WO2022239485A1 - 急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のためのアンプリコンｄｎａライブラリー、キット及びそれらの使用 - Google Patents

急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のためのアンプリコンｄｎａライブラリー、キット及びそれらの使用 Download PDF

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真弘 小野澤
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国立大学法人北海道大学
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Definitions

  • the present invention provides an amplicon DNA library for an acute myeloid leukemia gene panel test, an amplicon DNA library preparation kit, a method for producing the amplicon DNA library, and gene mutations in hematopoietic cells of patients. Concerning the method of parsing.
  • Non-Patent Document 1 the European Leukemia Net guidelines
  • Non-Patent Document 2 the European Leukemia Net guidelines
  • the companion reagent (LeukoStrat CDx FLT3 Mutation Test) for the purpose of analyzing FLT3 mutations, which are targets of molecular targeted therapy, is covered by insurance.
  • the cost of the examination is high, and there is a limit that insurance calculations can be made only once per case. Due to this number of times, gene mutation analysis cannot be performed at different times, such as at the time of first onset or recurrence of AML.
  • an internal tandem duplication (ITD) which is one of the FLT3 mutations, may be mutation-negative at the onset of AML but become mutation-positive during the course of the disease, or may be mutation-positive at the onset of AML but disappear during the course of treatment.
  • ITD internal tandem duplication
  • limiting the number of examinations causes problems such as overlooking effective cases of molecular targeted therapy and causing wasteful administration of expensive FLT inhibitors.
  • the present invention provides an inexpensive and rapid means of testing genetic mutations that are considered clinically useful in AML.
  • the present inventors selected gene mutations with high clinical utility from among the numerous gene mutations reported in AML, and selected a genomic region of a predetermined length containing them as a target mutation region. set. Furthermore, we have selected a primer set for specifically amplifying the region, and found that useful gene mutations can be easily and inexpensively detected by targeted resequencing analysis using this primer set.
  • Section 1 An amplicon DNA library for acute myeloid leukemia gene panel testing by next-generation sequencing comprising amplicons 1-9 shown in Table 1, comprising: The amplicon is, in order from the 5' end side, the first adapter sequence for next-generation sequencing, the base sequence of the target mutation region shown in Table 1 in the patient's hematopoietic cell genomic DNA, and the next-generation sequencing. and a complementary strand thereof, wherein at least one of the adapter sequences contains an index sequence of 5 to 20 bases.
  • Section 2. The DNA library of item 1, comprising amplicons 1-19 shown in Table 1. Item 3.
  • the first adapter sequence consists of a sequence in which the base sequence of SEQ ID NO: 20, the index sequence 1, and the base sequence of SEQ ID NO: 21 are linked in order from the 5' end, and the second adapter sequence is the 5' end. Consisting of sequences in which the base sequence of SEQ ID NO: 22, the index sequence 2, and the base sequence of SEQ ID NO: 23 are linked in order from the side, the index sequence 1 consists of 0 or 8 bases, and the index sequence 2 consists of 8 bases. 3.
  • the DNA library according to item 1 or 2 which consists of the bases of Section 4. Item 4.
  • a method for analyzing genetic mutations in hematopoietic cells of a patient comprising analyzing the nucleotide sequence of amplicons contained in the DNA library according to any one of Items 1 to 3, using a next-generation sequencer.
  • Item 5 A kit for gene panel testing of acute myeloid leukemia by next-generation sequencing, comprising primer sets 1 to 9 shown in Table 2-1, forward to the 5' end of the forward primers that make up the primer set An overhang sequence may be further added with a reverse overhang sequence at the 5' end of the reverse primer, where the forward overhang sequence is for adding the first adapter sequence for next-generation sequencing. and the reverse overhang sequence is a sequence for adding a second adapter sequence for next generation sequencing.
  • Item 6 A kit for gene panel testing of acute myeloid leukemia by next-generation sequencing, comprising primer sets 1 to 9 shown in Table 2-1, forward to the 5' end of the forward primers that make up the primer set
  • An overhang sequence may be further added with a reverse overhang sequence
  • kit according to item 5 comprising primer sets 10 to 19 shown in Table 2-2, wherein the forward overhang sequence is on the 5' end of the forward primer constituting the primer set, and the 5' of the reverse primer A reverse overhang sequence may be further added to the end, where the forward overhang sequence is a sequence for adding the first adapter sequence for next-generation sequencing, and the reverse overhang sequence is the next
  • the above kit which is a sequence for adding a second adapter sequence for generational sequencing. Item 7.
  • a forward overhang sequence consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 21 is added to the 5' end of the forward primer constituting the primer set, and a reverse overhang sequence consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 62 is added to the 5' end of the reverse primer.
  • a method for producing an amplicon DNA library comprising performing a PCR reaction using a patient's hematopoietic cell genomic DNA as a template, using primer sets 1 to 9 shown in Table 2-1, wherein the primer set A forward overhang sequence may be added to the 5' end of the forward primer that constitutes the , and a reverse overhang sequence may be added to the 5' end of the reverse primer, where the forward overhang sequence is the next-generation sequencing of and the reverse overhang sequence is a sequence for adding a second adapter sequence for next generation sequencing.
  • the method according to Item 8 further comprising performing a PCR reaction using the patient's hematopoietic cell genomic DNA as a template, using the primer sets 10 to 19 shown in Table 2-2, wherein the primer set is constructed.
  • a forward overhang sequence may be added to the 5' end of the forward primer, and a reverse overhang sequence may be added to the 5' end of the reverse primer, where the forward overhang sequence is for next-generation sequencing.
  • the above method wherein the sequence is for adding a first adapter sequence and the reverse overhang sequence is a sequence for adding a second adapter sequence for next generation sequencing.
  • a forward overhang sequence consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 21 is added to the 5' end of the forward primer constituting the primer set, and a reverse overhang sequence consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 62 is added to the 5' end of the reverse primer.
  • gene mutations contained in the patient's hematopoietic cell-derived genomic DNA are examined in parallel, and information that contributes to the diagnosis of AML and treatment policy decisions is obtained by conventional comprehensive analysis using next-generation sequencing (NGS). It can be provided at a lower cost and more easily than conventional AML gene panels.
  • NGS next-generation sequencing
  • FIG. 1 shows target mutation regions contained in amplicon 1.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 2.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 3.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 4.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 5.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 6.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 7.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 8.
  • FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 9.
  • FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 10.
  • FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 11.
  • FIG. 2 shows the target mutation region contained in amplicon 12.
  • FIG. FIG. 1 shows target mutation regions contained in amplicon 1.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 2.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 3.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation
  • FIG. 2 shows the target mutation region contained in amplicon 13.
  • FIG. FIG. 2 shows the target mutation region contained in amplicon 14.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 15.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 16.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 17.
  • FIG. FIG. 2 shows target mutation regions contained in amplicon 18.
  • FIG. 2 shows the target mutation region contained in amplicon 19.
  • FIG. Graph showing the number of reads for each target mutation region contained in the amplicon DNA library corresponding to the AML compact panel.
  • the present invention comprises at least two types of amplicons selected from the group consisting of amplicons 1 to 19 shown in Table 1 (hereinafter each simply referred to as amplicons 1 to 19),
  • An amplicon DNA library (hereinafter simply referred to as library) for gene panel testing for AML is provided.
  • Amplicon NGS is a technology that enables simultaneous sequencing of multiple DNA fragments by performing multiple sequencing reactions in parallel. Platforms based on various principles have been developed. .
  • Illumina's next-generation sequencer (MiSeq, HiSeq, NextSeq, MiniSeq, etc.) is an NGS platform that employs the bridge PCR method and the Sequencing By Synthesis (SBS) method, forming one type of DNA cluster on the flow cell. , Sequence is performed one base at a time using four types of nucleotides (reversible terminators) each labeled with a different fluorescent dye.
  • SBS Sequencing By Synthesis
  • Sequence is performed one base at a time using four types of nucleotides (reversible terminators) each labeled with a different fluorescent dye.
  • Thermo Fisher Scientific's next-generation sequencer (Ion Torrent system, e.g.
  • Ion GeneStudio TM S5, Ion PGM TM , Ion Proton TM , etc. is an NGS platform that employs emulsion PCR and semiconductor detection. Sequencing is performed by clonal amplification of one type of DNA and detection of pH changes by a semiconductor chip due to hydrogen ions released when nucleotides are incorporated into DNA chains by DNA polymerase.
  • the library provided in one aspect of the present invention is used for gene panel testing of AML.
  • the gene panel test detects gene mutations present in the target mutation region shown in Table 1 in the patient's hematopoietic cell genomic DNA (hereinafter also referred to as the target mutation region in the patient's hematopoietic cell genome) using NGS. It is done by In order to enable nucleotide sequence analysis using NGS, the amplicon contains, in addition to the nucleotide sequence of the target mutation region in the patient's hematopoietic cell genome, a sequence for NGS on its 5'-end and 3'-end.
  • the amplicon contains or consists of, in order from the 5' end, the first adapter sequence, the base sequence of the target mutation region in the patient's hematopoietic cell genomic DNA, and the second adapter sequence. strand and its complementary strand.
  • the adapter sequence is a sequence added to the base sequence to be analyzed for analysis using NGS.
  • Adapter sequences can be appropriately set according to the NGS platform used, and include, for example, support binding sequences, sequence primer binding sequences and index sequences.
  • the support binding sequence is a base sequence that binds the DNA molecule to be analyzed to the support by hybridizing with the oligonucleotide immobilized on the support (flow cell, beads, etc.).
  • Examples of support binding sequences include the P5 and P7 sequences used in Illumina's NGS platform, the P1 adapter used in Thermo Fisher Scientific's NGS platform, and the like.
  • a sequence primer binding sequence is a sequence that hybridizes with the sequence primer used in the sequencing reaction.
  • Examples of sequencing primer binding sequences include the read 1 sequencing primer (R1SP) and read 2 sequencing primer (R2SP) used in Illumina's NGS platform, and the A adapter used in Thermo Fisher Scientific's NGS platform. be able to.
  • An index sequence (also called an index or barcode sequence) is an identification sequence unique to each sample, used in NGS to simultaneously analyze base sequences (multiplex analysis) of libraries derived from different samples in a single run.
  • an amplicon can contain an index sequence of 5-20 bases, preferably 6-16 bases in the adapter sequence.
  • the index sequence may be included in one of the first adapter sequence and the second adapter sequence (single index) or in both (dual index). Whether to adopt a single index or a dual index and the number of bases in the index sequence to be used may be selected according to the number of specimens to be analyzed in parallel.
  • the first adapter sequence comprises, in order from the 5' end, the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 20 (5'-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACAC-3', P5 sequence), index sequence 1, and the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 21 (5'-TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAG-3', R1SP), and the second adapter sequence consists of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 22 (5 '-CTGTCTCTTATACACATCTCCGAGCCCACGAGAC -3', complementary sequence of R2SP), index sequence 2, and the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 23 (5'- ATCTCGTATGCCGTCTTCTGCTTG -3', complementary sequence of P7 sequence) are linked together, where index Sequence 1 consists of 0 or 8 bases, and index sequence 2 consists of 8 bases.
  • the target mutation region used in the present invention is a human genomic DNA region containing a site (hot spot) where gene mutation occurs frequently.
  • the position, size and SEQ ID NO of the target mutation region are shown in Table 1 with reference to the coordinates of the human reference genome GRCh38/hg38.
  • the target mutation region can be amplified by PCR using each primer set shown in Tables 2-1 and 2-2.
  • a region having at its 5' end a nucleotide sequence of a forward primer constituting the primer set shown in Tables 2-1 and 2-2 for and a nucleotide sequence complementary to the nucleotide sequence of a reverse primer at its 3' end. can also be expressed as Nucleotide sequences of respective target mutation regions and primers flanking them are shown in FIGS. 1 to 19 with reference to the human reference genome sequence (GRCh38/hg38).
  • Gene mutations that occur frequently in the target mutation region have sufficient evidence in terms of AML diagnosis, treatment selection, and prognosis prediction, and are highly evaluated for clinical utility.
  • Japanese Society of Hematology/Guidelines for Genomic Testing of Hematopoietic Tumors 2020, URL http://www.jshem.or.jp/gui-hemali/1_1.html The clinical significance of representative examples of gene mutations contained in the target mutation region will be described below based on the information publicly known from literature such as the guidelines described above.
  • the FLT3 inhibitor referred to in the explanation of clinical significance is a molecularly targeted drug against FLT3, a receptor tyrosine kinase.
  • FLT3 with genetic mutation takes an inactive or active conformation depending on the type of mutation, but type 1 of FLT3 inhibitor has both inactive and active conformations of FLT3, and type 2 It acts only on the inactive conformation of FLT3.
  • Type 1 FLT3 inhibitors include first-generation midostaurin and lestaurtinib, second-generation gilteritinib and crenolanib, and the like.
  • Type 2 FLT3 inhibitors include first-generation sorafenib, second-generation quizartinib, and the like. When simply referred to as an FLT3 inhibitor in the following description, it refers to both type 1 and type 2 FLT3 inhibitors.
  • the target mutation region contained in amplicon 1 is the region containing exons 14 and 15 of the FLT3 gene (Fig. 1).
  • Exon 14 of the FLT3 gene contains a site where mutations called internal tandem duplication (ITD) accumulate, and it has been confirmed that an ITD mutation causes an insertion of about 6 to 100 bp at this site. It is
  • AML patients with ITD mutations detected at this site can be predicted to have a poor prognosis.
  • ITD mutations are mutations that cause FLT3 hyperfunction, AML patients with detected ITD mutations can be judged to be suitable for FLT3 inhibitors.
  • single-nucleotide mutations detected by NGS do not reflect mutations in the patient's genomic DNA and may be errors during PCR or sequencing. may not be appropriate as an evaluation index when detection of mutated DNA is required.
  • ITD mutations are mutations in which the sequence is duplicated at a specific site and cannot be caused by the errors described above. Therefore, AML patients with ITD mutations may have minimal residual disease. can be determined to be high.
  • the target mutation region contained in amplicon 2 includes exon 16 of the FLT3 gene (Fig. 2).
  • the FLT gene exon 16 has a site with N676K/D/I/S mutations. Since the N676K/D/I/S mutation is a gain-of-function mutation in FLT3, AML patients in whom this mutation is detected can be determined as candidates for FLT3 inhibitors. In addition, it can be determined that AML patients in whom this mutation is detected are highly likely to be midostaurin-resistant.
  • the target mutation region contained in amplicon 3 includes exon 17 of the FLT3 gene (Fig. 3).
  • the FLT gene exon 17 contains a site for the F691L mutation.
  • the F691L mutation is a mutation in the gatekeeper site within the ATP-binding pocket of FLT3 (gatekeeper mutation) and confers resistance to FLT3 inhibitors. Therefore, it can be determined that AML patients in whom the F691L mutation is detected are highly likely to be resistant to all FLT3 inhibitors.
  • the target mutation region contained in amplicon 4 includes exon 20 of the FLT3 gene (Fig. 4).
  • Exon 20 of the FLT gene has a site with D835Y/F/I/H/V/A mutation and Y842C/H/N mutation. Both the D835Y/F/I/H/V/A mutation and the Y842C/H/N mutation are gain-of-function mutations of FLT3.
  • AML patients in whom these mutations are detected can be determined to be fit for type 1 FLT3 inhibitors, while likely to be resistant to type 2 FLT3 inhibitors.
  • the target mutation region contained in amplicons 5-8 includes exon 1 of the CEBPA gene (Figs. 5-8).
  • AML patients in whom mutations (CEBPA double mutations) are detected in both the 5'-terminal and 3'-terminal sequences of CEBPA gene exon 1 can be predicted to have a favorable prognosis.
  • exon 1 of the CEBPA gene there is a genetic polymorphism called c.578_583del6 polymorphism, in which 6 bases are deleted (Fig. 7, gene polymorphism number rs1002805239).
  • the target mutation region contained in amplicon 9 includes exon 11 of the NPM1 gene (Fig. 9).
  • Exon 11 of the NPM1 gene has a site that causes a mutation in which 4 bases from 956th to 959th are duplicated. AML patients in whom this insertion mutation is detected can be predicted to have a favorable prognosis.
  • this insertion mutation is a mutation in which the sequence is duplicated at a specific site and cannot be caused by errors during PCR or sequencing. It can be determined that there is a high possibility of having a lesion.
  • the target mutation region contained in amplicon 10 includes exon 17 of the KIT gene (Fig. 10).
  • the KIT gene exon 17 has a site with D816V/H/Y mutation and N822K/H/I mutation.
  • Patients with core binding factor-AML (CBF-AML) in whom any of these mutations are detected can be predicted to have a poor prognosis.
  • CBF-AML core binding factor-AML
  • the target mutation region contained in amplicon 11 includes exon 13 of the ASXL1 gene (Fig. 11).
  • ASXL1 gene exon 13 has a site with Y591* mutation and R693* mutation. AML patients in whom this mutation is detected can be predicted to have a poor prognosis.
  • the target mutation region contained in amplicon 12 contains exons 3-4 of the TP53 gene
  • the target mutation region contained in amplicon 13 contains exon 5 of the TP53 gene
  • the target mutation region contained in amplicon 14 contains the TP53 gene. contains exons 6-7 of (Figs. 12-14). AML patients with mutations detected in any of the TP53 gene exons 3-7 can be predicted to have a poor prognosis.
  • the target mutation region contained in amplicon 15 includes exon 2 of the IDH1 gene (Fig. 15). Exon 2 of the IDH1 gene contains a site for the R132H mutation. AML patients in whom this mutation is detected can be judged to be suitable for IDH1 inhibitors such as ivosidenib.
  • the target mutation region contained in amplicon 16 includes exons 4-5 of the IDH2 gene (Fig. 16).
  • IDH2 gene exons 4-5 contain a site for the R140Q mutation.
  • AML patients in whom this mutation is detected can be determined to be suitable for IDH2 inhibitors such as enacidenib.
  • the targeted mutation region contained in amplicon 17 contains exon 3 of the RUNX1 gene
  • the targeted mutation region contained in amplicon 18 contains exon 4 of the RUNX1 gene
  • the targeted mutation region contained in amplicon 19 contains exon of the RUNX1 gene. 5 (Figs. 17-19).
  • AML patients with mutations detected in any of exons 3-5 of the RUNX1 gene can be predicted to have a poor prognosis.
  • Table 3 briefly summarizes the clinical significance of the genetic variants contained in each amplicon described above.
  • Table 4 shows the prognostic classification (shaded areas in the table) enabled by these gene mutations with reference to known guidelines (2017 ELN & 2019 NCCN Guideline). Note that the specific genetic mutations described above are representative, and each amplicon may contain other genetic mutations.
  • the nucleotide sequence of the target mutation region in the patient's hematopoietic cell genome contained in the amplicon can be different from the human genome reference sequence, depending on the gene mutation contained in the patient's hematopoietic cell genomic DNA. , and may vary from patient to patient. For example, since the ITD mutation of the FLT3 gene results in an insertion of about 6 to 100 bp, the amplicon prepared using the genomic DNA of patient hematopoietic cells with the ITD mutation as a template is more likely than the target mutation region in the human genome reference sequence. , has a nucleotide sequence of the target mutation region as long as 6 to 100 bp.
  • the target mutation region is set to 297 bp to 400 bp in the case of the human genome reference sequence, which is longer than the region examined by the existing AML gene panel, which allows more mutations than the existing AML gene panel information can be obtained.
  • the target mutation region is designed so that its length falls within a certain range, which enables analysis of each amplicon without changing the NGS platform or sequencing conditions.
  • the amplicon DNA library in the present invention is a collection of amplicons containing at least two amplicons out of amplicons 1-19.
  • the types of amplicons contained in the library can be appropriately selected according to the purpose of conducting the gene panel test.
  • the library preferably contains at least two amplicons of amplicons 1, 5-14 and 17-19, including amplicons 1 and 5-9. is more preferred. Also, if the goal is minimal residual disease detection, the library preferably contains amplicons 1 and 9. Furthermore, when the purpose is molecular target detection, the library preferably comprises at least two amplicons out of amplicons 1, 2, 4, 15 and 16, and comprises amplicons 1, 2 and 4. is more preferable. In addition, if the goal is to detect resistance to FLT3 inhibitors, the library preferably contains at least two amplicons of Amplicons 2-4, and preferably contains Amplicons 2-4. more preferred.
  • the library comprises amplicons 1-9. Also, in a further preferred embodiment of the invention, the library comprises, in addition to amplicons 1-9, 1, 2, 3, 4, 5, 6 of amplicons 10-19, Including 7, 8, 9 or 10 species. In a particularly preferred embodiment of the invention, the library comprises amplicons 1-19.
  • Amplicons 1-19 were prepared using the primer sets shown in Tables 2-1 and 2-2 corresponding to the individual amplicons using genomic DNA from patient hematopoietic cells. can be prepared by performing PCR using as a template and adding the first adapter sequence and the second adapter sequence to the resulting amplified product.
  • the primer sets shown in Tables 2-1 and 2-2 are primer sets for specifically amplifying the target mutation region contained in each amplicon.
  • Amplicons 1-19 can also be prepared by a 2-step tailed PCR method. Specifically, a forward overhang sequence is added to the 5'-end side of the forward primer and a reverse overhang sequence is added to the 5'-end side of the reverse primer, which constitute the primer set corresponding to each amplicon. 1st PCR is performed using a sequence-added primer set and genomic DNA derived from the patient's hematopoietic cells as a template. Next, amplicons 1 to 19 are prepared by performing 2nd PCR using the amplified product of the 1st PCR as a template using a 2nd PCR primer set that hybridizes with the full length of the overhang sequence or its 5'-terminal partial sequence. can do.
  • the forward overhang sequence and reverse overhang sequence are sequences for adding adapter sequences for next-generation sequencing.
  • the forward overhang sequence corresponds to the 3' terminal partial sequence of the first adapter sequence
  • the reverse overhang sequence corresponds to the complementary sequence of the 5' terminal partial sequence of the second adapter sequence.
  • the base sequence of the 2nd PCR primer is hybridized with the full length of the overhang sequence or its 5' terminal partial sequence, and is capable of amplifying amplicons 1 to 19, that is, from the 5' end side,
  • a double-stranded DNA composed of a DNA strand containing or consisting of a first adapter sequence, a base sequence of a target mutation region in the patient's hematopoietic cell genomic DNA, and a second adapter sequence, and a complementary strand thereof It can be designed appropriately so that it can be amplified.
  • the 1st PCR primer set having the following overhang sequence is used for the 1st PCR, and the following 2nd PCR A primer set is used for the 2nd PCR.
  • index sequence 1 consists of 0 or 8 bases
  • index sequence 2 consists of 8 bases.
  • index sequence 1 consists of 0 or 8 bases
  • index sequence 2 consists of 8 bases.
  • An example of the 2nd PCR primer set is the index primer set included in the Nextera XT
  • the first adapter sequence is added to the 5'-end side of the forward primer and the complementary sequence of the second adapter sequence is added to the 5'-end side of the reverse primer, which constitute the primer set corresponding to each amplicon.
  • Amplicons 1 to 19 can also be prepared by PCR using genomic DNA derived from the patient's hematopoietic lineage cells as a template using a sequence-added primer set.
  • the genomic DNA derived from the patient's hematopoietic cells which is the template for the PCR reaction, can be prepared by extracting and purifying a sample containing hematopoietic cells collected from the patient, such as blood or bone marrow, according to standard methods.
  • composition of the reaction solution and reaction conditions for PCR (1st PCR in the case of 2-step tailed PCR method) using genomic DNA derived from the patient's hematopoietic lineage as a template may differ for each primer set.
  • multiple types of primer sets can be the same, and in the latter case, so-called multiplex PCR, in which multiple types of primer sets are mixed and PCR reactions are performed in one reaction system, can also be performed. All primer sets 1 to 19 shown in Tables 2-1 and 2-2 are capable of PCR reaction under the same conditions.
  • the amplicon DNA library may be prepared by mixing at least two amplicons each prepared separately and using multiplex PCR to amplify at least two amplicons in parallel. may be prepared with In the case of the 2-step tailed PCR method, an amplicon DNA library can also be prepared by performing 1st PCR individually or in multiplex, mixing the obtained amplification products, and then performing 2nd PCR in multiplex. can.
  • the multiplex PCR reaction system to be used may be of one type or of multiple types. can be used.
  • multiplex PCR is performed using a primer mix in which primer sets 1 to 4 and 8 to 19 are mixed, and another multiplex PCR is performed using a primer mix in which primer sets 5 to 7 are mixed.
  • an amplicon DNA library can be prepared.
  • Each condition of the PCR reaction system such as the composition of the reaction solution (e.g., primer concentration, template DNA concentration, concentration of each nucleotide that becomes a substrate, buffer composition, etc.) and reaction conditions (e.g., the number of cycles of heat denaturation, annealing, extension, and temperature, etc.) can be appropriately set in consideration of various factors that are usually taken into account when carrying out the PCR reaction, such as the type of enzyme used and the Tm value of the primers.
  • the composition of the reaction solution e.g., primer concentration, template DNA concentration, concentration of each nucleotide that becomes a substrate, buffer composition, etc.
  • reaction conditions e.g., the number of cycles of heat denaturation, annealing, extension, and temperature, etc.
  • kits for gene panel testing of acute myeloid leukemia by next-generation sequencing comprising primer sets 1-9.
  • the kit may further comprise 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 or 10 of primer sets 10-19.
  • the primer sets 1 to 19 included in the kit each have a forward overhang sequence on the 5'-end side of the forward primer constituting the amplicon and the reverse primer, as already described in relation to the production of the amplicon DNA library.
  • a reverse overhang sequence may be further added to the 5' end of the forward overhang sequence, where the forward overhang sequence is a sequence for adding the first adapter sequence for next-generation sequencing, and the reverse overhang The sequence is for adding a second adapter sequence for next generation sequencing.
  • the forward overhang sequence consists of the base sequence of SEQ ID NO:21.
  • the reverse overhang sequence consists of the base sequence of SEQ ID NO:62.
  • the kit includes the above-mentioned 2nd PCR primer set, PCR reaction reagents (dNTPs, enzymes, buffers, pH adjusters, stabilizers, etc.), and reagents for extracting genomic DNA from cells. , solid phase supports, reaction vessels, instructions, and the like.
  • Nucleotide sequencing using NGS For sequencing of amplicon DNA libraries, an NGS platform with specifications capable of determining full-length amplicon sequences can be used. Specifically, if it is an NGS platform that can perform sequencing from both ends of one type of amplicon (paired-end sequencing), one platform with a maximum read length of 250 bp or more (Illumina MiSeq, NovaSeq, etc.) For NGS platforms where sequencing from one end of the amplicon (single-end sequencing) is performed, platforms with a maximum read length of 500 bp or more (Thermo Fisher Scientific Ion GeneStudio TM S5 chip type Ion 520 TM Chip, Ion 530 TM Chip, etc.) can be used.
  • a single-end sequencing NGS platform with a maximum read length of 250 bp or more (Thermo Fisher Scientific Ion GeneStudio TM S5 chip type Ion 510 TM Chip, etc.) can also be used.
  • the two types of amplicons include, in order from the 5' end side, the first adapter sequence, the base sequence of the target mutation region in the patient's hematopoietic cell genomic DNA, and the second adapter sequence, or A first amplicon composed of a DNA strand consisting of these and its complementary strand; A second amplicon composed of a DNA strand containing or consisting of a complementary base sequence and a second adapter sequence and its complementary strand.
  • a series of sequencing workflows including clone amplification on an amplicon support for sequencing, can be carried out with appropriate conditions set according to the NGS platform used.
  • Read data which is the primary data acquired by NGS, is divided by sample based on the index sequence if the amplicon has an index sequence, then the index sequence is removed and saved as a FASTQ file. be.
  • a series of analyzes including quality check, mapping, variant calling (mutation detection), and annotation are performed with reference to methods commonly used in gene mutation analysis using NGS to obtain genomic DNA derived from the patient's hematopoietic cells. Parallel examination of genetic mutations present in AML can provide information that contributes to AML diagnosis and treatment policy decisions.
  • the primer set is suitable for use with Illumina's MiSeq and Nextera XT Index kit, which are frequently used in NGS analysis of bacterial 16S rRNA.
  • genomic DNA was extracted using the QIAamp R DNA Mini Kit (250) (QIAGEN). Using 10 ng of genomic DNA per sample as a template, a primer mix obtained by mixing primer sets 1 to 4 and 8 to 19 shown in Table 5, and a primer mix obtained by mixing primer sets 5 to 7 targeting the GC rich region were prepared. Using each, multiplex PCR (1st PCR) was performed in 2 tubes per sample. For PCR reactions, Multiplex PCR Assay Kit Ver. 2 (Takara) was used according to the manufacturer's instructions. The reaction conditions were 34 cycles of heat denaturation at 98°C for 10 seconds, annealing at 60°C for 15 seconds, and extension reaction at 68°C for 30 seconds.
  • An index addition reaction (2nd PCR) was performed using the Nextera XT Index kit (Illumina) according to the instructions on the two libraries per sample obtained by purification.
  • DMSO was added to samples prepared using a primer mix targeting the GC-rich region during the 1st PCR.
  • amplicons of the desired size are collected from the reaction mixture, each library is purified, and sequenced using the Illumina MiSeq system and MiSeq Reagent kit v2 (paired-end sequencing with a read length of 250 bp), and the data are analyzed. did.
  • Figure 20 shows the number of reads in each library obtained as a result of the analysis for each target mutation region.
  • the average number of reads is 7000 or more in 16 regions other than GC rich regions, and more than 5000 reads can be secured for NPM1, FLT3 exon 14 and 15 regions, which are minimal residual disease markers, and sufficient for all target mutation regions. Depth of coverage was obtained.
  • genomic DNA was extracted from bone marrow fluid collected from 10 AML patients, and gene mutation analysis was performed using NGS in the same manner as above. Data analysis was performed by aligning the FASTQ files to the human genome reference sequence GRCh38 using the Burrows-Wheeler Aligner (Li H et al., Bioinformatics, 2009, 25: 1754, http://bio-bwa.sourceforge.net/).
  • Table 6 shows prognostic classification predicted based on gene mutation analysis and analysis results.
  • Table 6 the chromosome karyotype, the proportion of blasts in bone marrow nucleated cells (Blast in the table), gene mutations detected by NGS analysis and their allele frequencies (FLT3 to IDH2 in the table), Prognostic classification based on karyotype alone according to NCCN Guidelines version 3.2017 and prognostic classification based on gene mutations according to NCCN Guidelines version 3.2017 or NCCN Guidelines version 1.2022 are shown.
  • the two columns on the right side show the genetic evaluation items adopted in the NCCN Guidelines version 3.2017 and NCCN Guidelines version 1.2022 with checks.
  • CEBPA mutations were detected in amplicons 6 and 8, and mutations in other genes were detected at the sites shown in the figure.
  • the prognostic classification predicted by chromosomal karyotype alone differed from that predicted by genetic mutation analysis using NGS.
  • Prognostic classification based on genetic mutations has been reported to be a highly accurate prognostic prediction (e.g., Hidaka D et al. Clinical Lymphoma Myeloma and Leukemia 2018, 18(11), 2018, e469-e479). Therefore, it was shown that a gene panel test using an amplicon DNA library prepared using the primer sets shown in Table 5 can provide useful information in the diagnosis and treatment of AML.
  • SEQ ID NO: 1 base sequence of target mutation region (FLT3_exon14-15) on human reference genome
  • SEQ ID NO: 2 base sequence of target mutation region (FLT3_exon16) on human reference genome
  • Nucleotide sequence SEQ ID NO: 4 Nucleotide sequence on the human reference genome of the target mutation region (FLT3_exon20) SEQ ID NO: 5 Nucleotide sequence on the human reference genome of the target mutation region (CEBPA_exon1)
  • SEQ ID NO: 6 Human reference genome of the target mutation region (CEBPA_exon1)
  • Nucleotide sequence SEQ ID NO: 7 Nucleotide sequence on the human reference genome of the target mutation region (CEBPA_exon1)
  • SEQ ID NO: 8 Nucleotide sequence on the human reference genome of the target mutation region (CEBPA_exon1)
  • SEQ ID NO: 9 Human reference of the target mutation region

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Abstract

本発明は、急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のための、所定のアンプリコンを含むアンプリコンDNAライブラリー、所定のプライマーセットを含む組み合わせ、前記プライマーセットの組み合わせを含むアンプリコンDNAライブラリー調製用キット、前記プライマーセットの組み合わせを用いたアンプリコンDNAライブラリーを製造する方法、及び前記アンプリコンDNAライブラリーを用いた患者の造血系細胞における遺伝子変異を解析する方法を提供する。

Description

急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のためのアンプリコンＤＮＡライブラリー、キット及びそれらの使用
　本発明は、急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のためのアンプリコンDNAライブラリー、アンプリコンDNAライブラリー調製用キット、アンプリコンDNAライブラリーを製造する方法、及び患者の造血系細胞における遺伝子変異を解析する方法に関する。
　造血器腫瘍においては、治療標的のみならず、診断、予後予測にも遺伝子変異解析が必要である。欧米のガイドラインでは予後予測のために急性骨髄性白血病（AML）診断時に複数の遺伝子変異の有無を確認することが推奨されているが（例えば欧州についてはEuropean Leukemia Netガイドライン（非特許文献１）、米国についてはNational Comprehensive Cancer Networkガイドライン（非特許文献２）を参照されたい）、現在の日本では、造血器腫瘍に対して多くの遺伝子変異を調べることができるパネル検査に保険は適用されない。
　固形がんについては標準治療のない症例で治療標的薬を見つけるための網羅的遺伝子変異解析が保険適用となっているが、造血器腫瘍では固形がんと異なる遺伝子や融合遺伝子を標的とする必要がある。造血器腫瘍の網羅的遺伝子変異解析を可能にする大規模シークエンスパネルの開発も進められているが、使用するシークエンスパネルが高額である、1遺伝子領域あたりのシークエンス深度が浅くなるため微小残存病変の評価には適さない等の問題が指摘されている。
　AMLに関しては、分子標的療法の標的となるFLT3変異の解析を目的としたコンパニオン試薬（リューコストラットCDx FLT3変異検査）が、保険適用となっている。しかし、検査に要する費用は高額であり、1症例につき保険算定は一回のみいう制限がある。この回数制限のため、AMLの初発時や再発時などその時々に遺伝子変異解析を行うことができない。例えばFLT3変異の一つである内部縦列重複変異（internal tandem duplication、ITD）は、AML発症時には変異陰性でも経過中に変異陽性に転じたり、AML発症時には変異陽性でも治療経過中に消失したりすることがあるが、検査回数の制限は、分子標的治療の有効な症例を見逃したり、高額なFLT阻害剤の無駄な投与を招く等の問題を生じさせる。
Dohner H, et al: Diagnosis and management of AML in adults: 2017 ELN recommendations from an international expert panel. Blood 129:424-447, 2017. O'Donnell MR, et al: Acute Myeloid Leukemia, Version 3.2017, NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology. J Natl Compr Canc Netw 15:926-957, 2017.
　本発明は、AMLにおいて臨床上有用とされる遺伝子変異を安価かつ迅速に検査する手段を提供する。
　本発明者らは、AMLにおいて報告されている多数の遺伝子変異の中から高い臨床上有用性を持つ遺伝子変異を選抜し、それらを含む所定の範囲内の長さのゲノム領域を標的変異領域として設定した。さらに当該領域を特異的に増幅するためのプライマーセットを選抜し、これを用いたターゲットリシーケンス解析によって有用な遺伝子変異を簡便かつ安価に検出することができる事を見出した。
　本開示は、以下を提供する。
項１．　表１に示されるアンプリコン1～9を含む、次世代シークエンシングによる急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のためのアンプリコンDNAライブラリーであって、
アンプリコンが、5'末端側から順に、次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列と、患者の造血系細胞ゲノムDNA中の表１に示される標的変異領域の塩基配列と、次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列とを含むDNA鎖、及びその相補鎖から構成され、前記アダプター配列の少なくとも一方に5～20塩基のインデックス配列を含む、前記DNAライブラリー。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
 項２．　表１に示されるアンプリコン1～19を含む、項１に記載のDNAライブラリー。
項３．　第一のアダプター配列が、5'末端側から順に、配列番号２０の塩基配列、インデックス配列1、及び配列番号２１の塩基配列が連結された配列からなり、第二のアダプター配列が、5'末端側から順に、配列番号２２の塩基配列、インデックス配列2、及び配列番号２３の塩基配列が連結された配列からなり、インデックス配列1が0個又は8個の塩基からなり、インデックス配列2が8個の塩基からなる、項１又は２に記載のDNAライブラリー。
項４．　項１～３のいずれか一項に記載のDNAライブラリーに含まれるアンプリコンの塩基配列を次世代シーケンサーにより解析することを含む、患者の造血系細胞における遺伝子変異を解析する方法。
項５．　表２－１に示されるプライマーセット1～9を含む、次世代シークエンシングによる急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のためのキットであって、プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列がさらに付加されていてもよく、ここでフォワードオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列を付加するための配列であり、リバースオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列を付加するための配列である、前記キット。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
 項６．　さらに表２－２に示されるプライマーセット10～19を含む、項５に記載のキットであって、プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列がさらに付加されていてもよく、ここでフォワードオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列を付加するための配列であり、リバースオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列を付加するための配列である、前記キット。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
 項７．　プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側に配列番号２１の塩基配列からなるフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側に配列番号６２の塩基配列からなるリバースオーバーハング配列がさらに付加されている、項５又は６に記載のキット。
項８．　表２－１に示されるプライマーセット1～9を用いて、患者の造血系細胞ゲノムDNAを鋳型としたPCR反応を行うことを含む、アンプリコンDNAライブラリーを製造する方法であって、プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列がさらに付加されていてもよく、ここでフォワードオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列を付加するための配列であり、リバースオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列を付加するための配列である、前記方法。
項９．　表２－２に示されるプライマーセット10～19を用いて、患者の造血系細胞ゲノムDNAを鋳型としたPCR反応を行うことをさらに含む、項８に記載の方法であって、プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列がさらに付加されていてもよく、ここでフォワードオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列を付加するための配列であり、リバースオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列を付加するための配列である、前記方法。
項１０．　プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側に配列番号２１の塩基配列からなるフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側に配列番号６２の塩基配列からなるリバースオーバーハング配列がさらに付加されている、項８又は９に記載の方法。
　本発明によると、患者の造血系細胞由来ゲノムDNAに含まれる遺伝子変異を並列的に検査し、AMLの診断や治療方針決定に資する情報を、次世代シークエンス(NGS)を利用した従来の網羅的なAML遺伝子パネルと比較して安価かつ簡便に提供することができる。
アンプリコン1に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン2に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン3に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン4に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン5に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン6に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン7に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン8に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン9に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン10に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン11に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン12に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン13に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン14に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン15に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン16に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン17に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン18に含まれる標的変異領域を示す図である。 アンプリコン19に含まれる標的変異領域を示す図である。 AMLコンパクトパネルに相当するアンプリコンDNAライブラリーに含まれる各標的変異領域のリード数を示すグラフである。
　本発明は、一態様において、表１に示されるアンプリコン1～19（以下、各々、単にアンプリコン1～19と呼ぶ）よりなる群から選択される少なくとも2種類のアンプリコンを含む、NGSによるAMLの遺伝子パネル検査のためのアンプリコンDNAライブラリー（以下、単にライブラリーとも呼ぶ）を提供する。
アンプリコン
　NGSは、多数のシークエンシング反応を並行して同時に実行することで、多数のDNA断片の塩基配列を同時に決定することができる技術であり、様々な原理に基づいたプラットフォームが開発されている。例えば、Illumina社の次世代シークエンサー（MiSeq、HiSeq、NextSeq、MiniSeq等）は、ブリッジPCR法及びSequencing By Synthesis (SBS) 法を採用したNGSプラットフォームであり、フローセル上で1種類のDNAクラスターを形成させ、それぞれ異なる蛍光色素で標識された4種のヌクレオチド（可逆的ターミネーター）を用いて一塩基ずつシークエンスが行われる。また、Thermo Fisher Scientific社の次世代シークエンサー（Ion Torrentシステム、例えばIon GeneStudioTM S5、Ion PGMTM、Ion ProtonTM等）は、エマルジョンPCR法及び半導体による検出を採用したNGSプラットフォームであり、ビーズ上で1種類のDNAをクローン増幅し、DNAポリメラーゼによってヌクレオチドがDNA鎖に取り込まれる際に放出される水素イオンによるpH変化を半導体チップで検出することでシークエンスが行われる。
　本発明の一態様において提供されるライブラリーは、AMLの遺伝子パネル検査のために用いられる。遺伝子パネル検査は、患者の造血系細胞ゲノムDNA中の表１に示される標的変異領域（以下、患者造血系細胞ゲノム中の標的変異領域とも呼ぶ）に存在する遺伝子変異を、NGSを用いて検出することで行われる。NGSを用いた塩基配列解析を可能にするため、アンプリコンは、患者造血系細胞ゲノム中の標的変異領域の塩基配列に加えて、その5'末端側及び3'末端側にNGSのための第一のアダプター配列及び第二のアダプター配列（以下、それぞれ単に第一のアダプター配列及び第二のアダプター配列とも呼ぶ）を含む。すなわち、アンプリコンは、5'末端側から順に、第一のアダプター配列と、患者の造血系細胞ゲノムDNA中の標的変異領域の塩基配列と、第二のアダプター配列とを含む又はこれらからなるDNA鎖、及びその相補鎖から構成される。
アダプター配列
　アダプター配列は、NGSを用いた解析のために解析対象の塩基配列に付加される配列である。アダプター配列は、使用されるNGSプラットフォームに応じて適宜設定することができ、例えば支持体結合配列、シークエンスプライマー結合配列及びインデックス配列を含む。
　支持体結合配列は、支持体（フローセル、ビーズ等）上に固定されたオリゴヌクレオチドとハイブリダイズすることで、解析対象DNA分子を支持体に結合させる塩基配列である。支持体結合配列の例としては、Illumina社のNGSプラットフォームで使用されるP5配列及びP7配列、Thermo Fisher Scientific社のNGSプラットフォームで使用されるP1アダプター等を挙げることができる。
　シークエンスプライマー結合配列は、シークエンス反応において使用されるシークエンスプライマーとハイブリダイズする配列である。シークエンスプライマー結合配列の例としては、Illumina社のNGSプラットフォームで使用されるリード1シークエンスプライマー（R1SP）及びリード2シークエンスプライマー（R2SP）、Thermo Fisher Scientific社のNGSプラットフォームで使用されるAアダプター等を挙げることができる。
　インデックス配列（インデックス、バーコード配列とも呼ばれる）は、NGSにおいて異なる複数の検体由来のライブラリーを一度のランで同時に塩基配列解析（マルチプレックス解析）するために用いられる、各検体に固有の識別配列である。本発明において、アンプリコンは、アダプター配列中に5～20塩基、好ましくは6～16塩基のインデックス配列を含むことができる。インデックス配列は、第一のアダプター配列及び第二のアダプター配列の一方に含まれても（シングルインデックス）、両方に含まれてもよい（デュアルインデックス）。シングルインデックス、デュアルインデックスのいずれを採用するか、また使用するインデックス配列の塩基数は、同時並行で解析する検体の数に応じて選択すればよい。
　Illumina社のNGSプラットフォームを使用する場合の好ましい実施形態において、第一のアダプター配列は、5'末端側から順に、配列番号２０の塩基配列（5'-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACAC-3'、P5配列）、インデックス配列1、及び配列番号２１の塩基配列（5'-TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAG-3'、R1SP）が連結された配列からなり、第二のアダプター配列は、5'末端側から順に、配列番号２２の塩基配列（5'-CTGTCTCTTATACACATCTCCGAGCCCACGAGAC -3'、R2SPの相補配列）、インデックス配列2、及び配列番号２３の塩基配列（5'- ATCTCGTATGCCGTCTTCTGCTTG -3'、P7配列の相補配列）が連結された配列からなり、ここでインデックス配列1は0個又は8個の塩基からなり、インデックス配列2は8個の塩基からなる。
標的変異領域
　本発明において利用される標的変異領域は、遺伝子変異が高頻度で起こる部位（ホットスポット）を含むヒトゲノムDNA領域である。標的変異領域の位置、サイズ及び塩基配列の配列番号は、ヒトリファレンスゲノムGRCh38/hg38の座標を参照して表１に示される。
　標的変異領域は、表２－１及び表２－２に示される各プライマーセットを用いたPCRによって増幅することができる、したがって、標的変異領域は、ヒトゲノムDNA中の、当該標的変異領域の増幅のための表２－１及び表２－２に示されるプライマーセットを構成するフォワードプライマーの塩基配列をその5'末端に、リバースプライマーの塩基配列に相補的な塩基配列をその3'末端に有する領域と表すこともできる。各々の標的変異領域とその両端に存在するプライマーの塩基配列を、図１～１９にヒトリファレンスゲノム配列（GRCh38/hg38）を参照して示す。
　標的変異領域において高頻度で発生する遺伝子変異は、AMLの診断、治療法選択及び予後予測の各観点で十分なエビデンスを有しており、臨床的有用性が高いと評価されている変異である（日本血液学会・造血器腫瘍ゲノム検査ガイドライン2020年度版、URL http://www.jshem.or.jp/gui-hemali/1_1.html）。以下、標的変異領域に含まれる遺伝子変異の代表例について、上記のガイドライン等の文献から公知の情報に基づいて臨床的意義を説明する。
　なお、臨床的意義の説明において言及されるFLT3阻害剤とは、受容体型チロシンキナーゼであるFLT3に対する分子標的薬である。遺伝子変異を生じたFLT3はその変異の種類に応じて不活性型又は活性型の立体構造をとるが、FLT3阻害剤のタイプ1は不活性型構造及び活性型構造両方のFLT3に、タイプ2は不活性型構造のFLT3のみに作用する。タイプ1のFLT3阻害剤としては、第1世代のミドスタウリン及びレスタウルチニブ、第2世代のギルテリチニブ及びクレノラニブ等を挙げることができる。タイプ2のFLT3阻害剤としては、第1世代のソラフェニブ、第2世代のキザルチニブ等を挙げることができる。以下の説明において単にFLT3阻害剤と呼ぶ場合は、タイプ1、タイプ2両方のFLT3阻害剤を指す。
　アンプリコン1に含まれる標的変異領域は、FLT3遺伝子のエクソン14及び15を含む領域である（図１）。FLT3遺伝子のエクソン14には縦列重複配列挿入（ITD: internal tandem duplication）と呼ばれる変異が集積する部位が存在し、ITD変異が起こるとこの部位に6～100bp程度の塩基の挿入が生じることが確認されている。
　この部位においてITD変異が検出されたAML患者は、予後不良であると予測することができる。またITD変異はFLT3の機能亢進をきたす変異であることから、ITD変異が検出されたAML患者は、FLT3阻害剤への適応があると判定することができる。
　また、NGSによって検出された1塩基変異は、患者のゲノムDNA上の変異を反映したものではなくPCRやシークエンスの際のエラーである可能性もあるため、特に微小残存病変の評価のように微量の変異DNAの検出が求められる場合に評価指標として適切でないこともある。ITD変異は特定の部位に配列が重複挿入される変異であり、上記のようなエラーでは生じ得ない変異であることから、ITD変異が検出されたAML患者は、微小残存病変を有する可能性が高いと判定することができる。
　アンプリコン2に含まれる標的変異領域は、FLT3遺伝子のエクソン16を含む（図２）。FLT遺伝子エクソン16にはN676K/D/I/S変異を生じる部位が存在する。N676K/D/I/S変異はFLT3の機能獲得変異であることから、この変異が検出されたAML患者は、FLT3阻害剤への適応があると判定することができる。また、この変異が検出されたAML患者は、ミドスタウリン耐性である可能性が高いと判定することができる。
　アンプリコン3に含まれる標的変異領域は、FLT3遺伝子のエクソン17を含む（図３）。FLT遺伝子エクソン17にはF691L変異を生じる部位が存在する。F691L変異は、FLT3のATP結合ポケット内のゲートキーパー部位における変異（ゲートキーパー変異）であり、FLT3阻害剤に対する耐性を付与する。したがって、F691L変異が検出されたAML患者は、全てのFLT3阻害剤に対して耐性である可能性が高いと判定することができる。
　アンプリコン4に含まれる標的変異領域は、FLT3遺伝子のエクソン20を含む（図４）。FLT遺伝子エクソン20にはD835Y/F/I/H/V/A変異及びY842C/H/N変異を生じる部位が存在する。D835Y/F/I/H/V/A変異及びY842C/H/N変異はいずれもFLT3の機能獲得変異である。これらの変異が検出されたAML患者は、タイプ1のFLT3阻害剤への適応があり、一方、タイプ2のFLT3阻害剤に耐性である可能性が高いと判定することができる。
　アンプリコン5～8に含まれる標的変異領域は、CEBPA遺伝子のエクソン1を含む（図５～８）。CEBPA遺伝子エクソン1の5'末端側配列及び3'末端側配列の両方に変異（CEBPA二重変異）が検出されたAML患者は、予後良好であると予測することができる。また、CEBPA遺伝子エクソン1にはc.578_583del6多型と呼ばれる6塩基が欠失する遺伝子多型が存在する（図７、遺伝子多型番号 rs1002805239）。
　アンプリコン9に含まれる標的変異領域は、NPM1遺伝子のエクソン11を含む（図９）。NPM1遺伝子エクソン11には956～959番目の4塩基が重複挿入される変異を生じる部位が存在する。この挿入変異が検出されたAML患者は、予後良好であると予測することができる。また、この挿入変異は特定の部位に配列が重複挿入される変異であり、PCRやシークエンスの際のエラーでは生じ得ない変異であることから、この挿入変異が検出されたAML患者は、微小残存病変を有する可能性が高いと判定することができる。
　アンプリコン10に含まれる標的変異領域は、KIT遺伝子のエクソン17を含む（図１０）。KIT遺伝子エクソン17にはD816V/H/Y変異及びN822K/H/I変異を生じる部位が存在する。これらの変異のいずれかが検出されたCore binding factor-AML（CBF-AML）患者は、予後不良であると予測することができる。
　アンプリコン11に含まれる標的変異領域は、ASXL1遺伝子のエクソン13を含む（図１１）。ASXL1遺伝子エクソン13にはY591*変異及びR693*変異を生じる部位が存在する。この変異が検出されたAML患者は、予後不良であると予測することができる。
　アンプリコン12に含まれる標的変異領域はTP53遺伝子のエクソン3-4を含み、アンプリコン13に含まれる標的変異領域はTP53遺伝子のエクソン5を含み、アンプリコン14に含まれる標的変異領域はTP53遺伝子のエクソン6-7を含む（図１２～１４）。TP53遺伝子エクソン3～7のいずれかに変異が検出されたAML患者は、予後不良であると予測することができる。
　アンプリコン15に含まれる標的変異領域は、IDH1遺伝子のエクソン2を含む（図１５）。IDH1遺伝子エクソン2にはR132H変異を生じる部位が存在する。この変異が検出されたAML患者は、IDH1阻害剤、例えばイボシデニブ等への適応があると判定することができる。
　アンプリコン16に含まれる標的変異領域は、IDH2遺伝子のエクソン4-5を含む（図１６）。IDH2遺伝子エクソン4-5にはR140Q変異を生じる部位が存在する。この変異が検出されたAML患者は、IDH2阻害剤、例えばエナシデニブ等への適応があると判定することができる。
　アンプリコン17に含まれる標的変異領域はRUNX1遺伝子のエクソン3を含み、アンプリコン18に含まれる標的変異領域はRUNX1遺伝子のエクソン4を含み、アンプリコン19に含まれる標的変異領域はRUNX1遺伝子のエクソン5を含む（図１７～１９）。RUNX1遺伝子のエクソン3～5のいずれかに変異が検出されたAML患者は、予後不良であると予測することができる。
　上で説明した各アンプリコンに含まれる遺伝子変異の臨床的意義を表３に簡潔にまとめる。また、表４に、これらの遺伝子変異によって可能になる予後分類（表中の網掛けの箇所）を、公知のガイドライン（2017 ELN & 2019 NCCN Guideline）を参照して示す。なお、上で説明した具体的な遺伝子変異は代表的なものであり、各アンプリコンには他の遺伝子変異が含まれ得る。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　本発明において、アンプリコンに含まれる患者造血系細胞ゲノム中の標的変異領域の塩基配列は、患者の造血系細胞ゲノムDNAに含まれる遺伝子変異に応じて、ヒトゲノムリファレンス配列と異なるものであり得て、また患者ごとに異なるものであり得る。例えば、FLT3遺伝子のITD変異では6～100bp程度の塩基の挿入が生じるため、ITD変異を有する患者造血系細胞ゲノムDNAを鋳型として調製されるアンプリコンは、ヒトゲノムリファレンス配列中の標的変異領域よりも、6～100bp程度の長い標的変異領域の塩基配列を有する。
　本発明において、標的変異領域は、ヒトゲノムリファレンス配列の場合で297bp～400bpと、既存のAML遺伝子パネルで検査される領域よりも長く設定されており、これにより既存のAML遺伝子パネルよりも多くの変異情報を得ることができる。また、標的変異領域は、その長さが一定の範囲内に収まるように設定されており、これによってNGSプラットフォームやシークエンス条件を変えることなく、各アンプリコンの解析が可能である。
アンプリコンDNAライブラリー
　本発明におけるアンプリコンDNAライブラリーは、アンプリコン1～19のうちの少なくとも2種のアンプリコンを含むアンプリコンの集合体である。ライブラリーに含まれるアンプリコンの種類は、遺伝子パネル検査を実施する目的に応じて適宜選択することができる。
　例えば、目的が予後予測である場合、ライブラリーは、アンプリコン1、5～14及び17～19のうちの少なくとも2種のアンプリコンを含むことが好ましく、アンプリコン1及び5～9を含むことがより好ましい。また、目的が微小残存病変検出である場合、ライブラリーは、アンプリコン1及び9を含むことが好ましい。さらに、目的が分子標的検出である場合、ライブラリーは、アンプリコン1、2、4、15及び16のうちの少なくとも2種のアンプリコンを含むことが好ましく、アンプリコン1、2及び4を含むことがより好ましい。加えて、目的がFLT3阻害剤への耐性の検出である場合、ライブラリーは、アンプリコン2～4のうちの少なくとも2種のアンプリコンを含むことが好ましく、アンプリコン2～4を含むことがより好ましい。
　本発明の好ましい実施形態において、ライブラリーは、アンプリコン1～9を含む。また、本発明のさらに好ましい実施形態において、ライブラリーは、アンプリコン1～9に加えて、アンプリコン10～19のうちの1種、2種、3種、4種、5種、6種、7種、8種、9種又は10種を含む。本発明の特に好ましい実施形態において、ライブラリーは、アンプリコン1～19を含む。上記のような構成のライブラリーを使用することによって、複数の目的に適合した遺伝子パネル検査を実施することができる。
アンプリコン及びアンプリコンDNAライブラリーの製造
　アンプリコン1～19は、個々のアンプリコンに対応する表２－１及び表２－２に示されるプライマーセットを用いて患者の造血系細胞由来のゲノムDNAを鋳型としたPCRを行い、得られた増幅産物に対して第一のアダプター配列及び第二のアダプター配列を付加することによって調製することができる。表２－１及び表２－２に示されるプライマーセットは、各アンプリコンに含まれる標的変異領域を特異的に増幅するためのプライマーセットである。
　また、アンプリコン1～19は、2-step tailed PCR法によって調製することもできる。具体的には、各アンプリコンに対応するプライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列を、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列を付加し、これらのオーバーハング配列を付加したプライマーセットを用いて患者の造血系細胞由来のゲノムDNAを鋳型とした1st PCRを行う。次いで、オーバーハング配列の全長又はその5'末端側部分配列とハイブリダイズする2nd PCR用プライマーセットを用いて1st PCRの増幅産物を鋳型とした2nd PCRを行うことによって、アンプリコン1～19を調製することができる。
　フォワードオーバーハング配列及びリバースオーバーハング配列は、次世代シークエンシングのためのアダプター配列を付加するための配列である。フォワードオーバーハング配列は、第一のアダプター配列の3'末端側部分配列に相当し、リバースオーバーハング配列は、第二のアダプター配列の5'末端側部分配列の相補配列に相当する。
　2nd PCR用プライマーの塩基配列は、オーバーハング配列の全長又はその5'末端側部分配列とハイブリダイズし、かつアンプリコン1～19を増幅することができるように、すなわち5'末端側から順に、第一のアダプター配列と、患者造血系細胞ゲノムDNA中の標的変異領域の塩基配列と、第二のアダプター配列とを含む又はこれらからなるDNA鎖及びその相補鎖から構成される二本鎖DNAを増幅することができるように、適宜設計することができる。
　2-step tailed PCR法によってIllumina社のNGSプラットフォームで解析されるアンプリコンを調製する実施形態において、好ましくは、以下のオーバーハング配列を有する1st PCR用プライマーセットが1st PCRに、以下の2nd PCR用プライマーセットが2nd PCRに用いられる。
1st PCR用プライマーセット　フォワードプライマーのオーバーハング配列：
5'-TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAG-3'（配列番号２１）
1st PCR用プライマーセット　リバースプライマーのオーバーハング配列：
5'-GTCTCGTGGGCTCGGAGATGTGTATAAGAGACAG-3'（配列番号６２）
2nd PCR用プライマーセット　フォワードプライマー：
5'-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACAC（配列番号２０）-インデックス配列1-TCGTCGGCAGCGTC（配列番号６３）-3'
2nd PCR用プライマーセット　リバースプライマー：
5'- CAAGCAGAAGACGGCATACGAGAT（配列番号６４）-インデックス配列2- GTCTCGTGGGCTCGG（配列番号６５）-3'
ここで好ましくは、インデックス配列1は0個又は8個の塩基からなり、インデックス配列2は8個の塩基からなる。2nd PCR用プライマーセットの例は、Nextera XT Index kit（Illumina社）に含まれるインデックスプライマーのセットである。
　あるいは、各アンプリコンに対応するプライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側に第一のアダプター配列を、リバースプライマーの5'末端側に第二のアダプター配列の相補配列を付加し、これらの配列を付加したプライマーセットを用いて患者の造血系細胞由来のゲノムDNAを鋳型としたPCRを行うことによって、アンプリコン1～19を調製することもできる。
　PCR反応の鋳型となる患者の造血系細胞由来のゲノムDNAは、患者から採取された造血系細胞を含む試料、例えば血液又は骨髄から、常法に従って抽出・精製することで調製することができる。
　患者の造血系細胞由来のゲノムDNAを鋳型としたPCR（2-step tailed PCR法の場合は1st PCR）の反応液組成及び反応条件等の反応系は、プライマーセット毎に異なるものであってもよいが、複数種のプライマーセットで同一とすることができ、後者の場合、複数種のプライマーセットを混合して１つの反応系でPCR反応を行う、いわゆるマルチプレックスPCRを行うこともできる。表２－１及び表２－２に示されるプライマーセット1～19は、全て同一条件でのPCR反応が可能である。
　アンプリコンDNAライブラリーは、各々個別に調製された少なくとも2種のアンプリコンを混合することで調製してもよく、マルチプレックスPCRを利用して少なくとも2種のアンプリコンを同時並行で増幅することで調製してもよい。2-step tailed PCR法の場合、1st PCRを各々個別に又はマルチプレックスで行い、得られた増幅産物を混合した後、2nd PCRをマルチプレックスで行うことでアンプリコンDNAライブラリーを調製することもできる。なお、使用するマルチプレックスPCRの反応系は、1種類であっても複数種であってもよく、例えばライブラリーに含まれる各アンプリコン数をより均一なものとするために2種又はそれ以上の反応系を使用することができる。
　ある実施形態において、プライマーセット1～4及び8～19を混合したプライマーミックスを用いてマルチプレックスPCRを行い、プライマーセット5～7を混合したプライマーミックスを用いて別のマルチプレックスPCRを行うことで、アンプリコンDNAライブラリーを調製することができる。
　PCR反応系の各条件、例えば反応液の組成（例えばプライマー濃度、鋳型DNA濃度、基質となる各ヌクレオチドの濃度、バッファー組成等）及び反応条件（例えば、熱変性・アニーリング・伸長の各サイクル数及び温度等）は、PCR反応を実施する際に通常考慮される各種因子、例えば使用する酵素の種類やプライマーのTm値等を考慮して、適宜設定することができる。
キット
　本発明は、一態様において、プライマーセット1～9を含む、次世代シークエンシングによる急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のためのキットを提供する。キットは、さらにプライマーセット10～19のうちの1種、2種、3種、4種、5種、6種、7種、8種、9種又は10種を含んでもよい。
　キットに含まれるプライマーセット1～19は、アンプリコン及びアンプリコンDNAライブラリーの製造に関連して既に説明したとおり、それぞれを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列がさらに付加されていてもよく、ここでフォワードオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列を付加するための配列であり、リバースオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列を付加するための配列である。ある実施形態において、フォワードオーバーハング配列は、配列番号２１の塩基配列からなる。ある実施形態において、リバースオーバーハング配列は配列番号６２の塩基配列からなる。
　キットは、プライマーセット1～19のほか、上述の2nd PCR用プライマーセット、PCR反応用試薬（dNTP、酵素、緩衝液、pH調整剤、安定剤等）、細胞からゲノムDNAを抽出するための試薬、固相支持体、反応容器、取扱説明書等をさらに含んでもよい。
NGSを用いた塩基配列決定
　アンプリコンDNAライブラリーのシークエンスには、アンプリコン塩基配列の全長を決定することができる仕様のNGSプラットフォームを使用すればよい。具体的には、1種類のアンプリコンの両末端からのシークエンス（ペアエンドシークエンス）を行うことができるNGSプラットフォームであれば最大リード長250bp以上のプラットフォーム（Illumina社のMiSeq、NovaSeq等）を、1種類のアンプリコンの一方の末端からのシークエンス（シングルエンドシークエンス）が行われるNGSプラットフォームであれば、最大リード長500bp以上のプラットフォーム（Thermo Fisher Scientific社のIon GeneStudioTM S5 チップタイプIon 520TM Chip、Ion 530TM Chip等）を使用することができる。
　あるいは、標的変異領域の塩基配列を両末端からシークエンスできるように2種類のアンプリコンを用意することで、最大リード長250bp以上のシングルエンドシークエンスのNGSプラットフォーム（Thermo Fisher Scientific社のIon GeneStudioTM S5 チップタイプIon 510TM Chip等）を使用することもできる。ここで2種類のアンプリコンとは、5'末端側から順に、第一のアダプター配列と、患者の造血系細胞ゲノムDNA中の標的変異領域の塩基配列と、第二のアダプター配列とを含む又はこれらからなるDNA鎖及びその相補鎖から構成される第一のアンプリコン；並びに5'末端側から順に、第一のアダプター配列と、患者の造血系細胞ゲノムDNA中の標的変異領域の塩基配列の相補的塩基配列と、第二のアダプター配列とを含む又はこれらからなるDNA鎖及びその相補鎖から構成される第二のアンプリコンをいう。
　シークエンスのためのアンプリコンの支持体上でのクローン増幅を含めた一連のシークエンスのワークフローは、使用されるNGSプラットフォームに応じて適宜条件を設定し、実施することができる。
データの前処理及び解析
　NGSによって取得された一次データであるリードデータは、アンプリコンがインデックス配列を有する場合はそれに基づいて検体毎に分けられた後、インデックス配列が除去され、FASTQファイルとして保存される。その後、クオリティチェック、マッピング、バリアントコール（変異検出）及びアノテーションを含む一連の解析を、NGSを用いた遺伝子変異解析において通常用いられる手法を参照して行うことで、患者の造血系細胞由来ゲノムDNAに存在する遺伝子変異を並列的に検査し、AMLの診断や治療方針決定に資する情報を提供することができる。
　本発明において使用される標的変異領域の長さ、並びに2-step tailed PCR法によってアンプリコンを調製する実施形態の説明において具体的に例示したオーバーハング配列を有する1st PCR用プライマーセット及び2nd PCR用プライマーセットは、細菌16S rRNAのNGS解析において多用されているIllumina社のMiSeq及びNextera XT Index kitの使用に適したものである。本発明の実施にあたってこれらを利用することで、従来のAML遺伝子パネルと比較して安価かつ簡便に遺伝子変異を検査することができる。
　以下の実施例によって本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
材料及び方法
　ヒト急性骨髄性白血病細胞株であるKasumi1（JCRB細胞バンク(https://cellbank.nibiohn.go.jp)より購入）及びMV4_11（DSMZ(https://www.dsmz.de)より購入）から、QIAampR DNA Mini Kit(250) (QIAGEN)を用いてゲノムDNAを抽出した。1検体あたり10 ngのゲノムDNAを鋳型として、表５に示すプライマーセット1～4及び8～19を混合したプライマーミックスと、GC rich領域を標的としたプライマーセット5～7を混合したプライマーミックスをそれぞれ用いて、1検体につき2チューブでマルチプレックスPCR（1st PCR）を行った。PCR反応は、いずれもMultiplex PCR Assay Kit Ver. 2 (Takara)を、説明書に従って用いた。反応条件は、98℃、10秒間の熱変性、60℃、15秒間のアニーリング及び68℃、30秒間の伸長反応を34サイクルで行なった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　1st PCR後の反応液をアガロースゲル電気泳動に供して目的サイズのアンプリコンが増幅されていることを確認した後、再度アガロースゲル電気泳動を行って目的サイズのアンプリコンを含むバンドを切り出し、QIAquickR Gel Extraction Kit(250) (Qiagen)によって精製した。
　精製によって得られた1検体あたり2つのライブラリーに対して、Nextera XT Index kit（Illumina社）を説明書に従って用いてインデックス付加反応（2nd PCR）を行った。1st PCRの際にGC rich領域を標的としたプライマーミックスを用いて調製したサンプルはDMSOを添加した。2nd PCR後の反応液から目的サイズのアンプリコンを回収して各ライブラリーを精製し、Illumina MiSeqシステム及びMiSeq Reagent kit v2を用いてシークエンスを行い（リード長250 bpのペアエンドシークエンス）、データを解析した。
　解析の結果得られた各ライブラリーのリード数を標的変異領域ごとに図２０に示す。リード数はGC rich領域以外の16領域で平均7000以上であり、微小残存病変マーカーとなるNPM1, FLT3エクソン14,15領域についても5000リード以上を確保でき、全ての標的変異領域に対して十分なカバレッジ深度が得られた。
　また、AML患者10症例より採取した骨髄液からゲノムDNAを抽出し、上記と同様にしてNGSを用いた遺伝子変異解析を行った。データ解析は、FASTQファイルのヒトゲノム参照配列GRCh38へのアラインメントをBurrows-Wheeler Aligner（Li H et al., Bioinformatics, 2009, 25: 1754、http://bio-bwa.sourceforge.net/）を用いて、バリアントコール及びフィルタリング（デプス10未満のSNP、Indelを削除）をGenome Analysis Toolkit（McKenna A et al., Genome Research, 2010, 20(9): 1297-1303、https://gatk.broadinstitute.org/hc/en-us）を用いて、アノテーションをEnsembl Variant Effect Predictor（McLaren W et al. Genome Biol, 2016, 17(1): 122. https://asia.ensembl.org/info/docs/tools/vep/index.html）を用いて行った。
　遺伝子変異解析及び解析結果に基づいて予測された予後分類を表６に示す。表６では、上から順に染色体核型、骨髄有核細胞に占める芽球の割合（表中、Blast）、NGS解析によって検出された遺伝子変異とそのアレル頻度（表中、FLT3からIDH2まで）、NCCNガイドラインversion 3. 2017に従った核型のみによる予後分類、NCCNガイドラインversion 3. 2017又はNCCNガイドラインversion 1. 2022に従った遺伝子変異に基づく予後分類を示している。また、右側の２列は、NCCNガイドラインversion 3. 2017及びNCCNガイドラインversion 1. 2022において採用されている遺伝子評価項目をチェックで示している。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　各症例において検出された変異のうち、CEBPAの変異はアンプリコン6及び8で検出され、他の遺伝子の変異は図に示された部位で検出された。大半の症例において、染色体核型のみによって予測された予後分類は、NGSを用いた遺伝子変異解析によって予測された予後分類と異なっていた。遺伝子変異に基づく予後分類は、精度のよい予後予測であることが報告されている（例えば、Hidaka D et al. Clinical Lymphoma Myeloma and Leukemia 2018, 18(11), 2018, e469-e479）。したがって、表５に示されるプライマーセットを用いて調製したアンプリコンDNAライブラリーを利用した遺伝子パネル検査は、AMLの診療において有用な情報を提供できることが示された。
配列番号１　標的変異領域（FLT3_exon14-15）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号２　標的変異領域（FLT3_exon16）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号３　標的変異領域（FLT3_exon17）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号４　標的変異領域（FLT3_exon20）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号５　標的変異領域（CEBPA_exon1）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号６　標的変異領域（CEBPA_exon1）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号７　標的変異領域（CEBPA_exon1）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号８　標的変異領域（CEBPA_exon1）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号９　標的変異領域（NPM1_exon11）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１０　標的変異領域（KIT_exon17）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１１　標的変異領域（ASXL1_exon13）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１２　標的変異領域（TP53_exon3-4）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１３　標的変異領域（TP53_exon5）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１４　標的変異領域（TP53_exon6-7）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１５　標的変異領域（IDH1_exon2）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１６　標的変異領域（IDH2_exon4-5）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１７　標的変異領域（RUNX1_exon3）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１８　標的変異領域（RUNX1_exon4）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号１９　標的変異領域（RUNX1_exon5）のヒトリファレンスゲノム上の塩基配列
配列番号２０　P5配列の塩基配列
配列番号２１　R1SPの塩基配列
配列番号２２　R2SPの相補的塩基配列
配列番号２３　P7配列の相補的塩基配列
配列番号２４　標的変異領域（FLT3_exon14-15）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号２５　標的変異領域（FLT3_exon14-15）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号２６　標的変異領域（FLT3_exon16）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号２７　標的変異領域（FLT3_exon16）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号２８　標的変異領域（FLT3_exon17）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号２９　標的変異領域（FLT3_exon17）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号３０　標的変異領域（FLT3_exon20）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号３１　標的変異領域（FLT3_exon20）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号３２　標的変異領域（CEBPA_exon1）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号３３　標的変異領域（CEBPA_exon1）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号３４　標的変異領域（CEBPA_exon1）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号３５　標的変異領域（CEBPA_exon1）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号３６　標的変異領域（CEBPA_exon1）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号３７　標的変異領域（CEBPA_exon1）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号３８　標的変異領域（CEBPA_exon1）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号３９　標的変異領域（CEBPA_exon1）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号４０　標的変異領域（NPM1_exon11）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号４１　標的変異領域（NPM1_exon11）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号４２　標的変異領域（KIT_exon17）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号４３　標的変異領域（KIT_exon17）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号４４　標的変異領域（ASXL1_exon13）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号４５　標的変異領域（ASXL1_exon13）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号４６　標的変異領域（TP53_exon3-4）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号４７　標的変異領域（TP53_exon3-4）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号４８　標的変異領域（TP53_exon5）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号４９　標的変異領域（TP53_exon5）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号５０　標的変異領域（TP53_exon6-7）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号５１　標的変異領域（TP53_exon6-7）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号５２　標的変異領域（IDH1_exon2）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号５３　標的変異領域（IDH1_exon2）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号５４　標的変異領域（IDH2_exon4-5）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号５５　標的変異領域（IDH2_exon4-5）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号５６　標的変異領域（RUNX1_exon3）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号５７　標的変異領域（RUNX1_exon3）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号５８　標的変異領域（RUNX1_exon4）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号５９　標的変異領域（RUNX1_exon4）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号６０　標的変異領域（RUNX1_exon5）増幅用フォワードプライマーの塩基配列
配列番号６１　標的変異領域（RUNX1_exon5）増幅用リバースプライマーの塩基配列
配列番号６２　2-step tailed PCR法において用いられる1st PCR用プライマーセット　リバースプライマーのオーバーハング部分の塩基配列
配列番号６３　2-step tailed PCR法において用いられる2nd PCR用プライマーセット　フォワードプライマーの部分配列
配列番号６４　2-step tailed PCR法において用いられる2nd PCR用プライマーセット　リバースプライマーの部分配列
配列番号６５　2-step tailed PCR法において用いられる2nd PCR用プライマーセット　リバースプライマーの部分配列
配列番号６６　プライマーFLT3-ITD Fの塩基配列
配列番号６７　プライマーFLT3-ITD Rの塩基配列
配列番号６８　プライマーFLT3 i15 Fの塩基配列
配列番号６９　プライマーFLT3 i16 Rの塩基配列
配列番号７０　プライマーFLT3 i16 Fの塩基配列
配列番号７１　プライマーFLT3 i17 Rの塩基配列
配列番号７２　プライマーFLT3-TKD Fの塩基配列
配列番号７３　プライマーFLT3-TKD Rの塩基配列
配列番号７４　プライマーCEBPA F1の塩基配列
配列番号７５　プライマーCEBPA R1の塩基配列
配列番号７６　プライマーCEBPA F2の塩基配列
配列番号７７　プライマーCEBPA R2の塩基配列
配列番号７８　プライマーCEBPA F3の塩基配列
配列番号７９　プライマーCEBPA R3の塩基配列
配列番号８０　プライマーCEBPA F4の塩基配列
配列番号８１　プライマーCEBPA R4の塩基配列
配列番号８２　プライマーNPM1 Fの塩基配列
配列番号８３　プライマーNPM1 Rの塩基配列
配列番号８４　プライマーKIT i16 Fの塩基配列
配列番号８５　プライマーKIT i17 Rの塩基配列
配列番号８６　プライマーASXL1 Fの塩基配列
配列番号８７　プライマーASXL1 Rの塩基配列
配列番号８８　プライマーTP53 e3 Fの塩基配列
配列番号８９　プライマーTP53 e4 Rの塩基配列
配列番号９０　プライマーTP53 i4 Fの塩基配列
配列番号９１　プライマーTP53 i5 Rの塩基配列
配列番号９２　プライマーTP53 i5 Fの塩基配列
配列番号９３　プライマーTP53 i7 Rの塩基配列
配列番号９４　プライマーIDH1 i1 Fの塩基配列
配列番号９５　プライマーIDH1 i2 Rの塩基配列
配列番号９６　プライマーIDH2 i3 Fの塩基配列
配列番号９７　プライマーIDH2 e5 Rの塩基配列
配列番号９８　プライマーRUNX1 i2 Fの塩基配列
配列番号９９　プライマーRUNX1 i3 Rの塩基配列
配列番号１００　プライマーRUNX1 i3 Fの塩基配列
配列番号１０１　プライマーRUNX1 i4 Rの塩基配列
配列番号１０２　プライマーRUNX1 i4 Fの塩基配列
配列番号１０３　プライマーRUNX1 i5 Rの塩基配列

Claims (10)

  1. 　表１に示されるアンプリコン1～9を含む、次世代シークエンシングによる急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のためのアンプリコンDNAライブラリーであって、
    アンプリコンが、5'末端側から順に、次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列と、患者の造血系細胞ゲノムDNA中の表１に示される標的変異領域の塩基配列と、次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列とを含むDNA鎖、及びその相補鎖から構成され、前記アダプター配列の少なくとも一方に5～20塩基のインデックス配列を含む、前記DNAライブラリー。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
  2. 　表１に示されるアンプリコン1～19を含む、請求項１に記載のDNAライブラリー。
  3. 　第一のアダプター配列が、5'末端側から順に、配列番号２０の塩基配列、インデックス配列1、及び配列番号２１の塩基配列が連結された配列からなり、第二のアダプター配列が、5'末端側から順に、配列番号２２の塩基配列、インデックス配列2、及び配列番号２３の塩基配列が連結された配列からなり、インデックス配列1が0個又は8個の塩基からなり、インデックス配列2が8個の塩基からなる、請求項１又は２に記載のDNAライブラリー。
  4. 　請求項１～３のいずれか一項に記載のDNAライブラリーに含まれるアンプリコンの塩基配列を次世代シーケンサーにより解析することを含む、患者の造血系細胞における遺伝子変異を解析する方法。
  5. 　表２－１に示されるプライマーセット1～9を含む、次世代シークエンシングによる急性骨髄性白血病の遺伝子パネル検査のためのキットであって、プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列がさらに付加されていてもよく、ここでフォワードオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列を付加するための配列であり、リバースオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列を付加するための配列である、前記キット。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
  6. 　さらに表２－２に示されるプライマーセット10～19を含む、請求項５に記載のキットであって、プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列がさらに付加されていてもよく、ここでフォワードオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列を付加するための配列であり、リバースオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列を付加するための配列である、前記キット。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
  7. 　プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側に配列番号２１の塩基配列からなるフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側に配列番号６２の塩基配列からなるリバースオーバーハング配列がさらに付加されている、請求項５又は６に記載のキット。
  8. 　表２－１に示されるプライマーセット1～9を用いて、患者の造血系細胞ゲノムDNAを鋳型としたPCR反応を行うことを含む、アンプリコンDNAライブラリーを製造する方法であって、プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列がさらに付加されていてもよく、ここでフォワードオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列を付加するための配列であり、リバースオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列を付加するための配列である、前記方法。
  9. 　表２－２に示されるプライマーセット10～19を用いて、患者の造血系細胞ゲノムDNAを鋳型としたPCR反応を行うことをさらに含む、請求項８に記載の方法であって、プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側にフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側にリバースオーバーハング配列がさらに付加されていてもよく、ここでフォワードオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第一のアダプター配列を付加するための配列であり、リバースオーバーハング配列は次世代シークエンシングのための第二のアダプター配列を付加するための配列である、前記方法。
  10. 　プライマーセットを構成するフォワードプライマーの5'末端側に配列番号２１の塩基配列からなるフォワードオーバーハング配列が、リバースプライマーの5'末端側に配列番号６２の塩基配列からなるリバースオーバーハング配列がさらに付加されている、請求項８又は９に記載の方法。

     
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