a treatment or follow the evolution of an infection at the level of an individual or a population.
- the characteristics of interest include the genetic variations associated with a modification of the behavior of the pathogen, but also the characteristics of resistance or multi-resistance to a drug or drug cocktail.
- the duplex format that is to say four results (2 bands) on the same strip
- the detection on the strip is done thanks to: a.
- b. the presence of a specific antigenic marker at the 5' end of one of the sense or antisense primers and the presence of an antigenic marker common to all pairs of primers at the 5' end of the other primer , said markers being recognized by an antibody specific for one of the bands of strip
- two bands of a strip make it possible to reveal respectively (i) the presence of a first pathogen in the sample, and (ii) the presence of a second pathogen or the existence of a drug resistance or other characteristic of interest.
- a second strip with a second amplification mixture it is possible to use a second strip with a second amplification mixture to reveal two or more other markers chosen from the presence of a second pathogen or the existence of a resistance of the latter to drugs or another feature of interest.
- Revelation on a strip makes it possible to simultaneously obtain two or more results arranged on two bands, the third band being a control band attesting that the migration has been carried out correctly.
- the two “results” strips can give simple information (for example: presence or absence of a pathogen) or complex information (resistance to a drug without making it possible to distinguish among several resistances revealed simultaneously by the strip). Different markers can thus be combined on the same band giving an overall result.
- a second object of the invention relates to a kit for detecting the presence of a pathogen or its characteristics of interest suitable for use in the field comprising: o
- a lyophilized PCR reaction mixture comprising: a pair of specific primers allowing to amplify a sequence characteristic of said pathogen interfering DNAs less than 15 nucleotides in length and which are complementary to the parts of the primers capable of forming polymers between them a polymerase amplification enzyme at least one restriction enzyme capable of cutting the DNA of said pathogen specifically at the level of at least one wild-type codon corresponding to the codon carrying at least one of the desired mutations o
- At least one immunological revelation strip making it possible to reveal the presence of said pathogen.
- the kit also comprises at least one other pair of primers making it possible either to detect the presence of another pathogen, or to determine at least one characteristic of interest associated with a pathogen chosen from a genetic variation associated with a modification of the behavior of the pathogen, resistance to a treatment, multi-resistance.
- the kit makes it possible to detect the presence of a pathogen and the characterization of a genetic variation associated with a modification of the behavior of the pathogen, resistance to a treatment, multi-resistance; in this kit, the PCR mixture comprises, in addition to the pair of specific primers making it possible to amplify a sequence characteristic of said pathogen and of the interfering DNAs, one or more pairs of specific primers making it possible to amplify at least one mutation responsible for a modification of the behavior of the pathogen, resistance to a treatment or multi-resistance.
- the strip comprises a migration control band and two distinct bands formed by the binding of antibodies specific for a particular antigenic marker, namely respectively: o an antibody/ligand specific for an antigenic marker located at the end 5' of one of the primers allowing the amplification of a specific sequence of the pathogen, o an antibody/ligand specific for an antigenic marker located at the 5' end of one of the primers allowing the amplification of a sequence specific to a feature of interest o an antibody specific for an antigenic marker common to the 3' ends of the various amplification products making it possible to reveal the bands.
- the revelation of the bands is based on the presence of a marker at the 3' end of each amplification product. This marker present 3' of the primers is amplified with the sequence of interest and is found in position 3' of the amplification product.
- the kit can include 1 immunological strip to be used to reveal 2 or more results from the same amplification. Beyond two results, several markers are associated on the same strip. These results are chosen from among the detection of the presence of at least one pathogen and the determination of at least one characteristic of interest associated with a pathogen.
- This type of kit comprising several markers is efficient and very informative for the user, while having a limited cost because these results are obtained in a single operation.
- the use of interfering DNA is particularly crucial to avoid the appearance of false positives linked to the complexity of the PCR mixture (high number of primers).
- restriction enzymes specific for the wild-type codons corresponding to the codons carrying the desired mutations makes it possible to optimize the elimination of false positives.
- the revelation strip in duplex format, comprises three distinct bands formed by the binding of antibodies specific for a particular antigenic marker, namely respectively: an antibody/ligand specific for an antigenic marker located at the 5' end of one of the primers allowing the amplification of a specific sequence of the pathogen an antibody/ligand specific for an antigenic marker located at the 5' end of one of the primers allowing the amplification of a specific sequence of a resistance or multi-drug resistance or other characteristic of interest. an antibody specific for an antigenic marker located at the 3' end of the various amplification products making it possible to reveal the bands.
- the invention also relates to a method for detecting in the field the presence of a pathogen in a biological sample from an individual suspected of being infected and possibly the presence of another pathogen or for determining a characteristic of interest of a pathogen implementing a kit as defined above, and comprising the following steps:
- this diagnostic method comprises an additional step of digestion of the DNA with a restriction enzyme specific for the codons of the wild-type sequences corresponding to the codon of the mutated sequence sought to eliminate the false-positives .
- This diagnostic method can be adapted according to medical needs.
- diseases of interest are Lyme disease, covid-19, and any other disease of viral, bacterial or fungal origin.
- veterinary field mention may be made, by way of non-limiting example, of swine fever.
- Figure 1 Schematic representation of the steps of the method for detecting a bio-aggressor in a plant sample.
- FIG.3 Figure 3: Illustration of the use of interfering DNA (DNAi).
- A Without iDNA, a non-specific band is visible.
- B In the presence of iDNA, no false positives appear.
- EXAMPLE 1 Example of implementation of the non-health method: application to the detection and characterization of strains of the pathogen Zymo-septoria tritici with revelation of two markers
- Non-specific MDR1 sense primer for multi-resistance 5'-
- MDR3 antisense primer specific for multidrug resistance II 5'- [5' 6-
- MDR4 antisense primer specific for multidrug resistance III 5'-[5'6-FAM]
- composition of the PCR mix is detailed in Table 1.
- Table 1 PCR mix for detection of Zymo-Septoria tritici and MDR resistance in this pathogen The method is implemented by following the following protocol from a kit according to the invention:
- the PCR program used is as follows:
- FIG. 3 An example of a revelation of a strip with and without iDNA is presented in FIG. 3 showing that the iDNAs make it possible to avoid the appearance of non-specific bands, which constitute false positives.
- EXAMPLE 2 Example of implementation of the non-health method: Application to the detection and characterization of strains of the Fusarium pathogen with revelation of 4 markers using 2 strips
- This example illustrates the application of the method to the simultaneous detection of 4 markers. Although this example is not within the scope of the present invention, it presents the principles of the method in a particular embodiment of simultaneous revelation of 4 markers.
- Fusarium are very common and cause very serious damage to the foliage, the roots causing heavy lodging. Moreover, these Fusarium ssp. produce mycotoxins, some of which are lethal for humans and animals when their levels in food exceed certain limits (cumulative effects in tissues such as the liver for example, nervous tissues, etc.;)
- the harvest will be usable as food even if the mycotoxin markers are positive; o If the two fungicide resistance markers indicate that this fusarium cannot be effectively eliminated, the harvest will be usable for food even if the mycotoxin markers are negative; on the other hand, it will be necessary to destroy the harvest if one of the mycotoxin markers is positive.
- EXAMPLE 3 Example of an application in animal health - Application to the diagnosis of swine fever
- the method according to the invention can be applied to the diagnosis of swine fever which is caused by different viruses in pigs and wild boars.
- a first form of plague is African swine fever which affects pigs, but also wild boars, warthogs, bush pigs and ticks.
- the agent is Asfivirus, a large double-stranded DNA virus that replicates in the cytoplasm of infected cells.
- a second form is European swine fever, known as classical swine fever, another contagious viral disease which affects suids (including domestic pigs and wild boar which are the only "known wild reservoirs"), without being transmissible to humans.
- Its vector is an RNA virus from the Flaviviridae family, of the Pestivirus genus (same genus as the virus responsible for hepatitis C).
- Flashdiag® pedestrian kits Point-of-care type
- SNP's single base pair mutations
- Pedestrian kits that can be used on site can also make it possible to carry out surface and air tests (e.g. covid-19) to detect such viruses in the direct environment of pigs, in particular in confined farming conditions and /or fattening.
- surface and air tests e.g. covid-19
- EXAMPLE 4 Example of an application in human health - Application to the diagnosis of Lyme disease
- Lyme disease is a human infection whose main vector of transmission of the infectious agent is the tick, present in tall grass, pastures, recreational lawns, undergrowth and other natural habitats. Transmitted by the bite of hard Ixodes ticks, it is a bacterial disease caused by borrelia.
- Lyme borreliosis often refers to "European Lyme disease", due to a greater diversity of borrelia (mainly Borrelia garinii, B. afzelii... or B. burgdorferi in the broad sense).
- Lyme disease is characterized by great diversity (genetic, epidemiological, clinical and diagnostic) because it is multivisceral (which can affect various organs) and multisystemic, which can affect various systems with therefore polymorphic clinical manifestations (cutaneous, rheumatological and neurological). It is expanding, becoming the most frequent vector-borne disease.
- Flashdiag® pedestrian kits point-of-care type
- SNP single base pair
- the detection and characterization of variant bacteria carried by infected people is essential to be able to administer the most suitable antibiotics to eradicate the bacteria in question.
- Flashdiag® pedestrian kits could be useful to general practitioners, pharmacists and hospital environments for better monitoring of this expanding pathology in France, Europe and the USA.
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Abstract
L'invention a trait au domaine du diagnostic pour la détection des pathogènes en santé humaine et animale. Plus particulièrement, elle concerne une méthode de détection de la présence d'un pathogène et de détermination de ses caractéristiques de virulence et de résistance aux traitements pour une prise en charge adaptée. Elle concerne également un kit de diagnostic prêt-à-l'emploi pour la mise en œuvre de la méthode.
Description
DESCRIPTION
Titre : METHODE DE DETECTION DE LA PRESENCE D'UN PATHOGENE ET DETERMINATION DE SES CARACTERISTIQUES EN SANTE HUMAINE ET ANIMALE
L'invention a trait au domaine du diagnostic pour la détection des pathogènes en santé humaine et animale. Plus particulièrement, elle concerne une méthode de détection de la présence d'un pathogène et de détermination de ses caractéristiques de virulence et de résistance aux traitements pour une prise en charge adaptée. Elle concerne également un kit de diagnostic prêt-à-l'emploi pour la mise en œuvre de la méthode.
Domaine de l'invention
Le fait de pouvoir diagnostiquer simplement et rapidement la présence d'un pathogène en santé humaine ou animale constitue un enjeu de santé publique majeur. Les besoins sont soutenus par l'apparition de nouvelles infections comme celle provoquée par le SARS-Cov2.
Les outils de diagnostic sont des aides précieuses pour l'identification des maladies infectieuses mais également pour leur suivi : propagation, apparition de nouveaux variants, évolution des variants.
L'état de l'art enseigne de nombreuses méthodes de détection de la présence de pathogènes utilisant la méthode de PCR. Cependant la fiabilité de ces méthodes peut être incertaine en fonction de la méthode de détection employée. En effet, lors de la réalisation d'une méthode classique de PCR, des polymères peuvent se former, résultant d'un mauvais appariement des séquences d'amorces et des séquences de l'ADN ciblées. La formation de ces polymères, notamment de dimères, joue un rôle déterminant dans la fiabilité des résultats obtenus lors de la révélation des séquences amplifiées. La présence de polymérisations entraine en effet de faux positifs, notamment si la révélation se fait sur bandelette immunologique. La neutralisation de ces polymères est donc essentielle à l'obtention de résultats fiables.
Pour limiter la formation de ces polymères, l'état de la technique propose différentes solutions.
Le document WO2006112818A2 décrit un procédé réduisant la formation de dimères en ajoutant des nucléo-bases modifiées à l'extrémité 3' des amorces. Le document prévoit des polynucléotides comprenant au moins une pyrimidine nucléo-base modifiée et pas plus de 4 nucléotides à l'extrémité 3' du polynucléotide.
Le document EP2814976 Bl propose un procédé permettant de réduire la formation non spécifique d'acide nucléique dimérique ou polymérique dans lequel la 2-amino-
désoxyadénosine (2-amino-dA), la 2-thio-désoxythymidine (2-thio-dT) ou d'autres analogues nucléotidiques d'intérêt sont incorporés dans les hexamères aléatoires utilisés pour l'amplification de l'acide nucléique cible.
Bien que fonctionnelles, les méthodes connues de l'état de la technique sont imparfaites. En effet, elles proposent la conception d'amorces spécifiques Single Nucleotide Polymorphism (SNP) par une méthode PCR avec des ajouts de nucléo-bases, ce qui est plus complexe, un certain niveau de technicité et requiert plus de temps.
Une des méthodes de détection déjà connue de l'état de la technique, est celle utilisant l'amplification par recombinase polymérase qui permet de mettre en évidence la présence d'un marqueur spécifique caractérisant un bio-agresseur d'un végétal (aussi connue sous le nom de Flashdiag). Cette méthode se caractérise par : le prélèvement d'un morceau de feuille présentant un symptôme, l'extraction de l'ADN de l'échantillon par des étapes de broyages et/ou filtrations, l'échantillon est ensuite placé dans un tube contenant les sondes et les amorces nécessaires à la détection et le mélange subit une amplification par recombinase polymérase, enfin, pour la révélation des résultats, une bandelette immunologique est placée dans le tube de mix, avec les réactifs de PCR dont des amorces 3' et 5' ADN spécifiques.
Il existe un réel besoin de disposer de nouveaux outils de diagnostic destinés au domaine de la santé qui permettent des détections rapides, fiables, qui soient faciles d'utilisation et accessibles au plus grand nombre afin de démocratiser cet usage.
Exposé de l'invention
L'invention concerne une méthode de diagnostic de la présence d'au moins un pathogène infectant l'homme ou l'animal. Elle permet également de déterminer les caractéristiques d'intérêt associées aux pathogènes détectés telles qu'une variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène, une résistance à un traitement, une multi- résistance.
La méthode selon l'invention comprend la mise à disposition d'un échantillon biologique provenant d'un individu suspecté d'être infecté, l'extraction de l'ADN ou ARN dudit échantillon, l'amplification par PCR ou RT-PCR de séquences d'ADN ou ARN du pathogène pour déterminer i) la présence de ce dernier grâce à un couple d'amorces spécifiques permettant d'amplifier une séquence caractéristique de ce pathogène, ii) la présence éventuelle d'au moins une variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène, ou responsable d'une résistance à un traitement, cette amplification étant réalisée en présence d'ADN interférents complémentaires des parties des amorces capables de former entre elles des polymères afin d'éviter la formation de bandes aspécifiques sur les bandelettes immunologique responsables de faux-positifs ; la révélation de la présence dudit pathogène et éventuellement d'une résistance de ce dernier est réalisée sur des bandelettes immunologiques (par exemple de type nitrocellulosique DAS-ELISA). Dans un mode de
réalisation préféré de l'invention, une enzyme de restriction est ajoutée à l'échantillon après extraction et avant amplification de sorte à éliminer la copie sauvage du codon correspondant au codon portant la mutation recherchée pour éviter l'amplification de séquences non spécifiques qui donneraient des faux-positifs.
L'invention concerne également un kit de détection de la présence d'un pathogène et de détermination de ses caractéristiques d'intérêt adapté à une utilisation hors laboratoire (sur le terrain, par exemple en milieu naturel) mais utilisable également au laboratoire, en particulier dans les laboratoires ne disposant pas de matériel dédié au diagnostic moléculaire.
Avantage de l'invention
La présente invention répond à un besoin du monde médical en proposant une méthode de diagnostic rapide, fiable et facile d'interprétation permettant de mettre en évidence à la fois la présence d'un pathogène et de caractériser ce dernier quant l'existence d'une variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène ou d'une résistance à un traitement. Cette méthode est basée sur une amplification par PCR quantitative pouvant être réalisée grâce un dispositif portatif de type « point-of-care » et une détection sur bandelettes immunologiques.
L'amplification par PCR permet une détermination rapide et efficace d'un pathogène et d'une mutation/ variation génétique d'intérêt. L'extrait d'ADN ou ARN de l'échantillon est directement introduit dans un mélange contenant les amorces spécifiques du pathogène et d'autres spécifiques d'autres mutations d'intérêt et l'ensemble est soumis à une étape d'amplification par PCR ou RT-PCR suivie de la révélation des résultats grâce à une bandelette immunologique. Les résultats sont obtenus par détection via des anticorps fixés sur la bandelette d'un marqueur antigénique fixé à l'extrémité des amorces amplifiées. Cette méthode ne requiert aucune sonde ADN ou ARN et permet un enchaînement des étapes simple et rapide.
Lors d'une PCR, les amorces utilisées dans le mélange peuvent former des polymères. En règle générale et en lecture sur gel, cela n'induit qu'une perte d'efficacité du système, plus ou moins importante en fonction du polymère formé. Par contre, lorsque la technologie utilise la révélation sur bandelette immunologique, cela induit, en plus, la formation de « faux positifs ». En effet, la bandelette est capable de repérer un polymère, si celui-ci possède bien les deux marqueurs antigéniques nécessaires à chaque extrémité du dimère ou polymère formé. Dans ce cas, une bande s'allumera alors que l'échantillon est négatif.
Ainsi, pour éviter l'apparition de faux-positifs et augmenter la fiabilité de la méthode, les inventeurs ont mis en évidence, de manière inattendue, que l'ajout d'ADN interférents agit significativement sur la formation de polymères entre amorces, évitant ainsi l'apparition de bandes aspécifiques responsables de faux-positifs. Contrairement à ce que l'art antérieur enseigne, l'ADN interfèrent ajouté n'est pas lié ici à une amorce.
Grâce à l'utilisation d'ADN interférents, il est possible d'augmenter le nombre d'amorces présentes dans les mélanges, tout en étant capable d'éviter l'apparition de faux positifs. Ainsi, l'invention propose de détecter simultanément 4 marqueurs dans une même réaction PCR en utilisant deux bandes de révélation pour 2 marqueurs chacune.
Afin d'augmenter encore la robustesse et la fiabilité requises pour une application de la méthode au diagnotic médical, les inventeurs proposent d'ajouter (de manière optionnelle) une étape d'élimination des séquences sauvages susceptibles d'être amplifiées de manière aspécifique en coupant ces dernières au niveau du codon sauvage correspondant au codon comprenant la mutation recherchée, grâce à l'usage d'enzymes de restriction. Les enzymes de restriction utilisées sont spécifiques du codon sauvage correspondant au codon muté portant la mutation recherchée.
La combinaison de l'utilisation d'une part d'enzymes de restriction et d'autre part d'ADN interférents, telles que décrites précédemment produit un résultat sur bandelettes pour lequel la fiabilité est très élevée, ce qui est attendu dans le domaine de la santé.
Cette technologie donne donc accès à un outil de diagnostic - de terrain - performant et fiable pour une prise en charge efficace et ciblée de patients.
Le kit selon l'invention est d'utilisation facile et rapide, le résultat étant disponible en moins d'une heure. De plus, le kit a été conçu pour permettre une utilisation par des personnes sans aucune expérience de laboratoire, sans équipement de protection particulier et sans risque pour l'environnement ou le manipulateur (sans composant toxique). Le résultat est présenté sous forme de bandelettes, il est simple à interpréter (point of care quick diagnostic).
Au niveau du service médical rendu, la méthode selon l'invention et les kits associés permettent donc :
De détecter la présence d'un ou plusieurs pathogènes,
De déterminer les caractéristiques d'intérêt des pathogènes en vue d'un traitement, en particulier l'existance de résistances médicamenteuses ou multirésistance médicamenteuse,
De détecter l'apparition d'un variant ou d'une résistance au cours d'une infection, De mettre en place un suivi de l'évolution d'une infection au niveau d'un individu ou d'une population.
La présente invention est applicable au niveau médical tant chez l'homme que chez l'animal. Elle est adaptée à un usage en milieu naturel (diagnostic de terrain), mais également en laboratoire, notamment lorsque celui-ci ne dispose que d'équipement rudimentaire. La mise à disposition de la méthode sous forme d'un kit rend accessible la réalisation de diagnostic dans les cabinets de médecins généralistes et les cabinets vétérinaires ainsi que dans les pharmacies.
DESCRIPTION DETAILLE DE L'INVENTION
Un premier objet de l'invention concerne une méthode de diagnostic de la présence d'un pathogène dans un échantillon biologique provenant d'un individu suspecté d'être infecté comprenant les étapes de : a. Mise à disposition dudit échantillon b. Extraction de l'ADN ou ARN dudit échantillon c. Amplification par PCR ou RT-PCR des séquences desdits ADN ou ARN du pathogène pour déterminer la présence dudit pathogène grâce à un couple d'amorces spécifiques permettant d'amplifier une séquence caractéristique dudit pathogène d. Révélation sur bandelette immunologique de la présence dudit pathogène dans laquelle l'étape d'amplification se fait en présence d'ADN interférents d'une longueur inférieure à 15 nucléotides et qui sont complémentaires des parties des amorces capables de former entre elles des polymères afin d'éviter la formation de bandes aspécifiques sur les bandelettes immunologiques responsables de faux-positifs.
Cette méthode permet de déterminer si l'individu suspecté d'être infecté par un pathogène l'est effectivement ou s'il s'agit d'une autre pathologie. Elle permet également de déterminer si le pathogène en question possède une résistance à un traitement médicamenteux connu ou s'il porte une autre mutation ponctuelle/ variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène afin d'orienter la prise en charge.
Grâce à plusieurs couples d'amorces qui sont spécifiques du ou des pathogènes et/ou d'autres couples d'amorces spécifiques des principales mutations responsables d'une ou plusieurs résistances aux médicaments ou caractéristiques de variant connu, cette méthode propose un diagnostic complet.
La présence d'ADN interférents pendant l'étape d'amplification permet de réduire le nombre de faux-positifs lors de la révélation sur bandelette. Dans un mode de réalisation préféré de l'invention, l'ADN extrait est traité par mise en contact avec une enzyme de restriction avant amplification. Cette enzyme est choisie de sorte à couper l'ADN génomique, spécifiquement au niveau d'un codon sauvage (le codon muté étant la cible recherchée) avant de réaliser la PCR ciblant spécifiquement le codon muté (SNP). Grâce à cette étape, seule la séquence recherchée est amplifiée et l'on empêche les amplifications non spécifiques ; par conséquent l'obtention de faux-positifs est évitée. Cette diminution des faux-positifs est cruciale pour des applications vétérinaires et médicales.
Les enzymes de restriction étant spécifiques de l'ADN, la méthode comprenant une étape d'utilisation de telles enzymes sera de préférence mise en œuvre à partir d'ADN génomique. Il est toutefois possible d'adapter cette méthode afin de détecter la présence ou les
caractéristiques d'un pathogène à partir d'ARN. Dans ce cas particulier, une étape de conversion de l'ARN en ADNc par RT-PCR sera requise avant l'étape de digestion enzymatique. L'homme du métier connaît la méthode de RT-PCR. D'autre part, il sait choisir les enzymes de restriction adaptées aux séqeunces que l'on souhaite ne pas être amplifiées (c'est-à-dire les séquences sauvages à éliminer).
L'étape de digestion enzymatique se fait après extraction de l'ADN et peut se faire dans un appareil PCR portatif (point-of-care). En effet, ceci nécessite juste d'ajouter une étape (incubation à une température donnée pendant un temps donné en fonction de l'enzyme utilisée, en général entre 20 et 30 min maximum) au début du programme de PCR d'amplification des mutations visées. L'enzyme de restriction étant ensuite inactivée en tout début des cycles PCR (par une montée en température à 95°C).
Dans un mode de réalisation préféré de l'invention, cette méthode permet de détecter, en plus de la présence d'un premier pathogène, la présence d'au moins un autre pathogène et / ou de déterminer au moins une caractéristique associée à au moins l'un des pathogènes choisie parmi une variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène, une résistance à un traitement, une multi-résistance.
Ainsi, la méthode permet d'obtenir simultanément jusqu'à 4 résultats associés à la détection et/ou la caractérisation d'un ou plusieurs pathogènes à partir d'une même réaction d'amplification. Dans un tel mode de réalisation, la révélation sera effectuée à l'aide de deux bandes qui seront toutes deux imprégnées dans le même mélange de réaction d'amplification.
On entend par « pathogène » au sens de l'invention, tout agent biologiquement actif responsable de symptômes chez l'homme ou l'animal, tel que des virus à ADN simple ou double brin, des bactéries ou des champignons.
On entend par « ADN interfèrent », des petites séquences d'ADN complémentaires d'une partie d'une amorce. Cette partie d'amorce identifiée peut, lors d'un mauvais appariement durant l'amplification, former des polymères avec les autres amorces. Cela crée alors des faux-positifs lors de la révélation des résultats sur les bandelettes. Grâce à une complémentarité totale à la partie d'amorce correspondante, la séquence d'ADN interfèrent va entrer en compétition avec les autres amorces et empêcher la formation de polymères en évitant des appariement entre elles. Ces séquences sont courtes, généralement inférieures à 15 nucléotides, de préférence d'une longueur inférieure à 10 nucléotides. La concentration de ces ADN interférents et le ratio ADN interférents / amorces doivent être adaptés afin de ne pas nuir à l'efficacité de la PCR.
Par « variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène » au sens de l'invention, on entend une mutation ponctuelle ou SNP, qui modifie la virulence (capacité infectieuse, aggressivité).
Par « caractéristiques d'intérêt » d'un pathogène, on entend toute caractéristique permettant d'orienter, d'adapter un traitement ou de suivre l'évolution d'une infection au niveau d'un individu ou d'une population. Les caractéristiques d'intérêt comprennent les variations génétiques associées à une modification du comportement du pathogène, mais aussi les caractéristiques de résistance ou multirésistance à un médicament ou cocktail médicamenteux.
Dans un mode de réalisation préféré, le format duplex, c'est-à-dire quatre résultats (2 bandes) sur une même bandelette, la détection sur bandelette se fait grâce à : a. La présence d'anticorps fixés sur la bandelette et formant deux bandes distinctes, chaque bande étant constituée d'anticorps spécifiques d'un marqueur antigénique particulier b. la présence d'un marqueur antigénique spécifique à l'extrémité 5' de l'une des amorces sens ou antisens et la présence d'un marqueur antigénique commun à tous les couples d'amorces à l'extrémité 5' de l'autre amorce, lesdits marqueurs étant reconnus par un anticorps spécifique d'une des bandes de la bandelette c. des anticorps capables de se fixer au marqueur antigénique commun à tous les couples d'amorces et porteurs d'un système de révélation.
Dans un mode de réalisation particulier, deux bandes d'une bandelette permettent de révéler respectivement (i) la présence d'un premier pathogène dans l'échantillon, et (ii) la présence d'un second pathogène ou l'existence d'une résistance de ce dernier aux médicaments ou d'une autre caractéristique d'intérêt.
Il est possible d'utiliser une deuxième bandelette avec un deuxième mélange d'amplification pour révéler deux, ou plus, autres marqueurs choisis parmi la présence d'un second pathogène ou l'existence d'une résistance de ce dernier aux médicaments ou d'une autre caractéristique d'intérêt.
La révélation sur bandelette permet d'obtenir simultanément deux, ou plus, résultats disposés sur deux bandes, la troisième bande étant une bande de contrôle attestant que la migration s'est faite correctement. Les deux bandes « résultats » peuvent donner une information simple (par exemple : présence ou non d'un pathogène) ou complexe (résistance à un médicament sans permettre de distinguer parmi plusieurs résistances révélées simultanément par la bandelette). Différents marqueurs peuvent ainsi être combinés sur une même bande donnant un résultat global.
Les marqueurs antigéniques peuvent être choisis parmi les marqueurs bien connus de l'homme du métier tels que la biotine, la digoxigénine, FAM.... Alternativement, le système de révélation peut se baser sur des ligands tels que le système biotine-steptavidine.
Un deuxième objet de l'invention concerne un kit de détection de la présence d'un pathogène ou de ses caractéristiques d'intérêt adapté à une utilisation sur le terrain comprenant : o Un mélange réactionnel PCR lyophilisé comprenant : un couple d'amorces spécifiques permettant d'amplifier une séquence caractéristique dudit pathogène des ADN interférents d'une longueur inférieure à 15 nucléotides et qui sont complémentaires des parties des amorces capables de former entre elles des polymères une enzyme d'amplification polymérase au moins une enzyme de restriction capable de couper l'ADN dudit pathogène spécifiquement au niveau d'au moins un codon sauvage correspondant au codon portant au moins une des mutations recherchées o Au moins une bandelette de révélation immunologique permettant de révéler la présence dudit pathogène.
Afin de fournir un diagnostic plus complet, dans un mode de réalisation préféré de l'invention le kit comprend également au moins un autre couple d'amorces permettant soit de détecter la présence d'un autre pathogène, soit de déterminer au moins une caractéristique d'intérêt associée à un pathogène choisie parmi une variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène, une résistance à un traitement, une multi-résistance.
Dans un mode de réalisation particulier, le kit permet de détecter la présence d'un pathogène et la caractérisation d'une variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène, une résistance à un traitement, une multi-résistance ; dans ce kit, le mélange PCR comprend en plus du couple d'amorces spécifiques permettant d'amplifier une séquence caractéristique dudit pathogène et des ADN interférents, un ou plusieurs couples d'amorces spécifiques permettant d'amplifier au moins une mutation responsable d'une modification du comportement du pathogène, une résistance à un traitement ou une multi-résistance. Dans cette configuration, la bandelette comprend une bande contrôle de migration et deux bandes distinctes formées par la fixation d'anticorps spécifiques d'un marqueur antigénique particulier à savoir respectivement : o un anticorps/ligand spécifique d'un marqueur antigénique situé à l'extrémité 5' d'une des amorces permettant l'amplification d'une séquence spécifique du pathogène, o un anticorps/ligand spécifique d'un marqueur antigénique situé à l'extrémité 5' d'une des amorces permettant l'amplification d'une séquence spécifique d'une caractéristique d'intérêt
o un anticorps spécifique d'un marqueur antigénique commun aux extrémités 3' des différents produits d'amplification permettant de révéler les bandes.
La révélation des bandes repose sur la présence d'un marqueur à l'extrémité 3' de chaque produit d'amplification. Ce marqueur présent en 3' des amorces est amplifié avec la séquence d'intérêt et se retrouve en position 3' du produit d'amplification.
Le kit peut comprendre 1 bandelette immunologique à utiliser pour révéler 2 ou plus résultats à partir d'une même amplification. Au délà de deux résultats, pluieurs marqueurs sont associés sur une même bande. Ces résulats sont choisis parmi la détection de la présence d'au moins un pathogène et la détermination d'au moins une caractéristique d'intérêt associée à un pathogène. Ce type de kit comprenant plusieurs marqueurs est performant et très informatif pour l'utilisateur, tout en ayant un cout limité du fait que ces résultats sont obtenus en une seule opération. L'utilisation des ADN interférents est particulièrement cruciale pour éviter l'apparition de faux-positifs liés à la complexité du mélange PCR (nombre élevé d'amorces). De plus, l'utilisation d'enzymes de restriction spécifiques des codons sauvages correspondant aux codons portant les mutations recherchées permet d'optimiser l'élimination de faux-positifs.
La bandelette de révélation, au format duplex, comprend trois bandes distinctes formées par la fixation d'anticorps spécifiques d'un marqueur antigénique particulier à savoir respectivement : un anticorps/ligand spécifique d'un marqueur antigénique situé à l'extrémité 5' d'une des amorces permettant l'amplification d'une séquence spécifique du pathogène un anticorps/ligand spécifique d'un marqueur antigénique situé à l'extrémité 5' d'une des amorces permettant l'amplification d'une séquence spécifique d'une résistance ou une multi-résistance à un traitement ou d'une autre caractéristique d'intérêt. un anticorps spécifique d'un marqueur antigénique situé à l'extrémité 3' des différents produits d'amplification permettant de révéler les bandes.
L'invention concerne également une méthode de détection sur le terrain de la présence d'un pathogène dans un échantillon biologique provenant d'un individu suspecté d'être infecté et éventuellement la présence d'un autre pathogène ou de détermination d'une caractéristique d'intérêt d'un pathogène mettant en œuvre un kit tel que défini précédemment, et comprenant les étapes suivantes :
A) Mise à disposition d'un échantillon biologique susceptible de contenir un pathogène,
B) Extraction de l'ADN ou ARN à partir dudit échantillon
C) Introduction de l'ADN extrait dans un tube contenant ledit mélange PCR lyophilisé et au moins une enzyme de restriction.
D) Réalisation d'une amplification par PCR
E) Introduction d'une ou deux bandelette(s) immunologique(s) pour imprégnation dans le tube contenant les amplicons pour révéler si le pathogène est présent et éventuellement si un second pathogène est présent ou si le pathogène présente une caractéristique d'intérêt.
Dans un mode de réalisation préféré de l'invention, cette méthode de diagnostic comprend une étape supplémentaire de digestion de l'ADN par un enzyme de restriction spécifique des codons des séquences sauvages correspondant au codon de la séquence mutée recherchée pour éliminer les faux-positifs.
Cette méthode de diagnostic peut se décliner à façon en fonction des besoins médicaux. Dans le domaine médical, quelques exemples de maladies d'intérêt sont la maladie de Lyme, le covid-19, et toute autre maladie d'origine virale, bactérienne ou fongique. Dans le domaine vétérinaire, on peut citer à titre d'exemple non limitatif la peste porcine.
BREVE DESCRIPTION DES FIGURES
[Fig.l] Figure 1 : Représentation schématique des étapes de la méthode de détection d'un bio-agresseur dans un échantillon végétal.
[Fig.2] Figure 2 : Principe général de la révélation sur bandelette immunologique.
[Fig.3] Figure 3 : Illustration de l'utilisation d'ADN interférents (ADNi). (A) Sans ADNi, une bande non spéficifique est visible. (B) En présence d'ADNi, aucun faux-positif n'apparait.
EXEMPLES
EXEMPLE 1 : Exemple de mise en oeuvre de la méthode hors santé: application à la détection et caractérisation de souches du pathogène Zymo-septoria tritici avec révélation de deux marqueurs
La présente invention est illustrée à l'aide de l'exemple qui suit qui présente un mode de mise œuvre qui, bien que hors du champ de l'invention, décrit les principes de la méthode pour la détection et caractérisation de souches du pathogène Zymo-septoria tritici.
Une représentation synthétique des étapes de la méthode est présentée à la Figure 1.
L'amplification des séquences spécifiques du pathogène Zymo-Septoria tritici chez les céréales à pailles telles que le blé tendre, l'orge et le blé dur, est réalisée par la méthode de PCR. L'homme du métier connaît cette méthode. Les éléments spécifiques développés dans le cadre de la présente invention sont les amorces et les ADN interférents décrites ci-après.
Pour l'amplification du pathogène Zymo-Septoria tritici
- Amorce sens SEP_F1 : 5'- [5' Digoxigenin] GCCTTCCTACCCCACCATGT -3' (SEQ ID NO.l)
- Amorce anti-sens SEP_R1 : 5'- [5' 6-FAM] CCTGAATCGCGCATCGTTA -3' (SEQ ID NO.2)
Pour l'amplification d'une mutation induisant une résistance aux fongicides de type MDR:
Amorce sens MDR1 non spécifique pour la multi-résistance : 5'-
[5'BiotinTEG]TACGAGACGAGAAAAAGACAG -3' (SEQ ID NO.3)
Amorce anti-sens MDR2 spécifique de la multirésistance I : 5'- [5' 6-
FAM]GTCCTAATCGGGTAAAAGA -3' (SEQ ID NO.4)
Amorce anti-sens MDR3 spécifique de la multirésistance II : 5'- [5' 6-
FAM]CCCCTAAGGTCAAAGAA -3' (SEQ ID NO.5)
Amorce anti-sens MDR4 spécifique de la multirésistance III : 5'- [5' 6-FAM]
GGTAGGCTTGGCACTC -3' (SEQ ID NO.6)
Pour l'ajout des ADN interférents :
- iADN 1 5'- GGGTAGGA -3' (SEQ ID NO.7)
- iADN 2 5'- ACGATGCG -3' (SEQ ID NO.8)
La composition du mélange PCR est détaillé au Tableau 1.
Tableau 1 : Mélange PCR pour la détection de Zymo-Septoria tritici et d'une résistance MDR chez ce pathogène
La méthode est mise en œuvre en suivant le protocole suivant à partir d'un kit selon l'invention:
1 - Prélèvement d'un échantillon de feuille présentant un symptôme d'infection
2 - Extraction de l'ADN
3 - Réhydratation du culot lyophilisé du mélange PCR avec un tampon de réhydratation et ajout de l'extrait d'ADN de l'échantillon
4 - Amplification des séquences par PCR ; pour cette étape, une machine Jeulin® fonctionnant sur batterie (9 tubes ou 16 tubes selon le modèle) a été utilisée. Elle peut être utilisée à proximité du champ.
Le programme de la PCR utilisé est le suivant :
95°C 3 minutes
95°C 3 secondes ~1 _
60°C 20 secondes— J x 40 cycles
5 - Révélation du résultat sur bandelette de nitrocellulose sur laquelle sont fixés des anticorps/ligands capables de reconnaître les marqueurs antigéniques situés aux extrémités des amorces amplifiées par imprégnation de la bandelette avec le mélange obtenu.
Le principe de révélation du résultat sur bandelette est illustrée à la Figure 2.
Un exemple d'une révélation d'une bandelette avec et sans ADNi est présenté à la Figure 3 montrant que les ADNi permettent d'éviter l'apparition de bandes non spécifiques, qui constituent de faux-positifs.
EXEMPLE 2 : Exemple de mise en oeuvre de la méthode hors santé : Application à la détection et caractérisation de souches du pathogène Fusarium avec révélation de 4 marqueurs en utilisant 2 bandelettes
Cet exemple illustre l'application de la méthode à la détection simultanée de 4 marqueurs. Bien que cet exemple ne soit pas dans le champ de la présente invention, il présente les principes de la méthode dans un mode de réalisation particulier de révélation simultanée de 4 marqueurs.
En pratique, on introduit 1 bandelette dans le tube de réaction PCR pour révéler 2 marqueurs par bandelette ; il s'agit d'un format quadruplex. Il peut être utilisé pour répondre à la problématque suivante :
Sur le blé et le maïs les Fusarium sont très fréquents et provoquent des dégâts très importants sur le feuillage, les racines entraînant des verses importantes. De plus,
ces Fusarium ssp. produisent des mycotoxines dont certaines sont léthales pour l'homme et les animaux quand leurs teneurs dans les aliments dépassent certaines limites (effets cumulatifs dans les tissus comme le foie par exemple, les tissus nerveux, etc. ;)
Ces Fusarium produisent des mycotoxines de type Trichothécènes (desoxynivalenol = DON, Nivalénol, T2 et HT2, des Zéaralénone, Fumonisine, etc..). En présence de Fusarium dans un champ de blé, il est possible de caractériser les souches pour leurs résistances à certains fongicides et simultanément connaître le type de mycotoxines qu'elles peuvent produire. Avec 4 marqueurs à disposition, il est possible de: o utiliser 2 marqueurs pour les résistances aux fongicides (TSR et MDR ou équivalent) et 2 marqueurs pour les types de mycotoxines les plus toxiques comme le DON et Zéaralénone par exemple. o Si les 2 marqueurs de résistances aux fongicides indiquent que l'on peut efficacement éliminer ce fusarium, la récolte sera utilisable en alimentation même si les marqueurs mycotoxines sont positifs ; o Si les deux marqueurs de résistance aux fongicides indiquent que l'on ne peut pas efficacement éliminer ce fusarium la récolte sera utilisable en alimentation même si les marqueurs mycotoxines sont négatifs ; par contre, il faudra détruire la récolte si un des marqueurs mycotoxine est positif.
EXEMPLE 3 : Exemple d'une application en santé animale - Application au diagnostic de la peste porcine
La méthode selon l'invention peut être appliquée au diagnostic de la peste porcine qui est causée par différents virus chez les porcs et les sangliers.
Une première forme de peste est la peste porcine africaine qui affecte les porcs, mais aussi les sangliers, les phacochères, les potamochères et les tiques. L'agent est Asfivirus, un grand virus à ADN double-brin qui se réplique dans le cytoplasme des cellules infectées.
Une deuxième forme est la peste porcine européenne, dite la peste porcine classique, autre maladie virale contagieuse qui touche les suidés (dont le porc domestique et le sanglier qui en seraient les seuls « réservoirs sauvages connus»), sans être transmissible à l'homme. Son vecteur est un virus à ARN de la famille des Flaviviridés, du genre Pestivirus (même genre que le virus responsable de l'hépatite C).
L'intérêt de la technologie portable, kits Piéton Flashdiag® (type Point-of-care), pour la détection de ces différents virus à ADN et ARN, serait de pouvoir non seulement détecter les virus infectants, sur les animaux, en plein air ou d'élevage, mais aussi leurs variants,
principalement dus à des mutations de type une seule paire de base (SNP's), phénotypiquement différents, avec des caractéristiques d'agressivité et de capacités infectieuses différentes.
Les kits piéton utilisables sur site, peuvent aussi permettre de faire des tests de surface et d'air (ex : covid-19) pour détecter de tels virus dans l'environnement direct des porcs, en particulier, en conditions d'élevages confinées et/ou d'engraissement.
EXEMPLE 4 : Exemple d'une application en santé humaine - Application au diagnostic de la maladie de Lyme
La maladie de Lyme est une infection humaine dont le principal vecteur de transmission de l'agent infectieux est le tique, présent dans les hautes herbes, pâturages, pelouses récréatives, sous-bois et autres habitats naturels. Transmise par piqûre de tiques dures Ixodes, c'est une maladie bactérienne, due à une borrélie.
L'expression « borréliose de Lyme » désigne souvent la « maladie de Lyme européenne », due à une plus grande diversité de borrélies (principalement Borrelia garinii, B. afzelii... ou B. burgdorferi au sens large).
La maladie de Lyme est caractérisée par une grande diversité (génétique, épidémiologique, clinique et diagnostique) car multiviscérale (pouvant affecter divers organes) et multi systémique, pouvant toucher divers systèmes avec donc des manifestations cliniques polymorphes (cutanée, rhumatologique et neurologique). Elle est en expansion, devenue la plus fréquente des maladies vectorielles.
L'intérêt de la technologie portable, kits Piéton Flashdiag® (type point-of care), pour détecter ces différentes bactéries vectrices de la maladie de Lyme, serait de pouvoir non seulement détecter les bactéries infectantes, sur les tiques, en plein air, sur les chiens domestiques ou errants, mais aussi leurs variants, principalement dus à des mutations de type une seule paire de base (SNP), phénotypiquement différents, avec des caractéristiques d'agressivité et de capacités infectieuses différentes.
La détection et la caractérisation des bactéries variantes portées par les personnes infectées est essentielle pour pouvoir administrer les antibiotiques les plus adaptés pour éradiquer les bactéries en cause.
Ainsi les kits Piéton Flashdiag®, pourraient être utiles aux médecins généralistes, aux pharmaciens et en environnements hospitaliers pour un meilleur suivi de cette pathologie en expansion en France, en Europe et aux USA.
Ces tests pratiqués, en amont, sur les tiques vecteurs, et en aval, après infections des humains, peuvent rendent plus fiable le suivi des variants pour cette pathologie.
En conclusion, pour ces 2 exemples d'applications vétérinaire et médicale, les concepts et technologies appliquées aux ADN et ARN dans le domaine végétal (Exemples 1 et 2) sont, sans aucun doute, facilement transposables aux applications sur les mammifères.
L'utilisation combinée des ADN interférents et des enzymes dites de restriction qui réduit l'obtention de faux positifs dans l'approche globale de notre technologie est un gage certain d'une meilleure fiabilité, de sensibilité particulièrement recherché dans les domaines vétérinaire et médical.
Claims
1. Méthode de diagnostic de la présence d'un pathogène dans un échantillon biologique provenant d'un individu suspecté d'être infecté comprenant les étapes de : a. Mise à disposition dudit échantillon b. Extraction de l'ADN ou ARN dudit échantillon c. Amplification par PCR desdits séquences d'ADN ou ARN du pathogène pour déterminer la présence dudit pathogène grâce à un couple d'amorces spécifiques permettant d'amplifier une séquence caractéristique dudit pathogène d. Révélation sur bandelette immunologique de la présence dudit pathogène dans laquelle l'étape d'amplification se fait en présence d'ADN interférents d'une longueur inférieure à 15 nucléotides qui sont complémentaires des parties des amorces capables de former entre elles des polymères afin d'éviter la formation de bandes aspécifiques sur les bandelettes immunologiques responsables de faux-positifs.
2. Méthode selon la revendication 1 comprenant en outre l'ajout d'une enzyme de restriction entre l'étape b. d'extraction et l'étape c. d'amplification, cette enzyme étant capable de couper l'ADN dudit pathogène spécifiquement au niveau du codon sauvage correspondant au codon portant la mutation recherchée.
3. Méthode selon l'une des revendications 1 ou 2 permettant en outre de détecter la présence d'au moins un autre pathogène et / ou de déterminer au moins une caractéristique associée à au moins l'un des pathogènes choisie parmi une variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène, une résistance à un traitement, une multi- résistance.
4. Méthode selon l'une des revendications précédentes permettant d'obtenir simultanément plusieurs résultats associés à la détection et/ou la caractérisation d'un ou plusieurs pathogènes en utilisant une bandelette.
5. Méthode selon l'une des revendications précédentes dans laquelle le pathogène à détecter est un virus, une bactérie ou un champignon.
6. Kit de détection de la présence d'un pathogène adapté à une utilisation sur le terrain comprenant : o Un mélange réactionnel PCR lyophilisé comprenant : un couple d'amorces spécifiques permettant d'amplifier une séquence caractéristique dudit pathogène des ADN interférents d'une longueur inférieure à 15 nucléotides et qui sont complémentaires des parties des amorces capables de former entre elles des polymères une enzyme d'amplification polymérase une enzyme de restriction capable de couper l'ADN dudit pathogène spécifiquement au niveau du codon sauvage correspondant au codon portant la mutation recherchée o Au moins une bandelette de révélation immunologique permettant de révéler la présence dudit pathogène.
7. Kit selon la revendication 6 dans lequel ledit mélange PCR comprend en outre au moins un autre couple d'amorces permettant (i) soit de détecter la présence d'un autre pathogène, (ii) soit de déterminer au moins une caractéristique d'intérêt associée à un pathogène choisie parmi une variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène, une résistance à un traitement, une multi-résistance.
8. Kit selon la revendication 7 permettant de détecter la présence d'un pathogène et de déterminer une caractéristique associée à ce pathogène dans lequel :
Le mélange PCR comprend en outre un ou plusieurs couples d'amorces spécifiques permettant d'amplifier au moins une mutation associée à une caractéristique d'intérêt chez le pathogène
La bandelette comprend une bande contrôle et deux bandes distinctes formées par la fixation d'anticorps spécifiques d'un marqueur antigénique particulier à savoir respectivement : o un anticorps/ligand spécifique d'un marqueur antigénique situé à l'extrémité 5' d'une des amorces permettant l'amplification d'une séquence spécifique du pathogène, o un anticorps/ligand spécifique d'un marqueur antigénique situé à l'extrémité 5' d'une des amorces permettant l'amplification d'une séquence spécifique d'une caractéristique,
18 o un anticorps spécifique d'un marqueur antigénique commun aux extrémités 3' des différents produits d'amplification permettant de révéler les bandes.
9. Kit selon l'une des revendications 6 à 8, comprenant 1 bandelette immunologique pour révéler simultanément plusieurs résultats à partir d'une même amplification, lesdits résultats étant choisis parmi la détection de la présence d'au moins un pathogène et la détermination au moins une caractéristique associée à un pathogène choisie parmi une variation génétique associée à une modification du comportement du pathogène, une résistance à un traitement, une multi-résistance.
10. Méthode de diagnostic de la présence d'un pathogène dans un échantillon biologique d'un individu suspecté d'être infecté, et de détermination éventuelle de la présence d'un autre pathogène ou d'une caractéristique d'intérêt adaptée au diagnostic de terrain, mettant en œuvre un kit tel que défini à l'une des revendications 6 à 9, et comprenant les étapes suivantes :
A) Mise à disposition d'un échantillon biologique susceptible de contenir un pathogène,
B) Extraction de l'ADN à partir dudit échantillon
C) Introduction de l'ADN extrait dans un tube contenant ledit mélange PCR lyophilisé et au moins un enzyme de restriction
D) Réalisation d'une amplification par PCR
E) Introduction d'une ou deux bandelette(s) immunologique(s) pour imprégnation dans le tube contenant les amplicons pour révéler si le pathogène est présent et éventuellement s'il présente une caractéristique d'intérêt.
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|---|---|
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| WO (1) | WO2023094579A1 (fr) |
Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2006112818A2 (fr) | 2005-04-14 | 2006-10-26 | Applera Corporation | Oligonucleotides modifies et leurs applications |
| EP2814976B1 (fr) | 2012-02-15 | 2017-10-18 | General Electric Company | Procédés et nécessaires pour réduire l'amplification non spécifique d'acide nucléique |
| US10689716B1 (en) * | 2020-03-19 | 2020-06-23 | University Of Miami | Materials and methods for detecting coronavirus |
| KR102281854B1 (ko) * | 2015-12-29 | 2021-07-26 | 국민대학교산학협력단 | 중합효소연쇄반응 증폭 산물을 이용한 미생물 검출 방법, 및 미생물 검출 키트 |
| US20210340635A1 (en) * | 2020-03-19 | 2021-11-04 | University Of Miami | Materials and methods for detecting coronavirus |
| CN113604607A (zh) * | 2021-07-28 | 2021-11-05 | 江苏奈尔森生物技术有限公司 | 快速检测猫疱疹病毒的era核酸试纸条扩增试剂盒及制备方法和检测方法 |
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2021
- 2021-11-25 FR FR2112554A patent/FR3129407A1/fr active Pending
-
2022
- 2022-11-25 WO PCT/EP2022/083241 patent/WO2023094579A1/fr unknown
Patent Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2006112818A2 (fr) | 2005-04-14 | 2006-10-26 | Applera Corporation | Oligonucleotides modifies et leurs applications |
| EP2814976B1 (fr) | 2012-02-15 | 2017-10-18 | General Electric Company | Procédés et nécessaires pour réduire l'amplification non spécifique d'acide nucléique |
| KR102281854B1 (ko) * | 2015-12-29 | 2021-07-26 | 국민대학교산학협력단 | 중합효소연쇄반응 증폭 산물을 이용한 미생물 검출 방법, 및 미생물 검출 키트 |
| US10689716B1 (en) * | 2020-03-19 | 2020-06-23 | University Of Miami | Materials and methods for detecting coronavirus |
| US20210340635A1 (en) * | 2020-03-19 | 2021-11-04 | University Of Miami | Materials and methods for detecting coronavirus |
| CN113604607A (zh) * | 2021-07-28 | 2021-11-05 | 江苏奈尔森生物技术有限公司 | 快速检测猫疱疹病毒的era核酸试纸条扩增试剂盒及制备方法和检测方法 |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| BHUSHAN J. TOLEY ET AL: "Isothermal strand displacement amplification (iSDA): a rapid and sensitive method of nucleic acid amplification for point-of-care diagnosis", ANALYST, vol. 140, no. 22, 1 January 2015 (2015-01-01), UK, pages 7540 - 7549, XP055382231, ISSN: 0003-2654, DOI: 10.1039/C5AN01632K * |
| SHULU ZHANG ET AL: "Rapid diagnostic detection of plum pox virus in Prunus plants by isothermal AmplifyRP using reverse transcription-recombinase polymerase amplification", JOURNAL OF VIROLOGICAL METHODS, vol. 207, 1 October 2014 (2014-10-01), pages 114 - 120, XP055157752, ISSN: 0166-0934, DOI: 10.1016/j.jviromet.2014.06.026 * |
Also Published As
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