WO2021221167A1 - ガン治療薬及びガン治療方法 - Google Patents
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Definitions
- the present invention relates to a cancer therapeutic agent and a cancer treatment method.
- anticancer agents include hydrophilic anti-cancer agents.
- hydrophilic anti-cancer agents include 5-fluorouracil, cytosine arabinoside, busulfan, methotrexate, cisplatin, melphalan, mitomycin C, daunomycin, and melphalan.
- one of the objects of the present invention is to provide an effective cancer therapeutic agent and cancer therapeutic method that are easily delivered to cancer cells.
- cancer therapeutic agent is an effective amount of a hydrophobic anticancer agent, a cationic liposome containing a hydrophobic anticancer agent, and ⁇ -polyglutamic acid containing a cationic liposome or ⁇ -polyglutamic acid thereof.
- cancer therapeutic agents comprising salts and cationic liposomes comprising phospholipids or salts thereof and cationic lipids or salts thereof.
- the phospholipid may be a neutral phospholipid.
- the phospholipid may be an unsaturated phospholipid.
- the phospholipid may be 1,2-dioreoil-sn-glycero-3-phosphocholine.
- the cationic lipid may be N- [1- (2,3-dioleoyloxy) propyl] -N, N, N-trimethylammonium.
- the molar ratio of phospholipids or salts thereof in cationic liposomes may be 10% or more and 90% or less.
- the molar ratio of the cationic lipid or its salt in the cationic liposome may be 10% or more and 90% or less.
- the molar ratio of phospholipid or salt thereof and cationic lipid or salt thereof may be 10:90 to 90:10.
- the molar ratio of the positively charged functional group of the cationic lipid or its salt to the negatively charged functional group of ⁇ -polyglutamic acid or its salt is 1: 1 to 1: 100. It may be.
- the molecular weight of ⁇ -polyglutamic acid or a salt thereof may be 2 million or less.
- the above-mentioned cancer therapeutic agent may have a substantially uncharged surface charge or a negative surface charge.
- the hydrophobic anticancer agent may be an anthracycline antibiotic.
- the hydrophobic anticancer agent may be doxorubicin or a salt thereof.
- the hydrophobic anticancer agent may be a taxane-based anticancer agent.
- the hydrophobic anticancer agent may be paclitaxel or a salt thereof.
- the present invention which is a cancer therapeutic agent, an effective amount of a hydrophobic anticancer agent, a cationic liposome containing a hydrophobic anticancer agent, and a ⁇ -polyglutamic acid containing a cationic liposome.
- the cationic liposome contains a phospholipid or a salt thereof, and a cationic lipid or a salt thereof, and the phospholipid is 1,2-dioreoil-sn-glycero-3-phosphocholine.
- a cancer therapeutic agent is provided in which the cationic lipid is N- [1- (2,3-dioleoyloxy) propyl] -N, N, N-trimethylammonium.
- the molar ratio of phospholipid or salt thereof and cationic lipid or salt thereof may be 10:90 to 90:10.
- the hydrophobic anticancer agent may be doxorubicin or a salt thereof.
- the hydrophobic anticancer agent may be paclitaxel or a salt thereof.
- the above-mentioned cancer therapeutic agent for use in the treatment of cancer is provided.
- a method for treating cancer which comprises applying the above-mentioned therapeutic agent for cancer to humans or non-human animals.
- a method for delivering a cancer therapeutic agent into a cell which comprises contacting the cell with the above-mentioned cancer therapeutic agent.
- Example 3 is a fluorescence microscope image of cancer cells administered with the anti-cancer agent according to Example 2. It is a graph which shows the uptake amount of doxorubicin into the cancer cell which concerns on Example 2.
- FIG. It is a graph which shows the survival rate of the cancer cell to which the anti-cancer agent which concerns on Example 3 was administered. It is a graph which shows the proliferation of the cancer cell to which the anti-cancer agent which concerns on Example 4 was administered. It is a graph which shows the survival rate of the mouse which administered the anti-cancer agent which concerns on Example 5. It is a graph which shows the survival rate of the mouse which administered the anti-cancer agent which concerns on Example 6.
- FIG. 7 It is a graph which shows the release amount of doxorubicin which concerns on Example 7.
- FIG. 8 It is a graph which shows the uptake amount of paclitaxel into the cancer cell which concerns on Example 8. It is a graph which shows the survival rate of the cancer cell to which the anti-cancer agent which concerns on Example 8 was administered.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment includes an effective amount of a hydrophobic anticancer agent, a cationic liposome containing a hydrophobic anticancer agent, ⁇ -polyglutamic acid ( ⁇ PGA) containing a cationic liposome, or a salt thereof. including.
- the cationic liposome comprises a phospholipid or a salt thereof, and a cationic lipid or a salt thereof.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment is in the form of particles.
- Hydrophobic anti-cancer agents are, for example, small molecule compounds.
- the molecular weight of the small molecule compound is, for example, 300 or more or 400 or more and 600 or less.
- Hydrophobicity means that the partition coefficient P given by the following formula is larger than 0.
- P log 10 P ow
- P ow is C o / C w
- C o is an anti-cancer agent concentration in the 1-octanol layer (mol / L)
- C w is an anti-cancer agent concentration in the water layer (mol / L).
- the partition coefficient is measured, for example, by the flask shaking method.
- the pH of the aqueous layer is, for example, 7.4.
- Hydrophobic anticancer agents are, for example, anthracycline antibiotics.
- anthracycline antibiotics include doxorubicin or its salt, daunorubicin or its salt, epirubicin or its salt, amrubicin or its salt, idarubicin or its salt, valrubicin or its salt, acralubicin or its salt, pirarubicin or its salt, And mitoxanthrone or a salt thereof.
- doxorubicin The chemical name of doxorubicin is (2S, 4S) -4- (3-Amino-2,3,6-trideoxy- ⁇ -L-lyxo-hexopyranosyloxy) -2,5,12-trihydroxy-2-hydroxyacetyl-7- It is methoxy-1,2,3,4-tetrahydrotetracene-6,11-dione monohydrochloride.
- the molecular formula of doxorubicin is C 27 H 29 NO 11 .
- the chemical structure of doxorubicin is as shown in the chemical formula (1).
- the salt of doxorubicin is, for example, doxorubicin hydrochloride.
- the hydrophobic anti-cancer agent is, for example, a taxane-based anti-cancer agent.
- taxane-based anticancer agents include paclitaxel or its salt, docetaxel or its salt, cabazitaxel or its salt, taxadiene or its salt, bacatin III or its salt, taxinin A or its salt, blevifoliol or its salt, and Taxa spine D or a salt thereof can be mentioned.
- cancers to be treated by the cancer therapeutic agent according to the embodiment include malignant lymphoma, lung cancer, digestive organ cancer, bladder cancer, urinary tract epithelial cancer, osteosarcoma, breast cancer, uterine body cancer, bone / soft tumor, and bone. Included are tumors, multiple myeloma, and pediatric solid tumors.
- gastrointestinal cancers include gastric cancer, gallbladder cancer, bile duct cancer, pancreatic cancer, hepatocellular carcinoma, and colon cancer.
- colorectal cancer include colon cancer and rectal cancer.
- pediatric solid tumors include Ewing's sarcoma family tumors, rhabdomyosarcoma, neuroblastoma, retinoblastoma, hepatoblastoma, and nephroblastoma.
- the number of molecules of the hydrophobic anticancer agent contained in one particle of the cancer therapeutic agent is 500 molecules or more, 5,000 molecules or more, or 50,000 molecules or more.
- the number of molecules of the hydrophobic anticancer agent contained in one particle of the cancer therapeutic agent is 10,000,000 molecules or less, 1,000,000 molecules or less, or 100,000 molecules or less.
- the mass ratio of the hydrophobic anticancer agent contained in one particle of the cancer therapeutic agent is 0.1% by mass or more, 0.5% by mass or more, 1% by mass or more, or 2% by mass or more.
- the mass concentration of the hydrophobic anticancer agent contained in one particle of the cancer therapeutic agent is 90% by mass or less, 50% by mass or less, or 25% by mass or less.
- Examples of phospholipids contained in cationic liposomes include lecithin, lysolecithin, hydrogenated products thereof, and derivatives of hydroxides thereof.
- Examples of phospholipids contained in cationic liposomes include phosphatidylcholine, phosphatidylserine, phosphatidylethanolamine, sphingomyelin, dipalmitoylphosphatidylcholine (DPPC), dipalmitoylphosphatidylcholine (DSPC), dimyristolylphosphatidylcholine (DMPC), 1 , 2-Gioreoil-sn-glycero-3-phosphocholine (also known as dioleylphosphatidylcholine, DOPC), and distearoylphosphatidylserine (DSPS).
- DPPC dipalmitoylphosphatidylcholine
- DSPC dipalmitoylphosphatidylcholine
- DMPC dimyristolylphosphat
- the phospholipid contained in the cationic liposome may be derived from animals and plants such as soybean or egg yolk, or may be a synthetic compound.
- the phospholipid is, for example, a neutral phospholipid.
- Phospholipids are, for example, unsaturated phospholipids.
- the molecular formula of DOPC, which is an example of phospholipid, is C 44 H 84 NO 8 P.
- the chemical structure of DOPC is as shown in the chemical formula (2).
- Phospholipids suppress the aggregation of cationic lipids when forming cationic liposomes.
- cationic lipids contained in cationic liposomes are N- [1- (2,3-dioleoyloxy) propyl] -N, N, N-trimethylammonium (also known as 1,2-dioreoiloxy-3).
- DOTAP N, N-dioctadecylamide glycylspermin
- DOGS dimethyldioctadecylammonium bromide
- DDAB dimethyldioctadecylammonium bromide
- DOTMA 2,3-dioreyloxy-N- [2 (spermin-carboxamide) ethyl] -N, N-dimethyl-1-propaneaminium trifluoroacetate (DOSA)
- DOSA N- [1- (2,3-dimyristyloxy) propyl] -N, N-dimethyl-N- (2-hydroxyethyl) ammonium bromide
- cationic lipids contained in cationic liposomes include esters of dipalmitoylphosphatidic acid (DPPA) and hydroxyethylenediamine, and esters of distearoylphosphatidic acid (DSPA) and hydroxyethylenediamine.
- DPPA dipalmitoylphosphatidic acid
- DSPA distearoylphosphatidic acid
- DOTAP which is an example of a cationic lipid
- the chemical structure of DOTAP is as shown in the chemical formula (3).
- DOTAP has an amino group as a functional group having a positive charge.
- the cationic liposome may be a monolayer liposome or a multilayer liposome.
- the cationic liposome may contain one kind of phospholipid or a salt thereof and one kind of cationic lipid or a salt thereof.
- the cationic liposome may contain a plurality of types of phospholipids or salts thereof, and a plurality of types of cationic lipids or salts thereof.
- the mass ratio of the hydrophobic anticancer agent and the cationic liposome in one particle of the cancer therapeutic agent is, for example, 1: 1, 1: 5, 1:10, 1:50, or 1: 100.
- the molar ratio of phospholipids or salts thereof to the total mass of cationic liposomes is, for example, 10% or more, 15% or more, 20% or more, 25% or more, or 30% or more. Further, in a single particle cancer therapeutic agent, the molar ratio of phospholipid or salt thereof to the total mass of cationic liposome is, for example, 90% or less, 85% or less, or 80% or less.
- the molar ratio of the cationic lipid or its salt to the total mass of the cationic liposome is, for example, 10% or more, 15% or more, or 20% or more. Further, in a single particle cancer therapeutic agent, the molar ratio of the cationic lipid or its salt to the total mass of the cationic liposome is, for example, 90% or less, 85% or less, 80% or less, 75% or less, or 70% or less. Is.
- the molar ratios of phospholipids or salts thereof and cationic lipids in cationic liposomes are, for example, 10:90 to 90:10, 15:85 to 85:10, 20:80 to 80:20, 25: 75 to 75:25, or 30:70 to 70:30.
- Cationic liposomes may contain lipids other than phospholipids and cationic lipids.
- lipids other than phospholipids and cationic lipids include glycolipids and glycols.
- Cationic liposomes may further contain a lipid membrane stabilizer.
- the lipid membrane stabilizer include sterols.
- sterols include cholesterol, dihydrocholesterol, cholesterol esters, phytosterols, citosterols, stigmasterol, campesterol, cholestanol, and lanosterol.
- a sterol derivative can be mentioned.
- sterol derivatives include 1-O-sterol glucoside, 1-O-sterol maltoside, and 1-O-sterol galactoside.
- ⁇ PGA or a salt thereof is an anionic molecule and electrostatically interacts with a cationic lipid contained in a cationic liposome.
- the chemical structure of ⁇ PGA is as shown in the chemical formula (4).
- ⁇ PGA has a carboxyl group as a functional group having a negative charge.
- R is a hydrogen atom; an alkali metal atom such as sodium, potassium, and lithium; a trimethylamine, a triethylamine, a dimethylamine, a diethylamine, a triethanolamine, a trimethanolamine, a diethanolamine, a dimethanolamine, an ethanolamine, etc.
- a quaternary amine such as tetramethylamine or tetraethylamine.
- the R present in the molecule may be the same or different.
- n is an integer of 40 or more.
- the lower limit of the molecular weight of ⁇ PGA is, for example, 1,000 or more, or 5,000 or more, 10,000 or more, but is not particularly limited.
- the upper limit of the molecular weight of ⁇ PGA is, for example, 2 million or less, 1.5 million or less, 1 million or less, 800,000 or less, 600,000 or less, 400,000 or less, 200,000 or less, or 20,000 or less, but is not particularly limited. ..
- the cationic liposome is encapsulated in ⁇ PGA. Due to the electrostatic interaction between the cationic lipid or salt thereof contained in the cationic liposome and the anionic molecule ⁇ PGA, the surface charge of the cancer therapeutic agent according to the embodiment is substantially uncharged. It is negative.
- the surface charge is substantially uncharged or negative means that when the cancer therapeutic agent according to the embodiment is brought into contact with blood, the positive charge is reduced to such an extent that the cancer therapeutic agent does not cause hemagglutination. Means. Further, when the surface charge is substantially uncharged or negative, the positive charge is reduced to such an extent that the survival rate of the cells becomes at least 50% when the cancer therapeutic agent according to the embodiment is brought into contact with the cells.
- the surface charge of the cancer therapeutic agent according to the embodiment is substantially uncharged or load-bearing, it is possible to suppress the aggregation of erythrocytes even when systemically administered such as intravenous administration. In addition, it is possible to suppress the non-specific delivery of the hydrophobic anticancer agent to cells other than the target cancer cells.
- the surface charge ( ⁇ potential) of the cancer therapeutic agent according to the embodiment is, for example, -50 mV or more, -40 mV or more, or -30 mV or more, but is not particularly limited.
- the surface charge ( ⁇ potential) of the cancer therapeutic agent according to the embodiment is, for example, +30 mV or less, +20 mV or less, +10 mV or less, +5 mV or less, 0 mV or less, -10 mV or less, or -15 mV or less, but is not particularly limited.
- the cationic liposome may be encapsulated inside like a liposome by ⁇ PGA.
- the cationic liposome may be bound to the surface of the cationic liposome by electrostatic interaction, and the cationic liposome may be covered with the ⁇ PGA. If the surface charge of the cancer therapeutic agent according to the embodiment is substantially uncharged or negative, the cationic liposome may not be completely covered with ⁇ PGA.
- the ratio of the cationic liposome to ⁇ PGA in the cancer therapeutic agent according to the embodiment is not particularly limited as long as the surface charge of the cancer therapeutic agent according to the embodiment is substantially uncharged or negative, but for example.
- the molar ratio of the positively charged functional group of the cationic liposome to the negatively charged functional group of ⁇ PGA is 1: 1 to 1: 100, 1: 1 to 1:80, 1: 1 to 1:60. It is adjusted to be 1: 1 to 1:40, 1: 1 to 1:20, 1: 1 to 1:10, or 1: 1 to 1: 6. Since the cancer therapeutic agent according to the embodiment contains ⁇ PGA, it has lower cytotoxicity and can reduce side effects as compared with a cationic therapeutic agent that does not contain an anionic molecule.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment is in the form of particles, and the average particle size is, for example, 500 nm or less, 300 nm or less, or 100 nm or less.
- the particle size distribution and the average particle size of the cancer therapeutic agent according to the embodiment can be calculated from the scattering intensity distribution obtained by using, for example, a dynamic light scattering measuring device.
- a phospholipid or a salt thereof and a cationic lipid or a salt thereof are brought into contact with each other at an appropriate blending ratio to form a cationic liposome, and a hydrophobic anticancer agent is applied to the cationic liposome. It is prepared by encapsulating and further contacting a cationic liposome containing a hydrophobic anticancer agent with ⁇ PGA in an appropriate compounding ratio.
- a method for producing a cancer therapeutic agent will be described when the phospholipid is DOPC and the cationic lipid is DOTAP.
- DOTAP and DOPC are mixed.
- chloroform is removed to form a lipid thin film consisting of DOTAP and DOPC.
- An ammonium sulfate solution is added to a lipid thin film composed of DOTAP and DOPC to prepare a solution of cationic liposomes composed of DOTAP and DOPC.
- the outer phase of the solution of cationic liposomes, ammonium sulfate, is replaced with a HEPES buffered glucose solution having a pH of 8.0.
- a hydrophobic anticancer agent is added to the solution of the cationic liposome and incubated at 65 ° C.
- ⁇ PGA is added to a solution of cationic liposomes containing a hydrophobic anticancer agent, and the cationic liposomes containing a hydrophobic anticancer agent are covered with ⁇ PGA to prepare a cancer therapeutic agent according to an embodiment.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment can be formulated and used alone or in combination with a pharmacologically acceptable carrier according to conventional means.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment can be provided as it is.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment may be provided in suspension.
- liquids that suspend cancer therapeutics include water and physiologically acceptable liquids.
- the physiologically acceptable liquid may be an aqueous solvent, an organic solvent, or a mixed liquid of an aqueous solvent and an organic solvent.
- aqueous solvents include saline, phosphate buffered saline (PBS), and cell culture media.
- Examples of cell culture media include RPMI1640, DMEM, HAM F-12, and Eagle's medium.
- organic solvents include ethanol, methanol, and DMSO.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment may be provided, as appropriate, with physiologically acceptable excipients, vehicles, preservatives, stabilizers, and binders.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment is formulated, the cancer therapeutic agent according to the embodiment is mixed with a pharmaceutically acceptable carrier, flavoring agent, excipient, vehicle, preservative, stabilizer, binder and the like. You may.
- parenteral aqueous solutions such as injections include saline and isotonic solutions containing glucose and other adjuvants.
- isotonic solutions include D-sorbitol, D-mannitol, and sodium chloride.
- an appropriate lysis aid may be used in combination.
- solubilizers include alcohols, polyalcohols, and nonionic surfactants.
- alcohols include ethanol
- examples of polyalcohols include propylene glycol and polyethylene glycol
- nonionic surfactants include polysorbate 80TM and HCO-50.
- oily liquid for example, sesame oil, soybean oil and the like are used, and may be used in combination with benzyl benzoate, benzyl alcohol and the like as solubilizing agents.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment may be used in combination with, for example, a buffer, a pain-relieving agent, a stabilizer, a preservative, an antioxidant and the like.
- buffers include phosphate buffers and sodium acetate buffers
- soothing agents include benzalkonium chloride and procaine hydrochloride
- stabilizers include human serum albumin
- preservatives include polyethylene glycol, benzyl alcohol and phenol
- antioxidants include ascorbic acid.
- the type of cell is not particularly limited, and is a cell derived from a human or non-human animal.
- non-human animals include monkeys, mice, rats, hamsters, and cows.
- the cell may be a cultured cell line containing a cancer cell, a cell isolated from an individual or a tissue, or a cell of a tissue or a piece of tissue. Further, the cell may be an adherent cell or a non-adherent cell.
- cells are suspended in a suitable medium several days before contact with the cancer therapeutic agent according to the embodiment and cultured under appropriate conditions.
- the cells may or may not be in the proliferative phase.
- the culture medium at the time of contact may be a serum-containing medium or a serum-free medium, but the serum concentration in the medium is preferably 30% or less, preferably 20% or less. If the medium contains an excess of protein such as serum, the contact between the cancer therapeutic agent according to the embodiment and the cells may be hindered.
- the cell density at the time of contact is not particularly limited and can be appropriately set in consideration of the cell type and the like.
- 0.1 ⁇ 10 5 to 5 ⁇ 10 5 cells / mL 0.1. ⁇ 10 5 from 4 ⁇ 10 5 cells /ML,0.1 ⁇ 10 5 from 3 ⁇ 10 5 cells /ML,0.2 ⁇ 10 5 from 3 ⁇ 10 5 cells / mL or from 0.2 ⁇ 10 5,
- the range is 2 x 10 5 cells / mL.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment is added to the medium containing the cells prepared in this way.
- the amount of the solution containing the cancer therapeutic agent according to the embodiment is not particularly limited and can be appropriately set in consideration of the number of cells and the like. However, for example, from 1 to 1000 ⁇ L per 1 mL of the medium. It ranges from 500 ⁇ L, 1 to 300 ⁇ L, 1 to 200 ⁇ L, or 1 to 100 ⁇ L.
- the cells After adding the cancer therapeutic agent according to the embodiment to the medium, the cells are cultured.
- the temperature, humidity, CO 2 concentration, etc. at the time of culturing should be appropriately set in consideration of the cell type.
- examples of culture conditions include a temperature of about 37 ° C., a humidity of about 95%, and a CO 2 concentration of about 5%.
- the cell culture time can be appropriately set depending on the type of cells used and the like.
- the cell culture time is, for example, 1 to 72 hours, 1 to 60 hours, 1 to 48 hours, 1 to 40 hours, or 1 to 32 hours.
- the medium may be replaced with a fresh medium, or the fresh medium may be added to the medium and the cell culture may be continued. If the cells are of mammalian origin, the fresh medium may contain serum or trophic factors.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment By administering the cancer therapeutic agent according to the embodiment to the subject, the cancer therapeutic agent according to the embodiment reaches and contacts the target cell in the subject, and the cancer therapeutic agent according to the embodiment is introduced into the target cell in vivo. Will be done.
- the target to which the cancer therapeutic agent according to the embodiment can be administered is not particularly limited, and is, for example, a human or a non-human animal.
- non-human animals include monkeys, mice, rats, hamsters, and cows.
- the method for administering the cancer therapeutic agent according to the embodiment is not particularly limited as long as the cancer therapeutic agent according to the embodiment reaches and contacts the target cells and the cancer therapeutic agent according to the embodiment can be introduced into the cells, and is oral. It may be administered or parenterally. Examples of parenteral administration include intravenous administration, intramuscular administration, topical administration, transdermal administration, subcutaneous administration, and intraperitoneal administration.
- the dose of the cancer therapeutic agent according to the embodiment is not particularly limited as long as the introduction of the drug into cells can be achieved, and is appropriately considered in consideration of the type of administration target, administration method, type and site of target cells, and the like. You can choose.
- parenteral administration such as intravenous administration, for example, in a human having a body weight of 60 kg, the single dose is about 0.0001 mg to 10000 mg.
- the cancer therapeutic agent according to the embodiment is not particularly limited, but can be used as, for example, a large intestine cancer peritoneal dissemination therapeutic agent or an ascites liver cancer therapeutic agent.
- Example 1 Dissolve each of DOTAP (NOF) and DOPC (NOF) in chloroform so that the molar ratio of DOTAP to DOPC is 0: 100, 25:75, 50:50, 75:25, or 100: 0. , Both were mixed in an eggplant flask. Then, chloroform was removed from the eggplant flask with a rotary evaporator to form a lipid thin film. Further, the inside of the eggplant flask was kept under negative pressure conditions using a vacuum pump for 3 hours, and chloroform was completely removed from the eggplant flask.
- a 250 mmol / L ammonium sulfate solution is added to the lipid thin film, shaken at 65 ° C. for 30 minutes, sonicated with a bath-type sonicator for 10 minutes, and then sonicated with a probe-type sonicator for another 3 minutes to prepare a liposome solution.
- the outer phase of the prepared liposome solution was replaced with a 10 mmol / L Hepes buffered 5% glucose solution having a pH of 8.0 using a gel filtration column, and the aqueous phase inside the liposome contained the ammonium sulfate solution.
- a solution of Hepes buffered 5% glucose solution in liposomes was prepared.
- the particle size and surface charge of the obtained nanoball-shaped liposomes were measured using a dynamic light scattering measuring device (Zetasizer Nano, Malvern Panasonic). The results are shown in FIG.
- doxorubicin Carbosynth
- doxorubicin Carbosynth
- the solution after preparing the liposomes encapsulating doxorubicin was subjected to ultracentrifugation (245,000 ⁇ g, 2 hours) to precipitate the liposomes, and the encapsulation rate of doxorubicin in the liposomes was calculated from the concentration of doxorubicin remaining in the supernatant.
- ⁇ -PGA was added to the liposome containing doxorubicin so as to have a mass ratio of 1: 1 and incubated at room temperature for 30 minutes to prepare a complex of nanoball-shaped liposome and ⁇ -PGA.
- the interaction between the liposome and the anionic ⁇ -PGA was weak because it did not contain cationic DOTAP, and it was not suitable for the preparation.
- the molar ratio of DOTAP to DOPC was 25:75, 50:50, and 75:25, the liposome- ⁇ -PGA complex was well formed.
- the molar ratio of DOTAP to DOPC was 100: 0, DOTAP aggregated and could not encapsulate doxorubicin.
- Example 2 A complex of liposomes containing doxorubicin and ⁇ -PGA was prepared in the same manner as in Example 1 except that the molar ratio of DOTAP to DOPC was 50:45, and used as a cancer therapeutic agent according to the production example.
- the particle size of the cancer therapeutic agent according to the production example was 153.0 nm, the surface charge was -43.5 mV, and the encapsulation rate of doxorubicin was 93.8%.
- a commercially available doxorubicin (Cayman Chemical) alone and a commercially available doxil (Jansen Pharma) were prepared.
- doxorubicin is encapsulated in PEG liposomes.
- the particle size of commercially available doxil was 82.9 nm, and the surface charge was -38.1 mV.
- Colorectal cancer line cells derived from Balb / c mice (Colon26, donated by RIKEN) were prepared, and 10,000 Colon26 cells were seeded on a 24-well plate at 10,000 cells / well and cultured for 24 hours. Then, doxorubicin alone, doxil, or a cancer therapeutic agent according to the production example was added to Colon26 cells so that the concentration of doxorubicin was 10 ⁇ g / mL, and the cells were cultured for 4 hours.
- the cells were washed with PBS, Hoechst33342 was added to the cells, and the cells were cultured for another 30 minutes to stain the nuclei of the cells. After nuclear staining, the intracellular fluorescence image was observed with a fluorescence microscope. Doxorubicin emits red fluorescence at 590 nm with excitation light of 485 nm. As a result, as shown in FIG. 2, it was observed that the cancer therapeutic agent according to the production example was incorporated into or near the nucleus. It was observed that doxorubicin alone was slightly incorporated into or near the nucleus. Doxil was not observed to be taken up into cells.
- the cells were washed with PBS, and 0.1 mol / L Tris / HCl buffer of pH 7.8 containing Lysis buffer (0.05% Triton X-100 and 2 mmol / L EDTA).
- the cells were lysed using a solution), and the amount of doxorubicin contained in the cell lysate was quantitatively measured using a fluorescence photometer (Infinite 200 PRO, Tecan).
- the protein concentration in the cytolytic solution was measured, and the amount of doxorubicin uptake per protein amount was calculated. The results are shown in FIG.
- the amount of doxorubicin taken up per protein amount was remarkably large.
- the amount of doxorubicin taken up per protein amount was remarkably small.
- Colon26 cells were seeded on a 96-well plate at 5000 cells / well and cultured for 24 hours. Then, doxorubicin, doxil, or a cancer therapeutic agent according to the production example was added to Colon26 cells so that the concentration of doxorubicin was 10 ⁇ g / mL, and the cells were cultured for 6 hours. Then, the medium containing doxorubicin was removed, the cells were washed with PBS, and the cells were cultured for another 18 hours. Subsequent cell viability was measured using a cell counting kit-8 (Dojindo).
- the cell viability was calculated as a ratio when the viability of cells not treated with doxorubicin, doxil, or the cancer therapeutic agent according to the production example was converted to 100%. The results are shown in FIG.
- the cancer therapeutic agent according to the production example effectively reduced the survival rate of cancer cells.
- Doxil on the other hand, reduced the survival rate of cancer cells only slightly.
- Example 4 300,000 Colon26-Luc cells (cells in which firefly luciferase was constitutively expressed in Colon26 cells donated by the Institute of Physical and Chemical Research) were intraperitoneally administered to Bulb / c mice, and the next day, doxorubicin, doxil, or doxil was administered.
- the cancer therapeutic agents according to the production examples were intraperitoneally administered to mice so that the dose of doxorubicin was 5 mg / kg.
- Example 5 300,000 Ehrlich ascites cancer cells were intraperitoneally administered to ddY mice, and the next day, doxorubicin, doxil, or a cancer therapeutic agent according to the production example was administered so that the dose of doxorubicin was 5 mg / kg. , Mice were intraperitoneally administered. The survival rate of mice after administration of Ehrlich ascites cancer cells was measured up to the 28th day. The results are shown in FIG. The survival rate of the mice treated with the cancer therapeutic agent according to the production example was remarkably high. On the other hand, the survival rate of mice treated with Doxil was significantly low.
- Example 6 Bulb / c mice were administered doxorubicin, doxil, or a cancer therapeutic agent according to a production example so that the dose of doxorubicin was 5 mg / kg, 10 mg / kg, or 20 mg / kg.
- the survival rate of the mice after administration was measured up to the 14th day.
- the cancer therapeutic agent according to the production example had a high survival rate in mice even at a large dose.
- doxorubicin alone which is known to be highly cardiotoxic, significantly reduced the survival rate of mice at higher doses.
- Example 7 Doxorubicin alone, doxil, and the cancer therapeutic agent according to the production example were prepared to be 250 ⁇ g / mL, and 500 ⁇ L of doxorubicin alone, doxil, or the cancer therapeutic agent according to the production example was added to the dialysis membrane, and 100 mL PBS was added. Stirred in. PBS was collected 1 hour, 4 hours, and 24 hours after the start of stirring, and the concentration of doxorubicin was measured from the fluorescence intensity. The result is shown in FIG. Since the fine particles of doxil and the cancer therapeutic agent according to the production example cannot pass through the dialysis membrane, the doxorubicin leaked into the PBS is the doxorubicin released from the fine particles. The cancer therapeutic agent according to the production example retained more than 75% of doxorubicin even after 24 hours.
- Example 8 Each of DOTAP (NOF), DOPC (NOF), and paclitaxel (Carbosynth) was dissolved in chloroform, and these were placed in an eggplant flask so that the molar ratio of DOTAP, DOPC, and paclitaxel was 50:45: 5. Mixed in. Then, chloroform was removed from the eggplant flask with a rotary evaporator to form a lipid thin film. Further, the inside of the eggplant flask was kept under negative pressure conditions using a vacuum pump for 3 hours, and chloroform was completely removed from the eggplant flask.
- a 5% glucose solution is added to the lipid thin film, shaken at 65 ° C. for 30 minutes, sonicated with a bath-type sonicator for 10 minutes, and then sonicated with a probe-type sonicator for another 3 minutes to encapsulate paclitaxel.
- Liposomes are prepared, and ⁇ -PGA is added to the liposomes containing paclitaxel so that the mass ratio is 1: 1 and incubated at room temperature for 30 minutes to obtain a complex of nanoball-shaped liposomes and ⁇ -PGA. It was prepared and used as a cancer therapeutic agent according to the production example of Example 8.
- Colorectal cancer line cells derived from Balb / c mice (Colon26, donated by RIKEN) were prepared, and 10,000 Colon / c mice were seeded on a 24-well plate and cultured for 24 hours. Then, paclitaxel alone or the cancer therapeutic agent according to the production example of Example 8 was added to Colon26 cells so that the concentration of paclitaxel was 10 ⁇ g / mL, and the cells were cultured for 24 hours.
- the cells were washed with PBS and used with a lysis buffer (0.1 mol / L Tris / HCl buffer of pH 7.8 containing 0.05% Triton X-100 and 2 mmol / L EDTA).
- the cells were lysed and the amount of paclitaxel contained in the cell lysate was quantitatively measured using HPLC. Furthermore, the protein concentration in the cytolytic solution was measured, and the amount of paclitaxel uptake per amount of protein was calculated. The results are shown in FIG. When the cancer therapeutic agent according to the production example of Example 8 was used, the amount of paclitaxel taken up per protein amount was remarkably large. On the other hand, when paclitaxel alone was used, the amount of paclitaxel taken up per protein amount was remarkably small.
- Colon 26 cells were seeded in a 96-well plate at 5000 cells / well and cultured for 24 hours. Then, paclitaxel alone or the cancer therapeutic agent according to the production example of Example 8 was added to Colon26 cells so that the concentration of paclitaxel was 10 ⁇ g / mL, and the cells were cultured for 24 hours. Subsequent cell viability was measured using a cell counting kit-8 (Dojindo). The cell viability was calculated as a ratio when the viability of paclitaxel alone or cells not treated with the cancer therapeutic agent according to the production example of Example 8 was converted to 100%. The results are shown in FIG. The cancer therapeutic agent according to the production example of Example 8 effectively reduced the survival rate of cancer cells as compared with paclitaxel alone.
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Abstract
ガン治療薬であって、有効量の疎水性抗ガン剤と、疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームと、カチオン性リポソームを内包するγ-ポリグルタミン酸又はその塩と、を含み、カチオン性リポソームが、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、を含む、ガン治療薬。
Description
本発明は、ガン治療薬及びガン治療方法に関する。
細胞の表面は負に荷電していることから、正に荷電したカチオン性分子を用いて医薬品が細胞に取り込まれることを促進する方法が研究されてきている。しかし、カチオン性分子は、細胞毒性が高く、血液や種々の臓器と非特異的に結合するため、赤血球凝集を起こすという問題がある。これに対し、薬物送達複合体において、薬物とカチオン性分子からなる複合体をアニオン性分子で内包する方法が提案されている(例えば、特許文献1参照。)。
一方、抗ガン剤としては、ドキソルビシン、エピルビシン、シクロホスファミド、チオテパ、サイトキシン、タキソイド、ドセタキセル、ビンブラスチン、ブレオマイシン、エトポシド、イフォスファミド、ミトキサントロン、ビンクリスチン、ビノレルビン、カルボプラチン、テニポシド、カミノマイシン、アミノプテリン、ダクチノマイシン、及びエスペラマイシンなど、多数の化合物が知られている(例えば、特許文献2、3参照。)。また、抗ガン剤には親水性の抗ガン剤がある。親水性の抗ガン剤の例としては、5-フルオロウラシル、シトシンアラビノシド、ブスルファン、メトトレキセート、シスプラチン、メルファラン、マイトマイシンC、ダウノマイシン、及びメルファランが挙げられる。
多数存在する抗ガン剤のそれぞれについて、ガン細胞への効率的な送達方法は未だ解明されていない。そこで、本発明は、ガン細胞に送達されやすい、効果的なガン治療薬及びガン治療方法を提供することを目的の一つとする。
本発明の態様によれば、ガン治療薬であって、有効量の疎水性抗ガン剤と、疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームと、カチオン性リポソームを内包するγ-ポリグルタミン酸又はその塩と、を含み、カチオン性リポソームが、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、を含む、ガン治療薬が提供される。
上記のガン治療薬において、リン脂質が中性リン脂質であってもよい。
上記のガン治療薬において、リン脂質が不飽和リン脂質であってもよい。
上記のガン治療薬において、リン脂質が、1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリンであってもよい。
上記のガン治療薬において、カチオン性脂質がN-[1-(2,3-ジオレオイロキシ)プロピル]-N,N,N-トリメチルアンモニウムであってもよい。
上記のガン治療薬において、カチオン性リポソームにおけるリン脂質又はその塩のモル比が、10%以上90%以下であってもよい。
上記のガン治療薬において、カチオン性リポソームにおけるカチオン性脂質又はその塩のモル比が、10%以上90%以下であってもよい。
上記のガン治療薬において、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、のモル比が、10:90から90:10であってもよい。
上記のガン治療薬において、カチオン性脂質又はその塩の正電荷を有する官能基と、γ-ポリグルタミン酸又はその塩の負電荷を有する官能基と、のモル比が、1:1から1:100であってもよい。
上記のガン治療薬において、γ-ポリグルタミン酸又はその塩の分子量が200万以下であってもよい。
上記のガン治療薬が、実質的に非荷電の表面電荷又は負の表面電荷を有していてもよい。
上記のガン治療薬において、疎水性抗ガン剤が、アントラサイクリン系抗生物質であってもよい。
上記のガン治療薬において、疎水性抗ガン剤が、ドキソルビシン又はその塩であってもよい。
上記のガン治療薬において、疎水性抗ガン剤が、タキサン系抗ガン剤であってもよい。
上記のガン治療薬において、疎水性抗ガン剤が、パクリタキセル又はその塩であってもよい。
また、本発明の態様によれば、ガン治療薬であって、有効量の疎水性抗ガン剤と、疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームと、カチオン性リポソームを内包するγ-ポリグルタミン酸又はその塩と、を含み、カチオン性リポソームが、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、を含み、リン脂質が、1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリンであり、カチオン性脂質がN-[1-(2,3-ジオレオイロキシ)プロピル]-N,N,N-トリメチルアンモニウムである、ガン治療薬が提供される。
上記のガン治療薬において、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、のモル比が、10:90から90:10であってもよい。
上記のガン治療薬において、疎水性抗ガン剤が、ドキソルビシン又はその塩であってもよい。
上記のガン治療薬において、疎水性抗ガン剤が、パクリタキセル又はその塩であってもよい。
また、本発明の態様によれば、ガンの治療における使用のための、上記のガン治療薬が提供される。
また、本発明の態様によれば、ガンの治療方法であって、ヒト又は非ヒト動物に、上記ガン治療薬を適用することを含む、ガンの治療方法が提供される。
また、本発明の態様によれば、細胞内へのガン治療薬の送達方法であって、細胞に、上記のガン治療薬を接触させることを含む、細胞内へのガン治療薬の送達方法が提供される。
本発明によれば、効果的なガン治療薬及びガン治療方法を提供可能である。
以下、本発明の実施形態について詳細に説明する。なお以下に示す実施形態は、この発明の技術的思想を具体化するための方法等を例示するものであって、これらの例示に限定されるものではない。
実施形態に係るガン治療薬は、有効量の疎水性抗ガン剤と、疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームと、カチオン性リポソームを内包するγ-ポリグルタミン酸(γPGA)又はその塩と、を含む。実施形態に係るガン治療薬において、カチオン性リポソームは、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、を含む。実施形態に係るガン治療薬は、粒子状である。
疎水性抗ガン剤は、例えば、低分子化合物である。低分子化合物の分子量は、例えば、300以上又は400以上であり、600以下である。疎水性とは、下記式で与えられる分配係数Pが0より大きいことをいう。
P=log10Pow
上記式において、PowはCo/Cwであり、Coは1-オクタノール層中の抗ガン剤濃度(mol/L)であり、Cwは水層中の抗ガン剤濃度(mol/L)である。分配係数は、例えばフラスコ振とう法により測定される。水層のpHは、例えば7.4である。
P=log10Pow
上記式において、PowはCo/Cwであり、Coは1-オクタノール層中の抗ガン剤濃度(mol/L)であり、Cwは水層中の抗ガン剤濃度(mol/L)である。分配係数は、例えばフラスコ振とう法により測定される。水層のpHは、例えば7.4である。
疎水性抗ガン剤は、例えば、アントラサイクリン系抗生物質である。アントラサイクリン系抗生物質の例としては、ドキソルビシン又はその塩、ダウノルビシン又はその塩、エピルビシン又はその塩、アムルビシン又はその塩、イダルビシン又はその塩、バルルビシン又はその塩、アクラルビシン又はその塩、ピラルビシン又はその塩、及びミトキサントロン又はその塩が挙げられる。
ドキソルビシンの化学名は、(2S,4S)-4-(3-Amino-2,3,6-trideoxy-α-L-lyxo-hexopyranosyloxy)-2,5,12-trihydroxy-2-hydroxyacetyl-7-methoxy-1,2,3,4-tetrahydrotetracene-6,11-dione monohydrochlorideである。ドキソルビシンの分子式は、C27H29NO11である。ドキソルビシンの化学構造は、化学式(1)に示すとおりである。
ドキソルビシンの塩は、例えば、ドキソルビシン塩酸塩である。
疎水性抗ガン剤は、例えば、タキサン系抗ガン剤である。タキサン系抗ガン剤の例としては、パクリタキセル又はその塩、ドセタキセル又はその塩、カバジタキセル又はその塩、タキサジエン又はその塩、バッカチンIII又はその塩、タクスチニンA又はその塩、ブレビフォリオール又はその塩、及びタキサスパインD又はその塩が挙げられる。
実施形態に係るガン治療薬の治療対象のガンの例としては、悪性リンパ腫、肺ガン、消化器ガン、膀胱ガン、尿路上皮ガン、骨肉腫、乳ガン、子宮体ガン、骨・軟部腫瘍、骨腫瘍、多発性骨髄腫、及び小児固形腫瘍が挙げられる。消化器ガンの例としては、胃ガン、胆のうガン、胆管ガン、膵臓ガン、肝細胞ガン、及び大腸ガンが挙げられる。大腸ガンの例としては、結腸ガン及び直腸ガンが挙げられる。小児固形腫瘍の例としては、ユーイング肉腫ファミリー腫瘍、横紋筋肉腫、神経芽腫、網膜芽腫、肝芽腫、及び腎芽腫が挙げられる。
1粒子のガン治療薬に含まれる疎水性抗ガン剤の分子数は、500分子以上、5,000分子以上、あるいは50,000分子以上である。また、1粒子のガン治療薬に含まれる疎水性抗ガン剤の分子数は、10,000,000分子以下、1,000,000分子以下、あるいは100,000分子以下である。
1粒子のガン治療薬に含まれる疎水性抗ガン剤の質量割合は、0.1質量%以上、0.5質量%以上、1質量%以上、あるいは2質量%以上である。また、1粒子のガン治療薬に含まれる疎水性抗ガン剤の質量濃度は、90質量%以下、50質量%以下、あるいは25質量%以下である。
カチオン性リポソームに含まれるリン脂質の例としては、レシチン、リゾレシチン、これらの水素添加物、及びこれらの水酸化物の誘導体が挙げられる。また、カチオン性リポソームに含まれるリン脂質の例としては、ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルエタノールアミン、スフィンゴミエリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC)、ジステアロイルホスファチジルコリン(DSPC)、ジミリストリルホスファチジルコリン(DMPC)、1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン(別名:ジオレイルホスファチジルコリン、DOPC)、及びジステアロイルホスファチジルセリン(DSPS)が挙げられる。
カチオン性リポソームに含まれるリン脂質は、大豆又は卵黄等の動植物由来であってもよいし、合成化合物であってもよい。リン脂質は、例えば中性リン脂質である。リン脂質は、例えば、不飽和リン脂質である。リン脂質の一例であるDOPCの分子式は、C44H84NO8Pである。DOPCの化学構造は、化学式(2)に示すとおりである。
リン脂質は、カチオン性リポソームを形成する際に、カチオン性脂質の凝集を抑制する。
カチオン性リポソームに含まれるカチオン性脂質の例としては、N-[1-(2,3-ジオレオイロキシ)プロピル]-N,N,N-トリメチルアンモニウム(別名:1、2-ジオレオイルオキシ-3-(トリメチルアンモニウム)プロパン、DOTAP)、N、N-ジオクタデシルアミドグリシルスペルミン(DOGS)、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド(DDAB)、N-[1-(2、3-ジオレイルオキシ)プロピル]-N、N、N-トリメチルアンモニウムクロリド(DOTMA)、2、3-ジオレイルオキシ-N-[2(スペルミン-カルボキサミド)エチル]-N、N-ジメチル-1-プロパンアミニウムトリフルオロアセテート(DOSPA)、及びN-[1-(2、3-ジミリスチルオキシ)プロピル]-N、N-ジメチル-N-(2-ヒドロキシエチル)アンモニウムブロミド(DMRIE)が挙げられる。また、カチオン性リポソームに含まれるカチオン性脂質の他の例としては、ジパルミトイルホスファチジン酸(DPPA)とヒドロキシエチレンジアミンのエステル、及びジステアロイルホスファチジン酸(DSPA)とヒドロキシエチレンジアミンのエステルが挙げられる。
カチオン性リポソームは、単層型リポソームであってもよいし、多重層型リポソームであってもよい。カチオン性リポソームは、1種類のリン脂質又はその塩と、1種類のカチオン性脂質又はその塩と、を含んでいてもよい。あるいは、カチオン性リポソームは、複数種類のリン脂質又はその塩と、複数種類のカチオン性脂質又はその塩と、を含んでいてもよい。
1粒子のガン治療薬における、疎水性抗ガン剤と、カチオン性リポソームと、の質量比は、例えば、1:1、1:5、1:10、1:50、あるいは1:100である。
1粒子のガン治療薬において、カチオン性リポソームの全質量におけるリン脂質又はその塩のモル比は、例えば、10%以上、15%以上、20%以上、25%以上、あるいは30%以上である。また、1粒子のガン治療薬において、カチオン性リポソームの全質量におけるリン脂質又はその塩のモル比は、例えば、90%以下、85%以下、又は80%以下である。
1粒子のガン治療薬において、カチオン性リポソームの全質量におけるカチオン性脂質又はその塩のモル比は、例えば、10%以上、15%以上、あるいは20%以上である。また、1粒子のガン治療薬において、カチオン性リポソームの全質量におけるカチオン性脂質又はその塩のモル比は、例えば、90%以下、85%以下、80%以下、75%以下、あるいは70%以下である。
カチオン性リポソームにおける、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質と、のモル比は、例えば、10:90から90:10、15:85から85:10、20:80から80:20、25:75から75:25、あるいは30:70から70:30である。
カチオン性リポソームは、リン脂質及びカチオン性脂質以外の脂質を含んでいてもよい。リン脂質及びカチオン性脂質以外の脂質の例としては、糖脂質及びグリコール類が挙げられる。
カチオン性リポソームは、脂質膜安定化剤をさらに含んでいてもよい。脂質膜安定化剤としては、ステロール類が挙げられる。ステロール類の例としては、コレステロール、ジヒドロコレステロール、コレステロールエステル、フィトステロール、シトステロール、スチグマステロール、カンペステロール、コレスタノール、及びラノステロールが挙げられる。また、脂質膜安定化剤としては、ステロール誘導体が挙げられる。ステロール誘導体の例としては、1-O-ステロールグルコシド、1-O-ステロールマルトシド、及び1-O-ステロールガラクトシドが挙げられる。
γPGA又はその塩は、アニオン性分子であり、カチオン性リポソームに含まれるカチオン性脂質と静電的に相互作用する。γPGAの化学構造は、化学式(4)に示すとおりである。γPGAは、負電荷を有する官能基として、カルボキシル基を有する。
化学式(4)において、Rは水素原子; ナトリウム、カリウム、及びリチウム等のアルカリ金属原子; トリメチルアミン、トリエチルアミン、ジメチルアミン、ジエチルアミン、トリエタノールアミン、トリメタノールアミン、ジエタノールアミン、ジメタノールアミン、エタノールアミン等の第三級アミン; 又はテトラメチルアミン、テトラエチルアミン等の第四級アミンである。分子中に存在するRは同一であってもよいし、異なっていてもよい。nは40以上の整数である。
γPGAの分子量の下限は、例えば、1,000以上、又は5,000以上、10,000以上であるが、特に限定されない。また、γPGAの分子量の上限は、例えば、200万以下、150万以下、100万以下、80万以下、60万以下、40万以下、20万以下、又は2万以下であるが、特に限定されない。
実施形態に係るガン治療薬において、カチオン性リポソームは、γPGAに内包されている。カチオン性リポソームに含まれるカチオン性脂質又はその塩と、アニオン性分子であるγPGAとの静電的相互作用により、実施形態に係るガン治療薬の表面電荷は、実質的に非電荷であるか、負である。表面電荷が実質的に非荷電又は負であるとは、実施形態に係るガン治療薬を血液と接触させた場合に、ガン治療薬が赤血球凝集を起こさない程度に正電荷が低下していることを意味する。また、表面電荷が実質的に非荷電又は負であるとは、実施形態に係るガン治療薬を細胞と接触させた場合に、細胞の生存率が少なくとも50%となる程度に、正電荷が低下していることを意味する。実施形態に係るガン治療薬は、表面電荷が実質的に非荷電又は負荷電であることにより、静脈内投与等の全身投与をされても、赤血球の凝集を抑制することが可能である。また、標的であるガン細胞以外の細胞へ、疎水性抗ガン剤を非特異的に送達することを抑制することが可能である。
実施形態に係るガン治療薬の表面電荷(ζ電位)は、例えば、-50mV以上、-40mV以上、あるいは-30mV以上であるが、特に限定されない。実施形態に係るガン治療薬の表面電荷(ζ電位)は、例えば、+30mV以下、+20mV以下、+10mV以下、+5mV以下、0mV以下、-10mV以下、あるいは-15mV以下であるが、特に限定されない。
実施形態に係るガン治療薬において、カチオン性リポソームを、γPGAがリポソームのように内部に封入してもよい。あるいは、カチオン性リポソーム表面にγPGAが静電的相互作用により結合して、カチオン性リポソームをγPGAが覆っていてもよい。なお、実施形態に係るガン治療薬の表面電荷が、実質的に非電荷であるか、負であれば、カチオン性リポソームをγPGAが完全に覆わなくともよい。
実施形態に係るガン治療薬における、カチオン性リポソームとγPGAとの比は、実施形態に係るガン治療薬の表面電荷が実質的に非荷電であるか、あるいは負であれば特に限定されないが、例えば、カチオン性リポソームの正電荷を有する官能基と、γPGAの負電荷を有する官能基とのモル比が、1:1から1:100、1:1から1:80、1:1から1:60、1:1から1:40、1:1から1:20、1:1から1:10、あるいは1:1から1:6となるよう調整される。実施形態に係るガン治療薬はγPGAを含むため、アニオン性分子を含まないカチオン性の治療薬と比較して、細胞毒性が低く、副作用を低減することが可能である。
実施形態に係るガン治療薬は粒形であり、平均粒径は、例えば、500nm以下、300nm以下、あるいは100nm以下である。実施形態に係るガン治療薬の粒径分布及び平均粒径は、例えば動的光散乱測定装置を用いて得られる散乱強度分布から算出することができる。
実施形態に係るガン治療薬は、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、を適当な配合比で接触させてカチオン性リポソームを形成し、カチオン性リポソームに疎水性抗ガン剤を封入し、さらに、疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームと、γPGAと、を適当な配合比で接触させることにより調製される。
以下において、一例として、リン脂質がDOPC、カチオン性脂質がDOTAPである場合の、実施形態に係るガン治療薬の製造方法を説明する。
DOTAPとDOPCのそれぞれをクロロホルムに溶解した後に、DOTAPとDOPCを混合する。次に、クロロホルムを除去して、DOTAPとDOPCからなる脂質薄膜を形成する。DOTAPとDOPCからなる脂質薄膜に硫酸アンモニウム溶液を加えて、DOTAPとDOPCからなるカチオン性リポソームの溶液を調製する。カチオン性リポソームの溶液の外相の硫酸アンモニウムを、pH=8.0のHEPES緩衝グルコース溶液に置換する。さらに、カチオン性リポソームの溶液に疎水性抗ガン剤を加えて、65℃でインキュベートし、内相に疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームを調製する。さらに、疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームの溶液にγPGAを加えて、疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームをγPGAで覆い、実施形態に係るガン治療薬を調製する。
実施形態に係るガン治療薬は、単独で、あるいは薬理学上許容されうる担体とともに常套手段に従って製剤化して使用することができる。実施形態に係るガン治療薬は、そのままで提供され得る。あるいは、実施形態に係るガン治療薬は、懸濁液で提供され得る。ガン治療薬を懸濁する液の例としては、水及び生理学的に許容し得る液が挙げられる。生理学的に許容し得る液は、水性溶媒であってもよいし、有機溶媒であってもよいし、水性溶媒と有機溶媒との混合液であってもよい。水性溶媒の例としては、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)、及び細胞培養培地が挙げられる。細胞培養培地の例としては、RPMI1640、DMEM、HAM F-12、及びイーグル培地が挙げられる。有機溶媒の例としては、エタノール、メタノール、及びDMSOが挙げられる。実施形態に係るガン治療薬は、適宜、生理学的に許容し得る賦形剤、ベヒクル、防腐剤、安定剤、及び結合剤と共に提供され得る。
実施形態に係るガン治療薬を製剤化する場合は、実施形態に係るガン治療薬を、医薬上許容される担体、香味剤、賦形剤、ベヒクル、防腐剤、安定剤、結合剤などと混和してもよい。
注射剤等の非経口剤の水性液の例としては、生理食塩水、及びブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液が挙げられる。等張液の例としては、D-ソルビトール、D-マンニトール、及び塩化ナトリウムが挙げられる。非経口剤の水性液において、適当な溶解補助剤を併用してもよい。溶解補助剤の例としては、アルコール、ポリアルコール、及び非イオン性界面活性剤が挙げられる。アルコールの例としてはエタノールが挙げられ、ポリアルコールの例としては、プロピレングリコール及びポリエチレングリコールが挙げられ、非イオン性界面活性剤の例としては、ポリソルベート80TM及びHCO-50が挙げられる。油性液としては、例えば、ゴマ油、大豆油などが用いられ、溶解補助剤である安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどと併用してもよい。
また、実施形態に係るガン治療薬は、例えば、緩衝剤、無痛化剤、安定剤、保存剤、及び酸化防止剤などと併用してもよい。緩衝剤の例としては、リン酸塩緩衝液及び酢酸ナトリウム緩衝液が挙げられ、無痛化剤の例としては塩化ベンザルコニウム及び塩酸プロカインが挙げられ、安定剤の例としては、ヒト血清アルブミン及びポリエチレングリコールが挙げられ、保存剤の例としては、ベンジルアルコール及びフェノールが挙げられ、酸化防止剤の例としてはアスコルビン酸が挙げられる。
次に、ガン治療薬を細胞に接触させることを含む、細胞内へのガン治療薬の送達方法を説明する。
細胞の種類は特に限定されず、ヒトあるいは非ヒト動物由来の細胞である。非ヒト動物の例としては、サル、マウス、ラット、ハムスター、及びウシが挙げられる。細胞は、癌細胞を含む培養細胞株であっても、個体や組織より単離された細胞、あるいは組織もしくは組織片の細胞であってもよい。また、細胞は接着細胞であっても、非接着細胞であってもよい。
例えば、細胞は実施形態に係るガン治療薬との接触の数日前に適当な培地に懸濁され、適切な条件で培養される。実施形態に係るガン治療薬との接触時において、細胞は増殖期にあってもよいし、増殖期でなくてもよい。接触時の培養液は、血清含有培地であっても血清不含培地であってもよいが、培地中の血清濃度は30%以下、好ましくは20%以下であることが好ましい。培地中に過剰な血清等のタンパク質が含まれていると、実施形態に係るガン治療薬と細胞との接触が阻害される場合がある。
接触時の細胞密度は、特に限定されず、細胞の種類等を考慮して適宜設定することが可能であるが、例えば、0.1×105から5×105細胞/mL、0.1×105から4×105細胞/mL、0.1×105から3×105細胞/mL、0.2×105から3×105細胞/mL、あるいは0.2×105から2×105細胞/mLの範囲である。
このように調製された細胞を含む培地に、実施形態に係るガン治療薬を添加する。実施形態に係るガン治療薬を含有する溶液の添加量は、特に限定されず、細胞数等を考慮して適宜設定することが可能であるが、培地1mLにつき、例えば、1から1000μL、1から500μL、1から300μL、1から200μL、あるいは1から100μLの範囲である。
培地に実施形態に係るガン治療薬を添加後、細胞を培養する。培養時の温度、湿度、CO2濃度等は、細胞の種類を考慮して適宜設定する。細胞が哺乳動物由来である場合、培養条件の例としては、温度約37℃、湿度約95%、CO2濃度約5%が挙げられる。細胞の培養時間は、用いる細胞の種類等により適宜設定することが可能である。細胞の培養時間は、例えば、1から72時間、1から60時間、1から48時間、1から40時間、あるいは1から32時間である。
上記培養の後、培地を新鮮な培地と交換するか、培地に新鮮な培地を添加して、さらに細胞の培養を続けてもよい。細胞が哺乳動物由来である場合、新鮮な培地は血清又は栄養因子を含み得る。
次に、実施形態に係るガン治療薬をヒト又は非ヒト動物に投与することを含む、ガンの治療方法を説明する。
実施形態に係るガン治療薬を対象に投与することにより、実施形態に係るガン治療薬が対象内の標的細胞へ到達及び接触し、生体内で実施形態に係るガン治療薬が標的細胞内へ導入される。
実施形態に係るガン治療薬を投与可能な対象としては、特に限定されず、例えば、ヒトあるいは非ヒト動物。非ヒト動物の例としては、サル、マウス、ラット、ハムスター、及びウシが挙げられる。
実施形態に係るガン治療薬の投与方法は、標的細胞へ実施形態に係るガン治療薬が到達及び接触し、実施形態に係るガン治療薬を細胞内へ導入可能な範囲で特に限定されず、経口投与であっても、非経口投与であってもよい。非経口投与の例としては、静脈内投与、筋肉内投与、局所投与、経皮投与、皮下投与、及び腹腔内投与が挙げられる。
実施形態に係るガン治療薬の投与量は、薬物の細胞内への導入を達成可能な範囲で特に限定されず、投与対象の種類、投与方法、標的細胞の種類や部位等を考慮して適宜選択することができる。例えば静脈内投与等、非経口的に投与する場合、例えば体重60kgのヒトにおいて、1回投与量は約0.0001mgから10000mgである。
実施形態に係るガン治療薬は、特に限定されないが、例えば、大腸ガン腹膜播種治療薬又は腹水肝ガン治療薬として使用可能である。
(実施例1)
DOTAP(日本油脂)とDOPC(日本油脂)のそれぞれをクロロホルムに溶解し、DOTAPとDOPCのモル比が0:100、25:75、50:50、75:25、又は100:0となるように、両者をナスフラスコ中で混合した。その後、ロータリーエバポレーターでナスフラスコからクロロホルムを除去し、脂質薄膜を形成した。さらに、3時間、真空ポンプを用いてナスフラスコ内を陰圧条件下に保持し、ナスフラスコからクロロホルムを完全に除去した。
DOTAP(日本油脂)とDOPC(日本油脂)のそれぞれをクロロホルムに溶解し、DOTAPとDOPCのモル比が0:100、25:75、50:50、75:25、又は100:0となるように、両者をナスフラスコ中で混合した。その後、ロータリーエバポレーターでナスフラスコからクロロホルムを除去し、脂質薄膜を形成した。さらに、3時間、真空ポンプを用いてナスフラスコ内を陰圧条件下に保持し、ナスフラスコからクロロホルムを完全に除去した。
脂質薄膜に250mmol/L硫酸アンモニウム溶液を加えて、65℃で30分間振盪し、バス型ソニケーターで10分間超音波処理を行った後、プローブ型ソニケーターでさらに3分間超音波処理して、リポソームの溶液を調製した。調製したリポソームの溶液の外相の硫酸アンモニウムをゲル濾過カラムを用いてpH=8.0の10mmol/L Hepes buffered 5%グルコース溶液に置換し、リポソームの内側の水相に硫酸アンモニウム溶液を含んだ、外相がHepes buffered 5%グルコース溶液のリポソームの溶液を調製した。得られたナノボール状のリポソームの粒子径と表面電荷を、動的光散乱測定装置(ゼータサイザーナノ、Malvern Panalytical)を用いて測定した。結果を図1に示す。
このリポソームの溶液に、脂質量12.5mgに対して1mgのドキソルビシン(Carbosynth社)を加えて、65℃で30分インキュベートし、リポソームの内相にドキソルビシンを封入した。ドキソルビシンを封入したリポソームを調製した後の溶液を超遠心(245000×g、2時間)にかけてリポソームを沈殿させ、上清に残っているドキソルビシンの濃度から、リポソームへのドキソルビシンの封入率を算出した。結果を図1に示す。さらに、ドキソルビシンを内包するリポソームに質量比が1:1となるようにγ-PGAを加え、室温で30分間インキュベートすることで、ナノボール状のリポソームとγ-PGAの複合体を調製した。
DOTAPとDOPCのモル比が0:100である場合、カチオン性のDOTAPを含まないため、リポソームとアニオン性のγ-PGAの相互作用が弱く、製剤に適さなかった。DOTAPとDOPCのモル比が25:75、50:50、及び75:25である場合、リポソームとγ-PGAの複合体が良好に形成された。DOTAPとDOPCのモル比が100:0である場合、DOTAPが凝集して、ドキソルビシンを封入することができなかった。
(実施例2)
DOTAPとDOPCのモル比が50:45である以外は、実施例1と同様に、ドキソルビシンを内包するリポソームとγ-PGAの複合体を調製し、製造例に係るガン治療薬とした。製造例に係るガン治療薬の粒子径は153.0nm、表面電荷は-43.5mV、ドキソルビシンの封入率は93.8%であった。また、市販のドキソルビシン(Cayman Chemical社)単体と、市販のドキシル(ヤンセンファーマ)を用意した。市販のドキシルは、ドキソルビシンがPEGリポソームに内包されている。市販のドキシルの粒子径は82.9nm、表面電荷は-38.1mVであった。
DOTAPとDOPCのモル比が50:45である以外は、実施例1と同様に、ドキソルビシンを内包するリポソームとγ-PGAの複合体を調製し、製造例に係るガン治療薬とした。製造例に係るガン治療薬の粒子径は153.0nm、表面電荷は-43.5mV、ドキソルビシンの封入率は93.8%であった。また、市販のドキソルビシン(Cayman Chemical社)単体と、市販のドキシル(ヤンセンファーマ)を用意した。市販のドキシルは、ドキソルビシンがPEGリポソームに内包されている。市販のドキシルの粒子径は82.9nm、表面電荷は-38.1mVであった。
Balb/cマウス由来の大腸ガン株細胞(Colon26、理化学研究所より供与)を用意し、Colon26細胞を1万個/wellで24wellプレートに播種し、24時間培養した。その後、Colon26細胞に、ドキソルビシン単体、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を、いずれもドキソルビシンの濃度が10μg/mLになるように添加し、4時間細胞を培養した。
4時間細胞を培養した後、細胞をPBSで洗浄し、Hoechst33342を細胞に添加し、さらに30分細胞を培養して、細胞の核を染色した。核染色後に細胞内の蛍光像を蛍光顕微鏡で観察した。なお、ドキソルビシンは、485nmの励起光で、590nmの赤色の蛍光を発する。その結果、図2に示すように、製造例に係るガン治療薬は、核内又は核近傍に取り込まれていることが観察された。ドキソルビシン単体は、核内又は核近傍にわずかに取り込まれていることが観察された。ドキシルは、細胞内に取り込まれていることが観察されなかった。
また、上記の4時間細胞を培養した後、細胞をPBSで洗浄し、Lysis buffer(0.05% Triton X-100及び2mmol/L EDTAを含むpH7.8の0.1mol/L Tris/HCl緩衝液)を用いて細胞を溶解し、蛍光光度計(Infinite 200 PRO, Tecan)を用いて、細胞溶解液中に含まれるドキソルビシンの量を定量的に測定した。さらに、細胞溶解液中のタンパク濃度を測定し、タンパク量あたりのドキソルビシンの取り込み量を算出した。結果を図3に示す。製造例に係るガン治療薬を用いた場合、タンパク量あたりのドキソルビシンの取り込み量は顕著に多かった。一方、ドキソルビシン単体又はドキシルを用いた場合、タンパク量あたりのドキソルビシンの取り込み量は顕著に少なかった。
(実施例3)
96wellプレートにColon26細胞を5000個/wellで播種し、24時間培養した。その後、Colon26細胞にドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を、いずれもドキソルビシンの濃度が10μg/mLになるように添加し、6時間細胞を培養した。その後、ドキソルビシンを含有した培地を除去し、PBSで細胞を洗浄後、さらに18時間細胞を培養した。その後の細胞の生存率を、cell counting kit-8(Dojindo)を用いて測定した。なお、細胞生存率は、ドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬で処理しなかった細胞の生存率を100%に換算したときの比として算出した。結果を図4に示す。製造例に係るガン治療薬は、ガン細胞の生存率を効果的に減少させた。一方、ドキシルは、ガン細胞の生存率をわずかにしか減少させなかった。
96wellプレートにColon26細胞を5000個/wellで播種し、24時間培養した。その後、Colon26細胞にドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を、いずれもドキソルビシンの濃度が10μg/mLになるように添加し、6時間細胞を培養した。その後、ドキソルビシンを含有した培地を除去し、PBSで細胞を洗浄後、さらに18時間細胞を培養した。その後の細胞の生存率を、cell counting kit-8(Dojindo)を用いて測定した。なお、細胞生存率は、ドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬で処理しなかった細胞の生存率を100%に換算したときの比として算出した。結果を図4に示す。製造例に係るガン治療薬は、ガン細胞の生存率を効果的に減少させた。一方、ドキシルは、ガン細胞の生存率をわずかにしか減少させなかった。
(実施例4)
1匹あたり30万個のColon26-Luc細胞(理化学研究所より供与されたColon26細胞にホタルルシフェラーゼを恒常発現させた細胞)をBulb/cマウスに腹腔内投与し、翌日に、ドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を、いずれもドキソルビシンの投与量が5mg/kgとなるよう、マウスに腹腔内投与した。Colon26-Luc細胞の投与から14日目に、マウスの腹膜及び腸を摘出し、Lysis buffer(0.05% Triton X-100及び2mmol/L EDTAを含むpH7.8の0.1mol/L Tris/HCl緩衝液)でホモジネートした。ホモジネート溶液を遠心し、上清のルシフェラーゼ活性を測定することで、マウスの腹腔内におけるColon26-Luc細胞の増殖を評価した。結果を図5に示す。製造例に係るガン治療薬は、マウスの腹腔内におけるColon26-Luc細胞の増殖を顕著に抑制した。一方、ドキシルは、マウスの腹腔内におけるColon26-Luc細胞の増殖を顕著に抑制しなかった。
1匹あたり30万個のColon26-Luc細胞(理化学研究所より供与されたColon26細胞にホタルルシフェラーゼを恒常発現させた細胞)をBulb/cマウスに腹腔内投与し、翌日に、ドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を、いずれもドキソルビシンの投与量が5mg/kgとなるよう、マウスに腹腔内投与した。Colon26-Luc細胞の投与から14日目に、マウスの腹膜及び腸を摘出し、Lysis buffer(0.05% Triton X-100及び2mmol/L EDTAを含むpH7.8の0.1mol/L Tris/HCl緩衝液)でホモジネートした。ホモジネート溶液を遠心し、上清のルシフェラーゼ活性を測定することで、マウスの腹腔内におけるColon26-Luc細胞の増殖を評価した。結果を図5に示す。製造例に係るガン治療薬は、マウスの腹腔内におけるColon26-Luc細胞の増殖を顕著に抑制した。一方、ドキシルは、マウスの腹腔内におけるColon26-Luc細胞の増殖を顕著に抑制しなかった。
(実施例5)
ddYマウスに1匹あたり30万個のエールリッヒ腹水ガン細胞を腹腔内投与し、翌日に、ドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を、いずれもドキソルビシンの投与量が5mg/kgとなるよう、マウスに腹腔内投与した。エールリッヒ腹水ガン細胞投与後のマウスの生存率を28日目まで測定した。結果を図6に示す。製造例に係るガン治療薬を投与されたマウスの生存率は、顕著に高かった。一方、ドキシルを投与されたマウスの生存率は、顕著に低かった。
ddYマウスに1匹あたり30万個のエールリッヒ腹水ガン細胞を腹腔内投与し、翌日に、ドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を、いずれもドキソルビシンの投与量が5mg/kgとなるよう、マウスに腹腔内投与した。エールリッヒ腹水ガン細胞投与後のマウスの生存率を28日目まで測定した。結果を図6に示す。製造例に係るガン治療薬を投与されたマウスの生存率は、顕著に高かった。一方、ドキシルを投与されたマウスの生存率は、顕著に低かった。
(実施例6)
Bulb/cマウスに、ドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を、いずれもドキソルビシンの投与量が5mg/kg、10mg/kg、又は20mg/kgとなるよう、投与した。投与後のマウスの生存率を14日目まで測定した。その結果、図7に示すように、製造例に係るガン治療薬は、投与量が多くてもマウスの生存率が高かった。一方、心毒性が強いことが知られているドキソルビシン単体は、投与量が多くなると、マウスの生存率が顕著に減少した。
Bulb/cマウスに、ドキソルビシン、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を、いずれもドキソルビシンの投与量が5mg/kg、10mg/kg、又は20mg/kgとなるよう、投与した。投与後のマウスの生存率を14日目まで測定した。その結果、図7に示すように、製造例に係るガン治療薬は、投与量が多くてもマウスの生存率が高かった。一方、心毒性が強いことが知られているドキソルビシン単体は、投与量が多くなると、マウスの生存率が顕著に減少した。
(実施例7)
ドキソルビシン単体、ドキシル、及び製造例に係るガン治療薬を250μg/mLとなるように調製し、透析膜内にドキソルビシン単体、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を500μLを加えて、100mLのPBS中で撹拌した。撹拌開始から1時間後、4時間後、及び24時間後にPBSを採取し、その蛍光強度からドキソルビシンの濃度を測定した。その結果を図8に示す。微粒子であるドキシルや製造例に係るガン治療薬は透析膜を通過できないため、PBS中に漏れ出てきたドキソルビシンは微粒子から放出されたドキソルビシンである。製造例に係るガン治療薬は、24時間後でも75%を超えるドキソルビシンを保持していた。
ドキソルビシン単体、ドキシル、及び製造例に係るガン治療薬を250μg/mLとなるように調製し、透析膜内にドキソルビシン単体、ドキシル、又は製造例に係るガン治療薬を500μLを加えて、100mLのPBS中で撹拌した。撹拌開始から1時間後、4時間後、及び24時間後にPBSを採取し、その蛍光強度からドキソルビシンの濃度を測定した。その結果を図8に示す。微粒子であるドキシルや製造例に係るガン治療薬は透析膜を通過できないため、PBS中に漏れ出てきたドキソルビシンは微粒子から放出されたドキソルビシンである。製造例に係るガン治療薬は、24時間後でも75%を超えるドキソルビシンを保持していた。
(実施例8)
DOTAP(日本油脂)、DOPC(日本油脂)、及びパクリタキセル(Carbosynth社)のそれぞれをクロロホルムに溶解し、DOTAP、DOPC、パクリタキセルのモル比が50:45:5となるように、これらをナスフラスコ中で混合した。その後、ロータリーエバポレーターでナスフラスコからクロロホルムを除去し、脂質薄膜を形成した。さらに、3時間、真空ポンプを用いてナスフラスコ内を陰圧条件下に保持し、ナスフラスコからクロロホルムを完全に除去した。
DOTAP(日本油脂)、DOPC(日本油脂)、及びパクリタキセル(Carbosynth社)のそれぞれをクロロホルムに溶解し、DOTAP、DOPC、パクリタキセルのモル比が50:45:5となるように、これらをナスフラスコ中で混合した。その後、ロータリーエバポレーターでナスフラスコからクロロホルムを除去し、脂質薄膜を形成した。さらに、3時間、真空ポンプを用いてナスフラスコ内を陰圧条件下に保持し、ナスフラスコからクロロホルムを完全に除去した。
脂質薄膜に5%グルコース溶液を加えて、65℃で30分間振盪し、バス型ソニケーターで10分間超音波処理を行った後、プローブ型ソニケーターでさらに3分間超音波処理して、パクリタキセルを内包するリポソームを調製し、さらに、パクリタキセルを内包するリポソームに質量比が1:1となるようにγ-PGAを加え、室温で30分間インキュベートすることで、ナノボール状のリポソームとγ-PGAの複合体を調製し、実施例8の製造例に係るガン治療薬とした。
Balb/cマウス由来の大腸ガン株細胞(Colon26、理化学研究所より供与)を用意し、Colon26細胞を1万個/ウェルで24ウェルプレートに播種し、24時間培養した。その後、Colon26細胞に、パクリタキセル単体又は実施例8の製造例に係るガン治療薬を、いずれもパクリタキセルの濃度が10μg/mLになるように添加し、24時間細胞を培養した。
24時間細胞を培養した後、細胞をPBSで洗浄し、溶解バッファー(0.05% Triton X-100及び2mmol/L EDTAを含むpH7.8の0.1mol/L Tris/HCl緩衝液)を用いて細胞を溶解し、HPLCを用いて、細胞溶解液中に含まれるパクリタキセルの量を定量的に測定した。さらに、細胞溶解液中のタンパク濃度を測定し、タンパク量あたりのパクリタキセルの取り込み量を算出した。結果を図9に示す。実施例8の製造例に係るガン治療薬を用いた場合、タンパク量あたりのパクリタキセルの取り込み量は顕著に多かった。一方、パクリタキセル単体を用いた場合、タンパク量あたりのパクリタキセルの取り込み量は顕著に少なかった。
96ウェルプレートにColon26細胞を5000個/ウェルで播種し、24時間培養した。その後、Colon26細胞にパクリタキセル単体、又は実施例8の製造例に係るガン治療薬を、いずれもパクリタキセルの濃度が10μg/mLになるように添加し、24時間細胞を培養した。その後の細胞の生存率を、cell counting kit-8(Dojindo)を用いて測定した。なお、細胞生存率は、パクリタキセル単体、又は実施例8の製造例に係るガン治療薬で処理しなかった細胞の生存率を100%に換算したときの比として算出した。結果を図10に示す。実施例8の製造例に係るガン治療薬は、パクリタキセル単体と比較して、ガン細胞の生存率を効果的に減少させた。
Claims (19)
- ガン治療薬であって、
有効量の疎水性抗ガン剤と、
前記疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームと、
前記カチオン性リポソームを内包するγ-ポリグルタミン酸又はその塩と、
を含み、
前記カチオン性リポソームが、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、
を含む、
ガン治療薬。 - 前記リン脂質が中性リン脂質である、請求項1に記載のガン治療薬。
- 前記リン脂質が不飽和リン脂質である、請求項1又は2に記載のガン治療薬。
- 前記リン脂質が、1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリンである、請求項1から3のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- 前記カチオン性脂質がN-[1-(2,3-ジオレオイロキシ)プロピル]-N,N,N-トリメチルアンモニウムである、請求項4に記載のガン治療薬。
- 前記カチオン性リポソームにおける前記リン脂質又はその塩のモル比が、10%以上90%以下である、請求項1から5のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- 前記カチオン性リポソームにおける前記カチオン性脂質又はその塩のモル比が、10%以上90%以下である、請求項1から6のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- 前記リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、のモル比が、10:90から90:10である、請求項1から7のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- 前記カチオン性リポソームの正電荷を有する官能基と、前記γ-ポリグルタミン酸又はその塩の負電荷を有する官能基と、のモル比が、1:1から1:100である、請求項1から8のいずれかに記載のガン治療薬。
- 前記γ-ポリグルタミン酸又はその塩の分子量が200万以下である、請求項1から9のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- 実質的に非荷電の表面電荷又は負の表面電荷を有する、請求項1から10のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- 前記疎水性抗ガン剤が、アントラサイクリン系抗生物質である、請求項1から11のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- 前記疎水性抗ガン剤が、ドキソルビシン又はその塩である、請求項1から12のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- 前記疎水性抗ガン剤が、タキサン系抗ガン剤である、請求項1から11のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- 前記疎水性抗ガン剤が、パクリタキセル又はその塩である、請求項1から11及び14のいずれか1項に記載のガン治療薬。
- ガン治療薬であって、
有効量の疎水性抗ガン剤と、
前記疎水性抗ガン剤を内包するカチオン性リポソームと、
前記カチオン性リポソームを内包するγ-ポリグルタミン酸又はその塩と、
を含み、
前記カチオン性リポソームが、リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、
を含み、
前記リン脂質が、1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリンであり、
前記カチオン性脂質がN-[1-(2,3-ジオレオイロキシ)プロピル]-N,N,N-トリメチルアンモニウムである、
ガン治療薬。 - 前記リン脂質又はその塩と、カチオン性脂質又はその塩と、のモル比が、10:90から90:10である、請求項16に記載のガン治療薬。
- 前記疎水性抗ガン剤が、ドキソルビシン又はその塩である、請求項16又は17に記載のガン治療薬。
- 前記疎水性抗ガン剤が、パクリタキセル又はその塩である、請求項16又は17に記載のガン治療薬。
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