WO2021085388A1 - 排気ガス分解システム、排気ガスの分解方法、および有機化合物の生産方法 - Google Patents

排気ガス分解システム、排気ガスの分解方法、および有機化合物の生産方法 Download PDF

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WO2021085388A1
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sheet
microbial
microorganism
microorganisms
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PCT/JP2020/040134
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齊藤佳之
福岡徹也
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テルモ株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to an exhaust gas decomposition system for exhaust gas discharged from a medical device manufacturing factory, a method for decomposing exhaust gas, and a method for producing an organic compound using exhaust gas as a raw material.
  • Patent Document 1 discloses a method for reducing CO 2 emissions by microorganisms, but it reduces the emissions of high-concentration EO and nitrogen oxides that kill microorganisms, or CO 2 that has already been emitted into the atmosphere. Cannot be reduced.
  • the EO removing apparatus of Patent Document 2 uses sulfuric acid to decompose EO to produce ethylene glycol (EG), but if a large amount of EO is removed, sulfuric acid replacement and EG treatment are required, and the decomposition rate is low. ..
  • the catalytic EO removing device of Patent Document 3 does not decompose EO when the exhaust gas containing an extremely low concentration of EO is decomposed, if the EO molecules aerated through the solid catalyst pass through without contacting the solid catalyst. For this reason, if the catalyst is ventilated many times or the catalyst is made porous in order to further reduce the EO emission amount, the catalyst is likely to be deteriorated, and the cost such as replacement of the catalyst is high.
  • the exhaust gas after removing EO may contain EO, and as shown in Non-Patent Document 1, long-term exposure to extremely low concentration of EO causes carcinogenesis of residents around the medical device manufacturing factory. It is said that there is a risk.
  • the exhaust gas decomposition system includes a microorganism preparation device for preparing the microorganism for culturing the microorganism, at least water, potassium, phosphorus, nitrogen, inorganic salts and the like used for culturing the microorganism.
  • a raw material preparation device for preparing a raw material containing a gas for supplying a raw material to the microorganism and culturing the microorganism, an exhaust gas decomposition device for decomposing exhaust gas with the microorganism or microbial fragments obtained by crushing the microorganism, and an exhaust gas decomposition device.
  • a separation device that separates at least a part of the exhaust gas, the microorganism, the microbial fragment, an organic compound synthesized by the microorganism, and the raw material, and the exhaust gas, the microorganism, and the microorganism separated by the separation device. It has a recovery device for recovering at least a part of debris, the organic compound, and the raw material, the microbial culture device has a microbial culture container, and the microbial culture container has a first sheet and a second sheet. And, which has a pillar portion between the first sheet and the second sheet, and a microbial culture solution supply port which communicates between the first sheet and the second sheet. It is characterized by having.
  • a third sheet having a flat surface portion, a bottom surface portion, and a plurality of convex portions protruding from the flat surface portion is arranged between the first sheet and the second sheet.
  • the pillar portion is formed by the top portion of the convex portion in close contact with the first sheet and the bottom surface portion of the third sheet in close contact with the second sheet.
  • the pillar portion is hollow, has a communication hole surrounded by the first sheet, the second sheet, and the pillar portion, and the microbial culture solution supply port communicates with the communication hole.
  • the exhaust gas according to (1) above wherein the first sheet and the second sheet are in direct contact with each other at the end of the microbial culture container, or the exhaust gas has a contact portion in which the second sheet is in close contact with the third sheet. It may be a disassembly system.
  • the exhaust gas decomposition system according to (1) above which has an exhaust gas supply port in the microorganism culture device and the exhaust gas decomposition device.
  • the method for decomposing exhaust gas according to the present invention includes a microorganism preparation step for preparing the microorganism for culturing the microorganism, and at least water, potassium, phosphorus, nitrogen, and inorganic salts used for culturing the microorganism.
  • a decomposition method comprising supplying an exhaust gas at any of the steps and having an exhaust gas decomposition step. (5) Even if the exhaust gas is the sterilization gas exhausted from the gas sterilization step of the medical device and the sterilization gas is supplied to the exhaust gas decomposition step, the decomposition method according to (4) above. Good.
  • the decomposition method according to (4) above wherein the exhaust gas contains either carbon dioxide or ethylene oxide or a mixture of carbon dioxide and ethylene oxide.
  • the decomposition method according to (4) above may be used, in which the recovered ethylene oxide is used in another exhaust gas decomposition step.
  • the method for producing an organic compound using the exhaust gas as a raw material according to the present invention is a microbial preparation step of preparing a microorganism capable of producing the organic compound, at least water used for producing the organic compound or growing the organic compound.
  • the production method according to (9) above, which has an exhaust gas decomposition step between the culture step and the separation step, may be used.
  • the microorganisms are Botryococcus, Nannochlorocyps, Aurantiochytrium, Scenedesmus, Chlorella. vulgaris, Chlorella.
  • the production method according to (9) above, which is at least one of pyrenoidosa, Dunaliella, Spirulina, Euglena, and Hematococcus, may be used.
  • CO 2 which is an exhaust gas produced by culturing an autotrophic microorganism using carbon dioxide, which is an exhaust gas, as a raw material, is produced from sugar, amino acids, or cell tissue. Decompose to use as a raw material.
  • EO is decomposed by an addition reaction by reacting EO with a microorganism having a functional group highly reactive with EO such as an amino group, a carboxyl group or a hydroxyl group contained in the microorganism, or a microbial fragment obtained by crushing the microorganism.
  • a microorganism having a functional group highly reactive with EO such as an amino group, a carboxyl group or a hydroxyl group contained in the microorganism, or a microbial fragment obtained by crushing the microorganism.
  • microorganisms that synthesize hydrocarbons or fats and oils from exhaust gas
  • organic compounds synthesized by the microorganisms, especially fats and oils are produced, and the use of fossil fuels such as petroleum is reduced to reduce CO 2 emissions or CO 2 emissions. It is possible to reduce CO 2 in the atmosphere that has already been released.
  • FIG. 1 is a flow chart of the present invention.
  • FIG. 2 is an enlarged cross-sectional view of a microbial culture container of the exhaust gas decomposition system according to the present invention.
  • FIG. 3 is a plan view of a microbial culture container of the exhaust gas decomposition system according to the present invention.
  • FIG. 4 is a partial cross-sectional view of a modified example of the microbial culture container of the exhaust gas decomposition system according to the present invention.
  • FIG. 5 is a plan view and a cross-sectional view of a connection portion of a modified example of the microbial culture container.
  • FIG. 6 is a plan view of a modified example of the microbial culture container of the exhaust gas decomposition system according to the present invention.
  • FIG. 1 is a flow chart of the present invention.
  • FIG. 2 is an enlarged cross-sectional view of a microbial culture container of the exhaust gas decomposition system according to the present invention.
  • FIG. 3 is a plan view
  • FIG. 7 is a plan view of a modified example of the microbial culture container provided with the receiver of the leaked culture solution in the exhaust gas decomposition system according to the present invention.
  • FIG. 8 is a cross-sectional view taken along the line CC'of FIG.
  • FIG. 9 is a cross-sectional view taken along the line DD'of FIG.
  • FIG. 10 is a cross-sectional view taken along the line EE'of FIG.
  • FIG. 11 is a cross-sectional view taken along the line FF'of FIG.
  • FIG. 12 is a cross-sectional view taken along the line GG'of FIG.
  • FIG. 13 is a flow chart of an exhaust gas decomposition system according to the first embodiment of the present invention.
  • FIG. 8 is a cross-sectional view taken along the line CC'of FIG.
  • FIG. 9 is a cross-sectional view taken along the line DD'of FIG.
  • FIG. 10 is a cross-sectional view taken along the line EE'of
  • FIG. 14 is a flow chart of an exhaust gas decomposition system according to a second embodiment of the present invention.
  • FIG. 15 is a flow chart of an exhaust gas decomposition system according to a third embodiment of the present invention.
  • FIG. 16 is a plan view of the centrifugal separator of the exhaust gas decomposition system according to the present invention.
  • FIG. 17 is an enlarged partial cross-sectional view of a plurality of stacked microbial culture containers of the exhaust gas decomposition system according to the present invention.
  • FIG. 18 is a schematic view of an exhaust gas decomposition system according to the present invention.
  • the exhaust gas is reacted with a raw material, or the microorganisms grown by culturing are reacted with the exhaust gas to decompose the exhaust gas to reduce the exhaust gas emission, and can be used for storage or fuel.
  • the purpose is to synthesize and produce various oils and fats and organic compounds that serve as nutrients for microorganisms.
  • the exhaust gas decomposition system is a microbial preparation device that prepares for culturing the obtained microorganisms or trace amounts of microorganisms to some extent or removing unintended microorganisms in advance, and at least water, potassium, which are necessary for culturing the microorganisms.
  • Raw material preparation device for preparing raw materials containing phosphorus, nitrogen, inorganic salts and gas
  • microbial culture device for culturing microorganisms using exhaust gas as a raw material
  • device for synthesizing organic compounds, organic compounds and microorganisms or at least water, potassium
  • It has a separation device that separates raw materials containing phosphorus, nitrogen, inorganic salts and gas, and a recovery device that recovers organic compounds.
  • the method for decomposing the exhaust gas is a microbial preparation step for preparing a microorganism to be cultured, and a raw material preparation step for preparing a raw material containing at least water, potassium, phosphorus, nitrogen, inorganic salts and gas necessary for culturing.
  • the steps of supplying the exhaust gas to the system include a microbial preparation step, a raw material preparation step, a culture step, an organic compound synthesis step, a separation step and a recovery step, and one or more steps or a plurality of steps between each step. You may go between.
  • it may have an organic compound synthesis step, an exhaust gas supply step, and then an exhaust gas decomposition step.
  • an organic compound synthesis step When the culture concentration of the microorganism is low and the discharged EO is directly decomposed, the EO is decomposed by the microbial activity stop step. can do.
  • the exhaust gas may be supplied to the microbial preparation step, the raw material preparation step and the culture step.
  • microorganisms are crushed by chemical methods such as UV irradiation and chemicals, and then centrifuged. Separates water-soluble organic compounds and microbial debris.
  • the water-soluble organic compound is used as it is, or after sterilization or decomposition by UV or the like, for nutrition of other heterotrophic microorganisms, supplementary nutrition of autotrophic microorganisms, or cultivation of the same type of microorganisms.
  • the EO may be decomposed by reacting with the microorganism itself.
  • the microbial debris is dispersed in water and brought into contact with EO, which is an exhaust gas, and the EO is decomposed by an addition reaction with the amino group, carboxyl group, hydroxyl group or thiol group of the microbial debris.
  • ethylene glycol which is synthesized by decomposing EO by the reaction of water, does not mix with the organic compounds that feed the microorganisms, so it is preferable for microorganisms that cannot metabolize ethylene glycol.
  • the microbial culture solution having a high microbial concentration has a large amount of EO that can be decomposed, in order to reduce the risk of EO leaking out of the exhaust gas decomposition system, it is not necessary to provide a step of contacting fats and oils among organic compounds with EO. , EO may be degraded by microbial debris.
  • microbial debris contains cellulose and proteins, which are decomposed into glucose, amino acids or peptone that can be used by microorganisms by enzymes such as cellulase and peptase, and are used as nutrients for microorganisms, and cannot be used for nutrition and nutrition of microorganisms.
  • the organic compound of the residue may be separated and the organic compound of the residue may be reacted with EO.
  • a small amount of EO for example, an extremely low concentration that does not meet the emission standard for the atmosphere, passes through the EO decomposition device without contacting the solid surface of the solid catalyst, so that the amount of EO emitted into the atmosphere does not become zero. , The catalyst needs to be replaced regularly.
  • the EO discharged after sterilization of the medical device is decomposed by the existing EO decomposition device. It may be used for decomposing a trace amount of EO discharged.
  • the existing EO decomposition device decomposes EO by contacting it with a solid catalyst heated to a relatively low temperature of about 100 ° C. to 300 ° C., or when the EO is directly burned by a linear combustion method, it is discharged to the atmosphere. Combustion of a small amount of EO that does not meet the standard at a high temperature of 1000 ° C. or higher may increase fuel consumption , emit CO 2 or generate nitrogen oxides, and increase exhaust gas.
  • the method of reacting the microorganism with EO according to the present invention does not require fuel by catalyst replacement or direct combustion, and even if the EO is below the detection limit, until it becomes EG or another organic compound. It is superior to conventional EO decomposition systems in that it is not discharged. Therefore, it is more preferable to carry out the method of reacting the microorganism with EO according to the present invention as the final step decomposition method alone or in combination with the conventional EO decomposition method, because the amount of EO emitted becomes substantially zero.
  • the EO can be decomposed by directly adding the EO and the microorganism to decompose the EO, so that the amount of EO emitted can be reduced to substantially zero without installing the above-mentioned catalytic EO decomposition device. It is possible.
  • exhaust gas emitted by other sterilization methods such as a very small amount of monomer gas generated from plastic during gamma ray sterilization or electron beam sterilization, and odorous components generated by high-pressure steam sterilization, are similarly reacted with microorganisms. It may be disassembled.
  • the exhaust gas may be a reactive gas such as formaldehyde, a substance metabolized by a microorganism such as EG, a volatile organic compound, or a Vapor Organic Compound (VOC).
  • a reactive gas such as formaldehyde
  • a substance metabolized by a microorganism such as EG
  • a volatile organic compound such as a volatile organic compound
  • VOC Vapor Organic Compound
  • substantially zero means that it is preferably zero below the detection limit of a gas chromatography analyzer or a gas detector.
  • the exhaust gas concentration is below the detection limit, for example, EO is arbitrarily dissolved in water, so that the gas from which the exhaust gas finally released into the atmosphere has been removed is ventilated to the water tank for a long period of time, for example, 30 days or more. Annually, the amount of EO or EG remaining in the water tank is measured.
  • the discharged EO amount may be the amount of EO in the water tank or the presence or absence of EO.
  • the CO 2 and EO contained in the air in the system after the exhaust gas is removed meet the exhaust environmental standard or become substantially zero, the air in the system may be released to the atmosphere.
  • CO 2 generated by combustion of fuel and waste is considered to be a cause of global warming, so autotrophic microorganisms decompose CO 2 from water as a raw material by photosynthesis, such as glucose, fatty acids, and amino acids. Synthesize organic compounds.
  • the exhaust gas decomposition system or decomposition method according to the present invention has the following steps.
  • the microorganisms newly increased by cell division in the microbial deposit, collection or culturing step, or the microorganisms separated immediately after division after culturing in a microbial culture device can be separated and recovered for use.
  • the microorganism obtained as a step of preparing the microorganism may be grown to some extent under conditions suitable for culturing the microorganism according to a conventional method and used.
  • Microorganism preparation devices include known culturing devices, separation devices that partially separate the grown microorganisms that have been cultivated in the previous batch, pipes and pumps that supply the next batch, and to prevent contamination of unintended microorganisms.
  • a device for supplying sodium hypochlorite having a concentration that does not kill the target microorganism and kills only the non-target microorganism may be used.
  • the raw material preparation step is to prepare at least water, potassium (K), phosphorus (P), nitrogen (N), inorganic salts and necessary gas, and trace elements necessary for culture, or sugars, polysaccharides, amino acids,
  • gas when gas is used as a raw material, atmospheric CO 2, O 2 , steam, nitrogen oxides, and sulfur oxides may be used, and CO 2, EO, which is exhaust gas in the raw material preparation step or the raw material preparation device, may be used.
  • CO 2, EO which is exhaust gas in the raw material preparation step or the raw material preparation device, may be used.
  • Nitrogen oxide, sulfur oxide or VOC may be directly supplied or supplied as an aqueous solution.
  • the exhaust gas decomposition system or decomposition method may include a CO 2 or O 2 supply step, a sterilization step with a UV germicidal lamp for removing unintended microorganisms, and the like.
  • the sterilization step it is preferable to sterilize water or other sterilizable raw materials in advance in order to prevent the growth of unintended microorganisms, and a known sterilization method or sterilization method may be used as the sterilization method.
  • the sterilization method may be ozone sterilization or chlorine sterilization in addition to UV irradiation sterilization as long as it does not suppress the culture of microorganisms, but UV sterilization is preferable to eliminate the degassing step.
  • UV sterilization for example, a UV sterilization lamp or LED-UV whose main component is a so-called UV-C wavelength of 100 to 280 nm, preferably a wavelength of 254 nm, is irradiated from the outside of a tank of water or seawater, which is a raw material before culturing microorganisms. Alternatively, it may be placed inside a tank and irradiated, or a transparent or translucent microbial incubator and its piping may be sterilized by UV irradiation.
  • a rainwater basin that receives rainwater when using rainwater
  • a container and piping that filters and stores rainwater that has accumulated on the upper surface of the microbial culture container, a pump that pumps seawater when using seawater, and a UV sterilization lamp.
  • Ozone generator sodium hypochlorite supply device, and piping
  • air supply device that supplies CO 2 recovered in the air or from the boiler, accompanying piping and filters, and a dissolution tank that dissolves raw materials to prepare an aqueous solution.
  • a stirrer, a concentration sensor, a heater for heating or cooling to a temperature suitable for culturing, a cooling device, a heat exchanger, or the like may be provided.
  • the exhaust gas decomposition system or decomposition method involves adding microorganisms to an aqueous solution prepared by adjusting the raw materials to a composition, concentration, temperature, O 2 concentration, and CO 2 concentration suitable for culturing, and culturing the microorganisms under conditions suitable for culturing. Do.
  • the microbial culture device may be a known microbial culture tank or an open pond method, but one that prevents contamination of unintended microorganisms and that easily renews the gas-liquid interface with CO 2 supplied as exhaust gas, or is high. Even if the microbial culture solution has a high concentration, it is preferable that the microbial culture container has a small thickness so that photosynthesis is possible, or that light can be transmitted even when laminated.
  • the microbial culture container is provided with a microorganism, a raw material culture solution supply port, and an exhaust gas supply port, and after culturing the microorganism, a pipe or a pump that supplies the culture solution, the synthesized organic compound, the residual raw material, and the exhaust gas to the separation step.
  • a pipe or a pump may be provided in which the culture broth discharged from the microbial culture vessel is resupplied to the microbial culture vessel and circulated.
  • the microorganisms grown at the same time as the culture or by the culture perform a synthesis step of synthesizing an organic compound.
  • a predetermined concentration or a predetermined amount of organic compound synthesis is reached, the culture and / or organic compound synthesis step is completed.
  • Organic compounds synthesized by microorganisms include glucose synthesized by photosynthesis by independent nutritional microorganisms, cellulose, hemicellulose, polyphenols, amino acids, peptones, proteins, phospholipids, DNA, oils and fats, and other metabolites, and cell membranes. , Cell wall or cytoplasm, etc. may be included.
  • Fatty acids such as docosahexaenoic acid (DHA) and eicosapentaenoic acid (EPA) as fats and oils, fatty acid esters and phosphoric acid esters, and terpenes such as botriocossen (C 34 H 58 ) and squalane (C 30 H 50) as hydrocarbons.
  • acids such as aldehydes, ketones, acetic acids, citric acids and terps produced by metabolism, amines and thiols.
  • a microbial activity stop step may be provided in which the activity of the microorganism is stopped by reacting with the microorganism and EO which is an exhaust gas, and EO addition in which DNA or the like reacts with EO as the organic compound to be synthesized may be provided. It may also contain microbial debris or EO-added microbial debris in which the substance, or microbial debris, has been crushed.
  • the organic compound synthesizer may be provided with an exhaust gas decomposition device, and when the organic compound cannot be used as it is as a nutrient by microorganisms, an enzymatic decomposition container for enzymatically decomposing cellulose or protein, and an enzyme inactivation or enzyme and organic compound. It may be provided with an enzyme separation device for separating the above.
  • the separation step in addition to separating the synthesized organic compound from the microorganism, separation of the organic compound and water, unreacted exhaust gas such as EO and CO 2 , other VOC, or gas-liquid separation of O 2 and water, exhaust gas
  • unreacted exhaust gas such as EO and CO 2 , other VOC, or gas-liquid separation of O 2 and water
  • exhaust gas In addition to separation based on the difference in boiling point and solubility in water, separation of water-soluble organic compounds and microbial fragments that are insoluble in water by crushing microorganisms, separation and recovery of bead mills used for crushing, and decomposition of microbial fragments by enzymes.
  • the separation device is formed by a batch type centrifuge, a continuous type centrifuge, a gas-liquid separator, a distillation column, a settling tank, a filter or a combination thereof and a control device, an accompanying pipe, a pump, a vacuum pump, and the like.
  • a continuous centrifuge microbial separator is preferable for separating microorganisms and organic compounds without stopping the activity of the microorganisms.
  • the separated organic compound is recovered by the recovery step.
  • the recovery device can directly store organic compounds as a storage tank for storing separated organic compounds, a tank for storing water-soluble organic compounds separated by crushing microorganisms, or as a supplement for heterotrophic microorganisms or autotrophic microorganisms. It may be provided with an aggregator for recovering water and exhaust gas, a heat exchanger for recovering and using exhaust heat, and the like, which are formed by a supply device for supplying to a microbial culture container.
  • the recovered organic compounds may be used as fuel for heat sources and power sources in the system, and CO 2 and water generated by combustion are recovered. Can be used for the synthesis of organic compounds in the system.
  • the heat of combustion generated by the combustion of organic compounds is recovered by heat exchangers along with the exhaust heat generated by air conditioning and machine cooling water in medical equipment manufacturing plants and hospitals, and is used for hot water such as cleaning, air conditioning, and microorganisms. It may be used as a heat source at night or in winter because of the cultivation of.
  • oils and fats and hydrocarbons may be produced and sold or stored as products.
  • Specific exhaust gas refers to gas generated in a boiler as a heat source, CO 2 generated by burning crude oil or coal, sterilization gas used for sterilization of medical equipment, etc., and the gas sterilization step of medical equipment. And the exhaust gas exhausted in the exhaust step after the gas sterilization step is supplied to the microbial culture step or the exhaust gas decomposition step with the microbial debris.
  • Sterilizing gas is not particularly limited as long as it can be used as a sterilization or gas for sterilization, preferably, ethylene oxide (EO), propylene oxide, ozone (O 3), formaldehyde (HCHO), nitrogen, such as nitrogen dioxide oxides, chlorine, hydrogen peroxide, addition of peracetic acid, a CO 2 or the like used in the supercritical fluid CO 2 disinfection, aqueous sterilizing gas melted into water or the generation of chlorine as sodium hypochlorite, The source aqueous solution, hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) water, more preferably EO, a mixture of EO and CO 2 or a nitrogen oxide containing NO 2 , or one or more selected from these gases. Is a mixture of.
  • EO is highly reactive, and by addition reaction (alkylation) with amino groups, hydroxyl groups, carboxyl groups and thiol groups of microorganisms, it inhibits cell division of microorganisms or kills cells and stops the activity of microorganisms.
  • 100% EO gas or a mixed gas with CO 2 is often used to prevent combustion.
  • EO has a boiling point of 11 ° C., is highly soluble in water, and reacts with water to form ethylene glycol (EG).
  • EG ethylene glycol
  • the EO in the exhaust gas used to sterilize medical devices in medical device manufacturing plants was supplied after the synthesis step in which the microorganisms synthesized the organic compounds to stop the activity of the microorganisms, or the cells were crushed to separate the organic compounds. Supply for addition reaction with microbial debris.
  • the unreacted EO is separated and recovered by distillation or the like, supplied to another exhaust gas decomposition step or another microbial activity stop device, and circulated in the system until it becomes an EG or an organic compound. It is either not discharged outside the exhaust gas decomposition system or is discharged as virtually zero.
  • CO 2 becomes exhaust gas after combustion of fossil fuel or mixing with EO to prevent explosion and using it for sterilization, or after sterilization or sterilization with supercritical fluid CO 2.
  • Independent vegetative microorganisms that synthesize organic compounds from CO 2 by photosynthesis or grow microorganisms are added to the raw materials at the time of culturing microorganisms in the raw material preparation step, or CO 2 is supplied to the microbial culture vessel.
  • Nitrogen oxides such as nitrogen dioxide (NO 2 ) are used for sterilization of medical equipment, when mixed with EO to prevent combustion, and when burning natural gas, crude oil or coal for heat source boilers and power generation. It is produced by the oxidation of nitrogen in the atmosphere.
  • NO 2 nitrogen dioxide
  • Nitrogen oxides are supplied to the raw material preparation device in the raw material preparation step as a nitrogen source necessary for the growth of microorganisms, or in the exhaust gas decomposition step after the organic compound synthesis step in order to stop the activity of microorganisms like EO. , May be supplied to the exhaust gas decomposition container.
  • Chlorine or sodium hypochlorite which generates chlorine, is also introduced into the water collected by separating the organic compound from microorganisms or microbial fragments after the step of synthesizing the organic compound, and kills unintended microorganisms that hinder the growth of microorganisms. It may be supplied at a concentration that does not kill the target microorganism.
  • sodium hypochlorite or chlorine may be synthesized and used from NaCl recovered from seawater as a raw material.
  • Ozone is used for sterilization or sterilization and is generated by irradiating oxygen in the air with UV-C, but it can also be used to stop the activity of microorganisms and decompose EO itself, and it is rapidly decomposed into O 2. Therefore, O 2 after the decomposition may be used as O 2.
  • microorganisms are microorganisms that can be cultivated in water, but the environment in which aquatic microorganisms can be cultivated is not limited to fresh water or seawater, and organic compounds that feed themselves by photosynthesis by supplying water or CO 2 are produced. It may be a heterotrophic microorganism that can be synthesized or a heterotrophic microorganism that is cultured by feeding an organic compound that serves as a nutrient.
  • the isotrophic microorganism is not particularly limited as long as it is a microorganism capable of photosynthesizing by supplying water or CO 2 , but for example, algae such as blue algae, green algae, diatomaceae, red algae, and brown algae are preferable, and they are used for storage or fuel.
  • Photosynthetic independent nutrient microalgae such as squid and Botryococcus are preferable, and fats and oils of 5% or more, more preferably 20% or more of the dry weight of the algae are preferable.
  • Botryococcus braoonies are more preferable, and Botryococcus brownie, which synthesizes fats and oils of 60% or more of the dry weight and releases the fats and oils to the outside of the microorganism, is particularly preferable.
  • Nannochlorocyps which can be cultured in seawater, or in fresh water, which has substantially zero NaCl concentration or a lower NaCl concentration than seawater.
  • Chlorella may be used, and in fresh water culture, Chlorella Vulgaris (Chlorella bulgaris), Chlorella pyrenoidosa (Chlorella pyrenoidosa), or Ikadamo (Scenedesmus), Donariella (Dunalyra) ), Haematococcus, etc., one type may be cultivated in a microbial culture vessel, or a mixture of many types may be cultivated. These microorganisms can be cultivated between seawater and freshwater having a NaCl concentration lower than that of seawater, even at a NaCl concentration called brackish water.
  • Nannochlorocyps and chlorella have a high growth rate and decompose CO 2 which is an exhaust gas for growth and synthesis of organic compounds.
  • EO is decomposed by additional reaction with amino groups, carboxyl groups, hydroxyl groups or thiol groups such as DNA of chlorellas and cell membranes to stop the activity of microorganisms and consume organic compounds.
  • the amount of organic compounds recovered may be increased by suppressing the amount of organic compounds, and the inactive microorganisms are crushed with a ball mill or the like, and then the nutrients of dependent microorganisms such as glucose, polysaccharides, amino acids, peptones, and proteins contained in the cytoplasm are supplied. The organic compound that becomes is separated.
  • the heterotrophic microorganism is not particularly limited, but for example, as a chemically synthesized heterotroph microorganism CHMO, a microorganism that produces fats and oils by feeding nutrients such as sugars and amino acids is preferable, and yeasts, filamentous fungi, and the like.
  • Labyrinthulas are preferable, and more preferable is Aurantiochytrium, which is a labyrinthula among eukaryotes, and Aurantiochytrium 18W-13a, which has a high growth rate and a hydrocarbon content of more than 20% as fats and oils. Is particularly preferable.
  • PAMA may promote culturing using sunlight or a light source, CO 2 , O 2 or raw materials may be additionally supplied as needed, and a nutrient source such as sugar, amino acid or peptone may be used.
  • the organic compound may be given, artificial light as well as sunlight may be given, or the water temperature during culturing may be controlled to a temperature suitable for growth by a heat exchanger in order to promote the growth of microorganisms. Good.
  • the liquid may be sent from the microbial culture vessel to the heat exchanger, excess heat may be removed by the heat exchanger, separated and circulated so as to be returned to the microbial culture vessel again, or the supplied exhaust gas may be heated by the heat exchanger or It may be cooled and supplied to the microbial culture solution to control the temperature of the microbial culture solution to be raised or lowered.
  • the temperature suitable for culturing varies depending on the type of microorganism, but is, for example, 5 ° C. or higher and 50 ° C. or lower, preferably 20 ° C. or higher and 35 ° C. or lower, and more preferably Nannochlorocyps, chlorellas, Aurantiochytrium.
  • the temperature suitable for culturing Botryococcus is 25 ° C, and the temperature suitable for culturing Botryococcus is 30 ° C.
  • the culture temperature may be adjusted by the amount of exhaust gas that needs to be decomposed such as EO, the amount of CO 2 exhaust generated by burning the fuel used as the heat source necessary for maintaining the temperature, and the amount of organic compound synthesized.
  • the temperature may be lowered at night or at night, but since the microorganisms may die during the daytime in summer, it is preferable that the maximum temperature of the culture solution does not exceed 35 ° C, and the culture temperature is suitable for culturing the microorganisms. It is more preferable to control the temperature in the range of ⁇ 2 ° C.
  • the culture solution including the inside of the microbial culture container may be heated at night or in winter by using the exhaust heat in the factory or the heat storage accumulated in the building or the house around the factory in the daytime.
  • the culture temperature may be measured by a plurality of temperature sensors installed in the microbial incubator, or may be the temperature of the culture broth at the inlet and outlet of the incubator, and the surface temperature of the microbial culture vessel is measured by a non-contact infrared temperature sensor.
  • the temperature may be the same as the temperature measured by the temperature sensor attached to the surface of the microbial culture vessel.
  • the microbial culturing step for culturing microorganisms may be carried out in a glass or transparent resin container through which light is transmitted, or outdoors such as the open pond method, but the three layers shown in FIGS. Bubble wrap 10 may be used.
  • the three-layer bubble wrap 10 may be integrally molded, or may be formed by adhering or fusing the convex portion of the sheet and the two-layer bubble wrap, and the first sheet 1 and the second sheet may be formed. 2 and a microbial culture solution supply port 21 having a pillar portion 4 between the first sheet 1 and the second sheet 2 and communicating between the first sheet 1 and the second sheet 2. Used as a microbial culture container 20.
  • the pillar portion 4 has a flat surface portion 7 and a bottom surface portion, and a plurality of convex portions 6 protruding from the flat surface portion 7 between the first sheet 1 and the second sheet 2.
  • the sheet 3 is arranged, and the top 8 of the convex portion 6 of the pillar portion 4 is a pillar portion 4 formed in close contact with the first sheet 1, and the pillar portion 4 is hollow.
  • the bottom surface portion is a portion that is arranged on the back surface side of the flat surface portion 7 and is in close contact with the second sheet 2.
  • the pillar portion sets 4A arranged at equal intervals in a row and the adjacent pillar portions 4B are arranged so as to alternately shift the center of each pillar portion 4.
  • the culture solution does not travel straight between the column portions 4 and collides with the column portion 4, so that the culture solution and the exhaust gas are agitated and come into contact with each other efficiently even without a stirring blade or the like.
  • the microbial culture container 20 has a communication hole 5 that communicates with the microbial culture liquid supply port 21, and the first sheet 1 and the second sheet 2 are in close contact with each other at the end of the microbial culture container 20 and are heat-sealed. It has a landing portion 13.
  • the close contact portion 12 may be in contact with each other, and may be separable as long as it can maintain adhesion, a sealing material, or airtightness.
  • the contact portion 13 may be formed by directly contacting the first sheet 1 and the second sheet 2, or the first sheet 1 and the second sheet 2 are formed via the third sheet 3. It may be formed in close contact indirectly.
  • the fused portion 13 is a portion in which the adhesive portion 12 is melted to increase the strength, and is a portion where separation is impossible or difficult, and water or gas does not easily leak.
  • heat fusion or ultrasonic fusion is preferable, but adhesion with an adhesive may also be used.
  • the microbial culture container 20 shown in FIG. 3 has a three-layer bubble wrap material 10 and a microbial supply port 21, and is between the first sheet 1, the first sheet 1 and the second sheet 2 of the microbial culture container 20. It has a pillar portion 4.
  • the first sheet 1, the second sheet 2 and the microbial culture solution supply port 21 are in close contact with each other at the end of the short side of the substantially rectangular microbial culture container 20, and the close contact portion suppresses leakage of the culture solution.
  • a microbial culture solution supply port 21 having a fusion portion 13 of a first sheet 1 and a second sheet 2 having a substantially triangular shape of 12 and surrounded by the first sheet 1, the second sheet 2 and the pillar portion 4.
  • the pillar portion 4 has a communication hole 5 communicating with the microbial culture vessel 20 and a fusion portion 13 in which the first sheet 1 and the second sheet 2 are fused to each other at the end of the long side of the microbial culture vessel 20. It is formed of a third sheet 3 having a convex portion 6 and becomes hollow so that bubbles remain.
  • the first sheet 1 and the second sheet 2 are indirectly fused through the third sheet 3, but may be directly fused without passing through the third sheet 3.
  • the exhaust gas supply port 23 for supplying carbon dioxide as the exhaust gas is arranged in close contact with the first sheet 1 and the second sheet 2 on the other short side of the microbial culture container 20.
  • the microbial culture solution supply port 21 and the exhaust gas supply port 23 may be arranged close to each other, may be arranged in plurality, or may be arranged to face each other in the microbial culture container 20 as occupied in FIG. ..
  • the close contact portion 12 may be adhered to, heat-sealed, or sealed with the microbial culture solution supply port 21 or the exhaust gas supply port 23 to improve the airtightness.
  • the microbial culture solution supply port 21 and the exhaust gas supply port 23 are opposed to each other, a height difference is provided between the microbial culture solution supply port 21 and the exhaust gas supply port 23, and the microbial culture solution supply port 21 is arranged at a higher position.
  • the microbial culture solution naturally falls, while the exhaust gas supplied from the exhaust gas supply port 23 has a smaller specific gravity than water and therefore moves toward the microbial culture solution supply port 21 side due to buoyancy.
  • Contact and stirring of gas are facilitated, and gas exchange of microorganisms is facilitated.
  • the first sheet 1 and the second sheet 2 After providing an air bleeding hole 11 in the pillar portion 4 formed by the third sheet 3 located in the fusional portion 13 to evacuate the air remaining in the air bubbles, the first sheet 1 and the second sheet 2 The fused portion 13 does not burst by fusing together with the third sheet 3, and the flat portion 7 and the convex portion 6 of the third sheet 3 are fused between the first sheet 1 and the second sheet 2. By wearing it, it is possible to prevent leakage of the culture solution and exhaust gas.
  • a transparent or translucent resin may be used as the material of the sheet for culturing autotrophic microorganisms by photosynthesis.
  • the resin may be a polyolefin-based, polyamide-based, polyester-based, polycarbonate-based, polyurethane-based, fluorine-based, or silicon-based resin, and an elastomer or a polymer alloy thereof, but is preferably a polyolefin-based resin, and is a polyethylene-based or polypropylene-based resin.
  • the ethylene-based resin includes an ethylene copolymer resin, a polyethylene resin, and the like, and examples of the ethylene copolymer resin include an ethylene / vinyl acetate copolymer resin (EVA) and an ethylene / ethyl acrylate copolymer resin (EEA). Can be given.
  • EVA ethylene / vinyl acetate copolymer resin
  • EOA ethylene / ethyl acrylate copolymer resin
  • linear low density polyethylene LLDPE
  • low density polyethylene LDPE
  • high density polyethylene HDPE
  • the pillar portion 4 agitates the culture solution and renews the gas-liquid interface around the microorganism, gas exchange on the surface of the microbial cell membrane becomes easy. Further, when the exhaust gas or the air containing the exhaust gas is blown into the microbial culture container 20, the bubbles of the air sent by the pillar 4 become smaller, so that it is easy to supply the exhaust gas, for example, CO 2 to the culture solution. It becomes.
  • the internal pressure of the microbial culture vessel 20 becomes higher than the atmospheric pressure, and the solubility of CO 2 and O 2 increases according to Henry's law.
  • the microbial culture vessel 20 can increase the microbial concentration in the culture broth in the conventional culture tank or in the culture solution as compared with the open pond method.
  • the size and shape of the microbial culture vessel 20 are arbitrary, but in the case of a rectangular plane as shown in FIG. 3, the width of the short side is 0.1 m to 3 m, preferably 0.3 m to 1.0 m.
  • the width is less than 0.1 m, the proportion of the contacted portion at the end becomes large and the volume of the communication hole 5 through which the culture solution flows becomes small. If the width exceeds 3 m, the weight of the culture solution causes the central portion to bend and the flow of the culture solution to become biased.
  • the length of the microbial culture vessel 20 (the length of the long side of the rectangular microbial culture vessel 20 in FIG. 3) is arbitrary as long as it can be installed, but the length of the long side is preferably 0.3 m to 1000 m. , More preferably 10 m to 100 m. If the length is less than 0.3 m, the culture time is short, and if it exceeds 1000 m, the efficiency of repair or replacement work when a leak occurs decreases.
  • the thickness of the microbial culture container 20 (the length from the surface with the first sheet 1 to the surface with the second sheet 2) may be 1 mm or more, preferably 2 mm or more and 20 mm or less, more preferably 3 mm. It is 10 mm or more and 10 mm or less.
  • a receiver capable of receiving the leaked microbial culture solution, a protective plastic sheet, a container frame for supporting the microbial culture container, and the like may be provided.
  • the receiver may be a trough, a sheet, a bag, or the like, and is a highly transparent and water-resistant resin, preferably a polyolefin resin such as polyethylene, so that the presence or absence of leaks and the leakage of the culture solution do not further diffuse can be visually observed.
  • a polyolefin resin such as polyethylene
  • PET polyethylene terephthalate
  • polycarbonate resin polyvinyl chloride
  • acrylic resin elastomers
  • polymer alloys or laminates thereof
  • the modified microbial culture vessel 20'shown in FIGS. 4 to 12 includes a three-layer bubble buffering material 10'in which a part of the pillar 4 is horizontally cut, a plate-shaped liner 111 arranged inside, and a plate-shaped liner 111.
  • Connects four container frames 110 (upper container frame 110A, left side container frame 110B, lower container frame 110C, and right side container frame 110D) and adjacent container frames 110 composed of ribs 112 that serve as pillars that support the hollow portion 113. It may have four connecting portions 120 (upper left connecting portion 120A, lower left connecting portion 120B, lower right connecting portion 120C, and upper right connecting portion 120D).
  • the upper side of the paper surface is referred to as the upper side
  • the lower side is referred to as the lower side
  • the right side is referred to as the right side
  • the left side is referred to as the left side, but the actual orientation of the microbial culture container 20'is limited to this. Not done.
  • the microbial culture vessel 20' has an upper container frame 110A on the left side of the outer edge of the three-layer bubble wrap 10'incised in a part or the entire circumference of a part of the pillar portion 4.
  • the container frame 110B, the lower container frame 110C, and the right container frame 110D are arranged.
  • the connecting portion 120 shown in FIG. 5 is provided with a plurality of slits 121 arranged in a part of the flat plate, and the formed plurality of protrusions 122 are inserted into the hollow portion 113 of the container frame 110 to connect the adjacent container frames 110 to each other. Fix it.
  • the four container frames 110 are connected by the upper left side connection part 120A, the lower left side connection part 120B, the lower right side connection part 120C, and the upper right side connection part 120D, and form the outer edge of the substantially square microbial culture container 20'.
  • Grooves 130 (grooves 130A, 130B, 130C, and 130D) for flowing the culture solution or exhaust gas are formed in the connection portion.
  • the culture solution or exhaust gas may flow directly through the groove 130, or the pipe may be arranged in the groove 130.
  • the material of the pipe is not particularly limited, but a polyethylene tube that is resistant to rust, is inexpensive, and is easy to process is preferable.
  • the upper left connection portion 120A is provided with a linear groove 130A in the vertical direction in order to arrange the polyethylene tube 114 for supplying the culture solution and the polyethylene tube 115 for supplying the exhaust gas on the inlet side of the culture solution and the exhaust gas. ..
  • the width of the groove 130A is larger than the width of the two pipes, and the depth of the groove 130A is set so that there is a gap between the pipe when the pipe is arranged and the upper surface of the connection portion 120A.
  • the thickness of the pipe and the size of the groove are not limited to this, respectively.
  • the upper surface is a surface on the first sheet 1'side or a flat surface side.
  • the lower surface is a surface on the second sheet side or the bottom surface side.
  • the upper left side connection portion 120A may have a part of the pipe flattened in order to provide a gap between the container frame 110 and the hollow portion 113.
  • a curved groove 130B is provided in the lower left connection portion 120B, and a partially curved supply polyethylene tube 114C and an exhaust gas supply polyethylene tube 115C are arranged.
  • a partially curved groove 130C is provided in the lower right connection portion 120C, and a culture solution discharge port or a polyethylene tube 117 for discharging the culture solution is arranged.
  • the culture solution and the exhaust gas that have passed through the reaction region 15 in the three-layer bubble wrap 10'and the gas such as oxygen generated by photosynthesis are exhausted in the upper direction, and the culture solution is on the lower side.
  • a groove 130D is provided on the lower side facing the direction, and the exhaust polyethylene tube 116 is arranged on the upper side.
  • the slit of the connecting portion 120 is provided according to the presence or absence of the rib 112 of the container frame 110.
  • the connecting portion 120 may be provided with a recess 123 having a small depth instead of a slit so that the partially cut-out rib 112'indicated by the broken line is fitted.
  • the three-layer bubble wrap 10' is fixed to the pipe fixed to the container frame 110 and the connection portion 120.
  • an adhesive (not shown) is applied to the upper surface of the pipe fixed to the container frame 110 and the connection portion 120, and the first sheet 1'and the third sheet 3'and the incised pillar portion 4 "are adhered to each other.
  • the second sheet 2', a part of the third sheet 3', and the incised pillar portion 4 are adhered to the lower surface of the container frame 110 and the connecting portion 120.
  • the pillar sets 4A arranged at equal intervals in a row are arranged so as to intersect the ribs 111B of the left container frame 110B and the ribs 111D of the right container frame 110D at right angles.
  • the column portions 4A arranged in a row at equal intervals and the adjacent column portions 4B are arranged so that the centers of the column portions are alternately shifted.
  • the culture solution and the bubbles pass through the communication hole 5'between the column set 4A and the adjacent column set 4B, but do not go straight in the vertical direction, and the culture solution and the bubbles are agitated, so that the surface of the microorganism is agitated.
  • the gas-liquid interface is constantly updated, and the reaction efficiency of exhaust gas decomposition is improved.
  • the culture solution and exhaust gas may be directly supplied to the reaction region 15 through the hollow portion 113 communicating with the reaction region 15, or may be supplied through the polyethylene tube 114 for supplying the culture solution and the polyethylene tube 115 for supplying the exhaust gas.
  • Both the polyethylene tube 114 for supplying the culture solution and the polyethylene tube 115 for supplying the exhaust gas have an opening 114A on the culture solution supply side and an opening 115A for supplying the exhaust gas, and the other end is the polyethylene tube sealing end 114B for supplying the culture solution. And seal with the polyethylene tube sealing end 115B for exhaust gas supply.
  • the polyethylene tube 114 for supplying the culture solution and the polyethylene tube 115 for supplying the exhaust gas, which are in contact with the reaction region 15 on the supply side, are provided with the holes 114D for supplying the culture solution and the holes 115D for supplying the exhaust gas.
  • the culture solution supply hole 114D communicates with the hole 140C provided in the rib 112C of the lower container frame 110C.
  • the exhaust gas supply hole 115D communicates with the hole 140C'provided in the rib 112C'of the lower container frame 110C.
  • the culture solution and the supplied exhaust gas are supplied from the lower side of the microbial culture vessel 20'and flow toward the upper side.
  • the polyethylene tube 114 for supplying the culture solution and the polyethylene tube 115 for supplying the exhaust gas are adhesives so as not to block the hole 114D for supplying the culture solution and the hole 115D for supplying the exhaust gas and to prevent the culture solution and the exhaust gas from leaking from below.
  • a tube may be fixed to the liner 111 and the rib 112, and a part thereof may be fixed to the three-layer bubble wrap 10', from the culture solution supply side opening 114A to the polyethylene tube sealing end 114B for the culture solution supply.
  • a tube may be used only partially, and a hollow portion 113 may communicate between the tubes. The same applies to the polyethylene tube 115 for supplying exhaust gas, but the arrangement of the pipes for supplying the culture solution and the exhaust gas is not limited to this.
  • a receiver 150 may be provided to reinforce the microbial culture container 20 and collect the leaked culture solution.
  • the receiver 150 is a receiver outer frame 160, 160', a receiver inner frame 170, 170', which are arranged on the first sheet 1'side and the lower surface third sheet 3'side of the upper surface of the microbial culture container 20'. Includes plastic sheets 180, 180'on the upper and lower surfaces of the receiver 150, and receiver leak liquid discharge ports 118, 118'provided on the lower right side of the receiver 150.
  • the receiver outer frame 160 is arranged so that the rib direction of the receiver outer frame 160 is perpendicular to the rib direction of the receiver inner frame 170 and the container frame 110. This also prevents the container frame 110 of the microbial culture container 20'from breaking even if a load is applied to the microbial culture container 20'from above due to its own weight, wind, rainfall, or flying objects.
  • the lower side of the left receiver outer frame 160B penetrates inward. A part of the left receiver inner frame 170B has been cut off.
  • the culture solution When the culture solution leaks from the first sheet 1'side of the reaction region 15, the culture solution collects on the lower side between the first sheet 1'and the plastic sheet 180.
  • the accumulated culture solution is collected from the receiver leak liquid discharge port 118 and returned to the microbial culture container 20 ”, or if it comes into contact with the outside and contains other microorganisms, it is inactivated by ultraviolet rays or the like and then discarded.
  • the microbial culture vessel 20 ”equipped with the receiver 150 is tilted so that the right side is higher than the left side, and the leaked culture solution is installed so as to flow to the receiver leak liquid discharge port 118. May be good.
  • repair or the microbial culture container 20' may be replaced.
  • the receiver 150 even if the culture solution leaks from the microbial culture container 20', the leaked culture solution can be easily recovered. Therefore, the frequency of repair and replacement of the microbial culture container 20'is reduced, and the cost is reduced. Can be lowered.
  • the polyethylene tube 114 for supplying the culture solution and the polyethylene tube 115 for supplying the exhaust gas on the left side are, for example, hollow portions. It may be replaced with 113.
  • the rib 112 is arranged as a wall surface of the three-layer bubble wrap 10'so that the culture solution and the supplied exhaust gas do not leak.
  • the polyethylene tube 114 for supplying the culture solution and the polyethylene tube 115 for supplying the exhaust gas may be partially flattened. Further, although the culture solution overflowing between the thinned protrusion 122D'of the connecting portion 120D on the right side and the hollow portion 113D is configured to flow downward, a polyethylene tube may be piped here.
  • the microbial culture container 20 ”with the receiver 150 shown in FIG. 10 is the plastic sheet 180 and the microbial culture container 20 ′ and the horizontal EE ′ cut surface which is the center of the receiver 150 in the vertical direction.
  • the rib 112 of the left receiver inner frame 170B serves as a wall surface to prevent the leaked culture solution from spreading, and the lower side also holds the leaked culture solution in the same manner.
  • the leaked culture solution discharge pipe 118 is arranged as shown in the left vertical direction FF'cut surface, but the hollow portion 113 is provided. It may be used, and the discharge pipe 118 may be provided only on the upper side or one by one. The discharge pipe 118 can be easily connected to the pump or the exhaust gas supply device.
  • the microbial culture vessel 20 ”equipped with the receiver 150 shown in FIG. 12 is a culture solution from between the lower container frame 110C and the lower outer frame 160C of the receiver, as shown in the GG'cut surface in the vertical direction on the right side. If leaks, it flows between the lower receiver outer frame 160C and the lower container frame 110C, so that the leaked culture solution can be easily collected.
  • a sheet is provided between the lower outer frame 160C of the vessel and the lower outer frame 160C'of the vertically lower receiver so that the leaked culture solution flows downward without scattering, and is collected on the lower side. As the sheets 180 and 180', one continuous sheet may be used.
  • the place where the microorganism culture container 20 is installed may be a roof or a wall surface as long as it is a factory or a house.
  • the load capacity of the roof is 100 kg / m 2 , a plurality of microbial culture containers 20 can be stacked.
  • the microorganisms to be cultured may be of the same type, and different types of microorganisms may be cultured for each microorganism culture container 20.
  • the installation location may be a vacant lot in or around the factory, and is preferably a concrete block to prevent collapse, such as a slope that has no intended use, or an artificial slope created by cutting or embankment. It may be installed in a place where it is fixed by such as, is difficult to use for other purposes such as on a concrete surface, and an excessive weight cannot be applied to prevent it from collapsing.
  • the microbial culture vessel 20 may be laminated on a photovoltaic power generation panel or a lightweight photovoltaic power generation sheet 90 (see FIG. 17) in order to obtain power for a pump or the like or power used for a UV germicidal lamp.
  • a photovoltaic power generation panel or a lightweight photovoltaic power generation sheet 90 see FIG. 17
  • the heat storage of the photovoltaic power generation sheet 90 can be reduced, so that it is possible to prevent the power generation efficiency of the photovoltaic power generation sheet 90 from being lowered due to the temperature rise.
  • the number of microbial culture containers 20 to be laminated on the solar sheet 90 is 1 to 10, preferably 2 to 5.
  • the microbial culture container 20 and the photovoltaic power generation sheet 90 prevent heat storage in the roofs of factories and houses during the daytime in summer, and prevent heat dissipation from the roofs at night and in winter to reduce temperature fluctuations in the building. It is possible to suppress the consumption of electric power and boiler heat source required for maintaining the temperature, and reduce the emission of CO 2 which is an exhaust gas.
  • the liquid When installed on the roof of a factory, the liquid is sent from the raw material preparation device and the microbial preparation device to the inlet of the microbial culture vessel 20 by a pump 52, and the culture broth is supplied to the microbial culture vessel 20 from the culture broth supply port 21 provided in the microbial culture vessel 20. Supply.
  • microbial culture step may include EO recovered after contact with or after reaction with EO. It is not necessary to have the step of adding water.
  • the first embodiment uses Chlorella Vulgaris 102 as an autotrophic microorganism (PAMA) and a fast-growing freshwater chlorella.
  • PAMA autotrophic microorganism
  • Chlorella Vulgaris 102 which is PAMA
  • a small amount of Chlorella Vulgaris 102 is sterilized by irradiating water sterilized by irradiating a UV germicidal lamp that radiates UV (UV) near 254 nm, which is a raw material.
  • the culture solution is kept at 25 ° C. or 25 ⁇ 2 ° C., and the culture solution is sent from the microbial culture solution supply port 21 to the microbial culture container 20.
  • Chlorella Vulgaris 102 cultured under sunlight in the microbial culture vessel 20 in the culturing step has a predetermined concentration, preferably 0.01 wt% to 50 wt%, more preferably 0.1% to 40%, still more preferably 1% to 30%.
  • a part of the culture is separated as the next culture and sent to the microbial preparation device, and the rest stops the activity of the microorganism.
  • Chlorella Vulgaris 102 separated as a culture component may be subsequently supplied from the microbial culture solution supply port 21 to the microbial culture container 20 together with a new raw material solution.
  • the activity may be stopped by exhaust gas, or the microorganism may be physically crushed by the above-mentioned UV irradiation, ultrasonic waves, micro bubbling, bead mill or the like.
  • sterilization gas after use may be used for sterilization of medical devices, and EO is particularly preferable.
  • the microorganisms of Chlorella Vulgaris 102 culture solution that has reached a predetermined concentration by a ball mill, sand mill or bead mill, ultrasonic waves, micro bubbling, etc. as a crushing method, the microorganisms of Chlorella Vulgaris insoluble in aqueous solution and water are used in a centrifuge. Separate into pieces 102X.
  • the water-soluble organic compounds contained in the crushed microorganisms are used as nutrients for Aurantiochytrium 104, which is CHMO, or as a supplement for PAMA, so that they can be used together with water, potassium, phosphorus, nitrogen, and other inorganic salts for the next culture. use.
  • oils and fats have a small specific gravity, when separated from the aqueous solution, the oils and fats may be recovered and stored as nutrients for microorganisms or sent to an oil storage tank 82.
  • the microbial fragment 102X which is insoluble in water, decomposes EO in the exhaust gas decomposition container 57 by an exhaust gas decomposition method in which it undergoes an addition reaction with EO.
  • 100% EO or a mixed gas of EO and CO 2 is supplied from the exhaust gas supply port.
  • the reaction between the microbial fragments 102X and EO may be carried out in the microbial culture vessel 20, but it is preferable that the exhaust gas and the culture solution are brought into contact with each other in the exhaust gas decomposition vessel 57 made of stainless steel having airtightness, pressure resistance and corrosion resistance.
  • the Chlorella Vulgaris culture solution may be irradiated with a UV germicidal lamp in order to suspend the activity of Chlorella Vulgaris 102, but the concentration of microorganisms or microbial debris in the exhaust gas decomposition container 57 is high, and the UV light does not reach the bottom of the container sufficiently. If not, it is preferable to stop microbial activity by EO, and it is more preferable to combine both.
  • EO stops its activity by reacting with the DNA of the cell membrane and nucleus of Chlorella Vulgaris 102 to inhibit cell division and kill the microorganism itself.
  • Unreacted EO is separated by gas-liquid separation, and EO is arbitrarily dissolved in water, but since it has a low boiling point, it is separated from water or partially distilled with water by a water distillation column 62 or a vacuum distillation apparatus. Next, it is reused for deactivating the cultured microorganisms or decomposing exhaust gas.
  • the EG produced by the reaction of EO with water may be distilled and recovered and used as fuel.
  • O 2 generated by photosynthesis is sent to the microbial culture vessel 20C of Aurantiochytrium 104, which is used for the next culture or consumes O 2.
  • O 2 since O 2 is generated as bubbles, it is separated as a gas by the gas-liquid separation device 61. O 2 may be released into the atmosphere after confirming that it does not contain EO, CO 2 or nitrogen oxides.
  • the unreacted CO 2 is recovered together with water as it is dissolved in water and used as a raw material for culturing microorganisms, or as a gas, it is sent to a CO 2 source such as a cylinder for reuse.
  • the microbial fragment 102X that is insoluble in water may be removed by centrifugation and decomposed by an enzyme, and may be used as a sugar, an amino acid, or a peptone as a nutrient for Aurantiochytrium 104 or as a supplementary nutrient for PAMA.
  • Water can be separated by a water distillation column 61 or a vacuum distillation apparatus.
  • EG Since EG has a boiling point of 198 ° C, which is higher than that of water, EG can be separated from organic compounds and inorganic salts by an EG distillation column 63 or a vacuum distillation apparatus.
  • EG can be directly used as a fuel, but may also be metabolized by aerobic microorganisms or PAMA or CHMO, if degraded to CO 2 and water, CO 2 and water can be used as a raw material of PAMA culture.
  • EG-distilled residue contains potassium, phosphorus, nitrogen and inorganic salts, trace amounts of organic compounds and microbial debris.
  • Newly UV-sterilized water may be added and used as a raw material together with potassium, phosphorus, nitrogen, inorganic salts, organic compounds, and microbial fragments 102X.
  • These exhaust gas decomposition methods may be batch-type and may be performed step by step, or each step may be performed simultaneously and continuously.
  • Nannochlorocyps 103 which is a PAMA that can be cultured in seawater, is used. Since Nannochlorocyps 103 produces a large amount of fatty acids and fatty acid esters, the separated fatty acids and the like can be used as a boiler fuel for incineration of waste, replacement of fossil fuels, heating and power generation, esterification or hydroxystearic acid. It may be solidified and stored by adding an oil coagulant.
  • microplastics that are hardly metabolized in seawater, microbial metabolites that inhibit the growth of microorganisms, and when a small amount of EG is contained, organic compounds are burned by combustion or a molten salt reactor (not shown). To remove.
  • Inorganic salts may be removed and released into the sea, or used or stored as NaCl.
  • the amount of carbon dioxide emitted into the atmosphere or the CO 2 itself in the environment can be reduced, or the emission of EO harmful to living organisms can be substantially reduced to zero.
  • heterotrophic microorganisms chemically heterotrophic microorganisms (CHMO) are used to mainly produce hydrocarbon squalane (C 30 H 50) as fats and oils as organic compounds.
  • CHMO chemically heterotrophic microorganisms
  • Aurantiochytriums Aurantiochytrium 18W-13a strain 104, which has a large amount of fats and oils synthesized, is used.
  • Exhaust gas decomposition system that is required to culture the raw material preparation step, sugars, amino acids, and to prepare an organic compound as a nutrient, such as peptone, supplying O 2, the discharged carbon dioxide recovered and synthesized hydrocarbons
  • an organic compound such as peptone
  • O 2 the discharged carbon dioxide recovered and synthesized hydrocarbons
  • glucose required au lunch Oki thorium 18W-13a strain 104, amino acids, potassium, phosphorus, nitrogen, inorganic salts and peptone were added and the O 2
  • the cells may be cultured in the microbial culture vessel 20A while being supplied, and necessary nutrient sources and inorganic salts may be added during the culture or given after UV sterilization.
  • Aurantiochytrium 18W-13a18W-3 strain 104 After culturing for a predetermined time, for example, at 25 ° C. for 96 hours, Aurantiochytrium 18W-13a18W-3 strain 104 in which fats and oils are stored in the cell membrane has a small specific gravity, so that oil is not synthesized or stored immediately after cell division. There is a difference in specific gravity from Aurantiochytrium 18W-13a strain 104, and it can be separated by a continuous centrifugation microbial separator 40 or a batch centrifuge 56.
  • the oil-unsynthesized Aurantiochytrium 18W-13a strain 104 was cultured in a microbial culture vessel 20A until the fats and oils were stored in the cells, and the Aurantiochytrium 18W-13a strain 104 storing the fats and oils was a ball mill or the like.
  • Exhaust containing low-concentration EO which is crushed by ultrasonic waves, separates fats and oils and most of the water from fats and oils, microbial fragments 104X, and aqueous solution, and decomposes a small amount of aqueous solution and microbial fragments with an existing EO decomposition device. React with gas.
  • fats and oils are burned or stored for heat source and power generation, and fossil fuel consumption is reduced to reduce the amount of CO 2 in the atmosphere to manufacture medical equipment.
  • the utility cost of the factory may be reduced, or oils and fats may be produced from exhaust gas as a raw material.
  • a plurality of microbial culture containers 20A may be stacked and installed in a factory or under the floor. .. Alternatively, it may be installed under an existing photovoltaic power generation panel to produce oils and fats, and the produced oils and fats may be used as supplements for electricity used in rainy weather or at night when the photovoltaic power generation panel cannot generate electricity, or oils and fats are stored. You may.
  • Botryococcus braces which are a kind of PAMA and are organic compounds , synthesize Botryococcus (C 34 H 58 ) hydrocarbons as fats and oils and release them extracellularly of microorganisms.
  • Botryococcus brownie (BB) 101 is cultured.
  • BB101 When BB101 is cultured at 25 ° C. to 35 ° C., preferably 30 ° C. by photosynthesis under light irradiation such as sunlight, it grows and at that time, a hydrocarbon containing botriocossen (C 34 H 58 ) as a main component is dried by weight. Synthesize 5% or more.
  • the preferred BB 101 is a BB that synthesizes hydrocarbons in an amount of 20% or more, more preferably about 60% or more of the dry weight, and accumulates hydrocarbons mainly around microorganisms outside the body to form colonies 101B.
  • the method for decomposing exhaust gas by BB 101 includes a BB preparation step and a raw material preparation step, and BB is cultured by supplying a culture solution and CO 2 which is exhaust gas to a microbial culture vessel 20B. Perform a culture step.
  • BB 101 forms colony 101B by accumulating the synthesized fats and oils 101A inside the cell or releasing the synthesized fats and oils 101A extracellularly by the step of synthesizing the fats and oils 101A which are organic compounds, mainly hydrocarbons.
  • the continuous centrifugal microbial separator 40 separates the low fat BB and the high fat BB with a small amount of fat or unsynthesized fat.
  • Low fats and oils BB refers to those having a small amount of fats and oils in cells, such as unsynthesized fats and oils BB101D that do not produce oil immediately after division, BB101d that releases fats and oils, and BB101E that has lost the ability to synthesize fats and oils.
  • High fat BB refers to BB 101C in which fats and oils are accumulated in cells, or BB containing a large amount of fats and oils such as colony 101B in which a large number of cells are surrounded by fats and oils.
  • the high fats and oils BB may be 50% or more of the maximum fats and oils amount of the BB strain, or the specific gravity may be smaller than that of the culture solution, water or seawater.
  • the specific gravity of the BB strain 101 that produced the oils and fats 101A was 0.83 for the botriocossen, and B. oil-free B. B. Since the specific gravity of the strain is about 1.03, it is smaller than the unsynthesized BB strain of fats and oils and larger than botriocossen, so that it is separated by centrifugation.
  • the low fat BB with high specific gravity is on the outside of the separation container 43, the fats and oils 101A are on the innermost side, and the high fat and oil BB with medium specific gravity is between the outside and the inside. Separate into.
  • the colony 101B is physically destroyed to separate the oils and fats 101A from the oil-releasing BB.
  • the separated oil is recovered, but if BB101D or BB101d has an oil synthesizing ability, the separated oil is recovered and sent to the microbial culture vessel 20C to continue culturing.
  • BB101E having no oil synthesis ability is sent to the exhaust gas decomposition container 57, the activity of BB is stopped by exhaust gas such as EO, and after crushing, unreacted EO, EG, BB microbial fragments 104X, oils and fats 101A, aqueous solution. Separate and recover raw materials such as.
  • the centrifuge may be a batch type or a continuous type, but as shown in FIG. 16, a continuous centrifugal type microbial separator 40 capable of separating a portion that can be separated by density and a size of a colony of microorganisms is more preferable.
  • FIG. 16 is a schematic view of the centrifugal separation portion of the continuous centrifugal microbial separator 40.
  • the continuous centrifugal microbial separator 40 is provided with a rotating portion 41, an inflow pipe 42, a separation container 43, and a fluid chamber 44.
  • the culture solution containing the fats and oils that flowed into the separation container 43 from the inflow pipe 42 has a high specific gravity layer 45 and fats and oils 101A whose main components are the low fats and oils BB BB101D, BB101d and BB101E due to centrifugal force.
  • the low specific gravity layer 46 containing the main component, the high oil-containing fat BB 101C which is the high oil and fat BB toward the fluid chamber 44, and the medium specific gravity layer 47 containing the colony 101B as the main components are formed.
  • the fluid chamber 44 is provided with a fluid chamber inflow portion 44a and a fluid chamber outflow portion 44b, and is provided with a step portion 44c that separates by size.
  • the high specific layer outflow pipe 45a and the high specific layer container 45b, and the low specific layer outflow pipe 46a and the low specific layer storage container 46b of the separated BB101 culture solution are provided.
  • the medium specific layer outflow pipe 47a is connected to the fluid chamber inflow portion 44a, and is connected to the fluid chamber outflow portion 44b and the medium specific layer storage container 47b.
  • Centrifugal force is applied to the BB culture solution in the separation container 43 by rotating the rotating portion 41 with a motor (not shown) or the like in the mixed solution of the culture solution and the fats and oils flowing in from the inflow pipe 42 in the central portion.
  • BB101 and fats and oils While flowing from the separation container inlet side 43A toward the separation container outlet side 43B, BB101 and fats and oils are separated by the difference in their respective specific gravities, and BB101 is also oily and fats 101A, colony 101B, high fats and oils BB101C, and low fats and oils BB. It is separated into synthetic BB101D, BB101d that has released oil, and BB101E that has no oil synthesis ability, but the separation conditions may be appropriately set according to the amount of the culture solution, the flow rate, and the size of the centrifuge.
  • the low specific gravity layer 46 is separated into an aqueous solution and an oil / fat 101A by an oil / water separator or a distillation column as it is by using a pump or the like through a flow path connected by a tube or the like, and the separated oil / fat 101A is stored in oil. It flows out to the tank 81 and is stored.
  • a small amount of BB strain may be separated by a filter or a centrifuge, sent to a microbial preparation device, or stopped by UV irradiation.
  • the high specific layer 45 may be once sent to the high specific layer container 45b through a flow path connected by a tube or the like, and then sent to the microorganism preparation device or the exhaust gas decomposition container 57.
  • the low oil and fat BB contained in the high specific layer 45 includes unsynthesized oil BB101D which has not yet synthesized oils and fats immediately after cell division, oil released BB101d which synthesizes oil and releases it extracellularly, and oil released BB101d and oil synthesis. BB101E with no ability is mixed.
  • the second separation step a step of separating the hydrocarbon and the BB strain by the difference in size is performed.
  • the medium specific layer 47 containing a large amount of high fat-containing fat BB101C holding fats and oils intracellularly and colonies 101B formed by a large number of BB strains and fats and oils passes through the fluid chamber inflow portion 44a in the fluid chamber. It flows into 44.
  • the inflowing medium specific layer 47 is separated by size at the step portion 44c, and the smallest oil / fat 101A separated from the colony 101B flows out first, and becomes an aqueous solution and oil / fat 101A by an oil / water separator or a distillation column.
  • the separated oils and fats 101A are separated into oil and water and then sent to an oil storage tank 81 for storage.
  • a small amount of BB strain may be separated by a filter or a centrifuge, or may be sent to a microbial preparation device or an exhaust gas decomposition container 57.
  • the high oil and fat BB101C stays on the outflow port 44b side of the fluid chamber 44 on the outer edge side of the step portion 44c, and the colony 101B larger than the high oil and fat BB101C gathers on the inflow port 44a side, so that the high oil and fat BB101C and the oils and fats 101A are released.
  • the BB101d that has released the oils and fats 101A, which remains in the colony 101A, can be separated.
  • the BB101d remaining in the colony 101 destroys the colony by ultrasonic waves or micro bubbling to separate the BB101d and the fats and oils 101A.
  • Aqueous solution and fats and oils are separated by an oil-water separator or a distillation column 61.
  • a small amount of BB may be separated by a filter or a centrifuge, or may be sent to a microorganism preparation device or an exhaust gas decomposition container 57.
  • the separated oils and fats 101A flow out to the oil storage tank 81 and are stored.
  • the outflow time differs depending on the difference in specific gravity and size, so the valve may be switched depending on the time difference.
  • the fats and oils 101A are sent to the oil storage tank 81 and used for storage or incineration of waste to recover CO 2 again, so that the amount of CO 2 emissions or the atmosphere in the exhaust gas of the medical equipment manufacturing factory is reached. Reduce the amount of CO 2 inside.
  • O 2 generated by photosynthesis is released to the atmosphere or sent to the Aurantiochytrium microbial culture vessel 20C.
  • the low fats and oils BB sent to the high specific layer container 45b are cultured under the culture conditions, and among the BB strains, BB101D whose specific gravity becomes smaller when fats and oils are synthesized and BB101E which does not synthesize oil and does not divide cells. Is separated by the continuous centrifugation type microbial separator 40, the BB having a small specific gravity is sent to the microbial preparation device and recultured in the microbial culturing device 20B, and the BB101E having a large specific gravity and having no oil synthesis ability is left as it is in the exhaust gas reaction vessel 57. The activity is stopped by the exhaust gas.
  • the continuous centrifugal microbial separator 40 may be one that does not use the fluid chamber 44 and may be separated only by the difference in specific weight.
  • the existing polyethylene three-layer bubble wrap 10 having a thickness of about 3 mm is used as the microbial culture container 20
  • the microbial culture container 20 is used in a plurality of stages and the light source is sunlight
  • the microbial culture container 20 is laminated in three stages: upper, interrupted, and lower. And place it.
  • a lightweight photovoltaic power generation sheet 90 may be used, and the convex portion 6 transmits transparent light, and if the wavelength is not used by microorganisms, the microbial culture solution is transmitted. Since it reaches the photovoltaic power generation sheet 90, power generation becomes possible.
  • the amount of decomposition of exhaust gas or the amount of synthesis or production of organic compounds, especially fats and oils, may be increased by increasing the amount of PAMA microbial culture vessels such as Coccus Brownie (BB) 101 as compared with the microbial culture vessels 20, 20B and 20A culture vessels. ..
  • BB Coccus Brownie
  • the type of microorganism to be supplied and the arrangement and size of the microorganism culture container 20 may be appropriately changed.
  • FIG. 18 outlines an exhaust gas decomposition system according to the first to third embodiments and a method for producing an organic compound.
  • the method for producing an organic compound using exhaust gas as a raw material is a microbial preparation step for preparing a microorganism capable of producing the organic compound, at least water, potassium, phosphorus, nitrogen, inorganic salts and used for the production of the organic compound or the growth of the microorganism.
  • a raw material preparation step for preparing a raw material containing a gas a culture step for culturing a microorganism, an organic compound synthesis step for synthesizing an organic compound, a separation step for separating the microorganism from the organic compound, and a recovery step for recovering the organic compound.
  • a preferred production method is a production method having an organic compound synthesis step, an exhaust gas supply step followed by an exhaust gas decomposition step, and a more preferable production method is an organic compound synthesis step, a separation step for separating the organic compound, and an exhaust gas supply step. It is a production method having an exhaust gas decomposition step.
  • the organic compound is preferably an oil or fat, more preferably a hydrocarbon, but is not limited to this.
  • the microorganism is preferably a microorganism that synthesizes fats and oils, and examples thereof include Botryococcus, Nannochlorocyps, Aurantiochytrium, Scenedesmus, and Chlorella as chlorella. Vulgaris, Chlorella. It is preferable that at least one of pyrenoidosa, dunaliella, spirulina, euglena, and hematococcus is used.
  • nannochlorocyps and chlorella which produce fats and oils and organic compounds such as glucose and amino acids that are nutrients for heterotrophic microorganisms or supplementary nutrients for autotrophic microalgae.
  • Chlorella Vulgaris
  • Chlorella Chlorella. Chlorellas such as pyrenoidosa, spirulina, euglena.
  • BB Botryococcus brownie
  • Aurantiochytrium 18W-13a strains which synthesize 20 wt% or more of hydrocarbons based on the dry weight of microorganisms. is there.
  • Microorganism preparation step to prepare aquatic microorganisms, and an aqueous solution (H 2 O) containing UV-sterilized water, potassium, phosphorus, nitrogen, inorganic salts (IN), and organic compounds (Org.) Such as sugars and amino acids as nutrient sources.
  • aqueous solution H 2 O
  • microbial culture containers 20, 20A, 20B and a culture solution to which a predetermined amount of raw materials and aquatic microorganisms are added from each source are added. Supply to 20C.
  • the microbial culture container 20 is Chlorella. Vulgaris 102, microbial culture vessel 20A is Botryococcus browny (BB) 101, microbial culture vessel 20B is Nannochlorocyps 102, microbial culture vessel 20C is Aurantiochytrium 18W-13a strain 104, and NaCl concentration or seawater.
  • the supply amount is appropriately adjusted by the valve 53 and the three-way valve 54.
  • Culturing is carried out by supplying CO 2 or O 2 at a predetermined temperature and for a predetermined time, and additionally supplying inorganic salts and organic compounds as needed.
  • Chlorella cultivated in the microbial culture vessel 20 In vulgaris 102, microorganisms are crushed by a crusher 55 and then separated by a centrifuge 56 to separate water-soluble inorganic salts and water-soluble organic compounds into a microbial culture vessel 20A of Aurantiochytrium 18W-13a strain 104, which is CHMO. Supply to.
  • the water-soluble organic compound may be supplied to the microbial culture vessels 20A, 20B and 20C, if necessary, or may be supplied to 20 of the next batch.
  • the crushed microbial debris 102X supplies EO / CO2 exhaust gas after use for sterilizing the medical device discharged from the medical device sterilizer 71 installed in the medical device manufacturing plant 70 together with the addition of water or the residual culture solution.
  • the EO is decomposed by performing an additional reaction with the amino group, hydroxyl group or carboxyl group of the microbial fragment 102X and water in the exhaust gas decomposition container 57.
  • the culture solution containing the used raw materials is sent to the gas-liquid separation device 61, and the gaseous CO 2 is collected and sent to the microbial culture vessel 20, 20A or 20B.
  • the generated O 2 is sent to the microbial culture vessel 20A.
  • the unreacted EO is collected by the gas-liquid separation device 61 and the water distillation column 62 and supplied to the exhaust gas decomposition container 57.
  • EO becomes EG as fuel and EO-added microbial fragment 102X that reacts with microbial fragments, and after dehydration, it is burned as fuel to become CO 2 , and further becomes fats and oils by PAMA that synthesizes fats and oils. Not released.
  • Water is distilled off from the gas-liquid separated culture solution 102Y in the water distillation column 62, and the culture solution 102Y is recovered in the condenser 66.
  • the culture solution 102Y from which water has been removed is a water-soluble salt that is insoluble in EG, and the water-soluble organic compound and EO-added microbial fragment 102X are separated from EG and a distillation residue by a separation method (not shown) such as centrifugation, filtration or precipitation. Is separated.
  • the separated EG may be separated by the EG distillation column 63 and used as fuel, or may remain in a small amount as long as it is decomposed as nutrients for microorganisms and finally decomposed into CO 2 and water.
  • the EO in the exhaust gas after sterilization of medical equipment if the amount of EO in the exhaust gas after decomposition is low by the existing catalytic EO decomposition device 72, the amount of EG generated is also small. It may be omitted and directly decomposed by microorganisms.
  • EG is decomposed into CO 2 by microorganisms and becomes oils and fats by PAMA, so that EG is not substantially released to the outside of the system.
  • the recovered water or fresh UV-sterilized water is added to the distillation residue and supplied to the enzyme reactor 64, and the microbial fragment 102X is decomposed into sugars, amino acids or peptones by an enzyme such as cellulase or peptase, and Aurantiochytrium 104.
  • an enzyme such as cellulase or peptase, and Aurantiochytrium 104.
  • the nutrient source of BB101, Chlorella It may be supplied as a supplementary nutrition for vulgaris 102 and nannochlorocyps 103.
  • the enzyme may be reused by supporting it on a known enzyme-supporting solid bead, for example, an aqueous solution 102Y'and a water-insoluble matter 102X'of an organic compound enzymatically decomposed by an enzyme separation device 65 by a centrifugation or a precipitation method. To separate.
  • a known enzyme-supporting solid bead for example, an aqueous solution 102Y'and a water-insoluble matter 102X'of an organic compound enzymatically decomposed by an enzyme separation device 65 by a centrifugation or a precipitation method.
  • the water-insoluble component 102X' is incinerated as fuel after dehydration, and CO 2 , potassium, phosphorus, nitrogen and inorganic salts are recovered and reused as raw materials.
  • seawater When seawater is used, it contains potassium, phosphorus, nitrogen, inorganic salts and NaCl, and is incinerated with organic compounds and microplastics contained in trace amounts in a molten salt furnace to recover CO 2 and water, and salt. It may be dissolved in rainwater, separated by the difference in solubility of potassium, phosphorus, nitrogen and NaCl, and after having approximately the same salt concentration and composition as seawater, it may be released into the sea.
  • the culture medium is sent to the microbial exhaust gas reaction vessel 57, and EO or EO or to stop the activity of Aurantiochytrium 18W-13a strain 104. CO 2 is supplied to the culture broth.
  • hydrocarbons or fatty acids such as C 30 H 50 synthesized by Aurantiochytrium 18W-13a strain 104 are stored in cells, the cells are crushed and fats and oils are taken out of the microorganism.
  • a ball mill In addition to a crusher, a ball mill, ultrasonic waves, microbubbles, or nanobubbles may be used as a method for crushing microorganisms.
  • the crushed Aurantiochytrium 18W-13a strain 104 is separated into fats and oils, an aqueous solution 104Y, and Aurantiochytrium microbial fragment 104X by a centrifuge 56. After separating the synthesized fats and oils, EO, CO 2 , EG, water, potassium, phosphorus, nitrogen, inorganic salts or residual organic compounds are referred to as described above in Chlorella. It is separated or recovered and reused in the same manner as vulgaris 102.
  • Botriococcus brownie (BB) strain 101 uses sterilized water, potassium, phosphorus, nitrogen, organic compounds such as sugars and amino acids that serve as nutrients and inorganic substances, and sterilized seawater or artificial seawater as necessary. Cultivate in the microbial culture vessel 20A. When the BB strain 101 reaches the maximum concentration or the maximum oil synthesis amount, the culture broth is separated by the continuous centrifuge 40. The oils and fats 101A, colonies 101B, high oil-containing fats and oils BB101C, oil-unsynthesized BB101D, oil-releasing BB101d and BB101E potassium, phosphorus, nitrogen, inorganic salts or aqueous solutions having no oil-synthesizing ability are separated.
  • the produced fats and oils or hydrocarbons may be used as a raw material or fuel for other organic compounds, or may be used as a fuel for waste incineration. If the waste itself is flammable, such as waste plastic, the fuel cost can be reduced.
  • some metals especially needles, syringes, catheters used as medical infectious waste, masks used in the new coronavirus (SARS-Cov-2) infection (Cvid-19), protective clothing, etc.
  • SARS-Cov-2 new coronavirus
  • Those containing are burned and sterilized in a dedicated incinerator or melting furnace to avoid the risk of infection. It may be used as a fuel for that purpose or as a fuel for power generation for supplying electric power to an electric furnace or the like.
  • a fuel for power generation it can be used as a fuel for direct combustion for a steam boiler or as a fuel for a diesel engine type generator if the ignition point is low.
  • the produced fats and oils or hydrocarbons that are not used may be stored, preferably in a state where the air is blocked, more preferably in a state where the oxygen concentration is low or in an oxygen-free state.
  • the decomposition by microorganisms is suppressed by further blocking the light.
  • a specific storage method for example, it may be stored in a tank, a drum, or a depleted oil field, or after heating, an oil coagulant such as 12-hydroxystearic acid is added to solidify the solidified oils and fats as they are. It may be stored in a warehouse, mine or waste coal field.
  • CO 2 emissions can be reduced, and it can be used as an auxiliary power source at night or in bad weather when solar power generation, which is a renewable energy, cannot generate electricity.
  • an inexpensive fuel such as coal that emits a large amount of CO 2 can be combined with the present invention to be a fuel that is inexpensive and emits a small amount of CO 2 , and fuel costs such as utility costs can be reduced. It becomes.
  • the BB101 can be returned to the microbial preparation device or the microbial culture vessel 20A after washing with low-concentration chlorine or sodium hypochlorite and neutralizing with sodium thiosulfate. Good.
  • the stopped BB101 may be sent to the exhaust gas reaction vessel 57, reacted with EO or enzymatically decomposed, dehydrated and then burned to be a heat source, and CO 2 and water may be recovered.
  • An independent exhaust gas reaction vessel 57 or enzyme reaction vessel 64 may be used, but due to cost reduction and differences in the culture period of each microorganism, the time when the exhaust gas reaction vessel 57 and the like are vacant is shortened.
  • a common exhaust gas decomposition container 57 may be used in order to efficiently use the device and reduce the cost.
  • the first to third embodiments shown in FIG. 18 may be operated at the same time, or each embodiment may be implemented independently, and the number and size of each embodiment are the operation of the medical device manufacturing factory 70. It may be adjusted according to the situation, such as factories that only aim to sterilize medical equipment that emits EO, factories that aim to sterilize food, waste incineration factories that emit CO 2 and nitrogen oxides, and thermal power. It may be installed in a power plant, a manufacturing factory of another industry, a house, a store, a hospital, a school, a rooftop, a wall surface, an underground space, or the like.
  • it may be a step of agricultural land, a roof of a greenhouse, a riverbed, a cliff, a sloping land or a pond, a sandy land, an embankment or a breakwater, which is usually difficult to use. It may be stored in a safe warehouse.
  • VOCs that can be used as nutrient sources by microorganisms such as nitrogen oxides, sulfur oxides, ozone, and formaldehyde may be used.

Abstract

環境あるいは生物に有害な排気ガス特に、固体触媒では除去にコストがかかる低濃度成分を除去するための排気ガス分解システム、排気ガスの分解方法および油脂類の生産方法を提供する。 燃料の燃焼などにより工場から排出されるCOを原料として油脂類などの有機化合物を合成する微生物を培養してCOを分解し、医療機器工場などから排出される酸化エチレンなどの滅菌用ガスを付加的排気ガス分解方法により分解して排気ガスの排出量を実質的にゼロとし、有用な油脂類を分離回収して貯蔵あるいは利用して化石燃料の使用量を減らし、CO排出量およびすでに大気中に放出されたCOを削減することが可能である。

Description

排気ガス分解システム、排気ガスの分解方法、および有機化合物の生産方法
 本発明は、医療機器製造工場などから排出される排気ガスの排気ガス分解システム、排気ガスの分解方法および排気ガスを原料とする有機化合物の生産方法に関する。
 工場などから排出されるさまざまな排気ガス、例えば熱を得るためにボイラーで重油などを燃焼した時に生じる二酸化炭素(CO)は地球温暖化の原因とされている。また、医療機器製造工場で生産した医療機器を滅菌した後に排出される酸化エチレン(EO)は、発がん性を有するため、直接燃焼式、触媒接触式、吸着式、硫酸による分解などによりEOを除去され、または排出基準未満に希釈されて大気中に排出される。また、窒素酸化物や硫黄酸化物は、化石燃料を高温で燃焼する際に発生し、大気汚染の原因とされている。
特表2013-509876 特開2019-76679 特開2004-154680 <URL:https://www.epa.gov/sites/production/files/2016-09/documents/ethylene-oxide.pdf>
 特許文献1において、微生物によるCO排出量の削減方法が開示されているが、微生物を死滅させる高濃度のEOや窒素酸化物の排出量を減らしたり、あるいはすでに大気中に排出されたCOを減らすことはできない。
 特許文献2のEO除去装置は、EOを分解してエチレングリコール(EG)を生成するために硫酸を用いるが、EOを大量に除去すると硫酸の交換とEGの処理が必要となり、分解率も低い。
 特許文献3の触媒式EO除去装置は、極めて低濃度のEOを含む排気ガスを分解する場合、固体触媒に通気したEO分子が固体触媒に接触せずに素通りするとEOが分解されない。このため、EO排出量をさらに減らすに何回も通気したり触媒を多孔質化すると、触媒の劣化が起こりやすく、触媒の交換など、コストがかかる。
 いずれにせよ、EO除去後の排気ガスは、EOを含む可能性があり、非特許文献1に示すように、極めて低濃度のEOを長期間の曝露することで医療機器製造工場周辺住民の発がんリスクが生じるおそれがあるといわれている。
 前記の目的を達成するのは、以下の本発明である。
(1)本発明に係る排気ガス分解システムは、微生物を培養するために、前記微生物を準備する微生物準備装置、前記微生物を培養するために用いる、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を準備する原料準備装置、前記微生物に原料を供給して微生物を培養する微生物培養装置、排気ガスを前記微生物、または前記微生物を破砕した微生物破片により分解する排気ガス分解装置、並びに前記排気ガス、前記微生物、前記微生物破片、前記微生物により合成された有機化合物、および前記原料の少なくとも一部を分離する分離装置、および前記分離装置で分離された前記排気ガス、前記微生物、前記微生物破片、前記有機化合物、前記原料の少なくとも一部を回収する回収装置を有し、前記微生物培養装置が、微生物培養容器を有し、前記微生物培養容器が、第1のシートと、第2のシートと、を有し、前記第1のシートと前記第2のシートとの間に柱部を有し、かつ前記第1のシートと前記第2のシートとの間に連通する微生物培養液供給口を有する、ことを特徴とするものである。
(2)前記微生物培養容器は、前記第1のシートと前記第2のシートの間に、平面部及び底面部と、前記平面部から突出する複数の凸部を有する第3のシートを配置し、前記柱部が、前記凸部の頂部が前記第1のシートと密着し、前記第3のシートの前記底面部が前記第2のシートと密着して形成される前記柱部であり、かつ前記柱部が中空であり、前記第1のシート、前記第2のシートおよび前記柱部で囲まれた連通孔を有し、前記微生物培養液供給口が前記連通孔に連通するものであり、前記微生物培養容器の端部に前記第1のシートと前記第2のシートが直接的に密着した、または前記第3のシートを介して密着した密着部を有する上記(1)に記載の排気ガス分解システムであってもよい。
(3)前記微生物培養装置および前記排気ガス分解装置に排気ガス供給口を有する上記(1)に記載の排気ガス分解システムであってもよい。
(4)本発明に係る排気ガスの分解方法は、微生物を培養するために、前記微生物を準備する微生物準備ステップ、前記微生物を培養するために用いる、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を準備する原料準備ステップ、前記微生物に原料を供給して前記微生物を培養する培養ステップ、有機化合物を合成する有機化合物合成ステップ、分離ステップおよび回収ステップを有し、各ステップまたは、各ステップの間のいずれかにおいて排気ガスを供給し、排気ガス分解ステップを有する、ことを特徴とする分解方法である。
(5)前記排気ガスが、医療機器のガス滅菌ステップから排気された滅菌用ガスであり、前記滅菌用ガスが排気ガス分解ステップに供給される上記(4)に記載の分解方法であってもよい。
(6)前記排気ガスが、二酸化炭素、酸化エチレンのいずれか一方または二酸化炭素と酸化エチレンの混合物を含む上記(4)に記載の分解方法であってもよい。
(7)前記酸化エチレンが前記排気ガス分解ステップ後に、微生物培養液から分離されて回収される上記(4)に記載の分解方法であってもよい。
(8)前記回収された酸化エチレンを他の排気ガス分解ステップに使用する上記(4)に記載の分解方法であってもよい。
(9)本発明に係る排気ガスを原料と有機化合物の生産方法は、前記有機化合物を生産可能な微生物を準備する微生物準備ステップ、前記有機化合物の生産または前記微生物の増殖に用いる、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を準備する原料準備ステップ、前記微生物を培養する培養ステップ、前記有機化合物を合成する有機化合物合成ステップ、前記微生物と前記有機化合物を分離する分離ステップ、および前記有機化合物を回収する回収ステップを有し、各ステップ、または各ステップの間のいずれかに、排気ガスを供給する排気ガス供給ステップを有する、前記有機化合物の生産方法である。
(10)前記培養ステップと前記分離ステップの間に、排気ガス分解ステップを有する、上記(9)に記載の生産方法であってもよい。
(11)前記分離ステップと前記回収ステップの間に、前記排気ガス分解ステップを有する、上記(9)に記載の生産方法であってもよい。
(12)前記有機化合物が、油脂類である上記(9)に記載の生産方法であってもよい。
(13)前記微生物が、油脂類を合成する上記(9)に記載の生産方法であってもよい。
(14)前記微生物が、ボトリオコッカス類、ナンノクロロシプス、オーランチオキトリウム類、イカダモ、Chlorella. vulgaris、Chlorella. pyrenoidosa、ドナリエラ、スピルリナ、ユーグレナ、ヘマトコッカスのうち、少なくとも1種類以上である上記(9)に記載の生産方法であってもよい。
 本発明に係る排気ガス分解システムおよび分解方法は、排気ガスである二酸化炭素を原料とする独立栄養型微生物の培養により、増殖した微生物が排気ガスであるCOを、糖やアミノ酸あるいは細胞組織の原料とするために分解する。
 あるいは微生物に含まれるアミノ基、カルボキシル基または水酸基などEOとの反応性の高い官能基を有する微生物あるいは微生物を粉砕した微生物破片などとEOを反応させることでEOを付加反応により分解する。
 これにより、工場や病院などの排気ガス中のCOやEOの排出量を減らし、実質的にゼロとすることが可能である。
 さらに、排気ガスを原料として炭化水素あるいは油脂を合成する微生物を用いることで、微生物が合成した有機化合物、特に油脂類を生産し、石油など化石燃料の使用を減らしてCOの排出量、あるいはすでに放出された大気中のCOを削減することができる。
図1は、本発明のフロー図である。 図2は、本発明に係る排気ガス分解システムの、微生物培養容器の断面拡大図である。 図3は、本発明に係る排気ガス分解システムの、微生物培養容器の平面図である。 図4は、本発明に係る排気ガス分解システムの、微生物培養容器の変形例の一部断面図である。 図5は、微生物培養容器の変形例の接続部の平面図および断面図である。 図6は、本発明に係る排気ガス分解システムの、微生物培養容器の変形例の平面図である。 図7は、本発明に係る排気ガス分解システムの、リークした培養液の受け器を備えた微生物培養容器の変形例の平面図である。 図8は、図6のC-C’断面図である。 図9は、図6のD-D’断面図である。 図10は、図7のE-E’断面図である。 図11は、図7のF-F’断面図である。 図12は、図7のG-G’断面図である。 図13は、本発明に係る第1の実施形態である排気ガス分解システムのフロー図である。 図14は、本発明に係る第2の実施形態である排気ガス分解システムのフロー図である。 図15は、本発明に係る第3の実施形態である排気ガス分解システムのフロー図である。 図16は、本発明に係る排気ガス分解システムの遠心分離装置の平面図である。 図17は、本発明に係る排気ガス分解システムの、積層した複数の微生物培養容器の部分断面拡大図である。 図18は、本発明に係る排気ガス分解システムの概略図である。
 以下、本発明の好適な実施形態を挙げ、添付の図面を参照して詳細に説明する。なお、図面の寸法比率は、説明の都合上、誇張されて実際の比率とは異なる場合がある。
 図1のフロー図を用いて、本発明の概略を説明する。
 本発明は、排気ガスを原料と反応させ、あるいは、培養して増殖した微生物と排気ガスを反応させて、排気ガスを分解して排気ガスの排出量を減らすとともに、貯蔵あるいは燃料等に利用可能な油脂類や、微生物の栄養となる有機化合物を合成して生産することを目的とする。
 排気ガス分解システムは、入手した微生物、あるいは微量の微生物をある程度培養したり、目的外の微生物などをあらかじめ除去するなどの準備を行う微生物準備装置、微生物の培養に必要な、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を準備する原料準備装置、排気ガスなどを原料として微生物を培養する微生物培養装置、有機化合物を合成する装置、有機化合物と微生物あるいは、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料である分離する分離装置、有機化合物を回収する回収装置を有し、微生物の活動停止あるいは微生物を破砕したのちに微生物の有するアミノ基、カルボキシル基、水酸基、チオール基などに排気ガスを付加反応させて分解する排気ガス分解装置を備える。
 排気ガスを分解する方法は、具体的には、培養する微生物を準備する微生物準備ステップ、培養に必要な、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を準備する原料準備ステップ、微生物を培養する微生物培養ステップおよび有機化合物を合成する有機化合物合成ステップ、並びに微生物および、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を分離する分離ステップ、および有機化合物を回収する回収ステップを有し、各ステップのうち少なくとも一のステップまたはステップの間に排気ガスを供給するステップを有する。
 排気ガスをシステムに供給するステップは、微生物の準備ステップ、原料の準備ステップ、培養ステップ、有機化合物合成ステップ、分離ステップ及び回収ステップと、各ステップの間のいずれかまたは複数のステップあるいは複数のステップの間で行ってもよい。
 あるいは、有機化合物合成ステップ、排気ガス供給ステップ続いて排気ガス分解ステップを有してもよく、微生物の培養濃度が小さく、排出するEOを直接分解する場合は、微生物活動停止ステップにより、EOを分解することができる。
 有機化合物合成ステップ、有機化合物を分離する分離ステップ、排気ガス供給ステップ続いて排気ガス分解ステップを有してもよい。あるいは、微生物準備ステップ、原料準備ステップおよび培養ステップに排気ガスを供給してもよい。
 具体的には、ボールミル、サンドミルあるいはビーズミルのほか、超音波、熱、バブリング、マイクロバブル、ナノバブルを用いた物理的手法のほか、UV照射や薬品など化学的手法により微生物を破砕した後、遠心分離により水溶性の有機化合物と微生物破片を分離する。水溶性の有機化合物はそのまま、あるいはUVなどにより殺菌や分解後に他の従属栄養型微生物の栄養、あるいは独立栄養型微生物の補助栄養、あるいは、同じ種類の微生物の培養に用いられる。また、微生物そのものと反応させてEOを分解してもよい。
 続いて微生物破片を水に分散した状態で排気ガスであるEOと接触させ、微生物破片のアミノ基、カルボキシル基、水酸基あるいはチオール基との付加反応によりEOを分解する。
 同時にEOが水の反応によって分解されて合成されるエチレングリコール(EG)が微生物の栄養となる有機化合物に混入しないため、エチレングルコールを代謝することができない微生物の場合は好ましい。
 また、微生物濃度が高い微生物培養液は、分解可能なEO量も多いため、EOが排気ガス分解システム外へ漏れるおそれを減らすため、有機化合物のうち油脂類とEOを接触するステップを設けずに、EOを微生物破片によって分解してもよい。
 さらに、微生物破片にはセルロースやタンパク質が含まれており、セルラーゼやペプターゼなどの酵素により微生物が利用可能なブドウ糖やアミノ酸あるいはペプトンに分解し、微生物の栄養とし、微生物の栄養と、栄養に利用できない残渣の有機化合物を分離し、残渣の有機化合物とEOを反応させてもよい。
 微量の、例えば大気への排出基準に満たない極めて低濃度のEOは、固体触媒の固体表面と接触せずにEO分解装置を素通りするため、大気中に排出されるEO量がゼロとならないうえ、定期的に触媒の交換が必要となる。
 栄養に利用できない残渣の有機化合物によって分解されるEOの量は、微生物活動停止により分解されるEOの量より少ないため、医療機器の滅菌後排出されるEOを既存のEO分解装置による分解後に、排出される微量のEOの分解に用いてもよい。
 既存のEO分解装置は、EOを比較的温度の低い100℃から300℃程度に加熱した固体触媒に接触させて分解し、あるいは、直線燃焼方法により、EOを直接燃焼した場合、大気への排出基準に満たない微量のEOを1000℃以上の高温で燃焼すると、燃料の消費量が多くなってCOの排出あるいは窒素酸化物が生成され、排気ガスが増加するおそれが生じる。
 さらに、EO検出下限以下、例えばEO濃度が0.002μg/m以下の場合、排気ガスからのEOの除去量が定量できない場合がある。これに対し、本発明に係る微生物とEOを反応させる方法は、触媒の交換や直接燃焼による燃料が不要であり、検出限界以下のEOであっても、EGあるいは他の有機化合物となるまで、排出されない点で、従来のEO分解システムより優れている。このため、本発明に係る微生物とEOを反応させる方法を、単独あるいは従来のEO分解方法と組み合わせた最終ステップの分解方法として行うと、EOの排出量が実質ゼロとなるので、より好ましい。
 また、微生物の培養濃度が大きければ、EOと微生物を直接付加反応させてEOを分解することで、上述の触媒式EO分解装置などを設置せずにEOの排出量を実質ゼロとすることが可能である。
 さらに、他の滅菌方法で排出される排気ガス、例えばガンマ線滅菌や電子線滅菌時のプラスチックから生じるごく微量のモノマーガスや、高圧蒸気滅菌で生じる臭気成分なども、同様に微生物と反応させることで分解してもよい。
 あるいは排気ガスは、ホルムアルデヒドのように反応性を有するもの、あるいはEGのように微生物によって代謝されるものや、揮発性有機化合物、Vapor Organic Compound(VOC)でもよい。
 ここで実質的にゼロとは、ガスクロマトグラフィー分析装置やガス検知器などの検出限界以下好ましくはゼロであることをいう。
 排気ガス濃度が検出限界以下の場合、例えばEOは、水に任意に溶解するため、最後に大気中に放出される排気ガスが除去された気体を水槽に通気し、長期間例えば、30日あるいは年ごとに、水槽に残存するEOまたはEGの量を測定する。
 排出されたEO量は、水槽内のEO量あるいはEOの有無としてもよい。排気ガス除去後のシステム内の空気に含まれるCOやEOが排気環境基準を満たす、あるいは実質的にゼロとなった場合には、システム内の空気を大気に放出してもよい。
 排気ガスとして、燃料や廃棄物の燃焼によって生じるCOは地球温暖化の原因とされているため、独立栄養型微生物が光合成によって、水を原料としてCOを分解してブドウ糖、脂肪酸、アミノ酸などの有機化合物を合成する。
 特に油脂類を合成する微生物を用いた場合、油脂類を蓄積あるいは燃料として用いることで、ガス、石油あるいは石炭などの化石燃料の使用量を減らしてCOの排出量あるいは、すでに放出されたCO自体を削減することができる。
 本発明に係る排気ガス分解システムまたは分解方法は、以下のステップを有する。
 微生物を準備する微生物準備ステップは、微生物の寄託、採取あるいは培養ステップで新たに細胞分裂により増えた微生物、あるいは微生物培養装置で培養した後、分離した分裂直後の微生物を分離回収して用いてもよい。あるいは、微生物の準備ステップとして入手した微生物を、常法に従って微生物の培養に適した条件である程度増殖させて用いてもよい。
 微生物準備装置としては、公知の培養装置あるいは、前のバッチで培養し、増殖した微生物を一部分離する分離装置、次のバッチへ供給する配管やポンプ、目的外の微生物の混入を防止するために、目的の微生物が死滅せず、目的外の微生物のみ死滅させる程度の濃度の次亜塩素酸ナトリウムの供給装置などでもよい。
 原料の準備ステップとは、少なくとも水、カリウム(K)、リン(P)、窒素(N)、無機塩類および必要な気体を準備し、培養に必要な微量元素、あるいは糖、多糖類、アミノ酸、ペプトン、たんぱく質などの有機化合物を準備するステップをいう。
 あるいは気体を原料とする場合、大気中のCO2、、水蒸気、窒素酸化物、硫黄酸化物を用いてもよく、原料の準備ステップあるいは原料準備装置に排気ガスである、CO2、EO、窒素酸化物、硫黄酸化物あるいはVOCを直接送気してもよく、水溶液として供給してもよい。
 さらに、排気ガス分解システムまたは分解方法は、COやOの供給ステップや目的外の微生物を除去するためのUV殺菌灯による殺菌ステップなどを有してもよい。
 殺菌ステップにおいて、目的外の微生物の増殖を防ぐために水、あるいは殺菌可能な他の原料をあらかじめ殺菌しておくことが好ましく、殺菌方法として、公知の殺菌方法あるいは滅菌方法を用いてもよい。
 殺菌方法は、微生物の培養を抑制しない方法であればUV照射殺菌のほか、オゾン殺菌や塩素殺菌などでもよいが、脱ガスステップを省くためであれば、UV殺菌が好ましい。
 UV殺菌は、例えば100~280nmのいわゆるUV-C波長、好ましくは254nmの波長を主成分とするUV殺菌灯あるいはLED-UVを微生物培養前の原料である、水や海水のタンクの外側から照射したり、タンク内部に配置して照射してもよく、透明あるいは半透明な微生物培養器とその配管にUV照射して殺菌してもよい。
 UV殺菌の場合、後述する排気ガス分解システム内の太陽光発電パネルや合成した油脂類を燃料とした発電によって電力が賄われるため、オゾンや塩素の購入コストや輸送時のCO排出を削減することができるため特に好ましい。
 原料準備装置として、雨水を利用する場合は雨水を受ける雨水枡や、微生物培養容器上面にたまった雨水を、ろ過、貯蔵する容器や配管、海水を利用する場合は海水をくみ上げるポンプ、UV殺菌灯、オゾン発生装置、次亜塩素酸ソーダ供給装置、及び配管、大気中あるいはボイラーから回収したCOを供給する送気装置および付随する配管やフィルター類、原料を溶解して水溶液を調整する溶解槽と攪拌装置、濃度センサーや、培養に適した温度に加熱あるいは冷却するヒーターや冷却装置あるいは熱交換器などを設けてもよい。
 排気ガス分解システムまたは分解方法は、原料を培養に適した組成、濃度、温度、O濃度、CO濃度に調整した水溶液に微生物を加え、培養に適した条件で微生物を培養する培養ステップを行う。
 微生物培養装置は、公知の微生物培養タンクやオープンポンド法でもよいが、目的外の微生物の混入を防ぎ、かつ排気ガスとして供給されるCOとの気液界面の更新が容易なもの、あるいは高濃度の微生物培養液であっても、光合成可能とするため微生物培養容器の厚さが小さいもの、あるいは積層しても光が透過可能なものが好ましい。
 さらに微生物培養容器には、微生物、原料培養液供給口、排気ガス供給口を設け、微生物培養後、培養液、合成した有機化合物、残余の原料および排気ガスとともに分離ステップに供給する配管またはポンプ、培養時間が長い場合は、微生物培養容器から吐出した培養液を、微生物培養容器に再度供給して循環する配管またはポンプなどを備えてもよい。
 微生物が増殖した培養ステップにおいて、培養と同時あるいは培養によって増殖した微生物が、有機化合物を合成する合成ステップを行う。所定の濃度あるいは所定の有機化合物合成量に達したら、培養および/または有機化合物合成ステップを完了する。
 微生物が合成した有機化合物とは、独立栄養型微生物が光合成で合成するブドウ糖のほか、セルロース、ヘミセルロース、ポリフェノール、アミノ酸、ペプトン、タンパク質、リン脂質、DNA、油脂類、その他代謝物などをいい、細胞膜、細胞壁または細胞質などを含んでもよい。
 油脂類としてドコサヘキサエン酸(DHA)やエイコサペンタエン酸(EPA)などの脂肪酸、脂肪酸エステル、リン酸エステルのほか、炭化水素類としてボトリオコッセン(C3458)やスクワラン(C3050)などのテルペン類でもよく、あるいは代謝によって生じるアルデヒド、ケトン、酢酸、クエン酸、シユウ酸などの酸類、アミン類、チオール類でもよい。
 さらに、有機化合物合成ステップでは、微生物と排気ガスであるEOと反応して微生物の活動を停止する微生物活動停止ステップを設けてもよく、合成される有機化合物としてDNAなどとEOが反応したEO付加物、あるいは微生物が破砕された微生物破片やEO付加微生物破片を含んでもよい。
 有機化合物合成装置は、排気ガス分解装置を備えてもよく、有機化合物を微生物が栄養としてそのままでは利用できない場合、セルロースやタンパクを酵素分解する酵素分解容器と、酵素不活性化あるいは酵素と有機化合物を分離する酵素分離装置を備えてもよい。
 分離ステップは、合成された有機化合物を微生物から分離するほか、有機化合物と水の分離、未反応排気ガス例えばEOやCO、他のVOC、あるいはOと水の気液分離、排気ガスをそれぞれの沸点や水に対する溶解度の差などで分離するほか、微生物を破砕し水溶性有機化合物と水に溶解しない微生物破片の分離、破砕に使用したビーズミルなどの分離回収、微生物破片を酵素により分解し、酵素分解後の有機化合物と微生物残渣の分離、あるいは水とEGを培養液から蒸留分離、蒸留後の蒸留残渣とEOの反応後によって生じたEO付加物を燃焼し、有機化合物をCOとして分離、水を留去したあと、EGに溶解しない塩類とEGの分離、塩類を溶融塩炉で加熱し、利用が困難な有機化合物を燃焼して除去する分離、あるいは塩類を水に対する溶解度の差によって、カリウム、リン、窒素などと、海水に含まれるNaClの分離および各分離方法の組み合わせでもよい。
 分離装置は、バッチ式遠心分離機、連続式遠心分離機、気液分離機、蒸留塔、沈殿槽、フィルターあるいはこれらを組み合わせたものと制御装置、付随する配管、ポンプ、真空ポンプなどにより形成され、微生物を活動停止せずに微生物と有機化合物を分離するには連続遠心式微生物分離機が好ましい。
 分離した有機化合物は、回収ステップにより回収される。回収装置は、分離した有機化合物を貯蔵する貯蔵タンク、微生物を破砕し分離した水溶性有機化合物などを貯蔵するタンク、あるいは従属栄養型微生物の栄養や独立栄養型微生物の補助栄養として有機化合物を直接微生物培養容器に供給する供給装置などにより形成され、水や排気ガスを回収する凝集器や排熱を回収、利用する熱交換器などを備えてもよい。
 回収した有機化合物は、微生物の栄養源とするほか、油脂類や微生物破片、蒸留残渣をシステム内の熱源や電力源の燃料として使用してもよく、燃焼により生じたCOおよび水を回収してシステム内で有機化合物の合成に用いることができる。
 また有機化合物の燃焼により生じた燃焼熱は、医療機器製造工場や病院などの空調や機械の冷却水によって生じる排熱とともに熱交換器などにより回収されて、洗浄などの温水や空調のほか、微生物の培養のため夜間や冬季の熱源としてもよい。
 これらによって、排気ガスのCOの元となる化石燃料の使用量を減らすことが可能であり、油脂類や炭化水素を生産して生産物として売却あるいは貯蔵してもよい。
 具体的な排気ガスは、熱源としてのボイラーで生じるガス、原油あるいは石炭などを燃焼して生じたCOや、医療機器の滅菌に使用される滅菌用ガスなどをいい、医療機器のガス滅菌ステップおよびガス滅菌ステップの後の排気ステップで排気された排気ガスが、微生物の培養ステップ、あるいは微生物破片との排気ガス分解ステップに供給される。
 滅菌用ガスは、滅菌あるいは殺菌用のガスとして使用可能であれば特に限定しないが、好ましくは、酸化エチレン(EO)、酸化プロピレン、オゾン(O)、ホルムアルデヒド(HCHO)、二酸化窒素などの窒素酸化物、塩素、過酸化水素、過酢酸のほか、超臨界流体CO殺菌に用いCO等であり、滅菌用ガスが水に溶け込んだ水溶液、あるいは次亜塩素酸ソーダのように塩素の発生源の水溶液、過酸化水素(H)水でもよく、より好ましくはEO、EOとCOの混合物あるいはNOを含む窒素酸化物であり、あるいはこれらのガスから選択された1種類以上の混合体である。
 EOは、反応性が高く、微生物のアミノ基、水酸基、カルボキシル基やチオール基と付加反応(アルキル化)によって、微生物の細胞分裂の阻害あるいは細胞を死滅させて、微生物の活動を停止させる。
 カテーテルなど医療機器の滅菌には、100%EOガスあるいは、燃焼防止のためCOとの混合気体が用いられる場合が多い。
 EOは沸点が11℃、水に対する溶解性が高く、水と反応してエチレングリコール(EG)となるが、淡水中での半減期が12~14日程度であるため、単に水に溶解させても分解に時間がかかるうえ、大気開放だとEOが揮発して気体として大気中に排出され、また大気中の半減期が数週間以上である場合には大気中に滞留するおそれがある。
 さらに、反応によって生じるEGと水を加熱により蒸留分離するために重油など化石燃料の燃焼による加熱や発電を行うと、別途COが生じる。
 医療機器製造工場の医療機器の滅菌に用いた排気ガス中のEOは、微生物が有機化合物を合成した合成ステップ後に供給して微生物の活動を停止させる、あるいは細胞を破砕して有機化合物を分離した微生物破片との付加反応に供給する。
 未反応のEOは、蒸留などにより分離後回収し、他の排気ガス分解ステップあるいは他の微生物活動停止装置に供給し、EGまたは有機化合物となるまで、システム内で循環するため、本発明に係る排気ガス分解システム外へ排出されないか、実質的にゼロとして排出される。
 COは、化石燃料の燃焼、あるいは爆発防止のためEOと混合して滅菌に使用したり、超臨界流体COによる殺菌あるいは滅菌後に、排気ガスとなる。
 光合成などによりCOから有機化合物を合成あるいは微生物の増殖を行う独立栄養型微生物は、微生物培養時の原料に原料準備ステップで加えるか、あるいは微生物培養容器にCOを供給する。
 二酸化窒素(NO)などの窒素酸化物は、医療機器の滅菌のほか、燃焼防止のためにEOと混合したり、熱源のボイラーや発電のために天然ガス、原油または石炭を燃焼した際に大気中の窒素が酸化されて生じる。
 窒素酸化物は、微生物の増殖に必要な窒素源として、原料準備ステップにおいて原料準備装置に供給され、あるいは、EO同様微生物の活動を停止するために、有機化合物合成ステップ後の排気ガス分解ステップにおいて、排気ガス分解容器に供給されてもよい。
 塩素あるいは塩素を発生させる次亜塩素酸ソーダなども、有機化合物の合成ステップ後、有機化合物と微生物あるいは微生物破片とを分離し回収した水に導入され、微生物の増殖を妨げる目的外の微生物を死滅させ、かつ目的とする微生物を死滅させない濃度で供給されてもよい。
 あるいは、海水から回収したNaClを原料として次亜塩素酸ソーダや塩素を合成して、使用してもよい。
 オゾンは、滅菌あるいは殺菌に用いられ、空気中の酸素にUV-Cを照射して生じるが、微生物の活動停止やEO自体の分解にも利用可能であり、速やかにOに分解されてしまうため、O分解後はOとして利用してもよい。
 具体的な微生物は、水中で培養可能な微生物であるが、水中微生物の培養可能な環境は淡水、海水を問わず、また水やCOを供給して光合成により、自ら栄養となる有機化合物を合成できる独立栄養型微生物あるいは、栄養となる有機化合物を与えて培養する従属栄養型微生物でもよい。
 独立栄養型微生物は、水やCOを供給して光合成可能な微生物であれば、特に限定されないが、例えば藍藻類、緑藻類、珪藻、紅藻類、褐藻類などの藻類が好ましく、貯蔵あるいは燃料用に使用可能な油脂類を産生する光合成独立栄養微細藻類(PhotoAutotroph MicroAlgae PAMA)であるイカダモやボトリオコッカス類などが好ましく、藻類の乾燥重量の5%以上、より好ましくは20%以上の油脂類を産生するものが好ましく、より好ましいのは、ボトリオコッカス類であり、乾燥重量の60%以上の油脂類を合成し、微生物外に油脂類を放出するボトリオコッカスブラウニーが特に好ましい。
 従属栄養型微生物の栄養となる有機化合物と油脂類の合成が可能なPAMAとして、好ましくは海水で培養可能なナンノクロロシプスや、NaCl濃度が実質ゼロあるいはNaCl濃度が海水より低い淡水で培養可能なクロレラ類(Chlorella)でもよく、淡水培養ではChlorella Vulgaris(クロレラ・ブルガリス)、Chlorella pyrenoidosa(クロレラ・ピレノイドサ)あるいは、イカダモ(Scenedesmus)、ドナリエラ(Dunaliella)、スピルリナ(Arthrospira, Spirulina)、ユーグレナ(Euglena)、ヘマトコッカス(Haematococcus)などでもよく、微生物培養容器で1種類培養してもよく、混合した多種類で培養してもよい。これらの微生物は、NaCl濃度が、海水より小さい海水と淡水の間、いわゆる汽水と呼ばれるNaCl濃度でも培養が可能である。
 ナンノクロロシプスやクロレラ類は増殖速度が速く、増殖および有機化合物合成のために排気ガスであるCOを分解する。
 微生物の増殖後、EOとクロレラ類のDNAや細胞膜などのアミノ基、カルボキシル基、水酸基またはチオール基などと付加反応させてEOを分解することで、微生物の活動を停止させ、かつ有機化合物の消費を抑えて、有機化合物の回収量を多くしてもよく、活動停止した微生物は、ボールミルなどで破砕後、細胞質に含まれるブドウ糖、多糖類、アミノ酸、ペプトン、たんぱく質など従属栄養型微生物の栄養をとなる有機化合物を分離する。
 従属栄養型微生物は、特に限定されないが、例えば化学合成従属栄養型微生物(ChemoHeterotroph MicroOrganism CHMO)として、糖類やアミノ酸などの栄養を与えることで油脂類を産生する微生物が好ましく、酵母類、糸状菌、ラビリンチュラ類が好ましく、より好ましいのは真核生物のうちラビリンチュラ類であるオーランチオキトリウムであり、成長速度が大きく、油脂類として炭化水素含量が20%を超えるオーランチオキトリウム18W-13aが特に好ましい。
 また、培養ステップで、PAMAは日光や光源を用いて培養を促進してもよく、必要に応じてCO、Oや原料を追加供給してもよく、糖、アミノ酸あるいはペプトンなど栄養源となる有機化合物を与えたり、太陽光のみならず人工的な光を与えてもよく、あるいは微生物の増殖を促進するために熱交換器により培養時の水温を増殖に適した温度に制御してもよい。
 特に微生物培養容器を屋外に設置した場合、夏の日中は温度が上がりすぎて逆に微生物の活動が弱まり増殖が抑制され有機化合物の合成量も低下するため、培養容器内の微生物培養液を微生物培養容器から熱交換器に送液し、過剰な熱を熱交換器により除去分離して再び微生物培養容器に戻すように循環させてもよく、あるいは供給する排気ガスを熱交換機で加温あるいは冷却して微生物培養液に供給して微生物培養液の温度を上下させるように制御してもよい。
 培養に適した温度は、微生物の種類などで異なるが、例えば5℃以上50℃以下、好ましくは20℃以上35℃以下であり、より好ましくは、ナンノクロロシプス、クロレラ類、オーランチオキトリウムの培養に適した温度が25℃、ボトリオコッカス類の培養に適した温度が30℃である。
 培養温度は、EOなどの分解が必要な排気ガスの量と、温度維持に必要な熱源に使用する燃料の燃焼により生じるCOの排気量および有機化合物の合成量によって調整してもよく、冬季や夜間には温度を下げてもよいが、夏季の日中は微生物が死滅するおそれがあるため、培養液の最高温度が35℃を超えないことが好ましく、培養温度を微生物の培養に適した温度の±2℃の範囲で制御することがより好ましい。
 あるいは工場内の排熱や建屋や工場周辺の住宅などに昼間蓄積した蓄熱を利用して、夜間や冬季に微生物培養容器内をはじめ培養液を加温してもよい。
 培養温度は、微生物培養器内に複数設置した温度センサーにより測定してもよく、あるいは培養器の入口と出口の培養液温度でもよく、微生物培養容器の表面温度を赤外線温度センサーにより非接触で測定した温度でもよく、微生物培養容器表面に貼付した温度センサーで測定した温度でもよい。
 微生物を培養する微生物培養ステップは、光が透過するガラス製あるいは透明な樹脂製の容器内や、オープンポンド法のような屋外での培養で行ってもよいが、図2~3に示す三層気泡緩衝材10を用いてもよい。
 三層気泡緩衝材10は、一体的に成型したものでもよく、シートと二層気泡緩衝材の凸部を接着あるいは融着して形成したものでもよく、第1のシート1、第2のシート2と、第1のシート1と第2のシート2の間に柱部4を有し、かつ第1のシート1と第2のシート2との間に連通する微生物培養液供給口21を有する微生物培養容器20として用いる。
 図2に示すように、柱部4は、第1のシート1と第2のシート2の間に、平面部7及び底面部と、平面部7から突出する複数の凸部6を有する第3のシート3を配置し、柱部4の凸部6の頂部8が第1のシート1と密着して形成される柱部4であり、かつ前記柱部4が中空である。底面部は、平面部7の裏面側に配置されて第2のシート2と密着する部位である。三層気泡緩衝材の柱部4は一列に等間隔に並んだ柱部集合4Aと隣接する柱部4Bが、それぞれの柱部4の中心を交互にずらして配置されている。これにより培養液が柱部4の間を直進せず柱部4と衝突するため、攪拌翼などがなくても培養液と排気ガスが攪拌され効率よく接触する。
 微生物培養容器20は、微生物培養液供給口21に連通する連通孔5を有し、微生物培養容器20の端部に第1のシート1と第2のシート2が密着して熱融着した融着部13を有する。密着部12は接していればよく、接着やシール材あるいは気密を保持できればよく、分離可能でもよい。密着部13は、第1のシート1と第2のシート2が直接的に密着して形成されてもよく、または第3のシート3を介して第1のシート1と第2のシート2が間接的に密着して形成されてもよい。第1のシート1と第2のシート2が間接的に密着する場合、第3のシート3の一方面は第1のシート1と密着し、第3のシート3の他方面は第2のシート2と密着して、柱部4はほとんど形成されない。
 融着部13は、密着部12を融解させて強度を増したものであり、分離が不可能あるいは困難な部位となって、水やガスがリークしにくい部分をいう。融着方法として、熱融着あるいは超音波融着などが好ましいが、接着剤による接着でもよい。
 図3に示す微生物培養容器20は、三層気泡緩衝材10、微生物供給口21を有し、微生物培養容器20の第1のシート1、第1のシート1と第2のシート2の間に柱部4を有する。
 具体的には、略長方形の微生物培養容器20の短辺の端部に第1のシート1、第2のシート2と微生物培養液供給口21が密着して培養液の漏れを抑えた密着部12と略三角形の第1のシート1と第2のシート2の融着部13を有し、第1のシート1、第2のシート2および柱部4で囲まれた微生物培養液供給口21に連通する連通孔5と、前記微生物培養容器20の長辺の端部に前記第1のシート1と前記第2のシート2が融着した融着部13を有し、柱部4は、凸部6を有する第3のシート3で形成されて中空となり気泡が残留する。第1のシート1と第2のシート2は、第3のシート3を介して間接的に融着されるが、第3のシート3を介さずに直接的に融着されてもよい。
 さらに、排気ガスとして二酸化炭素を供給する排気ガス供給口23が微生物培養容器20のもう一方の短辺の第1のシート1および第2のシート2と密着して配置されている。
 微生物培養液供給口21と排気ガス供給口23は近接して配置してもよく、複数配置してもよく、図3に占めすように微生物培養容器20において、対向させて配置してもよい。密着部12は、微生物培養液供給口21や排気ガス供給口23などと接着あるいは熱融着やシール材などで気密性を高めてもよい。
 微生物培養液供給口21と排気ガス供給口23を対向させた場合、微生物培養液供給口21と排気ガス供給口23に高低差を設け、微生物培養液供給口21の方を高い位置に配置すれば、微生物培養液は自然落下し、一方排気ガス供給口23から供給された排気ガスは、水よりも比重が小さいため、浮力により微生物培養液供給口21側へ向かうため、微生物培養液と排気ガスの接触と攪拌が容易となり微生物のガス交換が容易となる。
 また、融着部13に位置する第3のシート3で形成された柱部4にエア抜き孔11を設けて気泡に残った空気を抜いてから、第1のシート1および第2のシート2を第3のシート3とともに融着することで融着部13が破裂せず、第1のシート1と第2のシート2の間に第3のシート3の平面部7と凸部6が融着されることで、培養液や排気ガスの漏れを防止することができる。
 独立栄養型微生物を光合成で培養するために、シートの材料として透明または半透明の樹脂を用いてもよい。樹脂としてはポリオレフィン系、ポリアミド系、ポリエステル系、ポリカーボネート系、ポリウレタン系、フッ素系、シリコン系の樹脂、およびエラストマーまたはこれらのポリマーアロイでもよいが、好ましくはポリオレフィン系樹脂であり、ポリエチレン系あるいはポリプロピレン系が好ましく、エチレン系樹脂にはエチレン共重合樹脂、ポリエチレン樹脂などが含まれ、エチレン共重合樹脂としては、エチレン・酢酸ビニル共重合樹脂(EVA)やエチレン・アクリル酸エチル共重合樹脂(EEA)などがあげられる。
 ポリエチレン樹脂としては、直鎖状低密度ポリエチレ(LLDPE)、低密度ポリエチレン(LDPE)、高密度ポリエチレン(HDPE)などを用いることができる。さらに柱部4が培養液を攪拌し、微生物周辺の気液界面を更新するため、微生物細胞膜表面でのガス交換が容易となる。そのうえ、微生物培養容器20内に排気ガスあるいは排気ガスを含む空気を送気すると柱部4によって送気した空気の気泡が小さくなるため、培養液への排気ガスである例えばCOの供給が容易となる。
 排気ガスの供給あるいはOの発生により、微生物培養容器20の内圧は大気圧より高くなり、ヘンリーの法則によりCOやOの溶解度が大きくなる。
 これらによって、本発明に係る微生物培養容器20は、従来の培養タンク内あるいはオープンポンド法より培養液中の微生物濃度を大きくすることができる。微生物培養容器20の大きさや形は任意であるが、図3のような長方形の平面の場合、短辺である幅は0.1mから3m、好ましくは0.3mから1.0mである。
 幅が0.1m未満だと端部の密着部分の割合が大きくなり培養液が流れる連通孔5の体積が小さくなる。また幅が3mを超えると培養液の重みで中央部がたわみ培養液の流れに偏りが生じる。
 微生物培養容器20の長さ(図3における長方形の微生物培養容器20の長辺の長さ)は、設置できるのであれば任意であるが、長辺の長さは、好ましくは0.3mから1000m、より好ましくは10mから100mである。長さが0.3m未満だと培養時間が短く、1000mを超えるとリークが生じたときの修理や交換作業の効率が低下する。
 微生物培養容器20の厚さ(第1のシート1がある面から第2のシート2がある面までの長さ)は、1mm以上あればよいが、好ましくは2mm以上20mm以下、より好ましくは3mm以上10mm以下である。
 あるいは、微生物培養容器20を屋外に設置した場合、飛来物や虫、鳥、雹、落雷など突発的な物理的損傷や、光や酸化による劣化によるリークが生じた場合に、修理や交換頻度を少なくするために、リークした微生物培養液を受けることができる受け器、保護用のプラスチックシート、微生物培養容器を支持する容器枠などを設けてもよい。
 受け器は、樋や、シートや袋などでもよく、リークの有無およびリークした培養液がさらに拡散しないことを目視できるように透明性が高く、耐水性を有する樹脂、好ましくはポリエチレンなどのポリオレフィン樹脂や、ポリエチレンテレフタレート(PET)、ポリカーボネート樹脂、ポリ塩化ビニル、アクリル樹脂やこれらのエラストマーやポリマーアロイ、積層物でもよい。
 あるいは、図4から図12に示す変形例の微生物培養容器20’は一部の柱部4を水平に切開した三層気泡緩衝材10’と、内部に配置される板状のライナー111と、中空部分113を支える柱となるリブ112からなる4つの容器枠110(上側容器枠110A、左側容器枠110B、下側容器枠110C、および右側容器枠110D)および、隣接する容器枠110を接続する4つの接続部120(左上側接続部120A、左下側接続部120B、右下側接続部120C、および右上側接続部120D)を有してもよい。
 なお図4から図7において、微生物培養容器20’は紙面の上側を上側、下側を下側、右側を右側、左側を左側と称するが、実際の微生物培養容器20’の向きはこれに限定されない。
 図4の一部断面図に示すように微生物培養容器20’は、一部の柱部4の一部または全周を切開した三層気泡緩衝材10’の外縁に、上側容器枠110A、左側容器枠110B、下側容器枠110C、右側容器枠110Dを配置する。
 図5に示す接続部120は、平板の一部に並ぶ複数のスリット121を設け、形成された複数の突起122を、容器枠110の中空部分113に挿入して、隣接する容器枠110同士を固定する。
 4つの容器枠110は左上側接続部120A、左下側接続部120B、右下側接続部120C、および右上側接続部120Dにより接続され、略四角形の微生物培養容器20’の外縁を形成する。接続部には、培養液あるいは排気ガスが流れるための溝130(溝130A、溝130B、溝130C、および溝130D)が形成されている。溝130を通して直接培養液あるいは排気ガスを流してもよく、あるいは溝130に配管を配置してもよく、配管の材質は特に限定されないが、錆びにくく安価で加工しやすいポリエチレンチューブが好ましい。
 具体的には、左上側接続部120Aには培養液および排気ガスの入り口側に培養液供給用ポリエチレンチューブ114と排気ガス供給用ポリエチレンチューブ115を配置するため上下方向に直線状の溝130Aを設ける。溝130Aの幅は2本の配管の幅より大きく、溝130Aの深さは、配管を配置した時の配管と接続部120Aの上面との間に隙間があるように設定されることが好ましいが、配管の太さと溝の寸法はそれぞれ、これに限られない。なお、上面とは、第1のシート1’側または平面側の面である。また、下面とは、第2のシート側または底面側の面である。
 左上側接続部120Aは、容器枠110の中空部分113との間に隙間を設けるために、配管の一部を扁平にさせてもよい。これにより、容器枠110に三層気泡緩衝材10’のシート部分を固定した時に、容器枠110のライナー部分111と三層気泡緩衝材10’の第1のシート1’との間に隙間が生じることを防止する。
 左下側接続部120Bには湾曲した溝130Bを設け、一部が湾曲した供給用ポリエチレンチューブ114Cと排気ガス供給用ポリエチレンチューブ115Cを配置する。
 右下側接続部120Cには一部が湾曲した溝130Cを設け、培養液排出口あるいは培養液排出用ポリエチレンチューブ117が配置される。
 右上側接続部120Dには、三層気泡緩衝材10’内の反応領域15を通過した培養液および排気ガスまたは光合成により生じた酸素等の気体が排気される上側方向と、培養液が下側に向かう下側に溝130Dを設け、上側方向に排気用ポリエチレンチューブ116が配置される。
 接続部120のスリットは、容器枠110のリブ112の有無に合わせて設けられる。接続部120は、破線で示した、一部が切り取られたリブ112’がはめ込まれるようにスリットではなく深さが小さい凹部123を設けてもよい。
 図6に示すように、容器枠110、接続部120に固定した配管に三層気泡緩衝材10’を固定する。固定方法として容器枠110、接続部120に固定した配管の上面に接着剤(図示せず)を塗布し、第1のシート1’および第3のシート3’および切開した柱部4”を接着する。同様に、容器枠110、接続部120の下面に第2のシート2’、第3のシート3’の一部および切開した柱部4”を接着する。
 このとき、左側容器枠110Bのリブ111Bおよび右側容器枠110Dのリブ111Dに対して、一列に等間隔に並んだ柱部集合4Aを直角に交差するように配置する。三層気泡緩衝材の柱部4’は一列に等間隔に並んだ柱部集合4Aと隣接する柱部4Bが、柱部の中心を交互にずらして配置されている。
 これにより、培養液および気泡は、柱部集合4Aと隣接する柱部集合4Bの間の連通孔5’を通るが、上下方向に直進せず、培養液と気泡が攪拌されるため、微生物表面の気液界面が常に更新され、排気ガス分解の反応効率が向上する。
 培養液や排気ガスは反応領域15に連通した中空部分113を通して直接反応領域15に供給してもよく、あるいは培養液供給用ポリエチレンチューブ114と排気ガス供給用ポリエチレンチューブ115を通して供給してもよい。培養液供給用ポリエチレンチューブ114と排気ガス供給用ポリエチレンチューブ115はいずれも培養液供給側開口部114Aと排気ガス供給用開口部115Aを有し、もう一端は培養液供給用ポリエチレンチューブ封止端114Bと排気ガス供給用ポリエチレンチューブ封止端115Bで封止する。
 供給側反応領域15と接する培養液供給用ポリエチレンチューブ114と排気ガス供給用ポリエチレンチューブ115には、連通する培養液供給用孔114Dと排気ガス供給用孔115Dを設ける。
 培養液供給用孔114Dは、下側容器枠110Cのリブ112Cに設けた孔140Cと連通している。排気ガス供給用孔115Dは、下側容器枠110Cのリブ112C’に設けた孔140C’と連通している。
 これにより、培養液および供給された排気ガスは、微生物培養容器20’の下側から供給され、上側に向かって流れる。
 培養液供給用ポリエチレンチューブ114と排気ガス供給用ポリエチレンチューブ115は、培養液供給用孔114Dと排気ガス供給用孔115Dをふさがずに、かつ培養液と排気ガスが下から漏れないように接着剤でライナー111およびリブ112に固定され、一部が三層気泡緩衝材10’に固定されてもよく、培養液供給側開口部114Aから培養液供給用ポリエチレンチューブ封止端114Bまで一本のチューブで構成されてもよく、一部だけチューブを使用し、チューブの間を中空部分113で連通してもよい。排気ガス供給用ポリエチレンチューブ115も同様であるが、培養液供給用と排気ガス供給用の配管の配置はこれに限られない。
 図7、10~12に示すように、微生物培養容器20の補強と、リークした培養液を回収するために、受け器150を設けてもよい。
 受け器150は、微生物培養容器20’の上面の第1のシート1’側と下面第3のシート3’側に配置した受け器外枠160、160’、受け器内枠170、170’、受け器150の上面および下面のプラスチックシート180,180’および、受け器150の右下側に設けた受け器リーク液排出口118,118’を含む。
 受け器外枠160のリブの方向は、受け器内枠170および容器枠110のリブ方向と直行するように、受け器外枠160が配置される。これもより、自重あるいは風や降雨や飛来物により微生物培養容器20’に上方向から荷重がかかっても微生物培養容器20’の容器枠110が折れることを防止する。
 さらに、左側受け器外枠160Bと左側受け器内枠170Bには、リークした培養液を回収する受け器リーク液排出口118を設けるため、左側受け器外枠160Bの下側が内側に貫入し、左側受け器内枠170Bの一部が切り取られている。
 反応領域15の第1シート1’側から培養液がリークした場合、第1のシート1‘とプラスチックシート180の間の下側に培養液が溜まる。
 溜まった培養液は、受け器リーク液排出口118から回収し再び微生物培養容器20”に戻すか、あるいは外部と接触し他の微生物が混入した場合は紫外線などで不活性化したのちに廃棄してもよい。この場合、受け器150を備えた微生物培養容器20”は、右側が左側より高くなるように傾けて、リークした培養液が受け器リーク液排出口118へ流れるように設置してもよい。
 またリーク量が一定量を超えた場合、あるいはリーク箇所が多い場合は、修理あるいは微生物培養容器20’を交換してもよい。
 受け器150は、万が一微生物培養容器20’から培養液がリークしても、リークした培養液を容易に回収することできるため、微生物培養容器20’の修理や交換頻度を少なくして、コストを下げることができる。
 図8の微生物培養容器20’の上下方向の中心である水平方向C-C’切断面に示すように、左側の培養液供給用ポリエチレンチューブ114と排気ガス供給用ポリエチレンチューブ115は、例えば中空部分113と置き換えてもよい。三層気泡緩衝材10’に対し、リブ112が壁面となって培養液や供給された排気ガスがリークしないように配置されている。
 図9の微生物培養容器20’の下部の水平方向D-D’切断面に示すように、培養液供給用ポリエチレンチューブ114と排気ガス供給用ポリエチレンチューブ115は一部を扁平させてもよい。また、右側の接続部120Dの薄くなった突起122D’と中空部分113Dの間をオーバーフローした培養液が下に向かって流れるように構成されているが、ここにポリエチレンチューブを配管してもよい。
 図10に示す受け器150を備えた微生物培養容器20”は、微生物培養容器20’および受け器150の上下方向の中心である水平方向E-E’切断面に示すように、プラスチックシート180と左側受け器内枠170Bのリブ112が壁面となってリークした培養液が広がることを防止し、下側も同様にリークした培養液を保持する。
 図11に示す受け器150を備えた微生物培養容器20”は、左側上下方向F-F’切断面に示すように、リークした培養液の排出管118を配置しているが、中空部分113を用いてもよく、排出管118を上側だけあるいは1本ずつ設けてもよい。排出管118は、ポンプあるいは排気ガス供給装置との接続が容易となる。
 図12に示す受け器150を備えた微生物培養容器20”は、右側上下方向G-G’切断面に示すように、下側容器枠110Cと受け器下側外枠160Cの間から万が一培養液がリークした場合、下側受け器外枠160Cと、下側容器枠110C間を流れるためリークした培養液の回収が容易となる。あるいは紙面上側を鉛直上方とした場合に、鉛直上方側の受け器下側外枠160Cと鉛直下方側の受け器下側外枠160C‘の間にシートを設け、リークした培養液が飛散せずに下に向かって流れるようにして、下側で回収してもよい。なお、シート180と180’は、連続した1枚のシートを用いてもよい。
 微生物培養容器20の設置場所は工場や家屋であれば屋根や壁面であってもよい。工場の屋根に設置する場合、屋根の耐荷重が100kg/mであれば微生物培養容器20を複数枚重ねることができる。
 培養する微生物は同種でもよく、微生物培養容器20ごとに異なる種類の微生物を培養してもよい。
 設置場所は、工場内あるいは周辺の空き地でもよく、好ましくは利用用途がない傾斜地や、切土や盛土により作られる人工的な斜面である法(のり)面のように崩落防止のためにコンクリートブロックなどで固定され、コンクリート面上など他の利用が困難であり、崩落防止のため過大な重量をかけることができないところに設置してもよい。
 ポンプなどの動力やUV殺菌灯に使用する電力を得るために、微生物培養容器20は、太陽光発電パネルや軽量の太陽光発電シート90(図17を参照)の上に積層してもよい。これにより、水が赤外線を吸収するため太陽光発電シート90の蓄熱を小さくすることができるため、昇温による太陽光発電シート90の発電効率が低下することを防止することができる。
 太陽光発電の発電量と微生物培養量の兼ね合いから太陽光シート90の上に積層する微生物培養容器20の積層枚数は1から10枚、好ましくは2~5枚である。
 微生物培養容器20および太陽光発電シート90は、夏季日中の工場や家屋の屋根の蓄熱を防ぐとともに、夜間や冬季は屋根からの放熱を防ぐことで、建物内の温度の変動を小さくし、温度の維持に必要な電力やボイラー熱源の消費を抑え、排気ガスであるCOの排出量を減らすことができる。
 工場の屋根に設置した場合、原料準備装置および微生物準備装置から微生物培養容器20入口までポンプ52で送液し、微生物培養容器20に設けた培養液供給口21から微生物培養容器20に培養液を供給する。
 水やEGは蒸留後、凝縮器を用いて回収し、システム外に排出するため、未反応のEOを検出限界未満濃度まで除去するが、蒸留した水をシステム内で循環するのであれば、微生物の増殖や有機化合物合成の量や速度が低下しない程度に未反応のEOやEGが残存してもよく、逆に微生物の培養ステップにEOと接触あるいは反応後に回収したEOを含む可能性を有する水を加えるステップを有しなくてもよい。
 第一の実施形態は、独立栄養型微生物(PAMA)であり増殖速度の速い淡水クロレラ類としてChlorella Vulgaris102を用いる。
 図13のフロー図および図18に従って以下説明する。PAMAである微量のChlorella Vulgaris102を、原料である254nm近傍のUV(UV)を放射するUV殺菌灯を照射して殺菌した水に常法、例えば水質汚濁研究 第14巻 第9号615-6231991に記載の比率の原料に溶液に添加して培養液とする。培養液を25℃あるいは25±2℃に保って微生物培養液供給口21から微生物培養容器20へ培養液を送りこむ。
 培養ステップに微生物培養容器20において日光照射下で培養したChlorella Vulgaris102が所定の濃度、好ましくは0.01wt%~50wt%、より好ましくは0.1%~40%、さらに好ましくは1%~30%に達し、同時に有機化合物を合成するため、一部を次の培養分として分離して微生物準備装置へ送り、残りは微生物の活動を停止させる。
 培養分として分離したChlorella Vulgaris102は、続いて微生物培養液供給口21から微生物培養容器20へ新しい原料液とともに供給してもよい。微生物から有機化合物を回収する方法として、排気ガスにより活動を停止させるほか、前述のUV照射、超音波、マイクロバブリングあるいはビーズミルなどによって物理的に微生物を破砕させてもよい。
 たとえば医療機器製造工場であれば、医療機器の滅菌に使用後の滅菌用ガスを用いてもよく、特にEOが好ましい。
 所定の濃度に達したChlorella Vulgaris102培養液の微生物を、破砕方法としてボールミル、サンドミルあるいはビーズミル、超音波、マイクロバブリングなどによる物理的破砕後、遠心分離機で、水溶液と水に不溶なChlorella Vulgarisの微生物破片102Xに分離する。
 破砕した微生物に含まれる水溶性有機化合物は、CHMOであるオーランチオキトリウム104の栄養あるいはPAMAの補助栄養として用いるため、水、カリウム、リン、窒素、その他の無機塩類とともに次の培養のために使用する。
 油脂類は比重が小さいため水溶液と分離した場合は、油脂類を回収して、微生物の栄養あるいは、油貯蔵タンク82に送液して貯蔵してもよい。
 水に溶解しない微生物破片102Xは、EOと付加反応させる排気ガス分解方法により、排気ガス分解容器57でEOを分解する。
 具体的には、EO100%あるいはEOとCOの混合ガスを排気ガス供給口から供給する。微生物破片102XとEOの反応は微生物培養容器20内でもよいが、気密性、耐圧性および耐食性を有するステンレスからなる排気ガス分解容器57内で排気ガスと培養液を接触させたほうが好ましい。
 あるいは、Chlorella Vulgaris102を活動停止するためにChlorella Vulgaris培養液にUV殺菌灯を照射してもよいが、排気ガス分解容器57内の微生物あるいは微生物破片濃度が大きく、UV光が容器の底まで十分届かない場合は、EOによる微生物活動停止のほうが好ましく、両方組み合わせるとより好ましい。
 EOは、Chlorella Vulgaris102の細胞膜や核のDNAと反応して細胞分裂の阻害や微生物自体を死滅させることで活動を停止させる。
 未反応のEOは気液分離により分離し、さらにEOは、水に対して任意に溶解するが、沸点が低いため水蒸留塔62あるいは真空蒸留装置により水と分離あるいは一部水とともに蒸留し、次に培養した微生物の活動停止あるいは排気ガス分解に再使用する。EOが水と反応して生じたEGは、蒸留して回収し、燃料に用いてもよい。
 光合成で生じたOは、次の培養に用いるかあるいはOを消費するオーランチオキトリウム104の微生物培養容器20Cに送り込む。
 具体的な分離方法として、Oは気泡として生じるため気液分離装置61により気体として分離する。OはEO、COまたは窒素酸化物が含まれないことを確認してから大気中に放出してもよい。
 未反応のCOは水に溶解した分はそのまま水とともに回収して原料として微生物の培養に用いるか、あるいは気体としてはボンベなどのCO供給源に送り込んで再使用する。
 水に溶解しない微生物破片102Xは、遠心分離により除去し酵素によって分解し、糖あるいはアミノ酸やペプトンとしてオーランチオキトリウム104の栄養あるいはPAMAの補助的栄養としてもよい。
 水は、水蒸留塔61あるいは真空蒸留装置により分離することができる。
 水が除去されるとEGに難溶な水溶性有機化合物や無機塩類は、EGに対する溶解性が低いため析出し、遠心分離あるいは沈殿法によって分離することができる。
 EGは沸点が198℃と水より高いため、EG蒸留塔63あるいは真空蒸留装置によりEGを有機化合物や無機塩類と分離することができる。
 EGはそのまま燃料として用いることができるが、好気性微生物あるいはPAMAやCHMOによって代謝させてもよく、COと水まで分解すれば、COと水はPAMA培養の原料として用いることができる。
 EGを留去した残渣には、カリウム、リン、窒素および無機塩類、微量の有機化合物および微生物破片が含まれる。新たにUV殺菌した水を加えてカリウム、リン、窒素および無機塩類や有機化合物、微生物破片102Xとともに原料として利用してもよい。これらの排気ガス分解方法は、バッチ式で1ステップごとに行ってもよく、あるいは各ステップを同時に行い、連続して行ってもよい。
 第1の実施形態の変形例として、海水で培養可能なPAMAであるナンノクロロシプス103を用いる。ナンノクロロシプス103は脂肪酸や脂肪酸エステルの産生量が多いため、分離した脂肪酸等を廃棄物の焼却や化石燃料の代替あるいは加熱や発電のためのボイラー燃料として用いたり、エステル化あるいはヒドロキシステアリン酸など油凝固剤の添加により固体化して貯蔵してもよい。
 海水を用いた場合、海水中ではほとんど代謝されないマイクロプラスチックや微生物の増殖を阻害する微生物の代謝物、微量のEGを含む場合は、燃焼あるいは溶融塩炉(図示せず)によって有機化合物を燃焼して除去する。
 有機化合物が除去された、カリウム、リン、窒素および無機塩類とNaClは、水に対する溶解度の差によって海水と同等の組成となるまでカリウム、リン、窒素をはじめ海のプランクトンの異常発生の原因となる無機塩類を除去して、海に放出してもよく、NaClとして使用または貯蔵してもよい。
 これにより大気中に排出される二酸化炭素の排出量あるいは環境中のCO自体を削減し、あるいは生物に有害なEOの排出を実質的にゼロにすることができる。
 図14に示す第2の実施形態において、従属栄養型微生物のうち化学的従属栄養型微生物(CHMO)を用い、有機化合物である油脂類として、主に炭化水素スクワラン(C3050)を産生するオーランチオキトリウムのうち、油脂合成量の多いオーランチオキトリウム18W-13a株104を用いる。
 排気ガス分解システムは原料準備ステップで培養に必要な糖、アミノ酸、ペプトンなど栄養となる有機化合物を準備することと、Oを供給し、排出された二酸化炭素を回収して合成された炭化水素の生産を目的とする点が、第1の実施形態と異なり、共通する装置やステップ等については説明を省略する。
 海水または、海水より塩濃度の低い水をUV殺菌したのちに、オーランチオキトリウム18W-13a株104に必要なブドウ糖、アミノ酸、カリウム、リン、窒素、無機塩類とペプトン等を加え、Oを供給しながら微生物培養容器20Aで培養し、必要な栄養源や無機塩類は培養の途中で追加してもよく、UV殺菌後に与えてもよい。
 所定時間例えば、25℃で96時間培養すると、油脂類を細胞膜内に貯蔵したオーランチオキトリウム18W-13a18W-3株104は比重が小さくなるため、細胞分裂直後で油未合成あるいは貯蔵していないオーランチオキトリウム18W-13a株104と比重の差が生じ、連続遠心式微生物分離装置40、あるいはバッチ式遠心分離装置56によって分離することができる。
 油未合成のオーランチオキトリウム18W-13a株104は、細胞内に油脂類を貯蔵するまで微生物培養容器20Aで培養し、油脂類を貯蔵したオーランチオキトリウム18W-13a株104は、ボールミルや超音波により破砕し、油脂類と微生物破片104Xと水溶液から、油脂類と大部分の水を分離し、少量の水溶液と微生物破片を、既存のEO分解装置で分解した低濃度のEOを含む排気ガスと反応させる。
 油脂類と水を蒸留などにより分離したのちに、油脂類は熱源、発電利用のため燃焼、あるいは貯蔵して、化石燃料の使用量を減らして大気中のCO量を減らして、医療機器製造工場の光熱費コストを削減したり、排気ガスを原料として油脂類を生産してもよい。
 オーランチオキトリウム118W-3株104をはじめとした油脂類を合成するCHMOは、光の照射を必要としないので、工場内あるいは床下などに微生物培養容器20Aを複数積層して設置してもよい。あるいは既存の太陽光発電パネルの下に設置して油脂類を生産し、生産した油脂類を太陽光発電パネルが発電できない雨天や夜間に使用する電力の補てんとしてもよく、あるいは油脂類を貯蔵してもよい。
 図15に示す第3の実施形態は、PAMAの1種であり、かつ有機化合物である油脂類としてボトリオコッセン(C3458)炭化水素を合成して微生物の細胞外に放出するボトリオコッカス類、好ましくはボトリオコッカスブラウニー(BB)101を培養する。
 BB101は、太陽光などの光照射下では光合成により25℃から35℃、好ましくは30℃で培養すると、増殖とともにその際にボトリオコッセン(C3458)を主成分とした炭化水素を乾燥重量の5%以上合成する。
 好ましいBB101は、炭化水素を乾燥重量の20%以上、更に好ましくは約60%以上合成するBBであり、体外おもに微生物まわりに炭化水素を蓄積してコロニー101Bを形成する。
 図15および図18に示すようにBB101による排気ガスの分解方法は、BB準備ステップ、原料準備ステップを有し、微生物培養容器20Bに培養液と排気ガスであるCOを供給して培養するBB培養ステップを行う。
 BB101は、有機化合物、主に炭化水素である油脂類101Aを合成するステップにより、合成した油脂類101Aを細胞内に蓄積、あるいは細胞外に放出してコロニー101Bを形成する。
 最大微生物濃度あるいは、最大油脂生産量に達したら、連続遠心式微生物分離装置40にて、油脂量の少ないあるいは油脂未合成の低油脂BBと高油脂BBに分離する。
 低油脂BBとは、分裂直後で油を生成していない油脂類未合成BB101Dや油脂類を放出したBB101d、油脂類の合成能力を喪失したBB101Eなど、細胞内の油脂量が少ないものをいい、高油脂BBは細胞内に油脂類を蓄積したBB101C、あるいは多数の細胞が周辺を油脂で囲まれたコロニー101Bなどの油脂類が多いBBをいう。なお、高油脂BBは当該BB株の最大油脂量の50%以上のものあるいは、比重が培養液、水または海水より小さいものとしてもよい。
 油脂類101Aを生成したBB株101の比重は、ボトリオコッセンの比重が0.83、油を含まないB.B.株の比重が1.03程度であるため、油脂類未合成BB株より小さく、ボトリオコッセンより大きいため遠心分離によって分離される。
 したがって、連続遠心式微生物分離器40によって、遠心力を加えると、分離容器43の外側に高比重の低油脂BB、最も内側に油脂類101A、外側と内側の間に、中比重の高油脂BBに分離する。
 コロニー101Bは物理的に破壊して、油脂類101Aと油を放出したBBを分離する。分離された油は回収するが、BB101DやBB101dが油合成能力を有する場合は、回収して微生物培養容器20Cに送液し培養を続ける。
 油合成能力の無いBB101Eは、排気ガス分解容器57に送液し、EOなどの排気ガスでBBの活動を停止し、破砕後、未反応EO、EG、BB微生物破片104X、油脂類101A、水溶液などの原料を分離回収する。
 遠心分離機はバッチ式あるいは連続式でもよいが、図16に示すように、密度で分離できる部分と微生物のコロニーの大きさで分離できる連続遠心式微生物分離器40がより好ましい。
 図16は連続遠心式微生物分離器40の遠心分離部分の模式図である。連続遠心式微生物分離器40は、回転部41、流入管42、分離容器43、流体チャンバ44、が設けられている。
 第1の分離ステップとして流入管42から分離容器43内に流入した油脂類を含む培養液は、遠心力によって低油脂BBであるBB101D、BB101dおよびBB101Eが主成分の高比重層45、油脂類101Aが主成分となる低比重層46および流体チャンバ44に向かう高油脂BBである含高油脂BB101Cとコロニー101Bを主成分とする中比重層47が形成される。
 流体チャンバ44には流体チャンバ流入部44aと流体チャンバ流出部44bが設けられ、大きさで分離する段差部44cが設けられている。それぞれ分離したBB101培養液の高比重層流出管45aと高比重層容器45b、低比重層流出管46aと低比重層貯留容器46bが設けられている。中比重層流出管47aは、流体チャンバ流入部44aと接続され、流体チャンバ流出部44bと中比重層貯留容器47bと接続されている。
 中心部の流入管42から流入した培養液と油脂類との混合液は、回転部41をモーター(図示せず)などにより回転させることで分離容器43内のBB培養液に遠心力が加わる。
 分離容器入口側43Aから分離容器出口側43Bに向かって流れる間にBB101および油脂類がそれぞれの比重の差によって分離され、BB101も油脂101A、コロニー101B,含高油脂BB101C、低油脂BBとして油未合成BB101Dおよび油を放出したBB101dおよび油合成能力の無いBB101Eに分離されるが、分離条件は培養液の量、流量、遠心分離機の大きさに応じて適宜設定してもよい。
 低比重層46は、チューブなどで接続された流路を通ってポンプなどを用いてそのまま、油水分離装置あるいは蒸留塔などで水溶液と油脂101Aに分離され、分離された油脂類101Aは、油貯蔵タンク81に流出し貯蔵される。
 微量のBB株はフィルターあるいは、遠心分離機によって分離してもよく微生物準備装置に送液したり、UV照射により活動停止してもよい。
 高比重層45は、チューブなどで接続された流路を通っていったん高比重層容器45bに送液し、微生物準備装置あるいは排気ガス分解容器57に送液してもよい。高比重層45に含まれる低油脂BBは、細胞分裂直後で油脂類をまだ合成していない油未合成BB101Dと、油を合成し細胞外に放出してコロニーから脱落した油放出BB101dおよび油合成能力の無いBB101Eが混在している。
 次に第2の分離ステップとして、大きさの差で炭化水素とBB株を分離するステップを行う。
 第2の分離ステップでは、油脂類を細胞内に保持した含高油脂BB101C、多数のBB株と油脂類により形成したコロニー101Bを多く含む中比重層47が流体チャンバ流入部44aを通って流体チャンバ44に流入する。
 流入した中比重層47は、段差部44cにおいて大きさによって分離され、コロニー101Bから分離した一番小さい油脂類101Aが先に流出して、油水分離装置あるいは蒸留塔などで水溶液と油脂類101Aに分離され、分離された油脂類101Aは、油水分離後油貯蔵タンク81に送液して貯蔵される。
 微量のBB株はフィルターあるいは、遠心分離機によって分離してもよく、微生物準備装置あるいは排気ガス分解容器57に送液してもよい。
 さらに含高油脂BB101Cが段差部44cの外縁側流体チャンバ44の流出口44b側に滞留し、高油脂BB101Cより大きいコロニー101Bが流入口44a側に集まるため、高油脂BB101Cと油脂類101Aを放出してコロニー101A内にとどまっている、油脂類101Aを放出したBB101dを分離することができる。
 コロニー101内にとどまっているBB101dは、超音波あるいはマイクロバブリングなどによりコロニーを破壊してBB101dと油脂類101Aを分離する。
 油水分離装置あるいは蒸留塔61などで水溶液と油脂類に分離される。微量のBBはフィルターあるいは、遠心分離機によって分離してもよく、微生物準備装置あるいは排気ガス分解容器57に送液してもよい。
 分離された油脂類101Aは、油貯蔵タンク81に流出し貯蔵される。
 第2の分離ステップでは、比重や大きさの差によって流出時間が異なるため、時間差によってバルブを切り替えてもよい。
 油脂類101Aは油貯蔵タンク81に送液し、貯蔵あるいは、廃棄物の焼却に使用してCOを再回収することで、医療機器製造工場の排気ガスのうち、COの排出量あるいは大気中のCO量を減らす。
 光合成により生じたOは大気へ放出あるいは、オーランチオキトリウム微生物培養容器20Cに送気する。
 水溶液は回収後、油合成などに使用した水やカリウム、リン、窒素、無機塩類や有機化合物を追加、濃度を調整したのちに微生物培養容器20,20A、20Bおよび20Cの何れかに戻す。
 高比重層容器45bに送液された低油脂BBは、培養条件で培養を行い、BB株のうち、油脂類を合成しはじめて比重が小さくなるBB101Dと、油を合成せず細胞分裂もしないBB101Eを連続遠心式微生物分離機40で分離し、比重の小さいBBを微生物準備装置に送液して微生物培養装置20Bで再度培養し、比重の大きい油合成能力のないBB101Eはそのまま排気ガス反応容器57に送液して排気ガスによって活動を停止する。
 連続遠心式微生物分離機40は、流体チャンバー44を用いないものを使用して、比重の差のみで分離してもよい。
 工場の屋根などに、微生物培養容器を複数積層して配置する場合は、図17に示すように配置する。
 既存の厚さ3mm程度のポリエチレン製三層気泡緩衝材10を微生物培養容器20として用いる場合、微生物培養容器20を複数段、光源を太陽光とした場合、上段、中断、下段と三段に積層して配置する。
 光が凸部6を通過するため、微生物の濃度を大きくしても、下段まで十分光が到達して微生物の光合成が可能となる。
 油脂類の生産量を多くするには、太陽光を遮蔽しない上段の微生物培養容器20Aでボトリオコッカスブラウニー(BB)株101、中段の微生物培養容器20でChlorella Vulgaris102、下段の微生物培養容器20Bでナンノクロロシプス103を培養する。
 微生物培養容器20Bの下に太陽光発電パネルを配置する場合は、軽量の太陽光発電シート90でもよく凸部6が透明光を透過し、微生物が利用しない波長であれば微生物培養液を透過して太陽光発電シート90に到達するため、発電が可能となる。
 光を必要としないCHMO、オーランチオキトリウム18W-13a株104の微生物培養容器20Cは、太陽光発電シート90の下側に配置し、積層数もChlorella Vulgaris102、ナンノクロロシプス103、あるいはボトリオコッカスブラウニー(BB)101などのPAMAの微生物培養容器20,20Bおよび20A培養容器よりも多くして、排気ガスの分解量あるいは有機化合物、特に油脂類の合成量または生産量を多くしてもよい。
 なお、供給する微生物の種類や微生物培養容器20の配置や大きさは、適宜変更してもよい。
 図18に、第1から第3の実施形態を備えた排気ガス分解システムと、有機化合物の生産方法の概略を説明する。
 この排気ガス分解システムに供給されたEOやCOは、分解されて有機化合物に合成されるため、実質的にシステム外に排出されない。合成された有機化合物は、大量に生産することができるため、他の用途に用いることができる。
 排気ガスを原料とした有機化合物の生産方法は、有機化合物を生産可能な微生物を準備する微生物準備ステップ、有機化合物の生産または微生物の増殖に用いる、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を準備する原料準備ステップ、微生物を培養する培養ステップ、有機化合物を合成する有機化合物合成ステップと、微生物と前記有機化合物を分離する分離ステップおよび、有機化合物を回収する回収ステップと、を有し、微生物準備ステップ、原料準備ステップ、培養ステップ、有機化合物合成ステップの何れかのステップ、分離ステップ、または各ステップの間のいずれかに、排気ガスを供給する排気ガス供給ステップを有する、前記有機化合物の生産方法である。
 好ましい生産方法は、有機化合物合成ステップ、排気ガス供給ステップ続いて排気ガス分解ステップを有する生産方法であり、より好ましい生産方法は有機化合物合成ステップ、有機化合物を分離する分離ステップ、排気ガス供給ステップ続いて排気ガス分解ステップを有する生産方法である。
 有機化合物は、油脂類であることが好ましく、炭化水素であることがより好ましいが、これに限られない。微生物は、油脂類を合成する微生物が好ましく、例えばボトリオコッカス類、ナンノクロロシプス、オーランチオキトリウム類、イカダモ、クロレラ類としてChlorella. vulgaris、Chlorella. pyrenoidosa、ドナリエラ、スピルリナ、ユーグレナ、ヘマトコッカスのうち、少なくとも1種類以上であることが好ましい。
 油脂類の生産により好ましいのは、油脂類と従属栄養型微生物の栄養あるいは独立栄養型微細藻類の補助栄養となる有機化合物であるブドウ糖、アミノ酸などと油脂類を生産するナンノクロロシプス、クロレラ類としてChlorella. vulgaris、Chlorella. pyrenoidosaなどのクロレラ類、スピルリナ、ユーグレナである。
 油脂類のうち炭化水素類の生産により好ましいのは、微生物の乾燥重量に対して20wt%以上の炭化水素類を合成する、ボトリオコッカスブラウニー(BB)株やオーランチオキトリウム18W-13a株である。
 具体的な排気ガス分解方法と、有機化合物、特に油脂類の生産方法について詳述する。水中微生物を準備する微生物準備ステップと、UVにより殺菌した水、カリウム、リン、窒素、無機塩類(IN)、栄養源となる糖やアミノ酸などの有機化合物(Org.)を含む水溶液(HO Solution)、CO、および海水あるいは人工海水など原料を準備する原料準備ステップと、により、それぞれの供給源から所定量の原料と水中微生物を添加した培養液を微生物培養容器20,20A、20Bおよび20Cに供給する。
 微生物培養容器20はChlorella. vulgaris102、微生物培養容器20Aはボトリオコッカスブラウニー(BB)101、微生物培養容器20Bはナンノクロロシプス102、微生物培養容器20Cはオーランチオキトリウム18W-13a株104を培養し、NaCl濃度あるいは海水の供給量は適宜バルブ53、三方バルブ54により調整する。
 所定温度と所定時間、COまたはOを供給し、必要に応じて無機塩類や有機化合物を追加供給しながら培養する。
 微生物培養容器20で培養したChlorella. vulgaris102は、粉砕機55で微生物を破砕したのち遠心分離機56で分離して、水溶性の無機塩類および水溶性の有機化合物をCHMOであるオーランチオキトリウム18W-13a株104の微生物培養容器20Aに供給する。水溶性の有機化合物は必要に応じて微生物培養容器20A、20Bおよび20Cに供給してもよく、次バッチの20に供給してもよい。
 粉砕した微生物破片102Xは、水を追加あるいは残余の培養液とともに医療機器製造工場70に設置された医療機器滅菌装置71から排出された医療機器の滅菌に使用後のEO/CO2排気ガスを供給してEOと微生物破片102Xのアミノ基、水酸基あるいはカルボキシル基および水と排気ガス分解容器57で付加反応させてEOを分解する。
 使用した原料を含む培養液は、気液分離装置61に送液し、気体状のCOは回収して微生物培養容器20、20Aまたは20Bに送る。発生したOは微生物培養容器20Aに送る。
 未反応のEOは、気液分離装置61および水蒸留塔62でEOを回収し、排気ガス分解容器57に供給する。
 EOは、燃料となるEG、微生物破片と反応したEO付加微生物破片102Xとなり脱水後燃料として燃焼されてCOとなり、さらに油脂類を合成するPAMAにより油脂類となるため、システム外に実質的に放出されない。
 気液分離した培養液102Yは水蒸留塔62で水が留去され、凝縮器66で回収される。
 水を除去した培養液102Yは、EGに溶解しない水溶性の塩類、水溶性の有機化合物とEO付加微生物破片102Xは、図示しない分離方法、例えば遠心分離、ろ過あるいは沈殿法などによりEGと蒸留残渣が分離される。
 分離したEGはEG蒸留塔63によって分離し燃料として用いてもよく、あるいは微生物の栄養として分解されて最終的にCOと水に分解されるのであれば、少量残存してもよい。
 医療機器滅菌後の排気ガス中のEOは、既存の触媒式EO分解装置72によって分解後の排気ガス中のEO量が低ければ、発生するEG量も少ないためEG分離ステップやEG蒸留塔63を省略して直接微生物に分解させてもよい。
 微生物によってEGが分解されてCOとなり、PAMAにより油脂類となるためEGもシステム外に実質的に放出されない。
 回収された水、あるいは、UV殺菌した新たな水を蒸留残渣に加え酵素反応装置64に供給しセルラーゼあるいはペプターゼなどの酵素により微生物破片102Xを糖、アミノ酸またはペプトンに分解し、オーランチオキトリウム104の栄養源あるいは、BB101、Chlorella. vulgaris102およびナンノクロロシプス103の補助的栄養として供給してもよい。
 公知の酵素担持型固体ビーズに担持することで酵素を再利用してもよく、例えば遠心分離あるいは沈殿法により、酵素分離装置65により酵素分解した有機化合物の水溶液102Y’と水不溶分102X’とを分離する。
 水不溶分102X’は脱水後燃料として焼却し、COやカリウム、リン、窒素および無機塩類を回収し、原料として再利用する。
 海水を使用した場合は、カリウム、リン、窒素、無機塩類およびNaClが含まれており、溶融塩炉で有機化合物や微量に含まれるマイクロプラスチックととも焼却してCOと水を回収し、塩として利用してもよく、雨水に溶かしてカリウム、リン、窒素とNaClとの溶解度の差によって分離し、海水とおおよそ同一の塩濃度および組成にしたのち、海へ放出してもよい。
 オーランチオキトリウム18W-13a株104の微生物培養容器20Aでは、殺菌した水、カリウム、リン、窒素、無機物と栄養源となる糖やアミノ酸などの有機化合物と、必要に応じてUVなどにより殺菌した海水あるいは人工海水を使用して培養する。
 オーランチオキトリウム18W-13a株104が最大濃度あるいは最大油合成量に達したら、培養液を微生物排ガス反応容器57へ送り、オーランチオキトリウム18W-13a株104の活動を停止するためにEOあるいはCOを培養液に供給する。
 オーランチオキトリウム18W-13a株104が合成したC3050などの炭化水素あるいは脂肪酸は細胞に貯蔵されているため、細胞を破砕して油脂類を微生物外に取り出す。
 微生物の破砕方法として粉砕機のほか、ボールミルや超音波あるいはマイクロバブルやナノバブルを用いてもよい。
 破砕したオーランチオキトリウム18W-13a株104は遠心分離器56によって油脂類、水溶液104Y、オーランチオキトリウム微生物破片104Xに分離する。合成された油脂類を分離した後、EO、CO、EG,水、カリウム、リン、窒素、無機塩類あるいは残余の有機化合物は、前述したChlorella. vulgaris102と同じ方法で分離あるいは回収し再利用する。
 ボトリオコッカスブラウニー(BB)株101は、殺菌した水、カリウム、リン、窒素、無機物と栄養源となる糖やアミノ酸などの有機化合物と、必要に応じて殺菌した海水あるいは人工海水を使用して微生物培養容器20A内で培養する。BB株101が最大濃度あるいは最大油合成量に達したら、培養液を連続式遠心分離機40で分離する。最も比重の小さい油脂類101A、コロニー101B、含高油脂BB101C、油未合成BB101D、油放出BB101dおよび油合成能力の無いBB101Eカリウム、リン、窒素、無機塩類あるいは水溶液を分離する。
 生産された油脂類あるいは炭化水素類は、他の有機化合物の原料あるいは燃料として用いてもよく、廃棄物焼却用燃料として用いてもよい。廃棄物としては例えば廃棄プラスチックのようにごみ自体が可燃性であるものであれば、燃料費の削減となる。
 あるいは医療用感染性廃棄物として使用済の針、シリンジ、カテーテルや、新型コロナウィルス(SARS-Cov-2)感染症(Covid-19)で使用されたマスク、防護服など、特に一部に金属を含むものは、感染リスクを避けるために専用の焼却炉あるいは溶融炉などで燃焼、滅菌されている。そのための燃料あるいは、電気炉などの電力供給用の発電用燃料として用いてもよい。
 発電用燃料として、蒸気ボイラー用直接燃焼する燃料あるいは、発火点が低いものであればディーゼルエンジン型発電機用燃料として用いることができる。
 使用しない生産された油脂類あるいは炭化水素類は貯蔵してもよく、好ましくは空気を遮断した状態、より好ましくは酸素濃度が低い、あるいは無酸素状態で貯蔵する。
 さらに光を遮断することで、微生物による分解を抑制した状態が特に好ましい。具体的な貯蔵方法として、例えばタンク、ドラム缶、あるいは枯渇した油田に貯蔵してもよく、あるいは加熱後12-ヒドロキシステアリン酸のような油凝固剤を加えて固体化し、固体化した油脂類をそのまま倉庫や鉱山あるいは廃炭田に貯蔵してもよい。
 これにより、CO排出量を削減することができるとともに、再生可能エネルギーである太陽光発電が発電できない、夜間や悪天候時の補助的電源として用いることができる。
 あるいは、石炭のような安価であるがCO排出量が多い燃料は、本発明と組み合わせることで、安価かつCO排出量が少ない燃料とすることができ、光熱費など燃料コストの削減が可能となる。
 目的外の微生物が混入または混入の恐れがあれば、低濃度の塩素あるいは次亜塩素酸ソーダで洗浄しさらにチオ硫酸ナトリウムで中和後、BB101を微生物準備装置あるいは微生物培養容器20Aに戻してもよい。
 活動停止したBB101は、排気ガス反応容器57へ送り、EOと反応あるいは酵素分解してもよく脱水後燃焼して熱源とし、COと水を回収してもよい。
 独立した排気ガス反応容器57や酵素反応容器64を用いてもよいが、コスト削減と、それぞれの微生物の培養期間に差異があるため、排気ガス反応容器57などが空いている時間を短くして装置を効率よく使用してコストを下げるため共通の排気ガス分解容器57を用いてもよい。
 上記において、本発明について好適な実施形態を挙げて説明したが、本発明は前記実施形態に限定されるものではなく、本発明の趣旨を逸脱しない範囲において、種々の改変が可能なことは言うまでもない。
 図18に示した第1から第3の実施形態は、同時に運用してもよく、各実施形態単独で実施してもよく、各実施形態それぞれの数や大きさは医療機器製造工場70の稼働状況に応じて調整してもよく、EOを排出する医療機器の滅菌のみを目的とする工場や、食品の殺菌を目的とする工場、COや窒素酸化物を排出する廃棄物焼却工場や火力発電所、他業種の製造工場、住宅、商店、病院、学校や屋上、壁面や地下スペースなどに設置してもよい。
 あるいは、通常利用が困難な農地の段差、温室の屋根のほか河川敷、崖、傾斜地あるいはため池、砂地、堤防や防波堤でもよく、使用しない場合や荒天時には、培養液を抜き取り、微生物培養容器を巻き取って安全な倉庫に保管してもよい。
 殺菌には、窒素酸化物、硫黄酸化物、オゾン、ホルムアルデヒドその他、微生物類が栄養源とすることができるVOCを用いてもよい。
 なお、本出願は、2019年10月30日に出願された日本特許出願2019-196897号に基づいており、それらの開示内容は、参照され、全体として、組み入れられている。
1 第1のシート、
2 第2のシート、
3 第3のシート、
4 柱部、
5 連通孔、
6 凸部、
7 平面部、
8 頂部、
10 三層気泡緩衝材、
11 エア抜き孔、
12 密着部、
13 融着部、
20、20A、20B、20C 微生物培養容器、
21 培養液供給口、
22 培養液出口、
23 排気ガス供給口、
24 ガス出口、
30 積層微生物培養容器、
40 連続遠心式微生物分離装置、
41 回転部、
42 流入管、
43 分離容器、
43a 分離容器入口側、
43b 分離容器出口側、
44 流体チャンバ、
44a 流体チャンバ流入部、
44b 流体チャンバ流出部、
44c 流体チャンバ段差部、
45 高比重層、
45a 高比重層流出管、
45b 高比重層容器、
46 低比重層、
46a 低比重層流出管、
46b 低比重層容器、
47 中比重層、
47a 中比重層流出管、
47b 中比重層貯留容器、
50 排気ガス分解プラント、
51 雨水枡、
52 ポンプ、
53 バルブ、
54 三方バルブ
55 粉砕機、
56 遠心分離機、
57 排気ガス分解容器、
61 気液分離装置、
62 水蒸留塔、
63 EG蒸留塔、
64 酵素反応装置、
65 酵素分離装置、
66 酵素担持ビーズ、
67 凝縮器、
70 医療機器製造工場、
71 医療機器滅菌装置、
72 EO分解装置、
81 油脂類貯蔵タンク、
82 油脂類貯蔵タンク、
83 油脂類貯蔵タンク、
84 油脂類貯蔵タンク、
85 EG燃焼炉、
86 微生物残渣燃焼炉、
90 太陽光発電パネル、
101 ボトリオコッカス・ブラウニー(BB)、
102 Chlorella Vulgaris、
103 ナンノクロロシプス、
104 オーランチオキトリウム18W-13a株、
101A 油脂類、
101B コロニー、
101C 高油脂BB、
101D 油未合成BB、
101d 油放出BB、
101X BB微生物破片、
102X Chlorella Vulgaris微生物破片、
103X ナンノクロロシプス微生物破片、
104X オーランチオキトリウム微生物破片、
104Y オーランチオキトリウム培養液、
105X 混合した微生物破片、
110 容器枠、
111 ライナー、
112 リブ、
113 中空部分、
114 培養液供給用ポリエチレンチューブ、
115 排気ガス供給用ポリエチレンチューブ、
116 排気用ポリエチレンチューブ、
117 培養液排出用ポリエチレンチューブ、
118、118’ 受け器リーク液排出口、
120接続部、
121 スリット、
122 突起、
123 凹部、
130接続部、
140C、140C’孔 、
150 受け器、
160受け器外枠、
170受け器内枠、
180、180’ プラスチックシート。

Claims (14)

  1.  排気ガス分解システムであって、
     微生物を培養するために、前記微生物を準備する微生物準備装置、
     前記微生物を培養するために用いる、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を準備する原料準備装置、
     前記微生物に原料を供給して微生物を培養する微生物培養装置、
     排気ガスを前記微生物、または前記微生物を破砕した微生物破片により分解する排気ガス分解装置、
     前記排気ガス、前記微生物、前記微生物破片、前記微生物により合成された有機化合物、および前記原料の少なくとも一部を分離する分離装置、
     および前記分離装置で分離された前記排気ガス、前記微生物、前記微生物破片、前記有機化合物、前記原料の少なくとも一部を回収する回数装置を有し、
     前記微生物培養装置が、微生物培養容器を有し、
     前記微生物培養容器が、第1のシートと、第2のシートと、を有し、前記第1のシートと前記第2のシートとの間に柱部を有し、かつ前記第1のシートと前記第2のシートとの間に連通する微生物培養液供給口を有する、
     ことを特徴とする排気ガス分解システム。
  2.  前記微生物培養容器は、前記第1のシートと前記第2のシートの間に、平面部及び底面部と、前記平面部から突出する複数の凸部を有する第3のシートを配置し、
     前記柱部が、前記凸部の頂部が前記第1のシートと密着し、前記第3のシートの前記底面部が前記第2のシートと密着して形成される前記柱部であり、かつ前記柱部が中空であり、
     前記第1のシート、前記第2のシートおよび前記柱部で囲まれた連通孔を有し、前記微生物培養液供給口が前記連通孔に連通するものであり、前記微生物培養容器の端部に前記第1のシートと前記第2のシートが直接的に密着した、または前記第3のシートを介して密着した密着部を有する請求項1に記載の排気ガス分解システム。
  3.  前記微生物培養装置および前記排気ガス分解装置に排気ガス供給口を有する請求項1または2に記載の排気ガス分解システム。
  4.  排気ガスの分解方法であって、
     微生物を培養するために、前記微生物を準備する微生物準備ステップ、
     前記微生物を培養するために用いる、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を準備する原料準備ステップ、
     前記微生物に原料を供給して前記微生物を培養する培養ステップ、
     有機化合物を合成する有機化合物合成ステップ、分離ステップ、
     および回収ステップを有し、
     前記各ステップまたは、前記各ステップの間のうちの少なくとも一つにおいて排気ガスを供給し、排気ガス分解ステップを有する、
     ことを特徴とする分解方法。
  5.  前記排気ガスが、医療機器のガス滅菌ステップから排気された滅菌用ガスであり、前記滅菌用ガスが排気ガス分解ステップに供給される請求項4に記載の分解方法。
  6.  前記排気ガスが、二酸化炭素、酸化エチレンのいずれか一方または二酸化炭素と酸化エチレンの混合物を含む請求項4または5に記載の分解方法。
  7.  前記酸化エチレンが前記排気ガス分解ステップ後に、微生物培養液から分離されて回収される請求項4から6のいずれか1項に記載の分解方法。
  8.  前記回収された酸化エチレンを他の排気ガス分解ステップに使用する請求項4から7のいずれかに記載の分解方法。
  9.  排気ガスを利用した有機化合物の生産方法であって、
     前記有機化合物を生産可能な微生物を準備する微生物準備ステップ、
     前記有機化合物の生産または前記微生物の増殖に用いる、少なくとも水、カリウム、リン、窒素、無機塩類および気体を含む原料を準備する原料準備ステップ、
     前記微生物を培養する培養ステップ、
     前記有機化合物を合成する有機化合物合成ステップ、
     前記微生物と前記有機化合物を分離する分離ステップ、
     および前記有機化合物を回収する回収ステップを有し、
     前記各ステップ、または前記各ステップの間のうちの少なくとも一つに、排気ガスを供給する排気ガス供給ステップを有する、前記有機化合物の生産方法。
  10.  前記培養ステップと前記分離ステップの間に、排気ガス分解ステップを有する、請求項9に記載の生産方法。
  11.  前記分離ステップと前記回収ステップの間に、前記排気ガス分解ステップを有する、請求項9に記載の生産方法。
  12.  前記有機化合物が、油脂類である請求項9から11のいずれか1項に記載の生産方法。
  13.  前記微生物が、油脂類を合成する請求項9から12のいずれか1項に記載の生産方法。
  14.  前記微生物が、ボトリオコッカス類、ナンノクロロシプス、オーランチオキトリウム類、イカダモ、Chlorella. vulgaris、Chlorella. pyrenoidosa、ドナリエラ、スピルリナ、ユーグレナ、ヘマトコッカスのうち、少なくとも1種類以上である請求項9から13のいずれか1項に記載の生産方法。
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